WO2024070504A1 - 血液保存用組成物及び血液採取容器 - Google Patents

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WO2024070504A1
WO2024070504A1 PCT/JP2023/032121 JP2023032121W WO2024070504A1 WO 2024070504 A1 WO2024070504 A1 WO 2024070504A1 JP 2023032121 W JP2023032121 W JP 2023032121W WO 2024070504 A1 WO2024070504 A1 WO 2024070504A1
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WO
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blood
weight
storage composition
collection container
less
Prior art date
Application number
PCT/JP2023/032121
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English (en)
French (fr)
Inventor
エムディ シャハダット ホセイン
邦哉 駒井
嵩也 内山
智雅 井上
Original Assignee
積水メディカル株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 積水メディカル株式会社 filed Critical 積水メディカル株式会社
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA

Definitions

  • the present invention relates to a blood storage composition that is mixed with blood.
  • the present invention also relates to a blood collection container that uses the blood storage composition.
  • cfDNA cell-free DNA
  • Clinical testing generally involves the following steps (1) to (3): (1) Blood is collected in a blood collection container that contains a composition that includes an anticoagulant. (2) The blood is separated into a blood cell layer and a plasma layer by centrifuging the blood collection container in which the blood has been collected. (3) The plasma is collected and a test is performed using the cfDNA contained in the plasma as a sample.
  • Patent Document 1 describes a method for stably collecting cfDNA using a blood collection device in which a composition containing EDTA, a specific urea, and glycine is housed in a container.
  • Patent Document 2 describes a method for preserving cfDNA using a blood collection tube in which a composition containing polyethylene glycol (PEG) and EDTA is contained. Patent Document 2 describes that the composition stabilizes the blood, thereby preventing genomic DNA from being mixed into the plasma.
  • PEG polyethylene glycol
  • a certain amount of time may pass before a blood sample taken from a patient is subjected to testing. For example, if the sample is transported to a testing facility, or if there is a large number of samples waiting to be tested at the testing facility, several days may pass between when the blood is taken and when the sample is subjected to testing. For this reason, in clinical settings, the blood may be mixed with a composition containing an anticoagulant and stored in a blood collection container for several days, or the blood may be stored for several days after the blood cell layer and plasma layer are separated.
  • blood cells may be destroyed or killed during storage, causing genomic DNA (gDNA) to leak out of blood cells such as white blood cells, resulting in DNA derived from blood cells contaminating the plasma layer.
  • genomic DNA gDNA
  • the test results are likely to fluctuate if a relatively large amount of DNA derived from blood cells is mixed into the plasma layer.
  • the water in the plasma is gradually absorbed by blood cells, and the amount of plasma after storage may decrease compared to the amount of plasma before storage. In this case, it may not be possible to secure the amount of plasma necessary for testing or retesting.
  • the object of the present invention is to provide a blood storage composition that can suppress the intrusion of DNA derived from blood cells into the plasma layer and suppress the decrease in the amount of plasma after storage compared to the amount of plasma before storage.
  • Another object of the present invention is to provide a blood collection container that uses the above blood storage composition.
  • a blood storage composition comprising an anticoagulant (A), a compound (B) which is a disaccharide, a disaccharide derivative, a polysaccharide or a polysaccharide derivative, and a polyether compound (C) which is polyethylene oxide or polyethylene glycol.
  • the compound (B) includes a disaccharide and a polysaccharide or a polysaccharide derivative.
  • the compound (B) includes trehalose or sucrose and dextran or hydroxyethyl starch.
  • the polyether compound (C) contains polyethylene glycol.
  • the blood storage composition contains an apoptosis inhibitor (D).
  • the apoptosis inhibitor (D) includes Q-VD-OPH, Z-DEVD-FMK, or Z-VAD-FMK.
  • the blood storage composition contains an inorganic salt (E).
  • the blood storage composition contains water.
  • a blood collection container in a broad aspect of the present invention, includes a blood collection container body and a blood storage composition contained within the blood collection container body, the blood storage composition being the blood storage composition described above.
  • no plasma separation material is contained within the blood collection container body.
  • the blood storage composition of the present invention contains an anticoagulant (A), a compound (B) which is a disaccharide, a disaccharide derivative, a polysaccharide or a polysaccharide derivative, and a polyether compound (C) which is polyethylene oxide or polyethylene glycol. Since the blood storage composition of the present invention has the above-mentioned configuration, it is possible to suppress the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer, and also to suppress the reduction in the amount of plasma after storage compared to the amount of plasma before storage.
  • FIG. 1 is a front cross-sectional view showing a schematic diagram of a blood collection container according to one embodiment of the present invention.
  • the blood storage composition of the present invention comprises an anticoagulant (A), a compound (B) which is a disaccharide, a disaccharide derivative, a polysaccharide or a polysaccharide derivative, and a polyether compound (C) which is polyethylene oxide or polyethylene glycol.
  • the blood storage composition of the present invention has the above-mentioned configuration, which makes it possible to prevent DNA derived from blood cells from being mixed into the plasma layer, and also to prevent a decrease in the amount of plasma after storage compared to the amount of plasma before storage.
  • the blood storage composition of the present invention is mixed with blood before use.
  • compound (B) and polyether compound (C) effectively protect the cell membrane of blood cells, thereby enhancing the stability of blood cells. Therefore, leakage of blood cell-derived DNA outside the cells can be suppressed.
  • the amount of blood cell-derived DNA mixed into plasma can be kept low.
  • the present invention makes it possible to make it difficult for water in the plasma to be absorbed by the blood cells, even if the blood cell layer and plasma layer are separated and then stored at room temperature (4°C to 40°C) for about one week. Therefore, the decrease in the plasma volume after storage can be suppressed compared to the plasma volume before storage (the plasma volume immediately after separation into the blood cell layer and plasma layer).
  • the content of each component contained in the blood storage composition means the total content of all of the components contained in the blood storage composition.
  • the content of anticoagulant (A) means the total content of all anticoagulants (A) in the blood storage composition.
  • the blood storage composition contains an anticoagulant (sometimes referred to as anticoagulant (A) in this specification).
  • an anticoagulant sometimes referred to as anticoagulant (A) in this specification.
  • As the anticoagulant (A) a conventionally known anticoagulant can be used. Only one type of anticoagulant (A) may be used, or two or more types may be used in combination.
  • anticoagulants examples include ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), metal salts of EDTA, heparin, metal salts of heparin, citric acid, and sodium citrate.
  • EDTA ethylenediaminetetraacetic acid
  • metal salts of EDTA metal salts of EDTA
  • heparin metal salts of heparin
  • citric acid sodium citrate.
  • sodium citrate sodium citrate
  • the anticoagulant (A) is preferably EDTA, a metal salt of EDTA, heparin, a metal salt of heparin, or sodium citrate.
  • the content of the anticoagulant (A) in the blood storage composition is not particularly limited as long as it can exert anticoagulant properties.
  • the content of the anticoagulant (A) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.01% by weight or more, more preferably 0.1% by weight or more, preferably 5.0% by weight or less, more preferably 2.5% by weight or less.
  • the content of the anticoagulant (A) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the anticoagulant performance can be satisfactorily exhibited.
  • the content of the anticoagulant (A) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.5% by weight or more, more preferably 1% by weight or more, preferably 15% by weight or less, more preferably 10% by weight or less.
  • the content of the anticoagulant (A) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the anticoagulant performance can be satisfactorily exhibited.
  • the blood storage composition contains a compound which is a disaccharide, a disaccharide derivative, a polysaccharide, or a polysaccharide derivative (sometimes referred to as compound (B) in this specification).
  • Compound (B) is at least one compound selected from the group consisting of disaccharides, disaccharide derivatives, polysaccharides, and polysaccharide derivatives. Only one type of compound (B) may be used, or two or more types may be used in combination.
  • Compound (B) is preferably a water-soluble compound.
  • Water-soluble in compound (B) means that 0.5 g or more of the compound dissolves in 100 g of water at 25°C.
  • the disaccharides include sucrose, lactose, maltose, lactitol, and trehalose. Only one of the disaccharides may be used, or two or more of them may be used in combination.
  • An example of a derivative of the above disaccharide is trehalose 6-phosphate.
  • the above disaccharide derivatives may be used alone or in combination of two or more.
  • the polysaccharides include cellulose, dextran, and the like. Only one type of the polysaccharides may be used, or two or more types may be used in combination.
  • polysaccharide derivatives examples include hydroxyethyl starch and hydroxypropyl cellulose. Only one type of the polysaccharide derivatives may be used, or two or more types may be used in combination.
  • the number average molecular weight of the polysaccharide or the derivative of the polysaccharide is preferably 1,000 or more, more preferably 10,000 or more, even more preferably 100,000 or more, and preferably 4 million or less, more preferably 1 million or less.
  • the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the number average molecular weight above refers to the number average molecular weight calculated as pullulan, measured by gel permeation chromatography (GPC).
  • Compound (B) is preferably a compound that is a disaccharide, polysaccharide, or a derivative of a polysaccharide, and more preferably a compound that is a disaccharide or polysaccharide.
  • compound (B) preferably contains a disaccharide and a polysaccharide or a derivative of a polysaccharide, and more preferably contains a disaccharide and a polysaccharide.
  • the above-mentioned blood storage composition preferably contains a disaccharide and a polysaccharide or a derivative of a polysaccharide, and more preferably contains a disaccharide and a polysaccharide.
  • the disaccharide is preferably trehalose or sucrose, and more preferably trehalose.
  • the polysaccharide is preferably dextran.
  • the derivative of the polysaccharide is preferably hydroxyethyl starch or hydroxypropyl cellulose, and more preferably hydroxyethyl starch.
  • the compound (B) preferably contains trehalose or sucrose, and dextran or hydroxyethyl starch, more preferably contains trehalose or sucrose and dextran, and even more preferably contains trehalose and dextran.
  • the blood storage composition preferably contains trehalose or sucrose, and dextran or hydroxyethyl starch, more preferably contains trehalose or sucrose and dextran, and even more preferably contains trehalose and dextran.
  • the content of the disaccharides in 100% by weight of compound (B) is preferably 10% by weight or more, more preferably 20% by weight or more, preferably 80% by weight or less, more preferably 60% by weight or less.
  • the content of the disaccharides is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the content of the polysaccharide in 100% by weight of compound (B) is preferably 10% by weight or more, more preferably 30% by weight or more, preferably 90% by weight or less, more preferably 70% by weight or less.
  • the content of the polysaccharide is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the content of the polysaccharide derivative in 100% by weight of compound (B) is preferably 10% by weight or more, more preferably 30% by weight or more, preferably 90% by weight or less, more preferably 70% by weight or less.
  • the content of the polysaccharide derivative is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the content of compound (B) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 10% by weight or more, more preferably 20% by weight or more, preferably 80% by weight or less, more preferably 70% by weight or less, even more preferably 60% by weight or less, and particularly preferably 50% by weight or less.
  • the content of compound (B) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the effects of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the content of compound (B) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.1% by weight or more, more preferably 1% by weight or more, even more preferably 3% by weight or more, preferably 40% by weight or less, more preferably 30% by weight or less, and even more preferably 20% by weight or less.
  • the content of compound (B) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the blood storage composition contains a polyether compound (sometimes referred to as polyether compound (C) in this specification) which is polyethylene oxide or polyethylene glycol.
  • the polyether compound (C) may be polyethylene oxide, polyethylene glycol, or both polyethylene oxide and polyethylene glycol. Only one type of polyether compound (C) may be used, or two or more types may be used in combination.
  • the polyether compound (C) is preferably a water-soluble polyether compound.
  • Water-soluble in the polyether compound (C) means that 0.5 g or more dissolves in 100 g of water at 25°C.
  • the number average molecular weight of the polyethylene oxide is preferably 600 or more, more preferably 1000 or more, even more preferably 2000 or more, and preferably 20000 or less, more preferably 8000 or less.
  • the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the number average molecular weight of the polyethylene glycol is preferably 500 or more, more preferably 1000 or more, even more preferably 2000 or more, particularly preferably 3000 or more, and preferably 25000 or less, more preferably 10000 or less, and even more preferably 6000 or less.
  • the number average molecular weight is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the number average molecular weight above refers to the number average molecular weight calculated as pullulan, measured by gel permeation chromatography (GPC).
  • the polyether compound (C) contains polyethylene glycol, and it is more preferable that it is polyethylene glycol.
  • the above-mentioned blood storage composition preferably contains polyethylene glycol.
  • the weight ratio of the content of polyether compound (C) to the content of compound (B) is preferably 0.01 or more, more preferably 0.1 or more, and preferably 5 or less, more preferably 1 or less.
  • the weight ratio (content of polyether compound (C)/content of compound (B)) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the content of polyether compound (C) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 5.0% by weight or more, more preferably 10% by weight or more, even more preferably 20% by weight or more, preferably 80% by weight or less, more preferably 70% by weight or less, even more preferably 60% by weight or less, and particularly preferably 50% by weight or less.
  • the content of polyether compound (C) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the content of polyether compound (C) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.1% by weight or more, more preferably 1.0% by weight or more, even more preferably 5.0% by weight or more, preferably 40% by weight or less, more preferably 20% by weight or less, and even more preferably 15% by weight or less.
  • the content of polyether compound (C) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the blood storage composition preferably contains an apoptosis inhibitor (sometimes referred to as apoptosis inhibitor (D) in this specification).
  • apoptosis inhibitor sometimes referred to as apoptosis inhibitor (D) in this specification.
  • D apoptosis inhibitor
  • cell death of blood cells during storage can be effectively suppressed, and leakage of blood cell-derived DNA to the outside of the cells can be more effectively suppressed.
  • Only one type of apoptosis inhibitor (D) may be used, or two or more types may be used in combination.
  • Apoptosis inhibitors (D) include Q-VD-OPH, Z-DEVD-FMK, and Z-VAD-FMK.
  • the apoptosis inhibitor (D) is preferably a caspase inhibitor, more preferably contains Q-VD-OPH, Z-DEVD-FMK, or Z-VAD-FMK, even more preferably contains Q-VD-OPH, and particularly preferably is Q-VD-OPH.
  • the above blood storage composition preferably contains Q-VD-OPH, Z-DEVD-FMK, or Z-VAD-FMK, and more preferably contains Q-VD-OPH.
  • the weight ratio of the content of the apoptosis inhibitor (D) to the content of the compound (B) is preferably 0.0001 or more, more preferably 0.0005 or more, and preferably 0.1 or less, more preferably 0.01 or less.
  • the weight ratio (content of the apoptosis inhibitor (D)/content of the compound (B)) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer can be further suppressed.
  • the content of the apoptosis inhibitor (D) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.001% by weight or more, more preferably 0.005% by weight or more, preferably 1.0% by weight or less, more preferably 0.1% by weight or less.
  • the content of the apoptosis inhibitor (D) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer can be further suppressed.
  • the content of the apoptosis inhibitor (D) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.0001% by weight or more, more preferably 0.001% by weight or more, even more preferably 0.005% by weight or more, preferably 0.1% by weight or less, more preferably 0.01% by weight or less.
  • the content of the apoptosis inhibitor (D) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer can be further suppressed.
  • the blood storage composition preferably contains an inorganic salt (sometimes referred to as inorganic salt (E) in this specification).
  • inorganic salt (E) By using the inorganic salt (E), the osmotic pressure of the mixture of the blood storage composition and blood can be adjusted to a suitable range, so that cell death of blood cells during storage can be effectively suppressed. This makes it possible to further suppress contamination of the plasma layer with DNA derived from blood cells. Only one type of inorganic salt (E) may be used, or two or more types may be used in combination.
  • Examples of the inorganic salt (E) include sodium chloride, calcium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, phosphates, carbonates, and borates.
  • Examples of the phosphates include sodium phosphate, sodium dihydrogen phosphate, disodium hydrogen phosphate, trisodium phosphate, potassium dihydrogen phosphate, dipotassium hydrogen phosphate, and dipotassium phosphate.
  • Examples of the carbonates include sodium carbonate, sodium bicarbonate, potassium carbonate, potassium bicarbonate, and ammonium carbonate.
  • Examples of the borates include sodium borate.
  • the weight ratio of the content of inorganic salt (E) to the content of compound (B) is preferably 0.01 or more, more preferably 0.1 or more, and preferably 10 or less, more preferably 5 or less.
  • the weight ratio (content of inorganic salt (E)/content of compound (B)) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the incorporation of blood cell-derived DNA into the plasma layer can be further suppressed.
  • the content of inorganic salt (E) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.5% by weight or more, more preferably 5.0% by weight or more, preferably 40% by weight or less, more preferably 20% by weight or less.
  • the content of inorganic salt (E) is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer can be further suppressed.
  • the content of inorganic salt (E) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 0.1% by weight or more, more preferably 1.0% by weight or more, preferably 10% by weight or less, more preferably 5.0% by weight or less.
  • the content of inorganic salt (E) is equal to or more than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, the incorporation of DNA derived from blood cells into the plasma layer can be further suppressed.
  • the blood storage composition does not contain water or contains water.
  • the blood storage composition may contain water or may not substantially contain water.
  • Substantially water-free means that water is not intentionally added, and for example, it means that a small amount of water contained in the raw material (for example, water present as a hydrate or water present as an impurity) or water mixed from the air is within an acceptable range.
  • the blood storage composition substantially does not contain water means that the water content is 0% by weight or more and 5% by weight or less, preferably 3% by weight or less, more preferably 1% by weight or less, in 100% by weight of the blood storage composition.
  • the blood storage composition contains water
  • the blood storage composition can be contained in the blood collection container body in a liquid state.
  • the blood storage composition does not substantially contain water
  • the blood storage composition can be contained in the blood collection container body in a powder state.
  • the water content is preferably 50% by weight or more, more preferably 70% by weight or more, and preferably 95% by weight or less, more preferably 90% by weight or less, based on 100% by weight of the blood storage composition.
  • the above-mentioned blood storage composition may contain components other than those mentioned above (anticoagulant (A), compound (B), polyether compound (C), apoptosis inhibitor (D), inorganic salt (E) and water).
  • the other components include monosaccharides, amino acids, necroptosis inhibitors, antioxidants, and metabolic inhibitors. Only one of the other components may be used, or two or more of them may be used in combination.
  • the blood storage composition may be in a liquid or powder form at 25° C.
  • the blood storage composition may be in a dry form or a lyophilized form.
  • the total content of the anticoagulant (A), compound (B) and polyether compound (C) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 10% by weight or more, more preferably 30% by weight or more, even more preferably 50% by weight or more, particularly preferably 70% by weight or more, preferably 98% by weight or less, and more preferably 95% by weight or less.
  • the total content is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be exerted even more effectively.
  • the total content of the anticoagulant (A), the compound (B), the polyether compound (C), and the inorganic salt (E) in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 50% by weight or more, more preferably 75% by weight or more, even more preferably 80% by weight or more, even more preferably 90% by weight or more, and particularly preferably 95% by weight or more.
  • the total content is equal to or more than the lower limit, the effect of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the total content of the anticoagulant (A), the compound (B), the polyether compound (C), and the inorganic salt (E) in 100% by weight of the blood storage composition is 100% by weight or less, may be less than 100% by weight, may be 99% by weight or less, may be 95% by weight or less, or may be 90% by weight or less.
  • the total content of the anticoagulant (A), compound (B), polyether compound (C) and water in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 10% by weight or more, more preferably 30% by weight or more, even more preferably 50% by weight or more, particularly preferably 70% by weight or more, preferably 98% by weight or less, and more preferably 95% by weight or less.
  • the total content is equal to or more than the lower limit and equal to or less than the upper limit, the effects of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the total content of the anticoagulant (A), the compound (B), the polyether compound (C), the inorganic salt (E), and water in 100% by weight of the blood storage composition is preferably 50% by weight or more, more preferably 75% by weight or more, even more preferably 80% by weight or more, even more preferably 90% by weight or more, and particularly preferably 95% by weight or more.
  • the total content is equal to or more than the lower limit, the effect of the present invention can be more effectively exhibited.
  • the total content of the anticoagulant (A), the compound (B), the polyether compound (C), the inorganic salt (E), and water in 100% by weight of the blood storage composition is 100% by weight or less, may be less than 100% by weight, may be 99% by weight or less, may be 95% by weight or less, or may be 90% by weight or less.
  • the blood collection container of the present invention comprises a blood collection container body and a blood storage composition contained within the blood collection container body, and the blood storage composition is the blood storage composition described above.
  • FIG. 1 is a schematic front cross-sectional view of a blood collection container according to one embodiment of the present invention.
  • the blood collection container 5 shown in FIG. 1 comprises a blood collection container body 1, a blood storage composition 2, and a stopper 3.
  • the blood collection container body 1 has an opening at one end and a closed bottom at the other end.
  • the blood storage composition 2 is contained in the bottom of the blood collection container body 1 when the blood collection container 5 is in an upright position.
  • the blood storage composition 2 contains an anticoagulant (A), a compound (B), and a polyether compound (C).
  • the stopper 3 is inserted into the opening of the blood collection container body 1.
  • the shape of the blood collection container body is not particularly limited.
  • the blood collection container body is preferably a tubular container with a bottom.
  • the material of the blood collection container body is not particularly limited.
  • materials for the blood collection container body include thermoplastic resins such as polyethylene, polypropylene, polystyrene, polyethylene terephthalate, polymethyl methacrylate, and polyacrylonitrile; thermosetting resins such as unsaturated polyester resin, epoxy resin, and epoxy-acrylate resin; modified natural resins such as cellulose acetate, cellulose propionate, ethyl cellulose, and ethyl chitin; and glass such as silicate glass, such as soda-lime glass, phosphosilicate glass, and borosilicate glass, and quartz glass. Only one type of material may be used for the blood collection container body, or two or more types may be used in combination.
  • the blood collection container preferably includes a stopper.
  • the stopper is preferably attached to the opening of the blood collection container body.
  • a conventionally known stopper can be used as the stopper.
  • the stopper is preferably made of a material and has a shape that allows it to be attached to the opening of the blood collection container body in an airtight and liquidtight manner.
  • the stopper is preferably configured to be pierced by a blood collection needle.
  • stopper examples include a stopper shaped to fit into the opening of the blood collection container body, a sheet-shaped seal stopper, etc.
  • the stopper may also be a stopper comprising a stopper body such as a rubber stopper and a cap member made of plastic or the like. In this case, the risk of blood coming into contact with the human body can be reduced when the stopper body is pulled out from the opening of the blood collection container body after blood collection.
  • the material of the stopper examples include synthetic resin, elastomer, rubber, metal foil, etc.
  • the rubber examples include butyl rubber and halogenated butyl rubber.
  • the metal foil examples include aluminum foil, etc. From the viewpoint of improving the sealing performance, the material of the stopper is preferably butyl rubber.
  • the stopper (or the stopper main body) is preferably a butyl rubber stopper.
  • the blood collection container is a blood collection container in which a predetermined amount of blood is collected.
  • the predetermined amount of blood is appropriately changed depending on the size and internal pressure of the blood collection container.
  • the predetermined amount of blood may be 1 mL or more, 2 mL or more, 4 mL or more, 12 mL or less, 11 mL or less, or 10 mL or less.
  • An amount of physiological saline equal to the amount of blood collected in the blood collection container is collected in the blood collection container, and a mixed solution is obtained in which the physiological saline and the blood preservation composition are mixed.
  • a mixed solution is obtained in which the physiological saline and the blood preservation composition are mixed.
  • the osmotic pressure of the mixed solution in which the physiological saline and the blood preservation composition are mixed is preferably 300 mOsm/L or more, more preferably 330 mOsm/L or more, even more preferably 350 mOsm/L or more, preferably 3000 mOsm/L or less, more preferably 2000 mOsm/L or less, and even more preferably 1500 mOsm/L or less. If the osmotic pressure of the mixed solution is above the lower limit and below the upper limit, excessive stress on white blood cells is suppressed and white blood cells can be further stabilized, so that the effect of the present invention can be exerted more effectively.
  • the osmotic pressure of the mixture is measured by the freezing point depression method using an osmometer (e.g., Arkray's "OM-6060").
  • the amount of blood preservation composition contained in the blood collection container body is appropriately changed depending on the size of the blood collection container body, the amount of blood to be collected, etc.
  • the amount of blood preservation composition contained in the blood collection container body is preferably 0.1 mL or more, more preferably 0.5 mL or more, even more preferably 0.7 mL or more, preferably 5 mL or less, more preferably 3 mL or less, and even more preferably 2.5 mL or less.
  • the amount of the blood preservation composition is above the above lower limit and below the above upper limit, the blood is not excessively diluted and the effects of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the blood storage composition is liquid at 25°C, it is preferable that 3 mL or more of blood is collected in the blood collection container per 1 mL of the blood storage composition contained therein, more preferably 4 mL or more, more preferably 11 mL or less, and even more preferably 10 mL or less.
  • the blood is not excessively diluted, and the effects of the present invention can be exerted even more effectively.
  • the blood collection container body does not contain a plasma separation material.
  • the plasma separation material is a composition (plasma separation composition) or a tool (plasma separation tool) that moves between the plasma layer and the blood cell layer during centrifugation to form a partition.
  • the plasma separation composition includes a composition containing an organic component that has fluidity at 25°C and an inorganic fine powder (for example, the composition described in WO2010/053180A1).
  • the plasma separation tool includes, for example, a mechanical separator described in WO2010/132783A1. In the blood collection container containing the blood storage composition, the reduction in the amount of plasma after storage can be suppressed compared to the amount of plasma before storage, so a plasma separation material may not be provided.
  • the blood collection container is preferably a blood collection tube.
  • the blood collection container body is preferably a blood collection tube body.
  • the blood collection container can be manufactured, for example, as follows:
  • Anticoagulant (A), compound (B), polyether compound (C), and other components, if necessary, are mixed to obtain a blood storage composition.
  • the obtained blood storage composition is placed in the blood collection container body.
  • the internal pressure of the blood collection container is not particularly limited. It is preferable that the internal pressure of the blood collection container is reduced. When the blood collection container is a reduced pressure container, a predetermined amount of blood can be easily collected in the blood collection container.
  • the blood collection container can also be used as a vacuum blood collection tube, with the inside evacuated and sealed with the stopper. When it is a vacuum blood collection tube, a constant amount of blood can be easily collected regardless of the skill level of the blood collector.
  • the inside of the blood collection container be sterilized in accordance with ISO or JIS standards.
  • the blood collection container can be used to separate plasma from blood.
  • the method for separating plasma preferably includes a step of collecting blood in the blood collection container, and a step of centrifuging the blood collection container in which the blood has been collected.
  • the plasma separation method preferably includes a step of mixing the collected blood with the blood preservation composition between the step of collecting the blood and the step of centrifuging.
  • Methods for mixing the collected blood with the blood preservation composition include mixing by inversion, etc.
  • the centrifugation conditions in the centrifugation step are not particularly limited. Examples of the centrifugation conditions include centrifugation at 400 G or more and 4000 G or less for 10 minutes or more and 120 minutes or less.
  • the blood collection container can be used to separate extracellular free nucleic acids from blood.
  • the method for separating extracellular free nucleic acids preferably includes a step of collecting blood in the blood collection container, a step of separating plasma from the blood by centrifuging the blood collection container into which the blood has been collected, and a step of separating extracellular free nucleic acids from the separated plasma.
  • the blood collection container can be used to separate extracellular vesicles from blood.
  • the method for separating extracellular vesicles preferably includes a step of collecting blood in the blood collection container, preferably includes a step of centrifuging the blood collection container in which the blood has been collected to separate plasma from the blood, and preferably includes a step of separating extracellular vesicles from the separated plasma.
  • the method for isolating extracellular free nucleic acids and the method for isolating extracellular vesicles preferably include a step of mixing the collected blood with the blood preservation composition between the step of collecting the blood and the step of centrifuging.
  • Methods for mixing the collected blood with the blood preservation composition include mixing by inversion, etc.
  • the centrifugation conditions in the centrifugation step are not particularly limited. Examples of the centrifugation conditions include centrifugation at 400 G or more and 4000 G or less for 10 minutes or more and 120 minutes or less.
  • the extracellular free nucleic acid can be separated from the plasma using a conventional method.
  • the extracellular free nucleic acid include cell-free DNA (cfDNA) and cell-free RNA (cfRNA).
  • Examples of a method for separating the extracellular free nucleic acid from the plasma include a method using a commercially available nucleic acid purification kit. By using a commercially available nucleic acid purification kit, the extracellular free nucleic acid can be easily separated from the plasma.
  • nucleic acid purification kits examples include QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit (manufactured by QIAGEN), QIAamp MinElute ccfDNA Kits (manufactured by QIAGEN), and MagMAX Cell-Free DNA Isolation Kit (manufactured by Applied biosystems).
  • the extracellular vesicles can be separated from the plasma using a conventional method.
  • Anticoagulant (A) Dipotassium ethylenediaminetetraacetate dihydrate (EDTA2K.2H 2 O)
  • Polyether Compound (C) Polyethylene glycol (1) (number average molecular weight: 3000, Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd. "Polyethylene glycol 4,000") Polyethylene glycol (2) (number average molecular weight: 600, Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd. "Polyethylene glycol 600”) Polyethylene glycol (3) (number average molecular weight: 20,000, Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd. "Polyethylene glycol 20,000”)
  • Example 1 Preparation of blood storage composition: The components were mixed in the proportions shown in Table 1 to prepare a blood storage composition (aqueous solution).
  • Preparation of blood collection container A polyethylene terephthalate bottomed tube (PET bottomed tube) with a length of 100 mm and an inner diameter of the opening of 14 mm was prepared as the blood collection container body. 1.0 mL of the obtained blood storage composition was placed in the PET bottomed tube. Next, the pressure inside the blood collection container was reduced to 50 kPa, and the container was sealed with a butyl rubber stopper. In this way, a blood collection container for collecting and storing 5.0 mL of blood was produced.
  • PET bottomed tube polyethylene terephthalate bottomed tube with a length of 100 mm and an inner diameter of the opening of 14 mm was prepared as the blood collection container body. 1.0 mL of the obtained blood storage composition was placed in the PET bottomed tube. Next, the pressure inside the blood collection container was reduced to 50 kPa, and the container was sealed with a butyl rubber stopper. In this way, a blood collection container for collecting and storing 5.0 mL of blood
  • Examples 2 to 10 and Comparative Examples 1 and 2 Blood storage compositions and blood collection containers were prepared in the same manner as in Example 1, except that the formulation of the blood storage composition was changed as shown in Tables 1 to 3.
  • the blood collection container containing the mixed solution was centrifuged at 1900G for 15 minutes to separate it into a plasma layer (upper) and a blood cell layer (lower). Then, the plasma was collected from the blood collection container.
  • the DNA contained in the collected plasma was purified using a cfDNA purification kit (QIAGEN "QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit”). The DNA purification operation was performed on the day the plasma was collected from the blood collection container.
  • the DNA concentration in the purified extract was measured using a Qubit dsDNA HS Assay kit (Invitrogen). The DNA concentration (the amount of DNA contained per mL of plasma) was then calculated using the following formula:
  • DNA concentration [A] x [B]/[C]
  • the ratio of the DNA concentration (ng/mL of plasma) calculated in Examples 1 to 10 and Comparative Examples 1 and 2 to the DNA concentration (ng/mL of plasma) calculated in Comparative Example 3 was calculated using the following formula.
  • the blood cells and plasma were mixed by inversion mixing, and the blood collection container was stored in an environment of 25°C for 7 days. After storage for 7 days, the blood collection container was centrifuged at 1900 G for 15 minutes. After centrifugation, the length (height) of the plasma layer in the blood collection container was measured with a vernier caliper. Next, the relative ratio of the plasma volume after storage to the plasma volume before storage was calculated using the following formula. The rate of change in plasma volume before and after storage was evaluated according to the following criteria: The length of the plasma layer is the average value when the blood of two subjects was tested.
  • the concentration of the anticoagulant refers to the concentration of EDTA2K, not the concentration of EDTA2K ⁇ 2H 2 O.
  • the contents of the other components are pure amounts.

Abstract

血漿層中への血球細胞由来DNAの混入を抑えることができ、かつ保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量の減少を抑えることができる血液保存用組成物を提供する。 本発明に係る血液保存用組成物は、抗凝固剤(A)と、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)と、ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)とを含む。

Description

血液保存用組成物及び血液採取容器
 本発明は、血液と混合されて用いられる血液保存用組成物に関する。また、本発明は、上記血液保存用組成物を用いた血液採取容器に関する。
 血液には、遊離DNA(cell free DNA,cfDNA)が含まれる。悪性腫瘍を有する人及び感染症に罹患した人などの体液中には、健常者と比べて、cfDNAが高濃度で存在することが知られている。また、近年、がん及び遺伝子疾患等の領域において、cfDNAを検体とする検査が行われている。cfDNAを検体とする検査は、患者から病変組織を採取して行う検査と比べて、患者への負担が小さい。
 臨床検査では、一般に、以下の(1)~(3)の手順で検査が行われる。(1)抗凝固剤を含む組成物が収容された血液採取容器に血液を採取する。(2)血液が採取された血液採取容器を遠心分離等することにより、血球層と血漿層とに分離する。(3)血漿を回収し、血漿に含まれるcfDNAを検体とする検査を行う。
 下記の特許文献1には、EDTAと特定の尿素とグリシンとを含む組成物が容器内に収容された血液採取デバイスを用いて、cfDNAを安定的に回収する方法が記載されている。
 下記の特許文献2には、ポリエチレングリコール(PEG)及びEDTA等を含む組成物が容器内に収容された採血管を用いて、cfDNAを保存する方法が記載されている。特許文献2には、上記組成物が血液を安定化させることにより、血漿中へのゲノムDNAの混入が抑えられることが記載されている。
WO2013/123030A2 WO2017/201612A1
 臨床現場では、患者から採血した検体が検査に供されるまでに、ある程度の時間が経過することがある。例えば、検体を検査施設に輸送したり、検査施設において検査待ちの検体が多量に存在していたりする場合には、採血してから検体が検査に供されるまでに、数日程度の時間が経過することがある。そのため、臨床現場では、血液採取容器中にて抗凝固剤を含む組成物と血液とが混合された状態で数日間保存されたり、血球層と血漿層とが分離された後に数日程度保存されたりすることがある。
 抗凝固剤を含む従来の組成物が収容された血液採取容器では、保存中に、血球細胞が破壊されたり、死滅したりして、白血球等の血球細胞からゲノムDNA(gDNA)が細胞外へ漏出し、血球細胞由来DNAが血漿層中に混入することがある。cfDNAを検体とする検査では、血球細胞由来DNAが血漿層中に比較的多量に混入すると、検査結果が変動しやすい。
 また、抗凝固剤を含む従来の組成物が収容された血液採取容器では、血漿中の水分が血球細胞によって徐々に吸収されるため、保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量が減少することがある。この場合には、検査又は再検査に必要な血漿量が確保できなくなる可能性がある。
 本発明の目的は、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入を抑えることができ、かつ保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量の減少を抑えることができる血液保存用組成物を提供することである。また、本発明は、上記血液保存用組成物を用いた血液採取容器を提供することも目的とする。
 本発明の広い局面では、抗凝固剤(A)と、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)と、ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)とを含む、血液保存用組成物が提供される。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記化合物(B)が、二糖類と、多糖類又は多糖類の誘導体とを含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記化合物(B)が、トレハロース又はスクロースと、デキストラン又はヒドロキシエチルスターチとを含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記ポリエーテル化合物(C)が、ポリエチレングリコールを含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記血液保存用組成物は、アポトーシス阻害剤(D)を含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記アポトーシス阻害剤(D)が、Q-VD-OPH、Z-DEVD-FMK、又はZ-VAD-FMKを含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記血液保存用組成物は、無機塩(E)を含む。
 本発明に係る血液保存用組成物のある特定の局面では、前記血液保存用組成物は、水を含む。
 本発明の広い局面では、血液採取容器本体と、前記血液採取容器本体内に収容された血液保存用組成物とを備え、前記血液保存用組成物が、上述した血液保存用組成物である、血液採取容器が提供される。
 本発明に係る血液採取容器のある特定の局面では、前記血液採取容器本体内に、血漿分離材が収容されていない。
 本発明に係る血液保存用組成物は、抗凝固剤(A)と、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)と、ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)とを含む。本発明に係る血液保存用組成物では、上記の構成が備えられているので、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入を抑えることができ、かつ保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量の減少を抑えることができる。
図1は、本発明の一実施形態に係る血液採取容器を模式的に示す正面断面図である。
 以下、本発明を詳細に説明する。
 (血液保存用組成物)
 本発明に係る血液保存用組成物は、抗凝固剤(A)と、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)と、ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)とを含む。
 本発明に係る血液保存用組成物では、上記の構成が備えられているので、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入を抑えることができ、かつ保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量の減少を抑えることができる。
 本発明に係る血液保存用組成物は、血液と混合されて用いられる。本発明に係る血液保存用組成物では、化合物(B)及びポリエーテル化合物(C)が血球細胞の細胞膜を良好に保護するため、血球細胞の安定性を高めることができる。従って、血球細胞由来DNAの細胞外への漏出を抑えることができる。本発明では、例えば、上記血液保存用組成物と血液とが混合された状態にて室温(4℃~40℃)で約1週間保存されたとしても、血漿中に混入する血球細胞由来DNA量を低く抑えることができる。
 また、本発明では、血球層と血漿層とが分離された後に室温(4℃~40℃)で約1週間保管されたとしても、血漿中の水分が血球細胞に吸収されにくくすることができる。そのため、保存前の血漿量(血球層と血漿層とに分離した直後の血漿量)と比べて、保存後の血漿量の減少を抑えることができる。
 以下、本発明に係る血液保存用組成物の詳細などを説明する。なお、本明細書において、血液保存用組成物に含まれる各成分の含有量とは、血液保存用組成物中に含まれる全ての該成分の含有量の合計を意味する。例えば、抗凝固剤(A)の含有量とは、血液保存用組成物中の全ての抗凝固剤(A)の合計含有量を意味する。
 <抗凝固剤(A)>
 上記血液保存用組成物は、抗凝固剤(本明細書において、抗凝固剤(A)と記載することがある)を含む。抗凝固剤(A)として、従来公知の抗凝固剤を用いることができる。抗凝固剤(A)は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 抗凝固剤(A)としては、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、EDTAの金属塩、ヘパリン、ヘパリンの金属塩、クエン酸及びクエン酸ナトリウム等が挙げられる。
 抗凝固性能を良好に発揮させる観点から、抗凝固剤(A)は、EDTA、EDTAの金属塩、ヘパリン、ヘパリンの金属塩又はクエン酸ナトリウムであることが好ましい。
 上記血液保存用組成物中の抗凝固剤(A)の含有量は、抗凝固性能を発揮させることができる限り特に限定されない。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)の含有量は、好ましくは0.01重量%以上、より好ましくは0.1重量%以上、好ましくは5.0重量%以下、より好ましくは2.5重量%以下である。上記抗凝固剤(A)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、抗凝固性能を良好に発揮させることができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)の含有量は、好ましくは0.5重量%以上、より好ましくは1重量%以上、好ましくは15重量%以下、より好ましくは10重量%以下である。上記抗凝固剤(A)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、抗凝固性能を良好に発揮させることができる。
 <二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)>
 上記血液保存用組成物は、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(本明細書において、化合物(B)と記載することがある)を含む。化合物(B)は、二糖類、二糖類の誘導体、多糖類及び多糖類の誘導体からなる群より選ばれる少なくとも1種の化合物である。化合物(B)は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 化合物(B)は、水溶性化合物であることが好ましい。化合物(B)における「水溶性」とは、25℃の水100gに、0.5g以上溶解することを意味する。
 上記二糖類としては、スクロース、ラクトース、マルトース、ラクチトール及びトレハロース等が挙げられる。上記二糖類は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 上記二糖類の誘導体としては、トレハロース6-リン酸等が挙げられる。上記二糖類の誘導体は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 上記多糖類としては、セルロース、及びデキストラン等が挙げられる。上記多糖類は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 上記多糖類の誘導体としては、ヒドロキシエチルスターチ及びヒドロキシプロピルセルロース等が挙げられる。上記多糖類の誘導体は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 上記多糖類又は上記多糖類の誘導体の数平均分子量は、好ましくは1000以上、より好ましくは1万以上、更に好ましくは10万以上、好ましくは400万以下、より好ましくは100万以下である。上記数平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記数平均分子量は、ゲルパーミエーションクロマトグラフィー(GPC)により測定されたプルラン換算での数平均分子量を意味する。
 化合物(B)は、二糖類、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物であることが好ましく、二糖類又は多糖類である化合物であることがより好ましい。
 本発明の効果をより一層効果的に発揮する観点からは、化合物(B)は、二糖類と、多糖類又は多糖類の誘導体とを含むことが好ましく、二糖類と、多糖類とを含むことがより好ましい。上記血液保存用組成物は、二糖類と、多糖類又は多糖類の誘導体とを含むことが好ましく、二糖類と、多糖類とを含むことがより好ましい。
 本発明の効果を更に一層効果的に発揮する観点からは、上記二糖類は、トレハロース又はスクロースであることが好ましく、トレハロースであることがより好ましい。また、上記多糖類は、デキストランであることが好ましい。また、上記多糖類の誘導体は、ヒドロキシエチルスターチ又はヒドロキシプロピルセルロースであることが好ましく、ヒドロキシエチルスターチであることがより好ましい。本発明の効果を更に一層効果的に発揮する観点からは、化合物(B)は、トレハロース又はスクロースと、デキストラン又はヒドロキシエチルスターチとを含むことが好ましく、トレハロース又はスクロースと、デキストランとを含むことがより好ましく、トレハロースと、デキストランとを含むことが更に好ましい。本発明の効果を更に一層効果的に発揮する観点からは、上記血液保存用組成物は、トレハロース又はスクロースと、デキストラン又はヒドロキシエチルスターチとを含むことが好ましく、トレハロース又はスクロースと、デキストランとを含むことがより好ましく、トレハロースと、デキストランとを含むことが更に好ましい。
 化合物(B)100重量%中、上記二糖類の含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは20重量%以上、好ましくは80重量%以下、より好ましくは60重量%以下である。上記二糖類の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 化合物(B)100重量%中、上記多糖類の含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは30重量%以上、好ましくは90重量%以下、より好ましくは70重量%以下である。上記多糖類の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 化合物(B)100重量%中、上記多糖類の誘導体の含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは30重量%以上、好ましくは90重量%以下、より好ましくは70重量%以下である。上記多糖類の誘導体の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、化合物(B)の含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは20重量%以上、好ましくは80重量%以下、より好ましくは70重量%以下、更に好ましくは60重量%以下、特に好ましくは50重量%以下である。上記化合物(B)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、化合物(B)の含有量は、好ましくは0.1重量%以上、より好ましくは1重量%以上、更に好ましくは3重量%以上、好ましくは40重量%以下、より好ましくは30重量%以下、更に好ましくは20重量%以下である。上記化合物(B)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 <ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)>
 上記血液保存用組成物は、ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(本明細書において、ポリエーテル化合物(C)と記載することがある)を含む。ポリエーテル化合物(C)は、ポリエチレンオキサイドであってもよく、ポリエチレングリコールであってもよく、ポリエチレンオキサイドとポリエチレングリコールとの双方であってもよい。ポリエーテル化合物(C)は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 ポリエーテル化合物(C)は、水溶性ポリエーテル化合物であることが好ましい。ポリエーテル化合物(C)における「水溶性」とは25℃の水100gに、0.5g以上溶解することを意味する。
 上記ポリエチレンオキサイドの数平均分子量は、好ましくは600以上、より好ましくは1000以上、更に好ましくは2000以上、好ましくは20000以下、より好ましくは8000以下である。上記数平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記ポリエチレングリコールの数平均分子量は、好ましくは500以上、より好ましくは1000以上、更に好ましくは2000以上、特に好ましくは3000以上、好ましくは25000以下、より好ましくは10000以下、更に好ましくは6000以下である。上記数平均分子量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記数平均分子量は、ゲルパーミエーションクロマトグラフィー(GPC)により測定されたプルラン換算での数平均分子量を意味する。
 本発明の効果をより一層効果的に発揮する観点からは、ポリエーテル化合物(C)は、ポリエチレングリコールを含むことが好ましく、ポリエチレングリコールであることがより好ましい。上記血液保存用組成物は、ポリエチレングリコールを含むことが好ましい。
 ポリエーテル化合物(C)の含有量の、化合物(B)の含有量に対する重量比(ポリエーテル化合物(C)の含有量/化合物(B)の含有量)は、好ましくは0.01以上、より好ましくは0.1以上、好ましくは5以下、より好ましくは1以下である。上記重量比(ポリエーテル化合物(C)の含有量/化合物(B)の含有量)が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、ポリエーテル化合物(C)の含有量は、好ましくは5.0重量%以上、より好ましくは10重量%以上、更に好ましくは20重量%以上、好ましくは80重量%以下、より好ましくは70重量%以下、更に好ましくは60重量%以下、特に好ましくは50重量%以下である。上記ポリエーテル化合物(C)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、ポリエーテル化合物(C)の含有量は、好ましくは0.1重量%以上、より好ましくは1.0重量%以上、更に好ましくは5.0重量%以上、好ましくは40重量%以下、より好ましくは20重量%以下、更に好ましくは15重量%以下である。上記ポリエーテル化合物(C)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 <アポトーシス阻害剤(D)>
 上記血液保存用組成物は、アポトーシス阻害剤(本明細書において、アポトーシス阻害剤(D)と記載することがある)を含むことが好ましい。アポトーシス阻害剤(D)を用いることにより、保存中の血球細胞の細胞死が効果的に抑えられるので、血球細胞由来DNAの細胞外への漏出をより一層効果的に抑えることができる。アポトーシス阻害剤(D)は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 アポトーシス阻害剤(D)としては、Q-VD-OPH、Z-DEVD-FMK及びZ-VAD-FMK等が挙げられる。
 本発明の効果をより一層効果的に発揮する観点からは、アポトーシス阻害剤(D)は、カスパーゼ阻害剤であることが好ましく、Q-VD-OPH、Z-DEVD-FMK、又はZ-VAD-FMKを含むことがより好ましく、Q-VD-OPHを含むことが更に好ましく、Q-VD-OPHであることが特に好ましい。上記血液保存用組成物は、Q-VD-OPH、Z-DEVD-FMK、又はZ-VAD-FMKを含むことが好ましく、Q-VD-OPHを含むことがより好ましい。
 アポトーシス阻害剤(D)の含有量の、化合物(B)の含有量に対する重量比(アポトーシス阻害剤(D)の含有量/化合物(B)の含有量)は、好ましくは0.0001以上、より好ましくは0.0005以上、好ましくは0.1以下、より好ましくは0.01以下である。上記重量比(アポトーシス阻害剤(D)の含有量/化合物(B)の含有量)が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、アポトーシス阻害剤(D)の含有量は、好ましくは0.001重量%以上、より好ましくは0.005重量%以上、好ましくは1.0重量%以下、より好ましくは0.1重量%以下である。上記アポトーシス阻害剤(D)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、アポトーシス阻害剤(D)の含有量は、好ましくは0.0001重量%以上、より好ましくは0.001重量%以上、更に好ましくは0.005重量%以上、好ましくは0.1重量%以下、より好ましくは0.01重量%以下である。上記アポトーシス阻害剤(D)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 <無機塩(E)>
 上記血液保存用組成物は、無機塩(本明細書において、無機塩(E)と記載することがある)を含むことが好ましい。無機塩(E)を用いることにより、血液保存用組成物と血液との混合液の浸透圧を好適な範囲にすることができるので、保存中の血球細胞の細胞死が効果的に抑えられる。このため、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。無機塩(E)は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 無機塩(E)としては、塩化ナトリウム、塩化カルシウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、リン酸塩、炭酸塩等、及びホウ酸塩が挙げられる。上記リン酸塩としては、リン酸ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム、リン酸三ナトリウム、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム及びリン酸二カリウム等が挙げられる。上記炭酸塩としては、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸水素カリウム及び炭酸アンモニウム等が挙げられる。上記ホウ酸塩としては、ホウ酸ナトリウム等が挙げられる。
 無機塩(E)の含有量の、化合物(B)の含有量に対する重量比(無機塩(E)の含有量/化合物(B)の含有量)は、好ましくは0.01以上、より好ましくは0.1以上、好ましくは10以下、より好ましくは5以下である。上記重量比(無機塩(E)の含有量/化合物(B)の含有量)が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、無機塩(E)の含有量は、好ましくは0.5重量%以上、より好ましくは5.0重量%以上、好ましくは40重量%以下、より好ましくは20重量%以下である。上記無機塩(E)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、無機塩(E)の含有量は、好ましくは0.1重量%以上、より好ましくは1.0重量%以上、好ましくは10重量%以下、より好ましくは5.0重量%以下である。上記無機塩(E)の含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、血漿層中への血球細胞由来DNAの混入をより一層抑えることができる。
 <水>
 上記血液保存用組成物は、水を含まないか又は含む。上記血液保存用組成物は、水を含んでいてもよく、実質的に水を含んでいなくてもよい。実質的に水を含まないとは、意図して水を添加していないことを意味し、例えば、原料中に含まれる微量の水(例えば水和物として存在する水や、不純物として存在する水)や、大気中から混入する水については、許容範囲にあるという意味である。具体的には、上記血液保存用組成物が実質的に水を含まないとは、上記血液保存用組成物100重量%中、水の含有量が0重量%以上5重量%以下であることを意味し、好ましくは3重量%以下、より好ましくは1重量%以下である。上記血液保存用組成物が水を含む場合には、例えば、該血液保存用組成物を液体の状態で血液採取容器本体内に収容することができる。上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合には、例えば、該血液保存用組成物を粉末の状態で血液採取容器本体内に収容することができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合に、上記血液保存用組成物100重量%中、水の含有量は、好ましくは50重量%以上、より好ましくは70重量%以上、好ましくは95重量%以下、より好ましくは90重量%以下である。
 <他の成分>
 上記血液保存用組成物は、上述した成分(抗凝固剤(A)、化合物(B)、ポリエーテル化合物(C)、アポトーシス阻害剤(D)、無機塩(E)及び水)以外の他の成分を含んでいてもよい。
 上記他の成分としては、単糖類、アミノ酸、ネクロトーシス阻害剤、抗酸化物質及び代謝阻害剤等が挙げられる。上記他の成分は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 <血液保存用組成物の他の詳細>
 上記血液保存用組成物は、25℃で液状であってもよく、粉末状であってもよい。上記血液保存用組成物は、乾燥物であってもよく、凍結乾燥物であってもよい。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)との合計含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは30重量%以上、更に好ましくは50重量%以上、特に好ましくは70重量%以上、好ましくは98重量%以下、より好ましくは95重量%以下である。上記合計含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と無機塩(E)との合計含有量は、好ましくは50重量%以上、より好ましくは75重量%以上、より一層好ましくは80重量%以上、更に好ましくは90重量%以上、特に好ましくは95重量%以上である。上記合計含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。なお、上記血液保存用組成物が実質的に水を含まない場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と無機塩(E)との合計含有量は、100重量%以下であり、100重量%未満であってもよく、99重量%以下であってもよく、95重量%以下であってもよく、90重量%以下であってもよい。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と水との合計含有量は、好ましくは10重量%以上、より好ましくは30重量%以上、更に好ましくは50重量%以上、特に好ましくは70重量%以上、好ましくは98重量%以下、より好ましくは95重量%以下である。上記合計含有量が上記下限以上及び上記上限以下であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と無機塩(E)と水との合計含有量は、好ましくは50重量%以上、より好ましくは75重量%以上、より一層好ましくは80重量%以上、更に好ましくは90重量%以上、特に好ましくは95重量%以上である。上記合計含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。なお、上記血液保存用組成物が水を含む場合、上記血液保存用組成物100重量%中、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と無機塩(E)と水との合計含有量は、100重量%以下であり、100重量%未満であってもよく、99重量%以下であってもよく、95重量%以下であってもよく、90重量%以下であってもよい。
 (血液採取容器)
 本発明に係る血液採取容器は、血液採取容器本体と、上記血液採取容器本体内に収容された血液保存用組成物とを備え、上記血液保存用組成物が、上述した血液保存用組成物である。
 図1は、本発明の一実施形態に係る血液採取容器を模式的に示す正面断面図である。
 図1に示す血液採取容器5は、血液採取容器本体1と、血液保存用組成物2と、栓体3とを備える。血液採取容器本体1は、一端に開口を有し、他端に閉じられている底部を有する。血液保存用組成物2は、血液採取容器5を正立状態としたときに、血液採取容器本体1の底部に収容されている。血液保存用組成物2は、抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)とを含む。栓体3は、血液採取容器本体1の開口に挿入されている。
 <血液採取容器本体>
 上記血液採取容器本体の形状としては、特に限定されない。上記血液採取容器本体は、有底の管状容器であることが好ましい。
 上記血液採取容器本体の素材は特に限定されない。上記血液採取容器本体の素材としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリエチレンテレフタレート、ポリメチルメタクリレート、ポリアクリロニトリル等の熱可塑性樹脂;不飽和ポリエステル樹脂、エポキシ樹脂、エポキシ-アクリレート樹脂等の熱硬化性樹脂;酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、エチルセルロース、エチルキチン等の変性天然樹脂;ソーダ石灰ガラス、リンケイ酸ガラス、ホウケイ酸ガラス等のケイ酸塩ガラス、石英ガラス等のガラスが挙げられる。上記血液採取容器本体の素材は、1種のみが用いられてもよく、2種以上が併用されてもよい。
 <栓体>
 上記血液採取容器は、栓体を備えることが好ましい。上記栓体は、血液採取容器本体の開口に取り付けられていることが好ましい。上記栓体として、従来公知の栓体を用いることができる。上記栓体は、血液採取容器本体の開口に、気密的かつ液密的に取付けることが可能な素材、形状からなる栓体であることが好ましい。上記栓体は、採血針が刺通され得るように構成されていることが好ましい。
 上記栓体としては、血液採取容器本体の開口に嵌合する形状を有する栓体、シート状のシール栓体等が挙げられる。
 また、上記栓体は、ゴム栓等の栓本体と、プラスチック等で構成されたキャップ部材とを備える栓体であってもよい。この場合には、血液採取後に、血液採取容器本体の開口から栓体を引き抜く際に、血液が人体と接触するリスクを抑えることができる。
 上記栓体(又は上記栓本体)の材料としては、例えば、合成樹脂、エラストマー、ゴム、金属箔等が挙げられる。上記ゴムとしては、ブチルゴム、及びハロゲン化ブチルゴム等が挙げられる。上記金属箔としては、アルミニウム箔等が挙げられる。密封性を高める観点からは、上記栓体の材料は、ブチルゴムであることが好ましい。上記栓体(又は上記栓本体)は、ブチルゴム栓であることが好ましい。
 <血液採取容器の他の詳細>
 上記血液採取容器は、所定量の血液が採取される血液採取容器である。上記血液の上記所定量は、血液採取容器のサイズ及び内圧等により適宜変更される。上記血液の上記所定量は、1mL以上であってもよく、2mL以上であってもよく、4mL以上であってもよく、12mL以下であってもよく、11mL以下であってもよく、10mL以下であってもよい。
 上記血液採取容器に採取される血液の所定量と等量の生理食塩水を上記血液採取容器内に採取して、上記生理食塩水と上記血液保存用組成物とが混合された混合液を得る。例えば、5mLの血液が採取される血液採取容器では、5mLの生理食塩水を該血液採取容器内に採取して、転倒混和するなどして、上記生理食塩水と上記血液保存用組成物とを混合し、混合液を得る。上記生理食塩水と上記血液保存用組成物とが混合された上記混合液の浸透圧は、好ましくは300mOsm/L以上、より好ましくは330mOsm/L以上、更に好ましくは350mOsm/L以上、好ましくは3000mOsm/L以下、より好ましくは2000mOsm/L以下、更に好ましくは1500mOsm/L以下である。上記混合液の浸透圧が上記下限以上及び上記上限以下であると、白血球への過度なストレスが抑えられ、白血球をより一層安定化させることができるので、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。
 上記混合液の浸透圧は、浸透圧計(例えば、アークレイ社製「OM-6060」)を用いて、氷点降下法により測定される。
 上記血液採取容器本体内に収容されている血液保存用組成物の量は、血液採取容器本体のサイズ、及び採取される血液量等により適宜変更される。上記血液保存用組成物が25℃で液状である場合に、上記血液採取容器本体内に収容されている血液保存用組成物の量は、好ましくは0.1mL以上、より好ましくは0.5mL以上、更に好ましくは0.7mL以上、好ましくは5mL以下、より好ましくは3mL以下、更に好ましくは2.5mL以下である。上記血液保存用組成物の量が上記下限以上及び上記上限以下であると、血液が過度に希釈されることなく、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液保存用組成物が25℃で液状である場合に、上記血液採取容器では、収容されている上記血液保存用組成物1mLに対して、血液が3mL以上で採取されることが好ましく、4mL以上で採取されることがより好ましく、11mL以下で採取されることが好ましく、10mL以下で採取されることがより好ましい。この場合には、血液が過度に希釈されることなく、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。
 上記血液採取容器では、上記血液採取容器本体内に、血漿分離材が収容されていないことが好ましい。上記血漿分離材は、遠心分離時に血漿層と血球層との間に移動して隔壁を形成する組成物(血漿分離用組成物)又は冶具(血漿分離用冶具)である。上記血漿分離用組成物としては、25℃で流動性を有する有機成分と、無機微粉末とを含む組成物(例えば、WO2010/053180A1に記載の組成物)等が挙げられる。上記血漿分離用冶具としては、例えば、WO2010/132783A1等に記載の機械的セパレータ等が挙げられる。上記血液保存用組成物が収容された上記血液採取容器では、保存前の血漿量と比べて保存後の血漿量の減少を抑えることができるので、血漿分離材が備えられていなくてもよい。
 上記血液採取容器は、採血管であることが好ましい。上記血液採取容器本体は、採血管本体であることが好ましい。
 上記血液採取容器は、例えば、以下のようにして製造することができる。
 抗凝固剤(A)と化合物(B)とポリエーテル化合物(C)と、必要に応じて他の成分とを混合して、血液保存用組成物を得る。得られた血液保存用組成物を血液採取容器本体内に収容する。
 上記血液採取容器の内圧は特に限定されない。上記血液採取容器の内圧は、減圧されていることが好ましい。上記血液採取容器が減圧容器である場合には、所定量の血液を簡便に血液採取容器に採取することができる。上記血液採取容器は、内部が排気された上で、上記栓体によって密閉された真空採血管として用いることもできる。真空採血管である場合、採血者の技術差によらず一定量の血液採取を簡便に行うことができる。
 細菌感染を防止する観点から、上記血液採取容器の内部はISO又はJISの基準に則って滅菌されていることが好ましい。
 (血漿の分離方法)
 上記血液採取容器を用いて、血液から血漿を分離することができる。上記血漿の分離方法は、上記血液採取容器内に血液を採取する工程を備えることが好ましく、血液が採取された上記血液採取容器を遠心分離する工程を備えることが好ましい。
 上記血漿の分離方法では、上記血液を採取する工程と上記遠心分離する工程との間に、採取された血液と上記血液保存用組成物とを混合する工程を備えることが好ましい。採取された血液と上記血液保存用組成物とを混合する方法としては、転倒混和等が挙げられる。
 上記遠心分離する工程における遠心分離条件は、特に限定されない。上記遠心分離条件としては、例えば、400G以上4000G以下で10分間以上120分間以下で遠心分離する条件等が挙げられる。
 (細胞外遊離核酸の分離方法及び細胞外小胞の分離方法)
 上記血液採取容器を用いて、血液から細胞外遊離核酸を分離することができる。上記細胞外遊離核酸の分離方法は、上記血液採取容器内に血液を採取する工程を備えることが好ましく、上記血液が採取された上記血液採取容器を遠心分離して、血液から血漿を分離する工程を備えることが好ましく、分離された上記血漿から、細胞外遊離核酸を分離する工程を備えることが好ましい。
 上記血液採取容器を用いて、血液から細胞外小胞を分離することができる。上記細胞外小胞の分離方法は、上記血液採取容器内に血液を採取する工程を備えることが好ましく、上記血液が採取された上記血液採取容器を遠心分離して、血液から血漿を分離する工程を備えることが好ましく、分離された上記血漿から、細胞外小胞を分離する工程を備えることが好ましい。
 上記細胞外遊離核酸の分離方法及び上記細胞外小胞の分離方法では、上記血液を採取する工程と上記遠心分離する工程との間に、採取された血液と上記血液保存用組成物とを混合する工程を備えることが好ましい。採取された血液と上記血液保存用組成物とを混合する方法としては、転倒混和等が挙げられる。
 上記遠心分離する工程における遠心分離条件は、特に限定されない。上記遠心分離条件としては、例えば、400G以上4000G以下で10分間以上120分間以下で遠心分離する条件等が挙げられる。
 上記細胞外遊離核酸を分離する工程では、従来公知の方法を用いて、血漿から細胞外遊離核酸を分離することができる。上記細胞外遊離核酸としては、cell free DNA(cfDNA)、cell free RNA(cfRNA)等が挙げられる。上記血漿から細胞外遊離核酸を分離する方法としては、市販の核酸精製キットを用いる方法等が挙げられる。市販の核酸精製キットを用いることで、血漿から細胞外遊離核酸を簡便に分離することができる。核酸精製キットの市販品としては、QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit(QIAGEN社製)、QIAamp MinElute ccfDNA Kits(QIAGEN社製)及びMagMAX Cell-Free DNA Isolation Kit(Applied biosystems社製)等が挙げられる。
 上記細胞外小胞を分離する工程では、従来公知の方法を用いて、血漿から細胞外小胞を分離することができる。
 以下、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明する。本発明は以下の実施例のみに限定されない。
 血液保存用組成物の材料として、以下を用意した。
 (抗凝固剤(A))
 エチレンジアミン四酢酸二カリウム二水和物(EDTA2K・2HO)
 (化合物(B))
 トレハロース
 スクロース
 デキストラン(数平均分子量:37500、富士フイルム和光純薬社製「Dextran40000」)
 ヒドロキシエチルスターチ(数平均分子量:約20000、Santa Cruz Biotechnology Inc.社製「Hydroxyethyl starch」)
 (ポリエーテル化合物(C))
 ポリエチレングリコール(1)(数平均分子量:3000、富士フイルム和光純薬社製「ポリエチレングリコール 4,000」)
 ポリエチレングリコール(2)(数平均分子量:600、富士フイルム和光純薬社製「ポリエチレングリコール600」)
 ポリエチレングリコール(3)(数平均分子量:20000、富士フイルム和光純薬社製「ポリエチレングリコール20,000」)
 (アポトーシス阻害剤(D))
 Q-VD-OPH(Cayman Chemical Co.社製「Q-VD-OPH」)
 Z-DEVD-FMK(コスモバイオ社製「Z-DEVD-FMK」)
 Z-VAD-FMK(コスモバイオ社製「Z-VAD-FMK」)
 (無機塩(E))
 塩化ナトリウム
 水
 (実施例1)
 血液保存用組成物の作製:
 表1に記載の配合割合で各成分を混合し、血液保存用組成物(水溶液)を作製した。
 血液採取容器の作製:
 血液採取容器本体として、長さ100mm、開口部の内径14mmのポリエチレンテレフタレート有底管(PET有底管)を用意した。PET有底管に、得られた血液保存用組成物1.0mLを収容した。次いで、血液採取容器内部を50kPaに減圧し、ブチルゴム栓により密封した。このようにして血液5.0mLを採取及び保存するための血液採取容器を作製した。
 (実施例2~10及び比較例1,2)
 血液保存用組成物の配合組成を表1~3に記載のように変更したこと以外は、実施例1と同様にして、血液保存用組成物及び血液採取容器を作製した。
 (比較例3)
 抗凝固剤(EDTA2K・2HO)33重量部を、水67重量部に溶解して、抗凝固剤含有液を得た。また、血液採取容器本体として、長さ100mm、開口部の内径14mmのポリエチレンテレフタレート有底管(PET有底管)を用意した。得られた抗凝固剤含有液26mgを、血液採取容器本体の内壁面に塗布し、乾燥させた。次いで、血液採取容器内部を、血液採取量が5.0mLとなるように減圧し、ブチルゴム栓により密封した。このようにして血液採取容器を作製した。
 (評価)
 (1)血漿層中への血球細胞由来DNAの混入(血漿中のDNA濃度)
 実施例1~10及び比較例1,2では、得られた血液採取容器に血液5.0mLを採取し、血液と血液保存用組成物(水溶液)とを転倒混和により混合した。比較例3では、得られた血液採取容器に血液5.0mLを採取し、血液と血液採取容器本体の内壁面に付着したEDTA2Kとを転倒混和により混合した。次いで、混合液が収容された血液採取容器を25℃の環境下で保存した。保存から8日後に、上記混合液が収容された血液採取容器を1900Gで15分間遠心分離し、血漿層(上方)と血球層(下方)とに分離した。次いで、血液採取容器から血漿を回収した。cfDNA精製キット(QIAGEN社製「QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit」)を用いて、回収した血漿に含まれるDNAを精製した。なお、DNAの精製操作は、血液採取容器から血漿を回収した日に実施した。
 精製後の抽出液中のDNA濃度を、Qubit dsDNA HS Assay kit(Invitrogen社製)を用いて測定した。次いで、下記式により、DNA濃度(血漿1mLあたりに含まれるDNAの含量)を算出した。
 DNA濃度(ng/血漿1mL)=[A]×[B]/[C]
 [A]:精製後の抽出液中のDNA濃度の測定値(ng/mL)
 [B]:精製後の抽出液の全用量(mL)
 [C]:DNA精製に使用した血漿の用量(mL)
 比較例3で算出された上記DNA濃度(ng/血漿1mL)に対する、実施例1~10及び比較例1,2で算出された上記DNA濃度(ng/血漿1mL)の割合(比較例3に対する相対割合)を、下記式により求めた。
 比較例3に対する相対割合(%)=[P]/[Q]×100
 [P]:実施例1~10及び比較例1,2で算出されたDNA濃度(ng/血漿1mL)
 [Q]:比較例3で算出されたDNA濃度(ng/血漿1mL)
 上記相対割合が小さいほど、血球細胞由来DNAの漏出(細胞外へのゲノムDNAの漏出)が抑えられていることを意味する。なお、表中の結果は、2名の血液でそれぞれ試験したときの平均値である。
 (2)保存前後の血漿量の変化率
 実施例1~10及び比較例1,2では、得られた血液採取容器に血液5.0mLを採取し、血液と血液保存用組成物(水溶液)とを転倒混和により混合した。比較例3では、得られた血液採取容器に血液5.0mLを採取し、血液と血液採取容器本体の内壁面に付着したEDTA2Kとを転倒混和により混合した。混合液が収容された血液採取容器を1900Gで15分間遠心した。遠心後、血液採取容器内の血漿層の長さ(高さ)をノギスにより測定した。次いで、血球と血漿とを転倒混和により混合し、血液採取容器を25℃の環境下で7日間保存した。7日間の保管後、血液採取容器を1900Gで15分間遠心した。遠心後、血液採取容器内の血漿層の長さ(高さ)をノギスにより測定した。次いで、下記式により、保存前の血漿量に対する、保存後の血漿量の相対割合を算出した。また、保存前後の血漿量の変化率を下記の基準で評価した。なお、上記血漿層の長さは、2名の血液でそれぞれ試験したときの平均値である。
 保存後の血漿量の相対割合(%)=[X]/[Y]×100
 [X]:7日間保存後の血漿層の長さ(mm)
 [Y]:保存前の血漿層の長さ(mm)
 <保存前後の血漿量の変化率の判定基準>
 ○:保存後の血漿量の相対割合が89%以上
 ×:保存後の血漿量の相対割合が89%未満
 構成及び結果を下記の表1~3に示す。なお、表中、抗凝固剤の濃度は、EDTA2K・2HOの濃度ではなく、EDTA2Kの濃度を意味する。それ以外の成分の含有量は、純分量である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 1…血液採取容器本体
 2…血液保存用組成物
 3…栓体
 5…血液採取容器

Claims (10)

  1.  抗凝固剤(A)と、
     二糖類、二糖類の誘導体、多糖類又は多糖類の誘導体である化合物(B)と、
     ポリエチレンオキサイド又はポリエチレングリコールであるポリエーテル化合物(C)とを含む、血液保存用組成物。
  2.  前記化合物(B)が、二糖類と、多糖類又は多糖類の誘導体とを含む、請求項1に記載の血液保存用組成物。
  3.  前記化合物(B)が、トレハロース又はスクロースと、デキストラン又はヒドロキシエチルスターチとを含む、請求項1又は2に記載の血液保存用組成物。
  4.  前記ポリエーテル化合物(C)が、ポリエチレングリコールを含む、請求項1~3のいずれか1項に記載の血液保存用組成物。
  5.  アポトーシス阻害剤(D)を含む、請求項1~4のいずれか1項に記載の血液保存用組成物。
  6.  前記アポトーシス阻害剤(D)が、Q-VD-OPH、Z-DEVD-FMK、又はZ-VAD-FMKを含む、請求項5に記載の血液保存用組成物。
  7.  無機塩(E)を含む、請求項1~6のいずれか1項に記載の血液保存用組成物。
  8.  水を含む、請求項1~7のいずれか1項に記載の血液保存用組成物。
  9.  血液採取容器本体と、
     前記血液採取容器本体内に収容された血液保存用組成物とを備え、
     前記血液保存用組成物が、請求項1~8のいずれか1項に記載の血液保存用組成物である、血液採取容器。
  10.  前記血液採取容器本体内に、血漿分離材が収容されていない、請求項9に記載の血液採取容器。
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