发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明的目的在于设计提供一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法的技术方案。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于包括以下工艺步骤:
1)头花蓼降糖提取物提取:取干燥后的头花蓼药材粉碎,加入乙醇加热回流提取,过滤,得到一次醇提液;对醇提后药渣进行2次水煎煮,过滤,合并水提滤液;将水提滤液常压浓缩至药液:药材重量比为0.7~1.0:1,浓缩液中加入等体积乙醇,搅拌,静置,离心取上清液,得到二次醇提液;合并一次醇提液和二次醇提液一起浓缩至药液:药材重量比为0.8~1.2:1,浓缩药液离心,取上清液留用;
2)配置:取步骤1)得到的上清液,调pH至3.8~6,加入防腐剂山梨酸钾后用蒸馏水定至药液:药材重量比为1:1,搅匀,过滤;
3)灌装:将配置得到的药液装入规定的已消毒口服液瓶内,密封;
4)灭菌:将步骤3)得到的服液瓶在沸水中煮沸30~40分钟,取出,静置。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤1)中取头花蓼药材粉碎至10目,加入22~26倍量的55~65%乙醇加热回流1~2h,提取3次。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤1)中对药渣进行2次水煎煮,第一次加10~14倍量水,提取1~2h,第二次加8~12倍量水,提取0.5~1h。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤1)中浓缩液中加入等体积乙醇,搅拌,静置24小时后,3000~4000r/min离心10~20min,取上清液,得到二次醇提液。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤1)中浓缩药液800~1200r/min离心10~20min后取上清液。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤2)中加入占上清液重量0.04~0.06%的防腐剂山梨酸钾。
所述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,其特征在于所述的步骤2)中用柠檬酸和碳酸钠调节pH值。
本发明中干燥后的头花蓼通过以下干燥方式制得:新鲜头花蓼在冷冻干燥仪中温度-55~-45℃、压强15~25Pa下连续干燥18小时以上得到;或新鲜头花蓼在电热鼓风干燥箱中温度40~50℃下连续干燥36小时以上得到。
上述的一种头花蓼降糖提取物口服液的制备方法,设计合理,通过对头花蓼醇提后水提后得到的混合药液经过合理的参数、步骤控制制成口服液,方便服用,显著提高了头花蓼药材的降糖功能,并且显著迅速。
实施例3:头花蓼降糖提取物口服液的制备方法
1)头花蓼降糖提取物提取:取头花蓼药材粉碎至10目,加入26倍量的55%乙醇加热回流2h,提取3次,过滤,得到一次醇提液;对药渣进行2次水煎煮,第一次加14倍量水,提取2h,第二次加12倍量水,提取1h,过滤,合并水提滤液;将水提滤液常压浓缩至药液:药材重量比为1:1,浓缩液中加入等体积乙醇,搅拌3min,静置24小时后,4000r/min离心15min取上清液,得到二次醇提液;合并一次醇提液和二次醇提液一起浓缩至药液:药材重量比为1.2:1,得到浓缩药液,浓缩药液800r/min离心,取上清液留用;
2)配置:取步骤1)得到的上清液,用柠檬酸和碳酸钠调pH至6,加入占上清液重量0.04%防腐剂山梨酸钾后用蒸馏水定至药液:药材重量比为1:1,搅匀,过滤;
3)灌装:将配置得到的药液装入规定的已消毒口服液瓶内,密封;
4)灭菌:将步骤3)得到的服液瓶在沸水中煮沸30分钟,取出,静置。
试验例1:头花蓼降糖提取物的降糖药效比较
1、实验方法
1.1 细胞培养
3T3-L1小鼠胚胎成纤维细胞,来源于中国科学院生命科学研究院。将3T3-L1前脂肪细胞种入25cm2细胞培养板,加入正常培养液6ml,置37℃,5%CO2条件下培养,隔天换液。细胞融合80%后进行传代或冻存。
1.2 细胞诱导分化
将3T3-L1前脂肪细胞以5×103的密度接种于24孔培养板,待细胞生长至接触抑制,将细胞培养液换成诱导分化液A(0.5mmol/L IBMX, 0.1umol/L DEX, 10mg/L INS)培养48h,换以诱导分化液B(10mg/L)培养48h,换正常培养液继续培养,2天换液一次,诱导分化6-8天的细胞90%以上呈成熟细胞表形。
1.3 IR模型的制备
取对数生长期的3T3-L1细胞计数后以每孔5×103的密度接种于24孔培养板将培养板移入CO2培养箱中,在37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养至生长抑制,诱导分化至成熟脂肪细胞。加入以下处理因素:对照组继续给予正常培养液(含10%FBS的DMEM高糖培养液)培养;模型组给予1umolDEX正常培养液培养;其他细胞用于各个给药组实验。
1.4 对3T3-L1前脂肪细胞的增殖的影响(MTT 法)
收集对数生长期3T3-L1前脂肪细胞,调整细胞悬液浓度,以每孔5×103的密度接种于96孔培养板,每孔加入100ul。将细胞置于37℃、5%CO2饱和湿度的CO2培养箱内培养至80%细胞融合,加入高中低三个浓度的药物(2.4 药物配制中已详细介绍)每孔100ul,设4个复孔,同时设置空白对照与正常对照,平行3块版。继续培养48h后,倒置显微镜下观察。每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml),继续孵育4h。终止培养,小心吸去孔内培养液。每孔加入150ulDMSO,置于摇床上低俗震荡10min,使结晶物充分溶解。在酶标仪490nm波长处测定各孔吸光度OD值。计算3T3-L1前脂肪细胞增殖变化率。
细胞存活率=(OD测试组-OD空白组)/(OD对照组-OD空白组)×100%。当存活率的值大于80%时,表明药物对细胞的增殖不存在抑制作用
1.5 对3T3-L1脂肪细胞胰岛素抵抗( IR )模型葡萄糖利用的影响
取对数生长期的3T3-L1细胞计数后以每孔5×103个细胞密度接种于24孔培养板中。按照1.3中IR模型的制备方法,将诱导分化成熟的3T3-L1脂肪细胞,分正常培养组和模型组,模型组又分为模型对照组和各个给药组。模型组给予1umolDEX作用48h。造好模后,按实验分组和给药浓度给药,平行3块板。分别于24h、48h观察细胞形态并取上清液与半自动生化仪检测,按试剂盒说明书测定培养液中葡萄糖(GLU)含量。
2、实验结果
本实验中新鲜头花蓼在冷冻干燥仪中温度-55~-45℃、压强15~25Pa下连续干燥18小时以上得到的干燥后头花蓼称为鲜头花蓼;新鲜花蓼在电热鼓风干燥箱中温度40~50℃下连续干燥36小时以上得到干燥后头花蓼称为干头花蓼。水提取液通过以下步骤制得:干燥后的头花蓼在水中浸泡30min,加水煎煮两次,第一次为药材量的12倍,微沸1.5小时,第二次为药材量的10倍,微沸1小时,合并滤液,浓缩至所需浓度。醇提取液通过以下步骤制得:干燥后的头花蓼在24倍60%乙醇中浸泡30min,水浴回流提取3次,每次2小时,合并滤液,浓缩至所需浓度。醇加水提取液通过实施例1记载的步骤1制得并浓缩至所需浓度。
2.1 对3T3-L1前脂肪细胞的增殖的影响,见表1。
表1:对3T3-L1细胞增值影响
由表1可知细胞存活率基本都在80%以上,说明各浓度药物对细胞的增殖没有显著地抑制作用。100ug/ml, 25ug/ml, 6.25ug/ml可分别作为高中低浓度进一步考察不同组分降糖作用。
2.2 对3T3-L1脂肪细胞IR 模型葡萄糖利用的影响,见表2。
表2:对脂肪细胞IR模型葡萄糖利用的影响
由表2可知,对鲜GCP、干GCP药材水提、醇提、醇加水提提取物降糖作用进行比较,相同提取方法下,鲜GCP降糖作用高于干GCP。同时,醇水提部位糖作用优于醇提部位,醇提部位降糖作用优于水提部位。
试验例2:中药GCP口服液降血糖实验
1实验方法
中药GCP口服液降血糖实验
1.1实验药剂
由实施例1、2或3制得并浓缩至所需浓度。
1.2动物实验
1.2.1建模
取体重(20±2)g KM小鼠,120只,雌雄各半,适应环境7天,随机抽取雌雄性各6只做为空白对照组,禁食不禁水18h,用生理盐水配制1.1%四氧嘧啶,保存在冰水浴中,按110 mg /kg腹腔注射,对照组注射等剂量生理盐水,1h后恢复饮食,第二天以同法第二次建模。3天后(72h,正常饮食),禁食12h,断尾取血数滴,用葡萄糖氧化酶法测定空腹血糖,血糖值大于11.1mmol/L者为造模成功的小鼠。
1.2.2造模结果
120只KM小鼠其中12只为空白组,其余小鼠进行造模,造模结束后测得血糖值大于11.1mmol/L的小鼠模型小鼠,实验设计过程中每组为12只,实验造模结果中雌性小鼠数量较多,故若干剂量雌性小鼠设计为6-8只(8只具有统计学意义),雄性模型小鼠个别几只尾巴受损,不利于下次取血,故未设于本实验分组中。实际造模成功率为48.03%,死亡率1.75%。
1.2.3实验分组
取模型小鼠,随机分成6组。即口服液组(高、中、低)剂量组、模型组,阳性组、空白组(正常小鼠),每组雌雄各半,各6只。见表3。
1.2.4测血糖
用手术剪剪去小鼠尾端2~3mm,压迫取数滴血置于EP管中,先加15g/L的乙二胺四乙酸二钾溶液12μL,高速离心(10000r/min)5min,待血液分层后取上层血清10μL,加30μL生理盐水,摇匀;从稀释的血清中取10μL于EP管中,加1mL葡萄糖(Glu)氧化酶,摇匀,37℃恒温15min,样品(u)待测.另取生理盐水和校准品(c)10μL,分别加1mL葡萄糖氧化酶,摇匀,37℃恒温15min,用505nm波长以空白对照管调零后测定吸光度(A)。
样品Glu(mmol/L)=Au/Ac×Cc。
1.2.5实验结果与讨论
造模成功后分别测定给药后7d、14d、21d、28d的空腹血糖值。表3为饮片各组分对高血糖模型小鼠血糖浓度的影响。
四氧嘧啶对胰岛β细胞具有特殊的破坏作用,造成胰岛素分泌低下,而引起动物实验性四氧嘧啶糖尿病。本实验采用GOD-POD法检测血清葡萄糖浓度,该方法的原理为血清中的POD葡萄糖在GOD的作用下被氧化成D-葡萄糖酸,并生成H2O2;后者与4-氨基安替比林和苯酚在过氧化物酶(POD)的作用下生成红色的苯酮亚胺, 生成的酮类化合物颜色的深浅与葡萄糖的含量成正比,分别测定标准管和样本管的吸光度值,计算葡萄糖的含量。
表3: 饮片各组分对高血糖模型小鼠血糖浓度影响
由上表可知,口服液高、中、低剂量、阳性组均表现出降血糖作用。
试验例3:不同pH值对头花蓼降糖提取物口服液的影响
1)头花蓼降糖提取物提取:取头花蓼药材粉碎至10目,加入24倍量的60%乙醇加热回流1~2h,提取3次,过滤,得到一次醇提液;对药渣进行2次水煎煮,第一次加12倍量水,提取1.5h,第二次加10倍量水,提取1h,过滤,合并水提滤液;将水提滤液常压浓缩至药液:药材为0.9:1,浓缩液中加入等体积乙醇,搅拌3min,静置24小时后,3500r/min离心10min取上清液,得到二次醇提液;合并一次醇提液和二次醇提液一起浓缩至药液:药材为1:1,得到浓缩药液,浓缩药液1000r/min离心,取上清液留用;
2)配置:取步骤1)得到的上清液,用柠檬酸和碳酸钠调pH至2.5、3、3.8、4.4、4.6、4.8、6、6.5、未调或未调加亚硫酸氢钠,加入占上清液重量0.05%防腐剂山梨酸钾后用蒸馏水定至药液:药材为1:1体积,搅匀,过滤;
3)灌装:将配置得到的药液装入规定的已消毒口服液瓶内,密封;
4)灭菌:将步骤3)得到的服液瓶在沸水中煮沸30分钟,取出,静置。
放置12至13天口服液状态总结:
综上表格可得,pH范围在3.8~6时(未调者pH值约为5.1),溶液在稳定状态,加入抗氧化剂可增加稳定性。