CN107338221A - 一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法,包括以下步骤:(1)组织处理器械消毒;(2)选取2~3周的雄性SD大鼠,断颈处死,用眼科剪剪去大鼠腿部被毛,截取坐骨神经,将组织放入预冷无菌含双抗的PBS液中洗涤数次除去血渍和外膜;(3)剪碎组织,并用预热的II型胶原酶和IV型胶原酶消化;(4)终止消化,离心,弃上清,加培养基重悬;(5)组织块贴壁法接种到6孔培养板培养;(6)孵育1~2h,置于37℃、5%CO2环境中培养;(7)细胞传代纯化;(8)细胞形态学观察与鉴定。本发明提供的一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法,简单易操作,稳定,高效,获得的施旺细胞活力高,可用于建立体外实验模型细胞,满足大鼠施旺细胞实验的要求。
Description
技术领域
本发明属于现代生物技术之细胞培养技术领域,具体涉及一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法。
背景技术
施旺细胞(Schwann cells SCs)是周围神经系统特有的、最主要的胶质细胞,在周围神经的发生及损伤后的再生中起着重要的作用。它是周围神经纤维的鞘细胞,排列成串,包裹着周围神经纤维的轴突,反复包卷形成的同心圆板层,形成髓鞘。施旺细胞可分泌细胞粘附分子、多种神经营养因子(NTFs)和细胞外基质,促进和引导周围神经轴突的再生。
施旺细胞能大量持续分泌生长因子VEGF、TGF、PDGF等各种生物活性物质以及分泌基质。以往研究表明神经和血管相伴行,近来进一步的研究探讨了其中的分子机制。Mukouyama等研究发现小鼠小动脉特异性地与外周感觉神经伴行,外周感觉神经或施旺氏细胞的缺失可以导致小动脉生成障碍。施旺氏细胞在血管的动脉样分化和成熟中具有重要作用。近来发现,VEGF不仅在血管新生中发生着重要作用,还可以减小施旺细胞培养时的应急反应,增加在心肌内的生存率,从而改善心梗后心功能。目前国内外对于大鼠施旺细胞的分离与培养的研究较少,分离方法不成熟,获得的细胞纯度低,数量少。本发明旨在提供一种操作简单、高效的获得生长状态好、纯度高的大鼠施旺细胞的方法,建立一套完善可靠的大鼠施旺细胞体外培养技术。
发明内容
根据上述问题,本发明提供了一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法,该方法操作简单,细胞产量和成活率高,是一种较为理想的大鼠施旺细胞原代培养方法,可以满足多种生理生化实验的要求。
本发明采用的的技术方案如下:
(1)将组织处理器械浸泡于浓度75%乙醇水溶液,再置于无菌操作台紫外灭菌30min,将器械取出,在无菌操作台里晾干;
(2)选取2~3周的雄性SD大鼠,颈椎脱臼法处死,将处死后的大鼠用75%乙醇浸泡10s;
(3)将大鼠腹面向上固定于板上,局部常规消毒,用眼科剪剪去大鼠腿部被毛,分离腿部肌肉截取坐骨神经,将组织放入预冷无菌含双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)PBS液(浓度为0.008~0.015M,PH为7.2~7.4)中洗涤除去血渍,去除外膜;
(4)无菌条件下,在预冷的PBS(浓度为0.008~0.015M,PH为7.2~7.4)中用眼科剪将神经组织剪成1mm×1mm的碎块;
(5)用37℃预热的II型胶原酶结合IV型胶原酶混合消化;
(6)用10ml含10%大鼠血清、双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)、4~6μg/ml胰岛素的DMEM/F12(1∶1)混合培养基(简称混合培养基)终止消化,所得滤液100~200g离心10min,去掉上清液,保留沉淀;
(7)组织块贴壁法接种细胞至铺多聚赖氨酸包被的的6孔培养板中;
(8)倒置在37℃孵箱中孵育1~2h,沿孔边缓慢加入混合培养基,置于37℃、5%CO2环境中培养;
(9)24h小时后加入1ml的3~5μg/ml的阿糖胞苷处置48h,以除去成纤维 细胞;
(10)接种72h初次换液,换液后同时加入1ml的20~30ng/ml的成纤维细胞生长因子(bFGF)纯化细胞和1ml的4~6μM的福司柯林促进施旺细胞增殖;
本发明在步骤(10)之后还包括以下步骤:
(11)细胞传代纯化细胞:培养7~9天,细胞增殖达到70~80%时进行传代,用PBS(浓度为0.01M,PH为7.2~7.4)清洗2~3次,用0.25%的胰酶消化2~3分钟,用含大鼠血清的DMEM/F12(1∶1)培养基终止消化,350g离心去上清,加入10ml含10%大鼠血清、双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)、5μg/ml胰岛素、pH为7.4的DMEM/F12(1∶1)混合培养基重悬细胞沉淀,按照1∶2比例进行传代培养,记为P1,每个孔板的培养基中加入1ml的20~30ng/ml的成纤维细胞生长因子(bFGF)以除去成纤维细胞;
(12)细胞形态学观察与鉴定:施旺细胞爬片的制作,细胞免疫荧光鉴定。
其中,步骤(2)所选的大鼠体重100±10g,2~3周雄性SD大鼠。
其中,步骤(3)(4)所述的PBS已4℃预冷,PBS浓度为0.01M,PH为7.2~7.4,培养皿置于冰上,是为了使组织处于无菌、低温的环境。
其中,步骤(5)所述消化环境为37℃CO2培养箱,消化时间20min,消化酶混合液由0.1%~0.2%的II型胶原酶和0.1%~0.2%的IV型胶原酶混匀制得,所述两种酶混合比例1∶1~1∶1.5。
其中,步骤(6)所述培养基为DMEM/F12(1∶1)培养基,含10%大鼠血清,含100u/ml的青霉素、100u/ml的链霉素的双抗,5μg/ml的胰岛素。
其中,步骤(7)所述组织块贴壁法是将组织均匀铺在培养皿中。
其中,步骤(8)所述加入培养基过程应缓慢,勿使组织块漂起。
其中,步骤(9)所述阿糖胞苷浓度为5μg/ml。
其中,步骤(10)(11)所述的成纤维细胞生长因子浓度为25ng/ml,福司柯林浓度为5μM。
有益效果
本发明建立了一种简单、高效的分离培养大鼠施旺细胞的方法,所得原代细胞经细胞形态学观察与鉴定:数量多、纯度高、活性好,细胞成活率达95%以上,细胞纯度达96%以上,通过免疫细胞化学等方法检测细胞标记物。
本发明采用SD大鼠为材料,来源广泛。采用酶消化法和组织块贴壁法相结合的分离方法,与单独的组织块贴壁法相比,其细胞迁出的速度更快,与单独的酶消化法细胞,其细胞纯度更高。
本发明采用阿糖胞苷、成纤维细胞生长因子、福司柯林等,可以在提高细胞CAMP水平的同时达到抑制成纤维细胞的效果。相对于磁珠分离法等其它方法,其技术更简单易掌握,代价更低。
本发明采用多聚赖氨酸包被培养板,细胞生长状态好,可满足施旺细胞实验的要求,多聚赖氨酸包被比APES包被制作更简单,更易保存;本方法经济实用,简便易行,有利于建立体外实验模型细胞,研究施旺细胞的特性,为后续的实验提供可靠的细胞资源。
附图说明
图1培养4d的大鼠施旺细胞图片(100×)
图2培养7d大鼠脑施旺细胞免疫荧光图片(100×)
图3培养7d大鼠脑施旺细胞核免疫荧光图片(100×)
具体实施方式
在本发明中所使用的术语,除非另有说明,一般具有本领域普通技术人员通常理解的含义。
下面结合附图和实例对本发明进行详细说明,本发明的保护内容不限于下述实施例。
在以下的实施例中,未详细描述的各种过程和方法是本领域中公知的常规方法。
本实验所用的实验仪器与试剂如下:
外科手术器械一套,倒置显微镜(XDS-1A,上海),荧光显微镜(Leica,美国),恒温孵育箱(Heraeus,美国),低温离心机(TD24B-WS,上海),超低温冰箱(中科美菱),移液枪(Eppendorf,美国),电子分析天平(Sartorius,美国),超净工作台(HJ-CJ-1D,上海),CO2细胞培养箱(SANYO MCO-17AI,日本)。
DMEM/F12(1∶1)购于Corning公司,青霉素-链霉素双抗于Gibco购买,大鼠血清购买于Bioind公司,多聚赖氨酸共买于美国Gibco公司,Nephrin抗体、阿糖胞苷购买于美国Sigma,成纤维细胞生长因子(bFGF)购买于美国Peprotech,福司柯林购买于美国Sigma,PBS自制(8.0gNal、0.2g KCl、0.2g KH2PO4、1.44g Na2HPO4溶于1000ml去离子水中,调整PH为7.2~7.4,非特殊指出,本专利所用的PBS皆为此配方),胰酶购买于Bioind公司,II型胶原酶和IV型胶原酶购买于德国Serva公司,细胞培养瓶、离心管购于美国Corning公司。
