CN110663455B - 一种蛹虫草栽培接种方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种蛹虫草,具体涉及一种蛹虫草栽培接种方法,其包括以下依次进行的步骤:将蛹虫草的分生孢子制成悬浮液后接种到培养基中,20~25℃下恒温室内培养3~7d后,经光照刺激得到蛹虫草。所述悬浮液的制备包括以下步骤:将蛹虫草菌丝收集,加入吐温80溶液震荡均匀后,用中速滤纸过滤纯化后,葡萄糖溶液稀释得到悬浮液备用。本发明方法克服了本领域技术人员的技术偏见,将蛹虫草分生孢子制成悬浮液,并接种到培养基中,培植出无虫子体的蛹虫草。经过试验证明,成功生长出菌丝,接种第3天就生长白色菌丝,而且生长更均匀。
Description
技术领域
本发明涉及一种蛹虫草,具体涉及一种蛹虫草栽培接种方法。
背景技术
蛹虫草栽培接种技术方面,目前应用最多的方法是使用液体培养的液体菌种进行接种,采用这种方法的优点就是接种效率高、菌丝生长快、污染低。这种方法培养的流程为母种培养→液体种培养→接种培养→菌丝生长→子实体生长→采收。虽然蛹虫草菌丝生长周期短,其要先培养液体菌种,使培养的时间更长,在生产过程中,其生产效率大大的降低。
鲁东大学曾申请过《蛹虫草斜面固体菌种有效替代液体菌种的蛹虫草培养方法》(专利号:CN105733957A)的发明专利,专利中提到直接采用固体菌种代替液体菌种进行接种,方法是将固体菌种与葡萄糖溶液进行混合,然后直接进行接种,此方法确实可以缩短周期。但是其采用的是固体培养基,并固体培养基与葡萄糖溶液直接混合进行接种,需要将斜面菌种与葡萄糖注射液混合后从针头挤出,再混合的多次的方式均匀混合容易混入杂质,接种的菌种中不仅仅包括分生孢子,降低生产效率,且并未有任何启示其可减少蛹虫草的退化。
现有技术中记载有,采用分生孢子悬浮液接种技术在食用菌领域中应用。而将蛹虫草分生孢子制成悬浮液存活率低。
发明内容
(一)要解决的技术问题
为了解决现有技术的上述问题,本发明提供一种采用分生孢子悬浮液栽培接种,减少污染物且有效遏制蛹虫草虫性遏制的新的培养方法。
(二)技术方案
为了达到上述目的,本发明采用的主要技术方案包括:
一种蛹虫草的栽培接种方法,其包括以下依次进行的步骤:将蛹虫草的分生孢子制成悬浮液后接种到培养基中,20~25℃下恒温室内培养3~7d后,经光照刺激得到蛹虫草。
进一步的,所述悬浮液的制备包括以下步骤:收集蛹虫草菌丝,加入吐温80溶液震荡均匀后,用中速滤纸过滤纯化后,葡萄糖溶液稀释得到悬浮液备用。
进一步的,所述吐温80溶液的浓度为0.01~0.05%,按吐温80溶液中分生孢子的数量为106~5×107个/mL接种蛹虫草菌丝。
进一步的,所述葡萄糖溶液的浓度为2~5%,稀释的倍数为5~10倍。
进一步的,所述蛹虫草的分生孢子菌丝制备:将蛹虫草母种切块接入PDA斜面培养基,放入23~28℃培养箱黑暗培养6~8d,PDA斜面长出菌丝。
进一步的,所述培养基主要由下重量份的组分配制而成:大米20~40份、蛋白胨3~6份、蔗糖10~30份、MgSO4为1~3份、磷酸二氢钾1~3份、维生素B1为0.5~1.5份。
进一步的,所述分生孢子悬浮液按体积百分比为0.5~1%接种到培养基中。
进一步的,光照刺激的步骤包括:S1将接种后的培养基光照10~14h后,再置于黑暗下10~14h;S2循环步骤S1的次数为5~7次。
(三)有益效果
本发明的有益效果是:
1.本发明方法克服了本领域技术人员的技术偏见,将蛹虫草分生孢子制成悬浮液,并接种到培养基中,培植出无虫子体的蛹虫草。经过试验证明,成功生长出菌丝,接种第3天就生长白色菌丝,而且生长更均匀。
2.本发明蛹虫草的接种培养方法能有效的阻止蛹虫草种性的退化。
3.本发明蛹虫草分生孢子收集及悬浮液配制关键在于菌液的净化,本发明方法相对于现有技术污染率更低。
4.本发明将分生孢子悬浮液代替液体菌种进行蛹虫草栽培接种,缩短了种植时间,降低了种植成本,提高生产效率。
具体实施方式
为了更好的解释本发明,以便于理解,下面通过具体实施方式,对本发明作详细描述。
