CN110585480B - 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法 - Google Patents

一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法 Download PDF

Info

Publication number
CN110585480B
CN110585480B CN201910948846.0A CN201910948846A CN110585480B CN 110585480 B CN110585480 B CN 110585480B CN 201910948846 A CN201910948846 A CN 201910948846A CN 110585480 B CN110585480 B CN 110585480B
Authority
CN
China
Prior art keywords
silk fibroin
solution
freeze
drying
freezing
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201910948846.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN110585480A (zh
Inventor
顾宁
刘鑫
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Southeast University
Original Assignee
Southeast University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Southeast University filed Critical Southeast University
Priority to CN201910948846.0A priority Critical patent/CN110585480B/zh
Publication of CN110585480A publication Critical patent/CN110585480A/zh
Priority to PCT/CN2020/117010 priority patent/WO2021068743A1/zh
Priority to US17/602,202 priority patent/US11911536B2/en
Application granted granted Critical
Publication of CN110585480B publication Critical patent/CN110585480B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14Macromolecular materials
    • A61L27/22Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/227Other specific proteins or polypeptides not covered by A61L27/222, A61L27/225 or A61L27/24
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/04Macromolecular materials
    • A61L31/043Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
    • A61L31/047Other specific proteins or polypeptides not covered by A61L31/044 - A61L31/046
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/507Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials for artificial blood vessels
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/56Porous materials, e.g. foams or sponges
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/60Materials for use in artificial skin
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B29WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
    • B29CSHAPING OR JOINING OF PLASTICS; SHAPING OF MATERIAL IN A PLASTIC STATE, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; AFTER-TREATMENT OF THE SHAPED PRODUCTS, e.g. REPAIRING
    • B29C39/00Shaping by casting, i.e. introducing the moulding material into a mould or between confining surfaces without significant moulding pressure; Apparatus therefor
    • B29C39/22Component parts, details or accessories; Auxiliary operations
    • B29C39/38Heating or cooling
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/60Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a special physical form
    • A61L2300/602Type of release, e.g. controlled, sustained, slow
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/32Materials or treatment for tissue regeneration for nerve reconstruction
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B29WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
    • B29KINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES B29B, B29C OR B29D, RELATING TO MOULDING MATERIALS OR TO MATERIALS FOR MOULDS, REINFORCEMENTS, FILLERS OR PREFORMED PARTS, e.g. INSERTS
    • B29K2089/00Use of proteins, e.g. casein, gelatine or derivatives thereof, as moulding material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B29WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
    • B29LINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASS B29C, RELATING TO PARTICULAR ARTICLES
    • B29L2031/00Other particular articles
    • B29L2031/753Medical equipment; Accessories therefor
    • B29L2031/7542Catheters

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

本发明涉及一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,本发明以丝素蛋白为原料,通过模具浇注和冷冻干燥成型的工艺制备出优异的导管支架。所述的原料是从天然桑蚕丝中提取的丝素蛋白,所述的模具是中空管状模具,模具外壳是直径6mm聚乙烯透明吸管,内芯是直径3mm纤维棒FRP,两端封口。所述的冷冻干燥工艺包括以下步骤:浇注;预冷冻;去除模具放入预冷冻的冻干层板;冷冻干燥;冷冻干燥过程包括:⑴预冷冻;⑵冷冻真空过渡阶段:⑶梯度升温冻干阶段:⑷二次冻干阶段,针对冻干支架的规格,冷冻干燥阶段需严格调控。所制备的支架成型良好,耐受性好,不需要任何添加成份,支架呈现三维多孔空间结构,工艺简单,可满足临床组织工程血管支架的使用要求。

Description

一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法
技术领域
本发明涉及一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型工艺,可用于血管组织工程技术领域。
背景技术
由于自然灾害、暴力侵袭、交通事故以及常见的血管疾病导致等导致的血管断裂损伤在临床上极为常见。血管断裂损伤不仅导致严重的供血障碍,引起包括失血性休克、血肿以及创伤性疼痛和其它连带疾病,还会给患者带来极大的心里和生活负担。一般对于无缺损损伤直接采用端对端缝合手术即可,但对于血管断裂缺损损伤的治疗主要方法是血管移植,自体血管移植是治疗血管缺损损伤的金标准,但是自体血管来源有限,会造成二次创伤。临床解决这一大难题的主要办法就是组织工程血管移植物,因此临床上研究主要集中在人工血管作为替代物。组织工程人工血管主要包括三点要素:种子细胞、生长因子和支架。其中支架在里面主要为血管生长提供一个微环境和细胞生长的粘附位点,其作用举足轻重。
丝素蛋白是一种天然的大分子蛋白质,因其价格底低廉,来源广泛,且具有良好的生物相容性和可控的生物降解性而被广泛的应用到生物医用材料领域。材料主要有18种氨基酸组成,最终降解产物为氨基酸和小肽,易被人体代谢,不会引起明显的炎症反应和免疫排斥。因此丝素蛋白是血管支架理想的材料选择。近年来,丝素蛋白血管支架也被广泛的开发应用,众多的丝素蛋白血管支架的工艺方法也被提出来。目前,常见的丝素蛋白血管支架制备方法主要有冷冻干燥、静电纺丝等。目前静电纺丝技术在制备丝素蛋白血管支架中已经应用良好,例如:韩志超等发明了利用静电纺丝法纳米纤维血管支架(CN102397582A,2012-04-04);张耀鹏等人利用静电纺丝制备出含血管内皮生长因子的再生丝素蛋白组织工程支架(CN102488929A,2012-06-13);以及罗杰等人利用溶喷纺丝制备了丝素蛋白组织工程支架(CN109667059A,2019-04-23),这些方法制备出的支架多为二维薄膜支架;朱正华发明了利用冷冻干燥制备一种丝素蛋白微孔三维支架(CN102133432A,2011-07-27),虽然支架制备成型,但成型性不好,耐受性差同时还添加了有机溶剂六氟异丙醇增加了支架的毒性反应。目前在利用冷冻干燥法制备血管支架成型还很困难,支架成型差,耐受性差,无法满足临床使用需求。
本发明旨在通过调控支架在冷冻干燥过程前制备和过程中的工艺调控优化,不需要任何添加成份,即可获得成型性良好的三维多孔丝素蛋白支架,此工艺调控简单,制备过程简单,对临床采用冻干方法制备支架具有重大的应用前景。
发明内容
技术问题:针对现有的冻干技术成型性不好,耐受性差不足,本发明的目的是提供一种自支撑丝素蛋白导管支架成型工艺且不需要任何添加成份。
技术方案:本发明的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,采用丝素蛋白为原料,通过模具浇注和冷冻干燥成型的方法制备出自支撑丝素蛋白导管支架:具体的制备步骤如下:
a.模具结构的设计:该模具包括套管、内芯和封盖三部分结构,套管采用的是聚乙烯吸管,直径4-6mm,可以有效地防止丝素蛋白溶液的粘附,内芯是直径2-3mm纤维棒FRP,封盖采用不锈钢设计,一端密闭一端不密闭,直径大小和套管直径吻合,模具整体形状和大小按照需求设计;
b.浇注溶液的制备:天然桑蚕丝首先需经过碳酸钠溶液脱丝胶处理,然后采用三元溶液CaCl2-EtOH-H2O进行溶解后透析、浓缩、待用;
c.冷冻干燥成型:浇注溶液后先放置于-20℃冰箱冷冻6-24h,冻干机预先制冷为-40℃到-35℃,然后将浇注溶液后的模具放置于预先制冷好的层板,按照支架预定的冷冻干燥程序冷冻干燥。
其中,
步骤b所述的浇注溶液的具体制备步骤为:
①称取天然桑蚕丝加入到浓度为0.5±0.01%(g/ml)的Na2CO3溶液中,加热到95-100℃,从煮沸开始计时加热30-40min,然后用ddH2O洗涤去除溶解下来的丝胶,重复上述步骤2-3次,得到丝素蛋白,晾干,待用;
②称取步骤①丝素蛋白溶解于三元溶液中CaCl2/EtOH/H2O=1:2:8;三元溶液的配置:无水CaCl2先溶于ddH2O中,再加入无水乙醇,将丝素蛋白分批次缓慢加入三元溶液中并置于磁力搅拌器中搅拌加热至72-75℃,完全溶解后继续搅拌20-30min,得丝素蛋白溶液;
③将步骤②的丝素蛋白溶液置于透析袋中于ddH2O透析3-4天后取出,置于容器中于超净工作台中浓缩至5-10%,待用。
所述步骤c所述的浇注溶液后的模具从-20℃冰箱取出后去除模具转移至冻干机预冷冻层板一定要快,否则溶液容易融化掉。
所述步骤c所述的支架预定的冷冻干燥程序遵循严格的梯度升温过程,真空度300-500mt,温度升温4-6℃一个梯度,每个温度梯度维持时间100-200min。
所述步骤c所述的支架预定的冷冻干燥程序要进行二次冻干。
步骤①所述的浓度0.5±0.01%(g/ml)Na2CO3采用ddH2O溶解。
步骤③所述的透析袋截留分子量为12000-14000。
步骤③所述的透析液每天更换3-5次。
有益效果:
1、本发明制备的自支撑丝素蛋白导管支架具有呈现三维多孔的空间结构,具有大的比表面积,同时具备疏水和亲水基团,有利于细胞的生长、粘附和增殖,为血管生长提供良好的微环境。
2、本发明制备的自支撑导管支架未使用任何添加成份,保留了丝素蛋白良好的生物相容性,减少导管应用的炎症反应和免疫反应。
3、本发明制备的自支撑丝素蛋白导管支架有较好的耐受性,可以满足支架在修复中手术缝合线的牵拉;
4、本发明制备的自支撑丝素蛋白导管支架具有良好的缓释功能,可用作药物、因子等缓释载体;
5、本发明制备的自支撑丝素蛋白导管支架不仅可以用作血管组织工程,也可以用作神经、皮肤等组织工程领域。
附图说明
图1为本发明实施例2制备的自支撑丝素蛋白导管与血管内皮细胞HUVEC共培养TBO染色图。
图2为本发明实施例3制备的自支撑丝素蛋白导管与血管内皮细胞HUVEC共培养CCK-8细胞活力检测图。
图3为本发明实施例4制备的自支撑丝素蛋白导管溶血性测试图。
具体实施方式
本发明提供了一种自支撑丝素蛋白导管支架成型工艺且不需要任何添加成份,包括以下步骤:
⑴将天然蚕丝用碳酸钠溶液进行脱丝胶处理获得丝素蛋白;
⑵步骤⑴所述的丝素蛋白采用三元溶液进行溶解处理获得丝素蛋白溶液;
⑶步骤⑵所述的丝素蛋白溶液需经过透析袋透析获得透析后丝素蛋白溶液:
⑷步骤⑶所述的透析后丝素蛋白溶液置于通风橱内浓缩,过滤,待用。
⑸步骤⑷所述的浓缩丝素蛋白溶液注入导管模具;
⑹密封置于-20℃冰箱进行预冷冻6-24h;
⑺冻干机预冷冻打开直至层板温度达到-40到-35℃;
⑻取出步骤⑹预冷冻的模具支架并取出模具的两端的封盖和内芯置于步骤⑺预冷冻层板;
⑼设定冷冻干燥循环程序对步骤⑻所述的支架进行冷冻干燥;
其中步骤⑴所述的天然蚕丝是桑蚕丝,主要有丝素蛋白和丝胶蛋白构成,两者的成份质量比约为17:3-4:1,丝素蛋白是蚕丝的主要成分由18种氨基酸构成,其中丝氨酸(Ser)。丙氨酸(Ala)和甘氨酸(Gly)约占总成份的85%,三者摩尔比为1:3:4;所述的碳酸钠溶液脱丝胶处理方法是,通过0.5±0.01%碳酸钠碱性溶液处理,经过2-3次煮沸后ddH2O洗涤。
其中步骤⑵所述的三元溶液由无水氯化钙、无水乙醇和双蒸水组成,三者的摩尔比为1:2:8,溶解温度为70-75℃,溶解时间为当溶液全部溶解后继续在此温度下加热搅拌30-40min;丝素蛋白与溶液体积比1:4-6。
其中步骤⑶所述的透析袋截留分子量为12000-14000,透析溶液是ddH2O,透析时间为3-4天,每天更换ddH2O 3-5次。
其中步骤⑷所述的通风橱必须洁净,溶液浓缩浓度为5-10%,过滤采用50-100μm尼龙过滤网,待用放置于4℃冰箱。
其中步骤⑸所述的导管模具主要包括套管、内芯和封盖三部分结构,套管采用的是聚乙烯吸管,直径4-6mm,可以有效地防止丝素蛋白溶液的粘附,内芯是直径2-3mm纤维棒FRP,封盖采用不锈钢设计,一端密闭一端不密闭,直径大小和套管直径大下吻合,模具整体形状和大小可按照需求设计。
其中步骤⑹所述的的预冷冻时间也可以适当延长。
其中步骤⑺所述的冻干机层板预冷120min以上。
其中步骤⑻所述的模具两端封盖和内芯取出必须要快,防止丝素溶液融化,支架置于层板必须与板直接接触,继续预冷冻40-60min以上。
步骤⑼所述的支架预定的冷冻干燥程序遵循严格的梯度升温过程,冷冻过程包括四个阶段:预冷冻阶段、冷冻真空过渡阶段、梯度升温冻干阶段和二次冻干阶段。预冷冻阶段:维持预冷冻温度-40℃到-35℃,维持时间300-500min;冷冻真空过渡阶段:冷冻温度与预冷冻阶段保持一致,维持100-200min;梯度升温冻干阶段:开始温度与冷冻真空过渡阶段保持一致,每个温度梯度维持时间100—200min;温度升温4-6℃一个梯度;二次冻干阶段:温度高于梯度升温冻干阶段最高温度5-10℃,维持时间800min以上;整个过程真空度为300-500mT,并保持数值一致。
为了加深对发明的理解,下面结合实施例对本发明做进一步详述。
实施例1:
步骤1:丝素蛋白的的制备(脱丝胶)
称取购买的桑蚕丝(包有丝胶)40-50g到不锈钢锅中,然后称取无水碳酸钠固体颗粒充分溶解到2L的双蒸水中,将溶解好的碳酸钠(浓度0.5%)溶液倒入含有桑蚕丝的不锈钢锅中,用玻璃棒充分按压使桑蚕丝完全浸没于碳酸钠溶液中,然后将锅置于电磁炉上加热直至煮沸,从煮沸时开始计时,约30min后取出,为了受热均匀,蒸煮期间应用玻璃棒多次搅拌,然后将煮好的桑蚕丝用双蒸水洗涤3-4次,此时丝胶被清除,丝素蛋白裸露。为了使丝胶被充分清除,需要重复上述步骤2次,然后将煮好的丝素蛋白用双蒸水洗涤数次,直至PH试纸检测呈中性,然后脱水,置于通风处晾干,待用。
步骤2:丝素蛋白溶液的制备
称取实施例1中制备的丝素蛋白固体20g置于保鲜袋中待用,准备一个250ml的烧杯,然后称取无水氯化钙37g放于烧杯中,,加入双蒸水48ml,无水乙醇40ml使其充分溶解,将溶解后的溶液放入磁力搅拌器中搅拌均匀,烧杯上面覆盖一层保鲜膜以防止乙醇挥发,加热温度维持在72℃,在搅拌条件下将20g丝素蛋白固体分多次加入,加完继续搅拌20-30min使丝素蛋白充分溶解,然后取出室温下放凉,最后放入透析袋(截留分子量:12000-14000)透析3天,每天更换透析液(ddH2O)4次。最后取出放入通风橱浓缩至8%,放置4℃冰箱保存、待用。
步骤3:模具的设计和材料的选择
模具的主要组成部分括套管、内芯和封盖三部分结构,套管采用的是6mm吸管,长度80mm,有效地防止丝素蛋白溶液在冻干后粘附在套管壁无法取出的缺陷。芯是选择直径2mm的纤维棒FRP,其作用使支架形成管状结构并不易粘附在丝素蛋白上,两端采用不锈钢封盖,一端是封闭的,此端宽头端直径8mm,高度5mm,窄端作用是为了固定内芯,内径2.5mm,外径4.5mm,高度6mm;另一端宽头端留有小孔,小孔内径2.5mm,外径7mm,小孔与窄端固定内芯内径保持一致,窄端外径4.5mm。在注入溶液时为了防止封闭端溶液渗漏需要封口膜将封闭端封住。
步骤4:自支撑丝素蛋白导管支架的制备
将1.5ml的实施例2制备的丝素蛋白溶液注入实施例3设计的模具中,然后将其放置15ml的离心管中置于试管架中于-20℃冰箱预冷冻12h,然后将冻干机冷冻打开降温直至层板温度达到-40℃,然后将丝素蛋白冷冻液取出以最快的速度去除模具的两端和内芯且丝素蛋白不呈现流动相,然后将其放到预冷冻温度-40℃的层板上维持时间100min,然后关闭制冷,打开预先设定好的自动冻干程序,程序分为四个阶段:预冷冻阶段、冷冻真空过渡阶段、梯度升温冻干阶段和二次冻干阶段。预冷冻阶段程序为:冷冻温度-40℃,维持时间300min,真空度475T;冷冻真空过渡阶段:冷冻温度-40℃,维持时间100min,真空度300mT;梯度升温冻干阶段:具体程序运行步骤见表1;二次冻干阶段:设定温度25℃,维持时间1250min,真空度500mT,待运行结束后取出样品。
表1为本发明实施例1制备的自支撑丝素蛋白血管支架梯度升温阶段程序表。
程序号 温度(℃) 时间(min) 真空度(mT)
1 -40 200 300mT
2 -35 200 300mT
3 -30 200 300mT
4 -25 200 300mT
5 -20 200 300mT
6 -15 200 300mT
7 -10 200 300mT
8 -5 200 300mT
9 0 200 300mT
10 5 200 300mT
11 10 200 300mT
12 15 200 300mT
13 20 200 300mT
表1
实施例2:丝素蛋白导管支架与HUVEC共培养进行增殖形态观察
将实施例1制备的丝素蛋白导管,先经过无水乙醇交联后形成水不溶性结构,然后将丝素蛋白导管裁剪5mm长度,然后将导管制备成冻台进行冰冻切片,切片的收集装置采用经过PLL包被的用于24孔培养板的小圆玻片,切片的厚度约为30μm,然后将含有丝素蛋白的玻片置于24孔培养板放于超净工作台。紫外灭菌过夜,然后每孔加入1.5ml 75%的乙醇消毒30-40min后用等量的0.01M PBS洗涤至少3次,每次20min,自然晾干后留待细胞接种,细胞选用血管内皮细胞HUVEC并设置无丝素蛋白导管切片的空白对照。将HUVEC细胞接种到材料上,每个孔接种细胞数量5×104个,细胞完全培养基500μL(完全培养基配置:45ml DMEM+5ml FBS+500μL双抗)置于37℃5%CO2培养箱孵育。在预定的时间点1、3、5天取出。将取出后的材料用0.01M PBS轻轻洗涤2次,每次约5min,4%多聚甲醛固定40min,然后再用0.01MPBS洗涤2次,每次约10min,洗涤后加TBO染液(sigma公司采用,使用时0.5g加PBS 200ml配置用),染液全覆盖材料即可,室温下染色15min。