CN106867960A

CN106867960A - 一种子宫内膜干细胞的培养基及其制备方法

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Publication number: CN106867960A
Application number: CN201710115139.4A
Authority: CN
Inventors: 汪娟
Original assignee: LANHE (SHANGHAI) BIOTECHNOLOGY Co Ltd
Current assignee: LANHE (SHANGHAI) BIOTECHNOLOGY Co Ltd
Priority date: 2017-02-28
Filing date: 2017-02-28
Publication date: 2017-06-20

Abstract

本发明提供了一种子宫内膜干细胞的培养基及其制备方法，具体得本发明提供了一种用于子宫内膜干细胞培养的培养基，所述培养基为DMEM/F12培养基，并且含有10％‑20％体积的胎牛血清；本发明还提供了使用上述培养基的子宫内膜干细胞培养方法。本发明提供的培养基和培养方法，能够使得子宫内膜干细胞在培养过程中具有较高的增殖能力，且保持干细胞特性，适于在较短时间内培养大量的子宫内膜干细胞。

Description

一种子宫内膜干细胞的培养基及其制备方法

技术领域

本发明属于生物技术领域，具体地说，本发明涉及一种子宫内膜干细胞的培养基及其制备方法。

背景技术

干细胞(Stemcell，SC)是一种未分化细胞，这些细胞保持着高度增殖、自我更新和分化潜能的特性。干细胞可以定向分化为血液、骨骼、大脑及皮肤等其他组织。可能作为修复系统修复受损细胞。干细胞又可分为胚胎干细胞，脐血干细胞，成体干细胞及生殖干细胞等类型。干细胞在成体组织中调控成体细胞增殖、分化、凋亡及保持细胞数目的平衡中起到十分重要的作用。

人的子宫内膜是一个高度再生组织，在育龄期妇女中要经历400多次的增殖、分化和脱落。人子宫内膜由腺上皮细胞、间质细胞和血管组成，近年越来越多的研究表明，子宫内膜组织中存在一小群具有强大增殖和多向分化潜能的干细胞，可不断分裂增殖，及时补充脱落的终末分化细胞，使子宫内膜始终保持自我更新和再生能力。在月经周期的不同时期，内膜上皮和间质细胞的集落形成活性无明显差别。进一步的研究发现，内膜间质细胞在增生期的集落形成能力超过分泌期，而上皮细胞在分泌期的集落形成能力更强。因此可以推断，子宫内膜上皮和基质细胞具有子宫内膜干细胞的特性，在子宫内膜周期性脱落，增长中起到关键作用。现代妇产科学研究向细胞、亚细胞及分子水平发展，在体外成功的培养子宫内膜干细胞可为研究细胞的生长分化、代谢以及激素作用机制提供一个理想的实验模型。

发明内容

本发明的目的在于提供一种子宫内膜干细胞的培养基及其制备方法。

本发明提供了一种用于子宫内膜干细胞培养的培养基，所述培养基为DMEM/F12培养基，并且含有10％-20％体积的胎牛血清。

进一步地，所述培养基中还含有黑色素，优选地，所述黑色素含量为0.2-5mg/ml。

更优选地，所述黑色素含量为1-3mg/ml。

最优选地，所述黑色素含量为2mg/ml。

进一步地，所述培养基中还含有亚硫酸氢钠，优选地，所述亚硫酸氢钠含量为5-20mg/ml。

更优选地，所述亚硫酸氢钠含量为8-15mg/ml。

最优选地，所述亚硫酸氢钠含量为10mg/ml。

进一步地，所述培养基中还含有抗生素。

优选地，所述抗生素为两性霉素、链霉素、或青霉素。

进一步地，所述培养基中还含有0.5-2％(w/v)(优选为1％)的两性霉素。

进一步地，所述培养基中还含有0.5-2％(w/v)(优选为1％)的链霉素。

进一步地，所述培养基中还含有0.5-2％(w/v)(优选为1％)的青霉素。

本发明提供了一种子宫内膜干细胞的培养方法，所述方法包括步骤:

将消化后的子宫内膜干细胞培养接种于培养基中，37℃、5％C0₂培养箱孵育，其中所述培养基为DMEM/F12培养基，并且含有10％-20％体积的胎牛血清，0.2-5mg/ml黑色素，和5-20mg/ml亚硫酸氢钠。

优选地，所述培养基为DMEM/F12培养基含15％体积的胎牛血清、黑色素2mg/ml、亚硫酸氢钠10mg/ml、1％(w/v)两性霉素、1％(w/v)链霉素、和1％(w/v)青霉素。

优选地，细胞接种密度为1×10³-3×10⁵个/ml。

本发明提供的培养基和培养方法，能够使得子宫内膜干细胞在培养过程中具有较高的增殖能力，且保持干细胞特性，适于在较短时间内培养大量的子宫内膜干细胞。

应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例)中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方案。限于篇幅，在此不再一一累述。

附图说明

图1为P8子宫内膜干细胞的显微照片。

图2显示了Nestin染色情况。

具体实施方式

下面结合具体实施例，进一步陈述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明详细条件的实验方法，通常按照常规条件如美国Sambrook.J等著《分子克隆实验室指南》(黄培堂等译，北京：科学出版社，2002年)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数按重量计算。以下实施例中所用的实验材料和试剂如无特别说明均可从市售渠道获得。

实施例1子宫内膜干细胞的原代培养

因子宫肌瘤行全子宫切除术的患者(手术前3个月未服用激素类药物)，组织学诊断未发现子宫内膜有病理性改变。与患者签署知情同意书，并本着对患者尊重、保密及公正的原则进行取材，并保证患者的隐私不受伤害。在无菌条件下取内膜全层+子宫肌层5mm，取材远离病变部位，缓冲液(PBS)冲洗干净后，移入无菌的培养皿中，剪至lmm³大小放入冰浴DMEM/F12培养基(美国Hyclone)中。

在培养皿中加入约2倍体积的的胶原酶I(150U/ml)，37℃消化50-60min，获得单细胞悬液。将消化好的单细胞悬液移入离心管，静置几分钟去除剩余的大块组织。1500rpm离心3min，基质细胞和上皮细胞存于上清液中。

将分离的细胞悬液用台盼兰染色计数活细胞。按照2×10⁵个/ml的细胞密度分别接种于75cm²的培养瓶中，DMEM/F12培养基中包含10％胎牛血清、青链霉素溶液，37℃、5％C0₂培养箱孵育，72h后更换培养液，弃去未贴壁的细胞，以后每2-3天换液一次，并观察细胞生长情况。培养的原代细胞如图1所示。原代细胞呈梭形，胞浆丰富透明，呈现中间稍宽两端尖的形态，细胞核呈卵圆形。

实施例2子宫内膜干细胞贴壁细胞的形态及传代

原代培养的子宫内膜细胞多呈长梭形和纺锤形，贴壁细胞增殖迅速，细胞集落明显增大、增多。将当原代细胞长至80％-90％进行传代：去除培养液，加消化液(0.25％胰蛋白酶+0.02％EDTA液)消化，用等量血清终止消化，1300r/min10min离心，去上清，加入传代培养基，吹打散细胞，按5×10³个/ml传代，37℃、5％C0₂培养箱孵育，72h后更换培养液，以后每2-3天换液一次。传代培养依次标记为P1、P2至P10。

实验组传代培养基为DMEM/F12培养基含15％(v/v)的胎牛血清、黑色素2mg/ml(Sigma，CAS号：8005-03-6，别名“水溶性苯胺黑”)、亚硫酸氢钠10mg/ml、1％(w/v)两性霉素、1％(w/v)链霉素、1％(w/v)青霉素。

对照组传代培养基为DMEM/F12培养基含15％(v/v)的胎牛血清、1％(w/v)两性霉素、1％(w/v)链霉素、1％(w/v)青霉素。

实施例3传代过程中进行细胞克隆增殖能力的检测。

调整细胞悬液细胞密度后，分别以300个基质细胞/cm²接种于6孔培养板中37℃、5％C0₂进行培养。对照组和实验组的传代培养基如实施例2中所用。观察细胞生长情况，每2-3d换液1次，并每天观察细胞集落形成情况。在培养的第15d，出现肉眼可见的细胞克隆时，终止培养，弃去培养液，洗涤2次干燥后，结晶紫染色，然后在显微镜下计数细胞大于50的克隆数。各组设置三个平行。

克隆形成率＝克隆数/接种细胞数x100％。实验结果表明，实验组基质细胞的克隆形成率均在2％以上，最大可达2.84％±0.44％。而对照组仅为1％左右。实验组的克隆形成率与对照组相比提高了1.5倍。克隆形成率反映细胞群体依赖性和增殖能力两个重要性状，实验结果表明，使用本发明的传代培养基培养子宫内膜干细胞，干细胞的增殖能力显著增强。

表1

实施例4.流式细胞术和免疫细胞化学检测鉴定干细胞表面标记

选取生长状态良好的实验组各传代的细胞集落，离心收集细胞，弃上清洗涤细胞两次，制成浓度为1x10⁶L^-1细胞悬液，分别加入10微升CD29、CD45、CD90、CD34、CD73和CD133抗体(BD公司)，4℃避光孵育30分钟。孵育完成后液洗涤细胞两次以去除未结合的抗体，重悬细胞后，用流式细胞仪检测CD29、CD45、CD90、CD34、CD73和CDl33的表达率。

经流式细胞术鉴定，扩增传代的各代细胞均具有预期的干细胞特性。说明各传代细胞仍然保持了干细胞特性。

免疫细胞化学检测

将P8子宫内膜干细胞培养至对数生长期，待细胞长满瓶底后消化，调节细胞浓度为10⁸/L接种于12孔培养板，每孔1.5mL，贴壁48h后40g/L多聚甲醛固定，进行nestin免疫细胞化学染色，DAB显色，检测Nestin阳性细胞表达面积。图2显示了Nestin染色情况。

实施例5.子宫内膜干细胞成脂、成骨诱导分化

1)成脂分化

取实验组第8代细胞，2×10⁴细胞/孔接种于12孔板中。细胞达到70％-80％融合时，吸去培养基，加入成脂分化培养基，成脂分化培养基在IMDM培养基中补充10％胎牛血清、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素、10mmol/LL-谷氨酰胺、10μmol/L胰岛素(Sigma公司)、200μmol/L吲哚美辛(Sigma公司)、1μmol/L地塞米松和0.5mmol/L3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(IBMX，Sigma公司)。每隔2-3d更换新鲜的培养基。分化诱导21天后，进行油红O油滴染色。

成脂诱导分化21天，油红O染色后在倒置显微镜下观察，细胞质中充满红色的油滴，提示细胞已经分化呈脂肪细胞。

2)成骨分化

取实验组第8代细胞，2×10⁴细胞/孔接种于12孔板中。细胞达到70％-80％融合时，吸去培养基，加入成骨分化培养基，成骨分化培养基在低糖IMDM培养基中补充有10％胎牛血清、100μmol/L抗坏血酸、10mmol/Lβ-甘油磷酸盐和100mmol/L地塞米松(Sigma公司)。每隔2-3d换液新鲜的成脂分化培养基。分化诱导21天后，用茜素红进行油滴染色。

成骨诱导分化21天后，运用茜素红进行钙化结节染色，致密生长的细胞中散现大小不一的橘红色矿化结节。染色结果显示扩增的子宫内膜干细胞均有成骨分化能力。

在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

Claims

1.一种用于子宫内膜干细胞培养的培养基，其特征在于，所述培养基为DMEM/F12培养基，并且含有10％-20％体积的胎牛血清。

2.如权利要求1所述的培养基，其特征在于，所述培养基中还含有黑色素，优选地，所述黑色素含量为0.2-5mg/ml。

3.如权利要求1所述的培养基，其特征在于，所述黑色素含量为1-3mg/ml。

4.如权利要求3所述的培养基，其特征在于，所述黑色素含量为2mg/ml。

5.如权利要求1所述的培养基，其特征在于，所述培养基中还含有亚硫酸氢钠，优选地，所述亚硫酸氢钠含量为5-20mg/ml。

6.如权利要求5所述的培养基，其特征在于，所述亚硫酸氢钠含量为8-15mg/ml。

7.如权利要求5所述的培养基，其特征在于，所述亚硫酸氢钠含量为10mg/ml。

8.如权利要求1所述的培养基，其特征在于，所述培养基中还含有抗生素。

9.一种子宫内膜干细胞的培养方法，其特征在于，所述方法包括步骤:

将消化后的子宫内膜干细胞培养接种于培养基中，37℃、5％CO₂培养箱孵育，其中所述培养基为DMEM/F12培养基，并且含有10％-20％体积的胎牛血清，0.2-5mg/ml黑色素，和5-20mg/ml亚硫酸氢钠。

10.如权利要求9所述的子宫内膜干细胞的培养方法，其特征在于，所述培养基为DMEM/F12培养基含15％体积的胎牛血清、黑色素2mg/ml、亚硫酸氢钠10mg/ml、1％(w/v)两性霉素、1％(w/v)链霉素、和1％(w/v)青霉素。