CN107988430A - 对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 - Google Patents
对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN107988430A CN107988430A CN201711251243.2A CN201711251243A CN107988430A CN 107988430 A CN107988430 A CN 107988430A CN 201711251243 A CN201711251243 A CN 201711251243A CN 107988430 A CN107988430 A CN 107988430A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- prawn
- pcr
- nodavirus
- detection
- primer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
- C12Q1/701—Specific hybridization probes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Immunology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Virology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明属于水产养殖技术领域,具体涉及一种对虾野田村病毒RT‑PCR检测试剂盒及检测方法,该试剂盒包括:5×逆转录缓冲液;逆转录酶;随机引物;2×反应混合缓冲液;优选的上、下游引物;Taq DNA聚合酶;阳性对照液;阴性对照液;ddH2O。本发明克服了目前对虾野田村病毒检测方法的不足,提供一种新型逆转录‑聚合酶链式反应快速检测试剂盒及检测方法,本发明对对虾野田村病毒临床诊断不仅切实可行,且具有快速、准确、特异、灵敏的优点,满足了临床诊断的要求,为检测对虾野田村病毒提供了便利条件。
Description
技术领域
本发明属于水产养殖技术领域,具体涉及一种对虾野田村病毒的特异性检测方法,特别是一种采用逆转录-聚合酶链式反应(简称RT-PCR)技术检测对虾野田村病毒的方法。
背景技术
近年来,我国对虾养殖饱受病害的折磨。2014年,中国水产科学研究院黄海水产研究所的科研人员通过组织病理学、人工感染实验、疑似病原基因进化分析、病毒分离纯化和荧光原位杂交等研究手段,证实一种新型的野田村病毒是2009年以来引起对虾急性偷死的主要病原之一,这种新型的野田村病毒属于α野田村病毒属,主要引起养殖30~60d后的对虾发病,累计死亡率可高达80%。目前,我国主要对虾养殖地区发病趋势现象依然非常严重,并呈现出暴发性流行。为了及早发现养殖对虾是否被野田村病毒感染,有必要建立一种快速、准确、灵敏的检测方法。
目前尚未见对虾野田村病毒检测方法的研究报道。RT-PCR方法具有操作简单、特异、快速、敏感等优点,正逐步应用于病原微生物的检测与研究中。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是,克服现有技术的不足,提供一种对虾野田村病毒的特异性RT-PCR检测方法,能快速、高效地用于对虾野田村病毒的检测。
本发明通过下述技术方案实现的。
对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒,所述试剂盒包括:
(1)5×逆转录缓冲液
(2)逆转录酶
(3)随机引物
(4)2×聚合酶链式反应混合缓冲液,包含以下成分:
KCl
MgCl2
Tris-HCl,pH5.8
dNTP
(5)优选的特异性检测引物:根据对虾野田村病毒的核酸序列,设计用于检测对虾野田村病毒的特异性检测引物,通过对所设计的引物对进行试验筛选,筛选出对对虾野田村病毒具有非常高灵敏性和特异性的一对引物,上游引物P1:5’-TTGAAGGCTATCTCGTGACAG-3’,下游引物P2:5’-ATTAGCTCGTATTTGCTTGGC-3’;
(6)Taq DNA聚合酶
(7)灭菌的ddH2O
(8)阳性对照液:提取对虾野田村病毒RNA,逆转录获得cDNA,然后以cDNA为模板,以Pl、P2为引物,进行PCR扩增,将纯化回收的扩增产物连接到pMD18-T载体,以阳性克隆的重组质粒作为阳性对照;
(9)阴性对照液:以ddH2O作为阴性对照。
对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒,所述优选的试剂盒包括:
(1)5×逆转录缓冲液100μL;
(2)逆转录酶25μL;
(3)随机引物25μL;
(4)2×聚合酶链式反应混合缓冲液1.0mL,包含以下成分:
(5)优选的特异性检测引物:根据对虾野田村病毒的核酸序列,设计用于检测对虾野田村病毒的特异性检测引物,通过对所设计的引物对进行试验筛选,筛选出对对虾野田村病毒具有非常高灵敏性和特异性的一对引物,上游引物P1:5’-TTGAAGGCTATCTCGTGACAG-3’,下游引物P2:5’-ATTAGCTCGTATTTGCTTGGC-3’,浓度为10μM;
(6)Taq DNA聚合酶 5U/μL;
(7)灭菌的ddH2O 1.0mL;
(8)阳性对照液:提取对虾野田村病毒RNA,逆转录获得cDNA,然后以cDNA为模板,以Pl、P2为引物,进行PCR扩增,将回收纯化的扩增产物连接到pMD18-T载体,以阳性克隆的重组质粒作为阳性对照;
(9)阴性对照液:以ddH2O作为阴性对照。
2.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,采用试剂盒检测对虾野田村病毒的方法为:
(1)待测样品RNA的提取:取待检测对虾的鳃丝和肌肉组织,用玻璃匀浆器匀浆后反复冻融三次,采用传统的Trizol法或者商业化的RNA提取试剂盒提取RNA,用ddH2O溶解,即为试验用RNA模板;
(2)逆转录合成cDNA:取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)PCR扩增:采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃末延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,检查PCR产物的预期大小;
(5)结果与判定:在紫外灯下观察并与标准分子量相对照,若检测样品在413bp处出现明亮的条带,而阴性对照没有目的条带,则为对虾野田村病毒阳性;若阳性对照可见目的条带,而检测样品无目的条带出现,则为阴性,没有或不是所要检测的目的对虾野田村病毒。
与现有技术相比,本发明所述的对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒及其检测方法具有以下特点及优点:
(1)本发明采用逆转录-聚合酶链式反应(Reverse transcription-polymerasechain reaction,简称RT-PCR)技术检测对虾野田村病毒的方法,适用于对对虾野田村病毒进行快速检测,可广泛应用于对虾野田村病毒的流行病学调查及疾病监控。
(2)与现有技术相比,本发明的有益效果包括:①检测快速、效率高:从核酸提取、逆转录(RT)和聚合酶链反应(PCR)到结果判定仅需要3.5小时;一次可以进行多个样品的检测,具有高效性。②检测准确:检测引物只与对虾野田村病毒特异性地结合,与其他虾类病毒都没有交叉反应。③检测灵敏度高,适合用于对虾野田村病毒的早期监控。
附图说明
图1为感染野田村病毒对虾鳃丝和肌肉组织的RT-PCR扩增结果。其中,横坐标中:标号1为阴性对照(以阴性对照液作为模板);标号2为阳性对照(以阳性对照液作为模板);标号3为野田村病毒感染对虾鳃丝和肌肉组织样品;标号M为分子量标准DL2000(购自宝生物工程有限公司);纵坐标中:bp为碱基对,2000、1000、750、500、250、100为对应片段的碱基对的数量。
图2为对不同病原的(RT-)PCR扩增结果。其中,横坐标中:标号1为对虾野田村病毒;标号2为白斑综合征病毒;标号3为传染性皮下及造血器官坏死病毒;标号4为对虾杆状病毒;标号5为肝胰腺细小病毒;标号6为黄头病毒;标号7为传染性肌肉坏死病毒;标号8为桃拉病毒,标号M为分子量标准DL2000;纵坐标中:bp为碱基对,2000、1000、750、500、250、100为对应片段的碱基对的数量。
图3为不同浓度质粒模板的PCR扩增结果。标号1-7为106copies/μL、105copies/μL、104copies/μL、103copies/μL、102copies/μL、10copies/μL、1copy/μL的质粒模板;标号M为分子量标准DL2000;纵坐标中:bp为碱基对,2000、1000、750、500、250、100为对应片段的碱基对的数量。
图4为8尾发病对虾鳃丝和肌肉组织样品的RT-PCR扩增结果。其中,横坐标中:标号1为阴性对照(以阴性对照液作为模板);标号2为阳性对照(以阳性对照液作为模板);标号3-10为8尾不同对虾鳃丝和肌肉组织样品;标号M为分子量标准DL2000;纵坐标中:bp为碱基对,2000、1000、750、500、250、100为对应片段的碱基对的数量。
图5为6份不同地区对虾鳃丝和肌肉组织样品的PCR扩增结果。其中,横坐标中:标号1为阴性对照(以阴性对照液作为模板);标号2为阳性对照(以阳性对照液作为模板);标号3-8为6份不同地区对虾鳃丝和肌肉组织样品;标号M为分子量标准DL2000;纵坐标中:bp为碱基对,2000、1000、750、500、250、100为对应片段的碱基对的数量。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步详细说明:
实施例一:对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒
本实施例所述的对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒的所有化学试剂及引物均从专业的试剂公司购买。但上述试剂和引物来源不构成对本发明的任何限制,本发明可自行配制有关试剂和合成有关引物。
试剂盒由下列部分构成(12样份):
(1)5×逆转录缓冲液100μL;
(2)逆转录酶25μL;
(3)随机引物25μL;
(4)2×聚合酶链式反应混合缓冲液1.0mL,包含以下成分:
(5)优选的特异性检测引物:根据对虾野田村病毒的核酸序列,设计用于检测对虾野田村病毒的特异性检测引物,通过对所设计的引物对进行试验筛选,筛选出对对虾野田村病毒具有非常高灵敏性和特异性的一对引物,上游引物P1:5’-TTGAAGGCTATCTCGTGACAG-3’,下游引物P2:5’-ATTAGCTCGTATTTGCTTGGC-3’,浓度为10μM;
(6)Taq DNA聚合酶 5U/μL;
(7)灭菌的ddH2O 1.0mL;
(8)阳性对照液:阳性克隆的重组质粒;
(9)阴性对照液:ddH2O;
(10)操作说明书一份。
(11)长方体盒子,可装上述1~10号部件,10.0×9.0×5.0cm3。
(12)一块硬纸板,其大小与盒子的底面相同,高2.5cm,有4排孔,每排4个孔,孔径1.0cm,上述各小管分别对应放置于这些小孔中,装于长方体盒子中。
上述阳性对照是提取对虾野田村病毒RNA,逆转录获得cDNA,然后以cDNA为模板,以Pl、P2为引物,进行PCR扩增,将回收纯化的扩增产物连接到pMD18-T载体,以阳性克隆的重组质粒作为阳性对照;以ddH2O作为阴性对照。
RT体系(10μL)为:
RT反应条件为:
37℃ 15min
85℃ 5sec
最后4℃保存
PCR扩增反应体系(25μL)为:
PCR扩增反应条件为:
实施例二:对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测方法
使用实施例一所述的试剂盒,按下列步骤进行:
(1)取50mg待检对虾鳃丝和肌肉组织样品,加入600uL灭菌处理的双蒸水,用玻璃匀浆器充分研磨后,置于-20℃冰箱反复冻融3次,6000rpm低温离心5分钟,取上清,采用传统的Trizol法或者商业化的RNA提取试剂盒提取RNA,用ddH2O溶解,即为试验用RNA模板。
(2)分别取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,若在413bp处出现明亮的反应条带,则为对虾野田村病毒阳性;若无反应条带出现,则为阴性;
(5)实验结果分析:如图1所示,在标号3(待测样品)的电泳带中413bp处出现明亮的反应条带,在标号2(阳性对照)的电泳带中也出现同样的反应条带,而在标号1(阴性对照)的电泳带中未出现反应条带,表明本PCR试剂盒的检测效果符合预期。
实施例三:对虾野田村病毒特异性RT-PCR快测试剂盒的特异性实验
使用实施例一所述的试剂盒,按下列步骤进行:
(1)分别以提取的对虾野田村病毒、白斑综合征病毒、传染性皮下及造血器官坏死病毒、对虾杆状病毒、肝胰腺细小病毒、黄头病毒、传染性肌肉坏死病毒、桃拉病毒的核酸,进行(RT-)PCR检测。
(2)分别取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,若在413bp处出现明亮的反应条带,则为对虾野田村病毒阳性;若无反应条带出现,则为阴性;
(5)实验结果分析:如图2所示,标号1的电泳带在413bp处出现明亮的反应条带,显示对虾野田村病毒阳性。标号2~8(白斑综合征病毒、传染性皮下及造血器官坏死病毒、对虾杆状病毒、肝胰腺细小病毒、黄头病毒、传染性肌肉坏死病毒、桃拉病毒)的电泳带在413bp处无反应条带出现,显示对虾野田村病毒阴性。表明本发明所述的试剂盒对对虾野田村病毒的特异性强。
实施例四:对虾野田村病毒特异性RT-PCR快测试剂盒的灵敏性实验
(1)将阳性对照重组质粒进行倍梯度稀释,使其浓度依次为1×106~1copies/μL作为标准品模板,进行PCR检测。
(2)采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:94℃预变性5分钟;然后94℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃延伸10分钟,最后4℃保存;
(3)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,检测对虾野田村病毒特异性RT-PCR的灵敏度;
检测不同质粒模板浓度,最低检出质粒模板浓度为102copies/μL,PCR检测结果见图3。
实施例五:对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒对发病对虾的检测
使用实施例一所述的试剂盒,按下列步骤进行:
(1)分别以从发病池塘中取的8尾发病对虾鳃丝和肌肉组织中提取的RNA作为模板,进行RT-PCR检测;
(2)分别取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,若在413bp处出现明亮的反应条带,则为对虾野田村病毒阳性;若无反应条带出现,则为阴性;
检测所取8尾发病对虾,8尾发病虾对虾野田村病毒均呈阳性,通过进一步测序表明,其检测结果均为对虾野田村病毒,且核苷酸同源性都在99%以上,RT-PCR检测结果见图4。
实施例六:对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒对不同地区发病对虾的检测
使用实施例一所述的试剂盒,按下列步骤进行:
(1)分别以从广东、广西、福建、海南、江苏、山东等地采集的对虾样品,提取鳃丝和肌肉组织中的RNA作为模板,进行RT-PCR检测;
(2)分别取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,若在413bp处出现明亮的反应条带,则为对虾野田村病毒阳性;若无反应条带出现,则为阴性;