染色后用0.01M PBS洗涤数次直至玻片呈现淡蓝色,光镜下观察染色情况如图1所示,(左栏为没有丝素蛋白的空白对照组,右栏为含有丝素蛋白导管切片的实验组,上中下分别为时间点1、3、5天不同时间点细胞增殖情况)。结果表明,在不同的时间点细胞实验组和对照组HUVEC增殖情况良好,未表现出明显的差异,细胞形态良好,丝素蛋白导管支架具有良好的生物相容性,利于细胞的粘附和生长。
实施例3:丝素蛋白导管支架与HUVEC共培养进行细胞活力观察
将实施例1制备的丝素蛋白导管支架,先经过无水乙醇交联后形成水不溶性结构,将导管裁剪成10mm长度,然后放入24孔培养板内,每组共设置五个平行样,无丝素蛋白导管的孔作为空白对照。将装有样品的24孔培养板置于超净工作台,紫外灭菌过夜,然后每孔加入1.5ml 75%的乙醇消毒30-40min后用等量的0.01M PBS洗涤5次,自然晾干后留待细胞接种。细胞选用血管内皮细胞HUVEC。首先,向每个孔中加入1ml DMEM溶液,并在含有5%CO2的培养箱中于37℃温育24小时。培养期结束后,在DMEM溶液中加入10%FBS和抗生素(100U/ml青霉素和100μg/ml链霉素),得到完全培养基。然后,将HUVEC细胞接种到导管上,细胞密度为1×104个细胞/ml。最后,将培养板在37℃,5%CO2环境下孵育1天和2天后,除去培养基,用PBS(0.01M)冲洗非贴壁细胞三次。随后,将新鲜培养基和CCK-8试剂(10:1)的混合物加入样品中,并在标准培养条件下于37℃温育4小时。然后将悬浮液(200μL/孔)移入96孔板中,用酶标仪在450nm处测量吸光度。结果如图2所示,结果表明对照组合和丝素蛋白导管组相比,1天的时候两者的增殖活力相当未表现出明显的差异,2天的时候丝素蛋白导管组增殖活力超过了对照组,这表明丝素蛋白导管具有良好的细胞相容性,且可以促进细胞增殖的能力,丝素蛋白三维空间结构为细胞生长繁殖提供了良好的微环境,具有促进血管损伤修复的能力。
实施例4:丝素蛋白导管支架的溶血性评价
将实施例1制备的丝素蛋白导管支架,先经过无水乙醇交联后形成水不溶性结构,称重50mg备用。选择健康的成年大耳白兔(约2.5kg/只)用于采血,采血方法为心脏取血。首先,将大耳白兔用3%的戊巴比妥钠麻醉(1.2ml/kg)后,将大耳白兔仰卧固定在手术台上,心脏部位剃毛并用碘伏消毒处理,选择心博跳动最明显部位穿刺,针头刺入心脏取得适量的血液后迅速拔出,然后进行溶血性实验。将采集的血液加入抗凝血管,加生理盐水1:1稀释待用。取备好的50mg样品方法1.5ml离心管,加入生理盐水1ml于30℃放置30min,另取蒸馏水1ml作阳性对照,生理盐水1ml作阴性对照于同样条件下放置30min,时间到后每个离心管加入100μL生理盐水稀释后的兔血,37℃放置3h。然后以8000rmp速度离心5min,取上清液用酶标仪测545nm处OD值,溶血计算公式:溶血%=(ODSF-OD阴性)/(OD阳性-OD阴性)×100%,研究结果如图3及表2所示,丝素蛋白导管支架的溶血率为0.399%,数值远低于国家标准5%,该结果表明丝素蛋白导管支架无明显溶血,也就是说丝素蛋白导管支架具有良好的血液相容性。
表2为本发明实施例1制备的自支撑丝素蛋白血管支架溶血性实验测试数据表。
Figure GDA0003254636650000081
表2。

Claims (7)

1.一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,采用丝素蛋白为原料,通过模具浇注和冷冻干燥成型的方法制备出自支撑丝素蛋白导管支架:具体的制备步骤如下:
a.模具结构的设计:该模具包括套管、内芯和封盖三部分结构,套管采用的是聚乙烯吸管,直径 4-6 mm,可以有效地防止丝素蛋白溶液的粘附,内芯是直径2-3mm 纤维棒 FRP,封盖采用不锈钢设计,一端密闭一端不密闭,直径大小和套管直径吻合,模具整体形状和大小按照需求设计;
b.浇注溶液的制备:天然桑蚕丝首先需经过碳酸钠溶液脱丝胶处理,然后采用三元溶液CaCl2-EtOH-H2O进行溶解后透析、浓缩、待用;
c.冷冻干燥成型:浇注溶液后先放置于-20℃冰箱冷冻 6-24 h,冻干机预先制冷为-40℃到-35℃,然后将浇注溶液后的模具放置于预先制冷好的层板,按照支架预定的冷冻干燥程序冷冻干燥;所述步骤 c 所述的支架预定的冷冻干燥程序遵循严格的梯度升温过程,真空度 300-500 mt,温度升温 4-6℃一个梯度,每个温度梯度维持时间 100-200 min。
2.根据权利要求 1 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,步骤 b所述的浇注溶液的具体制备步骤为:
①称取天然桑蚕丝加入到浓度为 0.5±0.01% ,单位是g/ml的 Na2CO3溶液中,加热到95-100℃,从煮沸开始计时加热 30-40 min,然后用 ddH2O洗涤去除溶解下来的丝胶,重复上述步骤 2-3次,得到丝素蛋白,晾干,待用;
②称取步骤①丝素蛋白溶解于三元溶液中CaCl2/EtOH/H2O=1: 2: 8;三元溶液的配置:无水CaCl2先溶于 ddH2O中,再加入无水乙醇,将丝素蛋白分批次缓慢加入三元溶液中并置于磁力搅拌器中搅拌加热至 72-75℃,完全溶解后继续搅拌 20-30 min,得丝素蛋白溶液;
③将步骤②的丝素蛋白溶液置于透析袋中于 ddH2O透析 3-4 天后取出,置于容器中于超净工作台中浓缩至 5-10%,待用。
3.根据权利要求 1 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,所述步骤 c 所述的浇注溶液后的模具从-20℃冰箱取出后去除模具封盖和内芯并迅速转移至冻干机预冷冻层板。
4.根据权利要求 1 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,所述步骤 c 所述的支架预定的冷冻干燥程序要进行二次冻干。
5.根据权利要求 2 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,步骤①所述的浓度 0.5±0.01% ,单位是g/ml Na2CO3采用 ddH2O溶解。
6.根据权利要求 2 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,步骤③所述的透析袋截留分子量为 12000-14000。
7.根据权利要求 2 所述的一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法,其特征在于,步骤③所述的透析液每天更换 3-5 次。
CN201910948846.0A 2019-10-08 2019-10-08 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法 Active CN110585480B (zh)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910948846.0A CN110585480B (zh) 2019-10-08 2019-10-08 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法
PCT/CN2020/117010 WO2021068743A1 (zh) 2019-10-08 2020-09-23 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法
US17/602,202 US11911536B2 (en) 2019-10-08 2020-09-23 Method for molding self-supporting silk fibroin catheter stent

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910948846.0A CN110585480B (zh) 2019-10-08 2019-10-08 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN110585480A CN110585480A (zh) 2019-12-20
CN110585480B true CN110585480B (zh) 2021-10-29

Family

ID=68865641

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201910948846.0A Active CN110585480B (zh) 2019-10-08 2019-10-08 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法

Country Status (3)

Country Link
US (1) US11911536B2 (zh)
CN (1) CN110585480B (zh)
WO (1) WO2021068743A1 (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2021534906A (ja) * 2018-08-31 2021-12-16 ウィスコンシン アラムニ リサーチ ファンデーション 動脈内皮細胞を播種した血管移植片の生成
CN110585480B (zh) * 2019-10-08 2021-10-29 东南大学 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法
CN115252889B (zh) * 2022-07-15 2023-07-25 武汉纺织大学 产氧支架及其制备方法

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN100382772C (zh) * 2005-09-28 2008-04-23 南通大学 含蚕丝丝素的医用神经移植物的制备方法
WO2009023615A1 (en) * 2007-08-10 2009-02-19 Trustees Of Tufts College Tubular silk compositions and methods of use thereof
CN102133432B (zh) 2011-03-01 2013-05-08 浙江经贸职业技术学院 一种丝素蛋白微孔支架的制备方法
CN102397582A (zh) 2011-11-04 2012-04-04 无锡中科光远生物材料有限公司 一种丝素蛋白纳米纤维血管支架的制备方法
CN102488929B (zh) 2011-12-16 2013-10-30 东华大学 一种含血管内皮生长因子的再生丝素蛋白组织工程支架及其制备方法
CN104971386B (zh) * 2015-03-02 2017-06-16 丝纳特(苏州)生物科技有限公司 丝蛋白支架材料及其制备方法
CN105963790A (zh) 2016-05-05 2016-09-28 苏州大学 一种复合凝胶三维肿瘤模型支架的制备方法
EP3490624B1 (en) * 2016-08-01 2022-02-09 Association for the Advancement of Tissue Engineering and Cell based Technologies & Therapies (A4TEC) - Associação Nerve guidance conduits, methods of production and uses thereof
CN107693850A (zh) * 2017-10-31 2018-02-16 无锡中科光远生物材料有限公司 一种基于丝素蛋白纤维的神经再生用支架材料
CN108404219B (zh) 2018-02-11 2020-09-29 华中科技大学 一种基于冷冻铸造技术的小口径人工血管及其制备方法
CN109667059B (zh) 2018-12-28 2022-01-07 佛山科学技术学院 一种丝素蛋白生物组织工程支架的溶喷制备方法
CN110038162B (zh) * 2019-04-16 2021-08-31 苏州大学 一种具有调控血管细胞生长作用的功能丝素材料及其制备方法
CN110585480B (zh) 2019-10-08 2021-10-29 东南大学 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法

Also Published As

Publication number Publication date
WO2021068743A1 (zh) 2021-04-15
CN110585480A (zh) 2019-12-20
US20220211920A1 (en) 2022-07-07
US11911536B2 (en) 2024-02-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN110585480B (zh) 一种自支撑丝素蛋白导管支架的成型方法
JP3808900B2 (ja) 結合組織細胞に部分的又は完全に分化した骨髄幹細胞の有効培養物及びヒアルロン酸誘導体より成る三次元の生体親和性で且つ生分解性のマトリックスから構成される生物学的物質
WO2016023140A1 (zh) 一种用于细胞三维培养的基质支架及其构建方法和应用
JPH01501362A (ja) 人工マトリックスを用いる制御された細胞移植による器官のキメラ新生形態形成
CN101687065A (zh) 用于人体容量替代或细胞培养的无脂支架及其用途
CN111110912B (zh) 具有细胞响应迁移效应的功能性丝素蛋白支架及制备方法
CN112972760B (zh) 一种负载内皮细胞外基质的3d打印骨缺损修复支架及其制备方法
CN102743790B (zh) 一种细胞外基质支架材料及其制备方法
CN101327338B (zh) 多孔的保留有生物活性因子的膀胱无细胞基质及制备方法
CN108478863A (zh) 复合小口径人工血管的制备方法及其产品
RU2483756C1 (ru) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОДЕГРАДИРУЕМОГО КОМПОЗИТНОГО МАТРИКСА НА ОСНОВЕ РЕГЕНЕРИРОВАННОГО ФИБРОИНА ШЕЛКА Bombyx mori И ЕГО ПРИМЕНЕНИЕ
WO2021012677A1 (zh) 一种仿生的预脉管化材料及其制备方法和应用
JP2002540082A (ja) 筋組織エンジニアリング
CN107137763A (zh) 一种血管化组织工程骨及其制备方法
KR100527623B1 (ko) 세포외기질을 포함하는 인공장기 제조용 생분해성 고분자기질 및 그의 제조방법
CN110124107A (zh) 一种用于关节软骨修复的plga细胞支架及其制备方法和应用
CN104800885A (zh) 一种具有趋化功能的生物活性支架的制备和应用
CN103007350A (zh) 改性大鼠脱细胞脊髓支架材料及制备方法
CN110755174B (zh) 一种生物混合型人工血管及其制备方法
CN115105631B (zh) 一种冷浇注法制备的光聚合人工外泌体血管、其制备方法及应用
CN114832156B (zh) 一种新型医美整形填充物改性左旋聚乳酸凝胶
CN117209800A (zh) 一种基于鲵皮肤分泌物的载细胞的水凝胶微球及其应用
CN110464877A (zh) 一种脱细胞神经支架的制备方法及其效果评价方法
CN116688234A (zh) 一种复合干细胞的活性生物材料的制备及其人工皮肤中的应用
CN204840394U (zh) 一种具有趋化功能的生物活性支架的制备和应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant