CN103539842B - 草鱼呼肠孤病毒ⅱ型s10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应用 - Google Patents

草鱼呼肠孤病毒ⅱ型s10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应用。草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示,编码该蛋白的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。本发明获得的重组蛋白具有较好的免疫原性,与GCRV其它结构蛋白相比,其诱导免疫动物产生的特异性抗体效价更高。进一步试验表明,用S10重组蛋白免疫草鱼,可使草鱼诱导产生较高的特异性抗体,并能对草鱼呼肠孤病毒强毒株的攻击起到一定的免疫保护作用。因此,对GCRV Ⅱ型S10基因编码蛋白的研究和应用,对开发草鱼出血病新型疫苗及免疫学检测试剂盒具有极其重要的意义,为草鱼出血病提供新的有效解决途径。

Description

草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应用
技术领域
本发明属于生物基因工程领域,具体涉及由草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码的重组S10抗原蛋白、由S10抗原蛋白制备的多克隆抗体及其应用。
背景技术
由草鱼呼肠孤病毒(Grass Crap Reovirus,GCRV)引起的草鱼出血病给我国草鱼养殖业造成巨大经济损失,严重制约着我国草鱼养殖的健康发展。GCRV具双层衣壳,病毒粒子平均直径为60 nm~70 nm,二十面体对称,无囊膜,基因组由11条分节段的双链RNA组成,根据其基因节段的大小,将其基因组按分子量大小分为3个组,分别命名为L1-L3、M4-M6和S7-S11。这11个RNA节段可以编码12种多肽蛋白,其中7种结构蛋白,分别命名为VP1-VP7,其余为非结构蛋白,命名为NS1-NS5。由于病毒的基因组的分节段特性,不同毒株之间可发生重配而产生高度变异,使得草鱼呼肠孤病毒的毒株较为复杂,目前已报道有20多个分离株,包括GCRV854、GCRV861、GCRV873、GCRV875、GCRV876、GCRV991、GCRV096、GCRV829、H962、ZV-8802、ZV-8909、GCHV-854、GCRV-HZ08、JX09-01、GCRV-104、GCRV-9014、GCRV-2008、GD108等,不同分离株在基因组序列、基因组带型、细胞病变、对草鱼的致病力等方面差异较大。根据现有的分离株基因序列信息,进行核苷酸序列与氨基酸序列比对以及构建系统进化树分析,所有毒株总体上可以分为3大类,分为3个基因型,即GCRVⅠ型(代表株为GCRV-873与GCRV-JX09-01)、GCRVⅡ型(代表株为GCRV-HZ08)和GCRV Ⅲ型(代表株为GCRV-104为)。当前,全国各地分离到的流行株中,三类亚型均有报道,有单独感染,也有混合感染,以HZ08株为代表的GCRV Ⅱ型是目前导致草鱼出血病流行和爆发的主要株型。
目前,对于草鱼出血病的防治,还没有特异有效的治疗药物和方法,最为有效的办法仍然是免疫预防,草鱼出血病细胞灭活疫苗与细胞弱毒疫苗的应用,对减少草鱼出血病的发生起到了一定的效果。但灭活疫苗的免疫原性比较差,需要足够大的量才能引起免疫应答,而大剂量又可引起局部或全身反应,并且所获得的免疫应答比较短暂,需要多次注射来增强免疫应答,而灭活疫苗的生产成本又比较高;细胞弱毒疫苗存在毒力返强的危险,有散毒的风险。和传统疫苗相比,基因工程疫苗存在较多有点,其抗原成分单一、免疫原性强,能够刺激机体产生较强的体液和细胞免疫应答,持续时间长;可规模化生产,成本相对低廉。此外,一种疫苗的免疫效果如何,需要合适的方法来检测和评价。通过免疫学方法来检测免疫动物特异性抗体的有无及抗体效价的高低是目前最为简便和有效的方法。由于草鱼呼肠孤病毒免疫原性比较差,至今还没有一种有效的免疫学诊断方法,尤其是缺乏评价疫苗免疫效果的血清学检测方法。
GCRV-873(Ⅰ型)是第一个完成全基因组测序的水生呼肠孤病毒,是至今为止研究最为深入和系统的毒株,关于GCRV-873株基因组各基因节段及其编码蛋白的功能和作用研究比较多。GCRV-HZ08(Ⅱ型) 为一个新的分离株,对其各节段基因及其编码蛋白的功能和作用还未有深入研究。通过生物信息学软件分析表明,HZ08株S10编码一个长达345AA的VP38蛋白,分子量为38.39kDa,该蛋白与禽呼肠孤病毒(Avian Reovirus,ARV)的非结构蛋白sNS同源性约14.5%,与哺乳动物正呼肠孤病毒(Mammal reovirus,MRV)的非结构sNS的同源性约7.2%,在核苷酸和氨基酸水平上均找不到和水生呼肠孤病毒的同源基因。因此,一直以来GCRV-HZ08株S10基因编码蛋白被认为是非结构蛋白,且可能具有与MRV和ARV的sNS蛋白相似的功能。
发明内容
我们的最近研究发现:GCRV-HZ08株S10基因编码蛋白为结构蛋白,且比GCRV其它结构蛋白诱导免疫动物产生更高效价的特异性抗体,具有更好的免疫原性;针对S10编码蛋白的抗体可以特异性识别GCRV Ⅱ型毒株,并对该类型毒株具有很强的中和能力;进一步试验表明,用S10重组蛋白免疫草鱼,可使草鱼诱导产生较高的特异性抗体,并能对草鱼呼肠孤病毒强毒株的攻击起到一定的免疫保护作用。因此,对GCRV Ⅱ型S10基因编码蛋白的研究和应用,对开发草鱼出血病新型疫苗及免疫学检测试剂盒具有极其重要的意义。
由此,本发明的一个目的在于提供一种S10抗原蛋白,及由其制备得到的多克隆抗体。
本发明的另一个目的在于提供上述S10抗原蛋白和抗S10抗原蛋白的多克隆抗体在制备草鱼出血病基因工程疫苗或制备草鱼呼肠孤病毒检测试剂盒上中的应用。
本发明所采取的技术方案是:
一种草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码蛋白,其氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
一种编码权利要求1所述蛋白的核酸,其碱基序列如SEQ ID NO:1所示。
上述S10基因编码蛋白作为鱼呼肠孤病毒抗原蛋白的应用。
一种多克隆抗体,是以氨基酸序列为SEQ ID NO:2所示的蛋白为抗原,免疫动物制备所得。
上述S10基因编码蛋白和/或上述的抗S10基因编码蛋白的多克隆抗体在制备草鱼出血病基因工程疫苗中的应用。
上述S10基因编码蛋白在制备草鱼呼肠孤病毒检测试剂盒上的应用。
一种基因工程疫苗,含有上述的S10基因编码蛋白或抗S10基因编码蛋白的多克隆抗体。
一种检测草鱼呼肠孤病毒的试剂盒,含有上述的S10基因编码蛋白。
本发明的有益效果是:
本发明获得的重组蛋白具有较好的免疫原性,与GCRV其它结构蛋白相比,其诱导免疫动物产生的特异性抗体效价更高。以S10基因编码蛋白免疫草鱼,可使草鱼诱导产生较高的特异性抗体,并能对草鱼呼肠孤病毒强毒株的攻击起到较好的免疫保护效果(保护率为73.3%)。因此,S10基因编码蛋白是研制草鱼出血病基因工程疫苗较好的候选抗原。以S10基因编码蛋白作为检测草鱼呼肠孤病毒抗体效价的间接酶联免疫吸附试验(ELISA)的包被抗原,能很好的识别GCRV感染或疫苗免疫草鱼产生的特异性抗体;并且,通过该方法获取的包被抗原,具有快速、特异、敏感、简便和安全的优点,克服了组织和细胞培养方法产生完整病毒作为间接ELISA包被抗原而造成的操作过程繁琐、不稳定、产量低、成本高的缺点。因此,本发明的GCRV Ⅱ型S10基因及其编码蛋白,对开发草鱼出血病新型疫苗、免疫学检测试剂盒及治疗产品具有重要的意义,为草鱼出血病提供新的有效解决途径。
附图说明
图1为GCRV Ⅱ型毒株 S10基因PCR扩增产物电泳图,图1中 M为DL marker 1000;1为阴性对照;2为以 pVAX1-S10质粒为模板的PCR扩增产物;
图 2为重组质粒pET-32a-S10双酶切鉴定结果,图2中M为DL marker 15000;1为重组质粒pET-32a-S10双酶切产物;2为空载体pET-32a(+)双酶切产物;
图3为SDS-PAGE分析重组质粒pET-32a-S10表达产物及其可溶性,图3中M为低分子质量蛋白质marker;1为IPTG诱导的pET-32a-S10菌体;2为IPTG诱导的pET-32a-S10菌液上清;3为未经IPTG诱导的pET-32a-S10菌体;4为未经IPTG诱导pET-32a-S10的菌液上清;5为IPTG诱导的pET-32a(+)的菌体;6为菌体超声波破碎后的上清;7为菌体超声波破碎后的沉淀;
图4为S10基因编码重组蛋白经Ni柱纯化后SDS-PAGE分析结果,图4中M低分子质量蛋白质marker;1为纯化的S10基因编码重组蛋白;2为通过Ni柱的流穿液;3为未纯化的菌体总蛋白;
图5为western blot 分析S10编码蛋白抗血清特性,图5中M低分子质量蛋白质marker;1为纯化的HZ08毒株;2为 pET-32a(+)空载体;3为纯化的S10基因编码重组蛋白;
图6为间接免疫荧光分析S10编码蛋白抗血清特性,图6中A为接种HZ08株的CIK细胞;B为未接种病毒的正常CIK细胞对照。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步的说明,但并不局限于此。
以下实施例中所采用的分子生物学实验技术包括PCR扩增、质粒提取、质粒转化、DNA片段连接、酶切、凝胶电泳等,如无特殊说明,通常按照常规方法操作,具体可参见《分子克隆实验指南》(第三版) (Sambrook J, Russell DW,Janssen K, Argentine J.黄培堂等译,2002,北京:科学出版社) ,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例
一、草鱼呼肠孤病毒HZ08株RNA的提取和S10基因片段扩增
按照Qiagen RNA提取试剂盒(购自Qiagen公司,货号:74104)的说明书步骤,从感染GCRV HZ08株病毒的CIK细胞内中提取RNA,用TAKARA(购自大连宝生物工程有限公司,货号:)反转录试剂盒将病毒RNA反转录成cDNA。GCRV HZ08病毒株由珠江水产研究所鱼病室保藏。
根据GenBank(GenBank: GU350747.1)中GCRV-HZ08株S10基因序列设计1对引物,上游引物:5'- ATA GGA TCC ATG GCG GGT GTG TCT CT CAA CA - 3'(SEQ ID NO:3);下游引物:5'-GCT AAG CTT CAG CAT CTG CGC AAA TAT ACG TC -3'(SEQ ID NO:4),在上下游引物序列中分别插入BanHⅠ和HandⅢ酶切位点(带下划线的基因),以上述制备的cDNA为模版,对S10基因进行PCR扩增。每25μL反应体系中加入2.5μL 10×PCR reaction buffer,0.5μL dNTP(10mM each),上、下游引物分别为0.5μL,2μL cDNA作为模版,LA Taq酶0.25μL,ddH2O 18.75μL;反应条件为:95℃预变性5min,94℃ 40s,54℃ 45s,72℃ 1min,共30个循环,72℃延伸8min。
PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测,发现在约110bp处出现一条预期大小一致的特异性扩增条带(见图 1),用胶回收试剂盒回收纯化目的条带,经测序验证与预期相符。
二、pET-32a-S10重组表达载体构建
将PCR回收产物和原核表达载体pET-32a(+)分别双酶切处理(BanHⅠ1μl,HandⅢ 1μl,10×K buffer 2μl,质粒16μl)后,经1%琼脂糖电泳分析,胶回收S10目的片段和处理好的pET-32a(+)载体,用T4 DNA连接酶连接S10目的片段和pET-32a(+)(T4 Liqase 1.5μl,T4 Liqase buffer 1.5μl,pET-32a(+)3μl,S10目的片段9μl,共15μl),,将连接产物转化到大肠杆菌DH5α,筛选阳性克隆,菌液PCR鉴定为阳性的提取质粒,质粒经双酶切和测序鉴定正确后,命名为pET-32a-S10,保存用于后续试验。
PCR和双酶切鉴定结果(见图 2)均显示重组表达质粒pET-32a-S10构建正确,测序结果证实目的片段及阅读框均正确,且目的基因S10和pET-32a(+)的His-Tag标签蛋白在同一开放阅读框下。
三、诱导表达和可溶性分析
诱导表达:将鉴定正确的重组质粒pET-32a-S10转化到大肠杆菌BL21(DE3),挑取LB/Amp平板筛选的阳性克隆,于LB/Amp培养基中,37℃,200rpm/min恒温摇床培养至光密度(OD600=0.6)时,加入终浓度为1mmol/L的TPTG诱导,诱导10h后取200μl菌液离心收集菌体和上清备用,同时设立空载体pET-32a(+)作为阴性对照。
可溶性分析:将pET-32a-S10诱导表达20ml,离心收集菌体,用PBS重悬离心洗涤2次后,加入5ml PBS重悬菌体,在冰上超声波破碎(工作5s,间歇10s,功率250w)约2h至溶液澄清,吸取200μL破碎液,6000rpm/min离心5min,将上清吸到另一EP管记为溶液A,沉淀用200μl 6M的尿素溶解,记为溶液B,分别将A、B溶液进行SDS-PAGE,对该重组蛋白进行可溶性分析,若目的蛋白主要在A溶液中,则该蛋白为可溶性蛋白;若目的蛋白主要在B溶液中,则目的蛋白以包涵体形式存在。
经SDS-PAGE分析诱导表达的重组蛋白显示,重组质粒pET-32a-S10菌株在53ku处出现一条目的条带(见图3),pET-32a(+)载体的的His-标签蛋白与目的蛋白一起融合表达。取超声波破碎液离心后的上清溶液A和6M尿素溶解沉淀的溶液B ,经SDS-PAGE分析表明,融合标签蛋白的目的蛋白主要存在B溶液中,即目的蛋白主要以包涵体形式存在(见图3)。
四、诱导表达条件的优化
采用棋盘法优化诱导条件,把pET-32a-S10转化到大肠杆菌BL21(DE3)感受态中,LB/Amp平板筛选阳性菌落,挑取单菌落于3ml LB/Amp培养基中,在37℃,200rpm/min恒温摇床培养12h,然后将菌液接种20μL到2mL LB/Amp培养基中,在37℃,200rpm/min恒温摇床培养至光密度(OD600设0.2、0.4、0.6、0.8和1.0,已实际测定为准)时,加入TPTG诱导(IPTG终浓度设0.5、1.0、1.5、2.0、3.0 mmol/L),培养10h后取200μl菌液离心,收集菌体,经SDS-PAGE分析后用BandScan 5.0软件分析重组蛋白的相对表达量。
最后得出当诱导表达条件是:OD600为0.8左右,IPTG终浓度为1.5mmol/L时,其表达条件最佳,目的蛋白的含量可达60%以上。
五、目的蛋白的大量表达和纯化
挑取LB/Amp平板筛选得阳性单菌落到1mL LB/Amp培养基培养10~12h,然后将其接种到1L LB/Amp培养基,37℃,200rpm/min恒温摇床培养,在优化的表达条件下诱导表达。将诱导表达的菌液在10000rpm/min离心5min,收集菌体,用400ml PBS重悬离心洗涤2次,再加入100 ml PBS重悬,在冰上超声波破碎至溶液澄清。将破碎液离心收集包涵体(该蛋白可溶性检验为包涵体蛋白),然后参照Ni-凝胶纯化试剂盒(包涵体蛋白纯化)说明书纯化目的蛋白。用50ml Binding Buffer溶解包涵体过夜,将溶解液10000rpm/min离心20min收集上清,再0.45μm的滤膜过滤,将上清负载上已平衡好的Ni柱流速10倍柱体积/小时,收集流穿液;用15倍柱体积的Binding Buffer洗去未结合蛋白和杂蛋白,然后用20ml Elution Buffer洗脱目的蛋白,收集洗脱峰(整个纯化过程在4℃冰箱中进行)。将Ni柱上洗脱下的蛋白装入透析袋,依次放入含6M,4M,2M,1M,0.5M,0M尿素的PBS溶液中透析,每个浓度透析12h(全部过程在4℃冰箱中进行)。透析完成后加入PEG-6000,4℃冰箱静置浓缩,浓缩50%后分装成1mL/管,用紫外吸光光度法测浓度后-20℃保存备用。
六、多克隆抗体的制备
将纯化的目的蛋白用无菌PBS稀释至200μg/ml后注射昆明小白鼠。第一次免疫用弗氏完全佐剂1:1乳化,注射量为200μL/只,共免疫10只。第二次免疫和第三次免疫用弗氏不完全佐剂1:1乳化,注射同样的量。每次免疫时间间隔14d。第三次免疫10d后天断尾取血,制备血清,用ELISA检测血清抗体的效价。如抗体效价不够,可以加强免疫一次,如足够高,则第14d摘眼球取血。采取的血样37℃静置1h后4℃冰箱静置过夜,第二天3000rpm/min离心8min,收集血清,-20℃保存备用。对照组注射无菌PBS制备阴性血清。
七、血清抗体效价测定
根据本实验室建立的草鱼呼肠孤病毒间接ELISA检测方法来测定血清抗体效价,即用纯化的S10编码蛋白作为抗原包被聚苯乙烯反应板来建立的间接ELISA方法。其简要过程如下:将纯化的重组蛋白用pH9.6的碳酸盐缓冲液按1:8000倍稀释(70ng/ml)包被100μL于96孔酶标板,4℃过夜;用200μL 1%BSA于37℃封闭2h;将制备的血清按1:10、1:102、1:103、1:104、1:105、1:106、1:107、1:108、1:109、1:1010等梯度稀释加入100μL,37℃孵育2h,以相应稀释倍数的阴性血清做对照;加入1:5000稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG100μL, 37℃孵育1h;以上每步反应后都用200μL PBST洗板3—5次,每次5min;最后用TMB显色试剂盒显色20min,加入0.5M的H2SO4终止显色,在酶标仪(Infinite M200 PRO)上读OD450值。当OD450≥0.277,且P/N≥2.1判定为阳性。
用间接ELISA 法对S10基因编码重组蛋白鼠抗血清进行效价测定,结果表明该抗体效价约为1:106。
八、多克隆抗体特性分析
Western blot分析:将纯化的GCRV HZ08病毒、IPTG诱导的pET-32a(+)空载体和纯化的S10基因编码重组蛋白经SDS-PAGE电泳,电泳结束后用半干转膜法将蛋白转移到NC膜上,用含5%脱脂牛奶的TBST缓冲液4℃封闭过夜;加入1:1000稀释的血清,37℃孵育2h;加入1:5000稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG,37℃孵育1h;每次反应后用TBST洗3~5次,每次5min,最后用DAB显色剂显色并观察结果。
制备的多克隆抗体经western blot分析,加入纯化的GCRV HZ08毒株的孔道中,在约38ku处出现一条特异性条带,与病毒S10基因自身编码的蛋白大小一致;在加入纯化的重组蛋白的孔道中,在约53ku处出现一条特异条带,与预期大小一直;而加入空载体菌体的孔道中没有任何条带。
间接免疫荧光试验(Indirect immunofluorescent assay,IFA):将CIK细胞传代至96孔细胞培养板中,待细胞长至单层铺满80%左右后,感染HZ08病毒;感染病毒5d后,将细胞培养板中的培养基吸尽,用0.01mol/L的PBS洗涤3次,加入80%的丙酮溶液室温孵育30min,吸去丙酮,室温干燥1h;每孔加100μl 1:1000稀释的鼠抗S10蛋白多克隆抗体,37℃孵育1h,PBST洗涤3次,加入1:50稀释的羊抗鼠IgG-FITC标记的荧光二抗100μl,37℃孵育1h;PBST洗涤3次,最后加入细胞核染料碘化丙啶(PI)作用5min,荧光倒置显微镜(Nikon,Eclipse Ti-S)下观察结果。阴性对照为未感染病毒的正常CIK细胞。
间接免疫荧光实验的结果显示,制备的多克隆抗体能使感染HZ08毒株的CIK细胞能产生特异性的荧光 (见图6中 A),而在未感染病毒的正常CIK细胞中观察不到荧光信号。
九、动物免疫保护试验
以当年8-10 cm左右大小(大约20g-25 g)的草鱼作为免疫对象,在试验池中暂养2周后进行免疫试验。实验前采取10尾草鱼的血清,作为阴性对照。纯化的重组蛋白用无菌PBS稀释,试验分为3各组,每组30尾鱼,第一组没尾注射10μg重组蛋白;第二组注射20μg重组蛋白,第三组注射PBS作为空白对照。第一次免疫用弗氏完全佐剂1:1乳化,每尾腹腔注射200μL。免疫2周后,加强免疫用弗氏不完全佐剂1:1乳化,注射同样的量。分别从第一次2周和加强免疫2周后的每组鱼中采取4尾鱼的血清,用ELISA检测血清抗体的滴度。ELISA检测的操作步骤为:大体步骤实施例第七步所述方法进行,只是这里的血清换成200倍稀释的草鱼血清作为一抗,每孔加入100μL,酶标二抗换成HRP标记的鼠抗草鱼IgM,最后用TMB显色试剂盒显色20min,加入0.5M的H2SO4终止显色,在酶标仪(Infinite M200 PRO)上读OD450值(见 表1)。
表 1 免疫草鱼血清特异性抗体滴度
以上实验结果表明,用S10重组蛋白免疫草鱼,可使草鱼诱导产生较高的特异性抗体,并能对草鱼呼肠孤病毒强毒株的攻击起到一定的免疫保护作用。
以上实施例仅为介绍本发明的优选案例,对于本领域技术人员来说,在不背离本发明精神的范围内所进行的任何显而易见的变化和改进,都应被视为本发明的一部分。
<110>  中国水产科学研究院珠江水产研究所
 
<120>  草鱼呼肠孤病毒Ⅱ型S10基因编码的重组蛋白、由其制备的多克隆抗体及应
       用
 
<130> 
 
<160>  4    
 
<170>  PatentIn version 3.5
 
<210>  1
<211>  1038
<212>  DNA
<213>  Grass Crap Reovirus
 
<400>  1
atggcgggtg tgtctctcaa catcaatcgc aacatctcaa actcggcatc aacgatcttt       60
 
ctcgaagata ttccattact gtcatgttca gtgcggtgtg aacccggtaa aggacgcgaa      120
 
ttaccaaaat ttaacatgag ctgccctgct attaacgcga tgggtcgatg tcttaatcca      180
 
atgaagttca ttgctgagca ctgggtcccc aacagtccaa gtcgtaaacc atccagacag      240
 
cattggcgta atgttttgaa tggactggaa ttcagtaatg gtcgtggatt cgatgtgctg      300
 
agtttctcac cagcgggcat ggctgttctt cgtgacatcc tgacagaaga tagcgtgaac      360
 
tattgctttg acgagagtaa cacttgcagt ttgttcacct tgctgtacac tctgtgttgc      420
 
gatgccgcag gcgtagaacc gatggacttg gattcacgtc agacggacgc cagtgcccgg      480
 
atggtgagct accaagatcg cgctatcgtg ctgacctcta atgaggcagg agatagaatt      540
 
gagccgtgga atgttgagct cgacaaggag tttggaaatc cagatctgct cagccgtctg      600
 
aacatctcat atggcgtgca acgatatggc gactccaaag ccagcacaga cactctgacc      660
 
ttggctgatg ccccagagag gtccaagcct gctctgatta ctgtgcaacc cttgttggtg      720
 
gctatgtgca tcaaacaatc tttggatggc ttgctggctt tatctgattt gcgcctgaga      780
 
ttcgatcagt atcctggata cgcaaatgct ctcatgaatg ctatggccat gtacgcttgc      840
 
ctagatcgtg acttgatgcg ttttctgctc cgcttagaaa tgactcacgc gagcacggtg      900
 
tctgaagtgg ctgagtgctg gaggaactct cgcaactctc gcgatgcaac aggttgtcat      960
 
attgtcccac gtcaaggttt gctcatcatc gtttccggag atgtcgaggt aagacgtata     1020
 
tttgcgcaga tgctgtag                                                   1038
 
 
<210>  2
<211>  345
<212>  PRT
<213>  Grass Crap Reovirus
 
<400>  2
 
Met Ala Gly Val Ser Leu Asn Ile Asn Arg Asn Ile Ser Asn Ser Ala
1               5                   10                  15     
 
 
Ser Thr Ile Phe Leu Glu Asp Ile Pro Leu Leu Ser Cys Ser Val Arg
            20                  25                  30         
 
 
Cys Glu Pro Gly Lys Gly Arg Glu Leu Pro Lys Phe Asn Met Ser Cys
        35                  40                  45             
 
 
Pro Ala Ile Asn Ala Met Gly Arg Cys Leu Asn Pro Met Lys Phe Ile
    50                  55                  60                 
 
 
Ala Glu His Trp Val Pro Asn Ser Pro Ser Arg Lys Pro Ser Arg Gln
65                  70                  75                  80 
 
 
His Trp Arg Asn Val Leu Asn Gly Leu Glu Phe Ser Asn Gly Arg Gly
                85                  90                  95     
 
 
Phe Asp Val Leu Ser Phe Ser Pro Ala Gly Met Ala Val Leu Arg Asp
            100                 105                 110        
 
 
Ile Leu Thr Glu Asp Ser Val Asn Tyr Cys Phe Asp Glu Ser Asn Thr
        115                 120                 125            
 
 
Cys Ser Leu Phe Thr Leu Leu Tyr Thr Leu Cys Cys Asp Ala Ala Gly
    130                 135                 140                 
 
 
Val Glu Pro Met Asp Leu Asp Ser Arg Gln Thr Asp Ala Ser Ala Arg
145                 150                 155                 160
 
 
Met Val Ser Tyr Gln Asp Arg Ala Ile Val Leu Thr Ser Asn Glu Ala
                165                 170                 175    
 
 
Gly Asp Arg Ile Glu Pro Trp Asn Val Glu Leu Asp Lys Glu Phe Gly
            180                 185                 190        
 
 
Asn Pro Asp Leu Leu Ser Arg Leu Asn Ile Ser Tyr Gly Val Gln Arg
        195                 200                 205            
 
 
Tyr Gly Asp Ser Lys Ala Ser Thr Asp Thr Leu Thr Leu Ala Asp Ala
    210                 215                 220                
 
 
Pro Glu Arg Ser Lys Pro Ala Leu Ile Thr Val Gln Pro Leu Leu Val
225                 230                 235                 240
 
 
Ala Met Cys Ile Lys Gln Ser Leu Asp Gly Leu Leu Ala Leu Ser Asp
                245                 250                 255    
 
 
Leu Arg Leu Arg Phe Asp Gln Tyr Pro Gly Tyr Ala Asn Ala Leu Met
            260                 265                 270        
 
 
Asn Ala Met Ala Met Tyr Ala Cys Leu Asp Arg Asp Leu Met Arg Phe
        275                 280                 285            
 
 
Leu Leu Arg Leu Glu Met Thr His Ala Ser Thr Val Ser Glu Val Ala
    290                 295                 300                
 
 
Glu Cys Trp Arg Asn Ser Arg Asn Ser Arg Asp Ala Thr Gly Cys His
305                 310                 315                 320
 
 
Ile Val Pro Arg Gln Gly Leu Leu Ile Ile Val Ser Gly Asp Val Glu
                325                 330                 335    
 
 
Val Arg Arg Ile Phe Ala Gln Met Leu
            340                 345
 
 
<210>  3
<211>  31
<212>  DNA
<213>  人工序列
 
<400>  3
ataggatcca tggcgggtgt gtctctcaac a                                      31
 
 
<210>  4
<211>  32
<212>  DNA
<213>  人工序列
 
<400>  4
gctaagcttc agcatctgcg caaatatacg tc                                     32

Claims (6)

1.S10基因编码蛋白在制备鱼呼肠孤病毒抗原制剂中的应用,所述S10基因编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
2.一种多克隆抗体,其特征在于,是以氨基酸序列为SEQ ID NO:2所示的蛋白为抗原,免疫动物制备所得。
3.S10基因编码蛋白和/或权利要求2所述的多克隆抗体在制备草鱼出血病基因工程疫苗中的应用,所述S10基因编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
4.S10基因编码蛋白在制备草鱼呼肠孤病毒检测试剂盒上的应用,所述S10基因编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
5.一种基因工程疫苗,其特征在于,含有S10基因编码蛋白或含有权利要求2所述的多克隆抗体,所述S10基因编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
6.一种检测草鱼呼肠孤病毒的试剂盒,其特征在于,含有S10基因编码蛋白,所述S10基因编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。
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