CN112326950A - 一种t-2毒素的检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种T‑2毒素的可视化检测方法,通过单链DNA适配体、样品、MOPS缓冲液振荡混匀孵育反应后,加入AuNPs孵育反应,再加入NaCl溶液孵育反应,测定待测反应液的A620/A520值,并将该值代入由T‑2标准溶液构建的线性方程中以计算得到样品中毒素浓度。本发明方法对T‑2毒素的最低检出限为0.124nM(57.8pg/mL),本发明方法在操作过程和结果等方面均显示出明显的优势,此外,本发明方法对T‑2毒素的检测具有高选择性,在相同条件下,本发明方法并不受包括黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、玉米赤霉烯酮和伏马菌素B1在内的其他真菌毒素的影响。
Description
技术领域
本发明属于微量毒素检测技术领域,尤其涉及一种T-2毒素的检测方法。
背景技术
T-2毒素是一种具有极强毒性的真菌次级代谢产物,广泛分布于小麦、玉米、谷物和大米及其制品中。T-2毒素在体内外能够抑制DNA、RNA、蛋白质合成以及线粒体功能,具有致畸、致癌、致突变效应。根据欧洲食品安全委员会建议,人们对T-2每日允许的摄入量和急性参考剂量分别为0.02μg/kg和0.3μg/kg,这就要求有高灵敏和准确的T-2检测方法,以便正确评估人们所面临的风险。
目前能有效检测T-2的方法包括高效液相色谱、液相色谱-质谱、超高效液相色谱-串联质谱以及基于免疫分析等检测方法,但是这些方法都需要依赖昂贵的仪器,并且实际检测过程也是程序复杂、费时费力,对操作人员的专业性要求很高,并不能满足T-2的实时、快速检测的要求。
发明内容
本发明的目的在于提供一种T-2毒素的检测方法,旨在解决上述背景技术中现有技术的不足之处。
本发明是这样实现的,本发明公开了一种T-2毒素的可视化检测方法,该方法包括以下步骤:
(1)将不同已知浓度的T-2标准溶液作为样品分别执行以下操作以获得各对应的标准反应液:将40~60μL、1μM的单链DNA适配体与40~60μL样品加入到130~180μL、10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1~3h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育20~40min,再加入40~50μL、1M NaCl溶液孵育5~20min后,得到标准反应液;
(2)将各标准反应液转移至96孔板,测得各浓度T-2标准溶液对应的A620/A520标准值,根据各A620/A520标准值绘制的吸光度线性变化的曲线,在设定浓度范围内T-2标准溶液浓度与A620/A520值呈线性关系,得出线性方程;
(3)将待测T-2溶液作为样品执行与步骤(1)相同的所述操作并得到待测反应液,具体为:将40~60μL、1μM的单链DNA适配体与40~60μL待测T-2溶液加入到130~180μL、10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1~3h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育20~40min,再加入40~50μL、1M NaCl溶液孵育5~20min后,得到待测反应液;
将所述待测反应液转移至96孔板,测得待测反应液的A620/A520值,将该A620/A520值代入步骤(2)所述线性方程中,计算得到待测T-2溶液中T-2毒素浓度。
优选地,在步骤(1)中,将50μL、1μM的单链DNA适配体与50μL样品加入到157μL、10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1~3h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育30min,再加入43μL、1M NaCl溶液孵育10min后,得到标准反应液。
优选地,在步骤(1)中,所述单链DNA适配体为5’-GTATATCAAGCATCGCGTGTTTACACATGCGAGAGGTGAA-3’。
优选地,在步骤(1)中,所述单链DNA适配体为活化后的适配体,该活化过程为:先将适配体溶于水中,用MOPS缓冲液稀释至1μM,95℃加热5min,迅速于冰水中冷却15min后,在室温25℃放置20min。
优选地,在步骤(2)中,所述设定浓度为0.21435~10717.5nM,所述直线方程为y=2.6×10-5+0.7666,相关系数为0.99654。
本发明克服现有技术的不足,提供一种T-2毒素的检测方法。通常情况下,AuNPs分散在溶液中呈红色,当用适当浓度NaCl处理AuNPs溶液时,AuNPs会聚集成较大颗粒,溶液会逐渐由红色变成紫色甚至蓝色。表面带有负电荷的单链DNA(ssDNA)适配体在高盐溶液中很容易吸附在AuNPs表面,保持AuNPs的稳定性,并保持溶液颜色为酒红色。然而,目标分子T-2存在时,适配体通过与目标分子结合并从AuNPs表面解吸附,导致AuNPs在高盐溶液中聚集,溶液颜色从红色变成蓝紫色。吸附在AuNPs表面的适配体数量随靶标分子浓度的变化而变化。不同浓度的适配体作为AuNPs的稳定剂,对盐诱导的聚集有不同的抑制能力,并产生不同的颜色。因此,本发明不仅可以通过吸光度值的变化,而且可以通过肉眼观察来检测目标分子T-2。
NaCl用于中和AuNPs的表面电荷,为了优化NaCl浓度,本发明将不同体积的1MNaCl(0、5、10、15、20、25、30、40、43、45、48、50、60、70、80和100μL)同200μL的AuNPs加入1.5mL离心管,再加入MOPS缓冲液至总体积为500μL。使得NaCl终浓度依次为0、10、20、30、40、50、60、80、86、90、96、100、120、140、160和200mM。孵育10min后测定A620/A520。结果如图1所示,不同NaCl浓度下AuNPs的吸收光谱的变化。分散的AuNPs在520nm处显示出较强的吸收峰,随着NaCl浓度的增加,520nm处的吸收峰急剧下降,而在620nm处出现一个新的吸收峰。520nm处吸收峰的降低和620nm处吸收峰的增强表明形成了AuNPs聚集体,因此选择A620/A520作为AuNPs分散状态的一个表征指标,A620/A520增加表示AuNPs聚集度增加,导致溶液颜色从红色变为紫色或蓝色。
随着NaCl浓度从0增加到20nM,吸光度值(A620/A520)从0.17增加到0.22,随着NaCl浓度进一步增加到86mM,吸光度值(A620/A520)迅速增加到0.76,并且在较高NaCl浓度下,吸光度值在1.02和1.16之间趋于稳定,结果如图2所示。溶液颜色的变化也证实了盐诱导下AuNPs的聚集。初始AuNPs溶液呈红色,当NaCl浓度从0增加到50mM时,颜色没有明显变化。然而,当NaCl浓度增加到60mM时,溶液变成深红色,表明在此浓度下开始形成了AuNP聚集体。当NaCl浓度进一步增加到86mM时,AuNPs溶液的颜色变为紫色或蓝色。
NaCl加入量过少会导致AuNPs表面电荷的中和作用不足,从而不会引起聚集。随着NaCl浓度的增加,离子强度也逐渐增大,AuNPs表面的负电荷被盐离子强烈屏蔽,从而在相邻的AuNPs之间产生吸引力,导致随后的聚集。当NaCl浓度进一步增加到86mM时,AuNPs溶液的颜色变为紫色或蓝色,随着NaCl浓度进一步增加,AuNPs的颜色变为透明溶液,并观察到AuNPs的沉淀。沉淀的形成使得AuNPs很难用肉眼和吸收光谱来区分颜色的变化。因此,NaCl最佳浓度为86mM。
适配体主要有两个作用:(1)快速、特异地结合T-2形成T-2适配体复合物;(2)在AuNPs表面吸附,防治盐诱导下AuNPs的聚集。为了确定适配体的最佳浓度,本发明测试了不同浓度范围20~180nM适配体偶联的AuNPs的吸收光谱,通过加入不同体积(10、20、30、40、50、60、70、80和90μL)的1μM T-2适配体溶液使得T-2适配体终浓度为20、40、60、80、100、120、140、160和180nM,用MOPS缓冲液补充至体积为457μL,孵育30min后加入43μL 1M NaCl溶液,再孵育10min后测定A620/A520。如图3所示,结果显示适配体在任何浓度下既不影响吸收光谱,也不影响AuNPs的颜色,表明适配体与AuNPs结合对AuNPs的分散性没有显著影响。当20nM适配体与AuNPs结合时,与仅添加AuNPs相比,加入86mM的NaCl后AuNPs的吸光度发生了明显变化。100和180nM适配体与AuNPs结合,加入86mM的NaCl后AuNPs的吸光度与原始AuNPs相似,起到了很好的保护效果,20nM的适配体不足以防止盐诱导下AuNPs的聚集,导致AuNPs呈现淡紫色。另一方面,AuNPs在与100~180nM适配体结合时吸光度值分别为0.37和0.36,如图4所示,100nM适配体结合到AuNPs表面在高浓度盐溶液中与AuNPs本身吸光度值类似,表明已经起到了很好的保护效果。如果添加的适配体不足,AuNPs就会部分暴露,AuNPs的聚集会变得敏感;如果适配体数量过饱和,即使添加了靶标分子,AuNPs也有可能被适配体覆盖,从而出现假阴性结果。因此,最佳适配体浓度选择为100nM。
本发明的核心创新要点在于适配体制备(活化过程使得更有利于适配体和T-2结合)、NaCl浓度的确定、适配体浓度的确定,以及综合的使用过程。特别是,本发明提出了让适配体和T-2先结合发生反应,然后加入AuNPs,未反应的ssDNA会和AuNPs结合,从而保护NaCl引起的聚集,不同浓度的T-2,和适配体结合后会导致产生不同数量的ssDNA(和T-2结合的适配体不具备保护效应,单链游离的DNA具备保护AuNPs不被聚集的能力),因此和AuNPs结合后会产生不同程度的保护效果,导致产生不同的颜色以及A620/A520值。
相比于现有技术的缺点和不足,本发明具有以下有益效果:
(1)本发明方法对T-2毒素的最低检出限为0.124nM(57.8pg/mL),本发明方法在操作过程和结果等方面均显示出明显的优势;
(2)本发明方法对T-2毒素的检测具有高选择性,在相同条件下,本发明方法并不受包括黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、玉米赤霉烯酮和伏马菌素B1在内的其他真菌毒素的影响。
附图说明
图1是在不同浓度氯化钠溶液中AuNPs的吸收光谱;
图2是AuNPs溶液的吸光度值(A620/A520)与NaCl浓度的关系;
图3是适配体浓度对AuNPs溶液吸光度值(A620/A520比值)的影响;
图4是AuNPs的吸收光谱和100nM适配体对盐诱导下AuNPs吸收光谱的影响;
图5是AuNPs溶液的吸光度值(A620/A520比值)与T-2浓度的关系;
图6是T-2标准溶液浓度对应AuNPs溶液吸光度值(A620/A520)的标准曲线;
图7是不同浓度的黄曲霉素B1、赭曲霉素A、玉米赤霉烯酮、伏马菌素B1对适配体传感器的影响。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合附图及实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
在以下实施例1~3中,T-2的单链DNA适配体由华大基因合成,序列来源于已报道文献,具体为:5’-GTATATCAAGCATCGCGTGTTTACACATGCGAGAGGTGAA-3’,T-2的单链DNA适配体使用前,先将适配体溶于水中,进一步用MOPS缓冲液稀释至1μM,95℃加热3~10min,迅速于冰浴冷却10~20min后在室温25℃放置10~30min以保证适配体形成正确的三级结构。
此外,以下T-2标准溶液的制备过程为:将浓度为1mg/mL(等同于2143.5μM)的T-2母液溶解于10%甲醇-水中,依次用水稀释至所需浓度,得到不同浓度的T-2标准溶液。
实施例1
(1)将不同已知浓度的T-2标准溶液作为样品分别执行以下操作以获得各对应的标准反应液:1.5mL离心管中,将50μL、1μM的单链DNA适配体与50μL样品加入到157μL 10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应2h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育30min,再加入43μL、1M的NaCl溶液孵育10min后,得到500μL标准反应液;
(2)将各标准反应液转移至96孔板,测得各浓度T-2标准溶液对应的A620/A520标准值,根据各A620/A520标准值绘制的吸光度线性变化的曲线,该曲线中,在0.21435~10717.5nM浓度范围内T-2标准溶液浓度与A620/A520值呈线性关系,获取该线性方程:y=2.6×10-5+0.7666,相关系数为0.99654;
(3)将待测T-2溶液作为样品执行以下操作以获得待测反应液:1.5mL离心管中,将50μL、1μM的单链DNA适配体与50μL样品加入到157μL 10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应2h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育30min,再加入43μL、1M的NaCl溶液孵育10min后,得到500μL待测反应液;
将所述待测反应液转移至96孔板,测得待测反应液的A620/A520值,将该A620/A520值代入实施例1中的线性方程:y=2.6×10-5+0.7666,相关系数为0.99654,计算得到待测T-2溶液中T-2毒素浓度。
实施例2
(1)将不同已知浓度的T-2标准溶液作为样品分别执行以下操作以获得各对应的标准反应液:1.5mL离心管中,将40μL、1μM的单链DNA适配体与40μL样品加入到180μL 10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育20min,再加入40μL、1M的NaCl溶液孵育5min后,得到500μL标准反应液;
(2)将各标准反应液转移至96孔板,测得各浓度T-2标准溶液对应的A620/A520标准值,根据各A620/A520标准值绘制的吸光度线性变化的曲线,该曲线中,在0.21435~10717.5nM浓度范围内T-2标准溶液浓度与A620/A520值呈线性关系,获取该线性方程;
(3)将待测T-2溶液作为样品执行以下操作以获得待测反应液:1.5mL离心管中,将40μL、1μM的单链DNA适配体与40μL样品加入到180μL 10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应2h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育30min,再加入40μL、1M的NaCl溶液孵育10min后,得到500μL待测反应液;
将所述待测反应液转移至96孔板,测得待测反应液的A620/A520值,将该A620/A520值代入上述线性方程,计算得到待测T-2溶液中T-2毒素浓度。
实施例3
(1)将不同已知浓度的T-2标准溶液作为样品分别执行以下操作以获得各对应的标准反应液:1.5mL离心管中,将60μL、1μM的单链DNA适配体与60μL样品加入到130μL 10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育40min,再加入50μL、1M的NaCl溶液孵育20min后,得到500μL标准反应液;
(2)将各标准反应液转移至96孔板,测得各浓度T-2标准溶液对应的A620/A520标准值,根据各A620/A520标准值绘制的吸光度线性变化的曲线,该曲线中,在0.21435~10717.5nM浓度范围内T-2标准溶液浓度与A620/A520值呈线性关系,获取该线性方程;
(3)将待测T-2溶液作为样品作为样品执行以下操作以获得待测反应液:1.5mL离心管中,1.5mL离心管中,将60μL、1μM的单链DNA适配体与60μL样品加入到130μL 10mM、pH7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育40min,再加入50μL、1M的NaCl溶液孵育20min后,得到500μL待测反应液;
将所述待测反应液转移至96孔板,测得待测反应液的A620/A520值,将该A620/A520值代入上述线性方程,计算得到待测T-2溶液中T-2毒素浓度效果实施例1
取5g完好的小麦样品用25mL甲醇/水在室温下萃取50min,4000rpm离心10min去除杂质,滤液过0.22μm超滤膜。上清液用5倍体积水稀释,稀释液中加入不同浓度T-2毒素代表不同污染程度的样品。溶液用于样品中T-2毒素的检测,每个浓度重复3次。
取5g完好的玉米样品用25mL甲醇/水在室温下萃取50min,4000rpm离心10min去除杂质,滤液过0.22μm超滤膜。上清液用5倍体积水稀释,稀释液中加入不同浓度T-2毒素代表不同污染程度的样品。溶液用于样品中T-2毒素的检测,每个浓度重复3次。
以下检测结果如下表1所示:
表1小麦和玉米样品在不同水平的T-2加样回收率(n=3)
由表1可以看出,提取毒素后用该方法检测T-2,玉米中T-2毒素的平均回收率在90.9~108.4%之间,相对标准偏差(RSDs)在0.7~2.81%之间;小麦中T-2毒素的平均回收率在97.83~101.36%之间,相对标准偏差(RSDs)在1.04~7.21%之间。
该方法具有良好的精密度和重现性,可用于小麦和玉米样品中T-2的检测。
效果实施例2
将50μL 1μM适配体和50μL不同浓度的T-2溶液(T-2终浓度为0.01、0.1、500、1000、2000、5000ng/mL、10μg/mL和50μg/mL,分别等同于0.0214、0.214、1071、2143、4287、10717、21435nM和107.175μM)加入到157μL MOPS缓冲液中,振荡混匀,25℃孵育反应2h确保T-2和适配体充分结合,分别加入200μLAuNPs孵育30min,再加入43μL 1M NaCl溶液孵育10min后,将反应液转移至96孔板,测得A620/A520。
结果如图5所示,当T-2浓度为0.01、0.1、500、1000、2000、5000ng/mL、10μg/mL和50μg/mL时(分别等同于0.0214、0.2143、1071、2143、4287、10717、21435和107.175μM),随着T-2浓度的增加A620/A520比值逐渐升高,溶液颜色由红色变成蓝紫色,意味着AuNPs逐渐聚集。当T-2浓度增加到10μg/mL以上时,A620/A520比值的增加变得平缓。
结果如图6所示,在T-2一定的浓度范围内(0.1ng/mL~5000ng/mL,相当于0.21435~10717.5nM),T-2浓度与A620/A520比值具有良好的线性关系,线性方程为y=2.6×10-5+0.7666,相关系数为0.99654,最低检出限为0.124nM。
将本发明方法与之前的T-2检测方法相比,比较结果如下表2所示:
表2本发明检测方法与传统T-2检测方法的比较
由上表2可知,本发明检测方法在性能和过程方面显示出明显的优势。
效果实施例3
为了确定适配体传感器的选择性,本发明实施例分别用0.1ng/mL和1000ng/mL的黄曲霉素B1、赭曲霉素A、玉米赤霉烯酮、伏马菌素B1作为T-2毒素结构的类似物进行适配体传感器选择性的测试,具体为:
将50μL、1μM适配体和50μL不同浓度的黄曲霉素B1、赭曲霉素A、玉米赤霉烯酮、伏马菌素B1溶液(终浓度分别为1000ng/mL和0.1ng/mL)加入到157μL MOPS缓冲液中,振荡混匀,25℃孵育反应2h确保T-2和适配体充分结合。分别加入200μLAuNPs孵育30min,再加入43μL 1M NaCl溶液孵育10min后,将反应液转移至96孔板,测得A620/A520。
结果如图7所示,结果显示,其他真菌毒素如:黄曲霉素B1、赭曲霉素A、玉米赤霉烯酮、伏马菌素B1对该传感器的影响微不足道,表明本发明检测方法对T-2的检测具有高选择性。
对比实施例
周晓彤等人(参考文献:(1)Zhou Xiaotong,Wang Lumei,Shen Guoqing etal.Colorimetric determination of ofloxacin using unmodified aptamers and theaggtregation of gold nanoparticles[J].Microchimica Acta,2018,185(7):355.(2)周晓彤;基于核酸适配体的氧氟沙星检测方法研究[D];上海交通大学;2019年)基于氧氟沙星和核酸适配体之间的相互作用,以及AuNPs在盐溶液中聚集和分散状态带来的吸光度和颜色的变化,通过颜色和吸光度变化就可以定性和定量检测,方法具有较高的特异性,最低检测限为3.38nM,线性范围为20~400nM,在环境或生物样品中有着较好的回收率。
但是,本发明方法与周晓彤等人的方法相比,检测限更低,为0.124nM(57.8pg/mL),并且线性范围更大,为0.21435~10717.5nM。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (5)
1.一种T-2毒素的可视化检测方法,其特征在于,该方法包括以下步骤:
(1)将不同已知浓度的T-2标准溶液作为样品分别执行以下操作以获得各对应的标准反应液:将40~60μL、1μM的单链DNA适配体与40~60μL样品加入到130~180μL、10mM、pH7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1~3h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育20~40min,再加入40~50μL、1M的NaCl溶液孵育5~20min后,得到标准反应液;
(2)将各标准反应液转移至96孔板,测得各浓度T-2标准溶液对应的A620/A520标准值,根据各A620/A520标准值绘制的吸光度线性变化的曲线,在设定浓度范围内T-2标准溶液浓度与A620/A520值呈线性关系,得出线性方程;
(3)将待测T-2溶液作为样品执行与步骤(1)相同的所述操作并得到待测反应液,将所述待测反应液转移至96孔板,测得待测反应液的A620/A520值,将该A620/A520值代入步骤(2)所述线性方程中,计算得到待测T-2溶液中T-2毒素浓度。
2.如权利要求1所述的T-2毒素的可视化检测方法,其特征在于,在步骤(1)中,将50μL、1μM的单链DNA适配体与50μL样品加入到157μL、10mM、pH 7.0的MOPS缓冲液中,振荡混匀、室温下孵育反应1~3h,再加入200μL、10nM的AuNPs孵育30min,再加入43μL、1M的NaCl溶液孵育10min后,得到标准反应液。
3.如权利要求1所述的T-2毒素的可视化检测方法,其特征在于,在步骤(1)中,所述单链DNA适配体为5’-GTATATCAAGCATCGCGTGTTTACACATGCGAGAGGTGAA-3’。
4.如权利要求1所述的T-2毒素的可视化检测方法,其特征在于,在步骤(1)中,所述单链DNA适配体为活化后的适配体,该活化过程为:先将适配体溶于水中,用MOPS缓冲液稀释至1μM,95℃加热5min,迅速于冰水中冷却15min后,在室温25℃放置20min。
5.如权利要求1所述的T-2毒素的可视化检测方法,其特征在于,在步骤(2)中,所述设定浓度为0.21435~10717.5nM,所述直线方程为y=2.6×10-5+0.7666,相关系数为0.99654。
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Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113418883A (zh) * | 2021-06-21 | 2021-09-21 | 佛山科学技术学院 | 一种基于DNA-AuNPs体系的比色阵列传感器的氨基糖苷类抗生素检测方法 |
CN113720794A (zh) * | 2021-06-11 | 2021-11-30 | 海南大学 | 基于金纳米粒子的比色适配体传感检测大米中真菌毒素的方法 |
CN114460019A (zh) * | 2022-01-24 | 2022-05-10 | 浙江大学 | 一种基于适配体的神经性贝类毒素比色传感器及检测方法 |
Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20140059608A (ko) * | 2012-11-08 | 2014-05-16 | 고려대학교 산학협력단 | 반사 기반 색도 분석을 이용한 타겟물질 검출 방법 |
CN106706528A (zh) * | 2016-11-24 | 2017-05-24 | 西安交通大学 | 一种基于核酸适配体的四环素比色检测法 |
CN109030442A (zh) * | 2018-08-01 | 2018-12-18 | 岭南师范学院 | 一种用于检测黄曲霉毒素afb1的检测探针及黄曲霉毒素的检测方法 |
CN109270259A (zh) * | 2018-09-12 | 2019-01-25 | 南方医科大学 | 一种检测内毒素的方法 |
CN110108766A (zh) * | 2019-01-22 | 2019-08-09 | 重庆医科大学 | 一种用于粮食或饲料中t-2毒素检测的适配体生物传感器制备方法 |
CN110423756A (zh) * | 2019-08-05 | 2019-11-08 | 江南大学 | 特异性识别链霉素的短链dna适配体序列及其应用 |
WO2020097692A1 (en) * | 2018-11-15 | 2020-05-22 | Newsouth Innovations Pty Limited | Methods for detecting a biological molecule |
CN111398391A (zh) * | 2020-05-18 | 2020-07-10 | 河南工业大学 | 一种用于t-2毒素残留检测的电化学传感器制备方法 |
-
2020
- 2020-10-20 CN CN202011124224.5A patent/CN112326950A/zh active Pending
Patent Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20140059608A (ko) * | 2012-11-08 | 2014-05-16 | 고려대학교 산학협력단 | 반사 기반 색도 분석을 이용한 타겟물질 검출 방법 |
CN106706528A (zh) * | 2016-11-24 | 2017-05-24 | 西安交通大学 | 一种基于核酸适配体的四环素比色检测法 |
CN109030442A (zh) * | 2018-08-01 | 2018-12-18 | 岭南师范学院 | 一种用于检测黄曲霉毒素afb1的检测探针及黄曲霉毒素的检测方法 |
CN109270259A (zh) * | 2018-09-12 | 2019-01-25 | 南方医科大学 | 一种检测内毒素的方法 |
WO2020097692A1 (en) * | 2018-11-15 | 2020-05-22 | Newsouth Innovations Pty Limited | Methods for detecting a biological molecule |
CN110108766A (zh) * | 2019-01-22 | 2019-08-09 | 重庆医科大学 | 一种用于粮食或饲料中t-2毒素检测的适配体生物传感器制备方法 |
CN110423756A (zh) * | 2019-08-05 | 2019-11-08 | 江南大学 | 特异性识别链霉素的短链dna适配体序列及其应用 |
CN111398391A (zh) * | 2020-05-18 | 2020-07-10 | 河南工业大学 | 一种用于t-2毒素残留检测的电化学传感器制备方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
杨妍 等: "纳米金-适配体比色传感法检测玉米油中黄曲霉毒素 B1", 《分析化学》, vol. 48, no. 5, pages 676 - 283 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113720794A (zh) * | 2021-06-11 | 2021-11-30 | 海南大学 | 基于金纳米粒子的比色适配体传感检测大米中真菌毒素的方法 |
CN113418883A (zh) * | 2021-06-21 | 2021-09-21 | 佛山科学技术学院 | 一种基于DNA-AuNPs体系的比色阵列传感器的氨基糖苷类抗生素检测方法 |
CN114460019A (zh) * | 2022-01-24 | 2022-05-10 | 浙江大学 | 一种基于适配体的神经性贝类毒素比色传感器及检测方法 |
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