检测所取6份对虾样品中,对虾野田村病毒均为阳性,通过进一步测序表明,其检测结果均为对虾野田村病毒,且核苷酸同源性都在99%以上,RT-PCR检测结果见图5。
Claims (2)
1.对虾野田村病毒特异性RT-PCR检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括:
(1)5×逆转录缓冲液
(2)逆转录酶
(3)随机引物
(4)2×聚合酶链式反应混合缓冲液,包含以下成分:
KCl
MgCl2
Tris-HCl,pH5.8
dNTP
(5)优选的特异性检测引物:根据对虾野田村病毒的核酸序列,设计用于检测对虾野田村病毒的特异性检测引物,通过对所设计的引物对进行试验筛选,筛选出对对虾野田村病毒具有非常高灵敏性和特异性的一对引物,上游引物P1:5’-TTGAAGGCTATCTCGTGACAG-3’,下游引物P2:5’-ATTAGCTCGTATTTGCTTGGC-3’;
(6)Taq DNA聚合酶
(7)灭菌的ddH2O
(8)阳性对照液:提取对虾野田村病毒RNA,逆转录获得cDNA,然后以cDNA为模板,以Pl、P2为引物,进行PCR扩增,将纯化回收的扩增产物连接到pMD18-T载体,以阳性克隆的重组质粒作为阳性对照;
(9)阴性对照液:以ddH2O作为阴性对照。
2.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于,采用试剂盒检测对虾野田村病毒的方法为:
(1)待测样品RNA的提取:取待检测对虾的鳃丝和肌肉组织,用玻璃匀浆器匀浆后反复冻融三次,采用传统的Trizol法或者商业化的RNA提取试剂盒提取RNA,用ddH2O溶解,即为试验用RNA模板;
(2)逆转录合成cDNA:取待测样品的RNA模板7μL,加入PCR反应管中,再加入5×逆转录缓冲液2μL、逆转录酶0.5μL、随机引物0.5μL,反应总体积10μL,充分混匀后,置于PCR仪上,37℃15min逆转录反应,85℃5sec灭活逆转录酶,4℃保存,得到cDNA产物;
(3)PCR扩增:采用25μL的PCR反应体系,在0.2mL PCR反应管内分别加入2×反应混合缓冲液12.5μL,上游引物P1、下游引物P2各0.5μL,5U/μL的Taq DNA聚合酶0.5μL,cDNA模板3.0μL,用灭菌超纯水加至总体积,同时分别用阳性对照液和阴性对照液作为模板,设置阳性和阴性对照组,混合均匀后离心数秒进行PCR反应,反应程序为:95℃预变性5分钟;然后95℃变性30秒,58℃退火30秒,72℃延伸30秒,共循环35次;72℃末延伸10分钟,最后4℃保存;
(4)PCR扩增产物的检测:PCR反应结束后,取10μL产物在1.5%琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5μg/mL)上,使用TAE缓冲液进行电泳,在紫外透射仪下观察PCR产物,检查PCR产物的预期大小;
(5)结果与判定:在紫外灯下观察并与标准分子量相对照,若检测样品在413bp处出现明亮的条带,而阴性对照没有目的条带,则为对虾野田村病毒阳性;若阳性对照可见目的条带,而检测样品无目的条带出现,则为阴性,没有或不是所要检测的目的对虾野田村病毒。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201711251243.2A CN107988430A (zh) | 2017-12-01 | 2017-12-01 | 对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201711251243.2A CN107988430A (zh) | 2017-12-01 | 2017-12-01 | 对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN107988430A true CN107988430A (zh) | 2018-05-04 |
Family
ID=62035176
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201711251243.2A Pending CN107988430A (zh) | 2017-12-01 | 2017-12-01 | 对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN107988430A (zh) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104212915A (zh) * | 2014-09-10 | 2014-12-17 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 虾类偷死野田村病毒现场快速检测引物组及试剂盒 |
CN105331739A (zh) * | 2015-11-09 | 2016-02-17 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 对虾偷死野田村病毒荧光定量rt-pcr检测方法 |
-
2017
- 2017-12-01 CN CN201711251243.2A patent/CN107988430A/zh active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104212915A (zh) * | 2014-09-10 | 2014-12-17 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 虾类偷死野田村病毒现场快速检测引物组及试剂盒 |
CN105331739A (zh) * | 2015-11-09 | 2016-02-17 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 对虾偷死野田村病毒荧光定量rt-pcr检测方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
CHETTUPON POOLJUN, ET AL.: "Development of a TaqMan real-time RT-PCR assay for detection of covert mortality nodavirus (CMNV) in penaeid shrimp", 《AQUACULTURE》 * |
QINGLI ZHANG, ET AL.: "Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification for rapid and quantitative assay of covert mortality nodavirus in shrimp", 《AND QUANTITATIVE ASSAY OF COVERT MORTALITY NODAVIRUS IN SHRIMP》 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104789700B (zh) | 基于荧光定量pcr熔解曲线法的dhav分型检测法 | |
CN104032038B (zh) | 鳜鱼弹状病毒的检测试剂盒及检测方法 | |
CN104846124B (zh) | 鲫鱼鲤疱疹病毒2型特异性pcr检测试剂盒及检测方法 | |
CN107760802A (zh) | 罗湖病毒特异性rt‑pcr检测试剂盒及检测方法 | |
CN106755571A (zh) | 一种用于检测寨卡病毒、登革热病毒和基孔肯雅病毒的试剂盒 | |
CN104073569B (zh) | 用于诊断手足口病极重症的分子标记物及其检测方法与试剂盒 | |
CN103484568B (zh) | 一种草鱼呼肠孤病毒ⅰ型和ⅱ型的双重荧光定量pcr检测方法及其试剂盒 | |
CN109439801B (zh) | 一种蜜蜂以色列急性麻痹病毒实时荧光rt-pcr检测试剂盒及其检测方法 | |
CN113046484B (zh) | 用于检测非洲猪瘟病毒p72基因的引物探针、试剂盒及方法 | |
Yin et al. | Visual detection of duck Tembusu virus with CRISPR/Cas13: A sensitive and specific point-of-care detection | |
CN104988246A (zh) | 中华绒螯蟹白斑症病毒特异性pcr检测试剂盒及检测方法 | |
CN111041128B (zh) | 一种基于实时荧光定量pcr检测鸭星状病毒3型用引物探针组、试剂盒及检测方法 | |
CN108004349A (zh) | 鲤春病毒血症病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 | |
CN105603091B (zh) | 一种霍乱弧菌多重荧光pcr检测试剂盒及其制备与应用 | |
JP2008529548A (ja) | ウイルスを用いることによる試料中の生細胞を検出するための方法 | |
Wang et al. | Macrobrachium rosenbergii nodavirus infection in M. rosenbergii (de Man) with white tail disease cultured in Taiwan | |
CN104611461B (zh) | 南美白对虾对虾杆状病毒检测试剂盒及检测方法 | |
CN106676199A (zh) | 一种用于检测犬圆环病毒的引物和高效cl‑rca‑pcr检测试剂盒及方法 | |
CN107988430A (zh) | 对虾野田村病毒rt-pcr检测试剂盒及检测方法 | |
CN104846098A (zh) | 一种试剂盒及检测方法 | |
CN108315479A (zh) | 安卡拉病毒实时荧光定量pcr引物对及试剂盒 | |
CN109777888A (zh) | 一种同时检测多种a组人类肠道病毒的引物组合及其应用 | |
CN109628640B (zh) | 一种快速检测鲤春病毒血症病毒的rpa-lfd引物、方法和试剂盒 | |
CN104388587A (zh) | 乙型流感病毒一步法检测试剂盒及乙型流感病毒检测方法 | |
CN115305295A (zh) | 一种养殖水体中青蟹呼肠孤病毒检测试剂盒及检测方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20180504 |
|
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |