CN105543106B - 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用 - Google Patents

一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN105543106B
CN105543106B CN201610015768.5A CN201610015768A CN105543106B CN 105543106 B CN105543106 B CN 105543106B CN 201610015768 A CN201610015768 A CN 201610015768A CN 105543106 B CN105543106 B CN 105543106B
Authority
CN
China
Prior art keywords
enzyme
application
bdf15
microbial inoculum
plant
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201610015768.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105543106A (zh
Inventor
李艳玲
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Taishan Medical University
Original Assignee
Taishan Medical University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Taishan Medical University filed Critical Taishan Medical University
Priority to CN201610015768.5A priority Critical patent/CN105543106B/zh
Publication of CN105543106A publication Critical patent/CN105543106A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105543106B publication Critical patent/CN105543106B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/02Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using fungi

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用,本发明筛选的菌株为白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15,已于2015年11月4日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No.11415。本发明筛选的菌株制备的复合酶的方法具有酶系完整、酶活性高、操作简单、成本低廉等优点,为制备复合酶提供了新途径,避免了现有技术中其它各种制备方法的局限性,具有很强的可操作性,适合于工业化大规模生产。

Description

一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用
技术领域
本发明涉及微生物技术领域,尤其涉及一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用。
背景技术
木质纤维素是地球上最为丰富的可再生生物质资源。我国木质纤维素类资源非常丰富,秸秆、稻草、甘蔗渣、动物粪便等农业废弃物中含有大量的纤维素和木质素,但是这些资源并没有被合理利用,而是被焚烧或者被随意丢弃。随着环境污染、能源亏缺、人口膨胀等问题日趋严重,可作为一种潜在的可再生资源被加以利用,因此,国内外学者对木质纤维素降解微生物进行了大量研究,但这些微生物处理后纤维素的降解率仍然不高,主要原因是木质素的侧链与半纤维素以共价键结合,形成一个十分致密的网络结构,阻碍了微生物对纤维素的降解。因此,要提高木质纤维素利用率,最好的方法是先降解木质素,其中漆酶是快速检测木质素分解程度的重要指标,而后再对纤维素、半纤维素进行彻底降解。因此,本专利的目的是寻找能高效降解木质素和纤维素的微生物菌株,用于提高秸秆等木质纤维素的利用率。
植物内生真菌(Plant endophytic fungi)是指那些在其生活史的一定阶段或全部阶段生活于健康植物各种组织和器官内部或细胞间隙的真菌。内生真菌在长期与植物共生的过程中,与木质纤维紧密接触,具有较高的纤维素酶、漆酶、果胶酶、木聚糖酶以及多酚氧化酶活性,对木质素和纤维素有很好的降解能力,为筛选木质纤维素降解菌提供了一个良好的菌种来源。目前采用单一菌株发酵生产选木质纤维素复合降解酶报道的较少,且现有菌种所产的复合酶酶活较低,组成酶系也较单一,不能满足需要生产的需要。至今尚未见从白花丹参内生真菌中筛选复合酶高产菌株的报道。
发明内容
本发明的目的就是为了解决上述问题,提供一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用,该菌株在产酶培养基中,产生丰富的木质纤维素复合降解酶。
为了实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一株来自白花丹参植物内生真菌,其为白黄小脆柄菇(Psathyrellacandolleana)BDF15,已于2015年11月4日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC,地址为:北京市朝阳区北辰西路1号院3号),保藏号为CGMCC No.11415。
一种菌剂,其活性成分为上述的白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15。
优选:上述菌剂为下述(1)-(4)任一菌剂:
(1)用于制备木质素纤维素复合降解酶的菌剂;
(2)用于降解木质素和纤维素的菌剂;
(3)用于提高农业废弃物利用率的菌剂;
(4)用于提取中草药或其废弃物有效成分的菌剂。
所述白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15在制备下述(1)-(4)任一菌剂中的应用:
(1)用于制备木质素纤维素复合降解酶的菌剂;
(2)用于降解木质素和纤维素的菌剂;
(3)用于提高农业废弃物利用率的菌剂;
(4)用于提取中草药或其废弃物有效成分的菌剂。
优选:所述农业废弃物为秸秆、稻草、甘蔗渣或动物粪便。
优选:所述中草药为丹参。
上述白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15或以白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15为活性成分的菌剂在制备木质素纤维素复合降解酶中的应用。
上述白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15或以白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15为活性成分的菌剂制备在木质素纤维素复合降解酶时所用的发酵培养基为:各成分的浓度比为:葡萄糖:麸皮:牛肉膏:KH2PO4:MgSO4·7H2O:硫酸铜=20:20:5:3:1.5:0.2。
优选:培养温度为28士1℃。
优选:摇瓶培养5~6天。
本发明所述的白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15的固体培养为马铃薯综合培养基:马铃薯200g,麦麸50g,葡萄糖20g,M gSO41.0g,蛋白陈5.0g,琼脂20g,水加至1000mL,自然pH。培养条件:28士1℃培养3~4天,菌落直径32~36mm,7-9天长满整个培养皿;菌丝白色,毡状,不易挑取;菌落干燥,不透明,与培养基结合紧密。
本发明所述的白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15,其产酶筛选培养基(即产纤维素酶培养基)组成为:羧甲基纤维素钠(CMC-Na)20g,蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl5g,KH2PO4 1.0g,MgSO4.7H2O 0.2g,琼脂20g,蒸馏水1000mL,自然pH。产漆酶培养基:PDA-愈创木酚(0.04%)培养基。
本发明所述的白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15的产酶发酵培养基组成为:葡萄糖20g,麸皮20g,牛肉膏5.0g,KH2PO4 3.0g,MgSO4·7H2O 1.5g,硫酸铜0.2g,加水至1000mL;摇瓶培养5~6天,培养温度28士1℃;发酵培养特征:培养第1天,未见明显生长现象,培养第2天,有菌丝球出现,4天后培养液中白色菌球数量增多,直径变大;培养第5-6天,菌丝球数量达到最大量,到了7~9天,菌丝球集结,发酵液颜色变黄。
菌株BDF15在产酶培养基中,28士1℃振荡培养5~6d后,产生丰富的木质纤维素复合降解酶,该复合酶包括纤维素降解酶(FPA,CMCase,C1酶,β-葡萄糖苷酶)、木质素降解酶漆酶以及果胶酶、木聚糖酶、蛋白酶、淀粉酶等辅助酶。酶活力分别为:FPA 53.26U/mL,CMCase 73.35U/mL,C1酶52.22U/mL,β-葡萄糖苷酶68.28U/mL,漆酶452.84U/mL,果胶酶13.43U/mL、木聚糖酶27.21U/mL、蛋白酶45.52U/mL、淀粉酶12.54U/mL,发酵液经8层纱布过滤后,5000r·min-1离心5min,取上清液即为复合酶粗制剂。
本发明的有益效果:
实验证明,本发明是从白花丹参根样品中经过层层筛选,最终筛选出了白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15,该菌株能够产生木质素纤维素复合降解酶,提高了木质素的降解效率,降低了成本。
本发明筛选的菌株制备的复合酶的方法具有酶系完整、酶活性高、操作简单、成本低廉等优点,为制备复合酶提供了新途径,避免了现有技术中其它各种制备方法的局限性,具有很强的可操作性,适合于工业化大规模生产。
保藏说明
菌种名称:白黄小脆柄菇
拉丁名:(Psathyrella candolleana)
菌株编号:BDF15
保藏机构:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心
保藏机构简称:CGMCC
地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号
保藏日期:2015年11月4日
保藏中心登记入册编号:CGMCC No.11415
附图说明
图1为白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15在马铃薯综合培养基上的生长特征;
图2为白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15在PDA-愈创木酚平板上的产漆酶情况,其中,A.BDF15培养3d时产生的漆酶氧化圈(正面);B.BDF15培养3d时产生的漆酶氧化圈(背面);C.BDF15培养5d时产生的漆酶氧化圈(正面);D.BDF15培养5d时产生的漆酶氧化圈(背面);
图3为白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15在液体产酶培养中的生长状况。
具体实施方式
下面结合附图与实施例对本发明作进一步说明。
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
马铃薯综合培养基:马铃薯200g,麦麸50g,葡萄糖20g,M gSO4 1.0g,蛋白陈5.0g,琼脂20g,水加至1000mL,自然pH。
PDA培养基:马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂15~20g,自来水1000mL,自然pH。
产纤维素酶筛选培养基组成为:羧甲基纤维素钠(CMC-Na)20g,蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 5g,KH2PO4 1.0g,MgSO4.7H2O 0.2g,琼脂20g,蒸馏水1000mL,自然pH。
产漆酶培养基:PDA-愈创木酚(0.04%)培养基,具体成分包括:马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂15~20g,愈创木酚0.4g,自来水1000mL。
产酶发酵培养基组成为:葡萄糖20g,麸皮20g,牛肉膏5.0g,KH2PO43.0g,MgSO4·7H2O1.5g,硫酸铜0.2g,加水至1000mL。
一、白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15分离
