WO2024140379A1 - 酶、生产红景天苷的菌株及生产方法 - Google Patents

酶、生产红景天苷的菌株及生产方法 Download PDF

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decarboxylase
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王会艳
张晓芬
陈彤彤
王瑞妍
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华熙生物科技股份有限公司
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Definitions

  • the present application relates to the field of biotechnology, and in particular to an enzyme, a strain for producing salidroside and a production method, specifically to the use of glucosyltransferase U8GT3 and/or tyrosine decarboxylase and/or tyrosine decarboxylase mutants from poppy in increasing the yield of salidroside synthesized by yeast, the use of tyrosine decarboxylase and/or tyrosine decarboxylase mutants from poppy in increasing the yield of tyrosol synthesized by yeast, a strain for producing salidroside, a biological material, a whole-cell catalyst, and a method for producing salidroside and/or tyrosol using yeast.
  • Salidroside is an important active substance in the Rhodiola rosea plant. It has multiple physiological activities such as improving immunity, anti-aging, anti-radiation, anti-fatigue, and anti-Alzheimer's disease. It is widely used in functional cosmetics such as whitening, anti-aging, and anti-ultraviolet radiation.
  • yeast synthesizing salidroside from scratch using glucose as a carbon source are all from 4-hydroxyphenylpyruvate (4-HPP) converted to 4-hydroxyphenylacetaldehyde (4-HPAA) by phenylpyruvate decarboxylase (ARO10) and then converted to the key precursor tyrosol by the Ehrlich pathway.
  • 4-hydroxyphenylpyruvate (4-HPP) converted to 4-hydroxyphenylacetaldehyde (4-HPAA) by phenylpyruvate decarboxylase (ARO10) and then converted to the key precursor tyrosol by the Ehrlich pathway.
  • ARO10 phenylpyruvate decarboxylase
  • the present application provides an enzyme, a strain for producing salidroside and a production method, and specifically relates to the use of glucosyltransferase U8GT3 and/or tyrosine decarboxylase and/or tyrosine decarboxylase mutants derived from poppy in increasing the yield of salidroside synthesized by yeast, the use of tyrosine decarboxylase and/or tyrosine decarboxylase mutants derived from poppy in increasing the yield of tyrosol synthesized by yeast, a strain for producing salidroside, a biological material, a whole-cell catalyst, and a method for producing salidroside and/or tyrosol using yeast.
  • the tyrosine decarboxylase (TYDC) gene from poppy is introduced to encode the 350th amino acid codon mutation to the codon encoding phenylalanine (TYDC Y350F ), and the TYDC Y350F mutant can directly catalyze the synthesis of 4-hydroxyphenylacetaldehyde (4-HPAA) from tyrosine, thereby constructing a new precursor synthesis pathway.
  • the metabolic flow can be further directed to the synthesis of the target product salidroside, thereby improving the economic benefits of fermentation production of salidroside.
  • this application involves the following aspects:
  • the tyrosine decarboxylase mutant comprises an amino acid sequence as shown in SEQ ID NO.7;
  • Phenylpyruvate decarboxylase in this application is referred to as ARO10.
  • the glucosyltransferase is derived from Rhodiola rosea.
  • nucleic acid molecule of the tyrosine decarboxylase derived from Arabidopsis thaliana is shown as SEQ ID NO.3.
  • nucleic acid molecule of the benzoate dehydrogenase TYR1 is shown as SEQ ID NO.6.
  • the present application provides the use of the poppy-derived tyrosine decarboxylase and/or the tyrosine decarboxylase mutant in increasing the yield of tyrosol synthesized by yeast.
  • the present application provides the application of the above-mentioned biomaterial in the synthesis of tyrosol.
  • the present application provides a strain for producing salidroside, comprising heterologously expressing one or more genes of a) to c) as follows in yeast;
  • a gene encoding phenylpyruvate decarboxylase ARO10 and/or a gene encoding benzoate dehydrogenase TYR1 is further heterologously expressed in yeast.
  • the present application provides a method for producing salidroside and/or tyrosol by using yeast, and producing salidroside and/or tyrosol by fermentation using the above strain, the above biological material or the above whole cell catalyst.
  • the present application provides a method for producing salidroside, comprising the following steps: synthesizing tyrosol from a carbon source; and synthesizing salidroside from tyrosol; wherein, in the step of synthesizing tyrosol from a carbon source, benzoate dehydrogenase and phenylpyruvate decarboxylase are used to synthesize tyrosol, and in the step of synthesizing salidroside from tyrosol, glucosyltransferase is used to synthesize salidroside.
  • the method for producing salidroside comprises the following steps: synthesizing tyrosol using a carbon source; and synthesizing salidroside using tyrosol; wherein, in the step of synthesizing tyrosol using a carbon source, benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase and poppy-derived tyrosine decarboxylase and/or a tyrosine decarboxylase mutant are used to synthesize tyrosol, and in the step of synthesizing salidroside using tyrosol, glucosyltransferase is used to synthesize salidroside.
  • Phenylpyruvate decarboxylase ARO10 and benzoate dehydrogenase TYR1 are described above.
  • yeast is used as the starting strain, and the above encoding benzene is introduced.
  • the nucleic acid molecules of formate dehydrogenase TYR1, phenylpyruvate decarboxylase ARO10, tyrosine decarboxylase TYDC Y350F and glucosyltransferase U8GT3 are used to construct the yeast engineering bacteria, wherein the introduced genes are all controlled by a galactose-inducible promoter.
  • the method for producing salidroside is to use engineered bacteria for fermentation.
  • the strain is an optional yeast suitable for the system of the present application, such as Saccharomyces cerevisiae, Candida, Rhodotorula, Pichia pastoris, Saccharomyces cerevisiae, Candida, wine yeast, Pasteurella, aroma yeast and Geotrichum candidum, etc., preferably, Saccharomyces cerevisiae.
  • yeast suitable for the system of the present application such as Saccharomyces cerevisiae, Candida, Rhodotorula, Pichia pastoris, Saccharomyces cerevisiae, Candida, wine yeast, Pasteurella, aroma yeast and Geotrichum candidum, etc., preferably, Saccharomyces cerevisiae.
  • the fermentation time is 90-120 h; for example, the fermentation time is 90 h, 95 h, 100 h, 105 h, 110 h, 115 h, 120 h or any range therebetween.
  • the combination of enzymes refers to the combination of benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase, and glucosyltransferase in the present application; or the combination of benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase, glucosyltransferase, and tyrosine decarboxylase.
  • the combination of enzymes is intended to represent the combination of enzymatic functions, that is, it can be a physical mixture of three enzymes or four enzyme proteins, for example, it can be a direct mixture of purchased pure enzymes, or a direct mixture of crude enzyme liquid or purified enzymes produced by gene recombination expression using molecular biological means.
  • the combination of enzymes can be a fusion protein formed by fusing three enzymes or four enzymes on the three-dimensional structure of proteins, as long as they can each perform the corresponding function.
  • it can also be a simple mixture of the fusion protein of any two enzymes and the other two enzymes, or it can be a simple mixture of the fusion protein of any three enzymes and another enzyme, or it can be a simple mixture of the fusion protein of any two enzymes and the fusion protein of another two enzymes.
  • it can also be a simple mixture of the fusion protein of any two enzymes and another enzyme, or it can be a fusion protein of any three enzymes, or it can be a fusion protein of any three enzymes.
  • the combination is a fusion protein formed by benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase, and glucosyltransferase; or
  • the combination is a combination of a fusion protein formed by benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase and glucosyltransferase; or
  • the combination is a fusion protein formed by benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase, glucosyltransferase and tyrosine decarboxylase; or
  • the combination is a fusion protein of benzoate dehydrogenase, phenylpyruvate decarboxylase, glucosyltransferase and tyrosine decarboxylase; or
  • the combination is a composition of a fusion protein formed by benzoate dehydrogenase and phenylpyruvate decarboxylase and a fusion protein formed by glucosyltransferase and tyrosine decarboxylase.
  • the enzymes of plant or microbial origin required for the synthesis pathway of salidroside were determined from different plant sources through the National Center for Bioinformation (NCBI) (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/) and literature searches, and the corresponding amino acid sequences or gene sequences were found.
  • NCBI National Center for Bioinformation
  • the obtained gene sequence was optimized by the codon optimization algorithm developed by GenScript Biotechnology Co., Ltd. and according to the corresponding yeast host, as shown in the sequence table, wherein the nucleic acid molecule of the tyrosine decarboxylase TYDC Y350F is shown in SEQ ID NO.1, and the nucleic acid molecule of the glucosyltransferase U8GT3 is shown in SEQ ID NO.4. It was directly synthesized in the universal plasmid pESC series with a galactose promoter (pGAL1 or pGAL10) to obtain a recombinant plasmid with the target gene, as shown in Table 1.
  • pGAL1 or pGAL10 galactose promoter
  • the experimental materials used in this example are primers 1-F and 1-R, and primers 2-F and 2-R.
  • Primer 2-R tcgaattcaaccctcactaaagggcggccgcatggcacctgttacaattgaaaag (SEQ ID NO.16)
  • 2 ⁇ Phanta Flash Master Mix purchased from Nanjing Novozyme Biotechnology Co., Ltd. was used as the amplification enzyme, and primers 1-F, 1-R, 2-F, and 2-R were used to clone the genes of TYR1 and Aro10, respectively.
  • the PCR reaction system and reaction procedure are shown in Tables 3 and 4.
  • the amplified genes Aro10 and TYR1 were purified and recovered using a gel recovery kit purchased from Thermo Fisher Scientific.
  • the TYR1-Gal1-Gal10-Aro10 fragment was connected to the Backbone1 fragment by Gibson ligation to construct the recombinant plasmid pESC-TYR1-Aro10; HiFi DNA Assembly Master Mix is from NEB.
  • the ligation reaction system is shown in Table 6, where the ratio of vector to insert gene is 1:2. Place the prepared ligation system in a 50°C water bath for 60 minutes. The ligation product was taken out and transformed into E. coli DH5 ⁇ .
  • the PCR product was verified by agarose gel electrophoresis, and a single colony containing the target band was selected and inoculated into LB medium containing ampicillin (100 mg/L) and cultured overnight at 37°C and 220 rpm.
  • the corresponding plasmid was extracted using a plasmid extraction kit purchased from Tiangen Biochemical Technology (Beijing) Co., Ltd. and delivered to Suzhou Genewise for gene sequencing verification.
  • ARO10 and TYR1 were integrated into the UAR3 defective position of Saccharomyces cerevisiae (denoted as CEN.PK2- ⁇ URA3::ARO10-TYR1, and the yeast was named SAD1); on the basis of this chassis bacteria (SAD1), U8GT3 was integrated into the GAL80 site (denoted as SAD2- ⁇ GAL80::U8GT3, and the yeast was named SAD2); on the basis of this chassis bacteria (SAD2), TYDC was integrated Y350F was integrated into the HIS3 site (denoted as SAD2- ⁇ HIS3::TYDC Y350F , and the yeast was named SAD3); based on this base strain (SAD2), tyrosine decarboxylase from poppy (abbreviated as TYDC) was integrated into the HIS3 site (denoted as SAD2- ⁇ HIS3::TYDC, and the yeast was named SAD4); based on this base strain (SAD2), tyros

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Abstract

提供了葡萄糖基转移酶U8GT3和/或罂粟来源的酪氨酸脱羧酶或其突变体在酵母合成红景天苷中的应用；还提供了罂粟来源的酪氨酸脱羧酶或其突变体在酵母合成酪醇中的应用。所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶及其突变体的氨基酸序列分别如SEQ ID NOs：7-8所示、编码基因的核苷酸序列分别如SEQ ID NOs：1-2所示；葡萄糖基转移酶U8GT3的氨基酸序列如SEQ ID NO：10所示、编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：4所示。

Description

酶、生产红景天苷的菌株及生产方法 技术领域
本申请涉及生物技术领域，尤其涉及一种酶、生产红景天苷的菌株及生产方法，具体涉及葡萄糖基转移酶U8GT3和/或罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成红景天苷产量方面的应用、罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成酪醇产量方面的应用、一种用于生产红景天苷的菌株、生物材料、全细胞催化剂、利用酵母生产红景天苷和/或酪醇的方法。
背景技术
红景天苷(Salidroside)是红景天植物中的重要活性物质，具有提高免疫力、抗衰老、抗辐射、抗疲劳、抗老年痴呆等多种生理活性，被广泛用于美白、抗衰、抗紫外线辐射等功效性化妆品中。
目前，市场上的红景天苷主要依赖于从高寒无污染地带的珍稀野生植物红景天中提取，但其在植物中的含量仅有0.5％～0.8％，提取工艺相对复杂，同时也受季节气候限制，时间劳动力成本高。现阶段的化学合成法也因制备过程繁琐，难以实现产业化。面对日益增加的市场需求，利用微生物细胞工厂生产红景天苷成为更具潜力的选择。
现阶段报到和公开的关于酵母菌以葡萄糖为碳源从头合成红景天苷均是由4-羟基苯基丙酮酸酯(4-HPP)经苯丙酮酸脱羧酶(ARO10)转化为4-羟基苯乙醛(4-HPAA)后经艾利希(Ehrlich)途径合成关键前体酪醇(Tyrosol)转化而来。虽可经过一系列代谢途径优化，提高目标产物的代谢通量，但对工业化生产来说，其前体的代谢通量仍需进一步提升。
因此，设计和开发新的前体合成途径，同时解耦酵母工程菌的细胞生长和红景天苷的产物合成，将较大程度地推动生物法合成红景天苷的工业化应用，并提高发酵生产红景天苷的经济效益。
发明内容
针对现有技术存在的不足，本申请提供一种酶、生产红景天苷的菌株及生产方法，具体涉及葡萄糖基转移酶U8GT3和/或罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成红景天苷产量方面的应用、罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成酪醇产量方面的应用、一种用于生产红景天苷的菌株、生物材料、全细胞催化剂、利用酵母生产红景天苷和/或酪醇的方法。
本申请的目的在于克服现有的技术困难，首先，通过敲除酿酒酵母菌中的GAL80基因并结合半乳糖诱导型启动子，实现酿酒工程菌的细胞生长和红景天苷产物合成的解耦，从而减轻目标途径对工程菌造成的代谢压力，从而实现红景天苷的高效快速生产。其次，引入罂粟(Papaver somniferum)来源的酪氨酸脱羧酶(TYDC)基因编码第350位氨基酸的密码子突变为编码苯丙氨酸的密码子(TYDCY350F)，该TYDCY350F突变体能直接催化酪氨酸合成4-羟基苯乙醛(4-HPAA)，从而构建一条新的前体合成途径，结合前述的新旧两条代谢途径，能进一步将代谢流流向目标产物红景天苷的合成，提高发酵生产红景天苷的经济效益。
具体来说，本申请涉及如下方面：
1.葡萄糖基转移酶U8GT3和/或罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成红景天苷产量方面的应用。
2.罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成酪醇产量方面的应用。
3.根据项1或2所述的应用，其中，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列。
4.根据项1或2或3所述的应用，其中，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
5.一种用于生产红景天苷的菌株，其中，所述菌株包含编码葡萄糖基转移酶 U8GT3的基因和酪氨酸脱羧酶的基因，
优选地，所述的酪氨酸脱羧酶的基因为编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的基因或编码罂粟来源酪氨酸脱羧酶突变体的基因；
更优选地，
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
所述罂粟来源酪氨酸脱羧酶突变体为酪氨酸脱羧酶的第350位的酪氨酸突变为苯丙氨酸，其包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列，
最优选地，所述酵母为酿酒酵母。
6.根据项5所述的菌株，其中，
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
7.根据项5或6所述的菌株，其中，
还进一步对酵母异源表达了编码苯丙酮酸脱羧酶ARO10的基因和/或编码苯甲酸脱氢酶TYR1的基因；
优选地，
所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10包含如SEQ ID NO.11所示氨基酸序列；
所述苯甲酸脱氢酶TYR1包含如SEQ ID NO.12所示氨基酸序列；
进一步优选地，
所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10包含如SEQ ID NO.5所示核酸分子；
所述苯甲酸脱氢酶TYR1包含如SEQ ID NO.6所示核酸分子。
8、生物材料，其中，所述生物材料为下述任一种：
A1)编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的核酸分子和/或酪氨酸脱羧酶突变体的核酸分子；
A2)含有A1)所述核酸分子的表达盒；
A3)含有A1)所述核酸分子的重组载体、或含有A2)所述表达盒的重组载体；
优选地，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
进一步优选地，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子。
9、生物材料，其中，所述生物材料为下述任一种：
B1)编码葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子；
B2)含有B1)所述核酸分子的表达盒；
B3)、含有B1)所述核酸分子的重组载体、或含有B2)所述表达盒的重组载体；
优选地，
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
进一步优选地，
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
10.一种全细胞催化剂，其中，含有项5-7任一项所述的菌株或项8-9任一项所述的生物材料。
11.一种利用酵母生产红景天苷和/或酪醇的方法，其中，利用项5-8任一项所述的菌株、项9-10任一项所述的生物材料或项11所述全细胞催化剂发酵生产红景天苷和/或酪醇；
优选地，
其包括：在发酵培养至OD600为8～15时，加入半乳糖；
进一步优选地，半乳糖的浓度为1-4g/L；
更优选地，所述的发酵时间为90-120h。
最优选地，所述菌株酿酒酵母。
12.一种生产红景天苷的方法，其中，包括如下步骤：
利用碳源合成酪醇；以及
利用酪醇合成红景天苷；
其中，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了苯甲酸脱氢酶和苯丙酮酸脱羧酶来合成酪醇，
以及在利用酪醇合成红景天苷的步骤中使用了葡萄糖基转移酶来合成红景天苷，
优选地，
所述葡萄糖基转移酶来源于红景天(Rhodiola rosea)；
更优选地，
所述葡萄糖基转移酶包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子；
所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列。
13根据项12的方法，
所述方法还包括，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体来合成酪醇；
优选地，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
更优选地，
所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
本申请效果
(1)本申请实现了微生物生长与产物合成的解耦，降低了目标途径对工程菌的代谢压力，在提升细胞密度的同时，进一步提高生产效率。
(2)本申请引入酪氨酸脱羧酶突变体TYDCY350F，设计并构建了一条新的前体合成途径，将代谢流拉向目标产物红景天苷的合成，提高发酵生产红景天苷的经济效益。
(3)本申请的酵母工程菌可通过代谢葡萄糖、甲醇、半乳糖、甘油或海藻糖等直接合成红景天苷，与传统植物提取相比，不受气候地理等条件限制，环境友好，发酵底物普遍且价廉，满足国家绿色生物制造的战略需求。且无潜在致病因子，产品的质量与安全性得到保证，适用于医药、化妆品等领域。
附图说明
图1为红景天苷从头合成菌株的发酵结果图；
图2红景天苷标准品与重组菌株生产红景天苷在同一条件下的液相色谱图。
具体实施方式
下面结合实施例进一步说明本申请，应当理解，实施例仅用于进一步说明和阐释本申请，并非用于限制本申请。
除非另外定义，本说明书中有关技术的和科学的术语与本领域内的技术人员所通常理解的意思相同。虽然在实验或实际应用中可以应用与此间所述相似或相同的方法和材料，本文还是在下文中对材料和方法做了描述。在相冲突的情况下，以本说明书包括其中定义为准，另外，材料、方法和例子仅供说明，而不具限制性。以下结合具体实施例对本申请作进一步的说明，但不用来限制本申请的范围。
《酶》
苯甲酸脱氢酶来源于酿酒酵母，可以催化预苯酸生成4-羟基苯丙酮酸酯，从而参与酪氨酸合成。过表达该苯甲酸脱氢酶可以促进酪氨酸合成从而促进代谢流向红景天苷。
本申请中的苯甲酸脱氢酶，简称TYR1。
苯丙酮酸脱羧酶来源于酿酒酵母，催化苯丙酮酸脱羧生成苯乙醛，这是艾利希途径的第一个特定步骤。过表达该苯丙酮酸脱羧酶可以提高酿酒酵母中酪醇水平从而提高红景天苷前体物质积累。
本申请中的苯丙酮酸脱羧酶，简称ARO10。
葡萄糖基转移酶来源于红景天，在该酶的催化作用下，尿苷二磷酸葡萄糖(uri-dine diphosphate glucose，UDPG)作为糖基化供体，酪醇发生糖苷化生成红景天苷。
本申请中的葡萄糖基转移酶，为UDP-葡萄糖基转移酶，简称U8GT3或RvU8G3。
酪氨酸脱羧酶是一种磷酸吡哆醛(PLP)依赖型的脱羧酶，来源于罂粟，酪氨酸在该酶作用下催化下生成酪胺(tyramine)，在单氨氧化酶催化生成4-羟基苯乙醛(4-hydroxyphenylacetaldehyde，4-HPAA)；4-HPAA在4-羟苯醇脱氢酶(p-hydroxybenzyl alcoholdehydrogenase，areB)还原合成红景天苷的苷元酪醇。
在本申请的一个实施方式中，酪氨酸脱羧酶为罂粟来源的酪氨酸脱羧。在本申请的一个实施方式中，酪氨酸脱羧酶为本申请的酪氨酸脱羧酶突变体。
本申请的酪氨酸脱羧酶突变体，简称TYDCY350F，是指原始的第350位的酪氨酸突变为苯丙氨酸，其作用由催化酪氨酸脱羧形成酪胺转变为催化酪氨酸直接生成4-羟基苯乙醛。
《DNA》
在本申请中，所述葡萄糖基转移酶来源于红景天(Rhodiola rosea)。
在本申请中，所述葡萄糖基转移酶编码基因的GeneBank号为AUI41117。
在本申请的一些实施方式中，所述葡萄糖基转移酶U8GT3氨基酸序列如SEQ ID NO.10所示。
在本申请的一些实施方式中，所述葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子如SEQ ID NO.4所示。
在本申请中，所述酪氨酸脱羧酶来源于罂粟(Papaver somniferum)。
在本申请的一些实施方式中，所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的氨基酸序列如SEQ ID NO.8所示。
在本申请的一些实施方式中，所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的核酸分子如SEQ ID NO.2所示。在本申请中，所述酪氨酸脱羧酶突变体为第350位的酪氨酸突变为苯丙氨酸。
在本申请的一些实施方式中，所述酪氨酸脱羧酶突变体的氨基酸序列如SEQ ID NO.7所示。
在本申请的一些实施方式中，所述酪氨酸脱羧酶突变体的核酸分子如SEQ ID NO.1所示。
在本申请的一些实施方式中，所述酪氨酸脱羧酶来源于拟南芥(Arabidopsis thaliana)，其中，拟南芥来源的酪氨酸脱羧酶的氨基酸序列如SEQ ID NO.9所示。
在本申请的一些实施方式中，所述拟南芥来源的酪氨酸脱羧酶的核酸分子如SEQ ID NO.3所示。
在本申请中，所述苯丙酮酸脱羧酶编码基因的GeneBank号为851987。
在本申请的一些实施方式中，所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10的氨基酸序列如SEQ ID NO.11所示。
在本申请的一些实施方式中，所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10的核酸分子如SEQ ID NO.5所示。
在本申请中，所述苯甲酸脱氢酶编码基因的GeneBank号为852464。
在本申请的一些实施方式中，所述苯甲酸脱氢酶TYR1的氨基酸序列如SEQ ID NO.12所示。
在本申请的一些实施方式中，所述苯甲酸脱氢酶TYR1的核酸分子如SEQ ID NO.6所示。
《生物材料》
本申请提供一种生物材料，所述生物材料为下述任一种：
A1)编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的核酸分子和/或酪氨酸脱羧酶突变体的核酸分子；
A2)含有A1)所述核酸分子的表达盒：
A3)含有A1)所述核酸分子的重组载体、或含有A2)所述表达盒的重组载体；
A4)含有A1)所述核酸分子的重组微生物、或含有A2)所述表达盒的重组微生物、或含有A3)所述重组载体的重组微生物，优选重组微生物为酵母。
罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的描述见上文。
酪氨酸脱羧酶突变体的描述见上文。
本申请提供一种生物材料，所述生物材料为下述任一种：
B1)编码葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子，所述葡萄糖基转移酶来源于红景天(Rhodiola rosea)；
B2)含有B1)所述核酸分子的表达盒：
B3)含有B1)所述核酸分子的重组载体、或含有B2)所述表达盒的重组载体；
B4)含有B1)所述核酸分子的重组微生物、或含有B2)所述表达盒的重组微生物、或含有B3)所述重组载体的重组微生物，优选重组微生物为酵母。
葡萄糖基转移酶U8GT3的描述见上文。
《生产过程》
本申请提供了上述葡萄糖基转移酶U8GT3和/或上述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或上述酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成红景天苷产量方面的应用。
本申请提供了上述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或上述酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成酪醇产量方面的应用。
本申请提供了上述生物材料在合成酪醇中的应用。
本申请提供了一种用于生产红景天苷的菌株，包含对酵母进行如下a)～c)一个或多个基因异源表达；
a)编码葡萄糖基转移酶U8GT3的基因；
b)编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的基因；
c)编码酪氨酸脱羧酶突变体的基因；
葡萄糖基转移酶U8GT3、罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和酪氨酸脱羧酶突变体的描述见上文。
在本申请的一些实施方式中，还进一步对酵母异源表达了编码苯丙酮酸脱羧酶ARO10的基因和/或编码苯甲酸脱氢酶TYR1的基因。
苯丙酮酸脱羧酶ARO10和苯甲酸脱氢酶TYR1的描述见上文。
本申请提供了一种全细胞催化剂，含有上述菌株或上述生物材料。
本申请提供了一种利用酵母生产红景天苷和/或酪醇的方法，利用上述菌株、上述生物材料或上述全细胞催化剂发酵生产红景天苷和/或酪醇
本申请提供了一种生产红景天苷的方法，包括如下步骤：利用碳源合成酪醇；以及利用酪醇合成红景天苷；其中，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了苯甲酸脱氢酶和苯丙酮酸脱羧酶来合成酪醇，以及在利用酪醇合成红景天苷的步骤中使用了葡萄糖基转移酶来合成红景天苷。
本申请探究了酪氨酸脱羧酶TYDC和酪氨酸脱酸酶突变体TYDCY350F对前体合成的影响。酪氨酸脱羧酶突变体TYDCY350F能极大程度地提高前体4-HPAA积累，而酪氨酸脱羧酶TYDC是酪氨酸生成副产物酪胺，降低了前体的合成。
在本申请的一些实施方式中，所述生产红景天苷的方法，包括如下步骤：利用碳源合成酪醇；以及利用酪醇合成红景天苷；其中，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶和罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体来合成酪醇，以及在利用酪醇合成红景天苷的步骤中使用了葡萄糖基转移酶来合成红景天苷。
所述酪氨酸脱羧酶TYDCY350F突变体是指其第350位的酪氨酸突变为苯丙氨酸，其作用由催化酪氨酸脱羧形成酪胺转变为催化酪氨酸直接生成4-羟基苯乙醛。
葡萄糖基转移酶U8GT3、罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和酪氨酸脱羧酶突变体的描述见上文。
