CN102021249B - 反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的引物组 - Google Patents
反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的引物组 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法。根据PEDV N蛋白保守区域基因,设计针对靶基因上6个区域的3对引物,合成两条RT-PCR引物,使用RT-LAMP技术鉴定PED病毒;RT-PCR反应;获得的RNA进行反转录;获得的cDNA用于PCR反应;确保了扩增的特异性,扩增速度快,可在30~60min内获得结果,无需电泳实现肉眼观察扩增效果。使用酶混合物,可在恒温65℃情况下,1h内实现反转录和核酸扩增,RT-LAMP的检测是在LAMP扩增DNA的基础上,加入了反转录酶而实现扩增检测RNA,反转录和扩增一步完成,省去了传统RT-PCR要先进行的反转录步骤。
Description
(一)技术领域
本发明涉及分子生物学,具体说就是一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法。
(二)背景技术
环介导恒温扩增技术(LAMP,Loop-mediated Isthermal Amplification)是一种敏感的链取代核酸扩增技术,是由日本学者Notomi等于2000年发明的。其特点是针对靶基因的6个区域设计4种特异引物,利用一种链置换DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)在恒温条件保温几十分钟,即可完成扩增反应,可以在1h之内,将靶DNA片段扩增109~1010倍,不需要模板的热变性、长时间的温度循环等过程,便于推广应用。RT-LAMP是在LAMP扩增检测DNA的基础上,加入反转录酶而达到扩增检测RNA的效果,在恒温(65℃)条件下同时进行反转录和核酸扩增。
1985年美国PE-Cetus公司人类遗传研究室的Mllis等发明了具有划时代意义的聚合酶链反应(PCR)。该法是以拟扩增的DNA分子为模板,以一对分别与模板互补的寡核苷酸片段为引物,在DNA聚合酶的作用下,按照半保留复制的机制沿着模板链延伸,直至完成新的DNA合成。PCR的缺点:(1)常引起非特异性扩增。(2)需要比较昂贵的PCR仪。(3)扩增时间较长,一般需要几小时,不利于在基层实验室推广应用。(4)产物需要在琼脂糖凝胶上进行电泳,在紫外线下观察条带。(5)RT-PCR需要先进行反转录步骤,得到cDNA才能当做PCR的模板进行扩增。
(三)发明内容
本发明的目的在于提供一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法。
本发明的目的是这样实现的:
步骤一:设计引物:根据PEDV N蛋白保守区域基因,设计针对靶基因上6个区域(下划线部分)的3对引物:FIP、BIP、F3、B3、F-loop、B-loop;根据文献(张素芳等,2004.猪流行性腹泻病毒嵌套式RT -PCR检测方法的建立.中国病毒学.19(2):174-176)合成两条RT-PCR引物(PED1、PED2),引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成,模板及引物序列如下:
AATCCAGGGCCACTTCGAAGGAACGTGACCTCAAAGACATCCC
AGAGTGGAGGAGAATTCCCAAGGGCGAAAATAGCGTAGCAGCT
TGCTTCGGACCCAGAGGGGGCTTCAAAAACTTTGGAGATGCGG
AATTTGTCGAAAAAGGTGTTGATGCGTCAGGCTATGCTCAGATC
GCCAGTTTAGC
步骤二:病毒的制备:状态良好的Vero细胞接种于6孔板,置于37℃、5%CO2培养箱中培养,待细胞长满单层后,弃去培养液,用PBS洗涤一次,加入PED病毒液500μl/孔,含无EDTA胰酶40μg/ml,37℃孵育1小时,每孔补加DMEM 2.5ml,含无EDTA胰酶40μg/ml,置于37℃、5%CO2培养箱中培养,待80%以上细胞产生病变时取出培养板,冻融3次,收集病毒液用于RNA提取;
步骤三:RNA的提取:取3mlPED病毒液,3000rpm离心10分钟去细胞碎片,上清转移至新离心管中,加入等体积预冷的PEG8000,颠倒混匀,室温放置30min或4℃放置过夜,12000rpm离心5min,弃去上清,沉淀用100μlDEPC水重悬,使用RNA抽提试剂盒提取总RNA;
步骤四:RT-LAMP反应:
RT-LAMP反应体系
FIP、BIP | 各4μl |
F3、B3 | 各0.5μl |
F-loop、B-loop | 各2μl |
dNTPs(10mM) | 1.5μl |
Bst DNA polymerase | 1μl |
10×ThermoPol | 2.5μl |
M-MuLV | 1μl |
RNA | 1μl |
H2O | 补至25μl |
65℃恒温水浴1小时,85℃10min终止反应,产物于2%琼脂糖凝胶电泳鉴定,阴性对照用灭菌水代替RNA模板;
步骤五:RT-PCR反应:步骤三获得的RNA按照海基反转录酶说明书进行反转录,获得的cDNA用于PCR反应,反转录体系及条件如下:
PCR反应体系
2×HG PCR buffer | 12.5μl |
dNTPs(2.5mM) | 2.5μl |
PED1 | 0.5μl |
PED2 | 0.5μl |
cDNA | 1μl |
[0022]
super Taq DNA Polymerase | 0.5μl |
H2O | 补至25μl |
反应条件:95℃5min,94℃8s,47℃8s,72℃10s,72℃2min,30个循环,PCR产物于1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
本发明一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法,首次使用RT-LAMP技术鉴定PED病毒,并且进一步缩短了检测时间,降低了成本,为由猪流行性腹泻疾病的快速诊断提供了技术支持。根据较保守的N基因设计了针对靶基因上6个区域的3对引物,这就更大程度上的确保了扩增的特异性;扩增速度快,可在30~60min内获得结果,可无需电泳实现肉眼观察扩增效果;使用酶混合物,可在恒温(65℃左右)情况下,1h内实现反转录和核酸扩增,RT-LAMP的检测是在LAMP扩增DNA的基础上,加入了反转录酶而实现扩增检测RNA,反转录和扩增一步完成,省去了传统RT-PCR要先进行的反转录步骤,;对PED病毒的检测快速、敏感、高效、简便,在基层实验室甚至现场均可进行操作;若开发相应的检测试剂盒,有望成为简易的常规检测手段。
(四)附图说明
图1为本发明的LAMP扩增原理图;
图2为本发明的RT-LAMP反应琼脂糖凝胶电泳图,其中:M:8000marker;1:PEDV RT-LAMP;2:阴性对照;
图3为本发明的RT-LAMP反应特异性检测电泳图,其中:M:2000marker;1:PEDV;2:TGEV;3:PRRS;4:PRV;5:PrV;6:IBV;
图4为本发明的RT-LAMP敏感性检测电泳图;M:2000marker;1~8:PEDV RNA 100~10-7稀释为模板进行RT-LAMP;
图5为本发明的RT-PCR敏感性检测电泳图,其中:
M:2000marker;1~8:RNA 100~10-7稀释为模板进行RT-PCR。
(五)具体实施方式
下面结合附图举例对本发明作进一步说明。
实施例1:本发明一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法,步骤如下:
步骤一:设计引物:根据PEDV N蛋白保守区域基因,设计针对靶基因上6个区域(下划线部分)的3对引物:FIP、BIP、F3、B3、F-loop、B-loop;根据文献合成两条RT-PCR引物(PED1、PED2),引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成,模板及引物序列如下:
AATCCAGGGCCACTTCGAAGGAACGTGACCTCAAAGACATCCC
AGAGTGGAGGAGAATTCCCAAGGGCGAAAATAGCGTAGCAGCT
TGCTTCGGACCCAGAGGGGGCTTCAAAAACTTTGGAGATGCGG
AATTTGTCGAAAAAGGTGTTGATGCGTCAGGCTATGCTCAGATC
GCCAGTTTAGC
步骤二:病毒的制备:状态良好的Vero细胞接种于6孔板,置 于37℃、5%CO2培养箱中培养,待细胞长满单层后,弃去培养液,用PBS洗涤一次,加入PED病毒液500μl/孔,含无EDTA胰酶40μg/ml,37℃孵育1小时,每孔补加DMEM 2.5ml,含无EDTA胰酶40μg/ml,置于37℃、5%CO2培养箱中培养,待80%以上细胞产生病变时取出培养板,冻融3次,收集病毒液用于RNA提取;
步骤三:RNA的提取:取3mlPED病毒液,3000rpm离心10分钟去细胞碎片,上清转移至新离心管中,加入等体积预冷的PEG8000,颠倒混匀,室温放置30min或4℃放置过夜,12000rpm离心5min,弃去上清,沉淀用100μlDEPC水重悬,使用RNA抽提试剂盒提取总RNA;
步骤四:RT-LAMP反应:
RT-LAMP反应体系
FIP、BIP | 各4μl |
F3、B3 | 各0.5μl |
F-loop、B-loop | 各2μl |
dNTPs(10mM) | 1.5μl |
Bst DNA polymerase | 1μl |
10×ThermoPol | 2.5μl |
M-MuLV | 1μl |
RNA | 1μl |
H2O | 补至25μl |
65℃恒温水浴1小时,85℃10min终止反应,产物于2%琼脂糖凝胶电泳鉴定,阴性对照用灭菌水代替RNA模板;
步骤五:RT-PCR反应:步骤三获得的RNA按照海基反转录酶说明书进行反转录,获得的cDNA用于PCR反应,反转录体系及条件如下:
PCR反应体系
2×HG PCR buffer | 12.5μl |
[0049]
dNTPs(2.5mM) | 2.5μl |
PED1 | 0.5μl |
PED2 | 0.5μl |
cDNA | 1μl |
super Taq DNA Polymerase | 0.5μl |
H2O | 补至25μl |
反应条件:95℃5min,94℃8s,47℃8s,72℃10s,72℃2min,30个循环,PCR产物于1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
实施例2:结合图1,本发明一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法,针对靶基因上6个区域设计3对引物,提高了反应的特异性,减少了非特异反应的产生。由于LAMP反应在恒温条件下进行,所以设备简单,只需水浴锅即可。LAMP反应不像PCR反应一样需要热变性来将双链DNA变成单链,因为双链DNA在65℃左右处于动态平衡状态,任何一条引物与双链DNA的互补部位进行碱基互补配对延伸的时候,另一条链就会脱落变成单链。LAMP方法正是利用这一特点进行反应的,不需要进行多次温度变化循环,扩增效率高,时间短。LAMP反应产物可以用肉眼观察、添加荧光染料法、琼脂糖凝胶电泳法等多种方式检测,方便快捷。并且,反转录和扩增可以一步完成,省去了RT-PCR反转录的步骤,节约时间,节省实验材料。
实施例3:技术原理:2000年日本学者Notomi等人发明了一种叫做环介导等温扩增(LAMP)的新方法。该法利用4种(或6种)不同的特异性引物识别靶基因的6个特定区域,且可在等温条件进行扩增反应。扩增效率高,可以在15~60min扩增109~1010倍。
引物的设计:
基于靶基因3’端的F3c、F2c和F1c区以及5’端的B1、B2和B3区等6个不同的位点设计3对引物。FIP引物:上游内部引物,由F2区组成,F2区与靶基因3’端的F2c区域互补,与靶基因5’端的F1c 区域序列相同。F3引物:上游外部引物,由F3区组成,并与靶基因的F3c区域互补。BIP引物:下游内部引物,由B2区组成,B2区与靶基因3’端的B2c区域互补,与靶基因5’端的B1c区域序列相同。B3引物:下游外部引物,由B3区域组成,和靶基因的B3c区域互补。F-loop、B-loop引物:环引物,分别在F1c和F2之间、B1c、B2之间。
扩增原理:
DNA在65℃左右处于动态平衡状态,任何一个引物向双链DNA的互补部位进行碱基配对延伸时,另一条链就会解离,变成单链。在链置换型DNA聚合酶的作用下,以FIP引物F2区段的3’末端为起点,与模板DNA互补序列配对,启动链置换DNA合成。F3引物与F2c前端F3c序列互补,以3’末端为起点,通过链置换型DNA聚合酶的作用,一边置换先头FIP引物合成的DNA链。一边合成自身DNA,如此向前延伸。最终F3引物合成而得的DNA链与模板DNA形成双链。由FIP引物先合成的DNA链被F3引物进行链置换产生一单链,这条单链在5’末端存在互补的F1c和F1区段,于是发生自我碱基配对,形成环状结构。同时,BIP引物同该单链杂交结合,以BIP引物的3’端为起点。合成互补链,在此过程中环状结构被打开。接着,类似于F3,B3引物从BIP引物外侧插入,进行碱基配对,以3’端为起点,在聚合酶的作用下,合成新的互补链。通过上述两过程,形成双链DNA。而被置换的单链DNA两端存在互补序列,自然发生自我碱基配对,形成环状结构,于是整条链呈现哑铃状结构。该结构是LAMP法基因扩增循环的起始结构。至此为止的所有过程都是为了形成LAMP法基因扩增循环的起点结构。LAMP法基因扩增循环:首先在哑铃状结构中,以3’末端的F1区段为起点,以自身为模板,进行DNA合成延伸。与此同时,FIP引物F2与环上单链F2c杂交,启动新一轮链置换反应。解离由F1区段合成的双链核酸。同样,在解离出的单链核酸上也会形成环状结构。在环状结构上存在单链形式B2c,BIP引物上的B2与其杂交,启动新一轮扩增。经过相同的过程,又形成环状结构。通过此过程,结果在同一条链上互补序列周而复始形成大小不一的结构(图1)(Loop-mediated isothermal amplification of DNA Nucleic Acids Research,2000,Vol.28,No.12)。
RT-LAMP的检测原理是在LAMP扩增检测DNA的基础上,加入反转录酶而达到扩增检测RNA的效果,在恒温(65℃)条件下同时进行反转录和核酸扩增。由于LAMP扩增效率极高,所以只要有少量的cDNA即可实现核酸的大量扩增,所以不必需要常规RT-PCR所必须的反转录步骤,如果再加入上下游的环引物,整个RT-LAMP扩增效率会大幅度提高,在1h内实现。
LAMP扩增产物的检测
(1)荧光定量检测:利用SYBR Green I荧光染料只与双链DNA小沟结合,当它与DNA双链结合时,发出较原先强800~1000倍的荧光的原理,在一个体系内,其信号强度代表了双链DNA分子的数量。在核酸大量合成时,SYBR Green I能自动掺入双链DNA,通过检测所产生的荧光强度,获取Ct值,比照标准曲线,可确定模板DNA的起始拷贝数。
(2)目视检测:在核酸大量合成时,从dNTP析出的焦磷酸根离子与反应溶液中的Mg结合,产生副产物——焦磷酸镁沉淀。反应方程式如下:(DNA)n-1+dNTP=(DNA)n+P2O7 4-P2O7 4-+2Mg2+=Mg2P2O7(沉淀),是反应物呈混浊状具有极高的特异性,只要用肉眼观察或浊度仪在400nm光下,检测沉淀浊度就能够判断扩增与否。
(3)实时检测:由于反应的副产物——焦磷酸镁和反应产物的量成一定的比例关系,MOI等建立了实时检测方法,在LAMP反应温度下,通过实时浊度计检测产物的浊度变化,进行实时定量分析。研究表明当起始模板拷贝数在2×103~109范围内时,在扩增过程中反应液的混浊度将与扩增产物量成正比例关系;并且在这个范围内到达阈值所需要时间(thresholdtimes,Tt)与起始模板数量的对数值成线性关系。日本已利用这种特性研制出专门用于LAMP检测的实时监控浊度仪,可以实现对LAMP扩增过程的全程实时监控。
(4)电泳检测:在2%琼脂糖凝胶上进行电泳,由于LAMP反应原理的特点,其扩增产物时各种不同长度的茎-环状结构,电泳后在紫外下观察可见特异性的梯状条带产生。
试验方法:
引物的设计:
根据PEDV N蛋白保守区域基因,设计了针对靶基因上6个区域的3对引物:FIP、BIP、F3、B3、F-loop、B-loop。根据文献合成两条RT-PCR引物(PED1、PED2)。引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。引物序列如下:
模板的制备和RNA的提取:
状态良好的Vero细胞接种于6孔板,置于37℃、5%CO2培养箱中培养,待细胞长满单层后,弃去培养液,用PBS洗涤一次,加入PEDV病毒液500μl/孔,含无EDTA胰酶40μg/ml,37℃孵育1小时,每孔补加DMEM 2.5ml,含无EDTA胰酶40μg/ml。置于37℃、5%CO2培养箱中培养,待80%以上细胞产生病变时取出培养板,冻融3次,收集病毒液用于实验或-70℃保存。
取3mlPED病毒液,3000rpm离心10分钟去细胞碎片,上清转移至新离心管中,加入等体积预冷的PEG8000,反复颠倒数次,室温放置30min或4℃放置过夜。12000rpm离心5min,弃去上清,沉淀用100μlDEPC水重悬,使用RNA抽提试剂盒提取总RNA。
2.2.2.3RT-LAMP反应及其优化
RT-LAMP反应体系
FIP、BIP | 各4μl |
F3、B3 | 各0.5μl |
F-loop、B-loop | 各2μl |
dNTPs(10mM) | 1.5μl |
Bst DNA polymerase | 1μl |
10×ThermoPol | 2.5μl |
M-MuLV | 1μl |
RNA | 1μl |
H2O | 补至25μl |
65℃恒温水浴1小时,85℃10min终止反应。产物于2%琼脂糖凝胶电泳鉴定。阴性对照用灭菌水代替RNA模板。
在此基础上,分别对反应时间以及反应温度进行优化,并进行了反应特异性和灵敏性的检测。
RT-PCR反应体系及条件:
反转录按照海基反转录酶说明书进行。
PCR反应体系
2×HG PCR buffer | 12.5μl |
dNTPs(2.5mM) | 2.5μl |
PED1 | 0.5μl |
PED2 | 0.5μl |
cDNA | 1μl |
super Taq DNA Polymerase | 0.5μl |
H2O | 补至25μl |
反应条件:95℃5min,94℃8s,47℃8s,72℃10s,72℃2min,30个循环。PCR产物于1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。
实施例4:本发明一种反转录-环介导等温扩增检测猪流行性腹泻的方法,是根据PEDV N基因的6个区域设计了3对引物,若根据N基因的其他区域或者PEDV的其他基因,也可以设计并完成类似检 测。在反应混合物的配比上,适当调整反应混合物个组分比例,也可能得到类似结果,在反应的时间和温度方面,在一定范围内,均可以得到有效扩增。本发明的技术关键点是:(1)模板6个区域的选择和引物的设计。(2)反应混合物各组分的比例。(3)反应时间和温度的选择。
Claims (1)
1.一种反转录-环介导等温扩增检测猪传染性胃肠炎的RT-LAMP引物组,其特征在于,核苷酸序列如下所示:
(1)FIP:
AGCTGCTACGCTATTTTCGCCCTTTTGGAACGTGACCTCAAAGACA;
(2)BIP:
GGACCCAGAGGGGGCTTCAATTTTAGCCTGACGCATCAACAC;
(3)F3:
AATCCAGGGCCACTTCGA;
(4)B3:
GCTAAACTGGCGATCTGAGC;
(5)F-loop:
TTGGGAATTCTCCTCCACTCTG;
(6)B-loop:
TGGAGATGCGGAATTTGTCG。
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C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20130123 Termination date: 20131122 |