CN108795981A - 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法 - Google Patents

利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN108795981A
CN108795981A CN201710298437.1A CN201710298437A CN108795981A CN 108795981 A CN108795981 A CN 108795981A CN 201710298437 A CN201710298437 A CN 201710298437A CN 108795981 A CN108795981 A CN 108795981A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cotton
asfar
plant
culture
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201710298437.1A
Other languages
English (en)
Inventor
金双侠
梁思佳
罗静
曹应龙
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Wuhan Tianwen Biotechnology Co Ltd
Original Assignee
Wuhan Tianwen Biotechnology Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Wuhan Tianwen Biotechnology Co Ltd filed Critical Wuhan Tianwen Biotechnology Co Ltd
Priority to CN201710298437.1A priority Critical patent/CN108795981A/zh
Publication of CN108795981A publication Critical patent/CN108795981A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8216—Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
    • C12N15/8218—Antisense, co-suppression, viral induced gene silencing [VIGS], post-transcriptional induced gene silencing [PTGS]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8201—Methods for introducing genetic material into plant cells, e.g. DNA, RNA, stable or transient incorporation, tissue culture methods adapted for transformation
    • C12N15/8202—Methods for introducing genetic material into plant cells, e.g. DNA, RNA, stable or transient incorporation, tissue culture methods adapted for transformation by biological means, e.g. cell mediated or natural vector
    • C12N15/8205—Agrobacterium mediated transformation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C12N15/8271—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance
    • C12N15/8279—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance for biotic stress resistance, pathogen resistance, disease resistance
    • C12N15/8286—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance for biotic stress resistance, pathogen resistance, disease resistance for insect resistance

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Insects & Arthropods (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

本发明属于植物基因工程技术领域，具体涉及利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法。本发明以AsFAR基因的保守序列作为靶序列构建了RNAi载体，利用农杆菌介导的遗传转化方法将所述的AsFAR基因成功导入棉花宿主，得到了表达AsFAR基因双链RNA的转基因棉花。将该转基因棉花种植于室外网室中，通过接虫试验，表明转基因棉花可以导致中黑盲蝽AsFAR基因的表达量下调,进而影响其生殖能力，导致中黑盲蝽种群数量减少，从而达到抗虫的效果。本发明的转基因棉花对中黑盲蝽具有抵抗能力。本发明的转基因棉花可以与BT棉杂交生产多抗虫棉花新种质。

Description

利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法
技术领域
本发明属于植物基因工程技术领域，具体涉及一种利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法。本发明提供了一种表达中黑盲蝽AsFAR基因双链RNA的转基因棉花的育种方法，为中黑盲蝽的防治提供一种新的策略。
背景技术
棉花是一种重要的经济作物，在棉花生产过程中虫害一直是棉花产量降低的主要原因之一。近年来，在农作物种植结构改变、BT棉的广泛种植、广谱杀虫剂的使用量大大减少等因素的综合影响下，使棉花的次要害虫——盲蝽蟓泛滥成灾，上升为主要害虫(Wu etal,2008)。盲蝽主要选择生长幼嫩的部位取食，棉苗期主要危害顶心或嫩头，造成死苗和无头苗，营养生长时期危害嫩叶形成破叶疯。棉花蕾铃期是其主要危害时期，受害的幼蕾，幼铃大部分脱落，未脱落的受害铃铃壳上留有黑褐色的刺孔，最后形成黑斑，受害铃壳内部常长有突起，引起棉铃畸形或不能正常开裂吐絮，从而影响棉花的品质和产量。目前在我国BT棉区盲蝽为害十分猖獗，因此急需探索出防治盲蝽的新手段和抵抗盲蝽的棉花新种质。
植物介导的RNAi是通过转基因技术得到表达昆虫关键基因双链RNA的植株，并通过自然取食将昆虫关键基因的双链RNA导入昆虫体内，从而引发昆虫体内相应基因的RNAi效应。2007年该技术成功应用于棉铃虫的防治(Mao et al.2007)，随后该技术快速发展并在抗虫中呈现出潜在的应用价值。2014年表达烟粉虱关键基因双连RNA的转基因烟草问世大大提高了其对烟粉虱的抗性。2015年田更等成功的创造了表达棉铃HMGR基因双连RNA的转基因棉花，接虫实验证明该棉花严重的影响了棉铃虫的生长和羽化(Tian et al,2015)。这些研究成果表明与目前可用的农药和BT毒蛋白相比，植物介导的RNAi技术是一种更加安全、特异、高效的植物保护新策略。
Fatty acyl-CoA reductases(FARs)属于NAD(P)H依赖型氧化还原酶，催化脂酰辅酶A转化为脂肪醇，并在多种生物中发挥着重要的生物学作用。例如FARs涉及微生物的能量储存储备,参与植物和鸟类表面蜡酯的生物合成。在大多数飞蛾和膜翅目昆虫中，FARs是生物性信息素合成过程中的关键酶。由于中黑盲蝽的性信息素的化学结构了飞蛾类似，所以华中农业大学马伟华老师课题组选择了在雌性中黑盲蝽后胸腺体中高量表达的Fattyacyl-CoA reductases(FARs)基因作为生物性信息素合成的候选基因，并命名为AsFAR.(Zhang et al,2014)在随后的预实验中发现沉默AsFAR基因对中黑盲蝽的性信息素产生没有影响，而是严重的抑制了其卵巢的发育，所以被认为该基因可能影响中黑盲蝽的生殖能力。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺陷，提供一种构建表达中黑盲蝽AsFAR基因双链RNA的转基因棉花的方法，创造一种中黑盲蝽防治的棉花新种质，并为中黑盲蝽的防治提供一种新策略。
申请人构建了AsFAR基因的RNAi载体并通过农杆菌介导的遗传转化方法将其成功转入棉花受体，得到了表达AsFAR基因双链RNAi的转基因棉花。通过田间接虫实验证明该转基因棉花对中黑盲蝽具有显著的抵抗能力。
本发明的技术方案如下所述：
本发明选择了AsFAR基因(GenBank accession no.KY274178)保守序列作为靶序列构建了RNAi载体，并利用农杆菌介导的遗传转化方法将所述的AsFAR基因成功导入棉花宿主细胞，得到了表达AsFAR基因双链RNA的转基因棉花。并将该棉花种植于室外网室中，通过接虫验证实验，评价该转基因棉花对中黑盲蝽的抵抗能力，对中黑盲蝽的危害性状进行鉴定。
申请人提供了一种构建AsFAR基因的载体，并提供了该载体在在棉花遗传转化中的应用，具体应用步骤如下所述：
(1)在AsFAR基因的保守区域内选择一个长度为432bp的cDNA片段并用PCR(Polymerase Chain Reaction)方法进行基因克隆；这一序列与高效RNAi表达载体pHellsgate 4连接后转化棉花；
(2)将携带有AsFAR基因的RNAi表达载体通过使用农杆菌介导的遗传转化方法导入植物宿主细胞，所述的应用步骤如下：
1)挑选饱满、健康的棉花种子剥去种皮后，用0.1％的HgCl2浸泡8‐12min，再用无菌水洗涤3次；
2)将消毒后的棉种接种于无菌苗萌发培养基上，在黑暗条件下，置于28℃恒温箱中培养5‐6d；
3)取棉花无菌苗下胚轴切成0.5‐0.8cm的小段接种于用农杆菌活化培养基(MGL)悬浮的农杆菌菌液中，侵染5mim，转移至无菌滤纸吸干残留菌液并吹10min使表面稍微干燥，将棉花下胚轴分散布于垫有滤纸的共培养培养基上，使每段下胚轴均能接触到滤纸，在21℃下共培养48h；
4)将棉花无菌苗下胚轴接种到选择培养基上，每30天继代培养1次；将获得的胚性愈伤组织转移至分化培养基上，每30天继代培养1次直到获得转基因幼苗，然后将获得的未生根的转基因植株转移至生根培养基上诱导生根，直到得到完整的转基因植株。
上述转化过程中使用的培养基及其制备方法如下：
无菌苗萌发培养基：1/2MS大量元素，附加15g/L葡萄糖和2.5g/L的Phytagel，补加蒸馏水定容至1L。
愈伤组织诱导培养基：MSB，附加24‐D 0.1mg/L，KT(细胞激动素)0.1mg/L，3％Glucose，0.3％Phytagel，补加蒸馏水定容至1L。
农杆菌活化培养基(MGL)：胰化蛋白胨5g/L，NaCl 5g/L+MgSO4.7H2O 0.1g/L，KH2PO4，0.25g/L，甘露醇5g/L，甘氨酸1.0g/L,pH 5.8，补加蒸馏水定容至1L。
共培养培养基：MSB，附加2，4‐D 0.1mg/l，KT 0.1mg/l，50mg/l AS，3％Glucose，0.25％Phytagel，调pH至5.85‐5.95，补加蒸馏水定容至1L。
选择培养基：MSB，附加2，4‐D 0.1mg/L，KT 0.1mg/L，3％Glucose，0.3％Phytagel，50mg/L的卡那霉素和400mg/L头孢霉素，调pH至5.85‐5.95，补加蒸馏水定容至1L，。
分化培养基：MSB(去掉NH4NO3，将KNO3加倍)，附加吲哚丁酸(IBA)0.5mg/L，(KT)0.15mg/L，3％Glucose，Gln 1.0g/L，Asn 0.5g/L，0.25％Phytagel，pH5.85‐5.95，，补加蒸馏水定容至1L。
生根培养基：1/2MSB，附加Gln 0.5g/L，Asn 0.25g/L，1.5％Glucose，0.25％Phytagel，pH 6.1，补加蒸馏水定容至1L。
MSB的成分如下：MS培养基，附加B5(培养基)的维生素(将该培养基简写为MSB)
培养基配制好后在121℃高压蒸汽下灭菌15分钟。培养基中涉及到的抗生素的灭菌采用过滤灭菌，即在超净工作台内的无菌环境下加入到冷却至60℃以下的高压灭菌后的培养基中使用。
培养物的培养条件，除愈伤组织诱导阶段(28±2℃)不需要光照外，其他的培养阶段的培养条件为28±2℃，光照强度为冷光源135μmol m‐2s‐1，每天光照14h(特殊需要的培养条件除外)。
(3)对转基因后代进行阳性鉴定：
设计如下引物序列：
AsFRA‐F:5’‐CGAATGGTTGAAAGAAAATAGG‐3’；
AsFAR‐R:5’‐TTGGTGAAAGTGTAGGTGTTGG‐3’；
PCR反应体系(20uL)：
16uL的双蒸水；2uL的10×EasyTaq Buffer；0.4uL的dNTP；0.2uL的ForwardPrimer；0.2uL的Reverse Primer；0.2uL的EasyTaq；1uL的DNA样品。
本发明的积极效果如下：
本发明创造的转基因棉花可以提高对中黑盲蝽的抵抗能力。
将该转基因棉花与BT棉杂交可以创造出多抗棉花品种。
附图说明
序列表SEQ ID NO:1是本发明涉及的中黑盲蝽AsFAR基因的核苷酸序列。
图1：含有AsFAR基因的p35S‐AsFAR表达载体T‐DNA区段的载体构建图谱。
图2：本发明中涉及的农杆菌介导的遗传转化，进而获得转基因的棉花植株的图片。附图标记说明：图2中的A图：棉花下胚轴与农杆菌共培养状况的图片；图2中的B图：抗性愈伤组织形成的图片；图2中的C图：愈伤组织分化成胚性愈伤组织的图片；图2中的D图:棉花细胞通过体细胞胚胎发生获得再生幼苗的图片；图2中的E图:再生植株水培过程；图2中的F图和G图：T0代再生植株移栽到营养钵中放置在温室中生长状况。
图3：转基因棉花植株基因阳性检测示意图。
图4：转基因棉花株系拷贝数鉴定结果。
图5：转基因棉花株系表达量鉴定结果。附图标记说明：图5中的A图：普通PCR检测不同转基因棉花株系中基因的表达量差异；图5中的B图：real‐time PCR检测转基因株系中基因的相对表达量差异。
图6：AsFAR基因的组织表达模式。
图7：转基因棉花抗虫评价的田间布局。附图标记说明：图7中的A‐C图：2015年转基因棉花的种植情况。图7中的D‐F图：2016年转基因棉花的种植情况。
图8：转基因棉花对中黑盲蝽靶基因的沉默效应。
图9：转基因棉花对中黑盲蝽种群数量的影响。
图10：中黑盲蝽对转转基因棉花的为害性状调查。附图标记说明：图10中的A,B图:被盲蝽象为害后转基因棉花和对照棉花的株高统计分析结果。图10中的C,D图:盲蝽象为害后转基因棉花和对照棉花的危害孔数统计分析结果。图10中的E,F图:盲蝽象为害后转基因棉花和对照棉花的分支数统计分析结果。
具体实施方式
以下实施例定义了本发明，并描述了本发明在构建AsFAR基因的RNAi载体，创造能够表达中黑盲蝽AsFAR基因双链RNA的转基因棉花，并进行田间抗虫评价的方法。根据以下的描述和这些实施例，本领域技术人员可以确定本发明的基本特征，并且在不偏离本发明精神和范围的情况下，可以对本发明做出各种改变和修改，以使其适用不同的用途和条件。
实施例1AsFAR基因植物干涉载体的构建
根据得到的SEQ ID NO：1的核苷酸序列设计引物用于构建得到表达载体，即在设计引物的两端分别加上BP反应的接头碱基，引物序列分别如下：AsFAR‐BP‐F：5’‐ggggacaagtttgtacaaaaaagcaggctcaCGAATGGTTGAAAGAAAATAGG‐3’,AsFAR‐BP‐R:5’‐ggggaccactttgtacaagaaagctgggtaTTGGTGAAAGTGTAGGTGTTGG‐3’；以pGEM‐T‐AsFAR质粒为模板进行PCR扩增，PCR条件为95℃5min；95℃30sec，56℃30sec，72℃30sec，30个循环；72℃5min。经PCR扩增得到正确的含有BP接头的AsFAR片段。PCR产物经BP反应连接至pHellsgate4载体上(BP酶购自Invitrogen公司，美国，25℃4小时)后转化大肠杆菌Top10感受态细胞，以AsFAR的特异引物(AsFAR‐F和AsFAR‐R)进行PCR检测来挑取阳性克隆，PCR反应条件为：95℃5min；95℃30sec，56℃30sec，72℃30sec，30个循环；72℃5min。并活化提取质粒。提取的质粒分别用Xhol 1(NEB公司)和Xbal 1(NEB公司)单酶切6h验证酶切片段大小是否相同，相同则证明p35S‐AsFAR重组表达载体构建成功，本发明所用载体结构如图1所示。将表达载体通过电击转化农杆菌EHA105，涂皿spe+抗性，2天后挑取单克隆，菌液PCR挑取阳性克隆，PCR反应条件为：含有表达载体p35S‐AsFAR的农杆菌：95℃5min；95℃30sec，56℃30sec，72℃30sec，30个循环；72℃5min；4℃保存。
实施例2AsFAR基因的遗传转化与阳性检测
1、无菌苗的准备
供试材料为棉花品系J668，不限于该品种(华中农业大学作物遗传改良国家重点实验室惠赠)。在离体培养条件下播种J668棉花无菌苗，具体步骤是：在超净工作台上将去壳后的J668棉花种仁用0.1％升汞消毒8‐12min，再用无菌水清洗3‐4次，将所得的无菌种仁(或称外植体)接种于无菌苗培养基中，一天后扶苗，去种皮，5天后可以得到棉花无菌苗下胚轴。
2、农杆菌的活化与侵染
从超低温冰箱内取出保存的农杆菌菌液(含有AsFAR基因的载体p35S‐AsFAR)。在加有50mg/L利福平和50mg/L卡那霉素的固体LB培养皿上划线于28℃下培养两天，挑取单克隆于加有Kan的LB培养液中摇菌18‐24h。将农杆菌菌液5000rpm离心5min，弃上清培养基。加入10ml MGL培养基(活化液)和25uL As，重悬农杆菌，在摇床中复苏1小时(28℃，200rpm)。将下胚轴切成大小约0.5‐0.8cm切段，用活化后的农杆菌侵染5min，倒出风干，转入共培养基中于21℃下暗培养48小时。
3、转基因植株的再生
将棉花无菌苗下胚轴转移到到选择培养基上，每一个月继代培养一次直到获得胚性愈伤组织；将胚性愈伤组织转入分化培养基中，培养获得胚状体；将胚状体转化成无根小苗并转移至生根培养基上，通过促进生根得到完整的转基因植株，即可用于下步分子检测和表型鉴定。
棉花无菌苗下胚轴转化用的培养基及其配制
无菌苗萌发培养基：1/2MS大量元素，附加15g/L葡萄糖和2.5g/L的Phytagel，补加蒸馏水定容至1L。
愈伤组织诱导培养基：MSB，附加24‐D 0.1mg/L，KT(细胞激动素)0.1mg/L，3％Glucose，0.3％Phytagel，补加蒸馏水定容至1L。
农杆菌活化培养基(MGL)：胰化蛋白胨5g/L，NaCl 5g/L+MgSO4.7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.25g/L，甘露醇5g/L，甘氨酸1.0g/L,pH5.8，补加蒸馏水定容至1L。
共培养培养基：MSB，附加2，4‐D 0.1mg/l，KT 0.1mg/l，50mg/l AS，3％Glucose，0.25％Phytagel，调pH至5.85‐5.95，补加蒸馏水定容至1L。
选择培养基：MSB，附加2，4‐D 0.1mg/L，KT 0.1mg/L，3％Glucose，0.3％Phytagel，50mg/L卡那霉素和400mg/L头孢霉素，调pH至5.85‐5.95，补加蒸馏水定容至1L。
分化培养基：MSB(去掉NH4NO3，将KNO3加倍)，附加吲哚丁酸(IBA)0.5mg/L，KT0.15mg/L，3％Glucose，Gln 1.0g/L，Asn 0.5g/L，0.25％Phytagel，pH5.85‐5.95，，补加蒸馏水定容至1L。
生根培养基：1/2MSB+，附加Gln 0.5g/L，Asn 0.25g/L，1.5％Glucose，0.25％Phytagel，pH 6.1，补加蒸馏水定容至1L。
MSB的成分如下：MS培养基，附加B5(培养基)的维生素(培养基简写为MSB)
培养基配制好后在121℃高压蒸汽下灭菌15分钟。培养基中涉及到的抗生素的灭菌采用过滤灭菌，即在超净工作台内的无菌环境下加入到冷却至60℃以下的高压灭菌后的培养基中使用。
培养物的培养条件，除愈伤组织诱导阶段(28±2℃)不需要光照外，其他的培养阶段的培养条件为28±2℃，光照强度为冷光源135μmol m‐2s‐1，每天光照14h(特殊需要的培养条件除外)。
4、转基因棉花的阳性鉴定
从转基因T0代棉花植株上取新鲜叶片提取基因组DNA(试剂盒使用天根生化科技(北京)有限公司生产的植物基因组DNA提取试剂盒，按该试剂盒的说明书操作)，扩增载体序列的上游引物为(5’-CGAATGGTTGAAAGAAAATAGG-3’)和目的基因的下游引物为5’-TTGGTGAAAGTGTAGGTGTTGG-3’)，进行PCR阳性检验。
PCR反应体系：16uL的双蒸水；2uL的10×EasyTaq Buffer；0.4uL的dNTP；0.2uL的Forward Primer；0.2uL的Reverse Primer；0.2uL的EasyTaq；1uL的DNA样品。PCR反应程序：第一步，95℃5min；第二步，95℃30sec；第三步，56℃30sec；第四步，72℃40sec；第五步，从第二步开始循环30次；第六步，72℃5min；第七步，4℃保存。结果见图3。
实施例3：转基因植株的表达量分析,表达模式的建立和拷贝数检测
1、AsFAR基因表达量分析：
提取转基因T1代植株叶片的总RNA，总RNA的抽提方法参考改良的异硫氰酸胍法，为常规方法。
cDNA的合成步骤为：以3ug RNA于新的0.5mLRNA离心管中，加入1ul oligo(dT)引物(购自Promega公司)，补充DEPC水至15μl，充分混匀，然后70℃变性5min，置于冰上10min；再加5μl M‐MLV 5×Reaction Buffer，1.25uL dNTP,1uL RNasin(40U),1uL M‐MLV反转录酶(购自Promega公司，USA)，补水至25uL。轻弹离心管混合溶液，42℃温浴1h合成第一链；反应结束后70℃处理7min，使反转录酶失活。稀释100倍，‐20℃备用。以上述反转录合成的cDNA为模板，用引物Q‐RT‐AsFAR‐F(5'‐CATCAACTGAACAAAATCGTGG‐3')和Q‐RT‐AsFAR‐R(5'‐TATGCGGTGGAGACGTGAAC‐3')对AsFAR基因进行特异的PCR扩增(扩增产物大小为245bp)，PCR反应体系：95℃5min；95℃30sec，60℃30sec，72℃12sec，28个循环；72℃10min。同时用陆地棉UB7(Genebank:DQ11644)作为内参基因，其引物分别为UBq7‐F(5'‐GAAGGCATTCCACCTGACCAAC)和UBq7‐R(5'‐CTTGACCTTCTTCTTCTTGTGCTTG‐3')，PCR反应体系为：95℃5min；95℃30sec，60℃30sec，72℃20sec，28个循环；72℃10min。获得的PCR产物取10μl以0.8％琼脂糖凝胶电泳检测。电泳检测结果如图5中的A图。real‐time PCR,结果如图5中的B图。通过对AsFAR基因表达量情况的验证发现，AsFAR基因在不同转基因株系中的表达量有明显差异。
2、AsFAR基因表达模式分析
对T1代转基因棉花进行取样(样品包括：根、茎、叶、花瓣、花药、幼蕾、幼桃)提取RNA并反转录成cDNA。以反转录合成的cDNA为模板进行real‐time PCR检测。(具体实验步骤同1)。real‐time PCR,结果如图6。通过对AsFAR基因的表达模式分析发现，AsFAR基因在花瓣，花药，叶片，幼蕾中高量表达，在根，茎，幼桃中表达量较低。
3、转基因植株的拷贝数检测：
(1)棉花基因组DNA的提取
1)称取0.1‐0.2g棉花幼嫩叶片，加入200uL DNA抽提缓冲液，磨样机打60s频率60Hz，磨匀后补加600uL DNA抽提缓冲液立即混匀，离心5min(室温，11000rpm)；
2)弃上清，加入GP1，即DNA抽提试剂盒(天根生化科技(北京)有限公司产品)700uL，混匀。65℃水浴40min，中间每隔几分钟颠倒混匀一次，离心8min(室温，11000rpm)；
3)取上清加入到新的离心管中，加酚氯仿800uL，轻摇20min，离心8min(室温，12000rpm)；
4)取上清，加入800uL氯仿，轻摇15min，离心8min(室温，12000rpm)；
5)将上一步所得上层水相转入新的离心管中，加入700uL的GP2，充分混匀；
6)将混匀的液体转入吸附柱CB3中(可分多次加入)，12000rpm离心30sec，弃掉废液；
7)向吸附柱CB3中加入500uL的缓冲液GD(DNA抽提试剂盒自带，天根生化科技(北京)有限公司)，12000rpm离心30sec，弃掉废液；
8)向吸附柱CB3中加入600uL的PW(使用前检查是否加无水乙醇)，12000rpm离心30sec，弃掉废液。再重复一遍。然后空离心2min；将吸附柱置于室温晾干；
9)将吸附柱CB3转移到新的1.5mL的离心管中，向吸附膜中间部位加入60uL洗脱液TE,室温放置2‐5min，12000rpm离心2min，将DNA收集到离心管中。
(2)DNA酶切及电泳分离DNA
1)在200μl微量离心管中加入15‐20μg DNA样品，80U限制性内切酶(HindIII‐HF)，8μl相应的CutSmart Buffer，在旋涡器上混匀并稍微离心后放于37℃酶切72h；
2)于DYY‐Ⅲ34A型电泳槽中制备0.8％的0.5×TBE琼脂糖凝胶；向每个样品中加入2μl上样缓冲液，混匀后稍微离心后点样；在0.5×TBE电泳缓冲液中250V高压电泳10分钟，再在40V电泳12～14h。
(3)DNA变性及转膜
1)切胶：停止电泳，拿出胶板，上端切去点样孔，两边距点样孔0.5cm左右，下端沿溴酚蓝处边缘切开，切左上角以示方位；
2)变性：酸变性15min，碱变性20min，变性期间不时的温和晃动胶块；
3)搭盐桥：一块洗净的20×30cm瓷盘，倒入碱转液，把干净玻璃板横放于盘上，调平衡后用碱转液湿润玻璃板，把搭盐桥的滤纸平整地铺在玻板上，使纸的两端自然下垂到盘中，用玻棒赶尽玻板与纸之间的气包后，再按同样的方法铺上第二层滤纸，将胶的正面朝上放于滤纸中央，赶尽气泡，用X光片条将胶的四周约0.5cm宽处与滤纸隔开，使碱转液必须经过凝胶进入吸水纸，以保证胶中的DNA充分转移到尼龙膜上。取与胶块等大的尼龙膜准确放于胶上，赶尽气泡，在尼龙膜上放两张等大的滤纸，再放约10cm厚的吸水纸，再放一个玻璃板及约500g的重物，调水平，印记18‐24h；
4)将转好的尼龙膜用2×SSC浸泡15min，重复一次，捞出后用滤纸吸干水分，再用干净的滤纸包好，于80℃烘干2h后用保鲜膜包好放在‐20℃保存。
(4)Southern杂交
1)预杂交：将预杂交的尼龙膜用2×SSC浸泡15‐30min，取出尼龙膜装入杂交管中，赶尽气泡，在杂交管中加入25ml预杂交液，并于42℃预杂交，保持低速转动，几分钟后检查是否漏液。若不漏加入320ul/403ul 鲑鱼精；
2)杂交：吸取500ul杂交管中的杂交液于一新离心管中，加入探针，在98℃变性5分钟后，立即置于冰上3min。将变性好的探针加入杂交管中,充分混匀，42℃杂交10～12h；
3)洗膜：2×SSC+0.1％SDS于室温洗2次，每次15min；0.1×SSC+0.1％SDS于68℃洗3次，前2次15min，第3次10min；Washing Buffer洗1次，2～3min；马来酸缓冲液洗1次，2～3min；用马来酸缓冲液将10×Blocking Solution稀释成1×Blocking Solution，取其中80ml用来封阻背景，常温轻摇1h后弃掉溶液；试剂盒中4号管(Anti‐AP)，用前12000rmp，离心5min，取2ul加入20ml的1×Blocking Solution，将配好的Blocking Solution加入杂交管中，37℃杂交炉轻摇40min，之后取出尼龙膜，在瓷盘中用500ml的Washing Buffer清洗3次，每次15min。
(5)压膜及显影
1)将尼龙膜用检测缓冲液漂洗，室温3～5分钟；
2)压膜：将足够大的自封袋剪开，平铺于桌面，吸取800ul的CSPD均匀地滴在塑料袋上，取出尼龙膜将DNA面朝下，置于自封袋上，压好膜，用封口机封口，防止气泡的产生。室温孵育10min后将膜置于37℃孵育5‐10min，以增强化学发光反应；
3)压磷屏：将膜的DNA面朝上放置于磷屏中，放入1张X光片，盖好磷屏，曝光10～20min；
4)显影：将X光片浸入显影液中，反复几次后，用水冲洗干净X光片，浸入定影液中5min，冲洗干净即可。
对转基因各株系T1代的拷贝数鉴定结果见图4。
实施例4转基因棉花的田间抗虫鉴定
在室外建了两个实验池(10.5×4.5m)，并用60目的尼·龙网完全覆盖。将转基因棉花种植在实验池里，为了防止盲蝽象的逃逸和确保实验的准确性将不同株系(n＝16)之间都用网子隔开。整个生育期棉花均不喷洒农药，不打顶。对照棉花种植于相同的管理条件下。该田间评价连续进行了两年。
2015年，T1代的8个系全部种在实验池内，并在每株转基因棉花和对照棉花上接种3头3龄的中黑盲蝽。接虫一个月后，在每个系随机选择15株棉花进行中黑盲蝽危害性状(株高、分支数、危害孔数)的调查。
2016年，将T3代表达量相对较高产量比较好的两个株系(AsFAR-3,AsFAR-4)种植，用于进一步研究转基因棉花的抗虫性。每个转基因株系和对照均有3次生物学重复。接虫情况和危害性状统计同2015年。此外还检测了转基因棉花对中黑盲蝽AsFAR基因的沉默效应，以及对种群数量的影响。
中黑盲蝽对棉株危害性状统计结果如图10，统计结果表明对照棉花的危害孔数和分支数显著多于转基因棉花，而株高却显著低于对照棉花，说明中黑盲蝽对对照棉花的危害比较严重。基因沉默效应检测的结果见图8，结果表明与对照相比取食转基因棉花的中黑盲蝽的AsFAR基因的表达量显著下调。种群数量统计结果如图9，结果表明转基因棉花上的中黑盲蝽的种群数量显著低于对照植物上的中黑盲蝽的种群数量。
主要参考文献：
1.Lu YH,Wu KM,2011a.Mirid bugs in China:pest status and managementstrategies.Outlooks on Pest Management,2011a,22(6):248—252；
2.Mao YB,Cai WJ,Wang JW,Hong GJ,Tao XY,Wang LJ,Huang YP,ChenXY.Silenceing a cotton bolloworm P450monooxygenase gene by plant-mediatedRNAi impairs larval tolerance of goosypol.Nature biotechnology,2007,25(11):1307-1313；
3.Geng Tian,Linlin Cheng,Xuewei Qi,Zonghe Ge,Changying Niu,XianlongZhang,Shuangxia Jin.Transgenic Cotton Plants Expressing Double-stranded RNAsTarget HMG-CoA Reductase(HMGR)Gene Inhibits the Growth,Development andSurvival of Cotton.International Journal of Biological Sciences,2015,11(11):1296-1305；
4.Zhang Z.L,Luo J,Wang YN,Chen LJ,Chen LZ,Lei CL.Morphology andchemical analysis of the metathoracic scent glands system in Adelphocorissuturalis(Hemiptera:Miridae).Insect Sci,2014,14:293。
SEQUENCE LISTING
<110> 华中农业大学
<120> 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法
<130>
<141> 2017-04-09
<160> 1
<170> PatentIn version 3.1
<210> 1
<211> 1939
<212> DNA
<213> 陆地棉（Gossypium hirsutum）
<220>
<221> gene
<222> (1)..(1939)
<223>
<400> 1
gctcgtgcca aaccagtcag aggccgctag tgtcgtccgg acgatcgccc gcaattccaa 60
gttcaagatc acctaccggc tcagctctct gaattcccat caaacgctcg tcaagatgga 120
gatggggatg gggataccgg aattcttccg ggggcgctcg gtgttcatca caggaggctc 180
ggggtttatg gggaaagttc tggttgaaaa gctgcttcgt tcctgcccag acttggacaa 240
catttacgtt ctcatgaggc ccaaacgagg gcaacaagtt gcaggccgtt attcggattt 300
gctagattgc aaaattttcg aatggttgaa agaaaatagg aagcatcaac tgaacaaaat 360
cgtggctgtc gcaggagata tcacgaaacc cgggctcggt ctgagtccag aagatcaaga 420
aatgctagtg cgagaggtgt ctgttgtttt ccacgccgct gcgacagtga agttcgatga 480
ggtgatcaga ctgtcagtcg ctctcaattt gttaggaacc aaatcccttc tgcagctgtg 540
tgaaaaaatg gacaagctag tgtcagtcgt tcacgtctcc accgcatact gtaactgcaa 600
tttgaatgac gacatttatg aaaaactgta cccagcacca gcggatcctg agcaggtgat 660
tcaaatggtg caactcctgg atgaccacgt tctcgactgc atcacacctc tattgctcaa 720
agatcgtccc aacacctaca ctttcaccaa agccctggcg gaacacgtcg tgtacgaaaa 780
gagcggaaga ctaccgatcg ccatcttcag gccatccata gtaacaagtg ctatcgaaga 840
acccttgcct ggatgggtag acaacctcaa cgggccaacc ggagtgctgg ccggcgtggg 900
aaaaggcgtc cttcggtctg tgatgtgcca tagagacgcg atcgctgact tcatcccagt 960
cgaccgagcc attaactgca tgatagcaat agcatgggcc accgccgtaa ccaggccgaa 1020
taacattgtc atttacaatt gcacaactgg agcttctagt ccactctact ggagagacat 1080
ggaacaattt gggctcgaat ttatcctgaa atatcccagc agagaaatat tgtggtatcc 1140
gggaggaagc ttcaaatcca gtcctacatt aaatgatctt cacacgctgg cagttcagac 1200
tctccctgca tatctacatg atggattatc tcgattgaca gggagaaagc ctattatggt 1260
cagaatacaa gaaaagcttc aaaaagcgct ggagacgacg cagtttttta ccacgaagga 1320
cttcaagttc cgcaacgaca atgtagtgga actgtacaag actctgagcc ccgaagacca 1380
gaaaacgttc tgttttgatc tcagcaacat tgattggaga aaatacatcg aaacgtacgt 1440
tctggggacg agaaaattca tactcaagga agaccctgcc acgatacctg aaagcagagt 1500
caacctaaag aagatgtacg ttcttcacag aggcactcag cttctcatgt tcatcttcat 1560
attttggggc tttctgatga gatccagcac tgcgcggttc accttctatc aaatgctttc 1620
cgccgtttcc aagatgatga cagccctgtc caagaccttc gcatcagtgg agcgctaagg 1680
acattccttt ggtgtggcat gtgcatacat aacttcgcag taattgtata taaaccaagc 1740
gttgcttcaa cggcatcttc acatgatttt gcccacactc tgattactct cgatacaggt 1800
gaaatataaa cttgaaaatg tcagatcgga cctgtgcgaa atgctcaacg aaaccaaatt 1860
gtaacttcct accgataatc gtgcccattt gggtgcctac cttaggagtt aaaccttagc 1920
aagcaccaac cacgtggat 1939

Claims (2)

1.一种转化陆地棉的表达载体pHellsgate 4，其特征在于：所述的表达载体包含有SEQID NO：1所述的核苷酸序列。
2.表达AsFAR基因双链RNA的转基因棉花在抵抗中黑盲蝽中的应用，其特征在于所述应用包括下列步骤：
(1)在AsFAR基因保守区域内选择一个长度为432bp的cDNA片段并用PCR方法进行基因克隆，将这一序列与RNAi表达载体pHellsgate 4连接后转化棉花植株,所述的转化步骤为：
1)将含有AsFRA基因的载体导入到农杆菌菌株EHA105；
2)挑选饱满、健康的棉花种子剥去种皮后，用0.1％的HgCl2浸泡8-12min，再用无菌水清洗3-4次，将灭菌后的无菌外植体棉花种仁接种于无菌苗培养基中，一天后扶苗，去种皮，5天后得到无菌苗下胚轴；
3)取无菌苗下胚轴作为外植体，用解剖刀切成0.5-0.8cm的小段接种于经农杆菌活化培养基悬浮的农杆菌菌液中，侵染5mim后，将外植体转移到无菌滤纸上吸干残留菌液并吹10min使外植体表面稍微干燥；
4)将无菌苗下胚轴接种在含有共培养培养基的培养皿中，于21℃下共培养48h，将无菌苗下胚轴转移至选择培养基中，每一个月继代培养一次直到获得胚性愈伤组织，将胚性愈伤组织转入分化培养基中培养获得胚状体；
5)将根生长受到抑制的再生幼苗转移至生根培养基上，促进其生根；
6)对转基因后代进行阳性鉴定，鉴定所用的引物序列如下：
AsFAR-F:5’-CGAATGGTTGAAAGAAAATAGG-3，
AsFAR-R:5’-TTGGTGAAAGTGTAGGTGTTGG-3’；
7)提取转基因植株总RNA并反转录，以cDNA为模板通过荧光定量PCR对目的基因
的表达量进行检测，扩增用的引物序列如下：
Q-RT-AsFAR-F：5'-CATCAACTGAACAAAATCGTGG-3'，
Q-RT-AsFAR-R：5'-TATGCGGTGGAGACGTGAAC-3'；
8)使AsFAR基因在转基因棉花中表达；
9)对转基因棉花作抗虫鉴定；
上述步骤(1)至(5)中培养基的配制：
无菌苗萌发培养基：1/2MS大量元素，附加15g/L葡萄糖，2.5g/L Phytagel；
愈伤组织诱导培养基：MSB，附加24-D 0.1mg/L，KT 0.1mg/L，3％Glucose，0.3％
Phytagel；
农杆菌活化培养基：胰化蛋白胨5g/L，NaCl 5g/L，MgSO4.7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.25g/L，
甘露醇5g/L，甘氨酸1.0g/L；调pH至5.8；
共培养培养基：MSB，附加24-D 0.1mg/l，KT 0.1mg/l，50mg/l AS，3％Glucose，0.25％。
Phytagel，调pH至5.85-5.95；
选择培养基：MSB，附加2，4-D 0.1mg/L，KT 0.1mg/L，3％Glucose，0.3％Phytagel，
卡那霉素50mg/L，头孢霉素400mg/L，pH 5.85-5.95；
分化培养基：去掉NH4NO3、并将KNO3加倍的MSB，附加IBA 0.5mg/L，KT 0.15mg/L，
3％Glucose，Gln 1.0g/L，Asn 0.5g/L，0.25％Phytagel，调pH至5.85-5.95；
生根培养基：1/2MSB，附加Gln 0.5g/L，Asn 0.25g/L，1.5％Glucose，0.25％Phytagel,调pH至6.1；
MSB的成分：MS培养基+，附加B5的维生素。
CN201710298437.1A 2017-04-29 2017-04-29 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法 Pending CN108795981A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710298437.1A CN108795981A (zh) 2017-04-29 2017-04-29 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710298437.1A CN108795981A (zh) 2017-04-29 2017-04-29 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN108795981A true CN108795981A (zh) 2018-11-13

Family

ID=64053262

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710298437.1A Pending CN108795981A (zh) 2017-04-29 2017-04-29 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108795981A (zh)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110195073A (zh) * 2019-06-12 2019-09-03 华中农业大学 一种胰蛋白酶前体基因及其编码的蛋白质、干扰rna和应用
CN110511958A (zh) * 2019-08-28 2019-11-29 福建农林大学 一种同时沉默小菜蛾精氨酸激酶基因PxAK和整合素β1亚基基因Pxβ的RNAi载体
CN111286515A (zh) * 2019-01-05 2020-06-16 华中农业大学 利用植物介导的RNAi创造棉花抗绿盲蝽种质的方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520792A (zh) * 2016-10-18 2017-03-22 华中农业大学 一种分离的中黑盲蝽基因及其编码的蛋白

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106520792A (zh) * 2016-10-18 2017-03-22 华中农业大学 一种分离的中黑盲蝽基因及其编码的蛋白

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JING LUO等: "De novo analysis of the Adelphocoris suturalis Jakovlev metathoracic scent glands transcriptome and expression patterns of pheromone biosynthesis-related genes", 《GENE》 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111286515A (zh) * 2019-01-05 2020-06-16 华中农业大学 利用植物介导的RNAi创造棉花抗绿盲蝽种质的方法
CN110195073A (zh) * 2019-06-12 2019-09-03 华中农业大学 一种胰蛋白酶前体基因及其编码的蛋白质、干扰rna和应用
CN110195073B (zh) * 2019-06-12 2021-01-01 华中农业大学 一种胰蛋白酶前体基因及其编码的蛋白质、干扰rna和应用
CN110511958A (zh) * 2019-08-28 2019-11-29 福建农林大学 一种同时沉默小菜蛾精氨酸激酶基因PxAK和整合素β1亚基基因Pxβ的RNAi载体
CN110511958B (zh) * 2019-08-28 2020-09-08 福建农林大学 一种同时沉默小菜蛾精氨酸激酶基因PxAK和整合素β1亚基基因Pxβ的RNAi载体

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP3094722B1 (en) Phytophthora resistant plants belonging to the solanaceae family
CN104824010B (zh) 杀虫蛋白的用途
CN104488945B (zh) 杀虫蛋白的用途
CN1646561B (zh) 赋予茄科植物抗蔓延疫霉(晚疫病)抗性的基因
CN108164588A (zh) 棉花转运蛋白GhBASS5基因在植物耐盐中的应用
CN108795981A (zh) 利用植物介导的RNAi技术创造棉花抗中黑盲蝽新种质的方法
CN104046636B (zh) 一种密码子植物化改造的pmi基因及其应用
CN107299105A (zh) 西瓜枯萎病菌致病性FonAGL3基因、其缺失DNA片段、缺失突变体及其应用
CN106318958A (zh) 一种具有草甘膦和草铵膦复合抗性的融合基因、编码蛋白及其应用
CN106399339A (zh) 一种抗除草剂抗虫融合基因、编码蛋白及应用
CN110904130B (zh) 一种抗菌核病基因GmGST1、转GmGST1基因植株的构建与应用
CN108892721A (zh) 蝶蛹金小蜂毒液Kazal-type丝氨酸蛋白酶抑制剂PpSPI20蛋白及应用
CN105274122B (zh) 小菜蛾TOR基因的RNAi表达载体及其构建方法和应用
CN106834318A (zh) 一种抗虫融合基因、编码蛋白及其应用
CN102046796B (zh) 用于植物害虫控制的方法和组合物
CN106350532A (zh) 一种抗草甘膦融合基因、编码蛋白及其应用
CN108486149A (zh) 一种黄瓜CsWRKY50基因在增强黄瓜霜霉病抗性中的应用
CN110358778B (zh) SlDALR2基因在提高番茄细菌性叶斑病抗性中的应用
CN105296492B (zh) 一种爪哇根结线虫效应基因Mj-1-1，相关蛋白及其应用
CN104920425B (zh) 杀虫蛋白的用途
CN104522033B (zh) 杀虫蛋白的用途
CN104744577B (zh) 球孢白僵菌抗菌蛋白Bbafp及其表达载体、含有其基因的转基因植物的制备方法和应用
CN107022565B (zh) 一种玉米种子芽生长点转基因方法
CN106801065A (zh) 一种提高棉花再生及转化效率的方法及应用
CN108624599B (zh) 水稻OsWRKY21转录因子基因在改良植物抗虫性中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20181113

WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication