CN106922525A - 一种通过弱光培养体系快速获得转基因植物的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及转基因植物的培养,具体公开了一种通过弱光培养体系快速获得转基因玉米的方法。具体为:将农杆菌侵染的玉米幼胚恢复培养后,置于筛选培养基中在弱光条件下进行筛选培养,将筛选获得的抗性愈伤组织在较强光条件下进行苗再生,即得转基因玉米;所述筛选培养时间为25‑30天;所述弱光条件为光照强度1‑20μmol/m2.s;所述筛选培养基含有1‑10mg/L的CuSO4与0.1‑1mg/L的6‑苄氨基腺嘌呤。本发明提供的转化方法通过筛选培养基添加CuSO4、6‑苄氨基腺嘌呤、愈伤筛选阶段进行弱光处理,愈伤仅筛选两轮,即可使得玉米转化效率提高到10%,从玉米幼胚侵染到得到再生苗周期缩短到2个月,大大缩短了获得转基因玉米再生苗的时间。本发明方法简单,操作方便,宜于推广使用。
Description
技术领域
本发明涉及转基因植物的培养,具体地说,涉及通过弱光培养体系快速获得转基因植物的方法。
背景技术
自上世纪90年代开始,科学家就开始转基因玉米相关的研究。Gordon-Kamm等(Gordon-Kammet al.Plant Cell,1990,2(7):603-618)和Fromm等(Fromm etal.Biotechnology(NY),1990,8(9):833-839)最先报道通过基因枪轰击法转化玉米悬浮细胞并获得再生植株。Grimsley等(Grimsley et al.Nature,1987,325(1):177-179)最早尝试通过使用根癌农杆菌作为介质将玉米条纹病毒浸染玉米。Gould等(Gould et al.PlantPhysiol,1991,95(2):426-434)和Shen等(Shen et al.Proc Natl Acad Sci USA,1993,90(4):1488-1492)用根癌农杆菌浸染玉米茎尖并获得少量转基因玉米植株。相对于基因枪法,农杆菌转化法的优点是节省成本,外源基因多以单拷贝或低拷贝整合到植物基因组中,外源基因不易发生沉默,能稳定遗传表达。农杆菌介导的玉米转化里程碑式的工作来自于Ishida等(Ishida et al.Nat Biotechnol,1996,14(6):745-750),他们使用超双元载体通过农杆菌浸染玉米自交系A188幼胚,转化效率达到5-30%,真正使通过农杆菌法获得转基因玉米成为可能。Zhao等(Zhao et al.Maize Genet Coop Newslett,1998,72:34-37)使用普通双元载体通过农杆菌转化法浸染玉米杂交种HiII,获得了较高的遗传转化效率。Frame等(Frame et al.Plant Physiol,2002,129(1):13-22)使用普通双元载体转化玉米HiII幼胚,其转化效率稳定在5%左右。
但上述转化方法需要对转化愈伤在黑暗条件先进行长时间的筛选,并使筛选的抗性愈伤再生成苗,一般计算,从农杆菌侵染玉米幼胚到获得转基因再生苗至少需要3个月以上的时间。提高转化效率并缩短获得转基因玉米再生苗的时间,将大大有助于通过转基因技术手段快速鉴定基因功能、更快培育有育种价值转基因玉米材料。
发明内容
为了解决现有技术中存在的问题,本发明的目的是提供一种转化效率高、转化周期短的获得转基因植物的方法。
为了实现上述目的,本发明采取如下技术方案:
一种通过弱光培养体系快速获得转基因植物的方法,在农杆菌侵染植物组织后,恢复4-7天(优选7天),置于筛选培养基中在弱光条件下进行筛选培养,将筛选获得的抗性愈伤组织在较强光条件下进行苗再生;所述筛选培养时间为25-30天;所述弱光条件为光照强度1-20μmol/m2.s;所述筛选培养基含有1-10mg/L的CuSO4与0.1-1mg/L的6-苄氨基腺嘌呤。本方法的遗传转化效率能稳定在10%左右。
以玉米为例,在农杆菌侵染玉米幼胚后,置于筛选培养基中在弱光条件下进行筛选培养,将筛选获得的抗性愈伤组织在较强光条件下进行苗再生,即得转基因玉米。
本发明通过在筛选培养基中添加CuSO4与6-苄氨基腺嘌呤(6-BA),配合弱光条件可以诱导绿色愈伤,使得玉米愈伤可以快速生长为具有高分化再生能力的绿色愈伤,提高阳性愈伤的筛选效率并缩短愈伤再生成苗的周期。
本发明中愈伤筛选阶段的弱光培养可以使玉米愈伤迅速长成具有可再生能力的愈伤,提高抗性愈伤的再生能力。但是光照强度过高,玉米愈伤会产生芽从而不利于愈伤生长,因此经大量实验优化后,优选弱光光照强度为5-10μmol/m2.s,最优选弱光光照强度为5μmol/m2.s。
本发明筛选培养基中的CuSO4,有助于提高抗性愈伤的分化能力。作为优选,所述CuSO4添加量为5mg/L。
本发明筛选培养基中的6-苄氨基腺嘌呤,有助于提高抗性愈伤的分化、再生能力。作为优选,所述6-苄氨基腺嘌呤添加量为0.5mg/L。
更为具体地,本发明提供所述筛选培养基的配方为:
MS培养基4.3g/L,蔗糖20g/L,葡萄糖10g/L,肌醇0.25g/L,L-脯氨酸0.69g/L,CuSO4·5H2O 5mg/L,2,4-D 3mg/L,6-BA 0.5mg/L,噻孢霉素(Cefotaxime)250mg/L,双丙氨膦(Bialaphos)3-5mg/L,3g/L植物凝胶,pH5.8。用水定容。
进一步地,所述筛选培养分为两轮进行,在本发明的一个具体实施方式中,每轮筛选14天。实际应用中,每轮筛选的时间可依据情况进行适当调整。常规技术中,筛选培养需要至少3-4轮才能完成,筛选得到的愈伤一般为黄色愈伤,强光下再生成苗比绿色再生愈伤慢,而本发明两轮筛选后的愈伤为绿色再生愈伤,强光下再生成苗快,显著缩短了筛选培养的时间和次数。
进一步地,苗再生时,所述较强光条件为光照强度60-150μmol/m2.s,优选为100μmol/m2.s。
本发明涉及到的原料或试剂均为普通市售产品,涉及到的操作如无特殊说明均为本领域常规操作。
在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可以相互组合,得到具体实施方式。
本发明在具体实施方式中以玉米为例进行说明,但本发明所述方法并不限于玉米,其他可通过本发明所述方法获得绿色愈伤进而获得转基因植株的植物均在本发明的保护范围之内。
本发明的有益效果在于:
本发明提供的转化方法通过筛选培养基添加CuSO4、6-苄氨基腺嘌呤、愈伤筛选阶段进行弱光处理,愈伤仅筛选两轮,每轮两周,使得玉米转化效率提高到10%,从玉米幼胚侵染到得到再生苗周期缩短到2个月,大大缩短了获得转基因玉米再生苗的时间。本发明方法简单,操作方便,宜于推广使用。
附图说明
图1为本发明实施例5经二轮筛选后的抗性愈伤。
图2为本发明实施例7中T0代转化体Bar蛋白的检测图;1,非转基因玉米;2-6,转基因玉米。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的优选实施方式进行详细说明。需要理解的是以下实施例的给出仅是为了起到说明的目的,并不是用于对本发明的范围进行限制。本领域的技术人员在不背离本发明的宗旨和精神的情况下,可以对本发明进行各种修改和替换。
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1玉米受体材料准备
温室或田间种植玉米自交系综31,用玉米自交系A188的花粉进行授粉,取授粉后9-12天的玉米穗(幼胚约1.0-1.2mm),去掉外苞叶,用镊子穿在穗子顶部在70%的乙醇中灭菌1分钟,然后放在超净台上吹干,从穗上剥离1mm左右新鲜的幼胚,作为受体材料,备用。
实施例2农杆菌侵染
将植物表达载体pCambia3301通过冻融法转化到农杆菌EHA105中,-70℃保存菌株。将保存菌株在含100μg/mL卡那霉素和250μg/mL塞孢霉素的YEB固体培养基上划线,28℃暗培养,至长出单菌落。
第一天,挑取单菌落接种到5-10mL含相应抗生素的YEB液体培养基中,于200rpm、28℃振荡培养8小时;再以1:100的比例将震荡培养后的菌液接种到新鲜的含相应抗生素的YEB液体培养基中,于200rpm、28℃振荡过夜。
第二天,将震荡培养过夜的菌液分装到2mL离心管中,于5000rpm、离心5min;用含200μM乙酰丁香酮的侵染培养基(配方见表1)重悬,调整O.D.600=0.3,备用。
将受体材料玉米幼胚放到含1mL侵染培养基溶液的1.5mL离心管中,一个小时后用移液器吸去侵染培养基并加入1mL新的侵染培养基,颠倒混匀1分钟,充分清洗玉米幼胚表面的胚乳,再用移液器吸去侵染培养基溶液,加入0.2mL新的侵染培养基溶液。将装有玉米幼胚的离心管放置在加热器(杭州博日科技有限公司,型号CHB-100)上用48℃热激5分钟;用移液器吸去侵染培养基溶液,加入1mL含40mg/L乙酰丁香酮的农杆菌菌液,并放置5分钟;取出用灭菌滤纸吸干,放到添加300mg/L半胱氨酸的共培养培养基(配方见表2)上,在23℃黑暗条件下共培养3天。
表1侵染培养基配方
表2共培养培养基配方
实施例3幼胚恢复
共培养完后的幼胚转移到恢复培养基中(表3),黑暗条件下培养7天。
表3恢复培养基
实施例4愈伤筛选条件优化
1)光照条件优化
恢复7天后的幼胚转移到筛选培养基(配方见表4)上,在26℃弱光条件下培养,光照强度为1-10μmol/m2.s。试验过程中发现过低的光照强度条件下,幼胚不能形成绿色再生愈伤;而过高的光照强度条件下,幼胚形成愈伤的能力变差。因此,弱光培养条件优选光照强度为5μmol/m2.s(表5)。
表4筛选培养基配方
表5不同光照条件下绿色愈伤发生率
2)培养基配方优化
弱光培养条件下,培养基中的CuSO4和6-BA浓度对绿色愈伤的质量起到至关重要的作用,试验了不同浓度的CuSO4和6-BA对转化效率的影响,优选CuSO4添加量为5mg/L,6-BA添加量优选为0.5mg/L(表6)。
表6不同培养基下遗传转化率
实施例5植株再生
筛选两轮后,获得抗性愈伤(图1),此时获得的抗性愈伤为绿色再生愈伤,具有高分化再生能力。将此愈伤转移到再生培养基(配方见表7),强光照下使植株再生。培养条件为28℃,光照16小时,很快就会有再生小苗出现。
表7再生培养基配方
实施例6植株生根移栽
再生的幼苗长到3片叶时,可将幼苗移植到生根培养基(配方见表8)中,并在室内培养。待幼苗长出新叶及根后,将幼苗从罐头瓶中取出,自来水冲净培养基,移栽于混有营养土和蛭石(1:3)的小花盆中。当幼苗又长出2-3片新叶时,可将其移入大田或大花盆中。
表8生根培养基配方
实施例7转基因植株检测
取约0.05g左右新鲜幼嫩叶片放在1.5mL的Eppendorf管中,用研磨棒研磨成液体状,向管中加入200μL水。取出Bar蛋白检测条(北京乐士宁科技有限公司货号:AQ014BG),手持检测条顶端,保持检测条垂直,将标记的末端插入至离心管,插入部分不要超过0.5cm。在检测过程中始终保持插入状态。1-3分钟内出现质控线。如果样品是阳性的,检测线将出现。如果样品是阴性的,检测线将不出现。检测结果如图2所示。其中1为非转基因阴性苗对照;2到6为转基因阳性苗。上条带为质控线,下条带为检测线,指示被检测出蛋白。由图2可知,转基因玉米出现检测线,Bar蛋白在转基因玉米中正确表达。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
Claims (9)
1.一种通过弱光培养体系快速获得转基因植物的方法,其特征在于,将农杆菌侵染的植物组织恢复培养后,置于筛选培养基中在弱光条件下进行筛选培养,将筛选获得的抗性愈伤组织在较强光条件下进行苗再生,即得转基因植物;
所述筛选培养时间为25-30天;
所述弱光条件为光照强度1-20μmol/m2.s;
所述筛选培养基含有1-10mg/L的CuSO4与0.1-1mg/L的6-苄氨基腺嘌呤。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述弱光条件为光照强度5-10μmol/m2.s。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述筛选培养基含有5mg/L的CuSO4与0.5mg/L的6-苄氨基腺嘌呤。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述较强光条件为光照强度60-150μmol/m2.s。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于,所述较强光条件为光照强度100μmol/m2.s。
6.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述筛选培养分为两轮进行。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,所述筛选培养基的配方为:
MS培养基4.3g/L,蔗糖20g/L,葡萄糖10g/L,肌醇0.25g/L,L-脯氨酸0.69g/L,CuSO4·5H2O 5mg/L,2,4-D 3mg/L,6-BA 0.5mg/L,噻孢霉素250mg/L,双丙氨膦3-5mg/L,pH5.8。
8.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,将农杆菌侵染后的植物组织在黑暗条件下恢复培养4-7天。
9.根据权利要求1或2及权利要求4~8任一项所述的方法,其特征在于,所述植物组织为玉米幼胚。
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