苯丙酮酸脱羧酶ARO10和苯甲酸脱氢酶TYR1的描述见上文。
在本申请的一些实施方式中，以酵母作为出发菌株，通过导入上述编码苯 甲酸脱氢酶TYR1、苯丙酮酸脱羧酶ARO10、酪氨酸脱羧酶TYDCY350F和葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子，构建述酵母工程菌，其中，导入的基因均由半乳糖诱导型启动子控制。
在本申请的一些实施方式中，所述生产红景天苷的方法为利用工程菌进行发酵。
在本申请的一些实施方式中，所述菌株为适用于本申请体系的任选酵母菌，例如酿酒酵母、假丝酵母、红酵母、毕赤酵母、啤酒酵母、假丝酵母、葡萄酒酵母、巴氏酵母、生香酵母和白地霉等，优选，酿酒酵母。
在本申请的一些实施方式中，在发酵培养至OD600为8～15时，加入半乳糖；例如，发酵培养OD600可以为8、9、10、11、12、13、14、15或其之间的任意范围。在本申请的一些实施方式中，半乳糖的浓度为1-4g/L；例如，半乳糖的浓度可以为1g/L、2g/L、3g/L、4g/L或其之间的任意范围。
在本申请的一些实施方式中，发酵时间为90‐120h；例如，发酵时间为90h、95h、100h、105h、110h、115h、120h或其之间的任意范围。
本申请提供了一种酶的组合，所述酶的组合包括：苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶；或者，所述酶的组合包括：苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶。
酶的组合，是指本申请中苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶的组合；或者苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶的组合，在本申请中，酶的组合意在表示酶学功能上的组合，即可以是三种酶或四种酶蛋白质的物理混合，例如可以是购买的纯品酶的直接混合，或者是利用分子生物学手段进行基因重组表达生产的粗酶液或经纯化的酶的直接混合。酶的组合可以是将三种酶或四种酶在蛋白质三维结构上融合形成的融合蛋白，只要其能够各自发挥相应的功能即可。同理也可以是任意两种酶的融合蛋白和另外两种酶的简单混合，或者可以是任意三种酶的融合蛋白和另外一种酶的简单混合，也可以是任意两种酶的融合蛋白和另外两种酶的融合蛋白的简单混合。或者也可以是任意两种酶的融合蛋白和另外一种酶的简单混合，或者可以是任意三种酶的融合蛋白，也可以是任意三种酶的融合蛋白。
同样在本申请中对于利用分子生物学手段进行基因重组表达生产酶的过程没有任何限定，可以采用任何已知的手段。在本申请中，可以利用同样的宿主， 利用一个质粒同时表达四种酶，或三种酶的融合蛋白，或者也可以利用不同的宿主分别生产其中的一种或两种酶或酶的融合蛋白。
在本申请的一些实施方式中，所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶形成的融合蛋白；或者
所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶形成的融合蛋白与葡萄糖基转移酶的组合物；或者
所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶形成的融合蛋白；或者
所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶形成的融合蛋白和酪氨酸脱羧酶的组合物；或者
所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶形成的融合蛋白与葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶的组合物；或者
所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶形成的融合蛋白与葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶形成的融合蛋白的组合物。
在本申请的一些实施方式中，所述组合是用于苯甲酸脱氢酶的发酵粗酶液、苯丙酮酸脱羧酶的发酵粗酶液和葡萄糖基转移酶的发酵粗酶液的混合物。
在本申请的一些实施方式中，所述组合是用于苯甲酸脱氢酶的发酵粗酶液、苯丙酮酸脱羧酶的发酵粗酶液、葡萄糖基转移酶的发酵粗酶液、和酪氨酸脱羧酶的发酵粗酶液的混合物。
在本申请的一些实施方式中，所述组合是苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶、葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶形成的融合蛋白；或者苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶的融合蛋白与葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶的组合物；或者苯甲酸脱氢酶、苯丙酮酸脱羧酶的融合蛋白与葡萄糖基转移酶和酪氨酸脱羧酶的融合蛋白的组合物。
本申请提供了一种全细胞催化剂，含有上述基因工程菌或上述基因工程菌的组合。
本申请提供了一种生产红景天苷的方法，包括上述的酶的组合。
实施例
实施例1克隆红景天苷合成所需的基因。
红景天苷合成途径中所需的植物或微生物来源的酶，通过美国国家生物信息中心NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)以及文献检索确定不同的植物来源，并找到对应的氨基酸序列或基因序列。
获得的基因序列由金斯瑞生物科技有限公司开发的密码子优化算法、并依据相应的酵母宿主进行密码子优化，具体如序列表所示，其中，所述酪氨酸脱羧酶TYDCY350F的核酸分子如SEQ ID NO.1所示，所述葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子如SEQ ID NO.4所示。并直接合成在带有半乳糖启动子(pGAL1或者pGAL10)的通用质粒pESC系列，得到连有目的基因的重组质粒，详见表1。
表1菌种构建所用质粒
实施例2构建工程菌。
2.1实验材料
本实例中所用实验材料为引物1-F和1-R，引物2-F和2-R。
引物1-F:ttaacgtcaaggagaaaaaaccccggatccatggtatcagaggataagattgagc(SEQ ID NO.13)
引物1-R:tagctagccgcggtaccaagcttactcgagttatgtatttcttttttcagcggcc(SEQ ID NO.14)
引物2-F:tccttgtaatccatcgatactagtgcggccgcctattttttatttcttttaagtgccgct(SEQ ID NO.15)
引物2-R:tcgaattcaaccctcactaaagggcggccgcatggcacctgttacaattgaaaag(SEQ ID NO.16)
2.2 pESC-TYR1-Aro10重组质粒构建
1)载体片段的构建
按表2所示的酶切体系同时使用购于NEB公司的内切酶NotI和BamHI处理载体pESC，将配置好的酶切体系置于37℃水浴锅中静置1小时。利用购于赛默 飞世尔科技公司的凝胶回收试剂盒对完成酶切后的骨架及启动子进行DNA纯化回收，获得纯化后的Backbone1片段和Gal1-Gal10双启动子片段。
表2酶切体系
2)目的基因的扩增及回收
表3 PCR反应体系(2×Phanta Flash Master Mix)
表4 PCR反应程序(2×Phanta Flash Master Mix)

使用购于南京诺唯赞生物科技有限公司的2×Phanta Flash Master Mix为扩增酶，分别使用引物1-F、引物1-R、引物2-F、引物2-R、对TYR1和Aro10进行基因克隆，PCR反应体系与反应程序如表3和表4所示。利用购于赛默飞世尔科技公司的凝胶回收试剂盒对完成扩增后的基因Aro10和TYR1进行DNA纯化回收。
3)SOE-PCR法的体外多片段连接
表5 SOE-PCR反应体系(2×Phanta Flash Master Mix)
利用SOE-PCR法将纯化获得的TYR1、Aro10和Gal1-Gal10启动子片段进行连接扩增。以获得的TYR1、Aro10和Gal1-Gal10启动子片段为模板，使用购于南京诺唯赞生物科技有限公司的2×Phanta Flash Master Mix为扩增酶，分别使用引物1-F和2-R进行PCR，PCR反应体系见表5，PCR反应程序见表4。利用购于赛默飞世尔科技公司的凝胶回收试剂盒对连接扩增获得的基因TYR1-Gal1-Gal10-Aro10进行DNA纯化回收。
4)Gibson连接
通过Gibson连接的方法将TYR1-Gal1-Gal10-Aro10片段与Backbone1片段进行连接，构建重组质粒pESC-TYR1-Aro10；使用的HiFi DNA Assembly Master Mix来源于NEB公司，连接反应体系如表6所示，其中载体与插入基因的比例为1：2。将配制完成的连接体系放入50℃水浴锅中，60分钟后 取出将连接产物转化到大肠杆菌DH5α中。
表6 Gibson连接体系
5)大肠杆菌化学转化
将大肠杆菌感受态细胞DH5α从超低温冰箱中取出，置于冰上静置融化。将10μL的Gibson连接产物加入融化后的感受态细胞中，轻弹混匀，冰浴30分钟。在42℃水浴锅中热激90秒，取出后冰浴2分钟。加入200μL LB液体培养基，37℃，220rpm培养60分钟。在超净台中取适量菌液涂布到含有氨苄青霉素(100mg/L)的LB固体培养基中，在37℃恒温培养箱中倒置过夜培养。
6)测序验证
待上述平板上长出单菌落后，使用菌落PCR方法对以上重组质粒进行筛选鉴定。选用购于南京诺唯赞生物科技有限公司的2×Rapid Taq Master Mix为扩增酶，菌落PCR反应体系见表7。配制完成后，在超净台中用无菌枪头挑取大肠杆菌单菌落10μL无菌水中，充分溶解后取1μL作为模板，加入菌落PCR反应体系中，按表8的反应程序进行基因扩增。
表7 PCR反应体系(2×Rapid Taq Master Mix)

表8 PCR反应程序(2×Rapid Taq Master Mix)
通过琼脂糖凝胶电泳对PCR产物进行验证，选取含有目的条带的单菌落，接种于含有氨苄青霉素(100mg/L)的LB培养基中，于37℃、220rpm培养过夜。使用购于天根生化科技(北京)有限公司的质粒小提试剂盒提取对应质粒，并交付给苏州金唯智公司完成基因测序验证。
2.2 SAD1、SAD2、SAD3、SDA4、SAD5菌株构建
使用表9中的基因分别以整合质粒为模板，利用PCR方法扩增用于酵母基因组整合的线性化片段(反应体系及程序见表3和4)，通过琼脂糖凝胶电泳及胶回收获得含有整合位点同源臂的目的基因片段，之后按照应用实例1中所述方法进行酵母转化，转化后的酵母利用目的片段上整合位点左右各40bp的同源臂与底盘宿主基因组进行同源重组，将含有融合基因的表达盒整合在酵母底盘基因组的目的位点，ARO10,TYR1整合至酿酒酵母UAR3缺陷型位置(记为CEN.PK2-ΔURA3::ARO10-TYR1，酵母命名为SAD1)；在此底盘菌(SAD1)基础上U8GT3整合至GAL80位点(记为SAD2-ΔGAL80::U8GT3，酵母命名为SAD2)；在此底盘菌(SAD2)基础上整合TYDCY350F至HIS3位点(记为SAD2-ΔHIS3::TYDCY350F，酵母命名为SAD3)；在此底盘菌(SAD2)基础上整合罂粟来源的酪氨酸脱羧酶(简称TYDC)至HIS3位点(记为SAD2-ΔHIS3::TYDC，酵母命名为SAD4)；在此底盘菌(SAD2)基础上整合拟南芥来源的酪氨酸脱羧酶(简称AtTYDC)至HIS3位点(记为SAD2-ΔHIS3::AtTYDC，酵母命名为SAD5)。
酵母转化子的PCR验证
将转化后涂布的平板倒置于30℃培养2-3天，待平板长出单克隆后，挑取固体平板上生长的单菌落，接种于SC液体培养基中，30℃、220rpm培养过夜。使用酵母基因组提取试剂盒，对酵母过夜培养物进行基因组的提取，作为PCR验证的模板进行验证，PCR的方法和程序见表3和表4。对平板上的转化子，挑点破胞，并选取基因组上的两条引物(详见表10)利用PCR验证是否将目的基因整合到基因组上。若条带大小正确且测序结果无误，则说明基因组整合成功。其中
表9基因组整合异源基因所用引物
表10基因组验证异源基因所用引物

实施例3
将从头合成红景天苷的酿酒酵母工程菌进行摇瓶发酵。SAD1、SAD2、SAD3、SDA4、SAD5都是在相同的条件下进行的培养。首先在YPD的平板上划线得到单菌落，再接种于50mL YPD液体培养基中，在30℃、250rpm条件下，SAD1、SAD2、SAD3、SDA4、SAD5均培养至菌体OD600达到6左右，再以初始OD600＝0.4转接于20mL YPD液体培养基中(葡萄糖浓度为2％)。待OD600达到12左右，加入半乳糖的浓度需稳定在2g/L，整个发酵周期大概维持在120h之间。
表11各菌种生产红景天苷摇瓶中的产量
取1mL发酵上清用0.22μm的有机系滤头过滤。再用岛津LC-20A(Shimadzu)，HyPURITYTM C18 HPLC(250mm×4.6mm，3μm，Ultimate LP-C18)色谱柱，对10μL的样品进行分离。其中，流动相A相为0.1％的甲酸水溶液，流动相B相为0.1％的乙腈溶液。各中间体和产物采用8％流动相B相，92％流动相A相等度洗脱的方式进行分离，利用紫外检测器检测224nm波长的红景天苷。
结果如图1和图2所示，通过SAD3菌株与SDA4和SAD5菌株发酵生产红景天苷产量，可以看出，菌株中异源表达TYDCY350F和RvU8G3，红景天苷产量可以达到803.1mg/L，跟异源表达拟南芥来源的AtTYDC和RvU8G3的SDA4和罂粟来源的TYDC和RvU8G3的SAD5相比，产量提升了18％和22％，极大的提高了红景天苷的产量。
虽然本案已以实施例揭露如上然其并非用以限定本案，任何所属技术领域中具有通常知识者，在不脱离本案的精神和范围内，当可作些许的更动与润饰，故本案的保护范围当视后附的专利申请范围所界定者为准。
序列表








Claims (13)

  1. 葡萄糖基转移酶U8GT3和/或罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成红景天苷产量方面的应用。
  2. 罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体在提高使用酵母合成酪醇产量方面的应用。
  3. 根据权利要求1或2所述的应用，其中，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
    所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列。
  4. 根据权利要求1或2或3所述的应用，其中，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
  5. 一种用于生产红景天苷的菌株，其中，所述菌株包含编码葡萄糖基转移酶U8GT3的基因和酪氨酸脱羧酶的基因，
    优选地，所述的酪氨酸脱羧酶的基因为编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的基因或编码罂粟来源酪氨酸脱羧酶突变体的基因；
    更优选地，
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
    所述罂粟来源酪氨酸脱羧酶突变体为酪氨酸脱羧酶的第350位的酪氨酸突变为苯丙氨酸，其包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列，
    最优选地，所述酵母为酿酒酵母。
  6. 根据权利要求5所述的菌株，其中，
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
  7. 根据权利要求5或6所述的菌株，其中，
    还进一步对酵母异源表达了编码苯丙酮酸脱羧酶ARO10的基因和/或编码苯 甲酸脱氢酶TYR1的基因；
    优选地，
    所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10包含如SEQ ID NO.11所示氨基酸序列；
    所述苯甲酸脱氢酶TYR1包含如SEQ ID NO.12所示氨基酸序列；
    进一步优选地，
    所述苯丙酮酸脱羧酶ARO10包含如SEQ ID NO.5所示核酸分子；
    所述苯甲酸脱氢酶TYR1包含如SEQ ID NO.6所示核酸分子。
  8. 生物材料，其中，所述生物材料为下述任一种：
    A1)编码罂粟来源的酪氨酸脱羧酶的核酸分子和/或酪氨酸脱羧酶突变体的核酸分子；
    A2)含有A1)所述核酸分子的表达盒；
    A3)含有A1)所述核酸分子的重组载体、或含有A2)所述表达盒的重组载体；
    优选地，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
    进一步优选地，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子。
  9. 生物材料，其中，所述生物材料为下述任一种：
    B1)编码葡萄糖基转移酶U8GT3的核酸分子；
    B2)含有B1)所述核酸分子的表达盒；
    B3)、含有B1)所述核酸分子的重组载体、或含有B2)所述表达盒的重组载体；
    优选地，
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
    进一步优选地，
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
  10. 一种全细胞催化剂，其中，含有权利要求5-7任一项所述的菌株或权利要求8-9任一项所述的生物材料。
  11. 一种利用酵母生产红景天苷和/或酪醇的方法，其中，利用权利要求5-8任一项所述的菌株、权利要求9-10任一项所述的生物材料或权利要求11所述全 细胞催化剂发酵生产红景天苷和/或酪醇；
    优选地，
    其包括：在发酵培养至OD600为8～15时，加入半乳糖；
    进一步优选地，半乳糖的浓度为1-4g/L；
    更优选地，所述的发酵时间为90-120h；
    最优选地，所述菌株酿酒酵母。
  12. 一种生产红景天苷的方法，其中，包括如下步骤：
    利用碳源合成酪醇；以及
    利用酪醇合成红景天苷；
    其中，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了苯甲酸脱氢酶和苯丙酮酸脱羧酶来合成酪醇，
    以及在利用酪醇合成红景天苷的步骤中使用了葡萄糖基转移酶来合成红景天苷
    优选地，
    所述葡萄糖基转移酶来源于红景天(Rhodiola rosea)；
    更优选地，
    所述葡萄糖基转移酶包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子；
    所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列。
  13. 根据权利要求12的方法，
    所述方法还包括，在利用碳源合成酪醇的步骤中使用了罂粟来源的酪氨酸脱羧酶和/或酪氨酸脱羧酶突变体来合成酪醇；
    优选地，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.7所示氨基酸序列；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.8所示氨基酸序列；
    所述的葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.10所示氨基酸序列；
    更优选地，
    所述酪氨酸脱羧酶突变体包含如SEQ ID NO.1所示核酸分子；
    所述罂粟来源的酪氨酸脱羧酶包含如SEQ ID NO.2所示核酸分子；
    所述葡萄糖基转移酶U8GT3包含如SEQ ID NO.4所示核酸分子。
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