CN106305430A - 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法 - Google Patents

一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106305430A
CN106305430A CN201610841384.9A CN201610841384A CN106305430A CN 106305430 A CN106305430 A CN 106305430A CN 201610841384 A CN201610841384 A CN 201610841384A CN 106305430 A CN106305430 A CN 106305430A
Authority
CN
China
Prior art keywords
naa
sucrose
culture medium
culture
agar
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201610841384.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN106305430B (zh
Inventor
张开文
王贤荣
伊贤贵
段凡
段一凡
王华辰
从睿
谢梦梦
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nanjing Forestry University
Original Assignee
Nanjing Forestry University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nanjing Forestry University filed Critical Nanjing Forestry University
Priority to CN201610841384.9A priority Critical patent/CN106305430B/zh
Publication of CN106305430A publication Critical patent/CN106305430A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN106305430B publication Critical patent/CN106305430B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/001Culture apparatus for tissue culture
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/008Methods for regeneration to complete plants

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

本发明公开了一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,包括以下步骤:A叶片、茎段灭菌,B不定芽诱导及增殖,C抗褐化试验,D愈伤组织诱导及增殖,E愈伤组织分化丛芽试验,F壮苗及生根培养;采用植物组织培养的方法繁殖‘粉彩’,受外界影响较小,节约育苗占地,降低成本,并且保存了母体的全部优良性状及遗传稳定性。这种快速的繁殖方法在短期内可以进行大量的试管苗规模化、工厂化生产。

Description

一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法
技术领域
本发明涉及植物无性繁殖技术领域,尤其涉及一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法。
背景技术
带芽茎段是目前使用最多的离体快繁外植体,众多试验表明樱花以茎段或芽心为外植体时可成功的诱导出丛生芽。愈伤培养是组织培养中非常常见并且也是重要的环节。任何外植体均可以通过愈伤组织培养诱导出芽和根。当外植体为叶片、叶柄、花瓣、花柄、子房等只能通过愈伤组织途径培养,很难直接诱导出丛芽,这可能与外植体的基因型、生理状态、生长调节剂配比、培养条件、继代周期等方面有关,仍需要进一步深入研究。尤其是褐化、污染、玻璃化是组织培养再生体系建立过程中常见的问题。
‘粉彩’(Cerasus jamasakura‘Fencai’)为蔷薇科樱属红山樱种系的一个,具有极大的观赏价值,但目前存在繁殖障碍,市场无商品苗提供。
发明内容
发明目的:针对现有技术中存在的不足,本发明的目的是提供一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,建立‘粉彩’的再生体系,获得优质的‘粉彩’种苗。
技术方案:为了实现上述发明目的,本发明采用的技术方案如下:
1、一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,包括以下步骤:
1)剪取春季‘粉彩’健壮嫩枝,去除叶片,剪成2~3cm带芽茎段,洗净消毒,放入配方为1/4MS+6-BA 1.0mg/L+IBA 0.01mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基中,培养一周后诱导出丛芽;
2)将茎段基部不带愈伤组织的丛芽直接转移到MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L+TDZ 0.5mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基中进行增殖;
3)丛芽茎段在配方为MS+6-BA 1mg/L+NAA 0.05mg/L+GA 5~7mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基中进行壮苗,当不定芽长到2~3cm时,转入1/2MS+NAA 0.8mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基中生根,培养30d;
4)将生长健壮的幼苗在自然光下带盖炼苗3~4d,洗净培养基,移至细沙:珍珠岩:蛭石(1:1:1)的基质中,保持稳定的温湿度和透气性,每隔7d对幼苗进行一次1000倍多菌灵喷雾消毒。
2、一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,包括以下步骤:
1)摘取春季‘粉彩’展叶期鲜嫩叶片,洗净消毒,无菌条件下剪去叶脉及叶柄,在叶背划出2~3处创伤,接种于配方为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 1.5mg/L+2,4-D 2mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L或MS+6-BA 1mg/L+NAA 1mg/L+2,4-D 2mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的启动培养基上培养,直至培育出愈伤组织;
2)将愈伤组织转移到MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L+ZT1.0mg/L+Vc 20mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基上增殖培养,每15d继代一次;
3)将增殖后的愈伤组织转移至MS+6-BA 0.2~0.3mg/L+NAA 0.1~0.3mg/L+TDZ0.1~0.3mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L的培养基上诱导分化。
步骤1)中洗净消毒的方法为:自来水冲洗1~2h,75%酒精浸泡30s,无菌水冲洗3~5次,0.1%HgCl2消毒5min,再用无菌水冲洗5~6次。
步骤2)中,丛芽增殖培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L+ZT1.0mg/L+Vc20mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L。
有益效果:与现有的技术相比,本发明的‘粉彩’组培快速繁殖方法,有效建立出‘粉彩’的再生体系,能快速高效的获得优质种苗,解决了实生苗生长周期长的问题,为工厂化育苗缩短了时间、提高了效率、降低了成本,同时保留了母本的优良性状。研究中发现丛芽诱导效率较高,最高可达95.00%、增殖量大,生长旺盛,成功实现了无菌苗的大量培育,得出了较佳的培育体系;愈伤组织的诱导及分化还需要进一步的研究。
附图说明
图1是茎段诱导图;
图2是丛芽增殖图;
图3是茎段生根图;
图4是愈伤诱导图;
图5是愈伤分化图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的说明。
实施例1
一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,包括以下步骤:
1)茎段芽诱导培养:
不定芽诱导:剪取春季‘粉彩’健壮嫩枝,去除叶片,剪成2~3cm带芽茎段洗净消毒,结果表明:0.1%HgCl2消毒时间为5min时较佳。无菌茎段接种到以MS、1/2MS、1/4MS为基本培养基,以6-BA和IBA为激素组合的启动培养基中。结果如表1所示,表明:1/4MS+6-BA1.0mg/L+IBA 0.01mg/L的组合出芽率最高,为95.00%,出芽时间最短,约7d;如图1所示。而MS+6-BA 0.5mg/L+IBA0.01mg/L的组合出芽率最低,为45.00%,出芽时间超过10d。
表1启动培养结果
2)丛芽增殖培养:将生长健壮的丛芽块作为外植体进行丛芽增殖,以MS为基本培养基,以6-BA(0.1、0.5、1.0mg/L)+NAA(0.02、0.05、0.08、0.10mg/L)组合的12组培养基和6-BA(0.5、1.0、1.5mg/L)+IBA(0.01、0.05、0.10、0.20mg/L)组合的12组培养基以及6-BA(0.5、1.0mg/L)+NAA(0.05、0.10mg/L)+TDZ(0.1、0.5mg/L)组合的8组培养基中进行丛芽增殖试验。统计丛芽增殖系数及生长情况。结果如表2、表3、表4所示,表明:6-BA+NAA+TDZ的激素组合丛芽增殖时间最短,为10d,增殖系数最高,其中MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L+TDZ0.5mg/L的培养基丛芽增殖系数最高,为5.27,且增殖快,丛芽密集,生长良好,但芽段略细弱(如图2所示);6-BA+IBA的激素组合丛芽增殖时间最长,为20d,但苗都较为健壮,其中MS+6-BA 1.0mg/L+IBA 0.1mg/L的培养基丛芽增殖系数最高,为2.99,丛芽增殖速度一般;6-BA+NAA的激素组合丛芽增殖时间介于前两者之间,为16d,其中MS+6-BA 0.5mg/L+NAA0.05mg/L的培养基丛芽增殖效果最好,增殖系数为3.15,略有愈伤,丛芽较密集,生长健壮。
表2丛芽增殖结果
表3丛芽增殖结果
表4丛芽增殖结果
3)壮苗及生根培养:将小苗培养在壮苗及生根培养基中,以MS为基本培养基,添加6-BA 1.0mg/L,NAA 0.05mg/L,GA(0、0.5、1.0、2.0、5.0、7.0、10.0mg/L)3种激素,共设置7个处理进行壮苗试验。结果如表5所示,确定MS+6-BA 1mg/L+NAA 0.05mg/L+GA 5~7mg/L培养基壮苗效果理想。
表5壮苗结果
以1/4MS、1/2MS、3/4MS和MS为基本培养基的生根率分别为50.00%、63.33%、60.00%、46.67%。采用1/2MS培养基添加NAA(0、0.2、0.5、0.8、1.0mg/L)+IBA(0、0.2、0.5、0.8、1.0mg/L)进行交叉对比试验,发现NAA 适合作为生根诱导激素,浓度为0.8mg/L时,生根率最高,且不定根健壮,须根发达,苗生长良好,即最佳的生根培养基为1/2MS+NAA0.8mg/L+琼脂3.3g/L+蔗糖30g/L,生根率达83.33%,如图3和表6所示。
表6生根结果
4)试管苗的移栽:将生长健壮的幼苗在自然光下带盖炼苗3~4d,洗净培养基,移至细沙:珍珠岩:蛭石(1:1:1)的基质中,保持稳定的温湿度和透气性,每隔7d对幼苗进行一次1000倍多菌灵喷雾消毒,移栽成活率达60%,苗生长快,健壮。
实施例2
一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,包括以下步骤:
1)愈伤组织诱导培养:
愈伤组织诱导:摘取春季‘粉彩’展叶期鲜嫩叶片及花,洗净消毒,结果表明:用0.1%HgCl2消毒效果佳,花器官的消毒时间定为4min时消毒效果最佳,叶片的最佳消毒时间初步定为5min。将花分离成花瓣、花梗、萼筒、子房、萼片等5部分,将叶分离成叶片、叶脉、叶柄等3部分,在每种外植体背面划出2~3处创伤,但不划透,伤口朝下接种于启动培养基上。启动培养基以MS为基本培养基,添加6-BA(0、0.5、1.0、1.5、2.0mg/L)和NAA(2.0、1.5、1.0、0.5、0mg/L)组合,2,4-D 2mg/L,琼脂3.3g/L,蔗糖30g/L。总体来看,花各部结构愈伤组织诱导效果为萼筒>花梗>子房>花瓣>花萼,叶各部结构愈伤组织诱导效果为叶片>叶柄>叶脉。当激素水平为6-BA 0.5mg/L+NAA 1.5mg/L或6-BA 1mg/L+NAA 1mg/L时,平均出愈时间约9d,愈伤组织生长较快,结构疏松,乳白色,少褐化,量多,如图4和表7所示。
表7启动培养结果
2)愈伤组织的增殖:挑选部分生长健康的淡乳白色的愈伤组织接种于以MS+6-BA(0.5、1.0、2.0mg/L)和NAA(0.1、0.3、0.5mg/L)的培养基中进行增殖,结果表明:愈伤组织在MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L的培养基上增殖效果佳,一周后愈伤组织增重1.47g,质地疏松,小颗粒状。在MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L培养基上添加浓度为0.5、1.0、2.0mg/L的KT、ZT、2,4-D进行增殖,结果如表8和9所示,表明:ZT浓度为1.0mg/L时,一周后愈伤组织增重1.98g,小颗粒状,乳白色。
表8增殖结果
表9增殖结果
3)愈伤组织分化:以MS+6-BA(0.1、0.5、1.0mg/L)+NAA(0.1、0.2、0.5mg/L)组合,附加TDZ(0.1、0.5、1.0mg/L)进行愈伤组织分化,结果表明:低浓度6-BA对愈伤组织分化有利,浓度为0.1~0.5mg/L时愈伤组织生长健康。当以MS+6-BA(0.1、0.2、0.3mg/L)+NAA(0.1、0.2、0.3mg/L)+TDZ(0.1、0.2、0.3mg/L)为优化组合时,6-BA、NAA、TDZ浓度在0.2~0.3mg/L时,愈伤组织分化较为成熟,有较多芽点的产生,经过多次继代后有少部分芽的分化,如图5和表10所示。
表10愈伤组织分化结果
实施例3
将实施例2诱导得到的生长健康淡乳白色的愈伤组织接种到含有不同防褐化剂添的MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L愈伤增殖培养基中继代培养。防褐化剂种类如下VC(5、10、20mg/L)、CA(5、10、20mg/L)、PVP(500、1000、1500mg/L)、AC(500、1000、1500mg/L)。结果如表11所示,表明:Vc的防褐化效果较柠檬酸钠(CA)理想,当Vc 20mg/L时,愈伤组织少量褐化,增殖快,结构疏松,乳白色;比较2种吸附剂,PVP的防褐化效果优于活性炭(AC),当PVP浓度为500mg/L时防褐化效果最好。

Claims (4)

1.一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)剪取春季‘粉彩’健壮嫩枝,去除叶片,剪成2~3 cm带芽茎段,洗净消毒,放入配方为1/4MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.01 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L的培养基中,培养一周后诱导出丛芽;
2)将茎段基部不带愈伤组织的丛芽直接转移到MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.05 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L的培养基中进行增殖,培养出小苗;
将小苗在配方为MS+6-BA 1 mg/L+NAA 0.05 mg/L+GA 5~7 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30g/L的培养基中进行壮苗,当不定芽长到2~3 cm时,转入1/2MS+NAA 0.8 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L的培养基中生根培养;
4)将生长健壮的幼苗在自然光下带盖炼苗3~4 d,洗净培养基,移栽至基质中,保持稳定的温湿度和透气性,定期对幼苗进行喷雾消毒处理。
2.一种红山樱‘粉彩’组培快速繁殖方法,其特征在于,包括以下步骤:
摘取春季‘粉彩’展叶期鲜嫩叶片,洗净消毒,无菌条件下剪去叶脉及叶柄,在叶背划出2~3处创伤,接种于配方为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 1.5 mg/L+2,4-D 2 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L或MS+6-BA 1 mg/L+NAA 1 mg/L+2,4-D 2 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30g/L的启动培养基上培养,直至培育出愈伤组织;
2)将愈伤组织转移到MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+ZT1.0 mg/L+Vc 20 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L的培养基上增殖培养,每15 d继代一次;
3)将增殖后的愈伤组织转移至MS+6-BA 0.2~0.3 mg/L+NAA 0.1~0.3 mg/L+TDZ 0.1~0.3 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L的培养基上诱导分化。
3.根据权利要求1或2所述的雪落樱组培快速繁殖方法,其特征在于,步骤1)中洗净消毒的方法为:自来水冲洗1~2 h,75%酒精浸泡30 s,无菌水冲洗3~5次,0.1% HgCl2消毒5min,再用无菌水冲洗5~6次。
4.根据权利要求2所述的‘粉彩’组培快速繁殖方法,其特征在于,步骤2)中,丛芽增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+ZT1.0 mg/L+Vc 20 mg/L+琼脂3.3 g/L+蔗糖30 g/L。
CN201610841384.9A 2016-09-21 2016-09-21 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法 Expired - Fee Related CN106305430B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610841384.9A CN106305430B (zh) 2016-09-21 2016-09-21 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610841384.9A CN106305430B (zh) 2016-09-21 2016-09-21 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN106305430A true CN106305430A (zh) 2017-01-11
CN106305430B CN106305430B (zh) 2018-05-18

Family

ID=57819676

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610841384.9A Expired - Fee Related CN106305430B (zh) 2016-09-21 2016-09-21 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106305430B (zh)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107094626A (zh) * 2017-05-05 2017-08-29 安徽省林业高科技开发中心 染井吉野樱的组培快繁方法
CN109984038A (zh) * 2019-04-08 2019-07-09 鲁东大学 快速促进白蜡茎尖增殖和生根同时完成的培养基及用途
CN111587787A (zh) * 2020-06-08 2020-08-28 法雅生态环境集团有限公司 一种樱花组织培养方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105359977A (zh) * 2015-12-01 2016-03-02 南京林业大学 一种雪落樱组培快速繁殖方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105359977A (zh) * 2015-12-01 2016-03-02 南京林业大学 一种雪落樱组培快速繁殖方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
史港影等: "雪落樱再生体系的建立", 《南京林业大学学报(自然科学版)》 *
闰道良等: "钟花樱组织培养再生体系的建立", 《林业科技开发》 *
陈志伟等: "微毛樱离体快繁初步研究", 《福建林学院学报》 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107094626A (zh) * 2017-05-05 2017-08-29 安徽省林业高科技开发中心 染井吉野樱的组培快繁方法
CN107094626B (zh) * 2017-05-05 2019-07-19 安徽省林业高科技开发中心 染井吉野樱的组培快繁方法
CN109984038A (zh) * 2019-04-08 2019-07-09 鲁东大学 快速促进白蜡茎尖增殖和生根同时完成的培养基及用途
CN111587787A (zh) * 2020-06-08 2020-08-28 法雅生态环境集团有限公司 一种樱花组织培养方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN106305430B (zh) 2018-05-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN104285813B (zh) 一种金花茶组培繁殖方法
CN103444552A (zh) 一种诱导茄子花药再生单倍体植株的方法
CN104885948B (zh) 一种油茶子叶节直接再生植株的方法
CN106342689A (zh) 一种南美星油藤快速繁殖的方法
CN106305430B (zh) 一种红山樱粉彩组培快速繁殖方法
CN108077071B (zh) 穗花牡荆组织培养用培养基及快速繁殖方法
CN105613288B (zh) 一种金边黄杨快繁体系的构建方法
CN105165627A (zh) 一种花榈木组培消毒灭菌配方和组培方法
CN113331059B (zh) 一种以鸟王茶树胚轴为外植体建立高效再生体系的方法
CN105638465B (zh) 一种草莓的组培快繁方法
CN105028193B (zh) 一种利用蓝莓莱格西叶片诱导产生微不定芽的繁育方法
CN104604735B (zh) 一种美国红叶紫薇的组培快繁方法
CN111727884B (zh) 一种圆锥绣球的离体芽培养方法
CN107223566B (zh) 一种五莲杨组织培养方法
CN106550875B (zh) 用于胭脂萝卜组织培养的ms培养基、丛生芽培养基及胭脂萝卜的组织培养快速繁殖方法
CN111034615B (zh) 一种矾根“提拉米苏”快速繁殖的组织培养方法
CN108064699A (zh) 一种葛根植物的组织离体培养繁殖方法
CN106165648B (zh) 一种紫荆组培培养基及培养方法
CN105379621B (zh) 一种大岛樱成年优良单株“小乔”樱的高效离体植株再生方法
CN114600772B (zh) 一种深山含笑的组培方法和快速繁殖方法
CN112369326B (zh) 一种心叶牛舌草“哈德斯本冰淇淋”的组织培养方法
CN105340742B (zh) 一种云南樱桃成年优良单株“广州”樱的组培快繁方法
CN104145825B (zh) 朝鲜蓟试管实生苗茎尖快繁育苗的方法
CN107155894A (zh) 一种绿岭核桃体细胞胚育苗方法
CN107135943A (zh) 一种冬樱离体快繁方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20180518

Termination date: 20200921

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee