WO2021131411A1 - 核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体 - Google Patents

核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体 Download PDF

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nucleic acid
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祐樹 宮内
崇 蓼沼
朋之 田口
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横河電機株式会社
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    • G01N2021/6439—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks

Definitions

  • the present invention relates to a nucleic acid sequence measuring device, a nucleic acid sequence measuring method, and a computer-readable non-temporary recording medium.
  • a method for measuring a target having a specific nucleic acid sequence contained in a sample a method using a DNA chip (a detection probe having a complementary sequence of the specific nucleic acid sequence provided on a solid surface such as a substrate) is widely used.
  • This method is a method of measuring a target by utilizing the property that the target contained in the sample added to the DNA chip is collected by the detection probe of the DNA chip by hybridization. In this method, the amount of the target contained in the sample can be measured in addition to whether or not the target is contained in the sample.
  • Patent Document 1 as the above-mentioned detection probe, a device for measuring a nucleic acid sequence provided with a fluorescent probe to which a fluorescent molecule is added and a quenching probe to which a quenching molecule for quenching the fluorescence of the fluorescent molecule is added ( A method of measuring a target using a DNA chip) is disclosed. In this method, it is possible to measure the target without adding fluorescent molecules to the target and washing the DNA chip (washing for removing uncollected targets and the like).
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and is a nucleic acid sequence measuring device, a nucleic acid sequence measuring method, and a computer capable of improving the measurement accuracy of a target having a specific nucleic acid sequence contained in a sample. It is an object of the present invention to provide a readable non-temporary recording medium.
  • the nucleic acid sequence measuring apparatus is an addition of the target in the nucleic acid sequence measuring apparatus (1) for measuring a target (TG) having a specific nucleic acid sequence contained in a sample.
  • a target TG
  • the nucleic acid sequence measurement device Before or after the addition of the sample to the nucleic acid sequence measurement device based on the detection unit (12) for detecting the fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measurement device (DV) that emits fluorescence by the detection unit and the detection result of the detection unit.
  • the first light amount indicating the amount of fluorescence emitted from the predetermined measurement region (SP) of the nucleic acid sequence measurement device and the addition of the sample to the nucleic acid sequence measurement device are defined in advance.
  • the detection unit includes an image acquisition unit (12a) for acquiring an image of at least the image acquisition region (BK) including the measurement region, and the calculation unit includes the calculation unit.
  • the first image which is an image of the image acquisition region acquired at the first time point
  • the second image which is an image of the image acquisition area acquired at the second time point
  • the amount of light and the amount of the second light are obtained, respectively.
  • the calculation unit uses the average gradation value of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image as the first light amount as the image processing.
  • the process of obtaining (S13) and the process of obtaining the average gradation value of the pixels forming the image of the measurement region included in the second image as the second light amount (S14) are performed.
  • the calculation unit uses pixels in which the difference in gradation value for each pixel between the first image and the second image exceeds a predetermined first threshold value.
  • the calculation unit obtains the standard deviation of the gradation value of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image, and is based on the standard deviation.
  • the first threshold is set.
  • the calculation unit performs the image processing with the gradation values of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image and the second.
  • a process (S33) is performed in which the difference between the gradation values of the pixels forming the image of the measurement region included in the image and the gradation values of the pixels is obtained as the difference between the first light amount and the second light amount.
  • the calculation unit extracts pixels in which the difference between the first light amount and the second light amount exceeds a predetermined second threshold value, and the extracted pixels The target is measured based on the number.
  • the calculation unit obtains the standard deviation of the gradation values of the pixels forming the image in the region other than the measurement region included in the first image, and the standard deviation is obtained.
  • the second threshold value is set based on.
  • the image acquisition unit acquires an image of the image acquisition region with different resolutions.
  • the nucleic acid sequence measuring method is a nucleic acid sequence measuring method executed by a nucleic acid sequence measuring device for measuring a target (TG) having a specific nucleic acid sequence contained in a sample, and is obtained by adding the target.
  • TG target
  • a first amount of light indicating the amount of fluorescence emitted from a predetermined measurement region of the device for measuring nucleic acid sequence at a first time point before or immediately after the addition of the sample to the device for measuring a nucleic acid sequence that emits fluorescence, and the above.
  • the difference from the second light amount indicating the amount of fluorescence emitted from the measurement region was obtained (S15, S28, S33), the target is measured based on the difference between the first light amount and the second light amount (S16, S29, S36).
  • the nucleic acid sequence measurement method acquires an image of at least the image acquisition region including the measurement region, and obtains a first image which is an image of the image acquisition region acquired at the first time point.
  • Image processing of the second image which is an image of the image acquisition region acquired at the second time point, is performed to obtain the first light amount and the second light amount, respectively.
  • the image processing a process of obtaining the average gradation value of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image as the first light amount (S13). And the process (S14) of obtaining the average gradation value of the pixels forming the image of the measurement area included in the second image as the second light amount.
  • pixels in which the difference in gradation value for each pixel between the first image and the second image exceeds a predetermined first threshold value are extracted, and the first image is described.
  • the standard deviation of the gradation value of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image is obtained, and the first threshold value is set based on the standard deviation. Set.
  • the gradation value of each of the pixels forming the image of the measurement region included in the first image and the gradation value included in the second image are described.
  • a process (S33) is performed in which the difference between the gradation values of the pixels forming the image in the measurement area and the gradation value is obtained as the difference between the first light amount and the second light amount.
  • pixels in which the difference between the first light amount and the second light amount exceeds a predetermined second threshold value are extracted, and the pixels are extracted based on the number of extracted pixels. Measure the target.
  • the standard deviation of the gradation value of the pixels forming the image in the region other than the measurement region included in the first image is obtained, and the standard deviation is based on the standard deviation. 2 Set the threshold.
  • nucleic acid sequence measurement method acquires images in the image acquisition region with different resolutions.
  • a computer-readable non-temporary recording medium is a computer-readable device that stores a program executed by a nucleic acid sequence measuring device that measures a target (TG) having a specific nucleic acid sequence contained in a sample.
  • the program comprises the nucleic acid at the first time point before or immediately after the addition of the sample to the nucleic acid sequence measuring device that fluoresces due to the addition of the target to the nucleic acid sequence measuring device.
  • the first light amount indicating the amount of fluorescence emitted from the predetermined measurement region of the sequence measurement device and the second time point after the predetermined time has elapsed from the addition of the sample to the nucleic acid sequence measurement device.
  • the difference from the second light amount indicating the amount of fluorescence emitted from the measurement region is obtained (S15, S28, S33), and the target is measured based on the difference between the first light amount and the second light amount (S15, S28, S33). S16, S29, S36).
  • the program causes the nucleic acid sequence measuring apparatus to acquire an image of an image acquisition region including at least the measurement region, and the acquisition at the first time point.
  • Image processing of the first image which is an image of the image acquisition region and the second image which is an image of the image acquisition region acquired at the second time point is performed to obtain the first light amount and the second light amount, respectively. ..
  • the present invention there is an effect that the measurement accuracy of the target having a specific nucleic acid sequence contained in the sample can be improved as compared with the conventional case.
  • nucleic acid sequence measuring apparatus the nucleic acid sequence measuring method, and the computer-readable non-temporary recording medium according to the embodiment of the present invention will be described in detail with reference to the drawings.
  • the outline of the embodiment of the present invention will be described first, and then the details of the embodiment of the present invention will be described.
  • An embodiment of the present invention is intended to improve the measurement accuracy of a target having a specific nucleic acid sequence contained in a sample as compared with the conventional case.
  • an embodiment of the present invention enables measurement of a target even if the target contained in the sample is very small.
  • the embodiment of the present invention eliminates the effects of weak fluorescence (offset light) emitted from the nucleic acid sequence measurement device and uneven fluorescence (variation in the amount of light) as much as possible even when no sample is added. By doing so, high measurement accuracy is realized.
  • the device for measuring a nucleic acid sequence disclosed in Patent Document 1 described above has a fluorescent probe to which a fluorescent molecule is added and a quenching probe to which a quenching molecule is added, and the fluorescence of the fluorescent molecule is extinguished by the quenching molecule. As described above, the fluorescent probe and the quenching probe are combined. In this device for measuring a nucleic acid sequence, when a target to be measured is added, the binding between the fluorescent probe and the quenching probe is broken by hybridization so that fluorescence is emitted.
  • the fluorescence of the fluorescent molecule added to the fluorescent probe is extinguished by the quenching molecule added to the quenching probe, so that the device for measuring the nucleic acid sequence fluoresces. Should not be issued.
  • the quenching of the fluorescence by the quenching molecule is incomplete, offset light is emitted from the device for measuring the nucleic acid sequence. Since such offset light becomes noise, the measurement accuracy is deteriorated. For example, when the number of targets is small, the fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measuring device is also weak, and if the weak fluorescence is buried in the offset light, the target cannot be measured.
  • a process of comparing the amount of fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measuring device is performed before and after hybridization. That is, a process is performed in which the amount of offset light emitted from the nucleic acid sequence measuring device before hybridization is compared with the amount of fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measuring device after hybridization.
  • a nucleic acid sequence measurement device having a block (second block) to which a sample not containing a target is added in addition to a block (first block) to which a sample containing a target is added has been used.
  • the amount of fluorescence (offset light) emitted from the second block is compared with the amount of fluorescence (fluorescence emitted after hybridization) emitted from the first block.
  • the above processing was performed using a nucleic acid sequence measurement device to which a sample containing a target is added and a nucleic acid sequence measurement device to which a sample not containing a target is added. That is, the amount of fluorescence (offset light) emitted from the latter device for measuring nucleic acid sequences is compared with the amount of fluorescence (fluorescence emitted after hybridization) emitted from the former device for measuring nucleic acid sequences. ..
  • the amount of offset light varies between blocks and between nucleic acid sequence measurement devices due to manufacturing variations of nucleic acid sequence measurement devices. Therefore, if the amount of light of the offset light is relatively small, the target can be measured, but if the amount of light of the offset light is relatively large, it may not be possible to measure the target. As described above, the measurement accuracy deteriorates depending on the magnitude of the variation in the amount of offset light between the blocks and the device for measuring the nucleic acid sequence.
  • the amount of light of fluorescence emitted from the predetermined measurement region of the nucleic acid sequence measurement device is shown at the first time point before or immediately after the addition of the sample to the nucleic acid sequence measurement device.
  • the difference between the amount of light and the amount of second light indicating the amount of fluorescence emitted from the measurement region at the second time point after a predetermined time has elapsed from the addition of the sample to the device for measuring the nucleic acid sequence is determined.
  • the target is measured based on the difference between the first light amount and the second light amount.
  • the difference between the first light amount of fluorescence emitted from a certain measurement region at the first time point and the second light amount of fluorescence emitted from the same measurement area as described above at the second time point Seeking. Then, the target is measured based on the difference between the first light amount and the second light amount. Therefore, the measurement accuracy of the target having a specific nucleic acid sequence contained in the sample can be improved as compared with the conventional case.
  • a device for measuring a nucleic acid sequence used for measuring a nucleic acid sequence will be described.
  • a nucleic acid sequence measuring device for measuring a nucleic acid sequence using the nucleic acid sequence measuring device and a nucleic acid sequence measuring method will be described in order.
  • FIG. 1 is a perspective view schematically showing the appearance of the device for measuring a nucleic acid sequence used in the embodiment of the present invention.
  • the nucleic acid sequence measurement device DV is, for example, a device in which a plurality of spot SPs (measurement regions) are formed on a substrate SB.
  • the substrate SB for example, plate-shaped glass having a rectangular shape in a plan view, single crystals such as silicon, calcium fluoride and sapphire, ceramics, and a resin material can be used.
  • the resin material examples include COP (cycloolefin polymer) having excellent optical properties, chemical and thermal stability, COC (cyclic olefin copolymer), polycarbonate, acrylic resin, polyethylene resin and the like.
  • the plan view shape of the substrate SB may be any shape.
  • the spot SP is an area where the detection probe used to detect the target to be measured is fixed.
  • This spot SP is divided into blocks BK in units of a predetermined number. Addition of the sample to the nucleic acid sequence measurement device DV is performed for each block BK. In addition, image acquisition of the nucleic acid sequence measurement device DV is often performed for each block BK. That is, it can be said that the block BK is an image acquisition area.
  • FIG. 2 is a diagram schematically showing a detection probe of the device for measuring a nucleic acid sequence used in the embodiment of the present invention.
  • the detection probe includes a fluorescent probe PB1 fixed on the substrate SB and a quenching probe PB2.
  • the fluorescent probe PB1 is obtained by adding the fluorescent molecule FM to the complementary sequence of the target TG to be measured.
  • the quenching probe PB2 is a sequence in which the quenching molecule QM is added to a sequence that is at least partially complementary to the above-mentioned complementary sequence of the fluorescent probe PB1.
  • the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2 are bound so that the fluorescence of the fluorescent molecule FM is extinguished by the quenching molecule QM.
  • the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2 are bound by the coupling portion CN.
  • the fluorescence of the fluorescent molecule FM is extinguished by the quenching molecule QM by the principle of quenching by the fluorescence resonance energy transfer.
  • the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2 are bound by the binding portion CN, and the fluorescent molecule FM and the quenching molecule QM are in close contact with each other. In this state, even if the excitation light is irradiated, the fluorescence of the fluorescent molecule FM is extinguished by the quenching molecule QM, so that the fluorescence is not emitted.
  • the fluorescent probe PB1 having a complementary sequence of the target TG dissociates from the quenching probe PB2 and binds to the target TG.
  • the binding between the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2 is released, and the fluorescent molecule FM and the quenching molecule QM are separated from each other. In this state, fluorescence is emitted from the fluorescent molecule FM by irradiation with excitation light.
  • the complementary sequence of the target TG may be provided on the quenching probe PB2. That is, the quenching probe PB2 is obtained by adding the quenching molecule QM to the complementary sequence of the target TG, and the fluorescent probe PB1 adds the fluorescent molecule FM to the sequence that is at least partially complementary to the above complementary sequence of the quenching probe PB2. It may be the one that has been used.
  • FIG. 3 is a block diagram showing a main configuration of a nucleic acid sequence measuring device according to an embodiment of the present invention.
  • the nucleic acid sequence measuring device 1 includes a detection device 10 and an arithmetic unit 20, and uses the nucleic acid sequence measuring device DV described with reference to FIGS. 1 and 2 to prepare a sample. Measure the included targets.
  • the detection device 10 includes a temperature control stage 11 and a detection unit 12, and detects fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measurement device DV.
  • the temperature control stage 11 is configured so that the device DV for measuring the nucleic acid sequence can be mounted, and adjusts the temperature of the mounted device DV for measuring the nucleic acid sequence.
  • the temperature control stage 11 is provided to adjust the temperature of the nucleic acid sequence measurement device DV to room temperature. This is because the amount of light of the fluorescent molecule FM may change depending on the temperature. It is desirable that the temperature control stage 11 is configured so that the sample can be agitated by vibrating or rotating the nucleic acid sequence measuring device DV in order to promote the hybridization reaction.
  • the detection unit 12 irradiates the nucleic acid sequence measurement device DV with excitation light to detect the fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measurement device DV.
  • the detection unit 12 includes an excitation light source (not shown) and an image acquisition unit 12a.
  • An excitation light source (not shown) emits excitation light to irradiate the nucleic acid sequence measuring device DV.
  • the excitation light emitted from the excitation light source is irradiated for each block BK shown in FIG. 1, for example.
  • excitation light source examples include a laser light source that emits single-wavelength laser light or its expanded light, an LED (Light Emitting Diode), a lamp that emits white light, and a combination of an LED and a wavelength filter.
  • a light source or the like can be used.
  • the image acquisition unit 12a includes a solid-state imaging device such as a CCD (Charge Coupled Device) or a CMOS (Complementary Metal Oxide Semiconductor), and is an image of a device DV for measuring a nucleic acid sequence. (Two-dimensional image) is acquired.
  • the image acquisition unit 12a acquires an image for each block BK shown in FIG. 1, for example.
  • the arithmetic unit 20 measures the target TG based on the detection result of the detection device 10. Specifically, the arithmetic unit 20 measures the amount of the target contained in the sample in addition to whether or not the sample added to the nucleic acid sequence measuring device DV contains the target TG.
  • the arithmetic unit 20 includes an operation unit 21, a display unit 22, an input / output unit 23, a storage unit 24, and an arithmetic unit 25.
  • the operation unit 21 is provided with an input device such as a keyboard or a pointing device, and outputs an instruction (instruction to the arithmetic unit 20) according to the operation of the user who uses the arithmetic unit 20 to the arithmetic unit 25.
  • the display unit 22 includes a display device such as a liquid crystal display device, and displays various information output from the calculation unit 25.
  • the operation unit 21 and the display unit 22 may be physically separated, and may be physically integrated like a touch panel type liquid crystal display device having both a display function and an operation function. There may be.
  • the input / output unit 23 is connected to the detection unit 12 of the detection device 10 and inputs / outputs various data to / from the detection unit 12. For example, the input / output unit 23 outputs control data for emitting excitation light from an excitation light source (not shown) to the detection unit 12. Further, the detection device 10 inputs the detection result of the detection unit 12 (image data acquired by the image acquisition unit 12a) to the input / output unit 23. After that, the input / output unit 23 outputs the detection result of the detection unit 12 to the calculation unit 25.
  • the input / output unit 23 may be connected to the temperature control stage 11 so that the arithmetic unit 20 controls the temperature of the nucleic acid sequence measurement device DV.
  • the storage unit 24 is provided with an auxiliary storage device such as an HDD (hard disk drive) or SSD (solid state drive), and stores various data.
  • the storage unit 24 stores image data output from the detection unit 12, various data required for the calculation of the calculation unit 25, data indicating the calculation result of the calculation unit 25, and other data.
  • the storage unit 24 may store, for example, a program that realizes the functions of the calculation unit 25.
  • the calculation unit 25 stores the image data output from the input / output unit 23 in the storage unit 24. Further, the calculation unit 25 reads out the image data stored in the storage unit 24, performs image processing on the image data, and measures the target TG included in the sample added to the nucleic acid sequence measurement device DV. Specifically, the calculation unit 25 measures the target TG before and after hybridization based on the amount of change in the amount of fluorescence emitted from the same spot SP. Further, the calculation unit 25 outputs control data for the detection unit 12 (for example, control data for emitting excitation light from an excitation light source (not shown)) to the input / output unit 23. The details of the processing performed by the calculation unit 25 will be described later.
  • the function of the arithmetic unit 25 is realized by software, for example, by a CPU (Central Processing Unit) or an MPU (Micro Processing Unit) reading and executing a program stored in the storage unit 24. It may be something that is done.
  • the function of the arithmetic unit 25 is realized by using hardware such as FPGA (Field Programmable Gate Array), LSI (Large Scale Integration), and ASIC (Application Specific Integrated Circuit). May be done.
  • first nucleic acid sequence measurement method a measurement method that does not consider the uneven fluorescence (variation in the amount of light) in the spot SP
  • second nucleic acid sequence measurement method two measurement methods (hereinafter, each referred to as a "second nucleic acid sequence measurement method” and a “third nucleic acid sequence measurement method") in consideration of fluorescence unevenness (variation in light intensity) in the spot SP.
  • FIG. 4 is a flowchart showing the first nucleic acid sequence measurement method.
  • the sample including the target TG is adjusted.
  • the work of preparing the nucleic acid sequence measuring device DV described with reference to FIGS. 1 and 2 in the temperature control stage 11 of the nucleic acid sequence measuring device 1 is performed.
  • a sample is added to one of a plurality of block BKs (hereinafter, referred to as “target block BK0”) of the nucleic acid sequence measurement device DV.
  • the detection unit 12 When a sample is added to the nucleic acid sequence measurement device DV, the detection unit 12 first acquires an image (first image) at a time point (first time point) immediately after the sample addition (step S11). In this process, the control data output from the arithmetic unit 25 of the arithmetic unit 20 is input to the detection unit 12 via the input / output unit 23. As a result, excitation light is emitted from an excitation light source (not shown) provided in the detection unit 12, and the target block BK0 is irradiated with the excitation light. Then, the image acquisition unit 12a acquires an image of the target block BK0 irradiated with the excitation light.
  • this period is a period in which the amount of fluorescence emitted from the nucleic acid sequence measuring device DV hardly changes even if the sample is added. This period varies depending on the properties of the nucleic acid sequence measurement device DV (property of the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2) and the amount of the target TG contained in the sample. Therefore, it is desirable that the timing of acquiring the first image is as close as possible to the time of sample addition.
  • the detection unit 12 acquires an image (second image) at a time point (second time point) after a lapse of a predetermined time from the sample addition (step S12). Specifically, after the temperature of the nucleic acid sequence measurement device DV is raised by the temperature control stage 11 and a time that is considered to have sufficiently progressed hybridization has elapsed, the image acquisition unit 12a captures the image of the target block BK0. get.
  • the time during which hybridization is considered to have progressed sufficiently varies depending on the properties of the nucleic acid sequence measurement device DV (property of the fluorescent probe PB1 and the quenching probe PB2) and the amount of the target TG contained in the sample. Therefore, for example, it is desirable to conduct an experiment in advance and set the above time in advance.
  • the images acquired in steps S11 and S12 are output from the detection unit 12 to the arithmetic unit 20.
  • the detection unit 12 may individually output the images acquired in steps S11 and S12 to the arithmetic unit 20 each time each step is completed.
  • the detection unit 12 may temporarily store the image acquired in step S11 and output it to the arithmetic unit 20 together with the image acquired in step S12 after the end of step S12.
  • the image output from the detection unit 12 to the arithmetic unit 20 is stored in the storage unit 24 of the arithmetic unit 20.
  • the arithmetic unit 25 of the arithmetic unit 20 reads out the first image stored in the storage unit 24, performs image processing, and calculates the amount of fluorescence light (first light amount) emitted from each of the spot SPs (step S13). .. Specifically, the calculation unit 25 performs image processing on the image acquired in step S11 (the image of the target block BK0) and extracts the spot area (the area estimated to be the image of the spot SP). To do. Then, the calculation unit 25 obtains the average gradation value of each pixel forming the image of the spot SP as the first light amount for each of the extracted spot regions.
  • the arithmetic unit 25 of the arithmetic unit 20 reads out the second image stored in the storage unit 24 and performs image processing to calculate the amount of fluorescence light (second light amount) emitted from each of the spot SPs (step S14). Specifically, the calculation unit 25 performs image processing on the image (image of the target block BK0) acquired in step S12 to extract a spot area. Then, the calculation unit 25 obtains the average gradation value of each pixel forming the image of the spot SP as the second light amount for each of the extracted spot regions.
  • the calculation unit 25 has a light amount that is the difference (light amount change amount) between the average gradation value (first light amount) calculated in step S13 and the average gradation value (second light amount) calculated in step S14.
  • the amount of change is calculated (step S15). That is, the calculation unit 25 calculates the amount of change in the amount of fluorescence emitted from the same spot SP before and after hybridization.
  • the arithmetic unit 25 of the arithmetic unit 20 measures the target TG included in the sample (step S16). Specifically, the calculation unit 25 determines whether or not the target TG is contained in the sample added to the nucleic acid sequence measurement device DV. Further, the calculation unit 25 measures the amount of the target included in the sample. In this way, the target TG included in the sample is measured.
  • FIG. 5 is a diagram showing an example of an image acquired by the first nucleic acid sequence measurement method.
  • FIG. 5A is, for example, an image of the target block BK0 before hybridization (first image)
  • FIG. 5B is, for example, an image of the target block BK0 after hybridization (second image).
  • the circular regions arranged two-dimensionally in FIGS. 5A and 5B indicate an image (spot region) of the spot SP provided in the target block BK0.
  • the color of this spot region has a smaller gradation value (closer to black) as the amount of fluorescence emitted from the spot SP is smaller, and a larger gradation value (whiter) as the amount of fluorescence emitted from the spot SP is larger. Closer).
  • each color of the spot region is gray. This means that offset light is emitted from each of the spots SP due to the incompleteness of quenching by the quenching molecule QM provided on the quenching probe PB2.
  • the color of the spot region in the region R surrounded by the broken line is white. This means that at the spot SP in the region R, the target TG was collected by the detection probe and emitted strong fluorescence.
  • the calculation unit 25 calculates the average gradation value as the first light quantity for each of the spot regions shown in FIG. 5A. In the process of step S14 described above, the calculation unit 25 calculates the average gradation value as the second light amount for each of the spot regions shown in FIG. 5B. Then, in the process of step S15 described above, the calculation unit 25 calculates the amount of change in the amount of light, which is the difference between the amount of the first light and the amount of the second light, for each of the spot regions.
  • the calculation unit 25 measures the target TG included in the sample by using the amount of change in the amount of light in the 10 spot regions in the region R.
  • the first nucleic acid sequence measurement method the first amount of fluorescence emitted from a certain spot SP at the time immediately after the sample addition (first time point) and the time point after a predetermined time from the sample addition (second time point). Therefore, the difference from the second light amount of fluorescence emitted from the same spot SP as described above is obtained. Then, the target is measured based on the difference between the first light amount and the second light amount. As a result, the influence of offset light can be effectively eliminated, so that the measurement accuracy of the target having a specific nucleic acid sequence contained in the sample can be improved as compared with the conventional case.
  • FIG. 6 is a flowchart showing a second nucleic acid sequence measurement method.
  • the same reference numerals are given to the steps similar to the steps shown in FIG. Also in this measurement method, the sample including the target TG is adjusted before the processing of the flowchart shown in FIG. 6 is started, and then the sample is added to the target block BK0.
  • the detection unit 12 When a sample is added to the nucleic acid sequence measurement device DV, the detection unit 12 first acquires an image (first image) at a time point (first time point) immediately after the sample addition (step S11). Next, the detection unit 12 acquires an image (second image) at a time point (second time point) after a lapse of a predetermined time from the sample addition (step S12). Since the processes of steps S11 and S12 are the same as the processes described with reference to FIG. 4, detailed description thereof will be omitted.
  • the calculation unit 25 performs image processing on the first image and the second image, and extracts a spot region from each of the first image and the second image (step S21). Subsequently, the calculation unit 25 calculates the gradation value standard deviation for each of the spot regions extracted from the first image (step S22). Specifically, the calculation unit 25 calculates the standard deviation of the gradation values of the pixels forming the image of the spot SP for each spot region extracted from the first image. Then, the calculation unit 25 sets each confidence interval (first threshold value) of the spot region using the gradation value standard deviation calculated in step S22 (step S23).
  • step S22 is performed in order to determine how much fluorescence unevenness (variation in the amount of light) occurs in each of the spot regions.
  • the processing of step S23 is performed in order to extract pixels having a certain amount of change in the amount of light before and after hybridization (pixels having a large difference in gradation value) for each of the spot regions in the processing of step S25 described later.
  • the method of setting the confidence interval is arbitrary, but for example, a confidence interval having a confidence coefficient of 0.95 can be set.
  • the calculation unit 25 calculates the amount of change in the gradation value of each pixel forming the image of the spot SP for each spot region extracted in the process of step S21 (step S24). Then, the calculation unit 25 extracts pixels having a gradation value change equal to or greater than the confidence interval set in step S23 for each spot region extracted in the process of step S21 (step S25).
  • the calculation unit 25 determines the average gradation value (first light amount) and gradation of the pixels extracted in the processing of step S25 for each spot region extracted from the first image in the processing of step S21.
  • the value standard deviation is calculated (step S26).
  • the calculation unit 25 calculates the average gradation value (second light amount) and the gradation value standard deviation of the pixels extracted in the process of step S25 for each spot region extracted from the second image in the process of step S21. Calculate (step S27).
  • the calculation unit 25 tests the difference (light amount change amount) between the average gradation value (first light amount) calculated in step S26 and the average gradation value (second light amount) calculated in step S27. (Step S28). Specifically, the calculation unit 25 uses the gradation value standard deviation calculated in steps S26 and S27 to test the difference (light amount change amount) of the above average gradation values. Finally, the calculation unit 25 measures the target TG included in the sample based on the test result in step S28 (step S29). In this way, the target TG included in the sample is measured.
  • FIG. 7 is a diagram showing an example of an image acquired by the second nucleic acid sequence measurement method.
  • FIG. 7A is, for example, a part of an image (first image) of the target block BK0 acquired before hybridization.
  • FIG. 7B is an enlarged view of one spot region of the images (first image, second image) acquired before and after hybridization.
  • the image G1 is an image before hybridization
  • the image G2 is an image after hybridization.
  • the image G2 is generally whitish (larger gradation value) than the image G1. This means that the overall amount of light is higher after hybridization than before hybridization. Further, referring to FIG. 7B, all of the images G1 and G2 have not the same gradation value but a mottled pattern. From this, it can be seen that the variation in the amount of fluorescence light in the spot region occurs not only before hybridization but also after hybridization.
  • FIG. 8 is a diagram showing an example of the variation distribution of the gradation values of the pixels in the spot region before and after hybridization.
  • FIG. 8A is a histogram showing the variation distribution of the gradation values for the images G1 and G2 shown in FIG. 7B.
  • FIG. 8B is a histogram showing the variation distribution of the gradation values of the pixels (pixels having a large amount of gradation change) extracted from the images G1 and G2 shown in FIG. 7B. That is, FIG. 8B is a graph showing the variation distribution of the gradation values in a histogram after the processing of step S25 shown in FIG. 6 is performed.
  • the distribution of the gradation values of the pixels is around “20,000” before hybridization, and the distribution of the gradation values of the pixels is around “40000” after hybridization. .. Further, when comparing FIG. 8A and FIG. 8B, it can be seen that the variation is smaller and the average gradation value is larger in FIG. 8B than in FIG. 8A.
  • FIG. 9 is a diagram showing an example of the average gradation value and standard deviation of the pixels in the spot region before and after hybridization.
  • no pixel extraction is the average gradation value and standard deviation of the images G1 and G2 shown in FIG. 7B.
  • those marked with “pixel extraction” are the average gradation value and standard deviation of the pixels (pixels having a large amount of gradation change) extracted from the images G1 and G2 shown in FIG. 7B. Is.
  • the average gradation value is shown by a bar graph, and the standard deviation is shown by an error bar.
  • the average gradation value of the one with "pixel extraction” is added as “without pixel extraction” regardless of whether it is before or after hybridization. It can be seen that it is larger than the average gradation value.
  • the standard deviation of those marked with “pixel extraction” is one-third of the standard deviation of those marked “without pixel extraction” regardless of whether before or after hybridization. It can be seen that it has decreased to about one.
  • step S28 shown in FIG. 6 the calculation unit 25 determines the amount of change in the amount of light, which is the difference between the average gradation value before hybridization and the average gradation value after hybridization, and the standard deviation before and after hybridization. Tested using.
  • the standard deviation can be reduced to about one-third, so that the measurement accuracy of the target can be improved.
  • a confidence interval is set from the gradation value standard deviation of the spot region extracted from the first image, and pixels having a gradation value change equal to or greater than the confidence interval are extracted. There is.
  • the average gradation value (first light amount) of the extracted pixels is obtained for each spot area of the first image, and the average gradation value (second light amount) of the extracted pixels is obtained for each spot area of the first image. Is obtained, and the amount of change in the amount of light, which is the difference between them, is tested. Then, the target is measured based on the test result. As a result, the influence of uneven light intensity in the spot region can be effectively eliminated, so that the measurement accuracy of the target having a specific nucleic acid sequence contained in the sample can be improved as compared with the conventional case.
  • FIG. 10 is a flowchart showing a third nucleic acid sequence measurement method.
  • the same reference numerals are given to the steps similar to the steps shown in FIGS. 4 and 6.
  • the sample including the target TG is adjusted before the processing of the flowchart shown in FIG. 10 is started, and then the sample is added to the target block BK0.
  • the detection unit 12 When a sample is added to the nucleic acid sequence measurement device DV, the detection unit 12 first acquires an image (first image) at a time point (first time point) immediately after the sample addition (step S11). Next, the detection unit 12 acquires an image (second image) at a time point (second time point) after a lapse of a predetermined time from the sample addition (step S12). Next, the calculation unit 25 performs image processing on the first image and the second image, and extracts a spot region from each of the first image and the second image (step S21).
  • the calculation unit 25 calculates the gradation value standard deviation outside the spot region extracted from the first image (step S31). Specifically, the calculation unit 25 calculates the standard deviation of the gradation values of the pixels forming the image in an arbitrary region other than the spot region extracted from the first image. Then, the calculation unit 25 sets the confidence interval (second threshold value) using the gradation value standard deviation calculated in step S31 (step S32).
  • step S31 is performed, for example, to what extent the amount of light varies due to noise caused by the characteristics of the nucleic acid sequence measuring device DV and noise caused by the solid-state image sensor provided in the image acquisition unit 12a. This is to find out if it is occurring.
  • the processing of step S32 is performed in order to extract pixels in which the amount of change in the amount of light before and after hybridization is large to some extent (pixels having a large difference in gradation value) for each of the spot regions in the processing of step S34 described later.
  • the method of setting the confidence interval is arbitrary, but for example, a confidence interval having a confidence coefficient of 0.95 can be set.
  • the calculation unit 25 calculates the amount of change in the gradation value of each pixel forming the image of the spot SP for each spot region extracted in the process of step S21 (step S33). Then, the calculation unit 25 extracts pixels having a gradation value change equal to or greater than the confidence interval set in step S32 for each spot region extracted in the process of step S21 (step S34).
  • the calculation unit 25 counts the number of extracted pixels for each spot area extracted in the processing of step S21 (step S35). Finally, the calculation unit 25 measures the target TG included in the sample based on the counting result in step S35 (step S36). In this way, the target TG included in the sample is measured.
  • FIG. 11 is a diagram showing an example of an image acquired by the third nucleic acid sequence measurement method. Note that FIG. 3 shows images of spots before and after hybridization obtained when three samples having different target TG concentrations were added to the nucleic acid sequence measurement device DV. First, when the density of the target TG is low, the change in the gradation value of the image is slight before and after hybridization. Therefore, there are almost no pixels extracted by the process of step S34 in FIG.
  • the number of pixels extracted by the process of step S34 in FIG. 10 increases as the density of the target TG increases. By counting the number of extracted pixels in this way, the target TG contained in the sample can be measured.
  • the confidence interval is set from the gradation value standard deviation outside the spot region extracted from the first image.
  • the amount of change in gradation value of each pixel is calculated for each extracted spot region, and pixels having a change in gradation value equal to or greater than the confidence interval are extracted.
  • the number of extracted pixels is counted for each extracted spot area, and the target is measured based on the counting result.
  • the nucleic acid sequence measuring device 1 may be able to acquire an image (an image of a block BK or a spot SP) of the nucleic acid sequence measuring device DV at different resolutions.
  • an optical system capable of changing the optical magnification may be provided between the image acquisition unit 12a shown in FIG. 3 and the temperature control stage 11 (nucleic acid sequence measurement device DV).
  • a plurality of solid-state image pickup elements having different numbers of pixels may be provided in the image acquisition unit 12a shown in FIG. 3 so that the solid-state image pickup elements can be switched according to the resolution. This is done in order to further improve the measurement accuracy of the target by photographing the spot SP with a high resolution.
  • the diameter of the spot SP is 100 [ ⁇ m]
  • the size of one pixel of the solid-state image sensor is 10 [ ⁇ m] square (10 ⁇ 10 [ ⁇ m]).
  • the number of pixels that capture the spot SP is only about 78.5 pixels (5 ⁇ 5 ⁇ ⁇ pixels).
  • the image of the spot SP is magnified 10 times by the above optical system, the range captured by one pixel is 1 [ ⁇ m] square (1 ⁇ 1 [ ⁇ m]). Then, the number of pixels in which the spot SP is photographed becomes about 7850 pixels (50 ⁇ 50 ⁇ ⁇ pixels), and the resolution is the square of the magnification. In this way, by making it possible to acquire images of the nucleic acid sequence measurement device DV at high resolutions other than low resolution (equal magnification), it is possible to more accurately capture variations in gradation values within the spot area. Become.
  • FIG. 12 is a diagram showing an example of an image acquired by the nucleic acid sequence measuring device according to the modified example.
  • FIG. 12A is an image acquired when a certain spot SP is photographed at the same magnification.
  • FIG. 12B is an image acquired when the same spot SP as in FIG. 12A is photographed at a magnification of 10 times, and
  • FIG. 12C is an image acquired when the same spot SP as in FIG. 12A is photographed at a magnification of 40 times. It is an image to be made.
  • FIG. 12A it can be seen that an image with a coarse mosaic can be obtained when the image is taken at the same magnification.
  • FIG. 12B it can be seen that when the image is taken at a magnification of 10 times, the coarseness of the eyes is smaller than that of the image shown in FIG. 12A, but an image that looks like a mosaic is still obtained. ..
  • FIG. 12C it can be seen that an image in which the gradation value changes smoothly can be obtained.
  • FIG. 13 is a diagram showing an example of the variation distribution of the gradation values of the pixels in the spot region before and after hybridization when the image is taken at high resolution. Comparing FIG. 13 and FIG. 8A, it can be seen that the variation distribution of the gradation values can be accurately obtained when the image is taken at a high resolution.
  • the present invention is not limited to the above embodiment and can be freely changed within the scope of the present invention.
  • the image acquisition unit 12a described in the above-described embodiment may acquire a monochrome two-dimensional image or a color two-dimensional image.
  • the image acquisition unit 12a may include a highly sensitive EMCCD (Electron Multiplying CCD) or a digital CMOS.
  • the detection unit 12 may include a photodiode arranged one-to-one with the spot SP instead of the image acquisition unit 12a (or together with the image acquisition unit 12a).
  • an example of acquiring an image immediately after sample addition (an image of the target block BK0) as a first image has been described.
  • the image before adding the sample (the image of the target block BK0) may be acquired as the first image. That is, the first image may be acquired before or immediately after the addition of the sample.
  • the difference between the amount of light obtained before adding the sample and the amount of light obtained after the sample containing no target is added is obtained in advance. , It is necessary to give the difference to the amount of light in the first image.
  • an image to which the sample not including the target is added (the image of the target block BK0) may be acquired as the first image.
  • first, the first image and the second image are collectively acquired, and then the images of the first image and the second image are obtained.
  • An example of performing processing and the like has been described.
  • image processing of the first image or the like may be performed between the acquisition of the first image and the acquisition of the second image.
  • the method for setting the confidence interval in the above-mentioned third nucleic acid sequence measurement method may be used in the above-mentioned second nucleic acid sequence measurement method, and conversely, the method for setting the confidence interval in the above-mentioned second nucleic acid sequence measurement method may be used. It may be used in the third nucleic acid sequence measurement method described above. Specifically, the processes of steps S22 and S23 of FIG. 6 may be replaced with the processes of steps S31 and S32 of FIG. 10, and the processes of steps S31 and S32 of FIG. 10 may be replaced with the processes of steps S22 and S23 of FIG. You may replace it.
  • the nucleic acid sequence measuring device and the nucleic acid sequence measuring method according to the embodiment of the present invention shall be used for dry image measurement in fluorescent molecular light intensity measurement, in-liquid observation of fluorescent molecular light intensity of biochip, real-time observation in continuous reaction, and the like. Can be done.
  • the nucleic acid sequence measuring device and the nucleic acid sequence measuring method according to the embodiment of the present invention are used, for example, for bacterial species discrimination by gene / polymer analysis, oncogene, animal and plant discrimination, examination of intestinal bacteria, and the like. Can be done.
  • nucleic acid sequence measuring apparatus and the nucleic acid sequence measuring method according to the embodiment of the present invention are also applied to the following solid phase methods such as the labeled antibody method used for clinical examinations and the like.
  • solid phase methods such as the labeled antibody method used for clinical examinations and the like.
  • FISH method fluorescence in situ hybridization
  • application to various methods such as the following can be mentioned as an example.
  • the FIA method fluorescence immunoassay for measuring an antigen-antibody reaction using a fluorescent luminescent substance such as europium as a label
  • the IFA method indirect for measuring a serum (antibody) reaction in which a fluorescent substance is labeled with a pathogen as an antigen. Fluorescent antibody method).
  • the word “composed” is configured to perform the function of the present invention, or is used to refer to the configuration, elements, or parts of a device.
  • unit is used to refer to a component, unit, hardware or piece of software programmed to perform a desired function. Typical examples of hardware are devices and circuits, but are not limited to these.

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Abstract

核酸配列計測装置（１）は、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲット（ＴＧ）を計測する。核酸配列計測装置（１）は、ターゲット（ＴＧ）の添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイス（ＤＶ）から発せられる蛍光を検出する検出部（１２）と、検出部（１２）の検出結果に基づいて、核酸配列計測用デバイス（ＤＶ）に対するサンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、核酸配列計測用デバイス（ＤＶ）の予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、核酸配列計測用デバイス（ＤＶ）に対するサンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、同じ計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差に基づいてターゲットを計測する演算部（２５）と、を備える。

Description

核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体
　本発明は、核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体に関する。
　サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットを計測する方法として、ＤＮＡチップ（上記特定の核酸配列の相補配列を有する検出プローブが基板等の固相面に設けられたもの）を用いる方法が広く知られている。この方法は、ＤＮＡチップに添加されたサンプルに含まれるターゲットが、ハイブリダイゼーションによりＤＮＡチップの検出プローブに捕集される性質を利用してターゲットを計測する方法である。この方法では、ターゲットがサンプルに含まれるか否かに加えて、サンプルに含まれるターゲットの量を計測することができる。
　以下の特許文献１には、上記の検出プローブとして、蛍光分子が付加された蛍光プローブと、蛍光分子の蛍光を消光する消光分子が付加された消光プローブとが設けられた核酸配列計測用デバイス（ＤＮＡチップ）を用いてターゲットを計測する方法が開示されている。この方法では、ターゲットに対する蛍光分子の付加、及びＤＮＡチップの洗浄（捕集されていないターゲット等を除去するための洗浄）を行うことなくターゲットを計測することが可能である。
特開２０１５－４３７０２号公報
　ところで、上述した特許文献１に開示された核酸配列計測用デバイスを用いてターゲットを計測する方法では、消光分子による消光の不完全性や、蛍光のムラ(光量バラツキ）等が原因で、計測精度が悪化するという問題がある。
　本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体を提供することを目的とする。
　上記課題を解決するために、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲット（ＴＧ）を計測する核酸配列計測装置（１）において、前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイス（ＤＶ）から発せられる蛍光を検出する検出部（１２）と、前記検出部の検出結果に基づいて、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域（ＳＰ）から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測する演算部（２５）と、を備える。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記検出部が、少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域（ＢＫ）の画像を取得する画像取得部（１２ａ）を備え、前記演算部が、前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求める。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理（Ｓ１３）と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理（Ｓ１４）とを行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記第１画像と前記第２画像との画素毎の階調値の差が予め規定された第１閾値を超える画素を抽出し、前記第１画像の抽出した画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理（Ｓ２６）と、前記第２画像の抽出した画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理（Ｓ２７）とを行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第１閾値を設定する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値との差を、前記第１光量と前記第２光量との差として求める処理（Ｓ３３）を行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記第１光量と前記第２光量との差が予め規定された第２閾値を超える画素を抽出し、抽出した画素の数に基づいて前記ターゲットを計測する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記演算部が、前記第１画像に含まれる前記計測領域以外の領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第２閾値を設定する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測装置は、前記画像取得部が、前記画像取得領域の画像を、異なる解像度で取得する。
　本発明の一態様による核酸配列計測方法は、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲット（ＴＧ）を計測する核酸配列計測装置によって実行される核酸配列計測方法であって、前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差を求め（Ｓ１５、Ｓ２８、Ｓ３３）、前記第１光量と前記第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測する（Ｓ１６、Ｓ２９、Ｓ３６）。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域の画像を取得し、前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求める。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理（Ｓ１３）と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理（Ｓ１４）とを行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記第１画像と前記第２画像との画素毎の階調値の差が予め規定された第１閾値を超える画素を抽出し、前記第１画像の抽出した画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理（Ｓ２６）と、前記第２画像の抽出した画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理（Ｓ２７）とを行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第１閾値を設定する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値との差を、前記第１光量と前記第２光量との差として求める処理（Ｓ３３）を行う。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記第１光量と前記第２光量との差が予め規定された第２閾値を超える画素を抽出し、抽出した画素の数に基づいて前記ターゲットを計測する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記第１画像に含まれる前記計測領域以外の領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第２閾値を設定する。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法は、前記画像取得領域の画像を、異なる解像度で取得する。
　本発明の一態様によるコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体は、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲット（ＴＧ）を計測する核酸配列計測装置によって実行されるプログラムを記憶するコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体であって、前記プログラムは、前記核酸配列計測装置に、前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差を求めさせ（Ｓ１５、Ｓ２８、Ｓ３３）、前記第１光量と前記第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測させる（Ｓ１６、Ｓ２９、Ｓ３６）。
　また、本発明の一態様による核酸配列計測方法において、前記プログラムは、前記核酸配列計測装置に、少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域の画像を取得させ、前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求めさせる。
　本発明の更なる特徴及び態様は、添付図面を参照し、以下に述べる実施形態の詳細な説明から明らかとなるであろう。
　本発明によれば、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる、という効果がある。
本発明の実施形態で用いられる核酸配列計測用デバイスの外観を模式的に示す斜視図である。 本発明の実施形態で用いられる核酸配列計測用デバイスの検出プローブを模式的に示す図である。 本発明の実施形態による核酸配列計測装置の要部構成を示すブロック図である。 第１核酸配列計測方法を示すフローチャートである。 第１核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。 第１核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。 第２核酸配列計測方法を示すフローチャートである。 第２核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。 第２核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。 ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の階調値のバラツキ分布の一例を示す図である。 ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の階調値のバラツキ分布の一例を示す図である。 ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の平均階調値及び標準偏差の一例を示す図である。 第３核酸配列計測方法を示すフローチャートである。 第３核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。 変形例に係る核酸配列計測装置で取得される画像の一例を示す図である。 変形例に係る核酸配列計測装置で取得される画像の一例を示す図である。 変形例に係る核酸配列計測装置で取得される画像の一例を示す図である。 高解像度で撮影した場合の、ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の階調値のバラツキ分布の一例を示す図である。
　以下、図面を参照して本発明の実施形態による核酸配列計測装置、核酸配列計測方法、及びコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体について詳細に説明する。以下では、まず本発明の実施形態の概要について説明し、続いて本発明の実施形態の詳細について説明する。
〔概要〕
　本発明の実施形態は、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させるようにするものである。例えば、本発明の実施形態は、サンプルに含まれるターゲットがごく僅かであっても、ターゲットの計測を可能にするものである。具体的には、本発明の実施形態は、サンプルが添加されてない場合でも核酸配列計測用デバイスから発せられる微弱な蛍光（オフセット光）や、蛍光のムラ(光量バラツキ）等の影響を極力排除することによって、高い計測精度を実現するものである。
　上述の特許文献１に開示された核酸配列計測用デバイスは、蛍光分子が付加された蛍光プローブと、消光分子が付加された消光プローブとを有し、蛍光分子の蛍光が消光分子によって消光されるように蛍光プローブと消光プローブとが結合されたものである。この核酸配列計測用デバイスは、計測対象であるターゲットが添加されると、ハイブリダイゼーションにより、蛍光プローブと消光プローブとの結合が解消されて蛍光が発せられるようにされている。
　このため、ターゲットが核酸配列計測用デバイスに添加されなければ、蛍光プローブに付加された蛍光分子の蛍光が、消光プローブに付加された消光分子によって消光されるため、核酸配列計測用デバイスからは蛍光が発せられない筈である。しかしながら、消光分子による蛍光の消光が不完全な場合には、核酸配列計測用デバイスからオフセット光が発せられてしまう。このようなオフセット光は、ノイズとなることから計測精度を悪化させてしまう。例えば、ターゲットが僅かである場合には、核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光も微弱なものとなるため、この微弱な蛍光が、オフセット光に埋もれてしまうとターゲットの計測を行うことができない。
　また、核酸配列計測用デバイスを用いてターゲットを計測する場合には、ハイブリダイゼーション前後において核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光の光量を比較する処理が行われる。つまり、ハイブリダイゼーション前に核酸配列計測用デバイスから発せられるオフセット光の光量と、ハイブリダイゼーション後に核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光の光量とを比較する処理が行われる。
　従来は、ターゲットが含まれるサンプルが添加されるブロック（第１ブロック）以外に、ターゲットが含まれないサンプルが添加されるブロック（第２ブロック）が用意された核酸配列計測用デバイスを用いて上記の処理を行っていた。つまり、第２ブロックから発せられる蛍光（オフセット光）の光量と、第１ブロックから発せられる蛍光（ハイブリダイゼーション後に発せられる蛍光）の光量とを比較するようにしていた。
　或いは、ターゲットが含まれるサンプルが添加される核酸配列計測用デバイスと、ターゲットが含まれないサンプルが添加される核酸配列計測用デバイスとを用いて上記の処理を行っていた。つまり、後者の核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光（オフセット光）の光量と、前者の核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光（ハイブリダイゼーション後に発せられる蛍光）の光量とを比較するようにしていた。
　しかしながら、核酸配列計測用デバイスの製造バラツキ等が原因で、オフセット光の光量は、ブロック間、核酸配列計測用デバイス間でバラツキがある。このため、オフセット光の光量が相対的に少なければターゲットを計測することができるが、オフセット光の光量が相対的に大きくなるとターゲットを計測することができなくなるといったことが起こり得る。このように、ブロック間、核酸配列計測用デバイス間でのオフセット光の光量バラツキの大きさに応じて計測精度が悪化してしまう。
　また、上述の特許文献１に開示された核酸配列計測用デバイスでは、スポット（上述した結合状態にある蛍光プローブ及び消光プローブが基板上に固定されている領域）から発せられる蛍光の光量バラツキもある。これは、スポット内におけるプローブの固定量や反応のムラ等が原因である。このようなスポット内における光量バラツキも、計測精度を悪化させる原因となる。
　本発明の実施形態では、まず、核酸配列計測用デバイスに対するサンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、核酸配列計測用デバイスに対するサンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差を求める。そして、第１光量と第２光量との差に基づいてターゲットを計測するようにしている。
　このように、本発明の実施形態では、第１時点で、ある計測領域から発せられる蛍光の第１光量と、第２時点で、上記と同じ計測領域から発せられる蛍光の第２光量との差を求めている。そして、第１光量と第２光量との差に基づいてターゲットを計測するようにしている。このため、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる。
〔実施形態〕
　以下では、まず、核酸配列の計測に用いられる核酸配列計測用デバイスについて説明する。続いて、上記核酸配列計測用デバイスを用いて核酸配列を計測する核酸配列計測装置及び核酸配列計測方法について順に説明する。
　〈核酸配列計測用デバイス〉
　図１は、本発明の実施形態で用いられる核酸配列計測用デバイスの外観を模式的に示す斜視図である。図１に示す通り、核酸配列計測用デバイスＤＶは、例えば、基板ＳＢ上に複数のスポットＳＰ（計測領域）が形成されたものである。基板ＳＢとしては、例えば、平面視形状が矩形形状に形成された板状のガラス、シリコン、フッ化カルシウム及びサファイア等の単結晶、セラミックス、及び樹脂材料等を用いることができる。樹脂材料としては、光学的特性、化学的及び熱的安定性に優れたＣＯＰ（シクロオレフィンポリマー）をはじめ、ＣＯＣ（環状オレフィンコポリマー）、ポリカーボネイト、アクリル系樹脂、ポリエチレン樹脂等が挙げられる。尚、基板ＳＢの平面視形状は任意の形状であって良い。
　スポットＳＰは、計測対象であるターゲットの検出に用いられる検出プローブが固定されている領域である。このスポットＳＰは、予め規定された数を単位としたブロックＢＫ毎に区分けされている。核酸配列計測用デバイスＤＶに対するサンプルの添加は、ブロックＢＫ毎に行われる。また、核酸配列計測用デバイスＤＶの画像取得は、ブロックＢＫ毎に行われることが多い。つまり、ブロックＢＫは、画像取得領域であるということができる。
　図２は、本発明の実施形態で用いられる核酸配列計測用デバイスの検出プローブを模式的に示す図である。図２に示す通り、検出プローブは、基板ＳＢ上に固定された蛍光プローブＰＢ１と消光プローブＰＢ２とからなる。蛍光プローブＰＢ１は、計測対象であるターゲットＴＧの相補配列に蛍光分子ＦＭを付加したものである。消光プローブＰＢ２は、蛍光プローブＰＢ１の上記相補配列と少なくとも一部が相補的な配列に消光分子ＱＭを付加したものである。
　蛍光プローブＰＢ１と消光プローブＰＢ２とは、蛍光分子ＦＭの蛍光が、消光分子ＱＭによって消光されるように結合されている。図２に示す例では、蛍光プローブＰＢ１と消光プローブＰＢ２とは、結合部ＣＮで結合されている。ここで、蛍光分子ＦＭの蛍光は、蛍光共鳴エネルギー転移による消光の原理により、消光分子ＱＭによって消光される。
　ターゲットＴＧが存在しない場合には、蛍光プローブＰＢ１と消光プローブＰＢ２とは結合部ＣＮで結合されており、蛍光分子ＦＭと消光分子ＱＭとは接近した状態にある。この状態では、励起光が照射されても蛍光分子ＦＭの蛍光が消光分子ＱＭによって消光されるため、蛍光は発せられない。
　これに対し、ターゲットＴＧが存在する場合には、図２に示す通り、ターゲットＴＧの相補配列を有する蛍光プローブＰＢ１は、消光プローブＰＢ２と解離し、ターゲットＴＧと結合する。ターゲットＴＧが蛍光プローブＰＢ１と結合すると、蛍光プローブＰＢ１と消光プローブＰＢ２の結合が解消されて、蛍光分子ＦＭと消光分子ＱＭとが離間した状態になる。この状態になると、励起光の照射によって蛍光分子ＦＭから蛍光が発せられることになる。
　尚、ターゲットＴＧの相補配列は、消光プローブＰＢ２に設けられていても良い。つまり、消光プローブＰＢ２は、ターゲットＴＧの相補配列に消光分子ＱＭを付加したものであり、蛍光プローブＰＢ１は、消光プローブＰＢ２の上記相補配列と少なくとも一部が相補的な配列に蛍光分子ＦＭを付加したものであっても良い。
　〈核酸配列計測装置〉
　図３は、本発明の実施形態による核酸配列計測装置の要部構成を示すブロック図である。図３に示す通り、本実施形態による核酸配列計測装置１は、検出装置１０及び演算装置２０を備えており、図１，２を用いて説明した核酸配列計測用デバイスＤＶを用いて、サンプルに含まれるターゲットの計測を行う。
　検出装置１０は、温調ステージ１１及び検出部１２を備えており、核酸配列計測用デバイスＤＶから発せられる蛍光を検出する。温調ステージ１１は、核酸配列計測用デバイスＤＶを載置可能に構成されており、載置された核酸配列計測用デバイスＤＶの温度調整を行う。この温調ステージ１１は、核酸配列計測用デバイスＤＶの温度を常温に調整するために設けられる。これは、温度によって蛍光分子ＦＭの光量が変わることがあるためである。尚、温調ステージ１１は、ハイブリゼーション反応を促進するために、核酸配列計測用デバイスＤＶを振動又は回転等させることで、サンプルの撹拌が可能に構成されているのが望ましい。
　検出部１２は、核酸配列計測用デバイスＤＶに励起光を照射して、核酸配列計測用デバイスＤＶから発せられる蛍光を検出する。この検出部１２は、励起光源（図示省略）と画像取得部１２ａとを備える。不図示の励起光源は、核酸配列計測用デバイスＤＶに照射する励起光を射出する。励起光源から射出される励起光は、例えば、図１に示すブロックＢＫ毎に照射される。不図示の励起光源としては、例えば、単波長のレーザ光又はそのエキスパンド光を射出するレーザ光源、ＬＥＤ（Light Emitting Diode：発光ダイオード）、白色光を放出するランプ、ＬＥＤと波長フィルタとの組合せからなる光源等を用いることができる。
　画像取得部１２ａは、例えばＣＣＤ（Charge Coupled Device：電荷結合素子）やＣＭＯＳ（Complementary Metal Oxide Semiconductor：相補型金属酸化膜半導体）等の固体撮像素子を備えており、核酸配列計測用デバイスＤＶの画像（二次元画像）を取得する。画像取得部１２ａは、例えば、図１に示すブロックＢＫ毎に画像を取得する。
　演算装置２０は、検出装置１０の検出結果に基づいて、ターゲットＴＧの計測を行う。具体的に、演算装置２０は、核酸配列計測用デバイスＤＶに添加されたサンプルにターゲットＴＧが含まれるか否かに加えて、サンプルに含まれるターゲットの量を計測する。この演算装置２０は、操作部２１、表示部２２、入出力部２３、格納部２４、及び演算部２５を備える。
　操作部２１は、例えばキーボードやポインティングデバイス等の入力装置を備えており、演算装置２０を使用するユーザの操作に応じた指示（演算装置２０に対する指示）を演算部２５に出力する。表示部２２は、例えば液晶表示装置等の表示装置を備えており、演算部２５から出力される各種情報を表示する。尚、操作部２１及び表示部２２は、物理的に分離されたものであっても良く、表示機能と操作機能とを兼ね備えるタッチパネル式の液晶表示装置のように物理的に一体化されたものであっても良い。
　入出力部２３は、検出装置１０の検出部１２に接続されており、検出部１２との間で各種データの入出力を行う。例えば、入出力部２３は、検出部１２に対して、不図示の励起光源から励起光を射出させるための制御データを出力する。また、検出装置１０は、検出部１２の検出結果（画像取得部１２ａで取得された画像のデータ）を入出力部２３に入力する。その後、入出力部２３は、検出部１２の検出結果を演算部２５に出力する。尚、入出力部２３を温調ステージ１１に接続し、核酸配列計測用デバイスＤＶの温度調節を演算装置２０が行うようにしても良い。
　格納部２４は、例えばＨＤＤ（ハードディスクドライブ）やＳＳＤ（ソリッドステートドライブ）等の補助記憶装置を備えており、各種データを格納する。例えば、格納部２４は、検出部１２から出力された画像データ、演算部２５の演算で必要となる各種データ、演算部２５の演算結果を示すデータ、その他のデータを格納する。尚、格納部２４は、例えば演算部２５の機能を実現するプログラムを格納しても良い。
　演算部２５は、入出力部２３から出力される画像データを格納部２４に格納させる。また、演算部２５は、格納部２４に格納した画像データを読み出し、画像データの画像処理を行って、核酸配列計測用デバイスＤＶに添加されたサンプルに含まれるターゲットＴＧの計測を行う。具体的に、演算部２５は、ハイブリダイゼーション前後において、同じスポットＳＰから発せられる蛍光の光量変化量に基づいて、ターゲットＴＧの計測を行う。また、演算部２５は、検出部１２に対する制御データ（例えば、不図示の励起光源から励起光を射出させるための制御データ）を入出力部２３に出力する。尚、演算部２５で行われる処理の詳細は後述する。
　演算部２５の機能は、例えば、ＣＰＵ（Central Processing Unit：中央処理装置）又はＭＰＵ（Micro Processing Unit：マイクロプロセッサ）が、格納部２４に格納されたプログラムを読み出して実行することによりソフトウェア的に実現されるものであっても良い。或いは、演算部２５の機能は、ＦＰＧＡ（Field Programmable Gate Array）、ＬＳＩ（Large Scale Integration：大規模集積回路）、ＡＳＩＣ（Application Specific Integrated Circuit：特定用途向け集積回路）等のハードウェアを用いて実現されてもよい。
　〈核酸配列計測方法〉
　次に、本発明の実施形態による核酸配列計測方法について説明する。以下では、まず、スポットＳＰ内の蛍光のムラ(光量バラツキ）を考慮しない計測方法（以下、「第１核酸配列計測方法」という）について説明する。次に、スポットＳＰ内の蛍光のムラ(光量バラツキ）を考慮する２つの計測方法（以下、各々を「第２核酸配列計測方法」，「第３核酸配列計測方法」という）について説明する。
　《第１核酸配列計測方法》
　図４は、第１核酸配列計測方法を示すフローチャートである。尚、図４に示すフローチャートの処理が開始される前に、ターゲットＴＧが含まれるサンプルの調整が行われる。また、図１，２を用いて説明した核酸配列計測用デバイスＤＶを、核酸配列計測装置１の温調ステージ１１に準備する作業が行われる。以上の調整及び作業が終了すると、例えば、核酸配列計測用デバイスＤＶの複数のブロックＢＫのうちの１つ（以下、「対象ブロックＢＫ０」という）にサンプルが添加される。
　核酸配列計測用デバイスＤＶにサンプルが添加されると、まず、検出部１２は、サンプル添加直後の時点（第１時点）の画像（第１画像）を取得する（ステップＳ１１）。この処理では、演算装置２０の演算部２５から出力された制御データが、入出力部２３を介して検出部１２に入力される。これにより、検出部１２に設けられた不図示の励起光源から励起光が射出され、対象ブロックＢＫ０に照射される。そして、画像取得部１２ａは、励起光が照射されている対象ブロックＢＫ０の画像を取得する。
　ここで、サンプル添加直後とは、サンプルが添加されてからハイブリダイゼーションが殆ど進行していないとみなすことができる期間をいう。この期間は、サンプルが添加されても、核酸配列計測用デバイスＤＶから発せられる蛍光の光量が殆ど変化しない期間であるということもできる。尚、この期間は、核酸配列計測用デバイスＤＶの性質（蛍光プローブＰＢ１及び消光プローブＰＢ２の性質）やサンプルに含まれるターゲットＴＧの量に応じて変化する。このため、第１画像を取得するタイミングは、サンプル添加時点に極力近づけた時点であることが望ましい。
　次に、検出部１２は、サンプル添加から所定時間経過後の時点（第２時点）の画像（第２画像）を取得する（ステップＳ１２）。具体的には、温調ステージ１１によって核酸配列計測用デバイスＤＶの温度を上昇させてから、ハイブリダイゼーションが十分進行したと考えられる時間が経過した後に、画像取得部１２ａが対象ブロックＢＫ０の画像を取得する。
　ここで、ハイブリダイゼーションが十分進行したと考えられる時間は、核酸配列計測用デバイスＤＶの性質（蛍光プローブＰＢ１及び消光プローブＰＢ２の性質）やサンプルに含まれるターゲットＴＧの量に応じて変化する。このため、例えば、予め実験を行って上記の時間を予め定めておくのが望ましい。
　ステップＳ１１，Ｓ１２で取得された画像は、検出部１２から演算装置２０に出力される。尚、検出部１２は、ステップＳ１１，Ｓ１２で取得された画像を、各ステップが終了する度に個別に、演算装置２０に出力するようにしても良い。或いは、検出部１２は、ステップＳ１１で取得された画像を一時的に記憶しておき、ステップＳ１２の終了後に、ステップＳ１２で取得された画像とともに演算装置２０に出力するようにしても良い。検出部１２から演算装置２０に出力された画像は、演算装置２０の格納部２４に格納される。
　次いで、演算装置２０の演算部２５は、格納部２４に格納された第１画像を読み出して画像処理し、スポットＳＰの各々から発せられる蛍光の光量（第１光量）を算出する（ステップＳ１３）。具体的には、演算部２５は、ステップＳ１１で取得された画像（対象ブロックＢＫ０の画像）に対して画像処理を行って、スポット領域（スポットＳＰの画像であると推定される領域）を抽出する。そして、演算部２５は、抽出したスポット領域の各々について、スポットＳＰの画像をなす各画素の平均階調値を第１光量として求める。
　続いて、演算装置２０の演算部２５は、格納部２４に格納された第２画像を読み出して画像処理し、スポットＳＰの各々から発せられる蛍光の光量（第２光量）を算出する（ステップＳ１４）。具体的には、演算部２５は、ステップＳ１２で取得された画像（対象ブロックＢＫ０の画像）に対して画像処理を行って、スポット領域を抽出する。そして、演算部２５は、抽出したスポット領域の各々について、スポットＳＰの画像をなす各画素の平均階調値を第２光量として求める。
　そして、演算部２５は、ステップＳ１３で算出された平均階調値（第１光量）と、ステップＳ１４で算出された平均階調値（第２光量）との差（光量変化量）である光量変化量を算出する（ステップＳ１５）。つまり、演算部２５は、ハイブリダイゼーション前後において、同じスポットＳＰから発せられる蛍光の光量変化量を算出する。
　以上の処理が終了すると、演算装置２０の演算部２５は、サンプルに含まれるターゲットＴＧを計測する（ステップＳ１６）。具体的には、演算部２５は、核酸配列計測用デバイスＤＶに添加されたサンプルにターゲットＴＧが含まれるか否かを判定する。また、演算部２５は、サンプルに含まれるターゲットの量を計測する。このようにして、サンプルに含まれるターゲットＴＧの計測が行われる。
　図５は、第１核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。図５Ａは、例えば、ハイブリダイゼーション前における対象ブロックＢＫ０の画像（第１画像）であり、図５Ｂは、例えば、ハイブリダイゼーション後における対象ブロックＢＫ０の画像（第２画像）である。
　図５Ａ及び図５Ｂにおいて二次元状に配列されている円形領域は、対象ブロックＢＫ０内に設けられたスポットＳＰの画像（スポット領域）を示している。このスポット領域の色は、スポットＳＰから発せられる蛍光の光量が少ないほど階調値が小さくなり（黒色に近くなり）、スポットＳＰから発せられる蛍光の光量が多いほど階調値が大きく（白色に近くなる）。
　図５Ａに示す通り、ハイブリダイゼーション前においては、スポット領域の各々の色はグレーになっている。これは、消光プローブＰＢ２に設けられた消光分子ＱＭによる消光の不完全性が原因で、スポットＳＰの各々からオフセット光が発せられていることを意味する。図５Ｂに示す通り、ハイブリダイゼーション後においては、破線で囲まれた領域Ｒ内におけるスポット領域の色が白色になっている。これは、領域Ｒ内におけるスポットＳＰでは、ターゲットＴＧが検出プローブによって捕集されて強い蛍光が発せられたことを意味する。
　前述したステップＳ１３の処理において、演算部２５は、図５Ａに示すスポット領域の各々について、平均階調値を第１光量として算出する。前述したステップＳ１４の処理において、演算部２５は、図５Ｂに示すスポット領域の各々について平均階調値を第２光量として算出する。そして、前述したステップＳ１５の処理において、演算部２５は、スポット領域の各々について、第１光量と第２光量との差である光量変化量を算出する。
　図５Ａ及び図５Ｂに示す例において、領域Ｒ内には、縦２列横５列に配列された計１０個のスポット領域が存在しているが、これら１０個のスポット領域の光量変化量は、他のスポット領域の光量変化量に比べて大きい。このため、前述したステップＳ１６の処理において、演算部２５は、領域Ｒ内の１０個のスポット領域における光量変化量を用いて、サンプルに含まれるターゲットＴＧを計測する。
　以上の通り、第１核酸配列計測方法では、サンプル添加直後の時点（第１時点）で、あるスポットＳＰから発せられる蛍光の第１光量と、サンプル添加から所定時間後の時点（第２時点）で、上記と同じスポットＳＰから発せられる蛍光の第２光量との差を求めている。そして、第１光量と第２光量との差に基づいてターゲットを計測するようにしている。これにより、オフセット光の影響を効果的に排除することができることから、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる。
　《第２核酸配列計測方法》
　図６は、第２核酸配列計測方法を示すフローチャートである。尚、図６においては、図４中に示したステップと同様のステップについては、同じ符号を付してある。尚、本計測方法においても、図６に示すフローチャートの処理が開始される前に、ターゲットＴＧが含まれるサンプルの調整等が行われ、その後に、対象ブロックＢＫ０にサンプルが添加される。
　核酸配列計測用デバイスＤＶにサンプルが添加されると、まず、検出部１２は、サンプル添加直後の時点（第１時点）の画像（第１画像）を取得する（ステップＳ１１）。次に、検出部１２は、サンプル添加から所定時間経過後の時点（第２時点）の画像（第２画像）を取得する（ステップＳ１２）。尚、ステップＳ１１，Ｓ１２の処理は、図４を用いて説明した処理と同様であるため、詳細な説明は省略する。
　次いで、演算部２５は、第１画像及び第２画像を画像処理し、第１画像及び第２画像の各々からスポット領域を抽出する（ステップＳ２１）。続いて、演算部２５は、第１画像から抽出したスポット領域の各々について、階調値標準偏差を算出する（ステップＳ２２）。具体的には、演算部２５は、第１画像から抽出したスポット領域毎に、スポットＳＰの画像をなす画素の階調値の標準偏差を算出する。そして、演算部２５は、ステップＳ２２で算出された階調値標準偏差を用いて、スポット領域の各々の信頼区間（第１閾値）を設定する（ステップＳ２３）。
　ここで、ステップＳ２２の処理を行うのは、スポット領域の各々において、蛍光のムラ（光量のバラツキ）がどの程度生じているかを求めるためである。ステップＳ２３の処理を行うのは、後述するステップＳ２５の処理において、スポット領域の各々について、ハイブリダイゼーション前後の光量変化量がある程度大きな画素（階調値の差がある程度大きな画素）の抽出を行うためである。尚、信頼区間の設定の仕方は任意であるが、例えば、信頼係数が０．９５の信頼区間を設定することができる。
　続いて、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で抽出したスポット領域毎に、スポットＳＰの画像をなす各画素の階調値変化量を算出する（ステップＳ２４）。そして、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で抽出したスポット領域毎に、ステップＳ２３で設定された信頼区間以上の階調値変化がある画素を抽出する（ステップＳ２５）。
　以上の処理が終了すると、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で第１画像から抽出されたスポット領域毎に、ステップＳ２５の処理で抽出した画素の平均階調値（第１光量）及び階調値標準偏差を算出する（ステップＳ２６）。同様に、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で第２画像から抽出されたスポット領域毎に、ステップＳ２５の処理で抽出した画素の平均階調値（第２光量）及び階調値標準偏差を算出する（ステップＳ２７）。
　続いて、演算部２５は、ステップＳ２６で算出された平均階調値（第１光量）と、ステップＳ２７で算出された平均階調値（第２光量）との差（光量変化量）を検定する（ステップＳ２８）。具体的には、演算部２５は、ステップＳ２６，Ｓ２７で算出された階調値標準偏差を用いて、上記の平均階調値の差（光量変化量）を検定する。最後に、演算部２５は、ステップＳ２８の検定結果に基づいて、サンプルに含まれるターゲットＴＧを計測する（ステップＳ２９）。このようにして、サンプルに含まれるターゲットＴＧの計測が行われる。
　図７は、第２核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。図７Ａは、例えば、ハイブリダイゼーション前に取得された対象ブロックＢＫ０の画像（第１画像）の一部である。図７Ｂは、ハイブリダイゼーション前後において取得された画像（第１画像、第２画像）の１つのスポット領域を拡大した図である。尚、図７Ｂにおいて、画像Ｇ１は、ハイブリダイゼーション前の画像であり、画像Ｇ２は、ハイブリダイゼーション後の画像である。
　図７Ａを参照すると、３つのスポット領域が示されている。これら３つのスポット領域の内部は、階調値が同一ではなく斑模様となっている。また、これら３つのスポット領域の斑模様は、同じではなく互いに異なっている。これにより、オフセット光の光量バラツキは、スポット領域内のみならず、スポット領域間においてもあることが分かる。
　図７Ｂを参照すると、画像Ｇ１よりも画像Ｇ２の方が全体的に白っぽい（階調値が大きい）ことが分かる。これは、ハイブリダイゼーション後の方がハイブリダイゼーション前よりも全体的な光量が増していることを意味する。また、図７Ｂを参照すると、画像Ｇ１，Ｇ２の何れも、階調値が同一ではなく斑模様になっている。これにより、スポット領域内における蛍光の光量バラツキは、ハイブリダイゼーション前のみならず、ハイブリダイゼーション後においても生ずることが分かる。
　図８は、ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の階調値のバラツキ分布の一例を示す図である。図８Ａは、図７Ｂに示す画像Ｇ１，Ｇ２についての階調値のバラツキ分布を示すヒストグラムである。これに対し、図８Ｂは、図７Ｂに示す画像Ｇ１，Ｇ２から抽出された画素（階調変化量の大きな画素）の階調値のバラツキ分布を示すヒストグラムである。つまり、図８Ｂは、図６に示すステップＳ２５の処理が行われた後のものについて、階調値のバラツキ分布をヒストグラムで示したグラフである。
　図８を参照すると、ハイブリダイゼーション前においては、画素の階調値の分布は「２００００」付近であり、ハイブリダイゼーション後においては、画素の階調値の分布は「４００００」付近であることが分かる。また、図８Ａと図８Ｂとを比較すると、図８Ａに比べて図８Ｂの方が、バラツキが小さく平均的な階調値が大きくなることが分かる。
　図９は、ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の平均階調値及び標準偏差の一例を示す図である。図９において、「画素の抽出無し」と付記されているものは、図７Ｂに示す画像Ｇ１，Ｇ２についての平均階調値及び標準偏差である。一方、図９において、「画素の抽出あり」と付記されているものは、図７Ｂに示す画像Ｇ１，Ｇ２から抽出された画素（階調変化量の大きな画素）の平均階調値及び標準偏差である。図９では、平均階調値を棒グラフで示しており、標準偏差をエラーバーで示している。
　図９を参照すると、ハイブリダイゼーション前であっても、ハイブリダイゼーション後であっても、「画素の抽出あり」と付記されたものの平均階調値が、「画素の抽出無し」と付記されたものの平均階調値よりも大きくなっていることが分かる。また、ハイブリダイゼーション前であっても、ハイブリダイゼーション後であっても、「画素の抽出あり」と付記されたものの標準偏差は、「画素の抽出無し」と付記されたものの標準偏差の三分の一程度に減少していることが分かる。
　図６に示すステップＳ２８の処理では、演算部２５は、ハイブリダイゼーション前の平均階調値と、ハイブリダイゼーション後の平均階調値との差である光量変化量を、ハイブリダイゼーション前後の標準偏差を用いて検定している。図６に示すステップＳ２５の処理を行うことで、標準偏差を三分の一程度に減少することができるため、ターゲットの計測精度を向上させることができる。
　以上の通り、第２核酸配列計測方法では、まず、第１画像から抽出したスポット領域の階調値標準偏差から信頼区間を設定し、信頼区間以上の階調値変化がある画素を抽出している。次に、第１画像のスポット領域毎に、抽出した画素の平均階調値（第１光量）を求め、第１画像のスポット領域毎に、抽出した画素の平均階調値（第２光量）を求め、これらの差である光量変化量を検定している。そして、検定結果に基づいてターゲットを計測するようにしている。これにより、スポット領域内の光量ムラの影響を効果的に排除することができることから、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる。
　《第３核酸配列計測方法》
　図１０は、第３核酸配列計測方法を示すフローチャートである。尚、図１０においては、図４，図６中に示したステップと同様のステップについては、同じ符号を付してある。尚、本計測方法においても、図１０に示すフローチャートの処理が開始される前に、ターゲットＴＧが含まれるサンプルの調整等が行われ、その後に、対象ブロックＢＫ０にサンプルが添加される。
　核酸配列計測用デバイスＤＶにサンプルが添加されると、まず、検出部１２は、サンプル添加直後の時点（第１時点）の画像（第１画像）を取得する（ステップＳ１１）。次に、検出部１２は、サンプル添加から所定時間経過後の時点（第２時点）の画像（第２画像）を取得する（ステップＳ１２）。次いで、演算部２５は、第１画像及び第２画像を画像処理し、第１画像及び第２画像の各々からスポット領域を抽出する（ステップＳ２１）。
　続いて、演算部２５は、第１画像から抽出したスポット領域外の階調値標準偏差を算出する（ステップＳ３１）。具体的には、演算部２５は、第１画像から抽出したスポット領域以外の任意の領域における画像をなす画素の階調値の標準偏差を算出する。そして、演算部２５は、ステップＳ３１で算出された階調値標準偏差を用いて、信頼区間（第２閾値）を設定する（ステップＳ３２）。
　ここで、ステップＳ３１の処理を行うのは、例えば、核酸配列計測用デバイスＤＶの特性に起因するノイズや、画像取得部１２ａに設けられた固体撮像素子に起因するノイズによる光量のバラツキがどの程度生じているかを求めるためである。ステップＳ３２の処理を行うのは、後述するステップＳ３４の処理において、スポット領域の各々について、ハイブリダイゼーション前後の光量変化量がある程度大きな画素（階調値の差がある程度大きな画素）の抽出を行うためである。尚、信頼区間の設定の仕方は任意であるが、例えば、信頼係数が０．９５の信頼区間を設定することができる。
　続いて、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で抽出したスポット領域毎に、スポットＳＰの画像をなす各画素の階調値変化量を算出する（ステップＳ３３）。そして、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で抽出したスポット領域毎に、ステップＳ３２で設定された信頼区間以上の階調値変化がある画素を抽出する（ステップＳ３４）。
　以上の処理が終了すると、演算部２５は、ステップＳ２１の処理で抽出したスポット領域毎に、抽出した画素の数を計数する（ステップＳ３５）。最後に、演算部２５は、ステップＳ３５の計数結果に基づいて、サンプルに含まれるターゲットＴＧが計測される（ステップＳ３６）。このようにして、サンプルに含まれるターゲットＴＧの計測が行われる。
　図１１は、第３核酸配列計測方法で取得される画像の一例を示す図である。尚、図３では、ターゲットＴＧの濃度が異なる３つのサンプルを核酸配列計測用デバイスＤＶに添加した場合に取得されるハイブリダイゼーション前後のスポットの画像を示している。まず、ターゲットＴＧの濃度が低い場合には、ハイブリダイゼーション前後において、画像の階調値変化は僅かである。このため、図１０のステップＳ３４の処理で抽出される画素は殆ど無い。
　次に、ターゲットＴＧの濃度が高くなるにつれて、ハイブリダイゼーション前後において、大きな階調値変化を示す画素の数は増えていく。このため、図１０のステップＳ３４の処理で抽出される画素は、ターゲットＴＧの濃度が高くなるにつれて増えていく。このようにして、抽出された画素の数を計数することによって、サンプルに含まれるターゲットＴＧを計測することができる。
　以上の通り、第３核酸配列計測方法では、まず、第１画像から抽出したスポット領域外の階調値標準偏差から信頼区間を設定している。次に、抽出したスポット領域毎に各画素の階調値変化量を算出し、信頼区間以上の階調値変化がある画素を抽出している。そして、抽出したスポット領域毎に、抽出した画素の数を計数し、その計数結果に基づいてターゲットを計測するようにしている。これにより、スポット領域内の光量ムラの影響を効果的に排除することができることから、サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットの計測精度を従来よりも向上させることができる。
　〈変形例〉
　本発明の実施形態による核酸配列計測装置１は、核酸配列計測用デバイスＤＶの画像（ブロックＢＫ又はスポットＳＰの画像）を、異なる解像度で取得可能にしても良い。例えば、図３に示す画像取得部１２ａと温調ステージ１１（核酸配列計測用デバイスＤＶ）との間に、光学倍率を変えることができる光学系を設けた構成にしても良い。或いは、画素数が異なる複数の固体撮像素子を図３に示す画像取得部１２ａに設け、解像度に応じて固体撮像素子を切り替え可能に構成しても良い。このようにするのは、スポットＳＰを高解像度で撮影することにより、ターゲットの計測精度を更に向上させるためである。
　例えば、スポットＳＰの直径が１００［μｍ］であるとし、固体撮像素子の１画素の大きさが１０［μｍ］四方（１０×１０［μｍ］）であるとする。固体撮像素子が等倍でスポットＳＰを撮影する場合には、スポットＳＰを撮影している画素は７８．５画素（５×５×π画素）程度しかない。
　これに対し、例えば、上記の光学系によってスポットＳＰの像が１０倍に拡大されたとすると、１画素が撮影する範囲は１［μｍ］四方（１×１［μｍ］）となる。すると、スポットＳＰを撮影している画素は、７８５０画素（５０×５０×π画素）程度になり拡大倍率の二乗の解像度となる。このように、核酸配列計測用デバイスＤＶの画像を、低解像度（等倍）以外に高解像度で取得可能にすることで、スポット領域内の階調値のバラツキをより正確に捉えることが可能になる。
　図１２は、変形例に係る核酸配列計測装置で取得される画像の一例を示す図である。図１２Ａは、あるスポットＳＰを等倍で撮影した場合に取得される画像である。図１２Ｂは、図１２Ａと同一のスポットＳＰを１０倍の倍率で撮影した場合に取得される画像であり、図１２Ｃは、図１２Ａと同一のスポットＳＰを４０倍の倍率で撮影した場合に取得される画像である。
　図１２Ａを参照すると、等倍で撮影した場合には、目の粗いモザイクをかけたような画像が得られることが分かる。図１２Ｂを参照すると、１０倍の倍率で撮影した場合には、図１２Ａに示す画像に比べると目の粗さは小さくなっているものの、やはりモザイクをかけたような画像が得られることが分かる。これに対し、図１２Ｃを参照すると、階調値が滑らかに変化している画像が得られることが分かる。
　図１３は、高解像度で撮影した場合の、ハイブリダイゼーション前後におけるスポット領域内の画素の階調値のバラツキ分布の一例を示す図である。図１３と図８Ａとを比較すると、高解像度で撮影した場合には、階調値のバラツキ分布を正確に得ることができることが分かる。
　以上、本発明の実施形態による核酸配列計測装置及び核酸配列計測方法について説明したが、本発明は上記実施形態に制限されることなく、本発明の範囲内で自由に変更が可能である。例えば、上述した実施形態で説明した画像取得部１２ａは、モノクロの二次元画像を取得するものであっても良く、カラーの二次元画像を取得するものであっても良い。
　また、画像取得部１２ａは、ＣＣＤ、ＣＯＭＳ以外に、感度が高いＥＭＣＣＤ（Electron Multiplying ＣＣＤ：電子増倍ＣＣＤ）やディジタルＣＭＯＳを備えていても良い。また、検出部１２は、画像取得部１２ａに代えて（又は、画像取得部１２ａとともに）、スポットＳＰと１対１で配置されるフォトダイオードを備えていても良い。
　また、上述した実施形態では、サンプル添加直後の画像（対象ブロックＢＫ０の画像）を第１画像として取得する例について説明した。しかしながら、サンプル添加前の画像（対象ブロックＢＫ０の画像）を第１画像として取得しても良い。つまり、第１画像は、サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で取得すれば良い。但し、サンプル添加前の画像を第１画像として取得する場合には、サンプル添加前に得られる光量と、ターゲットが含まれていなサンプルが添加された後に得られる光量との差を予め求めておき、その差を第１画像の光量に与える必要がある。また、ターゲットが含まれているサンプルを添加する前に、ターゲットが含まれてないサンプルが添加された画像（対象ブロックＢＫ０の画像）を第１画像として取得しても良い。
　また、上述した第１～第３核酸配列計測方法では、説明を簡単にするために、最初にまとめて第１画像及び第２画像を取得し、その後に、第１画像及び第２画像の画像処理等を行う例について説明した。しかしながら、第１画像を取得してから第２画像を取得するまでの間に、第１画像の画像処理等を行っても良い。
　また、上述した第３核酸配列計測方法における信頼区間の設定方法を上述した第２核酸配列計測方法で用いても良く、逆に、上述した第２核酸配列計測方法における信頼区間の設定方法を上述した第３核酸配列計測方法で用いても良い。具体的には、図６のステップＳ２２，Ｓ２３の処理を図１０のステップＳ３１，Ｓ３２の処理に置き換えても良く、図１０のステップＳ３１，Ｓ３２の処理を図６のステップＳ２２，Ｓ２３の処理に置き換えても良い。
　また、本発明の実施形態による核酸配列計測装置及び核酸配列計測方法は、蛍光分子光量計測におけるドライ画像測定、バイオチップの蛍光分子光量の液中観察、及び連続反応におけるリアルタイム観察等に使用することができる。具体的には、本発明の実施形態による核酸配列計測装置及び核酸配列計測方法は、例えば、遺伝子・高分子分析による菌種判別、がん遺伝子、動植物判別、腸内細菌の検査等に用いることができる。
　また、本発明の実施形態による核酸配列計測装置及び核酸配列計測方法は、臨床検査等に使用される標識抗体法等の次のような固相法にも応用される。例えば、組織や細胞内の特定の染色体や遺伝子の発現を、蛍光物質を用いて蛍光測定するＦＩＳＨ法（蛍光 in situ ハイブリダイゼーション）が一例として挙げられる。この他にも、以下のような各種の手法への応用が一例として挙げられる。即ち、ユーロピウム等の蛍光発光物質を標識として抗原抗体反応を測定するＦＩＡ法（蛍光免疫測定法）や、抗原となる病原体等に蛍光物質をラベルした血清（抗体）反応を測定するＩＦＡ法（間接蛍光抗体法）が挙げられる。
　本明細書において「前、後ろ、上、下、右、左、垂直、水平、縦、横、行および列」などの方向を示す言葉は、本発明の装置におけるこれらの方向について言及する。従って、本発明の明細書におけるこれらの言葉は、本発明の装置において相対的に解釈されるべきである。
　「構成される」という言葉は、本発明の機能を実行するために構成され、または装置の構成、要素、部分を示すために使われる。
　さらに、クレームにおいて「ミーンズ・プラス・ファンクション」として表現されている言葉は、本発明に含まれる機能を実行するために利用することができるあらゆる構造を含むべきものである。
　「ユニット」という言葉は、構成要素、ユニット、ハードウェアや所望の機能を実行するためにプログラミングされたソフトウェアの一部分を示すために用いられる。ハードウェアの典型例はデバイスや回路であるが、これらに限られない。
　以上、本発明の好ましい実施例を説明したが、本発明はこれら実施例に限定されることはない。本発明の趣旨を逸脱しない範囲で、構成の付加、省略、置換、およびその他の変更が可能である。本発明は前述した説明によって限定されることはなく、添付のクレームの範囲によってのみ限定される。
　１　　　　核酸配列計測装置
　１２　　　検出部
　１２ａ　　画像取得部
　２５　　　演算部
　ＢＫ　　　ブロック
　ＤＶ　　　核酸配列計測用デバイス
　ＳＰ　　　スポット
　ＴＧ　　　ターゲット

Claims (20)

  1. 　サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットを計測する核酸配列計測装置において、
    　前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイスから発せられる蛍光を検出する検出部と、
    　前記検出部の検出結果に基づいて、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測する演算部と、
    　を備える核酸配列計測装置。
  2. 　前記検出部は、少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域の画像を取得する画像取得部を備え、
    　前記演算部は、前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求める、
    　請求項１記載の核酸配列計測装置。
  3. 　前記演算部は、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理とを行う、請求項２記載の核酸配列計測装置。
  4. 　前記演算部は、前記第１画像と前記第２画像との画素毎の階調値の差が予め規定された第１閾値を超える画素を抽出し、前記第１画像の抽出した画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理と、前記第２画像の抽出した画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理とを行う、請求項３記載の核酸配列計測装置。
  5. 　前記演算部は、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第１閾値を設定する、請求項４記載の核酸配列計測装置。
  6. 　前記演算部は、前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値との差を、前記第１光量と前記第２光量との差として求める処理を行う、請求項２記載の核酸配列計測装置。
  7. 　前記演算部は、前記第１光量と前記第２光量との差が予め規定された第２閾値を超える画素を抽出し、抽出した画素の数に基づいて前記ターゲットを計測する、請求項６記載の核酸配列計測装置。
  8. 　前記演算部は、前記第１画像に含まれる前記計測領域以外の領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第２閾値を設定する、請求項７記載の核酸配列計測装置。
  9. 　前記画像取得部は、前記画像取得領域の画像を、異なる解像度で取得する、請求項２から請求項８の何れか一項に記載の核酸配列計測装置。
  10. 　サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットを計測する核酸配列計測装置によって実行される核酸配列計測方法であって、
    　前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差を求め、
    　前記第１光量と前記第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測する、
    　核酸配列計測方法。
  11. 　少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域の画像を取得し、
    　前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求める、
    　請求項１０記載の核酸配列計測方法。
  12. 　前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理とを行う、請求項１１記載の核酸配列計測方法。
  13. 　前記第１画像と前記第２画像との画素毎の階調値の差が予め規定された第１閾値を超える画素を抽出し、前記第１画像の抽出した画素の平均階調値を前記第１光量として求める処理と、前記第２画像の抽出した画素の平均階調値を前記第２光量として求める処理とを行う、請求項１２記載の核酸配列計測方法。
  14. 　前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第１閾値を設定する、請求項１３記載の核酸配列計測方法。
  15. 　前記画像処理として、前記第１画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値と、前記第２画像に含まれる前記計測領域の画像をなす画素の各々の階調値との差を、前記第１光量と前記第２光量との差として求める処理を行う、請求項１１記載の核酸配列計測方法。
  16. 　前記第１光量と前記第２光量との差が予め規定された第２閾値を超える画素を抽出し、抽出した画素の数に基づいて前記ターゲットを計測する、請求項１５記載の核酸配列計測方法。
  17. 　前記第１画像に含まれる前記計測領域以外の領域の画像をなす画素の階調値の標準偏差を求め、前記標準偏差に基づいて前記第２閾値を設定する、請求項１６記載の核酸配列計測方法。
  18. 　前記画像取得領域の画像を、異なる解像度で取得する、請求項１１から請求項１７の何れか一項に記載の核酸配列計測方法。
  19. 　サンプルに含まれる特定の核酸配列を有するターゲットを計測する核酸配列計測装置によって実行されるプログラムを記憶するコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体であって、
    　前記プログラムは、前記核酸配列計測装置に、
    　前記ターゲットの添加によって蛍光を発する核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加前又は添加直後の第１時点で、前記核酸配列計測用デバイスの予め規定された計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第１光量と、前記核酸配列計測用デバイスに対する前記サンプルの添加から予め規定された時間が経過した後の第２時点で、前記計測領域から発せられる蛍光の光量を示す第２光量との差を求めさせ、
    　前記第１光量と前記第２光量との差に基づいて前記ターゲットを計測させる、
    　コンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体。
  20. 　前記プログラムは、前記核酸配列計測装置に、
    　少なくとも前記計測領域が含まれる画像取得領域の画像を取得させ、
    　前記第１時点で取得された前記画像取得領域の画像である第１画像及び前記第２時点で取得された前記画像取得領域の画像である第２画像の画像処理を行って、前記第１光量及び前記第２光量をそれぞれ求めさせる、
    　請求項１９記載のコンピュータ読み取り可能な非一時的記録媒体。
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