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:将蛹虫草的分生孢子制成悬浮液后接种到培养基中,20~25℃下恒温室内培养3~7d后,温差刺激、光照处理等得到蛹虫草。
为成功将蛹虫草的分生孢子菌丝制备成纯度较高的分生孢子悬浮液,采用以下但不仅限于以下步骤:将蛹虫草的分生孢子菌丝,加入到吐温80溶液震荡均匀后,用中速滤纸过滤纯化后,葡萄糖溶液稀释得到悬浮液备用。
为使悬浮液浓度达到最佳,用吐温80溶液的浓度为0.01~0.05%,按吐温80溶液中分生孢子的数量为106~5×107个/mL接种蛹虫草菌丝。
葡萄糖溶液的浓度为2~5%,稀释的倍数为5~10倍。
蛹虫草的分生孢子菌丝制备:将蛹虫草母种切块接入PDA斜面培养基,放入23~28℃培养箱黑暗培养6~8d,PDA斜面长出菌丝。
培养基主要由下重量份的组分配制而成:大米20~40份、蛋白胨3~6份、蔗糖10~30份、MgSO4为1~3份、磷酸二氢钾1~3份、维生素B1为0.5~1.5份。
分生孢子悬浮液按体积百分比为0.5~1%接种到培养基中。
光照刺激的步骤包括:将接种后的培养基光照10~14h后,再置于黑暗下10~14h;循环此步骤5~7次。
目前,蛹虫草栽培接种是采用液体菌种接种,这一方法液体菌种是关键,是必不可少的关键因素;而液体菌种培养需要设备仪器,并且液体菌种培养需要时间,本发明在蛹虫草原有的栽培接种技术上简化步骤,直接使用分生孢子悬浮液进行接种,即流程为:母种培养→分生孢子收集(悬浮液)→接种培养→菌丝生长→子实体生长→采收;在省去了液体菌种这一环节,在能达到同样或更好的栽培效果下,简化了培养步骤,缩短周期,降低成本,提高了生产效率。本发明方法直接收集分生孢子,不需要反复进行,操作更简洁。
具体实施例
实施例1
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:
S1菌种扩繁出菌丝:将母种切块接入PDA斜面培养基,接种完成后放入25℃培养箱黑暗培养,培养时间7d,使PDA斜面培养基上长出菌丝;
S2分生孢子悬浮液配制:按吐温80溶液中分生孢子的数量为5×106个/mL接种蛹虫草菌丝,具体的,从PDA斜面培养基上取出生长好的斜面菌丝加入6mL浓度为0.03%吐温80溶液充分震荡后,置于灭过菌的试剂瓶中,后用3%的葡萄糖溶液进行稀释7倍,配分生孢子悬浮液。
S3栽培培养基配制:将大米30g、蛋白胨5、蔗糖20g、MgSO41g、磷酸二氢钾2g和维生素B1为1g混合后,加入无菌蒸馏水溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入栽培培养基中,接种量5mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入22℃恒温室内培养4d,待菌丝长满后,光照刺激12h后,再置于黑暗下12h;
S52循环步骤S51的次数为6次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长。
S6采收。
本实施例在培养第7.5d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
实施例2
一种中国被毛孢接种培养方法,其包括以下步骤:
S1将蛹虫草母种切块接入PDA斜面培养基,放入28℃培养箱黑暗培养8d,PDA斜面长出菌丝
S2中国被毛孢分生孢子悬浮液的配制:按吐温80溶液中分生孢子的数量为5×107个/mL接种蛹虫草菌丝,具体的,将长势较好的中国被毛孢分生孢子斜面菌丝,加入到6mL质量浓度为0.01%吐温80溶液震荡均匀后,用中速滤纸过滤纯化后,用质量浓度为2%的葡萄糖溶液稀释5倍后得到悬浮液备用。
S3大米培养基配制
将大米15g、蛋白胨3g、蔗糖10g、MgSO4为5g、磷酸二氢钾为1g、维生素B1为0.5g,加无菌蒸馏水均匀溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL摇匀,得到大米培养基。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入大米培养基中,接种量5mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入16℃恒温室内遮光培养3d,待菌丝长满后,光照刺激10h后,再置于黑暗下10h;
