CN104237412A - 一种高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种atp关联产物的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于分析化学领域,公开了一种用高效液相色谱—二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法。使用带有二极管阵列检测器的高效液相色谱仪进行检测,将待测样品提取后进样到高效液相色谱仪中,梯度洗脱;根据各ATP关联产物的保留时间及紫外吸收光谱,确定各色谱峰是哪一种ATP关联产物,检测相应ATP关联产物色谱峰面积,根据同样色谱条件下ATP关联物标准工作曲线或者回归方程计算待测样品提取液中ATP关联产物的含量。本方法的设备及分析条件要求简单,不用离子对试剂也可以同时测定水产品中多种ATP关联产物含量,可同时测10种,分离时间不超过25分钟。
Description
技术领域
本发明属于分析化学领域,涉及检测水产品中多种ATP关联产物的方法,特别涉及用高效液相色谱—二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法。
背景技术
ATP关联产物是由嘌呤碱基、嘧啶碱基、尼克酰胺等与糖磷酸酯组成的一类化合物,如三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)、二磷酸腺苷(AdenosineDiphosphate,ADP)、腺苷酸(Adenosine Monophosphate,AMP)、肌苷酸(Inosinicacid,IMP)、次黄嘌呤核苷(Inosine,HxR)、次黄嘌呤(Hypoxanthine,Hx)、鸟苷酸(Guanylic acid,GMP),腺苷(Adenosine,AdR),腺嘌呤(Adenine,Ad)、黄嘌呤(Xanthine,Xt)等。它们是水产动物肌肉核苷酸的主要成分,与水产原料的风味和新鲜度紧密相关。在风味方面,如AMP有着压抑苦味的特性,能使食物产生良好的甜味和咸味,Hx会产生苦味,IMP是水产动物肌肉主要的呈味核苷酸,IMP增加食品鲜味的能力比谷氨酸钠强40倍。在鲜度方面,一般认为鱼死后鱼肉内ATP依次降解为ADP、AMP、IMP、HxR和HX,其中HxR、Hx量之和对ATP关联物总量的比值即为K值。K值作为鱼类鲜度指标已被公认。对于贝类,SaitoHuArai和wamoto嘲等对几种双壳动物的肌肉进行分析,发现在蛤蜊和扇贝中,ATP及其关联物的降解过程为ATP→ADP→AMP→AdR→HxR→Hx→Xt,而在舟贝、毛蚶和鲍鱼中按途径ATP→ADP→AMP→AdR→Ad进行。因此,快速准确检测出鱼体中的ATP及其关联产物对水产原料的风味和新鲜度有很重要的意义。
目前国内外测定ATP关联物含量的方法主要有离子交换液相色谱法、毛细管电泳法和反相液相色谱法等。离子交换色谱法对核苷酸等兼性离子化合物能很好的分离,但其需要对分离柱进行平衡(再生),且分析时间较长;高效毛细管电泳法对各种呈味核苷酸的分辨率较高,但仪器昂贵;反相高效液相色谱法具有快速、操作简便的优点,是目前生物、食品等研究领域主要使用的方法,但以往的反相高效液相色谱法分离的核苷酸或种类有限,或采用离子对试剂法分离,造成待测核苷酸相互有干扰或分析时间过长。如:刘亚等用高效液相色谱法测定了马氏珠母贝肉中的ATP关联产物(食品与发酵工业,2008,36(6):137-141),该法只测定了6种ATP关联产物,可能存在其他核苷酸的干扰。杨文鸽、陈舜胜等采用离子对高效液相色谱法测定了水产品中ATP降解产物(农业工程学报,2007,(06).217-222)、(水产学报,2011,35(11).1745-1752),离子对高效液相色谱法稳定时间过长,分离度不好,分析效率低,且对柱子污染大,暂时还没有一种设备要求低、不采用离子对试剂、分析效率高且定性稳定、能够同时测定水产品中该9种ATP关联产物的高效液相色谱法。
发明内容
本发明目的是提供一种操作简单、分离速度快、不使用离子对试剂且定量定性准确,能够同时测定水产品中多种ATP关联产物的高效液相色谱-二极管阵列法,解决以上现有技术中存在的分离效果不好、种类有限、分析时间过长、柱子污染严重及定性不准确等不足。
所测定的ATP关联产物为三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)、二磷酸腺苷(Adenosine Diphosphate,ADP)、腺苷酸(Adenosine Monophosphate,AMP)、肌苷酸(Inosinic acid,IMP)、次黄嘌呤核苷(Inosine,HxR)、次黄嘌呤(Hypoxanthine,Hx)、鸟苷酸(Guanylic acid,GMP),腺苷(Adenosine,AdR),腺嘌呤(Adenine,Ad)和黄嘌呤(Xanthine,Xt)中的至少一种。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案为:
使用带有DAD(二极管阵列)检测器的高效液相色谱仪进行检测,将待测样品提取液加入到高效液相色谱仪中,梯度洗脱。
用二极管阵列检测器扫描确定检测各ATP关联产物的最佳检测波长(紫外最大吸收波长和200~400nm下的紫外吸收光谱,根据特征光谱确定各色谱峰是哪一种ATP关联产物。
10种ATP关联产物的紫外最大吸收波长分别为:三磷酸腺苷259.1nm、二磷酸腺苷253.2nm、腺苷酸248.4nm、肌苷酸259.1nm、次黄嘌呤核苷248.4nm、次黄嘌呤259.1nm、鸟苷酸260.3nm、腺苷248.4nm、腺嘌呤259.1nm、黄嘌呤267.4nm。
检测相应ATP关联产物色谱峰面积,根据同样色谱条件下标准工作曲线或者回归方程计算ATP关联产物的含量。
液相色谱柱采用通用型,填料选自十八烷基键合相硅胶;流动相由甲醇(A相)和15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液(B相)组成,磷酸氢二钾缓冲液pH调为5.9,梯度洗脱。
色谱条件为,分析柱:填料选自十八烷基键合相硅胶的通用型液相色谱柱;流速:0.5~1.5mL/min,优选为1.0mL/min;进样量为8~12μl,优选为10μl;柱温为30~35℃,优选为30~32℃。优选的,以规格为4.6×250mm i.d,5μm的watersC18色谱柱为固定相。
流动相由A相的有机溶剂和B相的缓冲液组成;A相为甲醇或乙腈,B相为pH5.8~6.0、浓度为15~60mmol/L的缓冲液,例如磷酸氢二钾缓冲液,磷酸二氢钾缓冲液、磷酸氢二钠缓冲液、柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液或乙酸-乙酸钠缓冲液。优选为pH5.8~6.0、浓度为15~60mmol/L的磷酸氢二钾缓冲液;更优选浓度pH5.8~5.9、浓度为15~25mmol/的磷酸氢二钾缓冲液。
梯度洗脱程序如下:
第一阶段:A相0%、B相100%;持续时间为5.5~6.5min;
第二阶段:瞬时调整为A相7%~9%、B相91%~93%,并以这个梯度洗脱;持续时间为8.5~10min;
第三阶段:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%;持续时间为4.5~6min;
第四阶段:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%;持续时间为1.5~3min;
第五阶段:两种流动相匀速变化到A相0%、B相100%;持续时间为2.5~4min。上述比例均为体积比。
或者,优选的梯度洗脱程序为:
第一阶段为第0.00~6.00min:A相0%、B相100%;
第二阶段为第6.00~15.00min,在第二阶段开始时(可以是第6.00~6.01min时),瞬时调整为A相7%~9%、B相91%~93%(优选为A相8%,B相92%)并以这个梯度洗脱;
第三阶段为第15.00~20.00min:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%(优选为A相35%,B相65%);
第四阶段为第20.00~22.00min:两种流动相匀速变化到A相36%~43%,B相57%~62%%(优选为A相35%,B相65%);
第五阶段为第22.00~25.00min:两种流动相匀速变化到A相0%、B相100%。
优选的,流动相在使用前用0.22~0.5μm(优选为0.45μm)的水相微孔滤膜过滤后,超声脱气3~10分钟。
优选的,检测相应ATP关联产物色谱峰面积,根据标准工作曲线或者回归方程计算ATP关联产物的含量。用二极管阵列检测器扫描确定检测各ATP关联产物的最佳检测波长(紫外最大吸收波长),并根据三维色谱图对样品中的10种ATP关联产物进行进一步定性,确定各色谱峰是哪一种ATP关联产物。
待测样品提取液的制备方法为:
a.取水产品样品,按照1g:1~3ml的的用量比,与预冷到0~4℃、质量浓度为3%~6%的高氯酸溶液混合均质进行浸提,0~4℃下2000~8000rpm离心5~20min,收集上清液;
b.取沉淀按上述步骤a的方法操作重复1~3次,合并上清液;
c.加入KOH或NaOH将pH中和至5.5~6.0(优选为5.8~6.0,更优选5.9),过滤去除高氯酸钾或高氯酸钠结晶固体,再用流动相B相中的缓冲液定容;
d.用孔径为0.22~0.5μm的滤膜(优选为0.45μm)过滤,即获得待测样品提取液。
标准工作曲线或回归方程的建立方法为:分别称取ATP关联物标准品,用流动相的B相配制成不同浓度的标准溶液,进行液相色谱测定,根据保留时间和二极管阵列检测器扫描图谱定性,以核苷酸浓度为横坐标,所测相应核苷酸色谱峰面积为纵坐标作图,并绘制标准工作曲线或者拟合回归方程。
上述方法可用外标法定量分析水产品中多种ATP关联产物的含量。
水产品样品前处理的具体方案为:
(1)新鲜水产品肉与0~10℃的5wt%~8wt%的高氯酸匀浆1~2min,两者比例为1g:1.3~3ml;超声提取3~8min后,低温离心;分离上清液和沉淀;
(2)步骤(1)的沉淀用0~10℃的5wt%~8wt%的高氯酸再次匀浆,超声提取3~8min后,低温离心;分离上清液和沉淀;并重复1~3次;
(3)合并步骤(1)和步骤(2)的上清液,加入KOH或NaOH中和至pH=5.8~6.0(优选5.9),去除高氯酸盐结晶,加入流动相B相溶解定容,再用孔径为0.4~0.6μm滤膜过滤。
本发明的创新在于用常规的液相色谱仪及C18色谱柱即可进行检测,设备及分析条件要求简单,通过选择合适的流动相条件、合适的pH以及梯度洗脱程序,不用离子对试剂也可以同时测定水产品中多种ATP关联产物含量,最多可同时测10种;分离时间不超过25分钟。本方法不使用离子对试剂,可大大提高检测效率,延长色谱柱的使用寿命;具有污染柱子少、操作快速简便、灵敏度高等优点,同时采用二极管阵列检测器对样品进行扫描,定性更准确,明显优于已公开的技术,因此是一项非常值得广泛应用和推广的技术。
附图说明
图1实施例1的10种ATP关联物(100μg/mL浓度的溶液)的紫外210-400nm的扫描光谱图
图2为实施例1的10种ATP关联产物的三维色谱图
图3为实施例1的10种ATP关联产物标准品混合溶液(每种物质浓度为50μg/mL)液相色谱图(柱温32℃)
图4为实施例2中华绒螯蟹肉样品的液相色谱图
图5为实施例2斑节对虾肉样品的液相色谱图
图6为实施例3的10种ATP关联产物标准品混合溶液(每种物质浓度为100μg/mL)液相色谱图(柱温30℃)
图7为实施例4秀丽白虾肉样品的液相色谱图
图8为实施例4凡纳滨对虾肉样品的液相色谱图
图9为实施例4哈氏仿对虾肉样品的液相色谱图
图10为实施例4文蛤肉样品的液相色谱图
图11为实施例4白蛤肉样品的液相色谱图
图12为对比例1(A)10种ATP关联产物标准品混合溶液的液相色谱图(柱温32℃)
图13为对比例1(B)10种ATP关联产物标准品混合溶液的液相色谱图
图14为对比例2(A)10种ATP关联产物标准品混合溶液的液相色谱图
图15为对比例2(B)10种ATP关联产物标准品混合溶液的液相色谱图
具体实施方式
以下结合实施例旨在进一步说明本发明,而非限制本发明。
实施例1分离检测10种ATP关联物
(1)标准样品溶液的制备:用pH=5.9、浓度为15mmol/L的磷酸氢二钾缓冲溶液(流动相B相)为溶剂,分别称取10种ATP关联物标准品ATP、GMP、IMP、ADP、Hx、AMP、Ad、HxR、AdR和Xt,配制浓度液分别为0.01~750μg/mL的ATP关联物系列标准溶液。
(2)最佳紫外检测波长的确定:取浓度为100μg/mL的标准溶液,用二极管阵列检测器扫描确定检测10种ATP关联产物的210~440nm下的紫外吸收光谱和最佳检测波长(紫外最大吸收波长),确定ATP、GMP、IMP、ADP、Hx、AMP、Ad、HxR、AdR和Xt的最佳紫外检测波长分别为259.1、253.2、248.4、259.1、248.4、259.1、260.3、248.4、259.1、267.4nm,结果图1。
(3)将10种ATP关联物标准品用pH=5.9、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液制成混合溶液,每种ATP关联物浓度为100μg/mL,进行液相色谱测定,使用Waters e2695高效液相色谱仪进行检测(美国Waters),并且配有Waters 2996二极管阵列检测器及Empower2色谱软件。液相色谱柱采用通用型,填料选自十八烷基键合相硅胶,Waters Atlantis T3C18(4.6×250mm,5μm)。
色谱条件为:Waters Atlantis T3C18(4.6×250mm,5μm)色谱柱,流速1.0mL/min;进样量为10μl;柱温为30℃。进样量10μL,流速1ml/min。
10种ATP关联产物经自动进样器进样后到达色谱柱分离,用二极管阵列检测器进行检测分析。
用二极管阵列检测器扫描确定检测各ATP关联产物洗脱色谱峰的最佳检测波长和210~440nm下的紫外吸收光谱,对样品中的10种ATP关联产物进行进一步定性,确定各色谱峰是哪一种ATP关联产物。三维色谱图和液相色谱图结果如图2和图3。
流动相由甲醇(A相)和pH=5.9、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液(B相)组成,磷酸氢二钾缓冲液pH调为5.9,按表1的程序梯度洗脱。A相和B相先用0.45μm的水相微孔滤膜过滤并超声脱气5分钟。
表1 梯度洗脱程序
时间(min) | 0.00 | 6.00 | 6.01 | 15.00 | 20.00 | 22.00 | 25.00 |
A相(体积%) | 0 | 0 | 8 | 8 | 35 | 35 | 0 |
B相(体积%) | 100 | 100 | 92 | 92 | 65 | 65 | 100 |
第6.01min~第15min、第15min~第20min、和第22.00~第25.00min各阶段,A相和B相的体积比均为匀速变化。分别确定各ATP关联产物的保留时间。
再将浓度为50μg/mL的上述10种ATP关联物标准溶液(用pH=5.9、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液配制)分别采用相同的方法进行液相色谱测定,保留时间与混合溶液的测定结果相同。
(4)标准工作曲线:分别取不同浓度的ATP关联产物标准溶液,用相同条件进行液相色谱测定,根据保留时间和二极管阵列检测器扫描图谱定性,以核苷酸浓度为横坐标,所测相应核苷酸色谱峰面积为纵坐标作图,并绘制标准工作曲线,得到相应ATP关联产物的回归方程。结果如表2。
表2 10种ATP关联产物的最低检测限、回归方程、线性范围以及最大吸收波长
在洗脱梯度不变的情况下,将流动相B相的pH值调整为5.8或6.0,或者将流动相B相改为pH=5.9的同浓度磷酸二氢钾缓冲液、磷酸氢二钠缓冲液、柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液或乙酸-乙酸钠缓冲液洗过分离效果相似,与实施例1结果一样。
在洗脱梯度不变的情况下,将流动相B相的pH值调整为3.5-5.5、6.5-6.8,在这两个pH区间范围内,因所测10种ATP关联产物的ATP、GMP、IMP和ADP四种物质的出峰时间非常接近,特别是GMP和IMP,很难分离。
将流动相B相替换为0.02mol/L乙酸铵缓冲溶液时,只可分离出部分物质,有几种物质相互重叠,,如IMP和GMP、Hx和Xt并未完全分离,且峰型不好。
流动相B相磷酸氢二钾缓冲液浓度在0.01mol/L时,基线容易波动,峰形较差,有的峰还有拖尾现象。缓冲液浓度在0.02mol/L、0.03mol/L、0.04mol/L、0.05mol/L、0.06mol/L时10种标准物可以得到较好的分离,峰型很好,出峰时间稳定,保留时间变短,取得与实施例1一样的效果。
采用乙腈时,洗脱分离效果和甲醇相似,10种ATP关联产物都可以达到完全分离。
实施例2测定水产品(1)
测定的水产品有斑节对虾和中华绒螯蟹。
待测液的制备:取新鲜水产品(虾肉或蟹肉)5.0g于离心管中,加入10mL预冷到4℃的10%的高氯酸匀浆1min,用玻璃棒搅拌均匀,在冷冻离心机4℃下10000rpm离心10min,取上清液过滤,过滤后所剩的沉淀物加入预冷的5%高氯酸溶液再进行浸提、离心,重复2次后合并上清液,用KOH溶液中和上清液至pH为5.9。过滤去除高氯酸钾,用pH=5.9、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液(流动相的B相)定容至50mL容量瓶中。
取上述样液2mL,经孔径为0.45μm的水相微孔滤膜过滤后,上机进样分析,完成ATP关联产物的分离与测定。色谱条件、洗脱程序和测试方法同实施例1的步骤(3)和(4)。通过外标法进行定量,并通过对比样品和标准品中9种ATP关联产物的全波段色谱扫描图谱的相似程度,鉴定色谱峰的纯度。
各样品的检测图谱如图4、图5所示。然后根据外标法定量,由回归方程分析其中ATP关联产物的含量。样品中ATP关联产物含量如表3。
表3 样品中的ATP关联产物的含量(μmol/g)
样品 | ATP | GMP | IMP | ADP | Hx | Xt | AMP | Ad | HxR | AdR |
斑节对虾 | 0.16 | 0 | 3.22 | 0.89 | 0.18 | 0.58 | 7.27 | 0 | 0.53 | 0.06 |
中华绒螯蟹 | 0.12 | 0.30 | 0.29 | 0.77 | 0.12 | 1.5 | 6.29 | 2.50 | 0.87 | 0.62 |
实施例3
取ATP、GMP、IMP、ADP、Hx、Xt、AMP、Ad、HxR和AdR等10种ATP关联物标准品,用pH=5.9、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液制成混合溶液,每种ATP关联物浓度为100μg/mL。
上述混合溶液用Waters e2695高效液相色谱仪(美国Waters)检测(配有Waters 2996二极管阵列检测器及Empower2色谱软件)。
色谱条件为:液相色谱柱采用通用型,填料选自十八烷基键合相硅胶,如Waters Atlantis T3C18(4.6×250mm,5μm)。流速1.0mL/min;进样量为10μl;柱温为32℃。其余检测方法和条件同实施例1,液相色谱图结果如图6。
最低检测限、回归方程、线性范围以及最大吸收波长同实施例1。
实施例4测定水产品(2)
测定的水产品有凡纳滨对虾、秀丽白虾、哈氏仿对虾、文蛤和白蛤。
待测液的制备方法同实施例2,色谱的柱温为32℃,其他检测方法和条件同实施例2。
各样品的检测图谱如图7至图11所示。然后根据外标法定量,由回归方程分析其中ATP关联产物的含量。样品中ATP关联产物含量如表4。
表4 样品中的ATP关联产物的含量(μg/g)
对比例1
(A)取ATP、GMP、IMP、ADP、Hx、Xt、AMP、Ad、HxR和AdR 10种ATP关联物标准品混合溶液检测(每一种ATP关联物浓度为50μg/mL),色谱条件为:液相色谱柱Waters Atlantis T3C18(4.6×250mm,5μm),流速1.0mL/min;进样量为10μl;柱温为30℃。流动相由甲醇(A相)和pH=5.5、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液(B相)组成,A相和B相使用前先用0.45μm的水相微孔滤膜过滤并超声脱气5分钟,按表5的程序梯度洗脱,结果如图12,分离效果不好,不能将各种物质分离开。
表5
时间(第min) | 0.00 | 6.00 | 6.01 | 15.00 | 35.00 |
A相(体积%) | 0 | 0 | 10 | 35 | 35 |
B相(体积%) | 100 | 100 | 90 | 65 | 65 |
(B)取取ATP、GMP、IMP、ADP、Hx、AMP、Ad、HxR、AdR和Xt 10种ATP关联物标准品混合溶液检测(每一种ATP关联物浓度为50μg/mL),色谱条件的柱温为32℃,流动相B相的pH=5.0,其余同(A),结果如图13,分离效果不好,特别是前几个峰粘在一起无法分离。
对比例2
(A)取10种ATP关联物标准品混合溶液检测(每一种ATP关联物浓度为50μg/mL),色谱条件同对比例1(B),流动相由甲醇(A相)和pH=5.5、浓度为15mmol/L磷酸氢二钾缓冲液(B相)组成,按表6的程序梯度洗脱,结果如图14,只出现7个峰,有几个峰相互重叠,没有分离开。
表6
时间(第/min) | 0.00 | 6.00 | 6.01 | 25.00 |
A相(体积%) | 0 | 0 | 15 | 15 |
B相(体积%) | 100 | 100 | 85 | 85 |
(B)流动相B相选用15mmol/L、pH=5.5的乙酸-乙酸钠缓冲液,第6.01min开始以A相15%、B相85%的体积比洗脱至第45min,其余同(A),结果如图15,分离时间长,而且有几个峰重叠。
Claims (10)
1.一种高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物的方法,其特征在于,包括如下步骤:
使用带有二极管阵列检测器的高效液相色谱仪进行检测,将待测样品提取液加入到高效液相色谱仪中,梯度洗脱;根据各ATP关联产物的保留时间和210~400nm下的紫外吸收光谱,确定各色谱峰是哪一种ATP关联产物;
色谱条件为,分析柱:填料选自十八烷基键合相硅胶的通用型液相色谱柱;流速:0.5~1.5mL/min;进样量为8~12μl;柱温为30~35℃;
洗脱程序为:
第一阶段:A相0%、B相100%;持续时间为5.5~6.5min;
第二阶段:瞬时调整为A相7%~9%、B相91%~93%,并以这个梯度洗脱;持续时间为8.5~10min;
第三阶段:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%;持续时间为4.5~6min;
第四阶段:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%;持续时间为1.5~3min;
第五阶段:两种流动相匀速变化到A相0%、B相100%;持续时间为2.5~4min;上述比例均为体积比;
所述流动相由A相的有机溶剂和B相的缓冲液组成;A相为甲醇或乙腈,B相为pH5.8~6.0、浓度为15~60mmol/L的磷酸氢二钾缓冲液,磷酸二氢钾缓冲液、磷酸氢二钠缓冲液、柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液或乙酸-乙酸钠缓冲液;
检测相应ATP关联产物色谱峰面积,根据同样色谱条件下ATP关联物标准工作曲线或者回归方程计算待测样品提取液中ATP关联产物的含量。
2.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物的方法,其特征在于,所测定的ATP关联物为三磷酸腺苷、二磷酸腺苷、腺苷酸、肌苷酸、次黄嘌呤核苷、次黄嘌呤、鸟苷酸、腺苷、腺嘌呤和黄嘌呤中的至少一种。
3.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物的方法,其特征在于,所述的流动相A相为甲醇。
4.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物的方法,其特征在于,所述的流动相B相为pH5.8~6.0、浓度为15~60mmol/L的磷酸氢二钾缓冲液。
5.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,色谱条件为:分析柱选自十八烷基键合相硅胶的通用型液相色谱柱;流速0.5~1.5mL/min;进样量为8~12μl;柱温为30~35℃。
6.权利要求5所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,流速为1.0mL/min;进样量为10μl;柱温选为30~32℃。
7.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,梯度洗脱程序为:
第一阶段为第0.00~6.00min:A相0%、B相100%;
第二阶段为第6.00~15.00min,在第二阶段开始时(可以是第6.00~6.01min时),瞬时调整为A相7%~9%、B相91%~93%,并以这个梯度洗脱;持续时间为8.5~10min;
第三阶段为第15.00~20.00min:两种流动相匀速变化到A相32%~40%,B相60%~68%;
第四阶段为第20.00~22.00min:两种流动相匀速变化到A相36%~43%,B相57%~62%%;
第五阶段为第22.00~25.00min:两种流动相匀速变化到A相0%、B相100%。
8.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,梯度洗脱程序为:
第一阶段为第0.00~6.00min:A相0%、B相100%;
第二阶段为第6.00~15.00min,在第二阶段开始时瞬时调整为A相8%,B相92%并以这个梯度洗脱;
第三阶段为第15.00~20.00min:两种流动相匀速变化到A相35%,B相65%;
第四阶段为第20.00~22.00min:两种流动相匀速变化到A相35%,B相65%;
第五阶段为第22.00~25.00min:两种流动相匀速变化到A相0%、B相100%。
9.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,所述流动相在使用前用0.22~0.5μm的水相微孔滤膜过滤后,超声脱气3~10分钟。
10.权利要求1所述高效液相色谱-二极管阵列法同时测定水产品中多种ATP关联产物含量的方法,其特征在于,水产品待测样品提取液的制备方法为:
a.取水产品样品,按照1g:1~3ml的的用量比,与预冷到0~4℃、质量浓度为3%~6%的高氯酸溶液混合均质进行浸提,0~4℃下2000~8000rpm离心5~20min,收集上清液;
b.取沉淀按上述步骤a的方法操作重复1~3次,合并上清液;
c.加入KOH或NaOH将pH中和至5.8~6.0,过滤去除高氯酸钾或高氯酸钠结晶固体,再用流动相B相中的缓冲液定容;
d.用孔径为0.22~0.5μm的滤膜过滤,即获得待测样品提取液。
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