CN102168149A - 用于检测eb病毒的引物、试剂盒及方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种用于检测EB病毒的引物、试剂盒及方法。其中该引物的上游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:1,下游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:2。本发明还提供了包括该引物的用于检测EB病毒的组合物、工具、试剂盒和方法。它们可以在基因水平上进行迅速的检测,灵敏度高和特异性号,具有节约时间、技术成熟及检测结果稳定的优点。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域。具体地,本发明涉及用于检测爱泼斯坦-巴尔病毒(Epstein-Barr virus,EBV,在此简称EB病毒)的引物、试剂盒及方法。
背景技术
EB病毒(Epstein-Barr virus,EBV)属于γ疱疹病毒亚科的成员之一,是人类的一种特异性嗜淋巴细胞性疱疹病毒,一直被认为是人类某些严重疾病以及肿瘤的致病因子,与许多疾病的发生都有着密切的关系,威胁着人类的健康。EBV主要通过人类唾液传播,因此呼吸道是EBV潜伏的最大场所。调查结果显示,世界人口的90%以上都存在EBV的潜伏感染,或成为EBV携带者。更重要的是EBV感染与越来越多的人类恶性肿瘤有关,应用原位杂交证明了携带高拷贝EBV除了能转化淋巴细胞外,也能赋予肿瘤细胞一定的生长优势,使其成为优势细胞群,呈现转化特征。EBV引发了全球癌症的1%,并占所有感染性癌症的5.6%。根据国际癌症研究署对致癌因子的分类标准,EBV被列在第一组致癌因子中。
随着近几年癌症在全球的急剧蔓延,EBV感染的早期检测和预防成为当务之急。目前ELISA检测EBV各项抗体是临床诊断EBV感染的重要指标之一,但它实际上检测的是人体对EBV感染的免疫反应状态,无法检测病毒自身,也就无法准确灵敏地反映EBV感染的情况。由于鼻咽癌外周血循环的游离EBV-DNA的拷贝数随着全身化疗周期的进行而呈现动态变化,所以检测鼻咽癌患者EBV-DNA的表达水平对判断病灶残留、复发、转移、判断治疗的敏感性、综合治疗方案的及时更改、确认以及判断疗效、预后均具有重要的指导意义,EBV目前已经成为鼻咽癌诊治中重要的血清分子标志物,可以作为诊断和治疗中的一项参考依据。
目前国外已经上市的检测EBV-DNA的试剂盒有几种,检测的方法主要是荧光免疫杂交(HIGH),国内检测EBV主要采用ELISA方法,未见有批准上市检测EBV-DNA的试剂盒。基于EBV感染情况如此严重,开发一种简单、易行、成本较低的检测方法就显得尤为重要。
发明内容
因此,本发明的一个目的在于提供一种用于检测EB病毒的引物或其组合物。
本发明的另一个目的在于提供上述引物或其组合物在制备用于检测EB病毒的工具中的用途。
本发明的另一个目的在于提供一种用于检测EB病毒的试剂盒。
本发明的又一个目的在于提供一种检测EB病毒的方法。
本发明的目的是采用以下技术方案来实现的。
一方面,本发明提供一种用于检测EB病毒的引物,该引物的上游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:1,下游引物的核苷酸序列为SEQ ID NO:2。
本发明还提供了一种用于检测EB病毒的引物组合物,该引物组合物包括上述用于检测EB病毒的引物以及内参引物,该内参引物的上游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:3,下游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:4。
另一方面,本发明提供了上述引物或引物组合物在制备用于检测EB病毒的工具中的用途。
另一方面,本发明提供了一种用于检测EB病毒的试剂盒,该试剂盒包括上述用于检测EB病毒的引物或引物组合物。该试剂盒还可以包括细胞裂解液、核酸结合液、核酸漂洗液和核酸洗涤液和PCR反应液。
又一方面,本发明提供了一种检测EB病毒的方法,该方法包括以下步骤:1)提取样本DNA;2)使用上述引物、引物组合物或试剂盒对步骤1)得到的DNA进行PCR扩增;3)检测步骤2)得到的扩增产物。步骤1)中的样本优选为人的血液或体液。步骤3)中的检测方法优选为微流体芯片检测法。
