CN103235126B - 定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 - Google Patents
定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103235126B CN103235126B CN201310122480.4A CN201310122480A CN103235126B CN 103235126 B CN103235126 B CN 103235126B CN 201310122480 A CN201310122480 A CN 201310122480A CN 103235126 B CN103235126 B CN 103235126B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- antibody
- alkaline phosphatase
- beta
- sandwich method
- pairing
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法,属于免疫分析领域。本发明用β-碱性磷酸酯酶免疫8周龄的BALB/c小鼠,经正常的免疫、细胞融合、筛选后得13株β-碱性磷酸酯酶单抗。13株抗体分别标记辣根过氧化物酶并进行两两配对。确定以4号抗体CGMCC No.7204为包被抗体、5号抗体CGMCC No.7205为酶标抗体,以β-碱性磷酸酯酶为标准品建立了β-碱性磷酸酯酶的夹心ELISA法,LOD为0.8ng/mL,R2=0.98,线性范围50-400ng/mL。本发明用β-碱性磷酸酯酶为免疫原,制备了理化性质高度均一、特异性好、可大量制备的β-碱性磷酸酯酶单抗,建立的夹心法为食品及自来水中E.coli菌属的检测提供了新颖、快速、高效的分析手段。
Description
技术领域
本发明涉及了一种定量检测食品或自来水中大肠杆菌E.coli标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法,属于免疫分析领域。
背景技术
大肠杆菌(Escherichia coli,E.coli),1885年由Escherich发现,分布在自然界,主要附生在人或动物的肠道里,为正常菌群,少数的大肠杆菌具有毒性,可引起疾病。
E.coli常随粪便散布在环境中,作为温血动物肠道细菌的代表,大肠杆菌常作为饮水和食物(或药物)的卫生学标准。若在水和食品中检出此菌,可认为是被粪便污染的指标,从而可能有肠道病原菌的存在。β-碱性磷酸酯酶是位于大肠杆菌胞质空间和表面的一种分子量为50kDa,具有两个相同亚基的酶蛋白,在缺乏磷酸盐时大量合成。因此,β-碱性磷酸酯酶是ELISA检测大肠埃希氏菌E.coli的理想检测对象。
目前,检测E.coli的方法有培养法、酶底物法、PCR方法等。培养法是检测E.coli的国标方法,尽管权威可靠,但一般需要10天得到结果,且操作过程繁琐,不能适应快速检测的要求;酶底物法多利用E.coli属特异性的β-碱性磷酸酯酶或者β-D-葡萄糖苷酸酶的酶学活性催化底物产生荧光,从而在24h内实现对E.coli的检测,优点是检测时间短,操作简单,缺点是酶活性质易受温度、pH、离子强度的影响,所用酶的国外产品质量较为稳定,但相对比较昂贵;PCR方法,检测E.coli属特异性的DNA片段,具有灵敏度高、检测时间短的特点,缺点是成本较高、需要较高的操作技术,且不能避免增菌过程。
尽管食源性致病菌检测方法不断发展,ELISA凭借其快速、灵敏、特异性好、高通量、不需要大型仪器,易于推广的特点成为目前检测微生物的常用方法。直接检测微生物的ELISA试剂盒检测抗原通常为菌体的表面抗原,检测抗体一般有多克隆抗体和单克隆抗体两种。由于单克隆抗体具有理化性质单一、特异性好、亲和力高并可以无限生产的特点,比多克隆抗体具有更大的应用价值。本发明首次通过制备单克隆抗体并建立起检测大肠杆菌分泌的β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法来实现对大肠杆菌的检测,为食品和自来水中大肠埃希氏菌的快速检测提供了新方法。
发明内容
(一)要解决的技术问题
本发明的目的在于建立一种具有灵敏度高、特异性好、操作方法简单的基于单克隆抗体的大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶双抗体夹心法,用于食品和自来水中大肠埃希氏菌的批量、快速检测。
(二)技术方案
为实现上述目的,本发明建立了一种大肠杆菌β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心检测方法,该方法包括对检测方法的优化。
其中,单克隆抗体是采用大肠杆菌β-碱性磷酸酯酶(megazyme)经过特定免疫程序免疫BALB/c小鼠,经杂交瘤技术融合、筛选得到的。
其中,用于配对的抗体是通过优化参数下夹心法配对,并通过多次试验筛选确定的,具有稳定性好、灵敏度高的特点。
其中,建立的夹心法优化了包被抗体的浓度,包被液,封闭液,标准品稀释液,酶标抗体稀释液,酶标抗体稀释浓度。LOD达到0.8ng/mL,R2为0.98,实际检测限为50ng/mL。
定量检测食品或自来水中大肠杆菌E.coli标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法:
(1)β-碱性磷酸酯酶单克隆抗体的制备
以β-碱性磷酸酯酶(megazyme,来源于大肠杆菌,市售)为免疫原,免疫8周龄的BALB/c小鼠,免疫程序如下:第一周进行首免,100μg/只,弗氏完全佐剂乳化后皮下多点注射;第四周进行二免,100μg/只,弗氏不完全佐剂乳化后皮下多点注射;第六周进行三免,50μg/只,弗氏不完全佐剂乳化后皮下多点注射;第七周尾部采血测效价,选择效价最高的鼠;第八周进行冲刺免疫,20μg/只,生理盐水溶解,腹腔注射;冲刺免疫3天后眼眶采血后进行融合,筛选采用间接ELISA进行,共筛选到13个细胞株。
(2)单克隆抗体的配对筛选
将纯化后的13株单克隆抗体分别标记辣根过氧化物酶HRP,直接法鉴定标记成功后进行夹心法配对;配对参数如下:包被抗体5μg/mL;包被液为pH9.6、0.01M的碳酸盐缓冲液;标品浓度100ng/mL;标品稀释液pH7.2、0.01M的PBS;酶标抗体稀释500倍使用;在此条件下,实验成功得到了16对P/N值>5的配对;
(3)夹心法的建立
选择检测限最稳定的配对,即以11号抗体CGMCC No.7204为包被抗体,以1号抗体CGMCC No.7205为酶标抗体建立夹心法;具体参数如下:
抗体包被浓度:5μg/mL,
包被液:pH9.6、0.01M的碳酸盐缓冲液,
标品稀释液:pH7.2、0.01M的PBS,
检测抗体浓度:4μg/mL,
反应时间:包被、封闭:37℃2h;标准品:37℃1h;检测抗体:37℃1h;显色12min;
优化后β-碱性磷酸酯酶夹心法,LOD:0.8ng/mL,检测限50ng/mL。
本发明方法的检测分析原理是:
酶标板上包被了捕获抗体4(CGMCC No.7204),合适的浓度下可以最大限度捕获β-碱性磷酸酯酶,37℃2h;洗板3次,洗去未结合的抗体,加入封闭液220μL,37℃2h封闭板孔上多余结合位点;洗板3次,加入样品及对照,37℃孵育1h;洗板3次,加入酶标抗体5-HRP(CGMCC No.7205-HRP),37℃孵育1h;洗板4次,加入显色液显色12min。如果样品有≥50ng/mL的β-碱性磷酸酯酶,那么β-碱性磷酸酯酶被捕获抗体4捕获并与酶标抗体5-HRP(CGMCCNo.7205-HRP)结合,并催化底物在450nm产生吸收值,并被判定为阳性;如果样品β-碱性磷酸酯酶浓度<50ng/mL那么样品不被捕获或者捕获数量太小不足以引起足够的信号,被判定为阴性。
(三)有益效果
本发明提供的大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶双抗体夹心检测方法,采用了理化性质高度均一、特异性好、可以大量制备的单克隆抗体,建立的夹心法灵敏度高,稳定性好、成本低,样品的前处理过程简单,能同时检测大量样品,适合食品行业和自来水中大肠杆菌的快速高通量检测,具有推广和应用价值。
生物材料样品保藏:
1、单克隆细胞株4号,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,保藏编号CGMCC No.7204,保藏日期2013年1月23日。
2、单克隆细胞株5号,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,保藏编号CGMCC No.7205,保藏日期2013年1月23日。
附图说明
图1大肠杆菌β-碱性磷酸酯酶双抗体夹心法的标准曲线。
具体实施方式
实施例1
以下通过实施例进一步说明本发明。
一、仪器:
TGL-40B台式低速离心机,上海安亭科学仪器厂
KFLOW纯水机,凯佛隆公司
ZD–9556水平摇床,太仓科教器材厂
96孔8×12可拆酶标板,厦门怡佳美实验器材有限公司
MuLtiska Mks酶标仪,Thermo Labsystems公司
可调试移液器,Thermo Labsystems公司
涡旋混合器,上海沪西仪器分析厂
二、试剂:
四甲基联苯胺(TMB),上海晶纯实业有限公司
其他试剂均为分析纯试剂
三、步骤
1.单克隆抗体的制备
(1)实验动物:选5只8周龄的BALB/c小鼠进行免疫。
(2)抗原配置:将免疫原(β-碱性磷酸酯酶)用生理盐水稀释,配成1mg/mL的溶液。
(3)乳化:将上述溶液与等量完全或不完全福氏佐剂用混合搅拌法将其乳化,乳化完全后皮下多点注射小鼠。
免疫方法:按照特定免疫流程免疫小鼠,3免后用间接竞争法测定效价,效价达到要求后,进行冲刺免疫;冲免3天后眼眶采血后进行融合。
(4)采血:第三次免疫后1周进行断尾采血,采用间接非竞争酶联免疫法测定抗血清效价。
(5)融合、筛选:采用杂交瘤技术进行融合,采用间接ELISA筛选阳性细胞孔,采用有限稀释法对阳性孔进行亚克隆。
(6)抗体的纯化和保存:采用辛酸-饱和硫酸铵法纯化腹水,透析后得到单克隆抗体,采用微量紫外方法测定其浓度后分装后放入-20℃保存。
2、ELISA反应过程:
抗体效价测定步骤:
(1)将包被原用包被缓冲液作系列稀释包被96孔酶标板,100μL/孔,于4℃冰箱过夜。次日取出酶标板回至室温,每孔注入200μL PBST溶液,摇床上振荡3min,用力甩掉洗涤液,在吸水纸上拍干,继续洗涤2次。以下洗涤方法相同。
(2)充分洗涤后,用封闭缓冲液封闭酶标板,200μL/孔,于37℃温育箱内温育2h后取出烘干待用。
(3)将阳性血清系列稀释对应加入到酶标板的前7行列,第8行加入阴性血清,100μL/孔,37℃孵育1h后洗涤、拍干。
(4)每孔加入100μL、1:3000稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG,37℃孵育1h后洗涤、拍干。
(5)每孔加入100μL显色液(TMB与底物液比例为1:5),暗处37℃反应15min,取出后每孔加入100μL终止液(2mol/L的硫酸),用酶标仪测定吸光值A450。
大肠杆菌β-碱性磷酸酯酶双抗体夹心法测定步骤:
a、包被:用6μg/mL的4号抗体(CGMCC No.7204)包被酶标板,100μL/孔,4℃过夜。
b、洗涤:用PBST洗涤反应板三次,每次3min,200μL/孔,然后甩干反应板。
c、封闭:含0.2%明胶的CBS,200μL/孔,37℃封闭2h。
d、洗涤:同b。
e、样品:用PBS将大肠杆菌β-碱性磷酸酯酶母液稀释成6.25,12.5,25,50,100,200,400ng/mL系列浓度,另设一个PBS空白对照。每孔加入100μL样品,于37℃温育1h。
f、洗涤:同b。
g、加酶标抗体(CGMCC No.7205-HRP,4μg/mL),100μL/孔,37C反应lh。
h、洗涤:同b。
i、显色:加底物TMB100μL/孔,显色15min。
j、终止:加终止液50μL/孔。
k、测定:用酶标仪检测OD450nm
试验结果如下:
1、标准曲线:本发明所获得的抗原检测的线性范围为50~400ng/mL,R2=0.98,请见说明书附图。
2、LOD:LOD是空白的平均吸收值加3倍的标准偏差对应的抗原浓度,大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶双抗体夹心法LOD为0.8ng/mL。
Claims (1)
1.定量检测食品或自来水中大肠杆菌E.coli标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法,其特征在于步骤为:
(1)β-碱性磷酸酯酶单克隆抗体的制备
以来源于大肠杆菌的β-碱性磷酸酯酶为免疫原,免疫 8周龄的BALB/c小鼠,经融合、筛选,共筛选到13个细胞株;
(2)单克隆抗体的配对筛选
将纯化后的13株单克隆抗体分别标记辣根过氧化物酶HRP,直接法鉴定标记成功后进行夹心法配对;配对参数如下:包被抗体5μg/mL;包被液为pH9.6、0.01M的碳酸盐缓冲液;标品浓度100ng/mL;标品稀释液pH7.2、0.01M的PBS;酶标抗体稀释500倍使用;在此条件下,实验成功得到了16对P/N值>5的配对;
(3)夹心法的建立
选择检测限最稳定的配对,即以4号抗体CGMCC No.7204为包被抗体,以5号抗体CGMCC No.7205为酶标抗体建立夹心法;具体参数如下:
抗体包被浓度:5μg/mL,
包被液:pH9.6、0.01M的碳酸盐缓冲液,
标品稀释液:pH7.2、0.01M的PBS,
酶标抗体浓度:4μg/mL,
反应时间:封闭:37℃ 2h;标准品:37℃ 1h;酶标抗体:37℃ 1h;显色12min;
优化后β-碱性磷酸酯酶夹心法,LOD:0.8ng/mL,检测限50ng/mL。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310122480.4A CN103235126B (zh) | 2013-04-09 | 2013-04-09 | 定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310122480.4A CN103235126B (zh) | 2013-04-09 | 2013-04-09 | 定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103235126A CN103235126A (zh) | 2013-08-07 |
CN103235126B true CN103235126B (zh) | 2014-09-24 |
Family
ID=48883177
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310122480.4A Active CN103235126B (zh) | 2013-04-09 | 2013-04-09 | 定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103235126B (zh) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103558388B (zh) * | 2013-10-24 | 2015-06-10 | 江南大学 | 一种基于单克隆抗体的检测食品中鼠伤寒沙门氏菌的双抗体夹心法 |
CN103698521B (zh) * | 2013-12-17 | 2015-09-23 | 江南大学 | 一种检测食品中大肠杆菌胞内β-葡萄糖苷酸酶的双抗体夹心法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1935843A (zh) * | 2006-10-18 | 2007-03-28 | 清华大学 | 大肠杆菌菌体多克隆抗体及其制备方法与应用 |
CN101051050A (zh) * | 2007-05-14 | 2007-10-10 | 郑州万泰生物科技有限公司 | 大肠杆菌o157检测条 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7658922B2 (en) * | 2005-06-24 | 2010-02-09 | Ab Enzymes Gmbh | Monoclonal antibodies, hybridoma cell lines, methods and kits for detecting phytase |
-
2013
- 2013-04-09 CN CN201310122480.4A patent/CN103235126B/zh active Active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1935843A (zh) * | 2006-10-18 | 2007-03-28 | 清华大学 | 大肠杆菌菌体多克隆抗体及其制备方法与应用 |
CN101051050A (zh) * | 2007-05-14 | 2007-10-10 | 郑州万泰生物科技有限公司 | 大肠杆菌o157检测条 |
Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
王娜,等.水环境中大肠杆菌多特征抗原及抗体的制备研究.《环境科学》.2007,第28卷(第5期),第1142-1146页. * |
范治国,等.医药废水中大肠杆菌抗体制备及检测方法..《净水技术》.2011,第30卷(第2期),第68-71页. * |
范治国,等.医药废水中大肠杆菌抗体制备及检测方法。.《净水技术》.2011,第30卷(第2期),第68-71页. |
郭艳峰,等.食品和水中大肠杆菌快速检测方法的研究进展..《畜牧与饲料科学》.2010,第31卷(第9期),第90-91页. * |
郭艳峰,等.食品和水中大肠杆菌快速检测方法的研究进展。.《畜牧与饲料科学》.2010,第31卷(第9期),第90-91页. |
高明春,等.大肠杆菌菌株ATCC25922碱性磷酸酶的原核表达、纯化及其活性研究..《东北农业大学学报》.2010,第41卷(第8期),第48-53页. * |
高明春,等.大肠杆菌菌株ATCC25922碱性磷酸酶的原核表达、纯化及其活性研究。.《东北农业大学学报》.2010,第41卷(第8期),第48-53页. |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103235126A (zh) | 2013-08-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103134931B (zh) | 一种检测食品中金黄色葡萄球菌肠毒素a的双抗体夹心法 | |
CN103558388B (zh) | 一种基于单克隆抗体的检测食品中鼠伤寒沙门氏菌的双抗体夹心法 | |
CN103197073B (zh) | 一种检测食品中大肠杆菌的酶联免疫方法 | |
Bickman et al. | An innovative portable biosensor system for the rapid detection of freshwater cyanobacterial algal bloom toxins | |
CN101865924B (zh) | 基于免疫磁珠联合酶联免疫吸附试验检测伏马毒素的方法 | |
CN104792991B (zh) | 一种基于单克隆抗体的检测食品中沙门氏菌属的特异性双抗体夹心法 | |
CN103713104B (zh) | 一种检测食品中阪崎肠杆菌的双抗体夹心法 | |
CN105527441B (zh) | 一种基于单克隆抗体的检测食品中李斯特菌属的双抗体夹心elisa法 | |
CN103787946B (zh) | 异细交链孢菌酮酸人工抗原和抗体及其制备方法和应用 | |
CN102967709B (zh) | 检测玉米赤霉烯酮药物的酶联免疫试剂盒及其应用 | |
CN102323416A (zh) | 一种快速检测样品中金黄色葡萄球菌的试剂盒及检测方法 | |
CN104849251A (zh) | 一种快速检测地沟油的时间分辨荧光免疫方法及试剂盒 | |
CN103235126B (zh) | 定量检测食品或自来水中大肠杆菌标志物β-碱性磷酸酯酶的双抗体夹心法 | |
CN102507934B (zh) | 产酸克雷伯氏菌的时间分辨荧光免疫检测法 | |
CN107523554A (zh) | 一株分泌马杜霉素特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞株ss0708及其应用 | |
CN103134937B (zh) | 一种检测牛奶中β-内酰胺酶的双抗体夹心法 | |
CN103698521B (zh) | 一种检测食品中大肠杆菌胞内β-葡萄糖苷酸酶的双抗体夹心法 | |
CN108359642B (zh) | 一种虾原肌球蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞及其应用 | |
CN104059142B (zh) | 一种用于制备沙门氏菌交叉型抗体的免疫原的合成方法 | |
CN104316688A (zh) | 一种检测水稻细菌性条斑病菌的双抗体夹心酶联免疫法 | |
CN104655842B (zh) | 一种盐单胞菌菌株的间接酶联免疫定量检测方法 | |
CN104316687B (zh) | 一种检测丁香假单胞杆菌斑点致病变种病菌的双抗体夹心酶联免疫法 | |
CN103760351B (zh) | 一种检测食品中金黄色葡萄球菌肠毒素d的双抗体夹心法 | |
CN104360069B (zh) | 一种检测丁香假单胞菌丁香致病变种的双抗体夹心酶联免疫法 | |
CN107177559B (zh) | 一株分泌潮霉素b特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞株zxl-1及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CP02 | Change in the address of a patent holder |
Address after: 214016 Jiangsu city of Wuxi Province District Liangxi No. 898 South Road 7 layer beam Creek area of food science and Technology Park Patentee after: Jiangnan University Address before: Lihu Avenue Binhu District 214122 Jiangsu city of Wuxi province Jiangnan University No. 1800 Patentee before: Jiangnan University |
|
CP02 | Change in the address of a patent holder |