CN105283560A - 基于纳米孔的通过混合的fret检测的核酸分析 - Google Patents

基于纳米孔的通过混合的fret检测的核酸分析 Download PDF

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Abstract

本文提供了利用纳米孔光学检测和分析聚合物诸如多核苷酸的多种方法、系统和装置，例如用于确定核酸的序列。在某些变化形式中，提供了用于确定多核苷酸的核苷酸序列的方法和系统，所述方法和系统包括当多核苷酸移位穿过纳米孔时测量混合的FRET信号以及从混合的FRET信号确定多核苷酸的核苷酸序列。

Description

基于纳米孔的通过混合的FRET检测的核酸分析
相关申请的交叉引用
本申请要求2013年5月24日递交的美国临时专利申请号61/827,519的优先权的权益，其内容以其整体被并入本文。
背景
在过去十年间开发的DNA测序技术已经彻底改革了生物科学，例如Lerner等人,TheAuk,127:4-15(2010)；Metzker,NatureReviewGenetics,11:31-46(2010)；Holt等人,GenomeResearch,18:839-846(2008)；并且具有彻底改革医疗实践的许多方面的可能性，例如，Voelkerding等人,ClinicalChemistry,55:641-658(2009)；Anderson等人,Genes,1:38-69(2010)；Freeman等人,GenomeResearch,19:1817-1824(2009)；Tucker等人,Am.J.HumanGenet.,85:142-154(2009)。然而，要实现这种可能性，仍然存在许多必须解决的挑战，包括减少每次运行测序的成本、简化样品制备、减少运行时间、增加读段(read)长度、改善数据分析等等，例如，Baker,NatureMethods,7:495-498(2010)；Kircher等人,Bioessays,32:524-536(2010)；Turner等人,AnnualReviewofGenomicsandHumanGenetics,10:263-284(2009)。利用纳米孔的单分子测序可以解决这些挑战中的一些，例如，Maitra等人,Electrophoresis,33:3418-3428(2012)；Venkatesan等人,NatureNanotechnology,6:615-624(2011)；然而，这种方法具有其自身的一套技术困难，诸如，可靠的纳米孔制造、DNA移位率的控制、核苷酸区分、对来自纳米孔传感器的大型阵列的电信号的检测等等，例如，Branton等人,NatureBiotechnology,26(10):1146-1153(2008)；Venkatesan等人(以上引用)。
核苷酸的光学检测已经作为纳米孔测序领域中的一些技术困难的潜在的解决方案被提出，例如Huber,国际专利公布WO2011/040996；Russell,美国专利6,528,258；Pittaro,美国专利公布2005/0095599；Joyce，美国专利公布2006/0019259；Chan，美国专利6,355,420；McNally等人,NanoLett.,10(6):2237-2244(2010)等等。然而，由于多种原因，并未实现基于光学的纳米孔测序，所述多种原因包括缺乏合适的制造技术以及缺乏对此类系统的元件如何相互作用的认识。
鉴于上述内容，如果存在允许对分析物诸如核酸的序列的成功的光学感测和分析的光学元件的可用的材料和配置，这对于通常的纳米孔传感器技术和其特定应用，诸如基于光学的纳米孔测序将是有利的。
概述
本文提供了在微流控和/或纳米流控装置中光学检测和分析诸如多核苷酸的聚合物用于确定核酸的序列的多种方法，所述微流控和/或纳米流控装置诸如使用纳米孔的那些。
在某些变化形式中，一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法包括以下步骤：(a)使多核苷酸，例如单链多核苷酸或双链多核苷酸移位穿过纳米孔，以便多核苷酸的核苷酸顺序经过与纳米孔毗邻放置的FRET对的第一成员，当核苷酸离开纳米孔时多个核苷酸处于FRET对的第一成员的FRET距离内并且核苷酸的至少一部分被FRET对的第二成员标记；(b)使与纳米孔毗邻的FRET对暴露于光束以便FRET在FRET距离内的FRET对的第一成员与多个第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；(c)当多核苷酸移位穿过纳米孔时测量混合的FRET信号；以及(d)从混合的FRET信号确定多核苷酸的核苷酸序列。在一些实施方案中，纳米孔被布置在固相膜中并且FRET对的第一成员附接至固相膜，与所述纳米孔毗邻。在其他实施方案中，纳米孔是蛋白质纳米孔并且FRET对的第一成员附接至蛋白质纳米孔。
在另一变化形式中，一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法包括以下步骤：(a)使多核苷酸，例如单链多核苷酸或双链多核苷酸移位穿过具有出口的纳米孔，以便多核苷酸的核苷酸在离开纳米孔后顺序通过FRET区域，FRET区域在此通过期间包含多个核苷酸并且核苷酸的至少一部分被FRET对的至少一个第二成员标记并且FRET对的至少一个第一成员处于FRET区域内；(b)使FRET区域内的FRET对的第一成员和第二成员暴露于光束以便FRET在FRET对的第一成员和第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；(c)当多核苷酸移动穿过FRET区域时测量混合的FRET信号；以及(d)从混合的FRET信号确定多核苷酸的核苷酸序列。
在另一变化形式中，一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法包括以下步骤：(a)使具有标记的核苷酸的多核苷酸，例如单链多核苷酸或双链多核苷酸移位穿过纳米孔，所述纳米孔被定制尺寸(dimension)以便核苷酸上的标记物被限制以抑制FRET反应，核苷酸上的标记物作为FRET对的第二成员，并且以便多核苷酸的核苷酸在离开纳米孔后顺序通过FRET区域，FRET区域在此通过期间包含多个核苷酸并且FRET对的至少一个第一成员处于FRET区域内；(b)使FRET区域内的FRET对的第一成员和第二成员暴露于光束以便FRET在第一成员和第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；(c)当多核苷酸移动穿过FRET区域时测量混合的FRET信号；以及(d)从混合的FRET信号确定多核苷酸的核苷酸序列。
在许多实施方式和应用中例证了多种方法、系统和装置，其中的一些被总结如下并且贯穿本说明书。
附图简述
图1A示意性地阐明了具有对用单一种类的受体分子标记的多核苷酸分析物进行的混合的FRET信号采集的一个实施方案。
图1B显示了用单一种类的受体分子标记的测试多核苷酸的混合的FRET信号的数据。
图1C示意性地阐明了具有对用两种受体分子标记的多核苷酸分析物进行的混合的FRET信号采集的另一个实施方案。
图1D显示了用两种受体分子标记的测试多核苷酸的混合的FRET信号的数据。
图2A至2C阐明了杂合生物传感器的一个实施方案。
图2D阐明了通过使用寡核苷酸杂交来放置FRET对的成员的装置的实施方案。
图2E阐明了杂合纳米孔的一个实施方案，其中固态膜(201)的表面涂覆了疏水性层(202)，脂质层(203)粘附于疏水性层(202)上。脂质与插入的孔蛋白质形成千兆欧姆封接(gigaohmseal)。
详述
虽然本文描述的多种方法、系统和装置服从于多种修改形式和替代形式，其细节已经通过举例显示于附图中并且将被详细描述。然而应该理解的是，意图并非限制于所描述的具体的实施方案。相反，意图覆盖落在本发明的精神和范围内的所有修改形式、等价物和替代物。例如，为了阐明的目的显示了具体的纳米孔类型和数目、具体的标记物、FRET对、检测方案和制造方法。然而应该领会的是，本公开内容并非意图被限制在这一方面，因为可以利用其他类型的纳米孔、纳米孔阵列和其他的制造技术来实施本文所讨论的系统的多个方面。关于某些方面的指导见于本领域普通技术人员所熟知的许多可得的参考文献和论述中，包括，例如，Cao,Nanostructures&Nanomaterials(ImperialCollegePress,2004)；Levinson,PrinciplesofLithography，第二版(SPIEPress,2005)；Doering和Nishi,编辑,HandbookofSemiconductorManufacturingTechnology,第二版(CRCPress,2007)；Sawyer等人,ElectrochemistryforChemists,第2版(WileyInterscience,1995)；Bard和Faulkner,ElectrochemicalMethods:FundamentalsandApplications,第2版(Wiley,2000)；Lakowicz,PrinciplesofFluorescenceSpectroscopy,第3版(Springer,2006)；Hermanson,BioconjugateTechniques,第二版(AcademicPress,2008)等等，其相关部分通过引用并入本文。
本文所描述的多种方法和系统涉及使用纳米孔和FRET对以测量分析物，诸如聚合物分析物的性质。FRET对通常是一个或更多个FRET供体和一个或更多个FRET受体，其中每一个供体能够与每一个受体发生FRET反应。在一方面，这意味着，FRET对的供体具有与受体的吸收光谱基本上重叠的发射光谱。在另一方面，供体和受体的跃迁偶极子(transitiondipole)必需以允许有效能量转移的方式对齐(aligned)。某些变化形式部分地基于在以下条件下使用FRET对的识别和鉴别：其中在检测事件期间多个FRET受体产生FRET信号以便混合的FRET信号被收集。在一些方面，某些变化形式部分地还基于对纳米孔的FRET抑制性质的发现和鉴别，和应用该性质以使得能够检测移位穿过纳米孔的标记的分析物。人们认为，尽管本文描述的变化形式并不意图因此被限制，可选择具有定制尺寸的孔洞(bore)的纳米孔以便FRET对的标记物在移位穿过纳米孔时不能够定向参与FRET相互作用。基于纳米孔的经限制的直径，纳米孔的孔洞中的多核苷酸的标记物的偶极子在其转动自由度方面被限制。偶极子对齐与附接至纳米孔的相应的FRET对的对齐的该减少极大地限制了FRET的效率。标记的多核苷酸可以在离开纳米孔之后参与FRET相互作用，届时分析物(例如多核苷酸)上的FRET受体或供体恢复转动自由度，这允许混合的FRET事件。
取决于被检测的分析物的类型、所采用的供体和受体的类型、纳米孔、供体和受体的物理排列、分析物是否被供体或受体标记等等，涵盖了广泛范围的实施方案。在一个实施方案中，测量的分析物是受体标记的聚合物，特别是受体标记的多核苷酸。在后一实施方案的一个种类中，多核苷酸分析物的不同核苷酸被一种或更多种不同种类的受体标记，使得多核苷酸的核苷酸序列可以通过测量当其移位穿过纳米孔时产生的混合的FRET信号来确定。在另一种实施方案中，测量的分析物是供体标记的聚合物，特别是供体标记的多核苷酸。多核苷酸的序列可以通过测量当其移位穿过纳米孔时的混合的FRET信号来确定。在又另一个实施方案中，多核苷酸分析物的四种核苷酸的至少一种被FRET对的成员标记。被标记的核苷酸在多核苷酸中的位置通过使标记的多核苷酸移位穿过标记的纳米孔并测量FRET事件来确定。通过标记同一多核苷酸样品的剩余的核苷酸以及随后使所述样品移位穿过标记的纳米孔，产生多核苷酸的子序列。此类子序列可以被重新排列，产生多核苷酸的全部序列。图1A中示意性地阐明了以上方面和实施方案的一些。聚合物分析物(1000)，诸如多核苷酸，被例如电泳驱动穿过纳米孔(1002)，所述纳米孔(1002)限制聚合物(1000)的构象以便其单体单元以与其在聚合物中的一级序列相同的顺序移位穿过纳米孔。此外，如以上提及的，每当受体标记的单体单元处于纳米孔(1002)的孔洞中时，此类受体与其FRET对中的供体(例如1012)之间的FRET相互作用被抑制。此抑制通常意味着，即使此类受体处于供体的FRET距离内，由于受体和供体的偶极子的不利的定向，不会产生可检测的FRET信号。另一方面，一旦受体标记的单体单元从纳米孔的孔洞中脱离进入FRET区域(1008)，强FRET信号立刻产生(由于供体(1012)的接近)，之后随着受体和供体之间的距离因为聚合物(1000)的移位携带受体离开FRET区域(1008)而增加，信号迅速降低。FRET区域(1008)，其是紧邻纳米孔(1002)的出口(1015)的空间区域，由当聚合物移位穿过并且离开纳米孔(1002)时供体(1012)和附接至聚合物(1000)的受体标记物之间的FRET距离定义。在图1A中，只有一种类型的单体单元(显示为实心圆形(1004))被标记；其余的单体单元(显示为斑点圆形(1006))未被标记。如所示的，三个标记的单体单元(以“1”、“2”和“3”表示)处于FRET区域(1008)内。当供体(1012)被激发光束(1014)激发时，产生FRET相互作用(1010)并且单体单元上的三个受体产生FRET发射(1016)，其被检测器(1018)收集并且被记录为混合的FRET信号强度(1029)。来自单体单元1、2和3上的受体的信号强度贡献以曲线(分别为1031、1032和1033)示出，其通过检测器(1018)组合以给出混合的FRET信号，以虚线曲线(1022)显示。在下面描述的实例中，对应于图1A的实施方案的实施方案产生了图1B中显示的序列(1082)3'-AACGGCCCTICGATCTCATTGAGGATGAGAGGAGAGTCAAAGGAAGA-ACGAGGATGAGAGGAGAGTGAGAGCAAAGGAAGAACGAGGATGAGAGG-AGAGTGAGAGCAAAGGAAGAA-5'(SEQIDNO：1)的数据，其中只有胞嘧啶被标记。在图1B中，仅显示被标记的C的相对位置以便能够鉴别数据中这样的位置和峰之间的对应性。强度峰由诸如(1080)的星号指示。数据是相对混合的FRET信号强度对比以序列(1082)的3’-为先的方向的移位的时间的图。
提供了以下实施方案：其中将不同的受体标记物附接至不同种类的单体单元，以便针对不同种类的单体单元产生具有不同特征例如频率、强度、波长等的信号，从而允许区分不同种类的单体单元。在一个这样的实施方案中，使用至少两种不同的受体标记物来标记靶多核苷酸的不同的核苷酸。用于这样的实施方案的装置示于图1C中。多核苷酸(1070)包含以第一受体标记的胞嘧啶(或胞苷或脱氧胞苷)(实心圆形，1064)、以第二受体标记的胸苷或胸腺嘧啶(交叉的平行线圆形，1066)、以及未标记的鸟嘌呤和腺嘌呤(斑点圆形，1068)。与以上相同，当多核苷酸(1070)移位穿过纳米孔(1002)时，核苷酸离开并进入FRET区域(1008)，其中受体(如果存在)变得能够参与FRET反应并且产生FRET发射(1062)。这样的发射被检测器(1060)收集，所述检测器(1060)具有根据采用的不同受体标记物的不同的信号特征(诸如通过例如分色镜和/或滤光器能够被分离的波长)分离FRET发射(1062)的常规光学部件。结果，初始收集的混合的FRET信号被分成代表来自不同受体的混合的FRET信号的两种或更多种信号，其可以通过常规部件(1072)进一步处理。还在以下实例中更全面地描述了对应于图1C的实施方案的实施方案产生了图1D中显示的序列(1092)5'GCTATGTGGCGCGGTATTATTAAGAAGGAGACTGAGAGGAGAGAAGGAGCAAGAAGGAAATGAGAGCGAGAGGAGAAGAAGGAGGAAGAAG3'(SEQIDNO：2)的数据，其中只有胞嘧啶(或胞苷或脱氧胞苷)和胸苷或胸腺嘧啶被标记。来自附接至T的第一受体的信号以虚线(1095)指示并且来自附接至C的第一受体的信号以实线(1096)指示。在图1D中，标记的T和C的位置以加粗字母显示(分别为1051、1052、1053、1054、1055和1056)。图中对应于标记的T和C的强度峰以相同的参考数字指示。数据是相对混合的FRET信号强度对比以序列(1070)的3’-为先的方向的移位的时间的图。
如以上提及的，在一方面，可通过以下步骤实施方法：(a)使多核苷酸，例如单链多核苷酸或双链多核苷酸移位穿过纳米孔，以便多核苷酸的核苷酸顺序经过与纳米孔毗邻放置的FRET对的第一成员，当核苷酸离开纳米孔时多个核苷酸处于FRET对的第一成员的FRET距离内并且核苷酸的一部分被FRET对的第二成员标记；(b)使与纳米孔毗邻的FRET对暴露于光束以便FRET在FRET距离内的FRET对的第一成员和多个第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；(c)当多核苷酸移位穿过纳米孔时测量混合的FRET信号；以及(d)从混合的FRET信号确定多核苷酸的核苷酸序列。在一些实施方案中，纳米孔是杂合纳米孔，所述杂合纳米孔包含插入固相膜中的孔中的蛋白质纳米孔，如以下更全面地描述的。在杂合纳米孔中，FRET对的第一成员可以使用常规的连接化学反应(linkingchemistries)，诸如“点击(click)”化学反应，例如Kolb等人,Angew.Chem.Int.Ed.,4):2004-2021(2001)等等直接附接至蛋白质纳米孔，或可选地直接附接至固相膜。在一个实施方案中，FRET对的第一成员直接或间接地附接至蛋白质纳米孔，例如，如参考图2D所讨论的。在另一个实施方案中，FRET对的第一成员是供体，诸如量子点。量子点通常比受体尤其是有机染料受体大的多，其通常具有范围为从200道尔顿至2000道尔顿的分子量。因此，为了使FRET在量子点供体和多重标记的聚合物分析物之间发生，在同一时间将多个受体带入量子点的FRET距离内。在这样的情况下，在相同的时间间隔内产生多重FRET信号，随着相同的时间间隔的推移，这样的信号被收集，从而产生混合的FRET信号。
纳米孔和纳米孔测序
本文所描述的与多种方法、系统和装置一起使用的纳米孔可以是固态纳米孔、蛋白质纳米孔或包括配置在固态膜或类似构架中的蛋白质纳米孔的杂合纳米孔。纳米孔的重要特征包括(i)限制分析物，特别是聚合物分析物，使其顺序通过检测区域，(ii)与移位手段的相容性，即，无论什么方法都可以被用于驱动分析物穿过纳米孔，以及(iii)对纳米孔的腔或孔洞内的FRET对的成员的FRET抑制。
纳米孔可以由多种材料制造，所述材料包括但不局限于，氮化硅(Si3N4)、二氧化硅(SiO2)等等。用于诸如DNA测序的分析应用的纳米孔的制造和操作在以下示例性的参考文献中公开，其通过引用被并入：Russell,美国专利6,528,258；Feier,美国专利4,161,690；Ling,美国专利7,678,562；Hu等人,美国专利7,397,232；Golovchenko等人,美国专利6,464,842；Chu等人,美国专利5,798,042；Sauer等人,美国专利7,001,792；Su等人,美国专利7,744,816；Church等人,美国专利5,795,782；Bayley等人,美国专利6,426,231；Akeson等人,美国专利7,189,503；Bayley等人,美国专利6,916,665；Akeson等人,美国专利6,267,872；Meller等人,美国专利公布2009/0029477；Howorka等人,国际专利公布WO2009/007743；Brown等人,国际专利公布WO2011/067559；Meller等人,国际专利公布WO2009/020682；Polonsky等人,国际专利公布WO2008/092760；VanderZaag等人,国际专利公布WO2010/007537；Yan等人,NanoLetters,5(6):1129-1134(2005)；Iqbal等人,NatureNanotechnology,2：243-248(2007)；Wanunu等人,NanoLetters,7(6):1580-1585(2007)；Dekker,NatureNanotechnology,2:209-215(2007)；Storm等人,NatureMaterials,2:537-540(2003)；Wu等人,Electrophoresis,29(13):2754-2759(2008)；Nakane等人,Electrophoresis,23:2592-2601(2002)；Zhe等人,J.Micromech.Microeng.,17:304-313(2007)；Henriquez等人,TheAnalyst,129:478-482(2004)；Jagtiani等人,J.Micromech.Microeng.,16:1530-1539(2006)；Nakane等人,J.Phys.Condens.Matter,15R1365-R1393(2003)；DeBlois等人,Rev.Sci.Instruments,41(7):909-916(1970)；Clarke等人,NatureNanotechnology,4(4):265-270(2009)；Bayley等人,美国专利公布2003/0215881等等。简言之，在一方面，形成穿过基质的1-50nm的通道，所述基质通常是膜，分析物诸如DNA被引导以移位穿过所述通道。产生纳米孔的固态方法提供了稳健性和耐久性以及调整纳米孔的大小和形状的能力、在晶片规模上制造高密度的纳米孔阵列的能力、与基于液体的系统相比优越的机械、化学和热特性以及用电子或光学读出技术询问的可能性。另一方面，生物纳米孔提供了可再现的狭窄的孔洞或腔，尤其是在1-10纳米范围内的孔洞或腔，以及提供了用于定制纳米孔的物理和/或化学性质并且用于通过常规的蛋白质工程化方法直接或间接附接诸如FRET供体或受体的基团或元件的技术。蛋白质纳米孔通常依赖于柔性脂质双层用于机械支撑，并且以精确的尺寸制造固态纳米孔仍然具有挑战性。固态纳米孔和生物纳米孔的组合，尤其是生物孔蛋白质的精确性与固态纳米孔的稳定性的组合，克服了这些缺点中的一些。对于光学读出技术，杂合纳米孔提供了纳米孔的精确位置，其极大地简化了数据的获取。插入脂质双层的纳米孔蛋白质的侧向扩散使得光学检测具有挑战性。因为杂合纳米孔的生物部分不依赖于脂质双层中的插入，对这种蛋白质进行的修饰的自由度极大地增加，例如，不会自发插入脂质双层中的遗传修饰的纳米孔蛋白质可以仍然被用作杂合纳米孔的蛋白质组件。双层去稳定剂(Bilayerdestabilizingagents)诸如量子点可用于标记杂合纳米孔的蛋白质组件。
在一个实施方案中，用于检测一种或更多种分析物，诸如多核苷酸分析物的装置或系统包括以下元件：(a)分离第一室和第二室的固相膜，固相膜具有将第一室和第二室通过孔洞连接的至少一个孔眼(aperture)；以及(b)附接至至少一个孔眼的荧光共振能量转移(FRET)对的第一成员，以便每当具有附接至其的FRET对的多个第二成员的一种或更多种分析物穿过孔洞时，多个第二成员被限制以在FRET对的第一成员的FRET距离内顺序通过。在一些实施方案中，固相膜已经用低能量离子束处理以漂白其自体荧光。
在另一个实施方案中，提供了一种用于检测多种分析物或具有多个连接的单体单元诸如核苷酸的聚合物分析物的装置或系统。用于确定多核苷酸的序列的这样的实施方案可包括一种或更多种以下的元件：(a)将第一室和第二室分离的固相膜，固相膜具有连接第一室和第二室的至少一个孔眼，并且在至少一个表面上具有疏水性涂层；(b)脂质层可以被布置在疏水性涂层上；(c)固定在孔眼中的蛋白质纳米孔，蛋白质纳米孔具有孔洞，所述孔洞具有出口，并且蛋白质纳米孔与脂质层相互作用以与固相膜在孔眼中形成封接以便第一室和第二室之间的流体连通仅在通过蛋白质纳米孔的孔洞时发生，并且蛋白质纳米孔被定制尺寸以便多核苷酸的核苷酸顺序通过孔洞的出口并且以便每当多核苷酸的核苷酸被FRET对的第二成员标记时，在孔洞内的此类第二成员和孔洞外的FRET对的第一成员之间的FRET被抑制；和/或(d)附接至固相膜或蛋白质纳米孔的FRET对的第一成员，以便每当多核苷酸的核苷酸从孔洞中脱离时，多个核苷酸处于FRET对的第一成员的FRET距离内。
在一些实施方案中，疏水性涂层是任选的，因为固相膜的表面本身是足够疏水性的以便脂质层稳定地粘附至其。至少一个孔眼将具有与固相膜的表面连接或邻接的内部表面或壁。在一些实施方案中，至少一个孔眼将是多个孔眼，并且多个孔眼可以被排列为规律的阵列，诸如孔眼的直线阵列，其间隔部分地取决于采用的FRET对的数目和种类以及所使用的光学检测系统。在一些实施方案中，每一个孔眼具有直径，其在一些实施方案中使得蛋白质纳米孔基本上固定在其中。在一些实施方案中，基本上固定意指，相对于孔眼的壁，蛋白质纳米孔可以在固相膜的平面上移动不多于5nm。在另一个实施方案中，基本上固定意指，相对于孔眼的壁，蛋白质纳米孔可以在固相膜的平面上移动不多于5nm。蛋白质纳米孔的每一个具有孔洞或通道或腔，当蛋白质纳米孔被固定在孔眼中时，其允许第一室和第二室之间的流体连通。通常，孔洞与孔眼同轴地对齐。疏水性层的一种功能是提供将脂质保持在至少一个孔眼中和/或紧邻至少一个孔眼的表面。这样的脂质进而允许蛋白质纳米孔以具有功能的构象并以与孔眼的壁形成液体封接的方式布置并固定在孔眼中。在一些实施方案中，这样的封接还防止电流通过蛋白质纳米孔周围的第一室和第二室之间。在一些实施方案中，带电荷的分析物被布置在第一室中的电解质溶液中并且通过建立跨越固相膜的电场移位穿过蛋白质纳米孔的孔洞进入第二室的电解质溶液中。为了便于制造，在一些实施方案中疏水性涂层将在固相膜的一个表面和孔眼的壁上。
在一些实施方案中，固相膜用低能量离子束处理以漂白其自体荧光，如以下更全面地描述的。
图2A-2C是杂合生物传感器的图。在分隔两个室，或分隔顺式(101)和反式(107)的固态基质或固相膜(103)中钻入纳米尺寸的孔洞(102)。附接至带电荷的聚合物(105)，诸如单链DNA或双链DNA的蛋白质生物传感器(例如蛋白质纳米孔)(104)通过电泳转运嵌入固态纳米孔洞中。在图1C中蛋白质生物传感器被插入。在纳米尺寸的孔洞中，其表面具有疏水性涂层(106)并且可具有附接至其的脂质层(109)。纳米孔可具有两侧或两个孔口(orifice)。一侧被称为“顺式(cis)”侧并且面对(-)负电极或带负电荷的缓冲液/离子区室或溶液。另一侧被称为“反式(trans)”侧并且面对(+)电极或带正电荷的缓冲液/离子区室或溶液。可以通过施加穿过纳米孔的电场牵拉或驱动生物聚合物诸如标记的核酸分子或聚合物穿过孔，例如，从纳米孔的顺式侧进入并且从纳米孔的反式侧离开。
图2D显示了插入在固态膜(103)中钻出的孔眼内的蛋白质纳米孔(104)。附接至蛋白质纳米孔(104)的是寡核苷酸(108)，互补的第二寡核苷酸(111)与其杂交。所述第二寡核苷酸(111)具有附接至其的一个或更多个FRET对的第一成员或第二成员(110)。可选地，FRET对的成员可以直接附接至蛋白质纳米孔的氨基酸。例如，溶血素亚基可以通过常规遗传工程化技术被修饰以将半胱氨酸取代为毗邻纳米孔出口的合适定位的氨基酸，例如，苏氨酸129。寡核苷酸或FRET对的成员可以使用常规的接头化学反应，例如，Hermanson(以上引用)经由半胱氨酸的巯基附接。
在一些实施方案中，利用了杂合纳米孔，尤其是用于多核苷酸的基于光学的纳米孔测序。这样的实施方案包括固态孔口或孔眼，蛋白质生物传感器诸如蛋白质纳米孔稳定地插入其中。蛋白质纳米孔(例如α-溶血素)可附接至带电荷的聚合物(例如，双链DNA)，其在施加的电场中充当拖拽力，并且其可用于引导蛋白质纳米孔进入固态膜中的孔眼中。在一些实施方案中，在固态基质中的孔眼被选择以略微小于蛋白质，从而防止蛋白质移位穿过孔眼。相反，蛋白质将被嵌入固态孔口中。固态基质可以被修饰以在表面产生活性位点，其允许插入的蛋白质生物传感器的共价附接，产生稳定的杂合生物传感器。
生物传感器中聚合物的附接位点可通过蛋白质工程化产生，例如可以构建将允许聚合物的特异性结合的突变体蛋白。作为一个实例，可以将半胱氨酸残基插入蛋白质的期望位置。半胱氨酸可以代替天然存在的氨基酸或可以被掺入作为另外的氨基酸。必须小心的是不破坏蛋白质的生物功能。随后，聚合物(即，DNA)的末端的伯胺基团利用异双功能交联剂(hetero-bifunctionalcrosslinker)(例如，SMCC)被活化。随后，活化的聚合物被共价地附接至蛋白质生物传感器的半胱氨酸残基。在一些实施方案中，聚合物与生物传感器的附接是可逆的。通过实施可切割的交联剂，引入容易断裂的化学键(例如，S-S键)并且在将生物传感器插入固态孔眼中后去除带电荷的聚合物。
对本领域技术人员而言明显的是，用于将带电荷的聚合物附接至蛋白质生物传感器的共价或非共价的附接方法的广泛不同的方法是可能的并且以上描述的方法仅充当实例。本领域技术人员还将意识到，多种不同的聚合物可以被用作拖拽力，包括，但不局限于，单链DNA或双链DNA、聚乙二醇(PEG)、聚乙烯吡咯烷酮(PVP)、多聚-L-赖氨酸、直链多糖等。还明显的是，这些聚合物可在给定的pH下表现出负(-)电荷或正(+)电荷，且电场的极性可相应调整以将聚合物-生物传感器复合物拉入固态孔道中。
在一些实施方案中，供体荧光团附接至蛋白质纳米孔。随后，通过施加跨固态纳米孔洞的电场将该复合物插入固态孔道或纳米孔洞(直径3-10nm)直到蛋白质纳米孔被转运进入固态纳米孔洞中以形成杂合纳米孔。杂合纳米孔的形成可以通过以下来验证：(a)基于固态纳米孔洞的部分阻断，插入的蛋白质纳米孔导致电流的下降和(b)供体荧光团的光学检测。
形成稳定的杂合纳米孔之后，可以将单链的、荧光标记的(或受体标记的)DNA添加至顺式室(具有(+)电极的室)。施加的电场迫使带负电荷的ssDNA移位穿过杂合纳米孔，在此期间标记的核苷酸靠近供体荧光团的附近。在某些变化形式中，可以利用双链DNA。
可以以多种方式制备固态或合成的纳米孔，如在以上引用的参考文献中例证的。在一些实施方案中，氦离子显微镜可以被用于在多种材料中钻出合成的纳米孔，例如，如由Yang等人,Nanotechnolgy,22:285310(2011)公开的，其通过引用被并入本文。支撑已经被处理为自支撑膜的薄膜材料例如氮化硅的一个或更多个区域的芯片，被引入氦离子显微镜(HIM)室。当显微镜被设置为低放大倍数时使用HIM发动机控制以将自支撑膜引入离子束的路径。包括聚焦和消像散(stigmation)的光束参数在毗邻自支撑膜的区域但是针对固体基质被调节。适当地固定参数后，芯片位置被移动使得自支撑膜区域集中在离子束扫描区域并且光束被消隐(thebeamisblanked)。HIM的视场被设置为足以包含整个预期的纳米孔模式且足以在未来的光学读出中有用(即取决于光学放大倍数、相机分辨率等)的维度(以μm计)。随后，跨越整个视场在导致足以移除所有或大部分的膜自体荧光的总离子剂量的像素停留时间(pixeldwelltime)下使离子束光栅化一次。随后，将视场设置为合适的值(小于以上所用的值)以执行单个纳米孔或纳米孔阵列的刻蚀界定的铣削(lithographically-definedmilling)。模式的像素停留时间被设置以产生一个或更多个预定直径的纳米孔，通过在样品处理前使用校准样品来确定。针对单一芯片上的每一个期望的区域和/或针对引入HIM室中的每一个芯片，重复整个过程。
在一些实施方案中，可以修饰固态基质以在表面产生活性位点，其允许插入的蛋白质生物传感器的共价附接；或以使其更加适合于给定的应用的方式来修饰表面性质。此类修饰可以是共价或非共价性质的。共价表面修饰包括硅烷化步骤，其中有机硅烷化合物结合至固体表面的硅醇基团。例如，烷氧基硅烷的烷氧基团被水解以形成含有硅醇的物质。这些硅烷的反应包括四个步骤。首先，不稳定基团发生水解反应。之后是寡聚物的缩合。寡聚物随后与基质的羟基形成氢键。最后，在干燥或固化期间，与基质形成共价键，伴随水的损失。对于共价附接，可采用具有活性侧基的有机硅烷。这样的侧基由以下组成，但不局限于以下：环氧侧链、醛、异氰酸酯、异硫氰酸酯、叠氮化物或炔烃(点击化学反应)(仅举数例)。对于本领域技术人员明显的是，将蛋白质共价附接至表面的多种方式是可能的。例如，有机硅烷上的某些侧基在能够结合蛋白质之前可能需要被活化(例如，用N-羟基琥珀酰亚胺酯活化伯胺或羧基侧基)。将蛋白质附接至固体表面的另一种方式可通过将一个亲和伴侣附接至蛋白质并且将第二亲和伴侣置于固体表面的亲和结合来实现。此类亲和对由以下的组组成，但不局限于以下：生物素-链霉亲和素、抗原-抗体以及适体和相应的靶分子。
在一个实施方案中，固态纳米孔的表面修饰包括用使表面疏水的有机硅烷处理。此类有机硅烷包括但不局限于，烷烃硅烷(alkanesilane)(例如，十八烷基二甲基氯硅烷)或修饰的烷烃硅烷诸如具有5至30个碳原子的烷烃链长的氟化烷烃硅烷。随后，可以用在戊烷中的脂质的稀溶液处理疏水性表面。溶剂干燥和将表面浸入水性溶液中之后，脂质将在表面自发形成层。固体表面上的脂质层可证明有利于杂合纳米孔的形成。固相上的脂质层可减少蛋白质和固态纳米孔之间的泄漏电流并且其可增加插入的蛋白质孔的稳定性。将低电容固体基质和所述基质的脂质涂层组合可以使杂合纳米孔系统服从于基于由DNA移位穿过杂合纳米孔产生的电流波动的电子读出。为用这种系统实现电子读出，必须将减少未修饰的DNA的移位速度的手段与脂质涂覆的杂合纳米孔组合。可将分子马达诸如聚合酶或解旋酶与杂合纳米孔组合并且有效地减少DNA穿过杂合纳米孔的移位速度。用来涂覆表面的脂质可以来自鞘脂类、磷脂类或甾醇类的组。
用于测序生物聚合物或分子(例如，核酸)的方法和/或系统可以包括激发附接至孔或纳米孔的一种或更多种供体标记物。生物聚合物可以移位穿过孔或纳米孔，其中生物聚合物的单体被一种或更多种受体标记物标记。在标记的单体经过、离开或进入孔或纳米孔时、之后，能量可以从激发的供体标记物转移到单体的受体标记物。可以检测由于能量转移由受体标记物发射的能量，其中由受体标记物发射的能量可与生物聚合物的单一或特定单体(例如，核苷酸)相对应或相关联。随后，基于来自单体受体标记物的发射的能量的检测可推断或测序生物聚合物的序列，所述单体受体标记物允许鉴别标记的单体。孔、纳米孔、通道(channel)或通路(passage)，例如，离子可渗透的孔、纳米孔、通道或通路可用于本文描述的系统和方法。
纳米孔可具有附接的一种或更多种标记物。在一些实施方案中，标记物是福斯特共振能量传递(ForsterResonanceEnergyTransfer,FRET)对的成员。此类标记物可包括有机荧光团、化学发光标记物、量子点、金属纳米颗粒和荧光蛋白。核酸的每个核苷酸可具有一个独特的标记物。附接至核苷酸的标记物由以下的组组成：有机荧光团、化学发光标记物、量子点、金属纳米颗粒和荧光蛋白。孔蛋白质中的标记物附接位点可通过蛋白质工程化产生，例如，可构建将允许标记物的特异性结合的突变体蛋白质。作为实例，可将半胱氨酸残基插入蛋白质的期望的位置，其插入可以被用于附接标记物的巯基(SH)基团。半胱氨酸可代替天然存在的氨基酸或可被掺入作为另外的氨基酸。必须小心的是不破坏蛋白质的生物功能。马来酰亚胺-活化的标记物随后共价地附接至蛋白质纳米孔的巯基残基。在一个实施方案中，标记物与蛋白质纳米孔的附接或将标记物附接在核酸上是可逆的。通过实施可切割的交联剂，引入容易断裂的化学键(例如，S-S键或pH不稳定的键)并且当满足相应的条件时可以将标记物去除。
纳米孔或孔可被一种或更多种供体标记物标记。例如，纳米孔的顺式侧或表面和/或反式侧或表面可以被一种或更多种供体标记物标记。标记物可以附接至孔或纳米孔的底部或附接至组成纳米孔或孔的其他部分或单体。标记物可以附接至纳米孔跨越穿过的膜或基质的部分，或附接至接头或其他分子，所述接头或其他分子附接至膜、基质或纳米孔。纳米孔或孔的标记物可以位于或附接在纳米孔、基质或膜上，使得孔标记物可以接近移位穿过孔的生物聚合物例如核酸的受体标记物。供体标记物可具有相同的或不同的发射光谱或吸收光谱。可通过共价或非共价相互作用实现孔结构的标记。
供体标记物可以被置于离纳米孔的孔道尽可能近的位置而不引起损害核酸移位穿过纳米孔的阻塞。孔标记物可具有多种合适的性质和/或特征。例如，孔标记物可具有满足特定需求的能量吸收性质。孔标记物可具有从例如约0至约1000nm或从约200nm至约500nm范围的大的辐射能量吸收截面。孔标记物可吸收高于核酸标记物的能量吸收的特定能量范围内的辐射。孔标记物的吸收能量可以根据核酸标记物的吸收能量调整，以控制能量转移藉以可在两种标记物之间发生的距离。孔标记物可以持续至少10^6或10^9的激发和能量转移循环是稳定的且有功能的。
处理固相膜以减少自体荧光
在一些实施方案中，用低能量离子束处理微机电系统(MEMS)材料的固相膜以漂白其自体荧光。通常通过指导离子束至MEMS材料的表面区域进行这样的处理，所述离子束以足够高的能量以在MEMS材料的表面或邻近其表面引起MEMS材料中的物理变化以破坏有助于自体荧光的结构或使其失活，但不以发生融化、汽化、显著的变形或喷溅这样的能量。所需的最小能量通过从零开始逐渐地增加光束能量并测量随着增加的光束能量的自体荧光的减少可容易地在逐个材料(material-by-material)的基础上确定。如本文所用的，术语“自体荧光”与“背景荧光”同义，被用于指当用选择的以激发不是MEMS材料的部分的荧光标记物的光源激发后，从位于或接近MEMS材料的表面的源发出的荧光。因此，MEMS材料中的自体荧光取决于光源的频率。在一方面，选择光源的频率以激发有机荧光染料，使得该方法减少在可见光范围内的频率以及从近红外到近紫外的频率的自体荧光。MEMS材料包括能够微加工的并且在使用光学检测的分析技术中使用的多种固体。示例性的MEMS材料是基于硅的基质，诸如氮化硅和二氧化硅或基于金属的基质，诸如氧化铝。在一方面，MEMS材料以膜的形式被加工和使用。在一个实施方案中，MEMS材料是氮化硅。可采用多种聚焦离子束用于这样的漂白并且用于多种能量的此类光束的产生和应用的指导可见于诸如Natasi等人,IonSolidInteractions：FundamentalsandApplications(CambridgeUniversityPress，1996)的参考文献和类似参考文献。示例性的聚焦离子束包括氦离子束、氖离子束和镓离子束。在一个实施方案中，在该方法中使用氦离子束。氦离子束可以通过市售可得的离子束显微镜(HIM)(例如，ZeissOrionNanofab)产生。递送至MEMS材料诸如氮化硅的表面以减少自体荧光的能量或剂量的量可以在从2e-10nC/nm^2至8e-10nC/nm^2的范围内。
用于纳米孔和分析物的标记物
在一些实施方案中，可以用一种或更多种量子点标记纳米孔。特别地，在一些实施方案中，一种或更多种量子点可附接至纳米孔，或附接至与纳米孔毗邻(并且在纳米孔的入口或出口的FRET距离之内)的固相支撑物上，并且被采用作为与分析物上的受体的FRET反应中的供体。量子点的此类用途是公知的并且被广泛描述于科学文献和专利文献中，诸如，描述于美国专利6,252,303、6,855,551、7,235,361等等中，其通过引用被并入本文。
可被用作孔标记物的量子点的一个实例是可在水性溶液中合成的CdTe量子点。可用亲核基团诸如伯胺、巯基或诸如羧酸的官能团使CdTe量子点功能化。CdTe量子点可包括巯基丙酸加帽的配体，其具有可用于将量子点共价地连接至蛋白质孔外部的伯胺的羧酸官能团。可使用生物缀合领域内普通技术人员已知的标准的交联试剂(同-双功能的和异-双功能的)完成交联反应。必须小心以确保修饰不会损害或基本上不会损害核酸移位穿过纳米孔。这可以通过改变用于将供体标记物附接至纳米孔的采用的交联剂分子的长度来实现。
可使用天然α溶血素蛋白(Song,L.等人,Science274,(1996):1859-1866)的赖氨酸残基131的伯胺以通过1-乙基-3-[3-二甲基氨基丙基]碳二亚胺盐酸盐/N-羟基硫代琥珀酰亚胺(EDC/NHS)偶联化学反应共价结合羧基修饰的CdTe量子点。可选地，氨基酸129(苏氨酸)可以被交换为半胱氨酸。因为在天然α溶血素蛋白中不存在其他半胱氨酸残基，新插入的半胱氨酸的巯基侧基可以被用于共价附接其他化学部分。
用于将一种或更多种的孔标记物附接至孔蛋白质的多种方法、机制和/或途径可以被利用。孔蛋白质可以以将具有已知性质或多种官能团的氨基酸引入天然蛋白质序列的方式被遗传工程化。天然存在的蛋白质序列的此修饰可以有利于将量子点与孔蛋白质的生物缀合。例如，半胱氨酸残基的引入将引入巯基基团，其将允许量子点诸如CdTe量子点与孔蛋白质的直接结合。并且，赖氨酸残基的引入会引入用于结合量子点的伯胺。谷氨酸或天冬氨酸的引入会引入用于结合量子点的羧酸部分。这些基团服从于使用同-或异-双功能交联剂分子与量子点的生物缀合。多组氨酸的插入允许量子点经由金属-组氨酸配位与蛋白质孔的直接结合。目的在于引入用于生物缀合的官能团的对孔蛋白质的此类修饰，是本领域普通技术人员已知的。应小心以确保修饰不会损害或基本上不会损害核酸移位穿过纳米孔。
可以在将所述纳米孔插入脂质双层之前或之后将纳米孔标记物附接至蛋白质纳米孔。当标记物在插入脂质双层之前被附接的情况下，必须小心标记纳米孔的底部并且避免孔蛋白质的随机标记。这可以通过孔蛋白质的遗传工程化来实现，以允许孔标记物的位点特异性附接(参见0047部分)。此方法的优点是标记的纳米孔的批量制备。可选地，预插入的纳米孔的标记反应可确保标记物与纳米孔的底部(反侧)位点特异性附接而不需要遗传工程化孔蛋白质。
生物聚合物，例如核酸分子或聚合物，可以用一种或更多种受体标记物标记。对于核酸分子，核酸分子的四种核苷酸或构件的每一种可以用一种受体标记物标记，从而创建每一种天然存在的核苷酸的标记的(荧光)对应物。受体标记物可以以接受能量的分子的形式，所述接受能量的分子可被附接至转换的核酸的部分或整条链的一个或更多个核苷酸。
多种方法可被用来标记核酸分子或聚合物的单体或核苷酸。标记的核苷酸可以在使用原始样品作为模板合成新的核酸期间被掺入核酸(“通过合成标记”)。例如，核酸的标记可以通过PCR、全基因组扩增、滚环扩增、引物延伸等或通过本领域普通技术人员已知的以上方法的多种组合和扩展形式来实现。
核酸的标记可通过在具有标记物的修饰的核苷酸类似物的存在下复制核酸来实现，其导致将所述标记物掺入新产生的核酸。标记过程还可通过掺入具有官能团的核苷酸类似物来实现，所述官能团可用于在第二标记步骤中共价附接接受能量的部分。可通过全基因组扩增(Zhang，L.等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA89(1992):5847)或链置换扩增诸如滚环扩增、缺口平移、转录、逆转录、引物延伸和聚合酶链式反应(PCR)、简并性寡核苷酸引物PCR(DOP-PCR)(Telenius,H.等人,Genomics13(1992):718-725)或以上方法的组合实现这样的复制。
标记物可包括反应性基团，诸如亲核试剂(胺、巯基等等)。不存在于天然核酸中的此类亲核试剂，随后可被用于通过胺或巯基反应化学诸如NHS酯、马来酰亚胺、环氧环、异氰酸酯等附接荧光标记物。此类亲核试剂反应性荧光染料(即，NHS-染料)从不同来源是容易市售可得的。当使用“通过合成标记”方法时，用小的亲核试剂标记核酸的优点在于高效掺入此类标记的核苷酸。由于聚合过程期间标记物的空间位阻，以大体积荧光标记的核酸构件可能通过聚合酶不理想地掺入新合成的DNA。
DNA可以被直接化学修饰而不需要聚合酶介导的标记的核苷酸的掺入。修饰的一个实例包括修饰鸟嘌呤碱基的N7位置的含有顺铂的染料(Hoevel,T.等人,BioTechniques27(1999):1064-1067)。另一个实例包括用羟胺修饰嘧啶的C6位置，其产生6-羟氨基衍生物。产生的胺基可用胺反应性染料(例如，NHS-Cy5)进一步修饰。又另一个实例是叠氮化物或炔烃修饰的核苷酸，其通过聚合酶容易地掺入(Gierlich等人,Chem.Eur.J.,2007,13,9486-0404)。遵循良好建立的点击化学反应方案，炔烃或叠氮化物修饰的多核苷酸随后用叠氮化物或炔烃修饰的荧光团标记。
核酸分子可以用N-溴代丁二酰亚胺直接修饰，其在与核酸反应后将产生5-溴半胱氨酸(5-Bromocystein)、8-溴腺嘌呤和8-溴鸟嘌呤。修饰的核苷酸可进一步与二-胺亲核试剂反应。随后，剩余的亲核试剂可与胺反应性染料(例如，NHS-染料)反应(HermansonG.于BioconjugateTechniques中,AcademicPress1996,ISBN978-0-12-342336-8)。
核酸链中1、2、3或4种核苷酸的组合可以被它们的标记的对应物交换。可平行测序标记的核苷酸的多种组合，例如，除了四种单一标记的样品外用2种标记的核苷酸的组合标记源核酸或DNA，其将产生总共10种不同标记的样品核酸分子或DNA(G、A、T、C、GA、GT、GC、AT、AC、TC)。得到的序列模式由于在冗余序列读出中重叠的核苷酸位置，可允许更准确的序列比对。
在某些变化形式中，用于测序聚合物诸如核酸分子的方法，可包括提供插入膜或膜样结构或其他基质中的纳米孔或孔蛋白质(或合成的孔)。孔的底部或其他部分可以被一种或更多种孔标记物修饰。所述底部可以指孔的反式侧。任选地，孔的顺式侧和/或反式侧可以用一种或更多种孔标记物修饰。待分析或待测序的核酸聚合物可用作模板，用于产生标记版本的核酸聚合物，其中在所得聚合物中四种核苷酸的一种或多达所有四种核苷酸被核苷酸的标记的类似物代替。对纳米孔施加电场，其迫使标记的核酸聚合物穿过纳米孔，同时外部的单色或其他光源可被用于照明纳米孔，从而激发孔标记物。在核酸的标记的核苷酸通过、离开或进入纳米孔时、之后或之前，能量从孔标记物转移至核苷酸标记物，其导致较低能量辐射的发射。核苷酸标记物辐射随后通过共聚焦显微镜装置或本领域普通技术人员已知能够进行单分子检测的其他光学检测系统或光显微术系统来检测。此类检测系统的实例包括但不局限于共聚焦显微镜术、落射荧光显微镜术和全内反射荧光显微镜术(TIRE)。具有标记的单体的其他聚合物(例如，蛋白质和核酸以外的聚合物)也可以根据本文描述的方法被测序。
当聚合物的受体标记的单体(例如，核苷酸)的受体标记物在标记的单体离开、进入或通过纳米孔时、之后或之前与供体标记物反应时，能量可从孔或纳米孔供体标记物(例如，量子点)转移至聚合物(例如，核酸)上的受体标记物。例如，供体标记物可位于纳米孔的顺式侧或反式侧或表面上或在纳米孔的顺式侧或反式侧或表面上附接至纳米孔，使得供体标记物和受体标记物之间的相互作用或能量转移直到标记的单体离开纳米孔并且进入纳米孔通道或开口外部的供体标记物的周围或附近才发生。作为结果，标记物之间的相互作用、从供体标记物到受体标记物的能量转移、来自受体标记物的能量发射和/或来自受体标记物的能量发射的测量或检测可在穿过纳米孔的通道、通路或开口的外部发生，例如，在纳米孔的顺式侧或反式侧上的顺式室或反式室之内发生。从单体的受体标记物发射的能量的测量或检测可以用来鉴定单体。
纳米孔标记物可放置于纳米孔的通路、通道或开口的外部使得标记物可以是可见的或可以被暴露以便于标记物的激发或照射。供体标记物和受体标记物之间的相互作用和能量转移以及由于能量转移而从受体标记物的能量发射，可以在纳米孔的通路、通道或开口的外部发生。这可以促进检测或测量来自受体标记物的能量或光发射的简便性和准确度，所述检测或测量例如通过光学检测或测量装置。供体和受体标记物相互作用可在纳米孔的通道内发生并且供体标记物可放置于纳米孔的通道内。
供体标记物可以以多种方式和/或在纳米孔上的多个位点处附接。例如，供体标记物可以直接或间接附接或连接至纳米孔的部分或单元上。可选地，供体标记物可以与纳米孔毗邻放置。
聚合物(例如，核酸)的每一个受体标记的单体(例如，核苷酸)可以与供体标记物顺序地相互作用，所述供体标记物放置于聚合物移位穿过的纳米孔或通道上或紧邻其或直接或间接附着至其。供体和受体标记物之间的相互作用可发生在纳米孔通道或开口的外部，例如，在受体标记的单体离开纳米孔后或在单体进入纳米孔之前发生。相互作用可发生在或部分发生在纳米孔通道或开口之内，例如当受体标记的单体经过、进入或离开纳米孔时发生。
当核酸的四种核苷酸的一种被标记时，单个核苷酸标记物发射引起的时间依赖性信号被转换为对应标记的核苷酸在核酸序列中的位置的序列。随后，对不同样品中的四种核苷酸的每一种重复该过程，并且四个部分的序列随后被比对以组装完整的核酸序列。
当分析多色标记的核酸(DNA)序列时，从一种或更多种供体标记物到可存在于核酸分子上的四种不同的受体标记物的每一种的能量转移可产生四种不同的波长或颜色的光发射(每一种与四种核苷酸中的一种相关)，其允许直接的序列读出。
移位速度
与基于纳米孔的测序方法相关的主要障碍是核酸穿过纳米孔的高移位速度(约500.000-1.000.000核苷酸/sec)，由于记录装置的受限的带宽，其不允许直接的序列读出。用两种不同的纳米孔蛋白减慢核酸移位的方法近来由Cherf等人(NatBiotechnol.2012Feb14；30(4):344-8)和Manrao等人(NatBiotechnol.2012Mar25；30(4):349-53)显示并通过引用被并入本文。两个研究组都使用DNA聚合酶从靶模板合成互补链，其导致模板DNA穿过纳米孔的逐步移位。因此，核酸聚合酶的合成速度(10-500核苷酸/sec)决定了DNA的移位速度，并且由于其比直接核酸移位慢大约3-4个数量级，单核苷酸的分析变得可行。然而，聚合酶辅助的移位需要大量的样品制备以产生用于聚合酶的结合位点，并且大批的核酸合成必须被阻断并且只能在核酸-聚合酶复合物被纳米孔蛋白质捕捉后才能开始。这导致相当复杂的设置，其可能阻止其在商业环境中的实施。此外，聚合酶合成反应中的波动诸如停滞的聚合作用(stalledpolymerization)以及聚合酶从核酸上的解离可妨碍序列读出，分别导致高错误率和减小的读段长度。如本申请描述的光学纳米孔测序使用不同的减慢DNA移位的方式。靶核酸通过掺入荧光修饰的核苷酸被酶促地复制。所得的标记的核酸具有增加的标称直径，其导致当被牵拉穿过纳米孔时减小的移位速度。用于光学测序的优选的移位速率处于每秒钟1-1000个核苷酸的范围内，并且更优选的范围是每秒钟200-800个核苷酸，并且最优选的移位速率是每秒钟200-600个核苷酸。
可选地，多核苷酸特别是单链多核苷酸的移位速度可通过以下来控制：采用被定制尺寸的纳米孔以便附接至底部的加合物和/或标记物例如有机染料抑制但不阻止多核苷酸的移位。移位速度可通过以预定的密度附接标记物和/或加合物被选择。此类标记物和/或加合物可具有规则间隔的附接，例如，每三个核苷酸等的附接，或它们可以具有随机性、或伪随机性(pseudorandom)附接，例如，每个C可以被标记。在一些实施方案中，选定数目的不同核苷酸可以被标记，例如，每个A和C，或每个A和G，或每个A和T，或每个C，等，其导致平均移位速度。可以通过将加合物附接至未标记的核苷酸来减小此平均速度。加合物包括可使用常规化学反应附接至核苷酸的任何分子，通常为有机分子。通常加合物具有与常见有机染料例如，荧光素，Cy3等相同范围内的分子量。加合物可以或可以不能够产生信号，即，充当标记物。在一些实施方案中，加合物和/或标记物被附接至核苷酸的碱基上。在其他实施方案中，标记物和/或加合物可附接至多核苷酸中的核苷之间的连键。在一方面，控制单链多核苷酸穿过纳米孔的移位速度的方法包括将加合物以一定密度附接至多核苷酸的步骤，其中由于附接的大量加合物或由于附接的加合物的密度，单链多核苷酸的移位速度单调减小。在一些实施方案中，并不是多核苷酸的每一种核苷酸都被标记。例如，可以产生多核苷酸的四种不同的组，其中每一组的核苷酸被相同的分子例如荧光有机染料受体标记，但是在每一组中不同种类的核苷酸将被标记。因此，在组1中仅A可被标记；在组2中仅C可被标记；在组3中仅G可被标记；等等。在这样的标记之后，四组多核苷酸随后可以根据本文描述的方法和系统分别分析，并且多核苷酸的核苷酸序列从四个分析产生的数据确定。在此类实施方案和类似的实施方案中，使用了例如两种标记物，其中多核苷酸的一些核苷酸没有被标记，穿过纳米孔的移位速度将受到标记物沿着多核苷酸的分布的影响。为了防止移位速度中这样的变化性，在一些实施方案中，没有被受体或供体标记用于产生信号以确定核苷酸序列的核苷酸可通过附接非产生信号的加合物被修饰，所述非产生信号的加合物具有与产生信号的标记物基本上相同的对移位速度的影响。
实施例
在该实施例中，描述了用于确定多核苷酸的受体标记的核苷酸的序列的纳米孔装置，之后其被用于检测第一多核苷酸中受体标记的胞嘧啶的序列并且检测第一受体标记的胸腺嘧啶或胸苷的序列和第二多核苷酸中第二受体标记的胞嘧啶。
HIM钻孔以在氮化硅膜中形成纳米孔：在钻孔过程之前用氧等离子体清洁具有50×50um蚀刻的窗口的被30nmSi3N4膜跨越的3mm的Si芯片(Protochips，NC)。将清洁过的芯片插入氦离子显微镜(Orion，Zeiss)的真空室中。插入后，通过具有～5pA的束流的聚焦离子流穿过20μm的孔眼并以被校准以导致4+/-2nm的孔洞的暴露时间来钻入纳米孔洞。
蛋白质纳米孔：使用野生型α溶血素蛋白的克隆的变体作为模板用于体外转录/翻译反应。所得单体通过逐步添加脱氧胆酸钠至终浓度6.25mM并且随后在4℃持续孵育12小时被七聚化。使用异双功能交联剂(SMCC，磺基-4-(N-马来酰亚胺基甲基)环己烷-1-羧酸琥珀酰亚胺酯)将所得七聚物与胺修饰的寡核苷酸附接。此寡核苷酸充当3kbds-DNA片段的杂交位点，该3kbds-DNA片段被用作将蛋白质纳米孔牵拉进Si3N4膜中的钻出的孔洞中的拖拽力。除了寡核苷酸修饰，蛋白质纳米孔的底部也被一个或多个马来酰亚胺活化的荧光染料修饰。附接的荧光团可以作为FRET反应中的供体或受体。
杂合纳米孔：将具有钻出孔洞的TEM网格通过浸没在90℃的热Piranha溶液(3：1硫酸：H2O2，v/v)中持续15分钟或通过空气等离子持续5分钟来清洁。在用水彻底地冲洗后，TEM网格被安装在分隔顺式和反式的室的Delrin固定器(holder)上。反式室被盖玻片封闭，其允许纳米孔的光学询问。每一个室被填充乙醇以促进纳米孔的湿润。乙醇随后被水替换并且之后被缓冲的1MKCl溶液替换。在反式室中缓冲的KCl含有50％甘油以辅助TIR(全内反射)成像。顺式室和反式室两者内含有与缓冲溶液接触的Ag/AgCl电极，阴极(+)在顺式室中并且阳极(-)在反式室中。将纳米孔蛋白质添加至SiN膜的顺式侧并且通过应用电场(200mV至600mV)，蛋白质纳米孔被塞入钻出的纳米孔洞，形成杂合纳米孔。
在600mV5分钟至25分钟后，通常50％至75％的钻出的孔洞中具有插入的蛋白质纳米孔。在装备有APON60×TIRF油浸物镜和用于激发附接在蛋白质纳米孔的荧光团的532nm二极管激光器的倒置显微镜(OlympusIX71)上检查杂合纳米孔的形成。更换顺式室中的缓冲液以去除过量的纳米孔蛋白质。将被标记的单链(ss)DNA以终浓度10nM添加至顺式室中。电场降低至200mV至400mV，这促进单链DNA移位穿过杂合纳米孔。当离开纳米孔时，标记的DNA与激发的供体荧光团紧密毗邻。发生FRET反应，导致光子从标记的DNA发射。发射的光子被收集，过滤并且使用OrcaFlash4.0cMOS相机(Hamamatsu)以500Hz至5000Hz的帧速成像。使用ImageJ从原始的tiff图像中覆盖整个杂合纳米孔的5×5像素区域中提取数据。将原始记录(rawtraces)标准化，并且使用寻峰算法(peakfindalgorithm)鉴定FRET信号。在鉴定的峰值上进行碱基识别(basecalling)。
以下107-mer的单链多核苷酸(SEQIDNO：1)的每一个胞嘧啶被Cy5荧光团标记。
3’-AACGGCCCTTCGATCTCATTGAGGATGAGAGGAGAGTCAAAGGAAGA-ACGAGGATGAGAGGAGAGTGAGAGCAAAGGAAGAACGAGGATGAGAGG-AGAGTGAGAGCAAAGGAAGAA-5’
将被标记的多核苷酸以3’为先的方向移位穿过杂合纳米孔并且收集来自被标记的胞嘧啶的混合的FRET信号。原始数据示于图1B中。当移位穿过杂合纳米孔时，观察到对应于DNA中胞嘧啶的数目的多个峰。显著地，位于3’端的同聚物被完美地分辨。
在5’端的第20个核苷酸位置后，以下单链多核苷酸(SEQIDNO：2)的每一个胞嘧啶和每一个胸腺嘧啶分别被Cy5和Atto700标记。
5’-GCTATGTGGCGCGGTATTATTAAGAAGGAGACTGAGAGGAGAGAA-GGAGCAAGAAGGAAATGAGAGCGAGAGGAGAGAAGGAGGAAGAAG-3’
被标记的多核苷酸以3’为先的方向移位穿过杂合纳米孔并且收集来自被标记的胞嘧啶和胸腺嘧啶的混合的FRET信号。原始数据示于图1D中。此原始数据记录的峰值显示出类似于模板链中被标记的核苷酸的位置的型式(pattern)。
本公开内容并不意图限制于所列具体形式的范围，而是意图覆盖本文描述的变化形式的替代、修改和等价物。此外，本公开内容的范围充分涵盖鉴于此公开内容而对本领域技术人员来说变得明显的其他变化。本发明的范围仅受所附的权利要求限制。
定义
“纳米孔”意指位于基质中的任何开口，其允许分析物以预定的或可辨别的顺序穿过基质，或在聚合物分析物的情况下，允许聚合物的单体单元以预定的或可辨别的顺序穿过基质。在后一种情况下，预定的或可辨别的顺序可以是聚合物中单体单元的一级序列。纳米孔的实例包括蛋白质性质的或基于蛋白质的纳米孔、合成的或固态的纳米孔、和包括其中嵌入蛋白质纳米孔的固态纳米孔的杂合纳米孔。纳米孔可以具有例如，1nm至10nm或1nm至5nm或1nm至3nm或其他各种大小的内径。蛋白质纳米孔的实例包括但不局限于，α溶血素、电压依赖性线粒体孔蛋白(VDAC)、OmpF、OmpC、MspA和LamB(麦芽糖孔蛋白)，例如，公开于Rhee，M.等人，TrendsinBiotechnology，25(4)(2007):174-18；Bayley等人(以上引用)；Gundlach等人,美国专利公布2012/0055792等等，通过引用将其并入本文。可以采用允许单个氨基酸分子的移位的任何蛋白孔。纳米孔蛋白质可以在孔的外部的特定的位点被标记，或在组成孔形成蛋白的一个或更多个单体单元的外部的特定位点被标记。孔蛋白选自诸如但不局限于以下的蛋白质的组：α溶血素、MspA、电压依赖性线粒体孔蛋白(VDAC)、炭疽孔蛋白、OmpF、OmpC和LamB(麦芽糖孔蛋白)。将孔蛋白整合至固态孔洞是通过将带电荷的聚合物附接至孔蛋白来完成的。在施加电场后，带电荷的复合物被以电泳方式牵拉入固态孔洞。合成的纳米孔或固态纳米孔，可以被以被创建在各种形式的固态基质中，固态基质的实例包括但不局限于硅酮(例如，Si3N4，SiO2)、金属、金属氧化物(例如，Al2O3)、塑料、玻璃、半导体材料和其组合。合成的纳米孔可以比置于脂双层膜中的生物蛋白孔更稳定。合成的纳米孔还可以通过使用嵌入在合适的基质中的碳纳米管来创建，所述合适的基质诸如但不局限于聚合的环氧树脂。碳纳米管可以具有均一的并且定义明确的化学性质和结构性质。可以获得各种大小的碳纳米管，范围从一至几百纳米。碳纳米管的表面电荷已知约是零，并且作为结果，核酸穿过纳米孔的电泳运输变得简单和可预测(Ito，T.,Chem.Commun.12(2003):1482-83)。合成的纳米孔的基质表面可以被化学修饰以允许蛋白质孔的共价附接或以致使表面性质合适于光学纳米孔测序。此类表面修饰可以是共价的或非共价的。大多数共价修饰包括有机硅烷沉积，其最常用的方案被描述为：1)从水性乙醇中沉积。这是制备甲烷硅基化表面的最简易的方法。95％乙醇-5％水的溶液用乙酸调整至pH4.5至pH5.5。将硅烷伴随搅拌添加至产生2％的终浓度。在水解作用和硅醇基团形成之后将基质添加持续2-5分钟。通过短暂地浸渍在乙醇中将游离的过量材料冲洗之后。在110摄氏度持续5至10分钟使硅烷层硬化。2)气相沉积。硅烷可以在干燥的疏质子条件下通过化学气相沉积方法被涂敷至基质。这些方法有利于单层沉积。在封闭的室设计中，基质被加热至足够实现5mm的真空压力的温度。可选地，可以应用真空直到观察到硅烷蒸发。3)旋涂沉积(Spin-ondeposition)。旋涂应用可以在有利于最大官能化和多层沉积的水解条件下或有利于单层沉积的干燥条件下进行。
“FRET”或“福斯特或荧光共振能量转移”意指非放射性的从供体至受体荧光团的偶极子-偶极子能量转移机制。FRET的效率可以取决于供体和受体之间的距离以及荧光团的性质(Stryer,L.,AnnuRevBiochem.47(1978):819-846)。“FRET距离”意指FRET供体和FRET受体之间的距离，在此距离可以发生FRET相互作用并且FRET受体产生可检测的FRET信号。
“多核苷酸”或“寡核苷酸”被可互换地使用并且各自意指核苷酸单体的线性聚合物。组成多核苷酸和寡核苷酸的单体能够经由单体与单体相互作用的规则模式诸如Watson-Crick类型的碱基配对、碱基堆积、Hoogsteen或反式Hoogsteen类型的碱基配对等特异性地结合天然的多核苷酸。此类单体以及其核苷间连键可以是天然存在的或可以是其类似物，例如天然存在或非天然存在的类似物。非天然存在的类似物可以包括PNA、硫代磷酸核苷间连键、含有允许附接标记(诸如荧光团或半抗原)的连接基团的碱基，和类似物。当寡核苷酸或多核苷酸的使用需要酶加工时，诸如通过聚合酶的延伸、通过连接酶的连接或其类似物，普通技术人员应该理解在那些情况下寡核苷酸或多核苷酸将在任何或一些位置不包含核苷间连键、糖部分或碱基的类似物。多核苷酸大小的范围通常从两个或少数单体单元，例如5个至40个，此时它们通常称为“寡核苷酸”，到几千个单体单元。除非另有说明或从上下文明显的，每当多核苷酸或寡核苷酸以字母(大写或小写)序列表示时，诸如“ATGCCTG”，应该理解的是核苷酸从左到右是5’→3’的顺序，并且“A”表示脱氧腺苷、“C”表示脱氧胞苷、“G”表示脱氧鸟苷、“T”表示胸苷、“I”表示脱氧肌苷、“U”表示尿苷。除非另有指出，术语和原子编号惯例将遵循公开在Strachan和Read,HumanMolecularGenetics2(Wiley-Liss，NewYork,1999)中的那些。通常多核苷酸包含由磷酸二酯键连接的四种天然核苷(例如，对于DNA的脱氧腺苷、脱氧胞苷、脱氧鸟苷、脱氧胸苷或对于RNA的它们的核糖对应物)；然而；它们还可以包含非天然的核苷酸类似物，例如包含修饰的碱基、糖或核苷间连键。对本领域的技术人员很明显的是，当酶活性具有特定的寡核苷酸或多核苷酸底物的需求时，例如，单链DNA、RNA/DNA双链体(duplex)或其类似物，则选择寡核苷酸或多核苷酸底物的合适的组成在普通技术人员的知识内，尤其是在专著的指导下，诸如Sambrook等人,MolecularCloning,第二版(ColdSpringHarborLaboratory，NewYork，1989)和类似的参考文献。类似地，寡核苷酸和多核苷酸可以是指单链形式或双链形式(即寡核苷酸或多核苷酸与其各自的互补物的双链体)。从术语使用的上下文中，对本领域的普通技术人员来说，想要哪种形式或是否想要两种形式将会是清楚的。
“序列确定”、“测序”或“确定核苷酸序列”或类似的关于多核苷酸的术语包括确定多核苷酸的部分的以及全部的序列信息。即，术语包括四种天然核苷酸A、C、G和T的全组的亚组的序列，诸如，例如，靶多核苷酸的仅有A和C的序列。即，该术语包括确定靶多核苷酸中核苷酸的四种类型中的一种、两种、三种或所有的身份、顺序和位置。在一些实施方案中，术语包括确定靶多核苷酸中核苷酸的四种类型中的两种、三种或所有的身份、顺序和位置。在一些实施方案中，序列的确定可以通过鉴定靶多核苷酸“catcgc…”内的单一类型的核苷酸例如胞嘧啶的顺序和位置来完成，这样其序列被表示为二进制代码，例如“100101…”代表“c-(非c)(非c)c-(非c)-c…”等等。在一些实施方案中，该术语还可以包括充当靶多核苷酸的指纹的靶多核苷酸的子序列；即，在多核苷酸的组中独特地标识靶多核苷酸的子序列，例如，由细胞表达的所有不同的RNA序列。
本文描述的个阐明的每一个单独的变化形式和实施方案具有离散的组分和功能，其可以容易与任何其他变化形式的特征分离或与任何其他变化形式的特征组合。可以进行修改来使特定的情况、材料、物质的组成、过程、过程的行动或步骤适应于本发明的目标、精神或范围。
本文列举的方法可以以逻辑上可能的所列举的事件的任何顺序以及事件的列举的顺序展开。此外，当提供值的范围，每一个在其范围的上限和下限之间的居间值和任何其他的规定的或在其规定范围中的居间值被涵盖在发明中。并且，所描述的发明的变化形式的任何任选的特征可以被独立地或与本文描述的任何一种或更多种特征联合地提出和请求保护。
本文提及的所有现有主题(例如，出版物、专利、专利申请和硬件)通过引用以其整体被并入本文，除非在其主题可能与本发明的主题冲突的情况下(在这种情况下，以本文展示的为准)。提供引用的项目仅为了其在本申请的递交日期之前的公开内容。本文不应解释为承认由于在先发明使得本发明不具有优先于此类材料的资格。
提到单数项目，包括相同项目的复数形式存在的可能性。更具体地，除非上下文另外明确规定，如本文和在所附权利要求中使用的单数形式“一(a)”、“一(an)”、“所述”和“该”包括复数的指代对象。进一步注意是权利要求可以被起草为排除任何任选的要素。因此，此声明意图作为与引用权利要求要素有关地使用此类排他的术语诸如“唯一地(solely)”、“仅仅(only)”等等或使用“负面”限制的先行基础。除非另外定义，本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属领域内普通技术人员通常的理解相同的意思。
本公开内容并不意图限制于所列具体形式的范围，而是意图覆盖在不同变化形式中公开的要素的替代物、修改、组合以及本文描述的变化形式的等价物。而且，本公开内容的范围充分涵盖了基于本公开内容对本领域的技术人员将变得明显的其他的变化形式。本发明的范围仅受所附的权利要求限制。

Claims (22)

1.一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法，所述方法包括以下步骤：
使多核苷酸移位穿过纳米孔以便所述多核苷酸的核苷酸顺序经过与所述纳米孔毗邻放置的FRET对的第一成员，当所述核苷酸离开所述纳米孔时多个所述核苷酸处于所述FRET对的所述第一成员的FRET距离内并且所述核苷酸的至少一部分被所述FRET对的第二成员标记；
使与所述纳米孔毗邻的所述FRET对暴露于光束以便FRET在所述FRET距离内的所述FRET对的所述第一成员与多个第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；
当所述多核苷酸移位穿过所述纳米孔时测量混合的FRET信号；以及
从所述混合的FRET信号确定所述多核苷酸的核苷酸序列。
2.如权利要求1所述的方法，其中所述纳米孔被布置在固相膜中并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述固相膜，与所述纳米孔毗邻。
3.如权利要求1所述的方法，其中所述纳米孔是蛋白质纳米孔并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述蛋白质纳米孔。
4.如权利要求1所述的方法，其中所述多核苷酸是单链多核苷酸或双链多核苷酸。
5.一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法，所述方法包括以下步骤：
使多核苷酸移位穿过具有出口的纳米孔以便所述多核苷酸的核苷酸在离开所述纳米孔后顺序通过FRET区域，所述FRET区域在此通过期间包含多个所述核苷酸并且所述核苷酸的至少一部分被FRET对的至少一个第二成员标记并且所述FRET对的至少一个第一成员处于所述FRET区域内；
使所述FRET区域内的所述FRET对的所述第一成员和所述第二成员暴露于光束以便FRET在所述FRET对的第一成员与第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；
当所述多核苷酸移动穿过所述FRET区域时测量混合的FRET信号；以及
从所述混合的FRET信号确定所述多核苷酸的核苷酸序列。
6.如权利要求5所述的方法，其中所述纳米孔被布置在固相膜中并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述固相膜，与所述纳米孔毗邻。
7.如权利要求5所述的方法，其中所述纳米孔是蛋白质纳米孔并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述蛋白质纳米孔。
8.如权利要求5所述的方法，其中所述多核苷酸是单链多核苷酸或双链多核苷酸。
9.一种确定多核苷酸的核苷酸序列的方法，所述方法包括以下步骤：
使具有标记的核苷酸的多核苷酸移位穿过纳米孔，所述纳米孔被定制尺寸以便所述核苷酸上的标记物被限制以抑制FRET反应，所述核苷酸上的所述标记物是FRET对的第二成员，并且以便所述多核苷酸的核苷酸在离开所述纳米孔后顺序通过FRET区域，所述FRET区域在此通过期间包含多个所述核苷酸并且所述FRET对的至少一个第一成员处于所述FRET区域内；
使所述FRET区域内的所述FRET对的所述第一成员和所述第二成员暴露于光束以便FRET在所述第一成员与所述第二成员之间发生以产生混合的FRET信号；
当所述多核苷酸移动穿过所述FRET区域时测量混合的FRET信号；以及
从所述混合的FRET信号确定所述多核苷酸的核苷酸序列。
10.如权利要求9所述的方法，其中所述纳米孔被布置在固相膜中并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述固相膜，与所述纳米孔毗邻。
11.如权利要求9所述的方法，其中所述纳米孔是蛋白质纳米孔并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述蛋白质纳米孔。
12.如权利要求9所述的方法，其中所述多核苷酸是单链多核苷酸或双链多核苷酸。
13.根据前述权利要求的任一项所述的方法，其中所述FRET对的所述第一成员是供体并且所述FRET对的所述第二成员是受体。
14.如权利要求13所述的方法，其中所述受体的至少一种是荧光有机染料。
15.如权利要求13所述的方法，其中所述供体的至少一种是量子点。
16.一种用于确定多核苷酸的核苷酸序列的系统，所述系统包含：
纳米孔，所述纳米孔提供第一室和第二室之间的流体连通并且多核苷酸能够移位穿过所述纳米孔，所述纳米孔被定制尺寸以便所述多核苷酸的核苷酸顺序通过所述纳米孔的出口并且每当所述多核苷酸的核苷酸被FRET对的成员标记时，在所述纳米孔内的此类成员和所述纳米孔外的那些成员之间的FRET被抑制；和
被布置在所述纳米孔的出口的FRET距离内的所述FRET对的成员，其中所述被布置在所述纳米孔的出口的FRET距离内的所述FRET对的成员是与标记所述多核苷酸的成员不同的成员，使得在从所述纳米孔的出口脱离后，多个核苷酸在所述被布置的成员的FRET距离内通过。
17.如权利要求16所述的方法，其中所述纳米孔被布置在固相膜中并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述固相膜，与所述纳米孔毗邻。
18.如权利要求16所述的方法，其中所述纳米孔是蛋白质纳米孔并且其中所述FRET对的所述第一成员附接至所述蛋白质纳米孔。
19.如权利要求16所述的方法，其中所述多核苷酸是单链多核苷酸或双链多核苷酸。
20.根据权利要求16至19的任一项所述的系统，其中所述FRET对的所述被布置的成员是供体并且标记所述多核苷酸的所述成员是受体。
21.如权利要求20所述的系统，其中所述受体是荧光有机染料。
22.如权利要求20所述的系统，其中所述供体是量子点。
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