在本发明的一个优选实施方案中,通过对患者血液中的DNA进行EBV检测,从而判断患者是否感染了EBV,具体包括以下步骤:
1)提取人临床样本的DNA。
2)将EBV特异性引物和人DNA保守序列特有基因的特异性引物混合,对被测样本的DNA进行多重PCR扩增,被扩增的目标基因片段大小各不相同。
3)扩增产物通过微流体芯片进行检测。
4)通过各检测峰的位置确定检测到的片段的大小,从而判断被检测到的基因,鉴别临床样本感染的病毒类别。
5)结果判断:a)未出现任何特异性峰,说明临床样本的DNA没有提取出来,检测无效;b)只出现DNA内参特异性峰,说明没有EBV感染;c)出现DNA内参和EBV特异性峰,说明有EBV感染。
本发明所提供的新型引物、引物组合物、试剂盒及方法,能够对EBV进行DNA水平上的检查,灵敏度更高,效率也相应提高。此外,它们操作简单,成本较低,适宜于推广应用。具体地,本发明具有以下有益效果:
首先,本发明提供了一种用于检测EB病毒的引物,其可特异性的扩增出EBV的保守序列BamH1-W片段(genbank登录号为M15973.1)。该BamH1-W片段在一个EB病毒拷贝中约重复10~11次,在不同的EB病毒株之间高度保守,选择其作为扩增的目的基因可提高检测的敏感性。因此,本发明人在该BamH1-W中选取了一段基因序列并设计了一对特异性引物,即SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列。
其次,本发明提供了一种用于检测EB病毒的引物组合物,其为EBV的保守序列BamH1-W片段的特异性引物和人DNA保守序列β球蛋白(β-globin)特有基因B297(NCBI查询号NC_000007.13)的特异性引物的组合。由于人体细胞中都含有B297基因,因此引入该基因可以确定模板的提取质量,避免扩增结果的假阴性。实验表明:通过PCR反应,本发明设计的内参引物较之其它根据人β球蛋白(β-globin)基因设计的引物能够更快速有效地识别人体DNA,并且扩增出的目的基因片段长度为297bp,能够很好的区别于EBV的片段长度,有利于后续的检测。
相应地,本发明提供了用于检测EB病毒的工具、试剂盒和方法,其中均采用了EBV保守序列BamH1-W片段的特异性引物,或者EBV保守序列BamH1-W片段的特异性引物和人DNA保守序列特有基因B297的特异性引物的组合,是一种具有较好灵敏度和特异性的检测EB病毒的工具或方法。
本发明可以在基因水平上进行迅速判断,具有较好的灵敏度。试剂盒能够检测出EB病毒的最低拷贝数为6×103。本发明能够对患者的临床样本例如血液、体液等进行检测,不需要对样本进行培养后再对病毒株进行检测,节约了时间。同时,微流体芯片检测法比传统的DNA电泳检测法更简单、快捷、直观,为临床用药提供了准确、及时的指导。本发明所提供的技术成熟,虽然其检测结果的灵敏度和准确性与传统的凝胶法相同,但是该检测过程更快捷,检测结果更容易判断,将生物芯片技术应用于EB病毒检测也是新的发展趋势。
附图说明
以下,结合附图来详细说明本发明的实施方案,其中:
图1为本发明实施例2中单独使用B297引物扩增DNA样品的电泳结果图;
图2为本发明实施例2中单独使用B658引物扩增DNA样品的电泳结果图;
图3为本发明实施例2中使用B297引物和EBV引物扩增临床样本(含EB)的电泳结果图。
图4为本发明实施例2中使用B658引物和EBV引物扩增临床样本(含EB)的电泳结果图。
图5为本发明实施例3中未感染EBV的DNA样品的电泳结果图。
图6为本发明实施例3中感染EBV的DNA样品的电泳结果图。
图7为本发明实施例4中未感染EBV的DNA样品的微流体芯片检测结果图。
图8为本发明实施例4中感染EBV的DNA样品的微流体芯片检测结果图。
图9A为本发明实施例4中对DNA样品的B297基因测序后的比对结果。
图9B为本发明实施例4中对DNA样品的EBV基因测序后的比对结果。
图10A~图10F为本发明提供的检测试剂盒灵敏度的微流体芯片检测结果图。
具体实施方式
以下参照具体的实施例来说明本发明。本领域技术人员能够理解,这些实施例仅用于说明本发明,其不以任何方式限制本发明的范围。
以下实施例中所使用的技术,除非特别说明,均为本领域的技术人员已知的常规技术;所使用的仪器、设备、试剂等,除非是本说明书特别说明,均为本领域的研究和技术人员可以通过公共途径获得的。
实施例1:DNA样品的制备
本实施例采用人体血液样本制备本发明检测方法所使用的DNA样品,具体详述如下。
1、提取试剂:
A液:细胞裂解液,15ml/瓶,每次用200μl。
成份 终浓度
Tris-HCl(pH8.0) 0.01mol/l
NaCl 0.1mol/l
EDTA(pH8.0) 0.01mol/l
SDS 2%(g/ml)
B液:核酸结合液,25ml/瓶,每次用400μl。
成份 终浓度
GuSCN 5mol/l
Tris-HCl(pH6.4) 0.05mol/l
EDTA(pH8.0) 0.02mol/l
TrtionX-100 2.5%(g/ml)
C液:核酸漂洗液,20ml/瓶,每次用300μl。
成份 含量
GuSCN 5mol/l
Tris-HCl(pH6.4) 0.05mol/l
D:核酸洗脱液,5ml/瓶,每次用50μl。
成份 终浓度
Tris-HCl(pH8.0) 0.01mol/l
NaCl 0.1mol/l
EDTA(pH8.0) 0.01mol/l
E:20mg/ml蛋白酶K,1.2ml/管,每次使用20μl。
2、提取方法:
1)取样:将加入EDTA抗凝剂的血液样本解冻,混合均匀后取100μl于1.5ml的EP管内。
2)裂解:加入A液200μl和蛋白酶K 20μl,混匀后于56℃放置10分钟(每隔2分钟混匀一次,确保裂解充分)。
3)吸附:先在吸附柱中加入B液400μl,然后将裂解液缓慢的倾倒入吸附柱中。振荡混匀后放置2分钟,然后12000转/分钟离心2分钟。
4)漂洗:去废液,在吸附柱中加入C液300μl,12000转/分钟离心2分钟,去废液;再加入70%(V/V)的乙醇700μl,12000转/分钟离心2分钟去废液;最后再12000转/分钟离心2分钟,彻底去废液。
5)洗脱:换一个干净的1.5ml EP管,套住吸附柱,在吸附柱中央加入D液50μL,于56℃放置10分钟,12000转/分钟离心2分钟。流出液即为提取的DNA样品,可直接用于PCR反应。
实施例2:内参引物序列的确定
本实施例采用根据人DNA保守序列β球蛋白特有基因设计的两对DNA扩增引物扩增实施例1所制备的DNA样品,并用凝胶电泳检测这两对引物的扩增效果,以筛选出内参引物。
1、单引物PCR扩增
1)在200μL Eppendorf管内配制25μl反应体系如下,其中提取的DNA样品分别为10份不同的血样DNA:
成份 体积/μl
ddH2O 18.3
5U/μl Taq酶 0.2
Taq酶10×buffer 2.5
10μM内参上、下游引物 各0.5
2.5mM dNTP 2
提取的DNA样品 1
内参引物的具体序列如表1所示。
表1 PCR扩增内参引物序列
基因名称 | 片段长度 | 基因信息 | 引物信息方向5′→3′ |
B297 | 297bp | NC_000007.13 | 上游:TGACAAGGCCATGAGGCTGGTGTA(SEQ ID NO:3)下游:GAGTCCATCACGATGCCAGTGGTA(SEQ ID NO:4) |
B658 | 658bp | NC_000007.13 | 上游:CGCCCTTTCTCACTGGTTCTCTCT(SEQ ID NO:5)下游:CCTTAATGTCACGCACGATTTCCC(SEQ ID NO:6) |
2)混合引物PCR扩增
在200μL Eppendorf管内配制25μl反应体系如下,其中提取的DNA样品为经过PCR鉴定含有EB病毒的血液样本:
成份 体积/μl
ddH2O 17.0
5U/μl Taq酶 0.5
Taq酶10×buffer 2.5
10μM内参上、下游引物 各0.5
10μM EB上、下游引物 各0.5
2.5mM dNTP 2
提取的DNA样品 1
其中所述EB上、下游引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:1和SEQ IDNO:2所示。
3)PCR条件:
第一阶段:94℃,2分钟;
第二阶段:94℃,20秒;54℃,30秒;72℃,45秒;35个循环;
第三阶段:72℃,5分钟。
2、琼脂糖凝胶电泳
1)制胶(2%琼脂糖凝胶)
称取琼脂糖0.8g于三角瓶中,加入50ml电泳缓冲液TAE(购自上海生物工程技术服务有限公司,规格为50×TAE,稀释50倍使用),混匀后于微波炉上高火煮2分钟(TAE挥发约10ml)。取出后冷却到60℃以下,加入0.3μl核酸荧光染料Goldview(购自上海赛百盛基因技术有限公司,规格1ml/支),混匀后倒入两端封闭的胶板中,插入电泳齿梳。待彻底冷却后,去掉两端的封闭,拔掉齿梳,将胶板放入电泳槽中,倒入适量的TAE溶液,以刚好浸没胶板为宜。
2)点样
取以上得到的PCR产物5μl,加入1μl 6×上样缓冲液(含溴酚蓝染料,购自北京全式金生物技术有限公司,规格1ml/支),混匀后点入胶孔中。同时,点DNA marker(购自于北京金式全生物技术有限公司,产品代码MD101-01)2μl作为参照。
3)电泳
电泳条件:100V,100mA,25分钟。
4)拍照
电泳结束后,将胶板中的胶块取出,放在紫外仪下用透射光照射,同时用照相机拍照。对照DNA marker,看是否有相应的内参条带,其中B297引物扩增临床样本的电泳结果图如图1所示,而B658引物扩增临床样本的电泳结果图如图2所示,B297引物和EB引物扩增临床样本(含EB)的电泳结果图如图3所示,B658引物和EB引物扩增临床样本(含EB)的电泳结果图如图4所示。在图1和图2中,1、2、……、10分别为提取的10个不同血液样本DNA扩增结果;“-”为PCR扩增阴性对照。由图1和图2对比可知,B297引物能够扩增出10个样品的内参条带,而B658仅能扩增出4个样品的内参条带,说明单引物扩增临床样本时,B297引物扩增结果明显优于B658引物;通过图3和图4对比可知,B297引物和EB引物可以扩增出2条目的条带,而B658引物和EB混合引物只能扩增出EB目标条带,而无法扩增出内参条带。因此,本发明确定内参引物采用B297引物,对应于SEQ ID NO:3和SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列。
实施例3:采用引物混合物扩增DNA
本实施例采用本发明所提供的引物组合物扩增实施例1所提取的DNA样品,并采用凝胶电泳检测PCR产物的正确性。
1、混合引物PCR扩增
a)在200μL Eppendorf管内配制25μl反应体系:
成份 体积(μl)
ddH2O 10.3
2×buffer 12.5
引物组合物 1.2
提取的临床样本DNA 1
注:2×buffer中含有Tris-HCl(pH 8.4)40mM,MgCl2 20mM,KCl 50mM,(NH)2SO4 10mM,每个dNTP 0.2mM,Taq DNA多聚酶0.08U/μL,引物组合物含有:B297上、下游引物各0.2μM,EBV上、下游引物各0.4μM。各引物的具体序列如表2所示。
表2 PCR扩增的引物组合物的序列
基因名称 | 选取长度 | 基因信息 | 引物信息 |
EBV | 200bp | EBV BamH1-W片段 | F1:5’-TTCTGCTAAGCCCAACACTC-3’(SEQ ID NO:1)R1:5’-CTGAAGGTGAACCGCTTA-3’(SEQ ID NO:2) |
B297 | 297bp | NC_000007.13 | F2:5’-TGACAAGGCCATGAGGCTGGTGTA-3’(SEQ ID NO:3)R2:5’-GAGTCCATCACGATGCCAGTGGTA-3’(SEQ ID NO:4) |
b)PCR条件:
第一阶段:94℃,2分钟;
第二阶段:94℃,30s;60℃,30s;72℃,1分钟;32个循环;
第三阶段:72℃,5分钟。
2、琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物的正确性(采用的试剂来源同实施例2)
a)制胶(2%琼脂糖凝胶)
称取琼脂糖0.8g于三角瓶中,加入50ml电泳缓冲液TAE,混匀后于微波炉上高火煮2分钟(TAE挥发约10ml)。取出后冷却到60℃以下,加入0.3μl核酸染料Goldview,混匀后倒入两端封闭的胶板中,插入电泳齿梳。待彻底冷却后,去掉两端的封闭,拔掉齿梳,将胶板放入电泳槽中,倒入适量的TAE溶液,以刚好浸没胶板为宜。
b)点样
取以上得到的PCR产物6μl,加入1μl 6×上样缓冲液,混匀后点入胶孔中。同时,点DNA marker 5μl作为参照。
c)电泳
电泳条件:100V,100mA,25分钟。
d)拍照
电泳结束后,将胶板中的胶块取出,放在紫外仪下用透射光照射,同时用照相机拍照。对照标准品,看是否有相应的病毒条带,其中未感染EBV的DNA样品的电泳结果图如图5所示,感染EBV的DNA样品的电泳结果图如图6所示。在图5和图6中,1为DNA样品,2为DNA marker,3为未加入DNA样品的阴性对照。
实施例4:微流体芯片检测样本的方法
本实施例采用微流体芯片检测实施例3中所扩增出的DNA样品。微流体芯片检测样本具体包括以下操作步骤:
1)接通MS-CE-1型毛细管电泳仪(购自宁波美生医疗器材有限公司)电源,预热30分钟。
2)连接检测池与主机箱正面输出接口,在缓冲溶液瓶中加入新配制好的缓冲溶液(含有2%HPMC-50,80mM MES和40mM Tris),将电极和毛细管的两端浸在缓冲溶液中,保持毛细管两端出口在同一水平面上,且毛细管内必须充满缓冲溶液,关好仪器正门,确认仪器各部分连接正确后,按动高压启动按钮,如果发生异常应立即按动高压关断钮,检查并排除故障后,再重新加压。
3)电进样:用样品瓶更换样品支架上的缓冲溶液瓶,插入电极及毛细管,关好正门后施加所需的电压380伏,待达到预定时间30秒后断开高压,换上缓冲溶液瓶后即可开始实验。
4)流体压差进样:将样品瓶放在高度差进样部件上,根据需要调整进样高度,然后把毛细管的进样端插入样品池中,待达到预定时间后取出放入有缓冲溶液的进样支架中即可开始实验。
5)根据实验需要设定仪器工作参数:进样电压为380v,电泳电压为700v。
6)等待仪器各部分工作正常后,即可开始样品的分析工作,具体如下:将微流体芯片置于支架上,调节芯片位置,使检测光速通过距芯片进样点1cm处,运行进样及电泳程序,当DNA条带通过检测点时,其信息由数据采集系统记录下来,并转化为电信号。
7)实验结束后关闭电源,用蒸馏水冲洗毛细管30分钟,或将缓冲溶液保持在毛细管中即将毛细管置于压力清洗装置中。
按照上述方法检测实施例3中所扩增出的DNA样品,其中未感染EBV的样品的微流体芯片检测结果图如图7所示,感染EBV的样品的微流体芯片检测结果图如图8所示。委托Invitrogen上海分公司对图6中所示感染EBV的样品进行测序比对,结果如图9A和图9B所示,其中图9A为内参基因B297测序后的比对结果,图9B为感染EBV基因测序后的比对结果。通过比对可知,该临床样本确实感染了EB病毒。
实施例5:本发明的引物组合物的检测灵敏度
本实施例对本发明所提供引物组合物的灵敏度进行了检测。
参照实施例4中的方法对含有不同EB病毒拷贝数的质粒(构建方法如下:用EB引物扩增临床样本,得到目标片段后,纯化测序,测序结果显示:扩增序列为目标EB病毒片段,将该段序列连接至载体PGH,构成了含有该段EB序列的质粒。)进行稀释并扩增验证引物组合物的灵敏度,所得到的微流体芯片检测结果见图10A~图10F。由图可知,本发明提供的混合引物能够检测出EB病毒的最低拷贝数为6×103。
序列表
<110>宁波基内生物技术有限公司
<120>用于检测EB病毒的引物、试剂盒及方法
<130>DIC09110172
<160>6
<170>PatentIn version 3.3
<210>1
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>1
ttctgctaag cccaacactc 20
<210>2
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>2
ctgaaggtga accgctta 18
<210>3
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
tgacaaggcc atgaggctgg tgta 24
<210>4
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
gagtccatca cgatgccagt ggta 24
<210>5
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
cgccctttct cactggttct ctct 24
<210>6
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
ccttaatgtc acgcacgatt tccc 24
Claims (8)
1.一种用于检测EB病毒的引物,该引物的上游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:1,下游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:2。
2.一种用于检测EB病毒的引物组合物,该引物组合物包括根据权利要求1所述的引物和内参引物,该内参引物的上游引物核苷酸序列为SEQID NO:3,下游引物核苷酸序列为SEQ ID NO:4。
3.根据权利要求1所述的引物或权利要求2所述的引物组合物在制备用于检测EB病毒的工具中的用途。
4.一种用于检测EB病毒的试剂盒,该试剂盒包括根据权利要求1所述的引物或权利要求2所述的引物组合物。
5.根据权利要求4所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括细胞裂解液、核酸结合液、核酸漂洗液、核酸洗脱液和PCR反应液。
6.一种检测EB病毒的方法,该方法包括以下步骤:
1)提取样本DNA;
2)使用根据权利要求1所述的引物、权利要求2所述的引物组合物、或者权利要求3或4所述的试剂盒对步骤1)得到的DNA进行PCR扩增;
3)检测步骤2)得到的扩增产物。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于,其中所述步骤1)中的样本为人的血液或体液。
8.根据权利要求6或7所述的方法,其特征在于,其中所述步骤3)中的检测方法为微流体芯片检测法。
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103642945A (zh) * | 2013-12-30 | 2014-03-19 | 上海星耀医学科技发展有限公司 | 一种含内参照的高灵敏Epstein-Barr病毒荧光定量PCR试剂盒 |
CN111549179A (zh) * | 2020-05-06 | 2020-08-18 | 南京实践医学检验有限公司 | 一种检测血液eb病毒的方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101008039A (zh) * | 2007-01-15 | 2007-08-01 | 深圳市第二人民医院 | 基于环介导等温扩增技术的eb病毒基因快速诊断试剂盒 |
CN101545014A (zh) * | 2009-05-11 | 2009-09-30 | 北京海康基因芯片开发有限公司 | 一种检测传染病病原体的方法及试剂盒 |
-
2010
- 2010-02-26 CN CN2010101221944A patent/CN102168149A/zh active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101008039A (zh) * | 2007-01-15 | 2007-08-01 | 深圳市第二人民医院 | 基于环介导等温扩增技术的eb病毒基因快速诊断试剂盒 |
CN101545014A (zh) * | 2009-05-11 | 2009-09-30 | 北京海康基因芯片开发有限公司 | 一种检测传染病病原体的方法及试剂盒 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
《海南医学》 20080531 张倩 "荧光定量PCR对小儿EB病毒感染诊断价值探讨" 124-148 1-8 第19卷, 第5期 * |
《癌症》 20030630 李昂 "Epstein-Barr病毒A73基因在鼻咽癌组织中的表达及其细胞内定位研究" 第598页第1.1.3项 1-5 第22卷, 第6期 * |
张倩: ""荧光定量PCR对小儿EB病毒感染诊断价值探讨"", 《海南医学》 * |
李昂: ""Epstein-Barr病毒A73基因在鼻咽癌组织中的表达及其细胞内定位研究"", 《癌症》 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103642945A (zh) * | 2013-12-30 | 2014-03-19 | 上海星耀医学科技发展有限公司 | 一种含内参照的高灵敏Epstein-Barr病毒荧光定量PCR试剂盒 |
CN103642945B (zh) * | 2013-12-30 | 2019-01-08 | 上海星耀医学科技发展有限公司 | 一种含内参照的高灵敏Epstein-Barr病毒荧光定量PCR试剂盒 |
CN111549179A (zh) * | 2020-05-06 | 2020-08-18 | 南京实践医学检验有限公司 | 一种检测血液eb病毒的方法 |
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C06 | Publication | ||
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