S52循环步骤S51的次数为5次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长。
S6采收。
本实施例在培养第9d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
实施例3
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:
S1菌种扩繁出菌丝:将母种切块接入PDA斜面培养基,接种完成后放入23℃培养箱黑暗培养,培养时间6d,使PDA斜面培养基上长出菌丝;
S2分生孢子悬浮液配制:按吐温80溶液中分生孢子的数量为106个/mL接种蛹虫草菌丝;具体的从PDA斜面培养基上取出生长好的斜面菌丝加入5mL浓度为0.01%吐温80溶液,然后充分震荡,取溶液至灭过菌的试剂瓶中,最后用2%的葡萄糖溶液进行稀释5倍,配分生孢子悬浮液。
S3栽培培养基配制:将米20g、蛋白胨3g、蔗糖10g、MgSO4为1g、磷酸二氢钾1g和维生素B1为0.5g,混合后,加入无菌蒸馏水溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入培养基中,接种量8mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入20℃下恒温室内培养3d,待菌丝长满后,光照刺激14h后,再置于黑暗下14h;
S52循环步骤S51的次数为7次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长。
S6采收。
本实施例在培养第8.5d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
实施例4
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:
S1菌种扩繁出菌丝:将母种切块接入PDA斜面培养基,接种完成后放入28℃培养箱黑暗培养,培养时间8d,使PDA斜面培养基上长出菌丝;
S2分生孢子悬浮液配制:从PDA斜面培养基上取出生长好的斜面菌丝加入6mL浓度为0.05%吐温80溶液,然后充分震荡,取溶液至灭过菌的试剂瓶中,最后用5%的葡萄糖溶液进行稀释10倍,配分生孢子悬浮液。
S3栽培培养基配制:将米40g、蛋白胨6g、蔗糖30g、MgSO4为3g、磷酸二氢钾3g和维生素B1为1.5g,混合后,加入无菌蒸馏水溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入培养基中,接种量10mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入25℃下恒温室内培养7d,光照刺激14h后,再置于黑暗下11h;
S52循环步骤S51的次数为5次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长。
S6采收。
本实施例在培养第7d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
实施例5:
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:
S1菌种扩繁出菌丝:将母种切块接入PDA斜面培养基,接种完成后放入28℃培养箱黑暗培养,培养时间7d,使PDA斜面培养基上长出菌丝;
S2分生孢子悬浮液配制:从PDA斜面培养基上取出生长好的斜面菌丝加入5mL浓度为0.05%吐温80溶液,然后充分震荡,取溶液至灭过菌的试剂瓶中,最后用4%的葡萄糖溶液进行稀释6倍,配分生孢子悬浮液。
S3栽培培养基配制:将40g、蛋白胨5g、蔗糖12g、MgSO4为3g、磷酸二氢钾2g和维生素B1为0.7g,混合后,加入无菌蒸馏水溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入培养基中,接种量10mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入22℃下恒温室内培养3d,光照刺激10h后,再置于黑暗下14h;
S52循环步骤S51的次数为6次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长;
S6采收。
本实施例在培养第7.5d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
实施例6
一种蛹虫草的栽培方法,其包括以下依次进行的步骤:
S1菌种扩繁出菌丝:将母种切块接入PDA斜面培养基,接种完成后放入24℃培养箱黑暗培养,培养时间8d,使PDA斜面培养基上长出菌丝;
S2分生孢子悬浮液配制:从PDA斜面培养基上取出生长好的斜面菌丝加入5mL浓度为0.02%吐温80溶液,然后充分震荡,取溶液至灭过菌的试剂瓶中,最后用5%的葡萄糖溶液进行稀释7倍,配分生孢子悬浮液。
S3栽培培养基配制:将米23g、蛋白胨6g、蔗糖15g、MgSO4为1g、磷酸二氢钾3g和维生素B1为1.2g,混合后,加入无菌蒸馏水溶解后,用无菌蒸馏水定容至1000mL。
S4接种:使用移液枪吸取分生孢子悬浮液直接接入培养基中,接种量10mL。
S5培养:
S51将接完种的培养基放入25℃下恒温室内培养5d,待菌丝长满后,光照刺激13h后,再置于黑暗下11h;
S52循环步骤S51的次数为7次,使蛹虫草由菌丝生长转入子实体生长。
S6采收。
本实施例在培养第8d时就可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。
对比例1
不点在于,蛹虫草悬浮液的配制中,先将菌落打碎,再利用葡萄糖溶液进行混匀,制成混合菌液。其它同实施例1。
本对比例要在培养第20d才可以在培养基表面看到白色毛状菌丝生长。可能是由于杂菌的污染导致其生长缓慢。
以上所述,仅为本发明的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,可轻易想到变化或替换,都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此,本发明的保护范围应以所述权利要求的保护范围为准。
Claims (4)
1.一种蛹虫草的栽培接种方法,其特征在于,其包括以下依次进行的步骤:将蛹虫草的分生孢子制成悬浮液后接种到培养基中,20~25℃下恒温室内培养3~7d后,经光照刺激得到蛹虫草;
所述蛹虫草的分生孢子菌丝制备包括以下步骤:将蛹虫草母种切块接入PDA斜面培养基,放入23~28℃培养箱黑暗培养6~8d,PDA斜面长出菌丝,收集蛹虫草菌丝,加入到吐温80溶液震荡均匀后,用中速滤纸过滤纯化后,葡萄糖溶液稀释得到悬浮液备用;所述培养基主要由下重量份的组分配制而成:大米20~40份、蛋白胨3~6份、蔗糖10~30份、MgSO4为1~3份、磷酸二氢钾1~3份、维生素B1为0.5~1.5份;
光照刺激的步骤包括:
S1将接种后的培养基光照10~14h后,再置于黑暗下10~14h;
S2循环步骤S1的次数为5~7次。
2.如权利要求1所述的蛹虫草的栽培接种方法,其特征在于:所述吐温80溶液的浓度为0.01~0.05%,按吐温80溶液中分生孢子的数量为106~5×107个/mL接种蛹虫草菌丝。
3.如权利要求1所述的蛹虫草的栽培接种方法,其特征在于:所述葡萄糖溶液的浓度为2~5%,稀释的倍数为5~10倍。
4.如权利要求1所述的蛹虫草的栽培接种方法,其特征在于:所述分生孢子悬浮液按体积百分比为0.5~1%接种到培养基中。
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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