CN103667521A - 一组用于检测虹彩病毒的引物及检测方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一组用于检测虹彩病毒的引物及检测方法,所述的引物与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分。本发明所述检测虹彩病毒的方法,采用上述引物,通过环介导等温扩增法,特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分,确认是否存在有扩增产物。本发明用于检测虹彩病毒的引物灵敏度高、特异性强;本发明虹彩病毒的检测方法,采用的环介导等温扩增反应,反应时间短、操作简单,能够满足市场的需求。

Description

一组用于检测虹彩病毒的引物及检测方法
技术领域
本发明涉及海水鱼类感染病毒检测技术领域,特别涉及一种虹彩病毒的快速检测方法。
背景技术
虹彩病毒(Iridovirus)是近年来新发现的一种最严重的鱼类传染性病毒之一,可在野生和养殖的鱼类中引起较高的发病率和死亡率,能引起鲈脾肿大症、石首鱼暴发性传染病、真鲷虹彩病毒病、牙鲆淋巴囊肿病、石斑鱼慵懒病、甲鱼“红脖子病”等近百种水生动物疾病,症状主要表现在脾脏肿大及其细胞坏死等现象,死亡率高达30%(成年鱼)-100%(鱼苗),危害性极大。近年来,这种病毒在东亚和东南亚地区引起的鱼类疾病已呈明显上升趋势,在海水养殖鱼类中有很多报道,致使鱼类大面积的死亡,造成了严重的经济损失,因而被称为“海洋口蹄疫”。
组织培养法一直是虹彩病毒检测的“金标准”方法,虽然其特异性较强,但检测步骤复杂,耗时较长,且灵敏度偏低。
近年来,针对虹彩病毒的检测,先后建立了间接荧光抗体检测方法、酶联免疫吸附(ELISA)检测方法等。然而这些免疫学检测方法也存在缺点,比如检测时间较长,往往需要5-6小时才能出结果,而且需要制备单克隆抗体,技术成本较高。
随着分子生物学的飞速发展,对虹彩病毒的检测手段也有了快速的发展。例如采用聚合酶链式反应(PCR)和实时聚合酶链式反应(real-time PCR)检测虹彩病毒。这些方法快速简单,灵敏度高,反应时间较以前的方法短,但仍需要较长时间,而且需要使用PCR仪等贵重仪器,对使用范围有限制。
发明内容
有鉴于此,有必要针对上述问题,提供一组用于检测虹彩病毒的引物及其检测方法。
一组用于检测虹彩病毒的引物,所述的引物与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分。
作为本发明一组用于检测虹彩病毒的引物,为SEQ ID NO.1~6所示的寡核苷酸,或者SEQ ID NO.1~6所示的寡核苷酸的互补链。
本发明还提供一种检测虹彩病毒的方法,采用的引物可以与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分;通过环介导等温扩增法,特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分,确认是否存在有扩增产物。
作为本发明检测虹彩病毒的方法的优选实施方式,本发明检测虹彩病毒的方法,所述的方法包括如下步骤:
(1)准备检测样本;
(2)提取样本的总DNA;
(3)对步骤(2)的DNA进行环介导的等温核酸扩增反应,反应温度为60~65℃,反应时间为10~60分钟;
(4)终止反应;
(5)检测所述扩增引物。
作为本发明检测虹彩病毒的方法的优选实施方式,所述的方法的步骤(5)所述的检测是通过扩增产物凝胶电泳、扩增产物浊度观测或扩增产物化学发光检测的方法进行的。
作为本发明检测虹彩病毒的方法的优选实施方式,所述的检测样本选自下列样本:
(1)海水鱼类的感染组织;或者
(2)海水鱼类的细胞培养物。
本发明用于检测虹彩病毒的引物灵敏度高、特异性强;本发明虹彩病毒的检测方法,采用的环介导等温扩增反应,反应时间短、操作简单,能够满足市场的需求。
附图说明
图1是环介导等温扩增反应产物的特征性梯状条带和酶切鉴定电泳图:泳道M:marker;泳道1:扩增产物用限制性内切酶MstⅠ酶切产物,得到217bp,252bp大小的两条主带,说明是特异性扩增;泳道2:扩增原始产物,表现出特征性的梯状条带,不能通过片段的大小来鉴别是否为非特异性扩增;
图2是等温孵育不同时间的产物含量的电泳图:在20分钟时就出现了特征性扩增条带,表明20分钟即可完成反应;泳道M:marker;泳道N:阴性对照;其他泳道为不同时间的产物,数字代表时间,单位:分钟;
图3是灵敏度实验结果的电泳图:泳道M:marker;泳道N:阴性对照;泳道0到-6表示病毒DNA模板按5倍稀释后(标号取5的对数log5,-1即稀释5倍)的扩增产物;图上半部分是利用F3和B3做PCR的电泳结果,产物约210bp;图下半部分是本发明方法的结果,可得该方法比PCR灵敏25倍左右;
图4是肉眼可视观察实验结果,省略电泳所需的时间和设备:P1和P2是阳性反应,N1和N2是阴性反应;其中,N2和P2都加了SYBR GreenⅠ荧光染料;在P1的体系中,可以看见混浊的白色副产物,稍微离心,可见沉淀于底部;P2中的染料由N2所显示的橙黄色(染料的本色)变为绿色。
具体实施方式
为使本发明更加容易理解,下面将进一步阐述本发明的具体实施例。
本发明中“核酸”或“多核苷酸”是指任何长度的含嘌呤和嘧啶的聚合物,可以是多核糖核苷酸,可以是多脱氧核糖核苷酸,或是混合的多核糖-多脱氧核糖核苷酸。它包括单链和双链分子,例如DNA-DNA,DNA-RNA和RNA-RNA杂合体,以及通过与氨基酸主链共轭碱基形成的“蛋白质核酸”(PNA)。它还包括含有修饰碱基的核酸。
本发明中“引物”是长度约为5个至50个核苷酸的寡核苷酸,优选长度为大约6个至25个核苷酸,特别优选长度为大约6个至18个核苷酸,它与相关的单链核酸序列形成一个双链体,并且可以用例如DNA聚合酶使互补链发生聚合反应。
本发明中核酸序列的“互补链”是指参与与原始序列沃森-克里克碱基配对的反义序列。
实施例1
一组用于检测虹彩病毒的引物,所述的引物与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒核苷酸序列的一部分。所述的引物,为SEQ ID NO.1~6所示的寡核苷酸。
表1引物序列
上述序列号1~6的引物对应SEQ ID NO.1~6的引物。
本发明的检测虹彩病毒引物,灵敏度高、特异性强。6条引物共识别8个区域,充分保证其特异性。其中F3和B3是外引物,在起始扩增反应时起作用;FIP和BIP称为内引物,在整个扩增过程都起作用,是最关键的一对引物,导致产生环状的茎环结构而无限扩增;FL和BL称为环状引物,用于提高反应速率。
实施例2
一种检测虹彩病毒的方法,该方法用于检测样本中是否存在虹彩病毒,所述的方法采用本发明用于检测虹彩病毒的引物组,通过环介导等温扩增法(LAMP),特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分,确认是否存在有扩增产物。
LAMP扩增主要利用了Bst DNA聚合酶大片段的两大特性:一是DNA聚合酶具有5'→3'DNA聚合酶活性,能在恒温状态下扩增DNA核酸;二是Bst DNA聚合酶不具有5'→3'外切核酸酶活性,能将新合成的核酸单链从新生成的DNA双链上置换(取代)下来,形成两条独立的核酸单链以开启下一轮的DNA核酸合成;进而免去了每次扩增前的DNA变性环节。在此基础上,巧妙地设计能识别6个(或8个)独立DNA序列的LAMP引物组(4引物组或6引物组),使得Bst DNA聚合酶的两大特性充分发挥。其中,内引物(BIP、FIP)的设计是LAMP引物设计的亮点、难点。
Bst DNA聚合酶大片段是Bacillus stearothermophilus DNA聚合酶的一部分,来源于E.coli菌株,此菌株含有来自Bacillus stearothermophilus DNA聚合酶的基因,该基因不具有5'→3'外切核酸酶活性。应用基因重组技术,将麦芽糖结合蛋白(MBP)基因与该基因融合表达,纯化后再去除麦芽糖结合蛋白。
第一阶段:扩增始发物形成
1步:当双链DNA处于65℃左右的动态平衡中时,引物组中的BIP引物就能通过互补结合到目标DNA双链上,在Bst DNA聚合酶作用下,启动DNA合成。
2步:从BIP的B2区域3’端开始合成DNA模板的互补链至F3C;
3步:B3引物退火结合到模板DNA的互补区域B3C,启动链取代合成,同时释放由BIP引物引导合成的互补链。
4步:释放的DNA的B1C区域结合B1区域,形成茎环结构;1.3步释放的DNA链作为FIP引物以及F3引物的模板,按BIP端相同的模式启动DNA的合成及链取代,释放的DNA链在FIP端同样形成茎环结构。进而,形成哑铃形结构扩增始发物。
第二阶段:延伸
5步:哑铃结构通过自引导DNA合成迅速转换成茎环结构DNA;
6步:BIP引物与茎环结构的环状单链区域结合并开始新的DNA合成,由于F1及F1C的互补关系,再次形成茎环结构,先前合成的DNA链得以释放;
7步:FIP引物同样与对应的茎环结构的环状单链区域结合,由于B1及B1C的互补关系,再次形成茎环结构,先前合成的DNA链得以释放;
8步:如此周而复始扩增,最终形成不同长度(目的片断长度的自然数倍)花椰菜cauliflower状的反向重复序列。
2.引物设计:
LAMP引物的设计比常规PCR要复杂的多。一个反应至少包括4条引物,包括一对内引物(FIP和BIP,各约40bp)和一对外引物(F3和B3,各约25bp);如果添加一对环引物(loop primer),反应便可以加速,反应时间减半,大大增加扩增检测的效率。Primer Explorer version3软件可以专门设计各种特异LAMP引物,用户只需按要求提交目的片断序列,设置相关参数,系统便能产生多种引物组合供用户选择。此外,LAMP引物可以人工设计,各引物的组成(请见表2),引物设计的其他技术细节及注意事项可参考相关文献(Tsugunori Notomi等,2000;K.Nagamine等,2002)。
表2LAMP引物组成
3.反应体系及设备:
25ul LAMP反应的基本体系如下:内引物FIP、BIP各0.8mM,外引物F3、B3各0.2mM,(需要时,环引物LF、LB各0.4mM),1.6mM dNTPs,1M betaine甜菜碱(Sigma),反应缓冲液(20mM Tris-HCl(pH8.8),10mM KCl,10mM(NH4)2SO4,4mM MgSO4,0.1%Triton X-100),8个单位Bst DNA polymeraselarge fragment(New England Biolabs)以及模板DNA。模板DNA在恒温扩增前95℃孵育5mins(Tsugunori Notomi等,2000),但后续研究表明,未经95℃变性的DNA模板可以直接进入恒温扩增(60~65℃for45~60mins)。为防止非特异扩增,须80℃孵育2~5mins。
由于LAMP反应无需循环变温,所以仅需水浴锅或其他恒温加热器便可。
4.扩增结果判定
扩增结果有三种判定方法:1)核酸的琼脂糖凝胶电泳,染料可以是EB也可以是SYBR Green I,琼脂糖凝胶的浓度以2℅为宜,缓冲液采用TBE缓冲液。2)肉眼直接观测副产物焦磷酸镁沉淀。产物呈阳性的反应,管内液体浑浊,离心或由白色沉淀集于管底,阴性反应则无此现象。3)SYBR Green I荧光染料直接对产物进行染色,也可以通过肉眼直接观察。产物呈阳性的反应,加染料后呈绿色,阴性反应则呈橙红色。
实施例3
一种检测虹彩病毒的方法,所述的方法包括如下步骤:
(1)准备检测样本:新鲜或者保存于-80℃~4℃的细胞培养物,解冻后可直接用于总DNA的抽提;新鲜或者用磷酸盐缓冲液保存于-80℃~4℃的海水鱼类组织病料,充分匀浆后,10000rpm离心10~30min,取上清液用于总DNA的抽提;
(2)提取样本的总DNA:使用D抽提试剂(大连宝生物工程公司产品),按照试剂的说明书操作;
(3)对步骤(2)的DNA进行环介导的等温核酸扩增反应,使用Bst大片段DNA聚合酶(纽英兰公司产品),反应温度为60~65℃,反应时间为10~60分钟(图2);
(4)终止反应;80℃持续5分钟;
(5)检测所述扩增引物:有三种方法可供选择。其一、产物可以通过电泳来观察是否有特征性梯状条带出现(见图1)。其二、产物如果出现混浊、经简短离心有白色沉淀,即可判为阳性;用浊度仪能更方便地判定。其三、加SYBRGreenⅠ染料到产物中,阴性反应仍然为原本的橙黄色,而阳性则变为绿色(见图4)。
为阐明LAMP扩增技术在检测灵敏度方面的优势,特选择灵敏度较高的PCR作为比较对象。病毒DNA模板按5倍稀释后(标号取5的对数log5,-1即稀释5倍)的扩增产物,利用F3和B3做PCR,同时采用本发明的检测方法进行实验。由图3可知,PCR的灵敏度为-4(即稀释54倍),本发明检测方法的灵敏度为-6(即稀释56倍),可得该方法比PCR灵敏25倍左右。
在本发明的其他实施例中,样本的来源还可以是选自下列样本:
(1)海水鱼类的感染组织;或者
(2)海水鱼类的细胞培养物。
对样本的准备可以参照美国冷泉港实验室出版社的《分子克隆实验指南》的实验方法进行准备。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Figure IDA00003628766400011
Figure IDA00003628766400021

Claims (6)

1.一组用于检测虹彩病毒的引物,其特征在于:所述的引物与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分。
2.根据权利要求1所述的用于检测虹彩病毒的引物,其特征在于:所述的引物为SEQ ID NO.1~6所示的寡核苷酸,或者SEQ ID NO.1~6所示的寡核苷酸的互补链。
3.一种应用权利要求1或2所述的引物检测虹彩病毒的方法,其特征在于:采用的引物可以与虹彩病毒的核苷酸序列的一部分或其互补链互补,并能够在DNA聚合酶的作用下特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分;通过环介导等温扩增法,特异性地扩增虹彩病毒的核苷酸序列的一部分,确认是否存在有扩增产物。
4.一种应用权利要求3所述的引物检测虹彩病毒的方法,其特征在于:所述的方法包括如下步骤:
(1)准备检测样本;
(2)提取样本的总DNA;
(3)对步骤(2)的DNA进行环介导的等温核酸扩增反应,反应温度为60~65℃,反应时间为10~60分钟;
(4)终止反应;
(5)检测所述扩增引物。
5.一种应用权利要求4所述的引物检测虹彩病毒的方法,其特征在于:所述的方法的步骤(5)所述的检测是通过扩增产物凝胶电泳、扩增产物浊度观测或扩增产物化学发光检测的方法进行的。
6.一种应用权利要求4所述的引物检测虹彩病毒的方法,其特征在于:所述的检测样本选自下列样本:
(1)海水鱼类的感染组织;或者
(2)海水鱼类的细胞培养物。
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