CN104450556A - 一种血清 12 型副猪嗜血杆菌疫苗株及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株,其分类命名为副猪嗜血杆菌(Haemophi lus parasuis),菌株名称为SHCM10,已保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号:CCTCC NO:M 2014261,保藏日期:2014年6月15日;还涉及了所述的血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株在制备副猪嗜血杆菌灭活疫苗中的应用。本发明的血清12型副猪嗜血杆菌SHCM10株生物学稳定,对仔猪具有很强的致病性,灭活后接种仔猪,具有很好的免疫原性。将其作为疫苗候选株制成的单价疫苗安全性好,能够对仔猪产生较高的抗体,持续期长,具有很好的免疫效力,能够抵抗同型野毒株的攻击。免疫后猪群发病率和死亡率明显降低,减少猪场的经济损失,其免疫效果达到或优于市场上现有商品化疫苗。
Description
技术领域
本发明涉及兽医生物制品中副猪嗜血杆菌灭活疫苗领域,特别是涉及一种血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株,还涉及该疫苗株在制备灭活疫苗中的应用以及制备灭活疫苗的方法。
背景技术
副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis,HPS)是一种G-球杆菌,是猪的一种条件性病原菌,可引起副猪嗜血杆菌病。该病于1910年由德国学者Glasser首先报道,现已在全世界范围内广泛分布。目前,副猪嗜血杆菌感染是引起猪场仔猪高死亡率的主要病因之一。该病目前给中国猪群带来很大威胁,随着猪繁殖与呼吸综合征(PRRS,蓝耳病)的流行,副猪嗜血杆菌病给猪群造成的损失比以往更为严重。副猪嗜血杆菌只感染猪,具有很强的宿主特异性,可以影响2周龄~4月龄的猪,主要在断奶前后和保育舍阶段发病,发病率一般为10%~15%,严重时死亡率可达50%。
Hps是一种细小杆菌,在显微镜下呈多形态,非溶血性,不运动,无芽孢,无鞭毛,革兰氏阴性。新分离的菌株多呈球杆状或双球状,有时可呈短链状,在陈旧培养物中多呈多形态,有长杆状和丝状。Hps培养条件严格,生长依赖烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD或V因子),不需要X因子。目前认为胰蛋白胨大豆琼脂(TSA培养基)和胰蛋白胨大豆(TSB)培养基是最适培养基。在添加了NAD和血清的TSA培养基上生长的菌落呈圆形,隆起,表面光滑,边缘整齐,灰白色半透明,针尖大小。
副猪嗜血杆菌至少有15种血清型,但临床分离菌中约20%无法定型。不同血清型的毒力不同,其中血清1、5、10、12、13、14型毒力最强,2、4、8、112型具有中等毒力,3、6、7、9、11型不能引起临床感染。从世界范围内看,血清4、5、12、13型最为流行,日本、德国、美国、西班牙、加拿大和中国以血清4型和12型最常见,澳大利亚和丹麦分离的菌株主要为血清12型和13型,但最新的研究结果表明,危害北美各猪场的Hps流行血清型发生了改变,在美国的猪场中血清型5不再广泛流行,而以血清4型(39%)和不能分型的分离株(27%)最为流行。HPS在我国普遍流行,目前,在河北、河南、湖北、安徽、上海、广东、江西、江苏等省市均有HPS病的发生报道。我国当前Hps流行的优势血清型主要为4、5、12、13型。
目前以副猪嗜血杆菌病为代表的细菌病对养猪业的危害正日益加重,从而导致大量使用抗生素进行治疗,结果导致细菌耐药性不断增强,耐药菌株不断出现,尤其是副猪嗜血杆菌,非常容易耐药,导致治疗效果不好,从而养殖户加大抗生素用量,造成恶性循环。研究表明,用同血清型的菌株制成的灭活疫苗能够有效抵抗野毒株的感染,是预防和控制副猪嗜血杆菌病最有效的措施。近年来,国内也开展了灭活疫苗的研究,显示了很好的防治效果。因此,在了解本我国主要流行菌的血清型的基础上,采用灭活疫苗进行接种,可以有效预防本病的发生。同一血清型的Hps毒力可能不同,免疫原性也不同,所以,筛选一株毒力强、免疫原性好的菌株是制备Hps灭活疫苗的关键,也是预防控制本病的重中之重。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株(SHCM10),该菌株是一株强毒株,具有很好的免疫原性,利用该菌株可以制备出效果良好的副猪嗜血杆菌灭活疫苗。
本发明解决上述技术问题的技术方案如下:一种血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株,其分类命名为副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis),菌株名称为SHCM10,已保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国武汉、武汉大学,保藏编号:CCTCC NO:M 2014261,保藏日期:2014年6月15日。
该菌株由2010年5月在上海市崇明区一猪场发病猪分离获得的,具有较强的毒力和很好的免疫原性。经琼脂凝胶扩散试验证明,该菌株为血清12型。
利用该菌株通过常规方法制成不同佐剂的灭活疫苗,佐剂可以是白油佐剂、铝胶佐剂或206佐剂中的一种,分别得到的白油佐剂灭活疫苗含菌量为2.5×109CFU/mL、铝胶佐剂灭活疫苗含菌量为2.0×109CFU/mL、206佐剂灭活疫苗含菌量为2.5×109CFU/mL,可预防由血清12型副猪嗜血杆菌引起的副猪嗜血杆菌病。从而表明,该菌株是一株具有很好免疫原性。
本发明还提供了一种副猪嗜血杆菌灭活疫苗的制备方法,包括以下步骤:
(1)菌种选择血清12型副猪嗜血杆菌分离株SHCM10,已保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国武汉、武汉大学,保藏编号:CCTCC NO:M2014261,保藏日期:2014年6月15日;
(2)生产种子的制备,取冻干的SHCM10株,加无菌生理盐水溶解后,划线接种于TSA培养基上,37℃培养24h,挑取三个典型菌落,分别接种到3.0mLTSB液体培养基中,37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验,合格后按1%比例接种到TSB液体培养基中(即加入TSB液体培养基体积1%的液体菌种),37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验,检验合格后,作为生产种子,置4℃,保存不超过1日;
(3)疫苗菌液的制备,取新鲜制备的生产种子,按1%比例接种到含有TSB培养基的发酵罐中,37℃振荡培养20~22h,收获并取样,进行纯粹性 检验,并测量菌液OD值,每批疫苗菌液应无杂菌生长,且活菌数达到2.0×109CFU/mL;
(4)菌液的灭活,向检验合格的菌液中加入质量分数为10%的甲醛溶液,使甲醛最终的质量浓度百分比为0.2%,于37℃灭活18h,每3~4h摇动一次;
(5)灭活疫苗的制备,将灭活检验合格的菌液采用常规方法制备成白油佐剂灭活疫苗、铝胶佐剂灭活疫苗或206佐剂灭活疫苗。
上述步骤中的纯粹性检验按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行。
本发明的有益效果是:本发明的血清12型副猪嗜血杆菌SHCM10株生物学稳定,对仔猪具有很强的致病性,灭活后接种仔猪,具有很好的免疫原性。将其作为疫苗候选株制成的单价疫苗安全性好,能够对仔猪产生较高的抗体,持续期长,具有很好的免疫效力,能够抵抗同型野毒株的攻击。免疫后猪群发病率和死亡率明显降低,减少猪场的经济损失,其免疫效果达到或优于市场上现有商品化疫苗。
具体实施方式
以下对本发明的原理和特征进行描述,所举实例只用于解释本发明,并非用于限定本发明的范围。
实施例1:血清12型副猪嗜血杆菌的分离、鉴定及生物学特性
一、副猪嗜血杆菌的分离
1、培养基的配制
(1)TSA的配制,向1000mL蒸馏水中加入TSA 40g,充分溶解后,经过121℃30min高压灭菌后,放置室温,待温度降至50℃左右,分别向TSA中添加灭活的犊牛血清和NAD(烟酰胺二嘌呤),使血清和NAD最终的质量浓度百分比分别达到5%和0.01%,然后倒入一次性平皿中,待冷却凝固后,包装放置4℃备用。TSA平皿在4℃中保存最好不要超过30日,以免平皿中 的培养基干固,影响效果。
(2)TSB的配制,向1000mL蒸馏水中加入TSB 30g,充分溶解后,经过121℃30min高压灭菌后,放置室温,待温度降至50℃左右,分别向TSB中添加灭活的犊牛血清和NAD(烟酰胺二嘌呤),使血清和NAD最终的质量浓度百分比分别达到5%和0.01%,放置4℃备用。TSB平皿在4℃中保存最好不要超过30日,以免影响培养效果。
2、病原菌的分离
2010年5月,在上海崇明区某养猪场出现临床疑似副猪嗜血杆菌污染的病猪,解剖后,表现出胸膜炎、心包炎、关节肿胀。用无菌接种环从疑似病猪新鲜的心包积液、关节液中取样,在TSA培养基(含质量浓度百分比5%血清和0.001%的NAD)上划线接种,37℃培养24h~48h。挑取单个半透明隆起的小菌落,在TSA固体培养基上采取分区划线法,进行2次单菌落纯化培养,直至无任何杂菌为止。
二、副猪嗜血杆菌的鉴定
1、镜检
挑取上述纯化培养的单菌落在事先滴有生理盐水的载玻片上涂菌,按照常规革兰氏染色法进行染色,在光学显微镜观察。在显微镜下可见,细菌为革兰氏阴性细小杆菌,具有多种不同的形态,从单个的球杆菌到长的、细长的、甚至有细丝状的菌体。
2、NAD依赖性试验
用接种环挑取上述纯化的单菌落,水平划线于无NAD的TSA平皿上,同时挑取金黄色葡萄球菌垂直于水平划线,37℃培养24h~48h,观察是否出现“卫星生长现象”,即在葡萄球菌苔附近的的菌落较大,远侧的菌落较小甚至没有菌落存在。如果为副猪嗜血杆菌应该出现“卫星生长现象”。
3、生化鉴定试验
挑取分离纯化的疑似副猪嗜血杆菌的单菌落,水平划线于TSA培养基上,于37℃培养14h~16h,然后分别接种含NAD的微量生化管,于37℃培养48h,结果为发酵半乳糖、葡萄糖、麦芽糖、果糖、和木糖,不发酵蔗糖和甘露醇。硝酸盐还原试验、接触酶试验阳性,吲哚试验、脲酶试验、氧化酶试验阴性。生化结果表明该菌符合副猪嗜血杆菌的生化特征。
4、16S rRNA基因序列测定与分析
(1)引物设计,参照Olveira S等发表的副猪嗜血杆菌16S rRNA基因序列设计引物,目的片段为822bp。
上游引物:5′-GGC TTC GTC ACC CTC TGT-3′
下游引物:5′-GTG ATG AGG AAG GGT GGT GT-3′
PCR引物由宝生物工程(大连)有限公司合成。
(2)细菌DNA模板的制备,将待检菌株菌液12000r/min离心3min,弃去上清液后,用无菌DEPC水悬浮,在振荡器上涡旋1min,于沸水中水浴20min,取出后置于-20℃冰箱中冻结。冻融后12000r/min离心1min,上清液即为模板DNA。
(3)PCR的扩增,以菌液DNA为模板,反应体系(50μl)如表1所示:
表1 PCR扩增反应体系
rTaq-Mix | 25μl |
DEPC水 | 22μl |
上游引物 | 1.0μl |
下游引物 | 1.0μl |
模板DNA | 1.0μl |
总体积 | 50ul |
反应条件:94℃预变性5min;94℃变性40S,60℃退火40S,72℃延伸1min,运行30个循环;72℃再延伸10min,PCR产物4℃保存。以DEPC水为 模板作阴性对照。
用1×TAE电泳缓冲液配制的终浓度1.2%琼脂糖制胶,取上述PCR产物5μl进行电泳,结果在预期位置出现822bp目的条带。
(4)16S rRNA PCR扩增产物测序
利用DNA凝胶回收试剂盒回收扩增的PCR产物(DNA片段),然后与pMD18-T克隆载体连接,由生工生物工程(上海)股份有限公司进行DNA测序。将测得的序列与GenBank上的相应序列进行比较,结果显示16S rRNA与副猪嗜血杆菌的核苷酸同源性99.2%以上。
5、血清学分型
根据KeilSteia和Rapp-GabrielSon(1992)所建立的琼脂扩散试验(Gel diffusion,GD)血清学分型的方法对分离的副猪嗜血杆菌进行血清学分型。大致过程如下:将该菌株密集划线接种于TSA培养基,37℃培养24h后,用PBS洗下菌落,将菌液调整为5.0×109CFU/mL,121℃高压2h,然后对菌液8000r/mim进行离心10min,取上清作为分型抗原。用生理盐水配制1%琼脂糖凝胶,置于微波炉10min融解,加入含量0.1g/100ml硫柳汞防腐,倒平板3mm~4mm厚,用打孔器在平板上打孔(孔径3mm,孔间距4mm);然后在中央孔加分离菌沉淀抗原,周围孔加标准的阳性血清,放入湿盒中,于37℃24h~48h后观察结果。主要观察抗原与抗体孔之间的是否出现清晰的白色沉淀线,若有则判定为阳性,反之则判定为阴性。结果为抗原与12型阳性血清发生反应,出现白色沉淀,证明分离的菌株为血清12型副猪嗜血杆菌,并命名为SHCM10。
三、副猪嗜血杆菌的生物学特性
1、副猪嗜血杆菌SHCM10株外膜蛋白Oapm5序列测定
根据已发表的副猪嗜血杆菌Oamp5的序列,设计引物,扩增SHCM10株Oapm5基因并进行核苷酸序列测定。通过在NCBI网站的BLAST进行搜索,结 果表明该菌种与当前流行的副猪嗜血杆菌相似性高,具有较近的遗传进化关系,对当前流行菌株具有较高的免疫保护。
2、副猪嗜血杆菌SHCM10株保存时间的确定
将新鲜培养的副猪嗜血杆菌SHCM10株分别保存于TSA、TSB、甘油+血清、卵黄液和卵黄液(冻干),保存在4℃和-80℃。保存不同时间后取出进行复壮,以寻找合适的保存方法。结果见表1。结果表明,副猪嗜血杆菌在不同环境条件的生存时间差异很大,保存于TSA或TSB培养基中的菌在4℃保存时间很短,尤其是在TSB中。甘油+血清、卵黄液中的菌在-80℃可保1.5年,而冻干的菌保存于-70℃冻存,可以存活3年以上。结果如表2所示。
表2 SHCM10株在不同条件下存活时间
3、动物致病性试验
副猪嗜血杆菌SHCM10株接种到含质量浓度百分比5%血清和0.001%的NDA的TSB液体培养基,使活菌数达到1.0×109CFU/mL,经腹腔注射45日龄健康易感猪,5mL/头,另设1组5头作对照,腹腔注射相同剂量的TSB培养液。攻菌后,连续观察14日,每日测体温,并观察临床症状,包括采食和饮水量的变化。14日后剖杀所有猪,根据临床症状和剖检病变计算发病数量。同时取肺组织和肿大的关节液做细菌分离和鉴定。
结果见表3,显示,在连续观察14天期间,攻击SHCM10株的5头均先后发病,并有4头死亡,对照猪表现正常。攻菌猪表现为体温升高1~2日,最高达41.5℃,体温逐渐下降,在猪死亡前,体温低于正常。攻菌后采食量降低,被毛粗乱,喜卧,到后期死亡前呼吸困难。剖检后表现出同样的症状,主要为胸腔积液,有大量纤维性渗出,导致胸膜粘连,肺部淋巴结肿大,肺 有间质水肿,心包积液增多,有大量纤维素性渗出。从发病猪的关节和肺部采样,分离到副猪嗜血杆菌,而对照5头猪全部没有分离到副猪嗜血杆菌。
表3 SHCM10株攻击结果
组别 | 动物数量 | 死亡数 | 细菌分离数 |
攻击组 | 5 | 4/5 | 4/5 |
对照组 | 5 | 0/5 | 0/5 |
4、副猪嗜血杆菌SHCM10株的免疫原性试验
(1)副猪嗜血杆菌不同佐剂单价灭活疫苗的制备
a、菌液的制备
将副猪嗜血杆菌SHCM10株接种在TSA固体培养基上复苏,然后接种于TSB液体培养基中,在摇床内37℃培养14h~16h,再将种子液按培养基总体积的3%接种于TSB液体培养基,37℃,170r/min振荡扩大培养20h~22h,测定菌液OD600值,根据活菌数与OD600值相关性,计算细菌总数。向菌液中加入最终的质量浓度百分比0.2%的甲醛灭活细菌,置于37℃恒温箱灭活18h,灭活期间,每5h摇动一次。到时间后,取灭活的菌液,在TSA固体培养基划线培养,置于37℃培养48h,观察是否有菌落长出以确定灭活效果。将完全灭活的菌液4500r/min离心20min,弃去上清,生理盐水悬浮沉淀,洗涤2次,最后一次加入适当体积的生理盐水,使菌液浓度为1.0×1010CFU/mL,向其中加入最终的质量浓度百分数为0.01%的硫柳汞溶液,置4℃保存备用。
b、不同佐剂疫苗的配制
白油佐剂灭活疫苗的配制:将灭活检验合格的菌液按体积加入最终的质量浓度百分数为4%的灭菌吐温-80,边加边搅拌,至完全溶解,制成灭活疫苗水相。向矿物油中加入质量浓度百分数为5%的span80制成油相。将白油佐剂加入到实验室高速分散机搅拌器中,开动分散器进行缓慢搅拌,按油相: 水相3:1的比例,向其中加入水相,再加入最终的质量浓度百分数为0.01%的硫柳汞溶液,水相完全加入后,开动电机乳化5min~10min,直至乳化完全。白油佐剂灭活疫苗成品中细菌的含量为2.5×109CFU/mL,置于4℃保存。
铝胶佐剂灭活疫苗的配制:将灭活检验合格的菌液调整为2.5×109CFU/mL,与等量的质量分数为20%的灭菌氢氧化铝盐水稀释液混合,室温下搅拌20min,在室温下静置24h,吸出总体积1/2的上清液,加入最终的质量浓度百分数为0.01%的硫柳汞溶液。铝胶佐剂灭活疫苗成品中细菌的含量为2.0×109CFU/mL,置于4℃保存。
206佐剂灭活疫苗(w/o/w)的配制:将灭活检验合格的菌液调整为5.0×109CFU/mL。将206佐剂加入到搅拌器中缓慢搅拌,向其中缓慢加入等体积灭菌菌液,再加入最终的质量浓度百分数为0.01%的硫柳汞溶液。按206佐剂的操作说明进行乳化。206佐剂灭活疫苗成品中细菌的含量为2.5×109CFU/mL,置于4℃保存。
c、不同佐剂单价灭活疫苗的免疫原性
取40只5周龄豚鼠,平均分4组,每组10只,1~3组分别接种白油佐剂灭活疫苗、铝胶佐剂灭活疫苗和206佐剂灭活疫苗,每只颈部皮下注射0.5mL,第4组作对照。第一次接种后14天,重复接种一次,剂量同第一次。第二次接种21天后,采血分离血清。用微量板凝集试验检测各组每头豚鼠的抗体效价。结果见表4,从表中可见,副猪嗜血杆菌SHCM10株与不同类型佐剂混合,匀可引起很高的抗体效价,抗体效价为微量板凝集试验抗体效价(xlog2),其中铝胶组引起的效价最高,其次是矿物油佐剂组,最低的是206佐剂组。
表4二兔后21日各组抗体效价
实施例2:分离株SHCM10株在副猪嗜血杆菌灭活疫苗中的应用
一、菌种选择
选择血清12型副猪嗜血杆菌分离株SHCM10,已保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国武汉、武汉大学,保藏编号:CCTCC NO:M 2014261,保藏日期:2014年6月15日;
二、生产种子的制备
取冻干的SHCM10株,加无菌生理盐水溶解后,划线接种于TSA培养基上,37℃培养24h,挑取三个典型菌落,分别接种到3.0mLTSB液体培养基中,37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验(按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行,以下纯粹性检验也是如此),合格后按1%比例接种到TSB液体培养基中(即加入TSB液体培养基体积1%的液体菌种),37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验,检验合格后,作为生产种子,置4℃,保存不超过1日;
三、疫苗菌液的制备
取新鲜制备的生产种子,按1%比例接种到含有TSB培养基的发酵罐中,37℃振荡培养20~22h,收获并取样,进行纯粹性检验,并测量菌液OD值,每批疫苗菌液应无杂菌生长,且活菌数达到2.0×109CFU/mL;
四、菌液的灭活
向检验合格的菌液中加入质量分数为10%的甲醛溶液,使甲醛最终的质量浓度百分比为0.2%,于37℃灭活18h,每3~4h摇动一次;
五、灭活疫苗的制备
将灭活检验合格的菌液采用实施例1中所述的方法制备成白油佐剂灭活疫苗、铝胶佐剂灭活疫苗或206佐剂灭活疫苗。
六、疫苗成品检验
1、外观:静置10h,分上下2层,上层为清澈无色,下层为乳白色;摇动疫苗,呈现乳白色均匀的混悬液。
2、无菌检验:按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行,无杂菌生长。
3、甲醛含量测定:按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行,甲醛含量(质量浓度百分数)为0.05%~0.10%,符合兽用生物制品通则的规定。
4:安全性检验:以实验室制备的灭活疫苗单剂量(2.0mL)、单剂量重复和超剂量(2倍单剂量),分别经颈部肌肉注射2~3周龄健康易感仔猪,每组5头,另设5头注射相同剂量的PBS;同时,2倍单剂量注射妊娠90日的母猪5头,另设5头注射相同剂量的PBS。所有猪连续观察14日,每天在固定时间内测量每头猪的体温,观察注射部位和全身反应,包括采食和饮水量,重点检查注射部位的变化。结果在观察期内,仔猪没有出现任何由疫苗引起的局部和全身不良反应,母猪没有出现流产和死胎。说明制备的疫苗具有很好的安全性。
5、灭活疫苗的效力试验:用2周龄健康仔猪10头,其中5头猪颈部肌肉接种疫苗,剂量为2.0mL/头,14日后,以相同剂量再接种一次;另5头作对照组,接种相同剂量的PBS。二免后21日,用新鲜培养的副猪嗜血杆菌SHCM10株腹腔注射,5.0×109CFU/头,攻菌后连续观察14日,剖检,根据临床症状和剖检病变统计攻毒保护率。在观察期间,主要观察临床症状。动物的发病标准:发病猪出现发热(体温40.5℃以上,持续1~5天)、精神萎靡、咳嗽、呼吸困难、消瘦、跋行和被毛粗乱等临床症状。死亡的猪进行解剖,可见胸膜炎、心包炎、腹膜炎、关节炎和脑膜炎等多发性浆膜和关节炎的病变,各浆膜面出现浆液性或纤维素性渗出物。结果显示,对照组全部发病,并有4头死亡,而免疫组全部保护,没有出现任何临床症状,保护率 为100%(5/5),说明疫苗对仔猪具有很好的免疫效力。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (7)
1.一种血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株,其特征在于,其分类命名为副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis),菌株名称为SHCM10,已保藏于位于中国武汉的中国典型培养物保藏中心,保藏编号:CCTCC NO:M 2014261,保藏日期:2014年6月15日。
2.一种如权利要求1所述血清12型副猪嗜血杆菌疫苗株在制备副猪嗜血杆菌灭活疫苗中的应用。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于,所述副猪嗜血杆菌灭活疫苗为白油佐剂灭活疫苗、铝胶佐剂灭活疫苗或206佐剂灭活疫苗。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述白油佐剂灭活疫苗中含菌量为2.5×109CFU/mL。
5.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述铝胶佐剂灭活疫苗中含菌量为2.0×109CFU/mL。
6.根据权利要求3所述的应用,其特征在于,所述206佐剂灭活疫苗中含菌量为2.5×109CFU/mL。
7.一种副猪嗜血杆菌灭活疫苗的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)菌种选择血清12型副猪嗜血杆菌分离株SHCM10,已保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国武汉、武汉大学,保藏编号:CCTCC NO:M2014261,保藏日期:2014年6月15日;
(2)生产种子的制备,取冻干的SHCM10株,加无菌生理盐水溶解后,划线接种于TSA培养基上,37℃培养24h,挑取三个典型菌落,分别接种到3.0mLTSB液体培养基中,37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验,合格后按1%比例接种到TSB液体培养基中,37℃振荡培养20~22h,收获培养物,进行纯粹性检验,检验合格后,作为生产种子,置4℃,保存不超过1日;
(3)疫苗菌液的制备,取新鲜制备的生产种子,按1%比例接种到含有TSB培养基的发酵罐中,37℃振荡培养20~22h,收获并取样,进行纯粹性检验,并测量菌液OD值,每批疫苗菌液应无杂菌生长,且活菌数达到2.0×109CFU/mL;
(4)菌液的灭活,向检验合格的菌液中加入质量分数为10%的甲醛溶液,使甲醛最终的质量浓度百分比为0.2%,于37℃灭活18h,每3~4h摇动一次;
(5)灭活疫苗的制备,将灭活检验合格的菌液采用常规方法制备成白油佐剂灭活疫苗、铝胶佐剂灭活疫苗或206佐剂灭活疫苗。
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