发明内容
发明目的:本发明的目的是提供一种通过HPLC指纹图谱对消症丸制剂进行检测的方法,本发明的目的是解决现有技术的不足,提供一种精密度高,重复性和稳定性好,能客观、全面、准确的评价消症丸制剂质量的指纹图谱检测方法,能更有效的保证成品的质量,对控制消症丸制剂的质量具有重要作用。该方法采用HPLC梯度洗脱在一个流动相系统首次同时检出复方中十味药材成分,从色谱峰的特征和相似度结果判断消症丸制剂的样品合格与否,从整体上全面反映消症丸所用药材内在质量,不仅能全面反映消症丸制剂成品的质量,还可根据成品、半成品的指纹图谱变化追根溯源寻找工艺操作中的问题。本发明还提供了消症丸制剂的标准指纹图谱。
技术的方案:为了实现以上目的,本发明的通过HPLC指纹图谱对消症丸制剂进行检测的方法包括如下步骤:
(1)供试品溶液的制备:取消症丸制剂内容物细粉1.0g,精密称定,置50ml锥形瓶中,精密加入浓度为90%乙醇溶液50ml,超声处理(功率250W,频率40kHz)30分钟,静置放冷,过滤,滤液减压回收乙醇,浓缩,上AB-8大孔吸附树脂柱,分别用400ml水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇、80%乙醇、95%乙醇,按每小时3~4倍柱体积的流速洗脱,合并40%、60%、80%、95%乙醇洗脱液,减压浓缩,加甲醇定容至10ml,吸取溶液,过0.45μm滤膜,取续滤液,即得;
(2)对照品溶液的制备:精密称取芍药苷、阿魏酸、橙皮苷、大黄酸、大黄素、芦荟大黄素、大黄素甲醚、大黄酚适量,加甲醇溶解,分别制成芍药苷浓度为36μg/ml、阿魏酸浓度为56.3μg/ml、橙皮苷浓度为42μg/ml、大黄酸浓度为24.6μg/ml、大黄素浓度为29.8μg/ml、芦荟大黄素浓度为51.6μg/ml、大黄素甲醚浓度为38.6μg/ml、大黄酚浓度为26μg/ml的对照品溶液;
(3)消症丸制剂HPLC指纹图谱的测定:分别精密吸取对照品溶液和供试品溶液各50μl,进样,用高效液相色谱仪测定,以参照峰保留时间和峰面积为1,计算供试品相对保留时间和相对峰面积,即得消症丸制剂HPLC指纹图谱;
色谱条件为:色谱柱:用十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;流动相:A相为乙腈,B相为0.3%磷酸水,梯度洗脱;检测波长:245nm~254nm;柱温35℃~45℃; 流速0.8ml/min~1ml/min。
色谱条件的筛选:本发明分别对色谱柱、洗脱系统、洗脱程序、柱温、检测波长进行了筛选。
色谱柱的筛选:分别筛选色谱柱1:Xbridge C18(4.6×250mm,5μm,Waters);色谱柱2:ODS Hypersil C18(4.6×250mm,5μm,Thermo);色谱柱3:ODS-2C18(4.6×250mm,5μm,Hedera)。根据色谱峰的分离情况和总峰数,优选色谱柱1:Xbridge C18(4.6×250mm,5μm,Waters)色谱柱。
洗脱系统的筛选:本发明分别筛选洗脱系统:1:甲醇-水;2:乙腈-水;3:乙腈-0.1%磷酸;4:乙腈-0.2%磷酸;5:乙腈-0.3%磷酸。根据色谱峰分离效果和峰型等,优选5:乙腈-0.3%磷酸为最终洗脱系统。
洗脱程序的筛选:本发明以乙腈-0.3%磷酸做流动相,筛选了程序1-6的洗脱程序,以乙腈百分比表示,括号内表示时间(min):
程序1:10%(0)~18.4%(9)~18.4%(23)~20.5%(26)~20.5%(33)~24.2%(39)~24.2%(46)~39.4%(55)~43%(68)~43%(77)~90%(87)
程序2:10%(0)~18.4%(23)~20.5%(26)~20.5%(33)~24.2%(39)~24.2%(43)~39.4%(52)~43%(70)~90%(80)
程序3:10%(0)~18.4%(23)~20.5%(26)~20.5%(33)~24.2%(39)~24.2%(43)~39.4%(52)~43%(90)~90%(95)
程序4:10%(0)~18.4%(23)~20.5%(26)~20.5%(33)~24.2%(39)~24.2%(43)~30%(49)~39.4%(63)~43%(73)~90%(90)
程序5:10%(0)~14.4%(10)~14.4%(15)~18.4%(25)~20.5%(27)~20.5%(45)~24.2%(50)~30%(56)~39.4%(76)~43%(90)~90%(110)
程序6:10%(0)~12%(5)~12%(10)~16%(30)~19%(33)~19%(45)~24.2%(51)~24.2%(58)~30%(65)~38.5%(85)~38.5%(90)~65%(96)~68%(101)~95%(105)~100%(110)
根据色谱图的分离效果,优选程序6:10%(0)~12%(5)~12%(10)~16%(30)~19%(33)~19%(45)~24.2%(51)~24.2%(58)~30%(65)~38.5%(85)~38.5%(90)~65%(96)~68%(101)~95%(105)~100%(110)为最终洗脱程序。
柱温的筛选:本发明筛选了35℃和40℃柱温,根据色谱峰分离效果及分离时间, 优选40℃为最终柱温。
检测波长的筛选:本发明筛选了230nm、254nm、280nm、316nm和360nm的波长,根据色谱峰分离效果和峰数优选254nm为最终检测波长。
消症丸制剂HPLC指纹图谱的测定:分别精密吸取对照品溶液和供试品溶液各50μl,进样,用高效液相色谱仪测定,以参照峰保留时间和峰面积为1,计算供试品相对保留时间和相对峰面积,即得消症丸制剂HPLC指纹图谱;
作为优选的方案,以上所述的消症丸制剂的指纹图谱检测方法,步骤(4)所述的色谱柱为Xbridge C18(4.6×250mm,5μm,Waters)色谱柱;
作为优选的方案,以上所述的消症丸制剂的指纹图谱检测方法,步骤(4)所述的洗脱系统为乙腈-0.3%磷酸;
作为优选的方案,以上所述的消症丸制剂的指纹图谱检测方法,步骤(4)所述的梯度洗脱程序如下表:
作为优选的方案,以上所述的消症丸制剂的指纹图谱检测方法,检测波长优选254nm;色谱柱柱温为40℃;流动相流速为0.8mL/min;检测时间为110分钟;
作为优选的方案,以上所述的消症丸制剂的指纹图谱检测方法,参照峰为芦荟大黄素;
作为更优选的方案,供试品指纹图谱采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统 2004A版》进行评价,各检测波长下的相似度均大于0.90;
本发明消症丸制剂HPLC指纹图谱的构建方法得到的HPLC指纹图谱,其特殊之处在于,其成分之一的柴胡、香附、大黄、青皮、川芎、莪术、浙贝母、当归、白芍、王不留行十味药材的HPLC指纹图谱的构建方法,与消症丸制剂具有相同的检测条件并分别得到各自药材的指纹图谱。
本发明所述的消症丸制剂的原料药材的指纹图谱检测方法,其包括以下步骤:
别取消症丸制剂的原料药材柴胡、香附、大黄、青皮、川芎、莪术、浙贝母、当归、白芍和王不留行,粉碎至细粉,过60目筛,分别取1.0g,精密称定,置10ml量瓶中,精密加入90%乙醇50ml,密塞,称定重量,超声处理30min,静置放冷,过滤,滤液减压回收乙醇,浓缩,浓缩液上AB-8大孔吸附树脂柱,分别用400ml水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇、80%乙醇、95%乙醇,按每小时3-4倍柱体积的流速洗脱,合并40%、60%、80%、95%乙醇洗脱液,减压浓缩,加甲醇定容至10ml,吸取溶液,过0.45μm滤膜,取续滤液,即得各原料药材的供试品溶液;
(2)各原药材HPLC指纹图谱测定:分别精密吸取步骤(1)各原料药材的供试品溶液50μl,进样,用高效液相色谱仪测定各原料药材的指纹图谱;
色谱条件为:色谱柱:填充剂为十八烷基硅烷键合硅胶;流动相:A相为乙腈,B相为0.3%磷酸水,梯度洗脱,检测波长:254nm;柱温40℃;流速0.8ml/min;所述的梯度洗脱条件为:
本发明消症丸制剂HPLC指纹图谱的构建方法得到的HPLC指纹图谱,所述消症丸制剂HPLC指纹图谱在254nm下归属于柴胡的指纹图谱具有4个特征峰;归属于香附的指纹图谱具有4个特征峰;归属于大黄的指纹图谱具有17个特征峰;归属于川芎的指纹图谱具有7个特征峰;归属于莪术的指纹图谱具有5个特征峰;归属于当归的指纹图谱具有7个特征峰;归属于白芍的指纹图谱具有11个特征峰;归属于浙贝母的指纹图谱具有4个特征峰;归属于王不留行的指纹图谱具有6个特征峰;归属于青皮的指纹图谱具有11个特征峰。所述图谱的图形如说明书附图中图1、图2和/或图6中所示的图谱。
本发明的目的还可以通过以下措施来达到:这种利用消症丸制剂HPLC指纹图谱的检测方法得到的HPLC指纹图谱,其特殊之处在于:
所述消症丸制剂HPLC指纹图谱254nm的共有峰为(1)、(2)、(3)、(4)、(5)、(6)、(7)、(8)、(9)、(10)、(11)、(12)、(13)、(14)、(15)、(16)、(17)、(18)、(19)、(20)、(21)、(22)、(23)、(24)、(25)、(26)、(27)、(28)、(29)、(30)、(31)、(32)、(33)33个峰;其中,归属于柴胡的共有峰为(1)、(2)、(13)、(14)4个峰;归属于香附的共有峰(1)、(15)、(16)、(25)4个峰;归属于大黄的共有峰为(1)、(2)、(3)、(7)、(8)、(16)、(17)、(18)、(19)、(20)、(23)、(25)、(27)、(30)、(31)、(32)、(33)17个峰;归属于青皮的共有峰为(1)、(2)、(3)、(6)、(8)、(10)、(22)、(24)、(25)、(28)、(30)11个峰;归属于川芎的共有峰为(1)、(2)、(3)、(5)、(6)、(12)、(29)7个峰;归属于莪术的共有峰为(2)、(12)、(13)、(22)、(29)5个峰;归属于浙贝母的共有峰为(2)、(6)、(9)、(20)4个峰;归属于当归的共有峰为(1)、(2)、(3)、(5)、(6)、(12)、(18)共7个峰;归属于白芍的共有峰为(1)、(2)、(3)、(4)、(7)、(8)、(9)、(11)、(12)、(15)、(21)共11个峰;归属于王不留行的共有峰为(2)、(3)、(6)、(9)、(12)、(14)6个峰;所述图谱的图形如说明书附图中图1、图2和/或图6所示的图谱。
利用各对照品对HPLC指纹图谱主要峰进行比较确定:4号峰为芍药苷、5号峰为阿魏酸、10号峰为橙皮苷、23号峰为芦荟大黄素、27号峰为大黄酸、31号峰为大黄素、32号峰为大黄酚、33号峰为大黄素甲醚。
本发明提供的消症丸制剂的HPLC指纹图谱的检测方法相比现有技术具有以下优点:
1、本发明选用HPLC作为消症丸制剂的检测方法,以超声法为提取方法,以大孔树脂富集为纯化方法,条件简便,具有良好的可操作性,易于推广。
2、本发明采用的HPLC梯度洗脱条件在一个流动相系统首次同时检出消症丸制剂10味药材,不仅包括了现有技术中消症丸制剂质量控制的所有指标,而且有所提高,能更准确、全面地表达该产品的特征。
3、本发明的消症丸制剂的检测方法,其测定的精密度试验、重复性试验、稳定性试验的相似度评价都表明,该方法检测结果准确、稳定性高。
4、本发明的消症丸制剂的检测方法对有效成分既能定性又能定量,可适用于监控消症丸的原料药材、中间体半成品的质量以及生产工艺的质量控制,适用范围广。
实施例消症丸HPLC指纹图谱的构建方法及消症丸HPLC指纹图谱
1、仪器与试药
1.1仪器
美国Waters e2695高效液相色谱系统(包括在线脱气机,自动进样器Prominence SIL-20A,二极管阵列检测器waters2998和柱温箱CTO-20A,Empower色谱工作站); 电子分析天平(FA1204B,上海精密科学有限公司);万分之一电子天平(FA1204B,上海精密科学仪器有限公司);超声波清洗机(AS20500A,Auto Science);Xbridge C18分析柱(4.6×250mm,5μm,Waters,USA)。
1.2试药
对照品:芍药苷、阿魏酸、橙皮苷、芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚、大黄素甲醚
对照药材:柴胡、香附、大黄(酒炙)、炒青皮、川芎、莪术、浙贝母、当归、白芍、炒王不留行十味药材,由雷允上药业有限公司提供。
消症丸制剂:雷允上药业有限公司产品,国药准字Z20100057,为丸剂,每丸重0.3g,相当于原药材0.1g。
2、方法与结果
2.1色谱条件
色谱柱:Waters Xbridge C18分析柱(4.6×250mm;5μm,Waters公司)
流动相:乙腈(A)-浓度为0.3%磷酸(B),梯度洗脱,洗脱程序见表1
检测波长:254nm;柱温:40℃;流速:0.8ml/min;
表1梯度洗脱程序
2.2指纹图谱制备
2.2.1供试品溶液的制备:取消症丸1.0g,精密称定,置50ml锥形瓶中,精密加入浓度为90%乙醇溶液50ml,超声处理(功率250W,频率40kHz)30分钟,静置放冷,过滤,滤液减压回收乙醇,浓缩,上AB-8大孔吸附树脂柱,分别用400ml水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇、80%乙醇、95%乙醇,按每小时3~4倍柱体积的流速洗脱,合并40%、60%、80%、95%乙醇洗脱液,减压浓缩,加甲醇定容至10ml,吸取溶液,过0.45μm滤膜,取续滤液,即得;
2.2.2对照品溶液的制备:精密称取芍药苷、阿魏酸、橙皮苷、大黄酸、大黄素、芦荟大黄素、大黄素甲醚、大黄酚适量,加甲醇溶解,分别制成芍药苷浓度为36μg/ml、阿魏酸浓度为56.3μg/ml、橙皮苷浓度为42μg/ml、大黄酸浓度为24.6μg/ml、大黄素浓度为29.8μg/ml、芦荟大黄素浓度为51.6μg/ml、大黄素甲醚浓度为38.6μg/ml、大黄酚浓度为26μg/ml的对照品溶液;
2.2.3消症丸HPLC指纹图谱测定:分别精密吸取对照品溶液和供试品溶液各50μl,进样,用高效液相色谱仪测定,即得消症丸HPLC指纹图谱见附图1,混标的指纹图谱见附图2。
2.2.4主要峰的定性:通过与对照品比较确定,其中4号峰为芍药苷,5号峰为阿魏酸,10号峰为橙皮苷,23号峰为芦荟大黄素,27号峰为大黄酸,31号峰为大黄素,32号峰为大黄酚,33号峰为大黄素甲醚。
2.3指纹图谱精密度试验
2.3.1取同一消症丸溶液,连续进样5次,检测指纹图谱,采用《中药色谱指纹 图谱相似度评价系统2004A版》软件进行数据处理:以5批供试品指纹图谱作为样本集,经软件系统生成对照图谱(Standard Chromatographie Project,采用中位数法,时间宽度:0.01),以此为基准,计算样本图谱与对照图谱的相似度,结果显示仪器精密度良好,相似度均大于0.9,见表2,附图3。
表2指纹图谱精密度试验的相似度结果
2.4指纹图谱重现性试验
2.4.1取同一批消症丸5份,按供试品溶液制备项下方法制备,分别进样,采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统2004A版》软件进行数据处理:以5批供试品溶液指纹图谱作为样本集,经软件系统生成对照图谱(Standard Chromatographie Project,采用中位数法,时间宽度:0.01),以此为基准,计算样本图谱和对照图谱的相似度,结果显示样品重复性良好,相似度均大于0.90,见表3,附图4。
表3指纹图谱重复性试验的相似度结果
2.5指纹图谱稳定性试验:
2.5.1取一个编号的消症丸样品溶液,分别在0、2、4、6、8、12、24小时进样,检测指纹图谱,采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系统2004A版》软件进行数据处理:以7批供试品溶液指纹图谱作为样本集,经软件系统生成对照图谱(Standard Chromatographie Project,采用中位数法,时间宽度:0.01),以此为基准,计算样本图谱和对照图谱的相似度,结果显示样品稳定性良好,相似度均大于0.90,见表4,附图5。
表4指纹图谱稳定性试验的相似度结果
2.6成品与各原料药材的相关性及特征峰归属
2.6.1供试品溶液的制备:取各药材粉碎至细粉过60目筛,取约1.0g,精密称定,置10ml量瓶中,精密加入90%乙醇50ml,密塞,称定重量,超声处理(功率250W,频率40kHz)30min,静置放冷,过滤,滤液减压回收乙醇,浓缩,上AB-8大孔吸附树脂柱,分别用400ml水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇、80%乙醇、95%乙醇,按每小时3-4倍柱体积的流速洗脱,合并40%、60%、80%、95%乙醇洗脱液,减压浓缩,加甲醇定容至10ml,吸取溶液,过0.45μm滤膜,取续滤液,即得;
2.6.2各原药材HPLC指纹图谱测定:分别精密吸取各原药材溶液50μl,进样,用高效液相色谱仪测定,见表5,附图6。
表5各特征峰的归属
所述消症丸制剂HPLC指纹图谱254nm的共有峰为(1)、(2)、(3)、(4)、(5)、(6)、(7)、(8)、(9)、(10)、(11)、(12)、(13)、(14)、(15)、(16)、(17)、(18)、(19)、(20)、(21)、(22)、(23)、(24)、(25)、(26)、(27)、(28)、(29)、(30)、(31)、(32)、(33)33个峰;其中,归属于柴胡的共有峰为(1)、(2)、(12)、(13)4个峰;归属于香附的共有峰(1)、(15)、(16)、(25)4个峰;归属于大黄的共有峰为(1)、(2)、(3)、(7)、(8)、(16)、(17)、(18)、(19)、(20)、(23)、(25)、(27)、(30)、(31)、(32)、(33)17个峰;归属于青皮的共有峰为(1)、(2)、(3)、(6)、(8)、(10)、(22)、(24)、(25)、(28)、(30)11个峰;归属于川芎的共有峰为(1)、(2)、(3)、(5)、(6)、(12)、(29)7个峰;归属于莪术的共有峰为(2)、(12)、(13)、(22)、(29)5个峰;归属于浙贝母的共有峰为(2)、(6)、(9)、(20)4个峰;归属于当归的共有峰为(1)、(2)、(3)、(5)、(6)、(12)、(18)共7个峰;归属于白芍的共有峰为(1)、(2)、(3)、(4)、(7)、(8)、(9)、(11)、(12)、(15)、(21)共11个峰;归属于王不留行的共有峰为(2)、(3)、(6)、(9)、(12)、(14)6个峰。
2.7批间相似度评价
2.7.1供试品溶液的制备:取11批不同批号的消症丸,各精密称取1.0g,按药材样品溶液制备项下方法制备,分别进样,采用《中药色谱指纹图谱相似度评价系 统2004A》软件进行数据处理:以11批供试品溶液指纹图谱作为样品集,经软件系统生成对照图谱,以此为基准,计算样本图谱与对照图谱的相似度,评价批次间稳定性,结果显示11批样品的相似度良好,均在0.9以上,见表7,附图7。
2.7.2指纹图谱条件:
色谱柱:Waters Xbridge C18分析柱(4.6×250mm;5μm,Waters公司)
流动相:乙腈(A)-浓度为0.3%磷酸(B),梯度洗脱,洗脱程序见表1
检测波长:254nm;柱温:40℃;流速:0.8ml/min;
表7十一批消症丸指纹图谱相似度考察结果
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。