CN105177152B - 检测hla-b*51等位基因的方法和引物 - Google Patents
检测hla-b*51等位基因的方法和引物 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了检测HLA‑B*51等位基因的方法和引物,所述引物包括扩增覆盖HLA‑B*51等位基因序列的正、反向引物、内参引物和测序引物。基于采用Sanger测序法,利用所述测序引物可用于快速准确地检测HLA‑B*51等位基因,可应用于HLA‑B*51与白塞病相关性的研究中。
Description
技术领域
本发明属生命科学和生物技术领域,特别涉及检测HLA-B*51等位基因的引物和方法。
背景技术
白塞病(adamantiades-behcet’s disease ABD)又称贝赫切特病、口-眼-生殖器三联征等。是一种慢性全身性血管炎症性疾病,主要表现为复发性口腔溃疡、生殖器溃疡、眼炎及皮肤损害,也可累及血管、神经系统、消化道、关节、肺、肾、附睾等器官。其发病范围位于北纬30°~45°的欧亚地区,东起东亚如日本、朝鲜、中国,向西延伸至中亚如土耳其、伊朗直到地中海沿岸,与古代丝绸之路基本吻合,又称丝绸之路病。白塞病的好发年龄在16~40岁,大部分患者预后良好,眼、中枢神经系统及大血管受累者预后欠佳。尽管确切的病因仍不清楚,但认为遗传及免疫是其主要的内在因素,有研究表明超过60%的白塞病病人与HLA-B51有关。
早于1973年Ohnos就发现HLA-B5在ABD患者中比正常对照组出现的频率明显增高,1978年进一步证实为HLA-B51。通过大量样本统计研究证实,45%~60%的白塞病发病与HLA-B51呈高度正相关,但不确定是HLA-B51本身还是某个与其紧密连锁的基因造成白塞病的易感性。为了对ABD进行候选基因的研究,评估HLA-51在ABD中的分配,一个国际研究小组针对此进行了全基因组关联分析研究(GWAS),研究包括了1215例ABD病人和1278例对照者,结果表明:HLA-B51基因型在病例组的发生率为59.1%,对照组仅为29.3%。在HLA-B区段中最显著的SNP(单核苷酸基因多态性)位于从HLA-B端粒到编码MHC I类链相关基因A(MICA)的着丝点区域,HLA-B51和位于从HLA-B到超过着丝粒62kb的MICA基因区域的多态基因位点之间存在强烈的连锁不平衡。HLA-B51比其他基因的SNP与疾病更为相关。大量研究证实,不同人种和该病明显相关的只有HLA-B51,但是HLA-B51不是唯一的致病因素,因为仍有约1/3的患者无此基因。随着对ABD发病机制研究的深入,3了解局部及系统免疫细胞的激活机制,了解不同临床亚型的发病机制,将有助于我们研制开发更为特异和更少毒性的免疫抑制剂。
目前常用的HLA等位基因分型的方法有PCR-SSO,PCR-SSP,PCR-SBT等,可分为低分辨和高分辨方法。但这些方法不能对HLA-B*51等位基因是否为阳性做出精准的判断。
发明内容
本发明的目的是检测患者是否HLA-B*51等位基因阳性,以辅助诊断白塞病,判断预后,并采用更直观有效的Sanger测序法。
本发明的目的在于提供用于检测HLA-B*51等位基因的引物,包括:扩增覆盖检测HLA-B*51等位基因的正、反向引物HLA-B*51-F和HLA-B*51-R,以及测序引物M13-F和M13-R;所述引物碱基序列为:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGT GGAGCCCCGCTTCATTG
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA
M13-F:TGTAAAACGACGGCCAGT
M13-R:AACAGCTATGACCATG。
进一步地,还包括检测内参基因的引物actin-F和actin-R,所述检测内参基因的碱基序列为:
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT
actin-R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG
进一步地,所述正、反向引物的使用浓度比为:HLA-B*51-F:HLA-B*51-R=1:1。
进一步地,所述内参基因的引物的使用浓度比为:actin-F:actin-R=1:1。
本发明的另一个目的在于提供一种检测检测HLA-B*51等位基因的方法,其包括如下步骤:
(1)提取样本DNA;
(2)利用扩增引物HLA-B*51-F与HLA-B*51-R,actin-F与actin-R对(1)中的DNA进行扩增,当两对引物的扩增都有结果,需对样本进行测序检测;
(3)利用测序引物M13-F与M13-R对(2)中HLA-B*51-F与HLA-B*51-R所得的扩增产物分别进行正向和反向测序,获得所述扩增产物的基因序列;
(4)将(3)中的基因序列与野生型HLA-B*51等位基因序列进行比较,确定基因序列是否完全相符;当比较结果与HLA-B*51等位基因序列完全相符,则可确定样本HLA-B*51等位基因阳性;当只有actin-F与actin-R这对引物扩增有结果,HLA-B*51-F与HLA-B*51-R的扩增无结果,则可确定样本HLA-B*51等位基因阴性;
其中所述引物碱基序列为:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGT GGAGCCCCGCTTCATTG
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT
actin–R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG
M13-F:TGTAAAACGACGGCCAGT
M13-R:AACAGCTATGACCATG。
本发明的目的还在于提供一种检测HLA-B*51等位基因的试剂盒,所述试剂盒包括样品DNA抽提试剂;无水乙醇;检测体系PCR反应液、测序体系反应液、阳性对照品、阴性对照品和空白对照品,其中检测体系PCR反应液包括1对扩增引物HLA-B*51-F与HLA-B*51-R,1对内参引物actin-F与actin-R,测序体系包括1对测序引物M13-F与M13-R,包括:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGT GGAGCCCCGCTTCATTG
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT
actin–R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG
M13-F:TGTAAAACGACGGCCAGT
M13-R:AACAGCTATGACCATG。
进一步地,所述检测体系PCR反应液还包括2×PCR Buffer;dNTPs;KOD FX DNAPolymerase。
进一步地,所述测序体系还包括测序纯化液、EDTA、无水乙醇、75%乙醇、HIDI和Bigdye Terminator V3.1。
进一步地,所述测序纯化液包括虾碱性磷酸酶和核酸外切酶I。
有益效果:利用本发明所述扩增引物和内参引物,当两对引物的扩增都有结果,该患者可能是HLA-B*51,HLA-B*5801、*5701等基因型,需测序检测,测序结果与HLA-B*51等位基因序列完全相符,则可确定样本HLA-B*51等位基因阳性。当只有actin-F与actin-R这对引物扩增有结果,HLA-B*51-F与HLA-B*51-R的扩增无结果,则可直接判定样本HLA-B*51等位基因阴性。
由于HLA-B基因属于经典HLA I类基因,目前发现的HLA-B等位基因已超过500个。HLA-B等位基因的多态性主要表现在第2、3和4外显子,其序列可分为高度多态性位点和相对保守位点。检测HLA-B*51基因型的扩增引物就设计在HLA-B*51等位基因高度多态性位点的第2和第3号外显子区域,以降低测序时套峰出现的可能性,降低了结果判读的难度。由于HLA-B*51只是HLA-B*5众多亚型中的一种,比对各个亚型的基因序列可以发现(比如文献报道中比较常见的HLA-B*5201、HLA-B*5401、HLA-B*5601、HLA-B*5701、HLA-B*5801等亚型),各亚型间的基因序列差异并不明显,扩增引物虽然设计在有高度多态性位点区域,扩增引物还是会非特异性扩增出HLA-B*5801,HLA-B*5701等亚型,例如比对各亚型的第2号和第3号外显子基因序列发现,扩增引物还是会非特异性扩增出其他亚型,当患者体内同时具备其中两种或多种亚型时,测序时还会有套峰出现的可能性。因此采用Sanger测序进行最终的分型。但是如果直接用HLA-B*51的扩增引物进行测序(HLA-B*51-F与HLA-B*51-R),由于测序本身的技术限制前几十bp会读不准,套峰的出现将更加大了读取的难度,前面的序列如果读取不准确将会影响后面几十bp序列的读取结果。本发明创新性的在PCR扩增的上游引物5’端和下游引物5’端分别加了一段长18bp的M13-F引物序列和长16bp的M13-R引物序列。这样扩增产物两端都会带上所引入的M13-F及M13-R引物序列,随后用M13-F和M13-R直接用M13-F和M13-R引物进行正反向测序。由于扩增产物两端带上了M13-F及M13-R引物序列,测序结果的前期读取不会受到套峰的影响,也使HLA-B*51基因序列的测序结果读取会更早的进入读取准确的阶段。
本发明采用Sanger测序法检测HLA-B*51等位基因序列,通过测序结果的分析,以确定患者是否是HLA-B*51等位基因阳性,节省了检测时间,结果容易判读,很大程度的节省了检测成本。具有很高的特异性、准确性、灵敏度、操作简单,并且当HLA-B*51-F与HLA-B*51-R没有扩增结果时,还可以有效排除样本本身的原因。
附图说明
图1样品1的检测结果图。
图2样品2的检测结果图。
具体实施方式
下面结合具体实施例和附图,进一步阐述本发明。应当注意的是,实施例中未说明的常规条件和方法,通常按照所属领域实验人员常规采用方法:譬如,奥斯柏和金斯顿主编的《精编分子生物学实验指南》第四版,或者按照制造厂商所建议的步骤和条件。
实施例1
检测HLA-B*51等位基因的引物,包括:扩增覆盖检测HLA-B*51等位基因的正、反向引物(HLA-B*51-F和HLA-B*51-R)和扩增内参基因的正、反向引物(actin-F和actin-R);所述扩增引物的碱基序列分别为:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGT GGAGCCCCGCTTCATTG
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT
actin-R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG。
所述引物还包括测序引物(M13-F和M13-R),所述测序引物碱基序列为:
M13-F:TGTAAAACGACGGCCAGT
M13-R:AACAGCTATGACCATG。
在检测中,先利用所述扩增引物HLA-B*51-F与HLA-B*51-R,actin-F与actin-R对样本DNA进行扩增获得扩增产物,然后利用所述测序引物对扩增产物进行测序,获得扩增产物的基因序列。
检测检测HLA-B*51等位基因的试剂盒,包括:样本组织DNA抽提试剂;无水乙醇;检测体系PCR反应液、测序体系反应液、阳性对照品、阴性对照品和空白对照品,其中,
所述检测体系PCR反应液包括:2×PCR Buffer;2mM dNTPs;KOD FX DNAPolymerase(1U/μl);检测目的基因用的正、反向引物HLA-B*51-F(10μm)与HLA-B*51-R(10μm),检测内参基因用的正、反向引物actin-F(10μm)与actin-R(10μm)。
所述测序体系包括:测序纯化液、EDTA(125mmol)、无水乙醇、75%乙醇、HIDI(高度去离子甲酰胺)、测序引物:M13-F(3.2μm)与M13-R(3.2μm),以及Bigdye Terminator V3.1(购买自美国Applied Biosystems公司),其中测序纯化液包括虾碱性磷酸酶(SAP)0.6U和核酸外切酶I(EXONI)1.2U。
检测体系PCR反应液配制如下:
其中,HLA-B*51-F与HLA-B*51-R,actin-F与actin-R的碱基序列为:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGT GGAGCCCCGCTTCATTG
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT
actin–R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG。
阳性对照品:含有HLA-B*51序列的溶液。
阴性对照品:无HLA-B*51序列的溶液。
空白对照品:2μl生理盐水或不加任何物质。
实施例2
血液DNA抽提试剂盒(天根生物)的操作流程:
(1)抽提血液中的基因组DNA:
1)抽取500uL血液加入1000uL红细胞裂解液,颠倒混匀,室温放置5分钟,期间再颠倒混匀几次。3000rpm离心5min,吸去上清,留下白细胞沉淀,加200uL缓冲液GA,振荡至彻底混匀。
2)加入20μl蛋白酶K溶液,混匀。
3)加入200μl缓冲液GB,充分颠倒混匀,70℃放置10分钟,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
4)加入200μl无水乙醇,充分振荡混匀15秒,此时可能会出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
5)将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中),12,000rpm(13,400×g)离心30秒,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。
6)向吸附柱CB3中加入500μl缓冲液GD(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm(13,400×g)离心30秒,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
7)向吸附柱CB3中加入700μl漂洗液PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm(13,400×g)离心30秒,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
8)向吸附柱CB3中加入500μl漂洗液PW,12,000rpm(13,400×g)离心30秒,倒掉废液。
9)将吸附柱CB3放回收集管中,12,000rpm(13,400×g)离心2分钟,倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
10)将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加100μl洗脱缓冲液TE,室温放置2-5分钟,12,000rpm(13,400×g)离心2分钟,将溶液收集到离心管中。
(2)试剂配置:按检测人份数配置检测体系PCR反应液各Xμl,每人份18μl分装:
X=18μl反应液×(n份标本+1份阳性对照+1份阴性对照+1份空白对照)
n为检测标本数。
(3)加样:加入3个检测体系PCR反应液中各2μl DNA;阳性对照和阴性对照直接加2μl阳性对照品和阴性对照品;空白对照加2μl生理盐水或不加任何物质。
(4)扩增:检测在常规PCR仪上进行,可用仪器包括ABI veriti(美国AppliedBiosystems公司)等。反应条件如下:
(5)sanger测序:
取9μl PCR产物与2μl纯化体系。按照以下程序进行纯化:
将1μl纯化产物分别与测序引物:M13-F(3.2μm)与M13-R(3.2μm),按照如下体系进行混合:
测序反应程序:
沉淀环节:
向完成测序反应的产物中加入2μl 125mmol的EDTA,静置5min;加入15ml无水乙醇,漩涡混匀;3700rpm离心30min;倒置离心15sec,加入50ml70%乙醇,漩涡混匀;3700rpm离心15min;倒置离心15sec,置于95℃金属浴上;加入10μl HIDI后进行变性试验。变性程序:
变性程序结束后,上测序仪(ABI3730)测序。
(7)结果判断:将测序结果与野生型参考序列(GeneBank No.:AJ002151)进行比对,根据实际突变情况对结果进行报告。
实施例3
取临床白塞病样本2份,检测该2份样本是否存在HLA-B*51等位基因。按实施例2所述方法提取基因组、配制试剂并检测。每份样品加入检测体系PCR反应液中2μl。同时做阳性,阴性,空白对照各一份。用普通PCR仪检测,时间为160分钟。
样品1的部分正向测序结果如图1所示,与HLA-B*51的基因序列不完全相符,HLA-B*51等位基因阴性。
样品2的部分正向测序结果如图1所示,与HLA-B*51的基因序列不完全相符,HLA-B*51等位基因阴性。
从检测结果可以看出,本发明所述引物能够扩增出HLA-B*51等位基因,并且测序结果完全准确。本发明所述引物可以准确的扩增出HLA-B*51等位基因,可以用于检测HLA-B*51等位基因。
Claims (4)
1.检测HLA-B*51等位基因的引物,其特征在于,包括:扩增覆盖检测HLA-B*51等位基因的正、反向引物HLA-B*51-F和HLA-B*51-R,以及测序引物M13-F和M13-R;所述引物碱基序列为:
HLA-B*51-F:TGTAAAACGACGGCCAGTGGAGCCCCGCTTCATTG;
HLA-B*51-R:AACAGCTATGACCATGCCTCGCTCTGGTTGTAGTAGCGGA;
M13-F:TGTAAAACGACGGCCAGT;
M13-R:AACAGCTATGACCATG。
2.如权利要求1所述的引物,其特征在于,还包括检测内参基因的引物actin-F和actin-R,所述检测内参基因的碱基序列为:
actin-F:CTAACTGCGCGTGCGTTCT;
actin-R:AGTCCTTAGGCCGCCAGGGG。
3.如权利要求1至2之一所述的引物,其特征在于,所述正、反向引物的使用浓度比为:HLA-B*51-F:HLA-B*51-R=1:1。
4.如权利要求2所述的引物,其特征在于,所述内参基因的引物的使用浓度比为:actin-F:actin-R=1:1。
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