从山东省泰安市泰山(海拔800m)采集健康无病症的白花丹参(Salviamiltiorrhiza Bunge.f.alba C.Y.Wu et H.W.Li),去腐叶,用清水洗去泥沙及其它杂质,冲洗干净,置于滤纸上自然风干。将白花丹参的根切成约0.5cm的小段,置于干净的培养皿中。在超净工作台中,用75%乙醇处理2min,无菌水冲洗5次,0.1%升汞处理5min,再用无菌水冲洗5次,最后再用75%酒精漂洗30S,无菌水冲洗5次,用灭菌滤纸吸干多余水分。用无菌的刀片将材料外皮剥去后,切成0.2cm×0.2cm的小片,置于添加青霉素的PDA培养基中,25℃恒温培养14天。同时将上述经表面灭菌的材料不做任何处理直接种植于PDA培养基中,同条件培养,作为对照观察,目的检查表面消毒是否彻底。培养3~7d后及时采用尖端菌丝挑取法,挑取材料切口处长出的菌丝,转接到新鲜PDA培养基上进一步培养,纯化3~4次以保证所得菌落为纯培养,将此菌株命名为BDF15。斜面保存备用。
二、白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15鉴定
将上述菌株BDF15进行如下生理生化、菌形态的鉴定:
(1)菌落形态特征:菌株BDF15的菌落形态如图1所示,其菌丝白色,毡状,较厚;不易挑取;菌落干燥,不透明,与培养基结合紧密,为不产孢真菌。
(2)分子鉴定:
采用改良SDS法提取的DNA条带清晰、整齐,无弥散和拖尾现象,无杂质污染;利用ITS通用引物ITS1和ITS4,进行ITS扩增分析,得到长度为1054bp的单一DNA条带,其ITSrDNA序列如SEQ ID No.1所示。
综合上述特征,依据《真菌鉴定手册》,本发明菌株BDF15为白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana),归属于伞菌目、鬼伞科、脆柄菇属。该菌株于2015年11月4日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No 11415。
三、白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15的固体平板培养
将菌株BDF15在马铃薯综合培养基和马铃薯葡萄糖培养基(PDA培养基)中,28士1℃培养,其菌丝生长状况不尽相同。如图1所示,在马铃薯综合培养基上内生真菌菌丝生长菌丝亮白,丝绒状,粗壮致密,长势旺,28士1℃培养3~4天,菌落直径32-36mm,7~9天长满整个培养皿;PDA培养基上菌丝较白,长势一般。
四、白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15在固体产酶培养基上产酶情况
用无菌打孔器将平板菌种制成直径5mm的菌饼,取菌饼1片接种到产纤维素酶筛选培养基,28℃培养5~7天,每天定时观察菌落生长和菌落周围颜色的变化情况,到第6天,纤维素酶活性达到最高。将菌株转接PDA-愈创木酚平板,28℃条件下继续培养5~7天,每天测量菌丝圈、紫色氧化圈直径,记录氧化圈颜色深浅,到第5天,其生长量和产酶量达到最大,BDF15的菌丝直径和漆酶氧化带直径分别为4.1和3.3cm(图2)。
五、白黄小脆柄菇(Psathyrella candolleana)BDF15液体发酵及粗酶液制备
将直径为5.0mm的菌饼2块,接入100mL产酶发酵培养基(250mL三角瓶),120r/min,28℃振荡培养5~6d后(图3),发酵液经8层纱布滤过后于5000r/min离心5min,取上清液,即为复合酶粗酶液。复合酶中漆酶活性最高,为452.84U/mL;其次是纤维素降解酶,其中FPA53.26U/mL,CMCase73.35U/mL,C1酶52.22U/mL,β-葡萄糖苷酶68.28U/mL;其他辅助酶中,果胶酶13.43U/mL、木聚糖酶27.21U/mL、蛋白酶45.52U/mL、淀粉酶12.54U/mL。
5.1漆酶活性测定:利用ABTS法测定酶活。反应总体积3mL中,含0.1mL酶液,1.9mL0.1mol/L柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液(pH=4.5),加入1.0mL0.5mmol/LABTS以启动反应,30℃水浴保温4min,后沸水浴灭酶1min,测420nm吸光值。1个酶活力单位(U)是指在上述条件下,反应体系中每分钟催化1umolABTS氧化所需酶量。(420nm处ABTS的摩尔吸光系数ε420=3.6*104cm-1·L·mol-1)
5.2滤纸酶活力(FPA)的测定:取0.5mL酶液和1.5mL 0.05mol/L的柠檬酸缓冲液(pH 4.5),加入滤纸条50mg(新华定量滤纸,约1cm×6cm),50℃水浴1h。在上述条件下,每小时由底物生成1μmol葡萄糖所需的酶量定义为一个酶活力单位(U)。反应后采用DNS法测定酶解产生的还原糖量。
5.3CMCase酶活力的测定:取1.5mL 1%CMC2Na柠檬酸缓冲液(pH 5.0),加入酶液0.5mL,50℃水浴30min。在上述条件下,每小时由底物生成1μmol葡萄糖所需的酶量定义为一个酶活力单位(U)。反应后采用DNS法测定酶解产生的还原糖量。
5.4β-葡萄糖苷酶活力的测定:取0.5mL酶液和1.5mL水杨酸苷柠檬酸缓冲液(pH4.5),50℃水浴1h。在上述条件下,每小时由底物生成1μmol葡萄糖所需的酶量定义为一个酶活力单位(U)。反应后采用DNS法测定酶解产生的还原糖量。
5.5果胶酶活力的测定:取0.25%果胶溶液0.5mL,蒸馏水1mL,酶液0.5mL,摇匀。50℃水浴1h。加入1.5mLDNS,煮沸5min,定容至20mL,在540nm下测吸光值。在上述条件下,每小时催化生成1μmol半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活单位(U)。
5.6木聚糖酶活力的测定:取pH 6.5PBS缓冲液2.2mL和1%的木聚糖溶液0.6mL,再加入0.2mL经适当稀释后的酶液,50℃水浴10min,加入2mLDNS终止反应,沸水浴10min,定容至20mL,540nm处测吸光值。在上述条件下,每分钟水解生成1μmol还原糖(以木糖/葡萄糖计)所需的酶量为一个酶活力单位(U)。
5.7蛋白酶活力的测定:取1%酪蛋白0.5mL和酶液1mL,40℃水浴10min。加入0.4mol/L三氯乙酸3mL终止反应。3000r/min离心3min。吸取上清1mL。加入5mL 0.4mol/LNa2CO3和0.5mL福林-酚试剂,40℃水浴20min,在650nm下测吸光值。在上述条件下,每小时由底物产生1μmol酪氨酸所需的酶量为一个酶活单位(U)。
5.8淀粉酶活力的测定:取2mL酶液及pH 5.5的柠檬酸缓冲溶液2mL,1%淀粉溶液2mL,摇匀,在40℃水浴5min,加入0.4mol/LNaOH 4mL终止反映,吸取反应2mL,加入2mLDNS,沸水浴5min,定容至20mL,540nm下测吸光值。在上述条件下以每分钟催化生成1μmol葡萄糖所需的酶量为一个酶活单位(U)。
上述虽然结合附图对本发明的具体实施方式进行了描述,但并非对本发明保护范围的限制,所属领域技术人员应该明白,在本发明的技术方案的基础上,本领域技术人员不需要付出创造性劳动即可做出的各种修改或变形仍在本发明的保护范围以内。

Claims (6)

1.一株来自白花丹参植物内生真菌,其特征是:为白黄小脆柄菇(Psathyrellacandolleana)BDF15,已于2015年11月4日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No.11415。
2.一种菌剂,其特征是:活性成分为权利要求1所述的白黄小脆柄菇(Psathyrellacandolleana)BDF15;所述菌剂为下述(1)或(2)菌剂:(1)用于制备木质素纤维素复合降解酶的菌剂;(2)用于降解木质素和纤维素的菌剂。
3.如权利要求1所述的来自白花丹参植物内生真菌在制备木质素纤维素复合降解酶中的应用。
4.如权利要求3所述应用,其特征是:具体应用时,将权利要求1所述的来自白花丹参植物内生真菌进行发酵培养,以发酵液作为木质素纤维素复合降解酶的活性成分。
5.如权利要求4所述应用,其特征是:所述发酵培养时发酵培养基各成分的浓度比为:葡萄糖:麸皮:牛肉膏:KH2PO4:MgSO4·7H2O:硫酸铜=20:20:5:3:1.5:0.2。
6.如权利要求4所述应用,其特征是:所述发酵培养时的培养温度为28±1℃,摇瓶培养5~6天。
CN201610015768.5A 2016-01-11 2016-01-11 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用 Active CN105543106B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610015768.5A CN105543106B (zh) 2016-01-11 2016-01-11 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610015768.5A CN105543106B (zh) 2016-01-11 2016-01-11 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105543106A CN105543106A (zh) 2016-05-04
CN105543106B true CN105543106B (zh) 2019-06-11

Family

ID=55822665

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610015768.5A Active CN105543106B (zh) 2016-01-11 2016-01-11 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105543106B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110024696B (zh) * 2019-03-08 2021-02-02 浙江工业大学 黄盖小脆柄菇及在制备天然抑菌剂中的应用
CN111406795B (zh) * 2020-03-16 2022-10-04 浙江工业大学 一种黄盖小脆柄菇代谢物在制备黄曲霉菌抑菌剂中的应用
CN117660199B (zh) * 2023-12-07 2024-06-11 新疆农业科学院微生物应用研究所(中国新疆—亚美尼亚生物工程研究开发中心) 一株白黄小脆柄菇、菌剂、甘草苷转化为甘草素的方法和应用

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5972872A (en) * 1994-12-22 1999-10-26 Novo Nordisk A/S Enzyme preparation with cellulytic activity
CN102676392A (zh) * 2011-04-08 2012-09-19 中国人民解放军第二军医大学 丹参内生真菌及其应用

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5972872A (en) * 1994-12-22 1999-10-26 Novo Nordisk A/S Enzyme preparation with cellulytic activity
CN102676392A (zh) * 2011-04-08 2012-09-19 中国人民解放军第二军医大学 丹参内生真菌及其应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Laccase production by psathyrella candolleana in a stirred-tank fermentor.;Fu K.等;《Research Progress in Paper Industry and Biorefinery(4th ISETPP)》;20101231;546-549 *
跨界融合构建复合菌群高效降解制浆造纸废水的研究;孙友友;《中国优秀硕士学位论文全文数据库》;20140115;17 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN105543106A (zh) 2016-05-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101503659B (zh) 一种哈茨木霉菌株及其应用
CN101974436B (zh) 一种木质纤维素降解菌及其应用
CN101591679B (zh) 利用混合菌种提高天然牧草生产燃料乙醇利用率的方法
CN101717728B (zh) 一株青霉菌及其用于催化水解木质纤维素的用途
CN103602592A (zh) 一株纤维素降解真菌及其菌剂的制备和应用
CN105543106B (zh) 一株来自白花丹参植物内生真菌及其应用
CN114381378B (zh) 降解木质素的产黄青霉及其应用
CN103305430B (zh) 一株产漆酶齿毛菌及其应用
CN105535100B (zh) 一种丹参茎叶中丹酚酸类成分的提取方法
CN105176838B (zh) 一株黑曲霉菌株及发酵菌剂及其应用
CN110527634A (zh) 一株西藏来源生产纤维素酶的哈茨木霉菌株及其应用
CN104860401A (zh) 一株米根霉菌株jhsw01在用于发酵有机废液和农林废弃物中的应用
CN103131639B (zh) 一种长枝木霉菌株及其应用
Koshy et al. Ethanol production from spent substrate of Pleurotus eous
CN103740675A (zh) 一种纤维素酶的生产方法
CN103305481B (zh) 一种发酵齿毛菌生产漆酶的方法
CN113201460B (zh) 一株药用真菌一色齿毛菌及其应用
CN105368715B (zh) 一种降解纤维素的嗜松青霉及其在秸秆发酵中的应用
CN111575194B (zh) 一种对秸秆降解的混合菌及其应用
CN114317381A (zh) 一种t级微生物复合菌剂及其制备方法与应用
CN103865803B (zh) β-葡萄糖苷酶高产菌及其在转化制备京尼平和白藜芦醇中的应用
CN103667075B (zh) 一种降解白酒酒糟纤维素的扩展青霉菌株
CN101724570B (zh) 一种降解纤维素的曲霉及其生产的菌剂
CN113801797B (zh) 高酶活功能微生物菌剂及其制备方法和应用
CN109161535A (zh) 一种提高白腐真菌产木质素降解酶酶活的发酵培养基及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant