CN103088083A - 抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法 - Google Patents

抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法 Download PDF

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CN103088083A CN2013100529400A CN201310052940A CN103088083A CN 103088083 A CN103088083 A CN 103088083A CN 2013100529400 A CN2013100529400 A CN 2013100529400A CN 201310052940 A CN201310052940 A CN 201310052940A CN 103088083 A CN103088083 A CN 103088083A
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王金兰
张树军
梁晓燕
杨湛
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Qiqihar University
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Abstract

抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法。本发明涉及一系列对HepG2肝癌细胞、P-388小鼠白血病细胞、A-549人肺腺癌细胞等癌细胞的生长以及对细胞粘附分子ICAM-1的产生等表现一定抑制活性的愈创木烷型倍半萜内酯类化合物(Ⅰ、Ⅱ)的制备方法。

Description

抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法
技术领域
本发明涉及一系列愈创木烷型倍半萜内酯类化合物的制备方法。药理研究表明它们对HepG2肝癌细胞、P-388小鼠白血病细胞、A-549人肺腺癌细胞等癌细胞的生长以及对细胞粘附分子ICAM-1的产生等表现一定抑制活性,为药物研发提供了理论依据,具有很好的应用前景和较大的开发价值。 
背景技术
倍半萜内酯广泛存在于菊科、爵床科、伞形科、木兰科及防己科等多种药用植物中,表现为消炎、抗肿瘤等多种生物活性,是许多中草药药效成分的重要组成部分,按其结构特点可分为愈创木内酯、伪愈创木内酯、吉马内酯、榄烷内酯、桉叶内酯、艾里莫芬烷型内酯等,研究表明,愈创木烷型较其它骨架结构的倍半萜具有更强的细胞毒活性,对开发新型抗炎、抗肿瘤药物具有重要意义。 
中华苦荬菜 Ixeris chinensis Nakai 和苦碟子 Ixerisa sonchifolia (Bge.) Hance 都是菊科苦荬菜属1~2年生野生要用植物,具有分布广,资源丰富等特点,其全草呈苦味,具有清热、解毒、消炎、凉血、止痛、消肿、抗肿瘤等功效,其根、茎、叶、花、果均可入药,用于治疗无名肿痛、腹腔脓肿、痢疾、阑尾炎、肺炎、关节炎、癌症等多种疾病。两种植物中都含有大量的愈创木烷型倍半萜内酯葡萄糖苷类化合物,如中华苦荬菜中含量最多的倍半萜内酯糖苷是Ixerin D,苦碟子中含量最多的倍半萜内酯糖苷是Sonchifoliasolide A,这些化合物体外生物活性试验结果抗肿瘤、以及消炎等活性都不强,但其脱糖后的苷元及其许多衍生物则对HepG2肝癌细胞、P-388小鼠白血病细胞、A-549人肺腺癌细胞等癌细胞的生长以及对细胞粘附分子ICAM-1的产生等表现较好的抑制活性。 
发明内容
本发明的目的是提供一系列具有抗炎、抗肿瘤活性的愈创木烷型倍半萜内酯类化合物的制备方法。 
本发明提供了式 ( 
Figure 2013100529400100002DEST_PATH_IMAGE001
) 和 (
Figure 194108DEST_PATH_IMAGE002
) 的愈创木烷型倍半萜内酯类化合物及其衍生物的制备方法。同时,本发明还包括制备过程中的起始原料及任何中间体的制备方法,例如下述起始原料式 () 和 (
Figure 593865DEST_PATH_IMAGE004
) 的制备方法。起始原料式 (
Figure 424287DEST_PATH_IMAGE003
) 的制备方法:式(Ⅰ)化合物可由式(
Figure 884087DEST_PATH_IMAGE003
)化合物制备,其中R1独立或混合选自以下取代基团:H、C2-C6的脂肪酰基、C7-C12的芳酰基;R2 如权利要求 1 中的定义。 
  
Figure 2013100529400100002DEST_PATH_IMAGE005
起始原料式 (
Figure 734713DEST_PATH_IMAGE004
) 的制备方法:式(
Figure 751210DEST_PATH_IMAGE002
)化合物可由式()化合物制备。
Figure 332419DEST_PATH_IMAGE006
根据本发明,起始原料式 (
Figure 220741DEST_PATH_IMAGE003
) 化合物的制备是使用有机溶剂、水或有机溶剂与水的混合溶剂对新鲜或干燥中华苦荬菜 Ixeris chinensis (Thunb.) Nakai 根部、地上部分或全草进行提取,制得提取物,将该提取物通过硅胶柱层析,用有机溶剂或有机溶剂与水的混合溶剂洗脱分离得到,或使用HPLC分离得到。起始原料式 (
Figure 290197DEST_PATH_IMAGE004
) 化合物的制备是使用有机溶剂、水或有机溶剂与水的混合溶剂对新鲜或干燥苦碟子 Ixeris sonchifolia Hance 根部、地上部分或全草进行提取,制得提取物,将该提取物通过硅胶柱层析,用有机溶剂或有机溶剂与水的混合溶剂洗脱分离得到,或使用HPLC分离得到。可使用的有机溶剂包括醇类如甲醇、乙醇、丁醇等,卤代烃类如二氯甲烷、氯仿等,醚类如乙醚,酮类如丙酮,酯类如乙酸乙酯,烃类如石油醚、正己烷等。 
具体实施方式
下列制备例和实施例用来更详细地说明本发明,但并不意味本发明仅限于此。 
本发明的 1H NMR、13C NMR 在 Bruker AM-400 核磁共振波谱仪(Bruker 公司)上完成,1H NMR的观测频率为 400.13 MHz,13C NMR 的观测频率为 100.63 MHz。 
质谱测定在 MAT-95 型质谱仪(ThermO Finnigan 公司)上完成,电离方式 EI 70 V,源温 200°C,LR 分辨率 1000。 
高压液相色谱仪:HITACHI L-7100;检测器:HITACHI L-3350 RI;色谱柱:GL SCIRNCES Inc. Inertsil PREP-ODS 10 × 250 mm 不锈钢反相半制备色谱柱,PREP-SIL 10 × 250 mm 不锈钢正相半制备色谱柱。 
室温指 20-25OC。 
制备例1  水煮新鲜中华苦荬菜制备提取物及 Ixerin D 和 Ixerin D-6′-对羟基苯乙酸酯的分离提纯 
Figure DEST_PATH_IMAGE007
将于 2009 年 9 月 19 日采集的新鲜中华苦荬菜 2.6 kg,加入 6.0 L 水,煮沸后保温 1 h,冷却后过滤,重复 3 次;合并提取液,浓缩滤液至约 600 mL 后,每次用乙酸乙酯 600 mL 萃取,重复4次,合并乙酸乙酯层,浓缩等得乙酸乙酯萃取物 3.8 g;乙酸乙酯萃取后的水层每次用正丁醇 600 mL 萃取,重复4次,合并正丁醇层,浓缩得正丁醇萃取物 7.8 g。
将正丁醇层萃取物 (KCB, 7.8 g) 用甲醇溶解,拌入 15.0 g 硅胶,于研钵中小心研磨至溶剂完全挥发,使样品均匀吸附于硅胶颗粒表面。选直径5.6 cm的洁净玻璃层析柱,下端用脱脂棉塞实并用乙酸乙酯: 甲醇 = 96 : 4 润湿。称取 135.0 g 硅胶,用洗脱剂调成糊状至无气泡,缓慢倒入玻璃柱中,轻敲玻璃柱使硅胶充分沉降。待硅胶充分沉降后,在硅胶平面上方留出大约与拌样所用硅胶体积相当的溶剂,缓缓洒入吸附了样品的硅胶,依次用乙酸乙酯 : 甲醇 = 96 : 4 (3.0 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 8 : 2 (1.7 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 4 : 6 (3.0 L) 进行洗脱,以 150 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得到 7 个部分 (KCB-1 ~ KCB-7)。 
第 3 部分 (KCB-3, 682.4 mg) 用 1.4 g 硅胶拌样,择直径3.8 cm 的洁净玻璃层析柱,装入 106.0 g 硅胶进行柱层析,依次用乙酸乙酯 (2.0 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 9 : 1 (500 mL)、甲醇 (200 mL) 进行洗脱。以 100 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得到 5 个部分 (KCB-3-1 ~ KCB-3-5)。KCB-3-3 (208.4 mg) 取 61.9 mg 用 HPLC 精制 (GL SCIRNCES Inc. Inertsil PREP-ODS 10 × 250 mm 不锈钢半制备色谱柱,流动相 甲醇 : 水 = 25:75) 分离,得到 Ixerin D-6′-对羟基苯乙酸酯 (24.2 mg, tR = 38.53 min)。 
第 5 部分 (KCB-5, 1.2 g) 用 2.4 g 硅胶拌样,择直径4.3 cm 的洁净玻璃层析柱,装入 156.0 g 硅胶进行柱层析,依次用乙酸乙酯 : 甲醇 = 96 : 7 (3.0 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 8 : 2 (1.0 L) 进行洗脱,以 50 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得化合物 Ixerin D (131.1 mg)。 
制备例2  乙醇提取干燥中华苦荬菜制备提取物及 Ixerin D 的分离提纯 
将 2009 年 9 月 29 日采集的中华苦荬菜,去杂,晾干后得干燥中华苦荬菜 2.7 kg,每次用 9.0 L无水乙醇浸泡 3 天后过滤,重复 4 次,合并浸出液并减压浓缩至 600 mL 左右,加入 1.0 L 水混悬,然后依次用正己烷 (5 × 600 mL)、乙酸乙酯 (5 × 600 mL)、正丁醇 (5 × 400 mL) 萃取,减压浓缩各萃取液,得到正己烷萃取物 (KCCH) 68.3 g,乙酸乙酯萃取物 (KCCE) 21.1 g,正丁醇萃取物 (KCCB) 10.3 g。
将正丁醇萃取物 10.3 g 用硅胶柱色谱分离 依次用乙酸乙酯 : 甲醇 = 9 : 1 (3.2 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 7 : 3 (1.9 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 5:5 (1.5 L) 进行洗脱。以 200 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得到 6 个部分 (KCCB-1 ~ KCCB-6)。 
KCCB-4 (3.8 g) 用硅胶柱色谱分离,依次用乙酸乙酯 (2.2 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 7 : 3 (3.3 L)、甲醇 (1.0 L) 进行洗脱。以 100 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得到 5 个部分 (KCCB-4-1 ~ KCCB-4-5),其中第 4 部分用乙酸乙酯重结晶得 Ixerin D (616.1 mg)。 
将乙酸乙酯萃取物 (KCCE) 21.1 g 用硅胶柱色谱分离,依次用乙酸乙酯 (3.5 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 9 : 1 (3.7 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 6 : 4 (2.9 L)、乙酸乙酯 : 甲醇 = 3 : 7 (1.3 L) 进行洗脱。以 200 mL 为单位接收流出液,根据 TLC 跟踪分析合并相同流分,得到 6 个部分 (KCCE-1 ~ KCCE-6),其中第 4 部分用乙酸乙酯重结晶得 Ixerin D (379.1 mg)。 
制备例3  从干燥的苦碟子地上部分中分离制备 Sonchifoliasolid A 
Figure 707927DEST_PATH_IMAGE008
干燥的苦碟子地上部分 3.4 kg 每次用 22.0 L 95% 乙醇浸泡 3 天后过滤,重复 3 次。合并乙醇浸出液浓缩至约 500 mL,用水分散后,依次用石油醚萃取 4 次 (每次 300 mL),乙酸乙酯萃取 4 次 (每次 300 mL),正丁醇萃取 3 次 (每次 300 mL)。分别合并各层萃取液,浓缩得石油醚萃取物 108.0 g,乙酸乙酯萃取物 64.0 g,正丁醇萃取物 13.5 g。
取苦碟子地上部分乙酸乙酯提取物 (20.0 g),用硅胶柱色谱分离,依次用石油醚 : 乙酸乙酯 = 6 : 4 3300 mL,100%乙酸乙酯 2500 mL 和乙酸乙酯 : 甲醇 = 7 : 3 3000 mL,100%甲醇 1500 mL 进行洗脱,用TLC分析,合并成分相同部分,得到11个部分 (F1~F11)。F8 (3.6 g) 用甲醇重结晶得到化合物 Sonchifoliasolid A (945.1 mg)。 
取苦碟子地上部分正丁醇提取物 (13.5 g) 用硅胶柱色谱分离,依次用氯仿 : 甲醇 = 8 : 2 1300 mL,氯仿 : 甲醇 = 1/1 800 mL,100%甲醇 500 mL 进行洗脱,用TLC分析,合并成分相同部分,得到4个部分 (F1~F44)。F2 (2.4 g) 用甲醇重结晶得到 Sonchifoliasolid A (524.5 mg)。 
制备例4  从干燥的苦碟子根部中分离制备 Sonchifoliasolid A 
取干燥的苦碟子根 500 g,每次用 5.0 L 无水乙醇浸泡 4 天后过滤,重复3次,合并乙醇浸泡液浓缩至小体积 (约 300 mL),依次用正己烷 (3×300 mL)、氯仿 (4×300 mL) 和正丁醇 (4×300 mL) 萃取,分别合并不同溶剂萃取物并浓缩,得深棕色油状正己烷萃取物 11.8 g、黄色固态氯仿萃取物 1.5 g、正丁醇萃取物 3.5 g。将该正丁醇萃取物 3.5 g 用硅胶柱色谱分离,依次用乙酸乙酯 : 甲醇 = 95 : 5 (2.5 L) 洗脱,用TLC分析,合并成分相同部分,得到 7 个部分,然后将第 6 个部分用甲醇进行重结晶得到 Sonchifoliasolid A (1.32 g)。
实施例1  3β,10α-二羟基-4(15),11(13)-愈创木二烯-12,6-内酯的制备 
将 Ixerin D (666.1 mg,1.56 mmol) 加入到 150 mL 反应瓶中,用 2.0 mL 无水 EtOH 溶解后依次加入 133.0 mL HOAc - NaOAc 缓冲溶液 (pH = 5)、10.0 mL β-葡聚糖酶,在 50 ℃ (水浴) 下搅拌 2 h 50 min 后停止反应;将反应液转移至 500 mL 分液漏斗中,加入 50 mL 水,用乙酸乙酯萃取 (3 × 200 mL);将乙酸乙酯层浓缩至约 100 mL 后依次用饱和 NaHCO3 水溶液 (2 × 100 mL)、饱和食盐水 (2 × 100 mL) 洗涤,然后用无水 Na2SO4 干燥、过滤、浓缩后得粗生成物。
将上述的粗生成物用硅胶柱色谱 (洗脱剂: EtOAc) 分离,得到目标化合物无色针状结晶 (395.2 mg),收率:96 %。mp 156.0 ~ 158.5℃; 1H NMR (400 MHz, DMSO-d6)  5.99 (1H, d, J = 3.4 Hz), 5.57 (1H, d, J = 3.4 Hz), 5.05 (1H, br s), (1H, br s), 4.30 (1H, t, J = 10.0 Hz), 4.27 (1H, t, J = 8.0 Hz), 3.00 (1H, m), 2.71 (1H, t, J = 10.0 Hz), 2.17 (2H, m), 2.05 (1H, m), 1.78 (1H, m), 1.53 (2H, m), 1.35 (1H, m), 1.00 (3H, s); 13C  170.1, 155.3, 142.2, 118.7, 108.8, 82.8, 73.6, 72.7, 
NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ 49.3, 44.8, 37.8, 36.9, 28.8, 25.2; EI-MS m/z 264.
实施例2  3β,10α-二羟基-4(15),11(13)-愈创木二烯-12,6-内酯乙酰化物的制备
Figure 775109DEST_PATH_IMAGE010
将 3β,10α-二羟基-4(15),11(13)-愈创木二烯-12,6-内酯 (12.0 mg, 0.045 mmol) 加入到 10 mL 反应瓶中,用 300 μL 无水吡啶溶解后依次加入乙酸酐 (270 μL, 2.9 mmol)、碳酸钾 (19.9 mg, 0.14 mmol),在室温下搅拌 4 h 15 min 后停止反应;将反应液转移至 50 mL 分液漏斗中,加入 5 mL 水,用乙酸乙酯萃取 (3 × 10 mL);乙酸乙酯层依次用饱和 NaHCO3 水溶液 (2 × 10 mL)、饱和食盐水 (2 × 10 mL) 洗涤,然后用无水 Na2SO4 干燥、过滤、浓缩后得粗生成物。
将上述的粗生成物用硅胶柱色谱 (洗脱剂:EtOAc) 分离,得到 3β,10α-二羟基-4(15),11(13)-愈创木二烯-12,6-内酯的乙酰化物 (13.7 mg),收率为 99 %。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 6.20 (1H, d, J = 3.6 Hz, H-13a), 5.48 (1H, d, J = 3.6 Hz, H-13b), 5.40 (1H, br s, H-15a), 5.30 (1H, br s, H-15b), 5.51 (1H, br t, J = 6.8 Hz, H-3), 4.15 (1H, t, J = 10.0 Hz, H-6) , 3.20 (1H, m, H-7), 2.85 (1H, br t, J = 8.4Hz, H-5), 2.42 (1H, m, H-1), 2.25 (2H, m, H-2), 2.08 (3H, m, CH3CO-), 1.90 (1H, m, H-8a), 1.70 (2H, m, H-9), 1.50 (1H, m, H-8b), 1.24 (H, s, H-14); EI-MS m/z 306. 
实施例3  Chinensiolides A 的制备
将 3β,10α-二羟基-4(15),11(13)-愈创木二烯-12,6-内酯 (23.2 mg, 0.088 mmol) 加入到 10 mL 反应瓶中,用 3.5 mL 二氧六环溶解后加入 PCC / SiO2 载体 678.2 mg,在室温下搅拌 1.0 h 后加入适量饱和 NH4Cl 水溶液终止反应;过滤,用乙酸乙酯洗涤滤饼,合并滤液、洗液,加入 20 mL 水,用乙酸乙酯萃取 (3 × 50 mL);乙酸乙酯层依次用饱和饱和 NH4Cl 水溶液 (2 × 50 mL)、饱和食盐水 (2 × 50 mL) 洗涤,然后用无水 Na2SO4 干燥;过滤、浓缩后得粗生成物。将上述的粗生成物用硅胶柱色谱 (洗脱剂:EtOAc) 分离,得到Chinensiolides A (17.4 mg),收率为 76 %。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 6.28 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13a), 5.55 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13b), 6.18 (1H, d, J = 2.1 Hz, H-15a), 5.23 (1H, d, J = 2.1 Hz, H-15b), 4.12 (1H, br t, J = 9.7 Hz, H-6), 3.32 (1H, br t, J = 8.9 Hz, H-5), 3.12 (1H, m, H-7), 2.76 (1H, dd, J = 18.4, 5.1Hz, H-2a), 2.47 (1H, dd, J = 18.4, 8.7 Hz, H-2a), 2.60 (1H, m, H-1), 2.47 (1H, dd, J = 17.6, 8.4Hz, H-1), 2.28 (1H, m, H-8a), 2.00 (2H, m, H-9), 1.79 (1H, m, H-8b), 1.10 (H, s, H-14). EI-MS m/z 262.
实施例4  9β-羟基-10β-H-11(13),3-愈创木二烯-12,6-内酯-2-酮的制备
Figure 337678DEST_PATH_IMAGE012
将 Sonchifoliasolid A (500 mg, 1.178 mmol) 溶于 2 mL 甲醇中、将 60 mL HOAc - AcONa 缓冲溶液 (pH = 5)、4 mL β-葡聚糖酶依次加入到 100 mL 反应瓶中,加热 (50 ℃) 搅拌 5 h。反应液冷却至室温,用 EtOAc 萃取 (5 × 60 mL),有机相经无水 Na2SO4 干燥后,过滤浓缩,用硅胶柱层析分离 (乙酸乙酯100%) 进行分离得到目标化合物 (291.1 mg), 收率:94.1 %。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 6.28 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13), 6.10 (1H, s, H-3), 5.58 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13), 4.34 (1H, t, J = 9.6 Hz, H-6), 4.14 (1H, m, H-9), 3.20 (1H, m, H-1), 3.18 (1H, dd, J = 9.6, 2.6 Hz, H-5), 2.64 (1H, m, H-10), 2.32 (3H, s, H-15), 2.24 (2H, m, H-7, 8a), 1.75 (1H, ddd, J = 14.5, 11.7, 2.5 Hz, H-8b), 0.73 (3H, d, J = 7.6 Hz, H-14). EI-MS m/z 262.
实施例5  9β-羟基-10β-H-11(13),3-愈创木二烯-12,6-内酯-2-酮乙酸酯的合成
Figure DEST_PATH_IMAGE013
将 9β-羟基-10β-H-11(13),3-愈创木二烯-12,6-内酯-2-酮 (18 mg, 0.0687 mmol) 和 0.3 mL 吡啶加入到 5 mL 反应瓶中,搅拌溶解后,再向反应瓶中加入 0.2 mL Ac2O 和碳酸钾 (5.0 mg, 0.0362 mmol),室温下搅拌反应 1 h 后,向反应液中加入 4 mL 水,用乙酸乙酯 (3 × 5 mL) 萃取,萃取后的有机相用饱和碳酸氢钠溶液 (2 × 5 mL) 洗涤,再用饱和食盐水洗涤 (2 × 1 mL),经无水 Na2SO4 干燥后,过滤浓缩,用硅胶柱层析分离,用正己烷 : 乙酸乙酯 = 65 : 35 洗脱,得到目标化合物 (19.5 mg),收率:93.7 %。1H NMR (400 MHz, CDCl3): δ 6.28 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13a), 6.10 (1H, s, H-3), 5.58 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13b), 4.34 (1H, dd, J = 9.6, 9.6 Hz, H-6), 4.14 (1H, m, H-9), 3.20 (1H, m, H-1), 3.18 (1H, dd, J = 2.6, 9.6 Hz, H-5), 2.64 (1H, m, H-10), 2.32 (3H, s, H-16), 2.24 (1H, m, H-7), 2.24 (1H, m, H-8b), 2.12 (3H, s, H-15), 1.75 (1H, ddd, J = 2.5, 11.7, 14.5 Hz, H-8a), 0.73 (3H, d, J = 7.6 Hz, H-14); 13C NMR (100 MHz, CDCl3): δ 208.7 (C-2), 169.8 (C-12), 169.4 (C-4), 169.3 (C-14), 138.6 (C-11), 132.7 (C-3), 120.5 (C-13), 82.0 (C-6), 70.8 (C-9), 53.1 (C-5), 46.4 (C-1), 41.5 (C-7), 40.4 (C-10), 32.1 (C-8), 21.0 (C-15), 19.3 (C-17), 14.5 (C-16). EI-MS m/z 304.
实施例6  9β-羟基-10β-H-11(13),3-愈创木二烯-12,6-内酯-2-酮对羟基苯乙酸酯的合成
将 9β-羟基-10β-H-11(13),3-愈创木二烯-12,6-内酯-2-酮 (10 mg, 0.0382 mmol) 溶于 1.9 mL 吡啶中,加入 5.6 mg DMAP 和 7.6 mg 对羟基苯乙酸甲酯,50℃下搅拌 5 小时后停止反应,向反应液中加入 10 mL 饱和氯化铵,用乙酸乙酯 (3 × 10 mL) 萃取,经无水 Na2SO4 干燥后,过滤浓缩,用硅胶柱层析分离 (正己烷 : 乙酸乙酯 = 5 : 5 ) 进行洗脱,得到目标化合物 (12.5 mg) 产率:80 %。1H NMR (CDCl3, 400 MHz): δ 7.11 (1H, d, J = 8.4 Hz, Ph-6), 7.11 (1H, d, J = 8.4 Hz, Ph-2), 6.78 (1H, d, J = 8.4 Hz, Ph-3), 6.78 (1H, d, J = 8.4, Ph-5), 6.25 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13a), 6.09 (1H, s, H-3), 5.46 (1H, d, J = 3.2 Hz, H-13b), 5.16 (1H, m, H-9), 4.31 (1H, dd, J = 9.6, 9.6 Hz, H-6), 3.58 (2H, s, H-2′), 3.09 (1H, m, H-7), 2.86 (1H, dd, J = 2.8, 9.6 Hz, H-5), 2.71 (1H, m, H-1), 2.68 (1H, m, H-10), 2.29 (3H, s, H-15), 2.22 (1H, m, H-8a), 1.72 (1H, ddd, J = 2.4, 12.0, 14.8 Hz, H-8b), 0.75 (3H, d, J = 7.6Hz, H-14); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 209.1 (C-2), 179.28 (C-4), 170.7 (C-1′), 169.5 (C-12), 155.5 (Ph-4), 137.8 (C-11), 132.6 (C-3), 130.2 (Ph-6), 130.2 (Ph-2), 125.2 (Ph-1), 121.0 (C-13), 115.7 (Ph-5), 115.7 (Ph-3), 81.6 (C-6), 72.8 (C-9), 53.0 (C-5), 46.9 (C-7), 41.1 (C-1), 41.0 (C-2′), 38.0 (C-10), 29.4 (C-8), 19.3 (C-15), 13.7 (C-14). EI-MS m/z 396。

Claims (4)

1. 抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法,其特征在于,结构如式 (                                               
Figure 2013100529400100001DEST_PATH_IMAGE002
) 和 () 的愈创木烷型倍半萜内酯类化合物及其衍生物的制备方法,
其中,
R1独立选自以下取代基团:O、α-H, β-OC1-C6烷基、α-H, β-OC3-C8环烷基、α-H, β-OC3-C6链烯基、α-H, β-OC2-C6的脂肪酰基、α-H, β-OC7-C12的芳酰基;
R2独立选自以下取代基团:CH2、α-CH3, β-H、α-H, β-CH3;
R3独立选自以下取代基团:O、α-H, β-OC1-C6烷基、β-OC3-C8环烷基、β-OC3-C6链烯基、β-OC2-C6的脂肪酰基、β-OC7-C12的芳酰基。
2. 根据权利要求1所述的 (
Figure 298552DEST_PATH_IMAGE002
) 式愈创木烷型倍半萜内酯类化合物及其衍生物的制备方法,其特征在于其起始原料为:
其中,R1独立或混合选自以下取代基团:H、C2-C6的脂肪酰基、C7-C12的芳酰基;R如权利要求1中的定义。
3. 根据权利要求1所述的 (
Figure 536636DEST_PATH_IMAGE004
) 式愈创木烷型倍半萜内酯类化合物及其衍生物的制备方法,其特征在于其起始原料为。
Figure 2013100529400100001DEST_PATH_IMAGE010
4. 根据权利要求1所述的愈创木烷型倍半萜内酯类化合物的制备方法,其特征在于糖苷的脱糖反应使用β-葡聚糖酶,氧化剂包括CrO3、MnO2;酰化试剂包括酸酐、酰氯及羧酸酯;烷基化试剂包括碘甲烷、溴乙烷或硫酸二甲酯和硫酸二乙酯;反应溶剂为无水吡啶或二氯甲烷;催化剂包括吡啶、K2CO3、三乙胺及4-(N,N-二甲胺基)吡啶。
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