本发明提供的技术方案包括如下步骤:
(1)将组织处理器械浸泡于浓度75%乙醇水溶液,再置于无菌操作台紫外灭菌30min,将器械取出,在无菌操作台晾干,选取2~3周的体重100±10g雄性SD大鼠,颈椎脱臼法处死,将处死后的大鼠用75%乙醇浸泡10s;
(2)将大鼠腹面向上固定于板上,局部常规消毒,用眼科剪剪去大鼠腿部被毛,分离腿部肌肉截取坐骨神经,将组织放入预冷无菌含双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)PBS液(浓度为0.01M,PH为7.2~7.4)中洗涤除去血渍,剥离外膜;
(3)在另一个60mm培养皿中加入预冷的PBS(浓度为0.01M,PH为7.2~7.4),无菌条件下,用眼科剪将神经组织剪成1mm×1mm的碎块;
(4)用37℃预热的II型胶原酶结合IV型胶原酶混合消化,37℃CO2培养箱消化20min,所述混合消化酶溶液由0.15g/l的II型胶原酶和0.15g/l的IV型胶原酶(1∶1.2)混合并且搅匀后制得;
(5)加入10ml含10%大鼠血清、双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)、5μg/ml胰岛素、pH为7.4的DMEM/F12(1∶1)混合培养基(简称混合培养基)终止消化,所得滤液150g离心10min,去掉上清液,保留沉淀;
(6)组织块贴壁法将沉淀细胞接种至铺多聚赖氨酸包被的的6孔培养板中:将组织均匀贴于培养板底部;
(7)倒置在37℃孵箱中孵育1.5h,轻轻翻转培养板,沿孔边缓慢加入DMEM/F12(1∶1)混合培养基,置于37℃、5%CO2环境中培养;
(8)培养24h小时后可以看见少量细胞已从一些组织周围迁出,并随着时间增加逐渐增多,主要有两种细胞:一种为成纤维细胞,呈圆形或不规则形状,边界不清;一种为施旺细胞,呈梭形或纺锤形,边界清晰,有两极,加入1ml的4μg/ml的阿糖胞苷处置48h,以除去成纤维细胞;
(9)接种72h初次换液,换液后同时加入1ml的25ng/ml的成纤维细胞生长因子(bFGF)除去成纤维细胞和1ml的5μM的福司柯林促进增殖,7~9天后融合成网状,仍有少量成纤维细胞;
(10)细胞传代纯化:培养7~9天,细胞增殖达到70~80%时进行传代,用PBS(浓度为0.01M,PH为7.2~7.4)清洗2~3次,用0.25%的胰酶消化2~3分钟,用含大鼠血清的DMEM/F12(1∶1)培养基终止消化,350g离心去上清,加入10ml含10%大鼠血清、双抗(100u/ml的青霉素,100u/ml的链霉素)、5μg/ml胰岛素、pH为7.4的DMEM/F12(1∶1)混合培养基重悬细胞沉淀,按照1∶2比例进行传代培养,记为P1,每个孔板的培养基中加入1ml的25ng/ml的成纤维细胞生长因子(bFGF)以除去成纤维细胞;
(11)细胞爬片的制作:a.取P1代细胞,PBS液洗涤1~2次;b.用0.25%胰蛋白酶消化3~5min,用DMEM/F12(1∶1)混合培养基终止消化,离心收集沉淀;c.用DMEM/F12(1∶1)混合培养基重悬,在细胞计数板中央放置计数专用的盖玻片,用玻璃虹吸管吸取细胞,让虹吸管在盖玻片上或下侧的计数板凹蹧处流出悬液,至盖玻片被液体充满为止,置显微镜下计数四角大方格内的细胞总数(四大格细胞总数/4×104),对于压线的细胞只计数在上线和左线者,对于细胞团按单个细胞计数。计数完成后再加入培养基将调整细胞浓度为1×106/ml;d.培养皿内放入多聚赖氨酸处理后的玻璃爬片,加入细胞悬液,37℃CO2培养箱培养;
(12)施旺细胞免疫荧光鉴定:a.细胞爬片用PBS液冲洗3次,每次3min,4%多聚甲醛固定20~30min,PBS洗3次,每次10min;b.0.2%渗透液Triton-100室温(15-25℃)下孵育10min,PBS洗3次,每次10分钟;c.5%BSA室温封闭1h,吸去封闭液。加入Nephrin抗体(用1%BSA稀释)于冰箱4℃过夜孵育;d.PBS洗3次,滴加羊抗鼠PE荧光二抗IgG(用1%BSA稀释),在室温下置于湿盒内孵育45min,PBS洗3次,自然晾干后在显微镜下观察。荧光拍照,计数阳性细胞。
施旺细胞表现为阳性,呈黄绿色荧光,计数阳性细胞与所有细胞数的比值,阳性率即细胞纯度大于96%。
本发明所得到的大鼠施旺细胞数量多,P1代细胞成活率达95%以上,细胞纯度达96%以上。
本发明分离所得施旺细胞可大量增殖,并且可以原代培养3~5代,为后续的实验提供可靠的细胞资源。
以上所述,仅为本发明较佳的实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此实施实例。任何在本发明的精神和原则之内作出任何修改,等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围内。
Claims (8)
1.一种大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将组织处理器械浸泡于浓度75%乙醇水溶液,再置于无菌操作台紫外灭菌30min,将器械取出,在无菌操作台里晾干;
(2)选取2~3周的雄性SD大鼠,颈椎脱臼法处死,将处死后的大鼠用75%乙醇浸泡10s;
(3)将大鼠腹面向上固定于板上,局部常规消毒,用眼科剪剪去大鼠腿部被毛,分离腿部肌肉截取坐骨神经,将组织放入预冷无菌含双抗的PBS液中洗涤除去血渍,去除外膜;
(4)无菌条件下,在预冷的PBS中用眼科剪将神经组织剪成1mm×1mm的碎块;
(5)用37℃预热的II型胶原酶结合IV型胶原酶混合消化;
(6)用含大鼠血清、双抗、胰岛素的混合培养基(简称混合培养基)终止消化,所得滤液100~200g离心10min,去掉上清液,保留沉淀;
(7)组织块贴壁法接种细胞至铺多聚赖氨酸包被的的6孔培养板中;
(8)倒置在37℃孵箱中孵育1~2h,沿孔边缓慢加入混合培养基,置于37℃、5%CO2环境中培养;
(9)24h小时后加入1ml的3~5μg/ml的阿糖胞苷处置48h,以除去成纤维细胞;
(10)接种72h初次换液,换液后同时加入1ml的20~30ng/ml的成纤维细胞生长因子(bFGF)纯化细胞和1ml的4~6μM的福司柯林促进施旺细胞增殖;
(11)细胞传代纯化;
(12)细胞形态学观察与鉴定:施旺细胞爬片的制作,细胞免疫荧光鉴定。
2.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于所用预冷的PBS浓度为0.01M,PH为7.2~7.4。
3.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(5)所述消化时间20min,消化酶混合液由0.1%~0.2%的II型胶原酶和0.1%~0.2%的IV型胶原酶混合并且搅匀后制得,所述两种酶混合比例1∶1~1∶1.5。
4.根据权利要求3所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(5)所述消化时间20min,消化酶混合液由0.15g/l的II型胶原酶和0.15g/l的IV型胶原酶混合并且搅匀后制得,所述两种酶混合比例1∶1.2。
5.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(6)所述的培养基为含10%大鼠血清、含100u/ml青霉素和100u/ml链霉素的双抗、4~6μg/ml胰岛素的DMEM/F12(1∶1)培养基,pH为7.4。
6.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(7)所述的培养板用3~4μg/cm2的多聚赖氨酸包被,培养条件为37℃、5%CO2培养箱。
7.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(9)所述的阿糖胞苷浓度为4μg/ml。
8.根据权利要求1所述的大鼠施旺细胞的分离及培养方法,其特征在于步骤(10)所述加入浓度为25ng/ml成纤维细胞生长因子(bFGF)纯化细胞,浓度为5μM福司柯林促进施旺细胞增殖。
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WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication | ||
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