CN102094081A

CN102094081A - 一种检测黄牛sh2b1基因单核苷酸多态性的方法

Info

Publication number: CN102094081A
Application number: CN 201010236903
Authority: CN
Inventors: 陈宏�; 杨明娟; 屈炼; 刘俊霞; 蓝贤勇; 雷初朝
Original assignee: Northwest A&F University
Current assignee: Northwest A&F University
Priority date: 2010-07-26
Filing date: 2010-07-26
Publication date: 2011-06-15
Anticipated expiration: 2030-07-26
Also published as: CN102094081B

Abstract

本发明公开了一种检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，以包含SH2B1基因的待测黄牛全基因组DNA为模板，以引物对P为引物，PCR扩增黄牛SH2B1基因；用限制性内切酶BglI消化PCR扩增产物之后，再对酶切后的扩增片段进行琼脂糖凝胶电泳；根据琼脂糖凝胶电泳结果鉴定黄牛SH2B1基因第2795位的单核苷酸多态性。由于SH2B1基因功能涉及体重、日增重、体斜长和胸围4个重要的生长性状，本发明提供的检测方法为SREBPlc基因的SNP与生长性状关系的建立奠定了基础，以便用于中国黄牛肉用生长性状的标记辅助选择，快速建立遗传资源优良的黄牛种群。

Description

一种检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法

技术领域

本发明属于分子遗传学领域，涉及基因单核苷酸多态性(SNP)的检测，特别涉及一种检测黄牛SH2B1基因第2795位单核苷酸多态性的方法。

背景技术

基因多态性是指不同物种或者同一物种内的不同个体间基因组序列的差异，这些差异是由于染色体中DNA等位基因中核苷酸改变引起，主要是包括碱基的替换、插入、缺失以及重复序列拷贝数的变化。

单核苷酸多态性(Single Nucleotide Polymorphism，SNP)是由美国麻省理工学院的人类基因组研究中心的学者Lander(1996)提出的一类遗传标记系统，就是指基因组DNA序列中由于单个核苷酸(A/T/C/G)的替换而引起的多态性。它的变异形式有：颠换、转换、插入和缺失等，主要由单个碱基的转换或者颠换所引起。具有转换型的碱基变异的SNPs约占2/3。

根据基因组中单核苷酸多态性产生的位置，可分为以下3类：基因编码区单核苷酸多态性(Coding-region SNPs，cSNPs)、基因周边单核苷酸多态性(Perigenic SNPs，pSNPs)以及基因间单核苷酸多态性(Intergenic SNPs，iSNPs)。

研究表明，位于编码区内的cSNP比较少，由于它在遗传性疾病研究中却具有重要意义，因此，编码区内的cSNP的研究更受关注。基因编码区内的cSNP又可分为2种：一种是编码区内的同义cSNP(Synonymous cSNP)，即SNP所致编码序列的改变并不会影响其所翻译的蛋白质中氨基酸序列的改变；另一种是编码区内的非同义cSNP(Non-Synonymous cSNP)，即碱基序列的改变将导致编码氨基酸的改变，从而导致蛋白质中氨基酸序列的改变，可能最终影响到蛋白质的功能。

分子育种，即分子标记辅助选择育种(Molecular Mark-Assist Selection，MAS)，该技术是借助DNA分子标记对遗传资源或育种材料进行选择，对畜禽的综合性状进行品种改良，它是利用现代分子生物学和传统遗传育种相结合的方法，进行新品种选育。在肉牛育种中，人们期望，通过对生长性状密切相关，并且与数量性状紧密连锁的DNA标记的选择，达到早期选种和提高育种值准确性的目的，从而在畜禽育种中获得更大的遗传进展。

分子遗传标记辅助选择就是将现代生物技术与常规选择方法相结合，通过对遗传标记的选择来间接选择控制某性状的数量性状位点(QTL)，使之能够同时利用标记位点信息和数量性状的表型信息，更准确估计动物个体的育种值，提高选择效率，加快育种进展。标记辅助选择主要经历了三个阶段：第一阶段是家畜各性状间的遗传分析；第二阶段是蛋白质(酶)标记对数量性状的标记阶段；第三个阶段是分子遗传标记阶段。随着分子标记技术日渐成熟与丰富，使覆盖整个基因组的标记成为可能，通过与QTL间的连锁分析，实现分子标记辅助选择的目标。单核苷酸多态性(single nucleotidepolymorphism，SNP)作为新的遗传标记已广泛应用于基因定位、克隆、遗传育种及多样性的研究。

瘦素(leptin)由脂肪组织分泌，随血液循环至下丘脑，通过神经细胞膜上瘦素长型受体参与能量代谢、维持体质量稳定等生物学效应，JAK2分子的活化对瘦素的这一生物学效应起着关键作用。活化的JAK2使瘦素受体多个酪氨酸残基磷酸化并募集胰岛素受体底物(IRS2)和转录激活因子3(STAT3)等瘦素信号通路下游分子，以参与能量平衡和体质量的调节。SH2B1属于胞浆JAK2接头蛋白，包含SH2和PH结构域及多个酪氨酸残基位点。SH2B1通过SH2结构域与JAK2结合，增强瘦素JAK2/STAT3信号通路，参与瘦素的敏感性及体质量的调节。另外，活化的SH2B1通过SH2结构域连接上游IR、IGF-IR以及其它带磷酸化的酪氨酸残基的信号蛋白，同时提供多个磷酸化的位点募集下游带SH2结构域的信号蛋白，参与调控脂肪细胞分化的信号通路。因此，研究哺乳动物SH2B1基因遗传变异和分子遗传特征具有重要理论和实践意义。

目前，对于SH2B1基因的研究较少，且集中在小鼠和人类上，主要是关于其功能的研究。国内外(除SH2B1与人类肥胖之外)尚未见关于动物SH2B1基因遗传变异的研究。中国黄牛SH2B1基因遗传变异领域的研究匮乏，该基因位点的功能研究及其遗传变异与经济性状(如：体重、日增重、体高等性状)关联的研究仍是空白。

发明内容

本发明解决的技术问题在于提供一种检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，寻找与经济性状关联的SNP作为分子标记，加快具有优质经济性状黄牛种群的建立。

本发明是通过以下技术方案来实现：

一种检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，以包含SH2B1基因的待测黄牛全基因组DNA为模板，以引物对P为引物，PCR扩增黄牛SH2B1基因；用限制性内切酶BglI消化PCR扩增产物之后，再对酶切后的扩增片段进行琼脂糖凝胶电泳；根据琼脂糖凝胶电泳结果鉴定黄牛SH2B1基因第2795位的单核苷酸多态性；

所述的引物对P为：

上游引物：cagcaactcc aactcctctg gc22；

下游引物：ctccccgggc cactccg17。

所述的PCR扩增反应程序为：94℃预变性5min；94℃变性50s，65℃退火30s，72℃延伸7s，30～35个循环；72℃延伸10min。

所述的琼脂糖凝胶电泳为质量浓度为4％的琼脂糖凝胶电泳。

所述的根据琼脂糖凝胶电泳结果鉴定黄牛SH2B1基因第2795位的单核苷酸多态性为：GG基因型表现为209bp和15bp条带；GA基因型表现为224bp、209bp和15bp条带。

与现有技术相比，本发明具有以下有益的技术效果：

本发明对黄牛SH2B1基因第2795位点上的错义突变可能产生编码蛋白构象发生变化的单核苷酸多态性进行检测，当第2795位点由G突变为A时，三联密码GCC改变为ACC，在转录过程相应位置的蛋白质编码氨基酸发生改变(肽链266位的丙基酸突变为苏基酸，Ala 266Thr)，使具有重要生理功能的SH2B1基因所编码蛋白的空间二、三级构型发生变化，以至影响蛋白的生物学功能。

本发明提供的黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性检测方法，针对第2795位点由G突变为A的转换突变，通过在新设计的下游引物的3’端引入碱基错配，构造出当限制性内切酶Bgl I所识别的切割位点。由G变为A时，PCR扩增SH2B1基因后在错配位置附近无法形成限制性内切酶Bgl I识别位点，而突变没有发生时，PCR扩增SH2B1基因后可形成Bgl I识别位点；通过电泳检测分型可以准确、快速、方便的检测SH2B1基因单核苷酸多态性：GG基因型表现为209bp和15bp条带；GA基因型表现为224bp、209bp和15bp条带；进而对3个黄牛群体的SH2B1基因SNP的等位基因和基因型频率的变化监控。

由于SH2B1基因功能涉及初生重、体重、日增重、体高、胸围、体斜长、坐骨端宽等生长性状，本发明提供的检测方法为SH2B1基因的SNP与生长性状关系的建立奠定了基础，以便用于中国黄牛肉用生长性状的标记辅助选择(MAS)，快速建立遗传资源优良的黄牛种群。

附图说明

图1为黄牛SH2B1基因第2590bp～2813bp的224bp PCR产物电泳结果；

图2为黄牛SH2B1基因第2590bp～2813bp的224bp PCR产物BglI酶切之后的电泳结果；

图3a和图3b为SNP的不同基因型(GG、GA)测序图。

具体实施方式

本发明通过对黄牛SH2B1基因第2795位点错义突变可能产生编码蛋白构象发生变化的单核苷酸多态性进行检测，以便用于中国黄牛肉用生长性状的标记辅助选择，快速建立遗传资源优良的黄牛种群。下面结合具体样本的检测和性状关联对本发明做进一步的详细说明，所述是对本发明的解释而不是限定。

a、黄牛SH2B1基因第一外显子区PCR-RFLP引物的设计

以NCBI所公布的牛(NW_001494303)序列为参考，利用Primer 5.0设计能够扩增包含黄牛SH2B1基因第一外显子区SNP位点的PCR引物，其引物序列如下：

上游引物：cagcaactcc aactcctctg gc22；

下游引物：ctccccgggc cactccg17；

其中，上游引物引入了错配碱基，以便于与发生突变的SNP位点形成能够被内切酶所识别。以上述引物对黄牛基因组扩增，能够扩增包含黄牛SH2B1基因(NW_001494303序列)第一外显子区域第2590bp～2813bp的224bp的基因片段，扩增后片段的电泳检测如图1所示，其中，泳道1～6为检测片段，泳道M为Marker；对扩增的片段进行测序鉴定后，其中，第2754bp～2813bp的序列(5’＞3’)如下所示：

TGCTGAGTTTCATGGGGGCTGAAGAGGCTGCCCCTGATCCC GGAGTGGCCCGGGGAG；

上述序列当中存在单核苷酸多态性：当SH2B1基因第2795bp(即SH2B1基因CDS区第796位)的G突变为A时，导致编码第266位的密码子由GCC(如框线所示序列)突变为ACC，从而形成错义密码子突变，即由266Ala 突变为266Thr。而C为设计引物时引入的突变碱基，以便于SNP突变的检测。

当SH2B1基因第2795bp未发生突变时，引物P进行PCR扩增SH2B1基因产物的第2795bp～2805bp序列为GCCGGAGTGGC，形成了限制性内切酶BglI的酶切位点；当2795bp位点由G突变为A时，PCR扩增SH2B1基因产物的第2795bp～2805bp序列为ACCGGAGTGGC，限制性内切酶BglI不能识别；从而对该位点SNP多态性进行检测。

当用限制性内切酶BglI对引物P对应扩增的基因片段酶切消化时，由于扩增序列中只存在上述一处BglI识别位点，因此，如果能够被只能够被BglI所识别，则扩增的片段将会被切成2个片段。

b、以引物P进行PCR扩增待测黄牛的SH2B1基因片段

1、黄牛样本的采集

本发明具体以5个中国地方黄牛品种的种群作为检测对象，具体采集样本见表1：河南南阳牛(213)，河南平顶山市郏县红牛(306)，山东鲁西牛(113)，陕西秦川牛(189)，吉林草原红牛(240)。

表1黄牛样本的采集

品种	样品数	样品名称	样品来源	采样方式
					南阳牛(NY cattle)	213	血样	采自河南省南阳市黄牛良种繁育场(国家级黄牛保种场)	静脉采血16号针头
郏县红牛(JX cattle)	306	血样	采自河南省平顶山市郏县红牛育种中心及各村镇	静脉采血16号针头
					鲁西牛	113	血样	采自山东省鲁西牛原种场	静脉采血
秦川牛(QC cattle)	189	血样	采自陕西省秦川牛场、陕西省秦川牛良种繁育中心和陕西省大荔县	静脉采血16号针头
					草原红牛(CY cattle)	240	血样	采自吉林省通榆县三家子草原红牛保种场	静脉采血16号针头

2、血样基因组DNA的分离、提取、纯化

1)冷冻血样(主要为血细胞)室温解冻，转移500μL至1.5mL Eppendorf离心管，加入等体积PBS液，充分混匀，12000r/min离心10min(4℃)，弃去上清液，重复上述步骤至上清液透明、沉淀呈淡黄色；

2)在离心管中加入DNA抽提缓冲液500μL，摇动，使血细胞沉淀脱离离心管管壁，37℃水浴1h；

3)加蛋白酶K至3μL(20mg/mL)并混匀，55℃过夜至澄清，尚未澄清者，可补加1μL蛋白酶K混匀继续消化直至澄清；

4)将反应液冷却至室温，加Tris-饱和酚500μL，温和摇动离心管20min，使其充分混匀；4℃，12000r/min离心10min，将上清液转入另一1.5mL离心管中，重复一次；

5)加氯仿500μL，充分混匀20min，4℃，12000r/min离心10min，将上清液转入另一1.5mL离心管中；

6)加氯仿、异戊醇混合液(24∶1)500μL，充分混匀20min，4℃，12000r/min离心10min，将上清液转入另一1.5mL离心管中；

7)加0.1倍体积的NaAc缓冲液及2倍体积的冰冷的无水乙醇，混合转动离心管，直至白色的絮状沉淀析出，-20℃保存30～60min；

8)4℃，12000r/min离心10min，弃去上清液，用70％冰冷乙醇漂洗DNA沉淀2次；

9)4℃，12000r/min离心10min，弃上清液，室温下使乙醇挥发干净；

10)干燥后的DNA溶于80～100μL的TE液，4℃保存直至DNA完全溶解，0.8％琼脂糖凝胶电泳检测其质量，-80℃保存。

11)500μL的DNA溶液中加入10％SDS使其终浓度为0.1％，加入蛋白酶K至终浓度达到50μg/mL；

12)5℃保温10h左右；

13)等体积苯酚、氯仿、异戊醇(25∶24∶1)和氯仿分别抽提一次；

14)12000r/min离心5min分相，吸取上层水相至另一离心管中；

15)加入1/10体积3mol/L醋酸钠和2倍体积冰冷无水乙醇沉淀DNA；

16)倒掉液体，70％乙醇洗涤后晾干，加入60μL灭菌超纯水溶解，4℃待检测。

(3)PCR扩增

PCR反应体系采用混合加样法，即根据每一个反应体系所需的各种组分的数量和1次反应所需的PCR反应的个数，算出各种反应组分的总量，加入到1个1.5mL或者2.0mL离心管中，充分混匀后瞬时离心，再分装到每个0.2mL Eppendorf PCR管中，然后加入模板DNA，再瞬时离心后进行PCR扩增；

PCR反应体系见表2：

表2PCR反应体系

体系成分	体积(μL)
		灭菌超纯水(H₂O)	10
2×Buffer(内含Mg²⁺、dNTPs等)	4
		引物P上游引物(10pmol/L)	0.30
引物P下游引物(10pmol/L)	0.30
		Taq DNA聚合酶(2.5U/μL)	0.15
DNA模板(50ng/μL)	0.5
		总体积	15.00

15μL反应体系包括0.375U Taq DNA聚合酶(北京天根科技有限公司)，2×Buffer 4μL(内含Mg²⁺、dNTPs等)(北京天根科技有限公司Mix)，50ng/μL含SH2B1基因的黄牛基因组DNA 0.5μL，10pmol/μL上、下游引物各0.3μL；

PCR反应程序：

94℃预变性5min；94℃变性50s，65℃退火30s，72℃延伸7s；30～35个循环；72℃延伸10min；

对5个黄牛品种的1028个样本的基因组DNA进行PCR扩增，获得1028个个体的黄牛SH2B1基因中包含该SNP位点的224bp的DNA片段。

c、BglI酶切消化PCR扩增的SH2B1基因片段

1、BglI酶切反应消化体系(20μL)：15μL PCR产物，BglI Buffer 2μL，BglI(10U/μL)为1.5μL，灭菌纯水(H₂O)1.5μL；

2、酶切消化条件：37℃恒温培养箱中消化10h。

d、BglI消化PCR产物后琼脂糖凝胶电泳分析

1)制作4％的琼脂糖凝胶，点样后125V电压电泳60min，电泳结束后EB染色；

2)待分子量不同的DNA片段分离清晰时，在BIO-RAD Gel Doc 2000凝胶成像系统成像；

3)根据琼脂糖凝胶电泳结果分析SNP多态性：

用BIO-RAD Gel Doc 2000凝胶成像系统照相分析，判断SNP的多态性：SH2B1基因的第2795bp未发生突变时，PCR扩增的SH2B1基因产物的第2795bp～2805bp序列为GCCGGAGTGGC，限制性内切酶BglI识别后在GCCGGAG/TGGC对扩增片段酶切，将扩增片段切为2段；当SH2B1基因的第2795bp由G突变为A时，限制性内切酶BglI不能识别，扩增片段不被切开。

由于黄牛为二倍体，所以黄牛基因组的SH2B1基因的第2795位的SNP多态性的琼脂糖凝胶电泳结果为：GG基因型表现为209bp和15bp两条条带；GA基因型表现为224bp、209bp和15bp三条条带；AA基因型(表现为224bp一条条带)在所研究群体中未检测到；由于15bp较小，在琼脂糖凝胶电泳分析中不太清楚，但通过224bp和209bp这两条条带还是能够准确的鉴别GG基因型、GA基因型：不包含224bp条带的为GG基因型个体；同时包含224bp和209bp条带的为GA基因型个体。

PCR扩增产物被BglI酶切之后的琼脂糖凝胶电泳结果如图2所示；其中，泳道3、泳道5包含224bp和209bp条带，其为GA基因型个体，泳道1、2、4只有209bp条带，为GG基因型个体，泳道M为50bp DNA Ladder(500bp，400bp，350bp，300bp，250bp，200bp，150bp，100bp，50bp)。

4)不同基因型个体PCR产物的测序验证

对不同基因型个体PCR产物分别进行正反双向测序；同时，进行SNP位置分析，结果表明包含224bp和209bp条带的杂合子GA基因型个体其2795位的测序图的确表示为G和A，如图3a所示，自左向右第4个峰为双峰，而GG基因型为G，如图3b所示。

e、黄牛SH2B1基因SNP位点的频率统计分析

1)基因和基因型频率

基因型频率是指一个群体中某一性状的某种基因型个体数占总个体数的比率。P_AA＝N_AA/N，其中P_AA代表某一位点的AA基因型频率；N_AA表示群体中具有AA基因型的个体数；N为检测群体的总数量。

基因频率是指一个群体中某一基因数对其等位基因总数的相对比率。计算的公式可以写成：P_A＝(2N_AA+N_Aa1+N_Aa2+N_Aa3+N_Aa4+……+N_Aan)/2N

式中，P_A表示等位基因A频率，N_AA表示群体中具有AA基因型的个体数量，N_Aai表示群体中具有Aai基因型个体数量，a1-an为等位基因A的n个互不相同的复等位基因。

本研究所涉及的等位基因为G和A，所以具体的基因频率计算公式为：

P_G＝(2N_GG+N_GA)/2N

P_A＝(2N_AA+N_GA)/2N

式中，P_G，P_A分别表示等位基因G和A等位基因的频率，N_GG、N_GA和N_AA分别表示GG、GA和AA基因型的个体数量，N表示总群体数目。

在不同黄牛品种SH2B1基因SNP中的G等位基因频率变化幅度在 78.8％～92.5％，A等位基因频率变化幅度在7.5％～21.2％之间，如表3所示。

表3黄牛SH2B1基因第2795位SNP基因频率分布表

f、黄牛SH2B1基因SNP位点基因效应的关联分析

基因型数据：SH2B1识别的基因型(GG、GA)

生产数据：南阳牛6月、12月、18月和24月的体重、日增重、体高、体斜长、胸围数据。

关联分析模型：

先对数据进行描述分析，确定是否存在离群值，再利用最小二乘分析对数据校正；根据数据特征，应用SAS(9.1)软件的GLM过程分析基因型和品种对各性状的效应。在对基因型效应进行分析时采用了固定模型：

Y_ijkl＝μ+BF_i+Month_j+G_k+e_ijkl

其中：Y_ijkl为性状观察值，μ为总体均值，BF_i为第i个品种和农场的固定效应，Month_j为第j个月观测的固定效应，G_k为第k个单SNP标记基因型的固定效应，e_ijkl为随机误差。

结果表明(见表4)：在第2795位点，在6、12、18、24月龄GA基因型个体的体高均极显著大于GG型个体(P＜0.01)；GA基因型个体的胸围在6、18月龄极显著大于GG型个体(P＜0.01)，在12、24月龄显著大于GG型个体(P＜0.05)；GA基因型个体的体斜长在6、12月龄极显著大于 GG基因型(P＜0.01)；GA基因型个体的6月龄体重和日增重均极显著大于GG型(P＜0.01)，12月龄体重显著大于GG型(P＜0.05)。说明第2795位的SNP多态性当中，A是该位点的表现出性质优势的等位基因，以此可以作为分子育种的辅助标记，选择GA型的基因型更有利于优质黄牛种质资源的建立。

表4SH2B1基因第2795位多态位点与南阳牛生长性状的关联分析

注：同一行中标注大写字母不同表示差异极显著(P＜0.01)，小写字母不同表示差异显著(P＜0.05)，相同字母表示不显著。

Claims

1.一种检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，其特征在于，以包含SH2B1基因的待测黄牛全基因组DNA为模板，以引物对P为引物，PCR扩增黄牛SH2B1基因；用限制性内切酶BglI消化PCR扩增产物之后，再对酶切后的扩增片段进行琼脂糖凝胶电泳；根据琼脂糖凝胶电泳结果鉴定黄牛SH2B1基因第2795位的单核苷酸多态性；

所述的引物对P为：

上游引物：cagcaactcc aactcctctg gc22；

下游引物：ctccccgggc cactccg17。

2.如权利要求1所述的检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，其特征在于，所述的PCR扩增反应程序为：94℃预变性5min；94℃变性50s，65℃退火30s，72℃延伸7s，30～35个循环；72℃延伸10min。

3.如权利要求1所述的检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，其特征在于，所述的琼脂糖凝胶电泳为质量浓度为4％的琼脂糖凝胶电泳。

4.如权利要求1所述的检测黄牛SH2B1基因单核苷酸多态性的方法，其特征在于，根据琼脂糖凝胶电泳结果鉴定黄牛SH2B1基因第2795位的单核苷酸多态性为：GG基因型表现为209bp和15bp条带；GA基因型表现为224bp、209bp和15bp条带。