CN101328198A - 一种紫丁香苷的提取分离方法 - Google Patents
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Abstract
一种紫丁香苷的提取分离方法,将白丁香(Syringa oblata Lindl.var.alba Hort.ex Rehd.)枝粉碎,煎煮法提取紫丁香苷。将紫丁香苷提取液用XDA-1或AB-8大孔吸附树脂柱以20%~60%的乙醇溶液洗脱,再用硅胶柱层析分离,可得纯度97%以上的紫丁香苷晶体。本发明包括白丁香中紫丁香苷的提取、大孔树脂和硅胶柱分离、结晶等工艺,该方法具有成本低、操作简便、便于工业化生产等优点。本发明工艺的稳定性及重现性都较好,所得产物纯度大于97%,适宜进行大规模生产提取。
Description
技术领域
本发明属天然药物化学提纯制备领域,具体涉及一种紫丁香苷的提取分离方法。
背景技术
紫丁香苷为苯丙素苷类化合物。紫丁香苷单体常被用作考察刺五加、祖师麻以及救必应等中草药的质量控制指标。而有关从植物中提取分离获得紫丁香苷的报道很少。自然界中有很多植物含有紫丁香苷,但因其紫丁香苷含量较低,使得紫丁香苷标准品的制备成本较高。因此,简便高效的提取制备紫丁香苷对于中药材的质量控制及以紫丁香苷为前体的新药开发有重要意义。
发明内容
本发明的目的在于提供一种制备工艺简单,提取量高,且能够达到批量生产的紫丁香苷的提取分离方法。
为了实现上述目的,本发明的采用的制备方法如下:
1)紫丁香苷的提取
取0.5Kg~1Kg的白丁香枝粉碎后用水浸泡1~3h,其中料液比为1∶20~30(g/ml),煎煮2~3次,每次煎煮1~3h,过滤,浓缩,得紫丁香苷提取液;
2)紫丁香苷分离
将紫丁香苷提取液用XDA-1或AB-8大孔吸附树脂柱以1~2BV/h的流速吸附,然后用水洗吸附样品后的大孔吸附树脂柱,再用体积浓度为20%~60%的乙醇溶液洗脱,采用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集紫丁香苷洗脱液;
将洗脱液浓缩成浸膏,用25~35ml甲醇溶解后与70~100g硅胶拌样制成硅胶柱,采用硅胶柱层析以氯仿∶甲醇体积比6∶1~9∶1进行洗脱,用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集相应的紫丁香苷溶液;
3)结晶
将所收集的紫丁香苷溶液浓缩至浸膏状后加无水乙醇溶解,过滤,结晶,重结晶2~3次,得到纯度大于97%的紫丁香苷晶体。
本发明包括白丁香(Syringa oblata Lindl.var.alba Hort.exRehd.)中紫丁香苷的提取、大孔树脂和硅胶柱分离、结晶等工艺,该方法具有成本低、操作简便、便于工业化生产等优点。本发明工艺的稳定性及重现性都较好,所得产物纯度大于97%,适宜进行大规模生产提取。
附图说明
图1是紫丁香苷高效液相色谱图,其中横坐标为保留时间,纵坐标为信号响应值。
具体实施方式
下面结合附图及实施例对本发明作进一步详细说明。
实施例1:
1)紫丁香苷的提取
取0.5Kg的白丁香(Syringa oblata Lindl.var.alba Hort.ex Rehd.)枝粉碎后用水浸泡2h,其中料液比为1∶20(g/ml),煎煮2次,每次煎煮1h,过滤,浓缩得紫丁香苷提取液;
2)紫丁香苷分离
将紫丁香苷提取液用AB-8大孔吸附树脂柱以1BV/h的流速吸附,然后用水洗吸附样品后的大孔吸附树脂柱,再用体积浓度为30%的乙醇溶液洗脱,采用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集紫丁香苷洗脱液;
将洗脱液浓缩成浸膏,用25ml甲醇溶解后与70g硅胶拌样制成硅胶柱,采用硅胶柱层析以氯仿∶甲醇体积比6∶1进行洗脱,用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集相应的紫丁香苷溶液;
3)结晶
将所收集的紫丁香苷溶液浓缩至浸膏状后加无水乙醇溶解,过滤,结晶,重结晶3次,得到晶体3.23g。用高效液相色谱测定其纯度为97.53%。
实施例2:
1)紫丁香苷的提取
取1Kg的白丁香(Syringa oblata Lindl.var.alba Hort.ex Rehd.)枝粉碎后用水浸泡3h,其中料液比为1∶30(g/ml),煎煮3次,每次煎煮3h,过滤,浓缩得紫丁香苷提取液;
2)紫丁香苷分离
将紫丁香苷提取液用XDA-1大孔吸附树脂柱以1BV/h的流速吸附,然后用水洗吸附样品后的大孔吸附树脂柱,再用体积浓度为20%的乙醇溶液洗脱,采用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集紫丁香苷洗脱液;
将洗脱液浓缩成浸膏,用35ml甲醇溶解后与100g硅胶拌样制成硅胶柱,采用硅胶柱层析以氯仿∶甲醇体积比9∶1进行洗脱,用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集相应的紫丁香苷溶液;
3)结晶
将所收集的紫丁香苷溶液浓缩至浸膏状后加无水乙醇溶解,过滤,结晶,重结晶2次,得到晶体7.36g。用高效液相色谱测定其纯度为97.51%。
实施例3:
1)紫丁香苷的提取
取0.75Kg的白丁香(Syringa oblata Lindl.var.alba Hort.exRehd.)枝粉碎后用水浸泡1h,其中料液比为1∶25(g/ml),煎煮3次,每次煎煮2h,过滤,浓缩得紫丁香苷提取液;
2)紫丁香苷分离
将紫丁香苷提取液用AB-8大孔吸附树脂柱以2BV/h的流速吸附,然后用水洗吸附样品后的大孔吸附树脂柱,再用体积浓度为60%的乙醇溶液洗脱,采用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集紫丁香苷洗脱液;
将洗脱液浓缩成浸膏,用30ml甲醇溶解后与90g硅胶拌样制成硅胶柱,采用硅胶柱层析以氯仿∶甲醇体积比8∶1进行洗脱,用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集相应的紫丁香苷溶液;
3)结晶
将所收集的紫丁香苷溶液浓缩至浸膏状后加无水乙醇溶解,过滤,结晶,重结晶3次,得到晶体5.12g。
参见图1用高效液相色谱测定其纯度为97.50%。具体色谱峰结果见表1。
表1紫丁香苷色谱峰结果
保留时间 | 面积 | %面积 | |
1 | 2.341 | 13746 | 0.06 |
2 | 2.665 | 37023 | 0.17 |
3 | 3.223 | 14818 | 0.07 |
4 | 3.867 | 47995 | 0.22 |
5 | 14.150 | 442173 | 1.99 |
6 | 17.997 | 21641525 | 97.50 |
表1为图1紫丁香苷高效液相色谱图的色谱峰结果。其中保留时间为17.997的峰即为紫丁香苷的色谱峰,其峰面积为21641525,占总峰面积的97.50%。即用高效液相色谱的峰面积归一化法计算所得紫丁香苷晶体的纯度为97.50%。
Claims (1)
1、紫丁香苷的提取分离方法,其特征在于:
1)紫丁香苷的提取
取0.5Kg~1Kg的白丁香枝粉碎后用水浸泡1~3h,其中料液比为1∶20~30(g/ml),煎煮2~3次,每次煎煮1~3h,过滤,浓缩,得紫丁香苷提取液;
2)紫丁香苷分离
将紫丁香苷提取液用XDA-1或AB-8大孔吸附树脂柱以1~2BV/h的流速吸附,然后用水洗吸附样品后的大孔吸附树脂柱,再用体积浓度为20%~60%的乙醇溶液洗脱,采用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集紫丁香苷洗脱液;
将洗脱液浓缩成浸膏,用25~35ml甲醇溶解后与70~100g硅胶拌样制成硅胶柱,采用硅胶柱层析以氯仿∶甲醇体积比6∶1~9∶1进行洗脱,用硅胶GF254与CMC-Na制薄层板快速定性检测,其中展开剂为氯仿∶甲醇8∶2,显色剂为体积浓度为10%的硫酸乙醇溶液,收集相应的紫丁香苷溶液;
3)结晶
将所收集的紫丁香苷溶液浓缩至浸膏状后加无水乙醇溶解,过滤,结晶,重结晶2~3次,得到纯度大于97%的紫丁香苷晶体。
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