CN103900883A - 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法 - Google Patents

绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103900883A
CN103900883A CN201410142418.6A CN201410142418A CN103900883A CN 103900883 A CN103900883 A CN 103900883A CN 201410142418 A CN201410142418 A CN 201410142418A CN 103900883 A CN103900883 A CN 103900883A
Authority
CN
China
Prior art keywords
time
skin
fixing
sample
preparation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201410142418.6A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103900883B (zh
Inventor
贺延玉
刘秀
程李香
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Gansu Agricultural University
Original Assignee
Gansu Agricultural University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Gansu Agricultural University filed Critical Gansu Agricultural University
Priority to CN201410142418.6A priority Critical patent/CN103900883B/zh
Publication of CN103900883A publication Critical patent/CN103900883A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103900883B publication Critical patent/CN103900883B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)

Abstract

本发明涉及动物组织学技术领域的研究,具体涉及到在透射电镜下观察所用超薄切片的制作及染色方法。一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,其主要特点在于包括有步骤为:(1)选取成年绒山羊,从体侧部用剪刀剪取0.8-1.2cm2的皮样;(2)样品的固定:(3)将步骤(2)固定好的皮样用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;(4)置入2%的锇酸2-4℃,固定3-5h;(5)使用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;(6)脱水;(7)包埋:在按1:1纯包埋剂和100%丙酮混合液中第一次浸透3-6h,然后在纯包埋剂中浸透10-12h。本发明的优点是流程简单,操作方便,获得的切片完整,图片结构清晰。适用于实验室科研工作者对绒山羊皮肤形态结构的研究。

Description

绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法
技术领域
本发明涉及动物组织学技术领域蛋白定位的辅助研究,具体涉及到在透射电镜下观察超薄切片的制作及染色方法。
背景技术
山羊绒是绒山羊的主要产品。毛囊是一个形态和结构较为复杂的皮肤附属器官,它控制着毛发的生长。初级毛囊生长粗毛,次级毛囊生长绒。皮肤和毛囊的结构特征不仅是其生物学特性的重要内容,且对毛产量和品质有直接重要的影响。目前运用透射电镜对毛囊进行超微结构的观察是最普遍且最佳的方法,但由于皮肤缺乏实质的组织,角化程度又比较高,相对比较脆,这个在超薄切片过程中会带来很大的挑战。拥有一套最佳的样品处理方法,和对毛囊中不同组织和结构的识别技能,为毛囊组织学的研究提供技术指导和理论依据,对实现人工调控绒生长和加快绒山羊育种进展具有重要意义。
前人研究所用方法基本停留在光镜水平,偶有涉及透射电镜的,也只是对所用方法大概的描述,且步骤较为繁琐。
发明内容
本发明的目的在于避免现有技术的不足之处而提供一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法。以解决切片完整,没有碎裂,透射电镜下观察结构清晰,细胞器结构完整,用于绒山羊皮肤超微结构的研究。
为实现上述目的,本发明采取的技术方案为:一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,其主要特点在于包括有步骤为:
(1)选取成年的绒山羊,从体侧部用剪刀剪取0.8-1.2cm2的皮样;
(2)样品的固定:
①第一次固定:剪取0.8-1.2cm2的皮样,展平在事先准备好的玻璃片上,并置入放有第一次固定液的容器内固定,2-4℃,6-12h;
②第二次固定:从第一次固定好的皮样上采取1-1.2mm3的电镜样,置于2.5-3%的第二次固定液中固定,2-4℃,5-6h;
(3)将步骤(2)固定好的皮样用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;
(4)置入2%的锇酸2-4℃,固定3-5h;
(5)使用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;
(6)脱水:使用50%-100%酒精,脱水4-6次,每次10min-15min;使用100%丙酮脱水10-15min;然后再次使用100%丙酮脱水10-15min;
(7)包埋:在按1:1纯包埋剂和100%丙酮混合液中第一次浸透3-6h,然后在纯包埋剂中浸透10-12h。
所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,还包括步骤为:
(8)染色:第一次使用5%醋酸铀乙醇溶液30-40min染色,然后第二次使用铅5-10min染色。
所使用的5%醋酸铀乙醇溶液的配方:醋酸铀5克;70%乙醇溶液100ml。
所使用的铅配方:硝酸铅2.0克;醋酸铅1.0克;枸橼酸钠3.5克;4%NaOH水溶液18ML;双蒸水定容至100ML。
所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,所述的第一次固定液为3.7%的多聚甲醛和1%的戊二醛1:1的混合液,稀释液为0.2mol/L的磷酸缓冲液,PH为7.2;第二次固定液为0.2M磷酸缓冲液50ml,25%戊二醛12ml,蔗糖8g,超纯水定容至100ml。
所述的绒山羊皮肤用于电镜观察的超薄切片的制备方法,所述的包埋剂为20ML,其中MNA(甲基内次甲基四氢邻苯二甲酸酐)7ml,SPI-PON812(环氧树脂812)9.12ml,DDSA(十二烷基琥珀酸酐)6.17ml,DMP-30(2,4,6-三【(二甲氨基)甲基】苯酚)0.3ml。
本发明的有益效果:本发明流程简单,操作方便,获得的切片完整,图片结构清晰。适用于实验室科研工作者对绒山羊皮肤形态结构的研究。
在透射电镜下进行观察,本发明能够清晰的呈现毛囊的各层超微结构,且在切片过程中不容易发生碎片现象。
附图说明:
图1是绒山羊皮肤毛囊完整的横切超微结构显微图;
图2是绒山羊皮肤毛囊外根鞘(ORS)和内根鞘(IRS)超微结构显微图。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明的原理和特征进行描述,所举实例只用于解释本发明,并非用于限定本发明的范围。
实施例1:一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,包括有步骤为:
(1)选取成年的绒山羊,从体侧部用剪刀剪取0.8cm2的皮样;
(2)样品的固定:
①第一次固定:剪取0.8cm2的皮样,展平在事先准备好的玻璃片上,并置入放有第一次固定液的容器内固定,2℃,6h;
②第二次固定:从第一次固定好的皮样上采取1mm3的电镜样,置于2.5%的第二次固定液中固定,2℃,5h;
所述的第一次固定液为3.7%的多聚甲醛和1%的戊二醛1:1的混合液,稀释液为0.2mol/L的磷酸缓冲液,PH为7.2;第二次固定液为0.2M磷酸缓冲液50ml,25%戊二醛12ml,蔗糖8g,超纯水定容至100ml。
(3)将步骤(2)固定好的皮样用0.1mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10min;
(4)置入2%的锇酸2℃,固定3h;
(5)使用0.1mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10min;
(6)脱水:使用50%-100%酒精,脱水4次,每次10min-15min;使用100%丙酮脱水10min;然后再次使用100%丙酮脱水10min;
(7)包埋:在按1:1纯包埋剂和100%丙酮混合液中第一次浸透3h,然后在纯包埋剂中浸透10h。
所述的包埋剂为20ML,其中MNA(甲基内次甲基四氢邻苯二甲酸酐)7ml,SPI-PON812(环氧树脂812)9.12ml,DDSA(十二烷基琥珀酸酐)6.17ml,DMP-30(2,4,6-三【(二甲氨基)甲基】苯酚)0.3ml。
实施例2:一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,包括有步骤为:
(1)选取成年的绒山羊,从体侧部用剪刀剪取1.2cm2的皮样;
(2)样品的固定:
①第一次固定:剪取1.2cm2的皮样,展平在事先准备好的玻璃片上,并置入放有第一次固定液的容器内固定,4℃,12h;
②第二次固定:从第一次固定好的皮样上采取1.2mm3的电镜样,置于3%的第二次固定液中固定,4℃,6h;
所述的第一次固定液为3.7%的多聚甲醛和1%的戊二醛1:1的混合液,稀释液为0.2mol/L的磷酸缓冲液,PH为7.2;第二次固定液为0.2M磷酸缓冲液50ml,25%戊二醛12ml,蔗糖8g,超纯水定容至100ml。
(3)将步骤(2)固定好的皮样用0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次15min;
(4)置入2%的锇酸4℃,固定5h;
(5)使用0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次15min;
(6)脱水:使用50%-100%酒精,脱水6次,每次10min-15min;使用100%丙酮脱水15min;然后再次使用100%丙酮脱水15min;
(7)包埋:在按1:1纯包埋剂和100%丙酮混合液中第一次浸透6h,然后在纯包埋剂中浸透12h。
所述的包埋剂为20ML,其中MNA(甲基内次甲基四氢邻苯二甲酸酐)7ml,SPI-PON812(环氧树脂812)9.12ml,DDSA(十二烷基琥珀酸酐)6.17ml,DMP-30(2,4,6-三【(二甲氨基)甲基】苯酚)0.3ml。
实施例3:所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,还包括步骤为:
步骤(1)至步骤(7)与实施例1或实施例2相同。
(8)染色:第一次使用5%醋酸铀乙醇溶液30min染色,然后第二次使用铅5min染色。
所使用的5%醋酸铀乙醇溶液的配方:醋酸铀5克;70%乙醇溶液100ml。
所使用的铅配方:硝酸铅2.0克;醋酸铅1.0克;枸橼酸钠3.5克;4%NaOH水溶液18ML;双蒸水定容至100ML。
实施例4:所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,还包括步骤为:
步骤(1)至步骤(7)与实施例1或实施例2相同。
(8)染色:第一次使用5%醋酸铀乙醇溶液40min染色,然后第二次使用铅10min染色。
所使用的5%醋酸铀乙醇溶液的配方:醋酸铀5克;70%乙醇溶液100ml。
所使用的铅配方:硝酸铅2.0克;醋酸铅1.0克;枸橼酸钠3.5克;4%NaOH水溶液18ML;双蒸水定容至100ML。
实验例1:一种河西绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法
1材料与方法
1.1样品采集
实验材料来自甘肃省天祝县牧户羊群,选取周岁的河西绒山羊6只,连续在一年中每个月的月初从体侧部用剪刀剪取约1cm2的皮样。皮肤切口处撒上青霉素或链霉素即可自愈。
1.2样品的固定
①第一次固定
采取的1cm2的皮样先快速的展平在事先准备好的玻璃片上,放入放有固定液(3.7%的多聚甲醛和1%的戊二醛1:1的混合液,稀释液为0.2mol/L的磷酸缓冲液,PH为7.2)的容器内,4℃,12h。
②第二次固定:从第一次固定好的皮样上采取约1mm3的电镜样,固定于3%的戊二醛,4℃,5h。
3%戊二醛固定液配方(100ml为例):
Figure BDA0000489395950000051
1.3样品的制备
按照皮肤样品特有的性质设计的方法。流程如下:
①固定好的电镜样用0.2mol/L的磷酸缓冲液(PBS)漂洗3次(每次10min)。
②2%的锇酸4℃固定3h。
③PBS漂洗3次(每次10min)。
④脱水:依次进行:
Figure BDA0000489395950000052
Figure BDA0000489395950000061
1.4样品包埋:常规包埋
纯包埋剂和100丙酮混合液(1:1)             3h
纯包埋剂                                  12h
包埋剂的配制(20ML为例)
Figure BDA0000489395950000062
所使用的5%醋酸铀乙醇溶液的配方:醋酸铀5克;70%乙醇溶液100ml。
所使用的铅配方:硝酸铅2.0克;醋酸铅1.0克;枸橼酸钠3.5克;4%NaOH水溶液18ML;双蒸水定容至100ML。
在透射电镜下进行观察,发现该方法能够清晰的呈现毛囊的各层超微结构,且在切片过程中不容易发生碎片现象。本试验例制备的河西绒山羊皮肤薄片电镜观察的结果见图1、图2。
图1为河西绒山羊皮肤毛囊完整的横切超微结构图片。
图2为河西绒山羊皮肤毛囊外根鞘(ORS)和内根鞘(IRS)超微结构图片。
上述两个切片均符合实验要求。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (4)

1.一种绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,其特征在于包括有步骤为:
(1)选取成年的绒山羊,从体侧部用剪刀剪取0.8-1.2cm2的皮样;
(2)样品的固定:
①第一次固定:剪取0.8-1.2cm2的皮样,展平在事先准备好的玻璃片上,并置入放有第一次固定液的容器内固定,2-4℃,6-12h;
②第二次固定:从第一次固定好的皮样上采取1-1.2mm3的电镜样,置于2.5-3%的第二次固定液中固定,2-4℃,5-6h;
(3)将步骤(2)固定好的皮样用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;
(4)置入2%的锇酸2-4℃,固定3-5h;
(5)使用0.1-0.2mol/L的磷酸缓冲液漂洗3次,每次10-15min;
(6)脱水:使用50%-100%酒精,脱水4-6次,每次10min-15min;使用100%丙酮脱水10-15min;然后再次使用100%丙酮脱水10-15min;
(7)包埋:在按1:1纯包埋剂和100%丙酮混合液中第一次浸透3-6h,然后在纯包埋剂中浸透10-12h。
2.如权利要求1所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,其特征在于还包括步骤为:
(8)染色:第一次使用5%醋酸铀乙醇溶液30-40min染色,然后第二次使用铅5-10min染色;
所使用的5%醋酸铀乙醇溶液的配方:醋酸铀5克;70%乙醇溶液100ml;
所使用的铅配方:硝酸铅2.0克;醋酸铅1.0克;枸橼酸钠3.5克;4%NaOH水溶液18ML;双蒸水定容至100ML。
3.如权利要求1所述的绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法,其特征在于所述的第一次固定液为3.7%的多聚甲醛和1%的戊二醛1:1的混合液,稀释液为0.2mol/L的磷酸缓冲液,PH为7.2;第二次固定液为0.2M磷酸缓冲液50ml,25%戊二醛12ml,蔗糖8g,超纯水定容至100ml。
4.如权利要求1所述的绒山羊皮肤用于电镜观察的超薄切片的制备方法,其特征在于所述的包埋剂为20ML,其中MNA7ml,SPI-PON8129.12ml,DDSA6.17ml,DMP-300.3ml。
CN201410142418.6A 2014-04-10 2014-04-10 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法 Expired - Fee Related CN103900883B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410142418.6A CN103900883B (zh) 2014-04-10 2014-04-10 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410142418.6A CN103900883B (zh) 2014-04-10 2014-04-10 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103900883A true CN103900883A (zh) 2014-07-02
CN103900883B CN103900883B (zh) 2016-08-31

Family

ID=50992346

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201410142418.6A Expired - Fee Related CN103900883B (zh) 2014-04-10 2014-04-10 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103900883B (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104020025A (zh) * 2014-06-02 2014-09-03 复旦大学 一种禽类羽毛的透射电镜样品处理方法
CN104977202A (zh) * 2015-08-07 2015-10-14 广西医科大学 一种石蜡包埋切片组织的透射电镜样品制备方法
CN105241685A (zh) * 2015-08-10 2016-01-13 河南科技大学 小鲵科动物皮肤显微组织切片的制备方法
CN105510106A (zh) * 2015-12-10 2016-04-20 海南大学 一种海蜇足囊石蜡切片前期处理方法
CN109141959A (zh) * 2018-11-15 2019-01-04 甘肃农业大学 一种用于透射电镜观察的马铃薯块茎超薄切片制作方法
CN109270103A (zh) * 2018-10-10 2019-01-25 中国热带农业科学院橡胶研究所 针对海南橡胶树叶片组织的超薄切片的制备方法
WO2021139420A1 (zh) * 2020-01-06 2021-07-15 中国科学院生态环境研究中心 用于红细胞的单个细胞标记的试剂盒及其检测方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1563366A (zh) * 2004-04-09 2005-01-12 西北农林科技大学 表皮干细胞构建组织工程化角膜上皮植片的制备方法及其用途
JP2011252763A (ja) * 2010-06-01 2011-12-15 Kao Corp 角層細胞間の微細構造の観察方法
CN102841006A (zh) * 2012-09-28 2012-12-26 北京林业大学 一种植物组织透射电镜样品的制备方法
CN103115809A (zh) * 2013-01-23 2013-05-22 浙江大学 一种昆虫触角的透射电镜样品处理方法
CA2880250A1 (en) * 2012-08-02 2014-02-06 Laboratoires Expanscience Surface isotropy as a marker for epidermal maturation

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1563366A (zh) * 2004-04-09 2005-01-12 西北农林科技大学 表皮干细胞构建组织工程化角膜上皮植片的制备方法及其用途
JP2011252763A (ja) * 2010-06-01 2011-12-15 Kao Corp 角層細胞間の微細構造の観察方法
CA2880250A1 (en) * 2012-08-02 2014-02-06 Laboratoires Expanscience Surface isotropy as a marker for epidermal maturation
CN102841006A (zh) * 2012-09-28 2012-12-26 北京林业大学 一种植物组织透射电镜样品的制备方法
CN103115809A (zh) * 2013-01-23 2013-05-22 浙江大学 一种昆虫触角的透射电镜样品处理方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
乌日罕等: "蒙古绵羊皮肤毛囊的电镜结构观察", 《安徽农业科学》 *
贺延玉等: "河西绒山羊次级毛囊超微结构的周期性变化", 《中国农业科学》 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104020025A (zh) * 2014-06-02 2014-09-03 复旦大学 一种禽类羽毛的透射电镜样品处理方法
CN104977202A (zh) * 2015-08-07 2015-10-14 广西医科大学 一种石蜡包埋切片组织的透射电镜样品制备方法
CN105241685A (zh) * 2015-08-10 2016-01-13 河南科技大学 小鲵科动物皮肤显微组织切片的制备方法
CN105241685B (zh) * 2015-08-10 2018-04-13 河南科技大学 小鲵科动物皮肤显微组织切片的制备方法
CN105510106A (zh) * 2015-12-10 2016-04-20 海南大学 一种海蜇足囊石蜡切片前期处理方法
CN105510106B (zh) * 2015-12-10 2018-06-29 海南大学 一种海蜇足囊石蜡切片前期处理方法
CN109270103A (zh) * 2018-10-10 2019-01-25 中国热带农业科学院橡胶研究所 针对海南橡胶树叶片组织的超薄切片的制备方法
CN109141959A (zh) * 2018-11-15 2019-01-04 甘肃农业大学 一种用于透射电镜观察的马铃薯块茎超薄切片制作方法
WO2021139420A1 (zh) * 2020-01-06 2021-07-15 中国科学院生态环境研究中心 用于红细胞的单个细胞标记的试剂盒及其检测方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103900883B (zh) 2016-08-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103900883A (zh) 绒山羊皮肤用于透射电镜观察的超薄切片的制备方法
CN104585160B (zh) 新型透明骨骼标本制作以及树脂保存方法
CN103740811B (zh) 染色体核型分析骨髓g带制备方法
CN106729984A (zh) 一种鱼胶原蛋白修复海绵及其制备方法
CN103630421A (zh) 一种芍药成熟种胚的石蜡切片制作方法
CN103976908B (zh) 一种富含植物多肽的植物提取物组合物及其在化妆品中的应用
CN102344906B (zh) 一种毛囊干细胞的分离培养方法
CN104399125B (zh) 表皮干细胞向汗腺样上皮细胞分化的方法
CN107183013B (zh) 一种驴精液低温保存的方法
CN104213238B (zh) 提高胶原纤维材料抗拉强度的方法
CN105326863B (zh) 一种利用自体毛囊黑色素细胞制备用于治疗白癜风复合膜的方法
CN106676060A (zh) 一种皮肤及毛囊再生的气液界面三维培养方法
CN108187142A (zh) 一种干细胞在生物组织修复中的应用
CN110408585A (zh) 一种利用耳后皮肤培养成纤维细胞的方法
CN103900885A (zh) 绒山羊皮肤用于显微观察石蜡切片的制备方法
CN107858323B (zh) 一种红耳龟胚胎成纤维细胞系及其构建方法
CN101496915B (zh) 去基底膜无细胞的异种真皮网状层支架及其制备方法
SU1801391A1 (en) Device for biopsy analysis
CN106754690A (zh) 一种快速收获中期细胞的染色体培养基及应用
CN103667183A (zh) 骨髓细胞培养基
CN103091140A (zh) 一种虾类生殖细胞染色体的制备方法
CN106754647B (zh) 一种大鲵皮肤表皮细胞的分离、培养及鉴定方法
RU2484446C1 (ru) Способ подготовки образцов биопленок микроорганизмов для исследования в сканирующем электронном микроскопе
CN109722410A (zh) 一种3d全层皮肤模型及用于其形成的培养基、制备方法
CN101392237A (zh) 组织工程皮肤培养及增殖活力的检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20160831

Termination date: 20180410