WO2021100718A1 - 細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法 - Google Patents

細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法 Download PDF

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澤田光平
馬場敦
早乙女俊樹
島田直樹
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日本毛織株式会社
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    • C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
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Definitions

  • the present invention relates to a cell aggregate having high seeding efficiency in which cell shedding from a scaffold is suppressed, a method for producing the same, a kit for producing the same, and a method for evaluating a compound using the same.
  • Cell culture scaffolding material composed of fiber sheets provides a place for culturing cells three-dimensionally and promotes interaction, so that mass culture of cells, medical equipment, cell transplantation therapy, and drug safety It is expected to be used for evaluation and disease models.
  • fiber sheets using biocompatible polymers are suitably used as scaffolds for medical use and cell culture.
  • Patent Document 1 describes that nanofibers made of biopolymers such as gelatin, collagen and cellulose are formed on a support such as gauze or sponge and used as a culture medium.
  • Patent Document 2 describes that a biocompatible long fiber non-woven fabric in which fiber intersections of biocompatible long fibers having an average fiber diameter of 1 to 70 ⁇ m are partially welded is used as a scaffold for cell culture.
  • the present invention provides a cell aggregate having high seeding efficiency in which cell shedding from a scaffold is suppressed, a method for producing the same, a kit for producing the same, and a method for evaluating a compound using the same. To do.
  • the present invention is a cell aggregate containing cells and a scaffold, wherein the scaffold is a gelatin non-woven material containing gelatin as a main component and a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven material. It relates to a cell aggregate comprising a laminate comprising, wherein the cell is present on at least one of the surface and the inside of the gelatin non-woven fabric.
  • the present invention is also a method for producing a cell aggregate, which comprises a gelatin non-woven material containing gelatin as a main component and a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven material.
  • the process of preparing a scaffold composed of a body and a culture vessel whose inner surface is not hydrolyzed, and the scaffold after swelling in a culture vessel with a dry inner surface is arranged so that the gelatin film side is in contact with the inner bottom surface of the culture vessel.
  • the present invention relates to a method for producing a cell aggregate, which comprises a step of dropping a cell suspension onto a gelatin non-woven material of a scaffold and culturing the cell suspension.
  • the present invention is also a method for evaluating a compound for evaluating the properties of the compound, in which the step of contacting the compound with the cell assembly and whether the contact with the compound changes the physiological properties of the cell assembly.
  • the present invention relates to a method for evaluating a compound, which comprises a step of determining whether or not the compound is present.
  • the present invention can provide a cell assembly having high seeding efficiency in which the shedding of cells from the scaffold is suppressed.
  • the production method of the present invention it is possible to suppress the shedding of cells from the scaffold and to produce a cell aggregate with high seeding efficiency.
  • the production kit of the present invention it is possible to suppress the shedding of cells from the scaffold and to produce a cell aggregate with high seeding efficiency.
  • the properties of a compound can be effectively evaluated by using a cell aggregate cultured in three dimensions.
  • FIG. 1 is a photograph of a scanning electron microscope (100 times) of a scaffold (laminated body) used in one embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a photograph of a scanning electron microscope (100 times) of a scaffold (laminated body) used in another embodiment of the present invention.
  • FIG. 3 is an image (4 times) of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Example 1, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 4 is an image obtained by fluorescently observing live cells in the scaffold in Example 1, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, (b) is an enlarged image of the central portion, and (c).
  • FIG. 5 is an image obtained by fluorescently observing live cells in the scaffold in Example 2, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, (b) is an enlarged image of the central portion, and (c).
  • FIG. 6 shows an image of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Example 3 (4 times, (a) is the result after cell seeding, and (b) is when a liquid medium was added after culturing for 3 hours. Is the result of.
  • FIG. 6 shows an image of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Example 3 (4 times, (a) is the result after cell seeding, and (b) is when a liquid medium was added after culturing for 3 hours. Is the result of.
  • FIG. 7 is an image obtained by fluorescently observing live cells in the scaffold in Example 3, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, (b) is an enlarged image of the central portion, and (c). ) Is the whole image of the scaffold (cell aggregate) when the liquid medium was added after culturing for 3 hours, (d) is the enlarged image of the central part, and (e) is the scaffold after culturing for 72 hours (e). The whole image of the cell aggregate), and (f) is a magnified image of the central part.
  • FIG. 8 is an image obtained by fluorescently observing live cells in the scaffold in Example 4, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, (b) is an enlarged image of the central portion, and (c).
  • FIG. 9 is an image (4 times) of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Comparative Example 1, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then the liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 9 is an image (4 times) of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Comparative Example 1, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then the liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 10 is an image (4 times) of the end of the scaffold observed with an optical microscope in Comparative Example 2, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then the liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 11 is an image of observing the distribution of living cells on the scaffold after culturing for 72 hours in Example 1, (a) is the result of observing the surface on the gelatin non-woven side, and (b) is from the gelatin non-woven surface.
  • FIG. 12 is an image of observing the distribution of living cells on the scaffold after culturing for 72 hours in Example 2, (a) is the result of observing the surface on the gelatin non-woven side, and (b) is from the gelatin non-woven surface.
  • FIG. 13 shows the imaging observation results of the calcium ion of the cell aggregate on the 4th day of culture in Example 5, (a) is a bright-field image of the cell aggregate, and (b) is a cell at a predetermined time.
  • FIG. 14 shows the results showing the responsiveness of the cell aggregate to isoproterenol on the 4th day of culture in Example 5.
  • FIG. 15 shows the imaging observation results of the calcium ion of the cell aggregate on the 4th day of culture in Example 6, (a) is a bright-field image of the cell aggregate, and (b) is a cell at a predetermined time.
  • FIG. 16 shows the results showing the responsiveness of E-4031 on the 4th day of culture in Example 6, and (a) shows the intracellular calcium ions 120 minutes after the addition of E-4031. It is an image observed by fluorescence, (b) is an image of intracellular calcium ions observed by fluorescence 0.4 seconds after the time point (a), and (c) is the fluorescence of measurement point A and measurement point B.
  • FIG. 17 shows the results of fluorescent staining of cardiomyocyte aggregates in Example 7.
  • A is a cell nucleus and actin filament stained image on the third day of culture
  • (b) is an ⁇ -actinin immunostained image on the third day of culture
  • (c) is a partially enlarged image of (b).
  • D is a cell nucleus and actin filament stained image on the 7th day of culture
  • (e) is an ⁇ -actinin immunostained image on the 7th day of culture
  • (f) is a partially enlarged image of (e).
  • FIG. 18 is a graph showing the responsiveness to each compound in Example 7.
  • FIG. 19 is a graph showing the responsiveness to each compound in Example 7.
  • A shows the contractile force before and after administration of isoproterenol, and (b) shows the contraction and relaxation rate before and after administration of isoproterenol.
  • FIG. 20 is a graph showing the responsiveness (signal waveform of calsim ion) to each compound in Example 8.
  • A) is azithromycin
  • (b) is chloroquine
  • (c) is hydroxychloroquine
  • (d) is azithromycin (3 ⁇ M) and chloroquine in combination
  • (e) is azithromycin (3 ⁇ M) and hydroxychloroquine in combination. Shown.
  • FIG. 21 is a graph showing the responsiveness (shrinkage force) to each compound in Example 8.
  • A) is the result of azithromycin
  • (b) is the result of chloroquine
  • (c) is the result of hydroxychloroquine
  • (d) is the result of azithromycin (3 ⁇ M) and chloroquine
  • (e) is the result of azithromycin (3 ⁇ M) and hydroxychloroquine.
  • FIG. 22 is a graph showing the responsiveness to the compound in Example 9.
  • FIG. 23 is a schematic explanatory view of a scaffolding manufacturing apparatus used in an embodiment of the present invention.
  • the inventors of the present invention have repeated studies in order to solve the above-mentioned problems.
  • a scaffold composed of a gelatin non-woven fabric containing gelatin as a main component and a laminate containing a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven fabric. It has been found that the presence of at least one of the surface and the inside, preferably both, provides a cell aggregate with high seeding efficiency in which the shedding of cells from the scaffold is suppressed.
  • a scaffold composed of a gelatin non-woven material containing gelatin as a main component and a laminate containing a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven material, and the inner surface (inner bottom surface and inner bottom surface) of the culture vessel.
  • the swelled scaffold is placed in the culture vessel whose inner surface is dry so that the gelatin film side is in contact with the inner bottom surface of the culture vessel.
  • the cell suspension stays on the scaffold and the outflow of cells to the periphery of the scaffold is suppressed, that is, the shedding of cells from the scaffold is suppressed. It was found that the sowing efficiency was increased. This is because the hydrophilicity (wetting property) of the scaffold composed of the laminated body of gelatin non-woven fabric and gelatin film exceeds the hydrophilicity (wetting property) of the inner surface of the culture container, so that the cell suspension is from the scaffold to the culture container side. Does not flow and therefore it is speculated that the cells do not fall off the scaffold.
  • the scaffold may be pre-cultured for a predetermined time with the cells retained inside and / or on the surface of the scaffold to promote cell adhesion, and then an additional liquid medium may be added to immerse the scaffold in the liquid medium.
  • the cells remain on the scaffold and do not fall off the scaffold.
  • a (hydrophilic) culture vessel in which the inner surface such as the inner bottom surface of the culture vessel is hydrophilized in order to enhance the adhesion to cells, when the cell suspension is dropped on the scaffold, the cells are suspended from the scaffold to the surroundings. The turbid liquid flows out and the cells fall out of the scaffold.
  • the above-mentioned seeding method has high seeding efficiency and enables high-density seeding, so that high-density culture is possible even from the initial stage of culture. Therefore, a cell aggregate that has been three-dimensionally cultured at high density from the initial stage of culture can be obtained, and the properties of the compound can be effectively evaluated by using the cell aggregate.
  • swelling means swelling to a saturated state with one or more liquids selected from the group consisting of water, buffer solution or liquid medium.
  • Both the gelatin non-woven fabric and the gelatin film contain gelatin as a main component.
  • the main component means that gelatin is contained in an amount of 90% by mass or more.
  • Other components of 10% by mass or less may be other biocompatible polymers, cross-linking agents, chemicals, plasticizers, other additives and the like, if necessary. It may be substantially 100% by mass gelatin.
  • the scaffold of the present invention contains gelatin as a main component, which is highly safe and has excellent bioabsorbability, the scaffold is three-dimensionally required for regenerative therapy, cell research and drug discovery research by transplanting into a living body. It can be suitably used as a cell tissue or the like.
  • the type and site of the animal from which collagen, which is the raw material of the gelatin, is derived are not particularly limited.
  • Collagen may be derived from, for example, vertebrates or fish.
  • collagen derived from various organs and tissues such as dermis, ligaments, tendons, bones and cartilage can be appropriately used.
  • the method for preparing gelatin from collagen is not particularly limited, and examples thereof include acid treatment, alkali treatment, and enzyme treatment.
  • the molecular weight of the gelatin is also not particularly limited, and those having various molecular weights can be appropriately selected and used.
  • one type of gelatin may be used, or two or more types may be used in combination.
  • the gelatin is not particularly limited, but has appropriate flexibility and hardness, and from the viewpoint of enhancing the handleability of the scaffold, the jelly strength is preferably 100 g or more and 400 g or less, and more preferably 150 g or more and 360 g or less. is there. In the present invention, the jelly strength is measured according to JIS K 6503.
  • the gelatin may be a commercially available product.
  • the other biocompatible polymer is not particularly limited, but for example, a natural polymer or a synthetic polymer can be used.
  • natural polymers include proteins and polysaccharides.
  • the protein include collagen, fibronectin, fibrinogen, laminin, fibrin and the like.
  • polysaccharides include chitosan, calcium alginate, heparan sulfate, chondroitin sulfate, hyaluronic acid, heparin, starch, gellan gum, agarose, guar gum, xanthan gum, carrageenan, pectin, locust bean gum, tamarind gum, and dietangum.
  • a molecule may be used, or a derivative of a natural polymer such as carboxymethyl cellulose may be used.
  • the synthetic polymer include polyethylene glycol polyethylene glycol, polyethylene terephthalate, polyvinyl alcohol, thermoplastic elastomer, polypropylene, polyethylene, polystyrene, polymethylmethacrylate, polycarbonate, polydimethylsiloxane, cycloolefin polymer, and amorphous fluororesin.
  • non-absorbable synthetic polymers and bioabsorbable polymers such as polylactic acid, polyglucoric acid, polycaprolactone and polydioxanone.
  • one type may be used, or two or more types may be used.
  • the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric preferably have an average fiber diameter of 2 ⁇ m or more and 400 ⁇ m or less after swelling, more preferably 5 ⁇ m or more and 200 ⁇ m or less, still more preferably 10 ⁇ m or more and 100 ⁇ m or less, and particularly preferably. It is 15 ⁇ m or more and 45 ⁇ m or less.
  • the average fiber diameter of the gelatin fibers is within the above range, when the cells are seeded on the surface of the gelatin non-woven fabric of the scaffold, the cells easily invade the scaffold and are easily distributed uniformly inside the scaffold.
  • the "average fiber diameter after swelling" means the average value of the diameters of 50 fibers arbitrarily selected from the gelatin non-woven fabric in the scaffold after swelling.
  • the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric are partially welded at the fiber intersections.
  • This partial welding is not particularly limited, but can be expressed, for example, by depositing gelatin fibers in a completely non-solidified state that have been blown off by a pressure fluid during the production of the scaffold, as will be described later.
  • the gelatin non-woven fabric has a bridge structure, which makes it easy to mold into a desired shape and has high molding stability.
  • the fiber intersections are partially welded, the gelatin non-woven fabric does not become worn even when it gets wet with water.
  • some of the fiber intersections may be welded, or all of the fiber intersections may be welded.
  • the gelatin non-woven fabric is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of enhancing handleability and cell invasion, the thickness is preferably 0.1 mm or more, more preferably 0.2 mm or more, and more preferably 0.3 mm. The above is more preferable, and 0.4 mm or more is particularly preferable.
  • the gelatin non-woven fabric is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of increasing the viability of cells in three-dimensional culture, the thickness is preferably 2 mm or less, more preferably 1.5 mm or less, and 1 mm or less. Is more preferable, and 0.7 mm or less is particularly preferable.
  • the gelatin nonwoven fabric is not particularly limited, for example, from the viewpoint of suppressing detachment of cells, it is preferable that the basis weight is 10 g / m 2 or more, more preferably 25 g / m 2 or more, 50 g / m 2 The above is more preferable.
  • the gelatin non-woven fabric is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of enhancing cell invasion and cell viability in 3D culture, the basis weight is preferably 600 g / m 2 or less, and 500 g / m 2 or less. Is more preferable, and 400 g / m 2 or less is further preferable.
  • the gelatin non-woven fabric is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of enhancing cell invasion and cell viability in 3D culture, the pore diameter is preferably 20 ⁇ m or more, more preferably 30 ⁇ m or more. It is more preferably 40 ⁇ m or more.
  • the gelatin non-woven fabric is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of suppressing cell shedding, the pore diameter is preferably 250 ⁇ m or less, more preferably 200 ⁇ m or less, and further preferably 180 ⁇ m or less. preferable.
  • the pore size of the gelatin nonwoven fabric can be calculated by the following formula (1) based on the assumption of Wrotnowski.
  • the gelatin film is arranged on one surface of the gelatin non-woven fabric and is partially welded to the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric.
  • This partial welding is not particularly limited, but is expressed, for example, by depositing gelatin fibers in a completely non-solidified state blown off by a pressure fluid during the production of the scaffold on a gelatin film, as will be described later. Can be done.
  • the gelatin non-woven fabric and the gelatin film are integrated, and the cells are prevented from penetrating the scaffold and falling off from the cells.
  • the gelatin non-woven fabric and the gelatin film are integrated, the cell aggregate can be easily peeled off from the culture vessel, and the cells are less damaged, so that the fixability at the transplant destination is also improved.
  • the gelatin film preferably has a thickness of 0.5 ⁇ m or more, more preferably 0.6 ⁇ m or more, and further preferably 0.7 ⁇ m or more. , 0.8 ⁇ m or more is particularly preferable. Further, as an example, the gelatin film preferably has a thickness of 10 ⁇ m or less, more preferably 8 ⁇ m or less, and 6 ⁇ m or less, from the viewpoint of enhancing the integrity with the gelatin non-woven fabric and the efficiency of three-dimensional culture of cells. It is even more preferably 4 ⁇ m or less, and particularly preferably 2 ⁇ m or less.
  • the gelatin film is preferably a non-porous film, but may have micropores having a size that does not allow cells to penetrate, for example, a pore diameter of about 10 ⁇ m or less or 5 ⁇ m or less.
  • the ratio Tf / Tn of the thickness Tn of the gelatin non-woven fabric to the thickness Tf of the gelatin film is preferably 7.5 ⁇ 10 -3 or less.
  • the Tf / Tn is more preferably 7.0 ⁇ 10 -3 or less, and further preferably 6.0 ⁇ 10 -3 or less.
  • the Tf / Tn is preferably 1.0 ⁇ 10 -3 or more, and more preferably 1.5 ⁇ 10 -3 or more, from the viewpoint of easily suppressing peeling or breakage of the gelatin film.
  • the laminate is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of maintaining strength during cell culture and increasing cell viability in three-dimensional culture, compression under compressive stress of 1.0 kPa after swelling to a saturated state with water.
  • the deformation rate (hereinafter, also simply referred to as “compression deformation rate”) is preferably 40% or less, more preferably 35% or less, still more preferably 30% or less.
  • the saturated state means a state in which water is contained to a maximum, and a state in which the water content stays at a certain limit and does not increase any more.
  • the gelatin non-woven fabric and the gelatin film are preferably crosslinked from the viewpoint of easily maintaining the morphology at the time of cell culture and effectively performing three-dimensional culture of cells. Specifically, the cross-linking can be performed as described later.
  • the laminate of gelatin non-woven fabric and gelatin film suppresses or enhances cell adhesion factors, cell inducing factors, cell growth factors, substances that provide nutrition and energy to cells, and cell functions. It may be coated with a substance or the like.
  • the cell adhesion factor is not particularly limited, and examples thereof include fibronectin and the like. Coating the laminate with cell adhesion factors makes it easier for cells to stay on the scaffold.
  • the substance that gives nutrients and energy to cells is not particularly limited, and examples thereof include ATP, pyruvic acid, and glutamine.
  • the laminate of the gelatin non-woven fabric and the gelatin film may be immersed in a solution containing a physiologically active substance such as a cell-inducing factor and a cell growth factor to contain these components. .. In the cell culture process, these physiologically active substances are gradually released from the laminate, so that cell culture can be promoted.
  • a physiologically active substance such as a cell-inducing factor and a cell growth factor
  • the scaffold is not particularly limited, but is spun containing gelatin from the viewpoint of suppressing the generation of impurities, preventing product contamination, and integrating the gelatin non-woven fabric and the gelatin film without using a binder component or heat-bonding means.
  • the liquid is extruded into the air from the nozzle discharge port, and the pressure fluid is injected forward from the fluid injection port located behind the nozzle discharge port and in a non-contact state with the nozzle discharge port, and the extruded spinning
  • the liquid is associated with the pressure fluid to form fibers, and the fibers formed with the fibers are accumulated on a gelatin film containing gelatin as a main component to form a gelatin non-woven fabric, whereby a laminate of the gelatin film and the gelatin non-woven fabric is formed. It is preferable to obtain it.
  • the gelatin film is not particularly limited and can be produced by a known film manufacturing method. For example, it can be produced by applying a gelatin solution to the surface of a substrate and then drying it.
  • a base material for example, a polyethylene terephthalate film (PET film), a glass plate, a polystyrene sheet, a fluororesin sheet, or the like can be used.
  • PET film, glass plate, polystyrene sheet, fluororesin sheet and the like may be treated with water repellency.
  • the gelatin solution can be obtained by dissolving gelatin alone or, if necessary, gelatin and another biocompatible polymer that can be used as the above-mentioned other components in a solvent.
  • the solvent include alcohols such as water, ethanol, 1-propanol, 2-propanol and glycerin, and amides such as dimethylformamide and dimethylacetamide.
  • One of these solvents may be used alone, or two or more of these solvents may be mixed and used.
  • water such as distilled water, pure water, ultrapure water, and ion-exchanged water. Since gelatin is water-soluble, it can be used for film formation in the state of an aqueous solution, and the safety to the living body is enhanced.
  • the concentration of gelatin is not particularly limited, but for example, from the viewpoint of film forming property and ductility, when the gelatin solution is 100% by mass, it is preferably 0.1% by mass or more and 35% by mass or less, and 1% by mass. It is more preferably% or more and 30% by mass or less, and further preferably 3% by mass or more and 20% by mass or less.
  • the dissolution temperature is preferably 10 ° C. or higher and 90 ° C. or lower, more preferably 20 ° C. or higher and 80 ° C. or lower, and further preferably 30 ° C. or higher and 70 ° C. or lower. If necessary, gelatin may be dissolved in a solvent and then filtered to remove foreign substances, dust and the like.
  • the dissolved air may be removed by depressurizing or vacuum defoaming thereafter.
  • the degree of vacuum at the time of defoaming under reduced pressure is preferably 5 kPa or more and 30 kPa or less.
  • the drying is not particularly limited, and can be performed by, for example, natural drying, heat drying, vacuum drying (vacuum drying), forced exhaust drying, forced circulation convection, or the like.
  • the drying temperature may be, for example, ⁇ 40 ° C. or higher and 90 ° C. or lower, 0 ° C. or higher and 60 ° C. or lower, or 10 ° C. or higher and 40 ° C. or lower.
  • the drying time may be, for example, in the range of 1 hour or more and 200 hours or less, preferably in the range of 3 hours or more and 100 hours or less, and more preferably in the range of 5 hours or more and 48 hours or less.
  • a spinning liquid containing gelatin is extruded from a nozzle discharge port, and a pressure fluid is injected forward from a fluid injection port located behind the nozzle discharge port and in a non-contact state with the nozzle discharge port.
  • the extruded spinning liquid is accompanied by the pressure fluid to be directly fiberized by a dry method, and the obtained gelatin fibers are accumulated on a gelatin film to form a non-woven fabric, so that contamination (contamination) is prevented. And can be manufactured hygienically.
  • the fibers When the fibers are accumulated (deposited) after spinning, the fibers are laminated in a state of containing water, so that the fibers are welded or entangled with each other and integrated, and the gelatin fibers constituting the non-woven fabric are gelatin films.
  • the gelatin non-woven fabric and the gelatin film are integrated by welding. The density of the non-woven fabric can be easily changed by changing the collection distance when the fibers are deposited.
  • FIG. 23 is a schematic explanatory view of a scaffolding manufacturing apparatus used in an embodiment of the present invention.
  • the spinning liquid 2 containing gelatin contained in the heating tank 1 is pushed out into the air from the nozzle discharge port 3.
  • a predetermined pressure is applied to the heating tank 1 by the compressor 4.
  • Reference numeral 12 is a heat insulating container.
  • the pressure fluid 7 is injected forward from the fluid injection port 5 which is located behind the nozzle discharge port 3 and is in a non-contact state with the nozzle discharge port 3.
  • a pressure fluid (for example, compressed air) is supplied to the fluid injection port 5 from the compressor 6.
  • the distance between the fluid injection port 5 and the nozzle discharge port 3 is preferably 5 to 30 mm.
  • the extruded spinning liquid is accompanied by the pressure fluid 7 to become gelatin fibers 8, and is deposited as gelatin non-woven fabric 9 on the gelatin film 10 arranged on the take-up roll 11.
  • the deposited fibers contain water or are not completely solidified, the fibers in contact with each other at at least a part of the fiber intersections are welded to each other, and the gelatin fibers constituting the non-woven fabric are formed with the gelatin film.
  • the gelatin non-woven fabric and the gelatin film are integrated.
  • other collecting means such as a net may be used instead of a take-up roll.
  • gelatin alone or, if necessary, gelatin and other biocompatible polymers that can be used as the above-mentioned other components are dissolved in a solvent, preferably water, to prepare a spinning solution.
  • the dissolution temperature preferably 20 ° C. or higher and 90 ° C. or lower, and more preferably 40 ° C. or higher and 90 ° C. or lower.
  • gelatin may be dissolved in a solvent such as water and then filtered to remove foreign substances and dust. Further, if necessary, the dissolved air may be removed by depressurizing or vacuum defoaming thereafter.
  • the degree of vacuum at the time of defoaming under reduced pressure is preferably 5 kPa or more and 30 kPa or less.
  • gelatin is water-soluble, it can be spun in an aqueous solution as a spinning solution, and the safety to the living body is improved.
  • water for example, pure water, distilled water, ultrapure water or the like can be appropriately used.
  • a spinning solution can be prepared by dissolving it in water at the same time as gelatin.
  • the temperature of the spinning liquid is preferably 20 ° C. or higher and 90 ° C. or lower, and more preferably 40 ° C. or higher and 90 ° C. or lower.
  • gelatin can maintain a stable sol state.
  • the gelatin concentration of the gelatin aqueous solution is preferably 30% by mass or more and 55% by mass or less when the gelatin aqueous solution is 100% by mass. A more preferable concentration is 35% by mass or more and 50% by mass or less. At the above concentration, a stable sol state can be maintained.
  • the viscosity of the gelatin aqueous solution (spinning solution) is preferably 500 mPa ⁇ s or more and 3000 mPa ⁇ s or less. Stable spinning can be achieved if the viscosity of the gelatin aqueous solution is within the above range.
  • the spinning liquid is discharged from a nozzle of a spinning machine, a pressure fluid is supplied from around the nozzle, the discharged gelatin aqueous solution is associated with the pressure fluid to form fibers, and the obtained gelatin fibers are accumulated on a gelatin film.
  • the discharge pressure of the nozzle is not particularly limited, but may be, for example, 0.1 MPa or more and 1 MPa or less.
  • the temperature of the pressure fluid is preferably 20 ° C. or higher and 120 ° C. or lower, and more preferably 80 ° C. or higher and 120 ° C. or lower. Although it depends on the flow velocity of the pressure fluid and the temperature of the ambient atmosphere, stable spinning can be achieved within the above temperature range.
  • Air is preferably used as the pressure fluid, and the pressure is preferably 0.1 MPa or more and 1 MPa or less. Within the above range, the spinning liquid extruded into the air from the nozzle discharge port can be blown off to form fibers.
  • the gelatin non-woven fabric having a desired average fiber diameter can be obtained by appropriately adjusting the nozzle diameter (inner diameter) and the like.
  • the cross-linking may be a chemical cross-linking using a compound such as a cross-linking agent, but from the viewpoint of biosafety, a cross-linking using a cross-linking agent having biosafety or a cross-linking without using a cross-linking agent is preferable.
  • the cross-linking without using a cross-linking agent include thermal cross-linking, electron beam cross-linking, radiation cross-linking such as ⁇ -rays, and ultraviolet cross-linking.
  • thermal crosslinking is preferable, and thermal dehydration crosslinking is more preferable.
  • the thermal dehydration crosslinking may be performed, for example, at 100 ° C. or higher and 160 ° C. or lower, and for 24 hours or longer and 96 hours or lower. Further, the thermal dehydration crosslinking may be performed under a vacuum of 1 kPa or less, for example.
  • the laminate may be dried before cross-linking. The drying may be air drying at room temperature or vacuum freeze drying.
  • a laminate in which a gelatin non-woven fabric and a gelatin film are integrated can be cut into a predetermined shape and size as needed and used as a scaffold. Since gelatin has biocompatibility and biodegradability, a laminate in which a gelatin non-woven fabric and a gelatin film are integrated is suitable for medical use or a scaffold for cell culture.
  • the scaffold can be sterilized by ethylene oxide gas sterilization, steam (autoclave), electron beam irradiation, irradiation with ⁇ -rays or the like, or sterilized by ethanol treatment or the like.
  • electron beam irradiation and radiation irradiation such as ⁇ -rays
  • cross-linking can be performed at the same time as sterilization.
  • the manufacturing process of the gelatin film or laminate is preferably performed aseptically in, for example, a clean bench or a clean room. It is possible to prevent the gelatin film and the laminate from being contaminated by the propagation of various germs during the work.
  • the manufacturing instrument to be used for example, it is preferable to use one that has been sterilized by autoclave, electron beam irradiation, irradiation with ⁇ -rays or the like. Further, it is preferable that the gelatin solution is also subjected to, for example, conventionally known filter filtration sterilization and then subjected to the film manufacturing process.
  • the laminated body after cross-linking is formed by punching into a predetermined shape to form a scaffold.
  • the scaffold is used as a target.
  • the cell assembly comprises a scaffold and cells
  • the cells need only be present on at least one of the surface and interior of the gelatin non-woven fabric, but the cells are both on the surface and inside of the gelatin non-woven fabric. It is preferable to be present.
  • the cell aggregate can be in various shapes such as a sheet shape and a block shape, if necessary.
  • the cell aggregate may have a structure of two or more layers, each layer containing a scaffold and cells, and the cells may be present on at least one of the surface and the inside of the gelatin non-woven fabric, preferably both.
  • the cell may be an animal cell, and its origin is not particularly limited.
  • the animal may be a human or a non-human animal. Examples of animals other than humans include primates such as monkeys and chimpanzees, rodents such as mice, rats and hamsters, and ungulates such as cows, sheep, goats and pigs.
  • the cells include individual cells, cell lines, cells obtained by culturing such as primary culture, and the like.
  • the cells are not particularly limited, and examples thereof include somatic cells, stem cells, progenitor cells, germ cells, immune cells, and the like.
  • Somatic cells include somatic cells that make up the living body and cancer cells derived from somatic cells.
  • the somatic cells constituting the living body are not particularly limited, and are, for example, fibroblasts, muscle cells, endothelial cells, osteoblasts, bladder cells, lung cells, osteoocytes, nerve cells, hepatocytes, chondrocytes, and epithelial cells. , Middle skin cells and the like.
  • the cancer cells are not particularly limited, and examples thereof include breast cancer cells, renal cancer cells, prostate cancer cells, lung cancer cells, liver cancer cells, cervical cancer cells, esophageal epithelial cancer, pancreatic cancer, colon cancer, and bladder cancer.
  • Stem cells are cells that have the potential to differentiate into various specialized cell types.
  • the stem cells are not particularly limited, and are, for example, embryonic stem cells (ES cells), embryonic cancer tumor cells (EC), embryonic germ stem cells (EG), artificial pluripotent stem cells (iPS cells), adult stem cells, and scutellum.
  • ES cells embryonic stem cells
  • EC embryonic cancer tumor cells
  • EG embryonic germ stem cells
  • iPS cells artificial pluripotent stem cells
  • adult stem cells and scutellum.
  • Spore-derived stem cells reproductive ridge-derived stem cells, malformation-derived stem cells, oncostatin-independent stem cells (OISC), bone marrow-derived mesenchymal stem cells, adipose-derived mesenchymal stem cells, sheep water-derived mesenchymal stem cells, skin-derived mesenchymal stem cells Examples thereof include stem cells and bone membrane-derived mesenchymal stem cells.
  • Progenitor cells are cells that can develop from the stem cells and differentiate into the final differentiated cells that make up the living body.
  • germ cells examples include sperms, sperm cells, eggs, and egg cells.
  • the immune cells are not particularly limited, and examples thereof include macrophages, lymphocytes, and dendritic cells.
  • the cells include stem cells, cancer cells, stem cell-derived myocardial cells, nerve cells, hepatocytes, fibroblasts, endothelial cells and epithelial cells, and living body-derived myocardial cells, nerve cells, hepatocytes, and fibroblasts.
  • stem cells cancer cells
  • stem cell-derived myocardial cells nerve cells, hepatocytes, fibroblasts, endothelial cells and epithelial cells
  • living body-derived myocardial cells nerve cells, hepatocytes, and fibroblasts.
  • the cell aggregate is arranged in a culture vessel having a dry inner surface so that the gelatin film side is in contact with the inner bottom surface of the culture vessel. It can be prepared by inoculating cells after seeding them by dropping a cell suspension onto a gelatin non-woven material of a scaffold. As a result, the shedding of cells from the scaffold is suppressed, the seeding efficiency is increased, and the cells can be preferably cultured at a high density from the initial stage of culturing.
  • the scaffold can be arranged by gripping the end of the scaffold with tweezers.
  • the present invention is a cell seeding method in which cells are seeded on a scaffold in one or more embodiments, wherein a gelatin non-woven material containing gelatin as a main component and gelatin laminated on one surface of the gelatin non-woven material are used as a main component.
  • a gelatin non-woven material containing gelatin as a main component and gelatin laminated on one surface of the gelatin non-woven material are used as a main component.
  • a cell suspension is dropped onto a gelatin non-woven material of a scaffold and allowed to stand for a predetermined time, and then a liquid medium is added to culture the cells.
  • a cell culture method to be performed can be provided. According to the cell culture method, cells can be cultured at a high density from the initial stage of culture.
  • the culture vessel is not particularly limited as long as the inner surface in contact with the cell culture scaffold or the liquid medium is not hydrophilized, and is not particularly limited, for example, a dish, a plate, and a flask. Etc. can be used as appropriate.
  • an untreated (non-cell adhesive) culture dish that has not been treated to improve cell adhesion (adhesion) can be used, and a culture dish for suspension culture can be preferably used. ..
  • commercially available products such as "IWAKI suspension culture microplate (without surface treatment) 6 well" and "Corning non-treatment plate 6 well" can be used.
  • the cell suspension those in which cells are suspended in a liquid medium can be used.
  • the amount of liquid (dropping amount) of the cell suspension per unit surface area of the scaffold can be appropriately determined depending on the thickness and texture of the scaffold, the concentration of the cell suspension, etc., and is not particularly limited, but is 0.1 ⁇ L / mm 2 more preferably 0.6 ⁇ L / mm 2 or less, more preferably 0.2 [mu] L / mm 2 or more 0.5 [mu] L / mm 2 or less, more preferably 0.3 [mu] L / mm 2 or more 0.4 [mu] L / mm 2 It is as follows. Within the above range, the cell suspension can easily reach the scaffold uniformly, and the cell suspension can be easily held in the scaffold.
  • the seeding amount of cells per unit surface area of the scaffold is not particularly limited and can be appropriately determined based on the cell type, the thickness of the scaffold, the texture, etc., but for example, from the viewpoint of seeding at high density, 200 cells / mm. It is preferably 2 or more and 20000 cells / mm 2 or less, more preferably 2000 cells / mm 2 or more and 15000 cells / mm 2 or less, and further preferably 4000 cells / mm 2 or more and 12000 cells / mm 2 or less. preferable.
  • the liquid medium is not particularly limited, and a medium containing components necessary for cell survival and proliferation can be appropriately used depending on the type of cells.
  • the medium may contain serum, antibiotics, growth factors and the like.
  • serum for example, bovine serum, fetal bovine serum, horse serum, human serum and the like can be appropriately used.
  • antibiotic penicillin, streptomycin, gentamicin, amphotericin, ampicillin, minocycline, kanamycin and the like can be appropriately used.
  • As the growth factor a cell proliferation factor, a differentiation inducing factor, a cell adhesion factor and the like can be appropriately used.
  • the cells after dropping the cell suspension on the gelatin non-woven fabric of the scaffold, the cells are allowed to stand for a predetermined time, for example, 3 to 4 hours, and precultured to adhere the cells to the gelatin non-woven fabric (scaffold). After that, a liquid medium can be added to carry out cell culture.
  • the culture may be carried out at, for example, 27 ° C. or higher and 40 ° C. or lower, or 31 ° C. or higher and 37 ° C. or lower.
  • Carbon dioxide may be in the range of 2% or more and 10% or less.
  • the culturing time may be appropriately determined according to the cell type, the number of cells, etc., but for example, the culturing may be continued for 2 to 21 days, continuously for 3 to 14 days, or 4 to 10 days. You may continue to do so.
  • the medium may be changed every 2-4 days.
  • a liquid medium was added to the culture vessel, and the cells were statically generated in an incubator under predetermined conditions (for example, temperature 37 ° C., 5% CO 2). It may be incubated. The liquid medium may be changed every 2-4 days.
  • a liquid medium may be added to a culture vessel, and the liquid medium may be stirred and cultured on a magnetic stirrer placed in an incubator at 37 ° C. and 5% CO 2 while stirring and culturing. Medium may be replaced every 3-4 days by removing half of the liquid medium and adding an equal amount of fresh liquid medium.
  • a liquid medium may be added to the culture vessel, and the cells may be cultured while shaking in an incubator at 37 ° C. and 5% CO 2. Medium may be replaced every 3-4 days by removing half of the liquid medium and adding an equal amount of fresh liquid medium. Since the scaffold of the present invention becomes transparent when it gets wet with water, the inside of the scaffold can be observed with an inverted microscope in the culture solution.
  • the seeding efficiency is improved, and high-density seeding can be performed, and high-density culture is possible by performing cell culture after seeding.
  • the present invention is a kit for preparing a cell aggregate in one or more embodiments, wherein the gelatin non-woven fabric containing the above-mentioned gelatin as a main component and gelatin laminated on one surface of the gelatin non-woven fabric are the main components.
  • the gelatin film side puts the scaffold after swelling in the culture vessel in which the inner surface is in a dry state at the time of preparing the cell aggregate, which includes a scaffold composed of a laminate containing a gelatin film and a culture vessel whose inner surface is not hydrolyzed.
  • a kit for preparing a cell aggregate which is arranged so as to be in contact with the inner bottom surface of a culture vessel and the cell suspension is dropped onto a gelatin non-woven material of a scaffold.
  • the cell assembly preparation kit as described above can also be used as a cell seeding kit or a cell culture kit.
  • the scaffold can promote cardiomyocyte maturation and mature cardiomyocyte.
  • Cell aggregates of cells and cardiomyocytes can be obtained.
  • the region in which the cells can be extended is wider in the fiber length direction than in the fiber diameter direction. Because of its existence, the cells attached to the gelatin fibers are oriented in the length direction of the fibers, and the gelatin non-woven fabric is flexible and has excellent deformation recovery. Therefore, the gelatin fibers contract and relax together with the cardiomyocytes to form cardiomyocytes. Mechanical stimulation is applied and can promote the maturation of cardiomyocytes.
  • Cardiomyocytes differentiated from stem cells or directly reprogrammed somatic cells may be immature and inadequate in function compared to living cardiomyocytes.
  • cardiomyocytes are immature, in the detection of side effects of compounds, the development of ion channels related to proarrhythmia prediction, the development of sarcomere structure related to systolic disorders, and the action of enhancing systolic force when a drug is added (positive inotropic action) May not be shown.
  • cardiomyocytes As a method of promoting the maturation of cardiomyocytes, it is known to give an external stimulus such as a stretch stimulus of cardiomyocytes or an electrical stimulus, but it is necessary to use a special culture dish.
  • the cardiomyocytes are stem cells or cardiomyocytes differentiated from directly reprogrammed somatic cells, of mature cardiomyocytes without the use of special culture dishes. A cell aggregate can be obtained.
  • Characteristics of mature cardiomyocytes include, for example, characteristics such as cardiomyocyte structure, contractility, electrophysiology, calcium handling, and metabolism.
  • Structural features of mature cardiomyocytes include increased size, elongated cell shape, oriented sarcomere structure, and sarcomere length of 1.8 ⁇ m to 2.2 ⁇ m.
  • the contractile features of mature cardiomyocytes include increased contractile force, improved ⁇ -MHC / ⁇ -MHC, change of Titin N2A to Titin N2B, increased contractile force by ⁇ -receptor stimulation, and Protein kinase A. Dependent increase in contractile force and the like can be mentioned.
  • Electrophysiological features of mature cardiomyocytes include increased excitatory rate, decreased resting membrane potential, and prolonged action potential duration.
  • Calcium handling characteristics of mature cardiomyocytes include increased calcium storage in the sarcoplasmic reticulum, increased calcium cycle due to adrenaline stimulation, and T-tubule development.
  • Metabolic characteristics of mature cardiomyocytes include the utilization of fatty acids and an increase in the number of mitochondria. The characteristics of the matured cardiomyocytes can be confirmed by imaging measurement, contractile force measurement, contraction rate, pharmacological evaluation, gene analysis and the like.
  • genes expressed in mature cardiomyocytes include those involved in electrophysiology, such as SCN5A, KCNJ2, GJA1, and CN4, and those involved in calcium handling include, for example, ATP2A2, CACNA1C, RYR2, SLC8A1, PLN, BIN1, and JPH2 are mentioned, and those related to contraction include, for example, MYH7, MYH6, MYL2, TNNI3, PLN, SERCA2A, and those related to metabolism include, for example, CPT1B, PGC1A, and TFAM. And so on.
  • the cell aggregate is suitably used for cell transplantation therapy, compound safety evaluation, compound toxicity evaluation, medical device, disease model, drug discovery research using the disease model, and the like. can do.
  • a cell aggregate can be used as a method for evaluating a compound for evaluating the properties of the compound.
  • the properties of the compound can be evaluated by contacting the cell aggregate with the compound and then determining whether or not the contact with the compound changes the physiological characteristics of the cell aggregate.
  • the properties of the compound are not particularly limited, but may be, for example, metabolism, pharmacological action, toxic action and the like. More specifically, as described above, cells are seeded on a scaffold and cultured for a predetermined time to obtain a cell aggregate, and then the target compound is added to the liquid medium used for the cell culture, and after the compound is added, the cell aggregate is added. You may observe and evaluate whether or not the physiological characteristics of the cells are altered.
  • the cell aggregate can be used for the electrophysiological characteristics of the target compound, the effect on cardiac contraction, for example, evaluation of proarrhythmia risk, cardiac contractile disorder, and cardiotoxicity.
  • cardiomyocytes are present on and inside the scaffold and adhere to the scaffold (specifically, the surface of the gelatin fiber and gelatin film on the gelatin non-woven side).
  • the cell aggregate In the body, that is, the cell aggregate of the three-dimensional culture in which the cardiomyocytes are three-dimensionally arranged, the cell aggregate easily follows the movement of the cardiomyocytes as a whole when the cardiomyocytes contract, and the heartbeat, action potential, contraction behavior, etc. The functionality of cardiomyocytes can be effectively evaluated.
  • the action potential of the cell aggregate can be evaluated by imaging of intracellular calcium ions, imaging of cell membrane potential, microelectrode array, etc., and contraction behavior can be evaluated by scaffolding and fibers constituting the scaffolding. It can be evaluated by observing the movement of cells, and bright field, calcium ion imaging, membrane potential imaging, etc. can be freely used.
  • the measurement / evaluation method is as follows. ⁇ Average fiber diameter> The scaffold after swelling was observed with a microscope (Yokogawa Electric Co., Ltd., CQ1), and the average fiber diameter after swelling was measured using 50 fibers arbitrarily selected. ⁇ Thickness> The cross section of the laminate (scaffold) was observed with a scanning electron microscope (FlexSEM1000 manufactured by Hitachi High-Technologies Corporation, 100 times and 500 times), and the thickness of the gelatin film layer at 10 places arbitrarily selected from the obtained scanning electron micrographs. , The thickness of the gelatin non-woven fabric and the thickness of the laminate were measured, and the average value was calculated.
  • the thickness of the laminated body (scaffolding) after swelling was measured with a digital caliper manufactured by Mitutoyo.
  • Example 1 Manufacturing of laminated body (scaffolding)>
  • This gelatin aqueous solution was placed on a polytetrafluoroethylene film (thickness: 50 ⁇ m) on a bar coater No. 1 manufactured by TP Giken Co., Ltd. A gelatin film was obtained by applying at 20 and air-drying at room temperature overnight. Next, using Nitta Gelatin Co., Ltd.
  • the temperature of the spinning liquid is 60 ° C
  • the nozzle diameter (inner diameter) is 250 ⁇ m
  • the discharge pressure is 0.2 MPa
  • the nozzle height is 5 mm
  • the air pressure is 0.375 MPa
  • the air temperature is 100 ° C
  • the distance between the fluid injection port and the nozzle discharge port is 5 mm.
  • the collection distance was 50 cm.
  • the laminate was air dried overnight at room temperature and then heat dehydrated and crosslinked. The cross-linking conditions were a temperature of 140 ° C. and 48 hours.
  • the obtained laminate was punched into a cylinder having a diameter of 6 mm to prepare a scaffold.
  • Example 2 ⁇ Manufacturing of laminated body (scaffolding)> Nozzle diameter (inner diameter) 150 ⁇ m, nozzle discharge pressure 0.275 MPa, nozzle height 5 mm, air pressure 0.375 MPa, air temperature 100 ° C, distance between fluid injection port and nozzle discharge port is 5 mm, collection distance is 50 cm.
  • Example 3 Manufacturing of laminated body (scaffolding)>
  • the laminate obtained in the same manner as in Example 1 was punched into a cylinder having a diameter of 6 mm and used as a scaffold.
  • the diameter of the laminate after swelling was 8 mm.
  • the scaffold was added with fibronectin solution (1 mg / ml, Sigma) to 1/100 (volume ratio) of dalbecolinic acid buffered saline (D-PBS (-) (1x), Nacalai Tesque). After immersing in the phosphate buffer containing fibronectin for 2 hours, the fibronectin solution was removed by suction.
  • D-PBS (-) (1x) dalbecolinic acid buffered saline
  • Example 4 Manufacturing of laminated body (scaffolding)>
  • the laminate obtained in the same manner as in Example 2 was punched into a cylinder having a diameter of 6 mm and used as a scaffold.
  • the diameter of the laminate after swelling was 8 mm.
  • the scaffold was added with fibronectin solution (1 mg / mL, Sigma) to 1/100 (volume ratio) of dalbecolinic acid buffered saline (D-PBS (-) (1x), Nacalai Tesque). After immersing in the fibronectin-containing phosphate buffer for 2 hours, the fibronectin-containing liquid medium was removed by suction.
  • D-PBS (-) (1x) dalbecolinic acid buffered saline
  • Example 1 Cell seeding and cell culture were carried out in the same manner as in Example 1 except that an IWAKI tissue culture microplate (for adherent cells) 6Well was used as the culture container.
  • Example 2 Cell seeding and cell culture were carried out in the same manner as in Example 3 except that an IWAKI tissue culture microplate (for adherent cells) 6Well was used as the culture container.
  • FIGS. 1 and 2 show cross-sectional photographs of the scaffolding used in Examples 1 and 2, respectively.
  • the gelatin fibers constituting the gelatin nonwoven fabric are at least partially welded at the fiber intersections, and the gelatin film is partially welded to the gelatin fibers constituting the gelatin nonwoven fabric.
  • Examples 1 and 2 and Comparative Example 1 immediately after seeding the cells (hereinafter, also referred to as “after seeding”), the cells are cultured for 3 hours, and after adding a liquid medium (hereinafter, also referred to as “after 3 hours of culture”).
  • the scaffolding after culturing for 72 hours was observed as follows. The results are shown in FIGS. 3 to 5, 9 and 2.
  • Examples 3 to 4 and Comparative Example 2 immediately after seeding the cells (hereinafter, also referred to as “after seeding”), the cells were cultured for 4 hours, and after adding a liquid medium (hereinafter, also referred to as “after 4 hours of culture”).
  • the scaffolding after culturing for 72 hours was observed as follows. The results are shown in FIGS. 6 to 8, 10 and 3.
  • the part that looks white is the cell nucleus.
  • (3) Calculation of viable cell number and viable cell ratio After washing the scaffold 1 day after seeding with dalbecolinic acid buffered saline (D-PBS (-) (1x), Nacalai Tesque, Inc.), centrifuge the scaffold by 15 mL. The cells were transferred to a tube, and 1 mL of a 2.5 g / L trypsin / 1 mmol / L EDTA solution (Nacalai Tesque) was added dropwise. After culturing at 37 ° C.
  • D-PBS (-) (1x), Nacalai Tesque, Inc. dalbecolinic acid buffered saline
  • Nacalai Tesque Nacalai Tesque
  • Observation is performed at intervals of 10 ⁇ m with respect to the thickness direction, and by observing points having thicknesses of 0 ⁇ m (surface), 100 ⁇ m, and 200 ⁇ m from the gelatin non-woven fabric side and the gelatin film side, respectively, in the cell depth direction. The distribution of was examined.
  • FIG. 3 shows the results of observing the scaffold end with an optical microscope (4 times) in Example 1, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 4 is an overall image of the scaffold obtained by fluorescently observing live cells (HEK293 cells) in the scaffold, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, and (b) is an enlarged image of the central portion thereof.
  • (C) are the whole image of the scaffold (cell aggregate) when the liquid medium was added after culturing for 3 hours, (d) is the enlarged image of the central part, and (e) is after culturing for 72 hours.
  • FIG. 5 is an overall image of the scaffold in which live cells (HEK293 cells) in the scaffold were observed by fluorescence in Example 2, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, and (b) is the central portion of the scaffold.
  • (c) is an overall image of a scaffold (cell aggregate) when a liquid medium is added after culturing for 3 hours
  • (d) is an enlarged image of the same central part
  • (e) is 72.
  • It is an overall image of the scaffold (cell aggregate) after time culturing
  • (f) is a magnified image of the same central part.
  • the scale bar shows 1000 ⁇ m
  • the scale bar shows 100 ⁇ m.
  • FIG. 6 shows the result of observing the end of the scaffold with an optical microscope (4 times) in Example 3, (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours, and then liquid medium was added. This is the result of the event.
  • FIG. 7 shows the results of fluorescence observation of living cells (myocardial cells) in the scaffold in Example 3, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, and (b) is an enlarged image of the central portion of the scaffold. Yes, (c) is an overall image of the scaffold (cell aggregate) when the liquid medium was added after culturing for 3 hours, (d) is an enlarged image of the same central part, and (e) was cultured for 72 hours.
  • FIG. 8 shows the results of fluorescence observation of living cells (myocardial cells) in the scaffold in Example 4, (a) is an overall image of the scaffold after cell seeding, and (b) is an enlarged image of the central portion. Yes, (c) is an overall image of the scaffold (cell aggregate) when the liquid medium was added after culturing for 3 hours, (d) is an enlarged image of the same central part, and (e) was cultured for 72 hours.
  • Examples 1 and 2 the stage in which the liquid medium was added after culturing for 3 hours (Examples 1 and 2) or 4 hours (Examples 3 and 4) after cell seeding, and At any stage of the 72-hour culture, there was almost no cell shedding from the scaffold, the seeding efficiency was high, and it was possible to culture at a high density from the initial stage of the culture.
  • FIG. 9 shows the results of observing the presence or absence of cells at the scaffold end in Comparative Example 1 with an optical microscope (4 times), (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 3 hours. This is the result when the liquid medium was added. As is clear from FIG. 9, in Comparative Example 1, many cells were shed from the scaffold immediately after cell seeding, and the seeding efficiency was low.
  • FIG. 10 shows the results of observing the presence or absence of cells at the scaffold end in Comparative Example 2 with an optical microscope (4 times), (a) is the result after cell seeding, and (b) is the result after culturing for 4 hours. This is the result when the liquid medium was added. As is clear from FIG. 10, in Comparative Example 2, many cells were shed from the scaffold after cell seeding, and the seeding efficiency was low.
  • the sowing efficiency was 10.5% in Comparative Example 2, whereas the sowing efficiency was 31.7% in Example 3 and 47.8% in Example 4, sowing.
  • the efficiency was significantly improved.
  • the iPS-derived myocardial cells have a low cell colonization rate, and even when cultured on a cell adhesion culture dish, the colonization rate is about 40 to 50%, and the scaffold composed of the gelatin non-woven fabric and the gelatin film has a retention rate of about 40 to 50%.
  • the seeding efficiency is excellent.
  • FIG. 11 shows the result of observing the distribution of living cells on the scaffold after culturing for 72 hours in Example 1,
  • (a) is the result of observing the surface on the gelatin non-woven side
  • (b) is the result of observing the surface of the gelatin non-woven material.
  • the result is a location 100 ⁇ m away in the thickness direction
  • (c) is the result of a location 200 ⁇ m away from the surface of the gelatin non-woven fabric in the thickness direction
  • (d) is the result of a location 200 ⁇ m away from the gelatin film surface in the thickness direction
  • (E) is the result of a portion 100 ⁇ m away from the surface of the gelatin film in the thickness direction
  • (f) is the result of observing the surface on the gelatin film side.
  • the scale bar shows 500 ⁇ m.
  • FIG. 12 is a photograph of observing the distribution of living cells on the scaffold after culturing for 72 hours in Example 2,
  • (a) is the result of observing the surface on the gelatin non-woven side
  • (b) is from the gelatin non-woven surface.
  • the result is a location 100 ⁇ m away in the thickness direction
  • (c) is the result of a location 200 ⁇ m away from the surface of the gelatin non-woven fabric in the thickness direction
  • (d) is the result of a location 200 ⁇ m away from the gelatin film surface in the thickness direction.
  • E) is the result of a portion 100 ⁇ m away from the surface of the gelatin film in the thickness direction
  • (f) is the result of observing the surface on the gelatin film side.
  • the scale bar shows 500 ⁇ m.
  • the cells also invaded the inside of the scaffold and could be cultured in three dimensions.
  • Example 1 in which the average fiber diameter of the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric is large (the pore diameter of the gelatin non-woven fabric is large), there are few cells on the gelatin non-woven fabric side, and the cells increase toward the gelatin film side along the thickness direction. It was increasing.
  • Example 2 in which the average fiber diameter of the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric was small (the pore diameter of the gelatin non-woven fabric was small), there were more cells on the gelatin non-woven fabric side than on the gelatin film side.
  • Example 5 ⁇ Evaluation of compounds using iPS cell-derived cardiomyocytes 1> (1) Evaluation of Synchronous Beating of Cardiomyocytes Cell seeding was carried out in the same manner as in Example 4, and 4 hours later, cells were cultured by adding to a liquid medium. On the 4th day of culture, a calcium indicator (EarlyTox Cardiotoxicity Kit, Molecular Device) was added to the medium at 5/100 (volume ratio), and calcium ions in cardiomyocytes were fluorescently stained. A moving image was taken at 20 FPS using a confocal imaging device (CQ1) manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • CQ1 confocal imaging device manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • a signal waveform of calcium ions in cardiomyocytes was obtained by recognizing a color-developing region and plotting the fluorescence intensity with respect to time using an image analyzer CellPathfinder manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • FIG. 13 shows the results of imaging evaluation of intracellular calcium ions in the cell aggregate after the addition of the calcium indicator on the 4th day of culture, (a) is a bright field image, and (b) is the addition of the calcium indicator. 120 minutes after that, the intracellular calcium ion was fluorescently observed, and (c) is an image of the intracellular calcium ion fluorescently observed 0.7 seconds after the time (b), (d). ) Is a diagram in which the fluorescence intensities of the measurement point A and the measurement point B are plotted against time. The distance between the measurement point A and the measurement point B is 3145 ⁇ m.
  • cardiomyocytes cultured on a scaffold composed of a gelatin non-woven fabric and a gelatin film have intracellular calcium ions at the same timing even in a wide area 3 mm or more apart. It is clear that the concentration is changing and it is beating synchronously.
  • FIG. 14 shows the results showing the responsiveness to isoproterenol in Example 5 on the 4th day of culture.
  • the addition of 100 nM isoproterenol accelerated the change in intracellular calcium ion concentration, and the pulsation number was 60 bpm before the addition, whereas it was 76 bpm after the addition, and the pulsation number changed.
  • Example 6 ⁇ Evaluation of compounds using iPS cell-derived cardiomyocytes 2> (1) Evaluation of Synchronous Beating of Myocardial Cells Cell seeding in the same manner as in Example 4 except that a cell suspension obtained by suspending the number of cells to 2 ⁇ 10 7 cells / mL was used. After 4 hours, the cells were cultured by adding them to a liquid medium. After the 4th day of culturing, a calcium indicator (EarlyTox Cardiotoxicity Kit, Molecular Device) was added to the medium at 5/100 (volume ratio), and calcium ions in cardiomyocytes were fluorescently stained. The seeding amount of cells per scaffold unit area is 6250 cells / mm 2 .
  • a moving image was taken at 20 FPS using a confocal imaging device (CQ1) manufactured by Yokogawa Electric Corporation. From the obtained moving image, a signal waveform of calcium ions in cardiomyocytes was obtained by recognizing a color-developing region and plotting the fluorescence intensity with respect to time using an image analyzer CellPathfinder manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • CQ1 confocal imaging device
  • a signal waveform of calcium ions in cardiomyocytes was obtained by recognizing a color-developing region and plotting the fluorescence intensity with respect to time using an image analyzer CellPathfinder manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • FIG. 15 shows the results of imaging evaluation of intracellular calcium ions in the cell aggregate after the addition of the calcium indicator on the 4th day of culture, (a) is a bright field image, and (b) is the addition of the calcium indicator. 120 minutes after that, the intracellular calcium ion was fluorescently observed, and (c) is an image of the intracellular calcium ion fluorescently observed 0.7 seconds after the time (b), (d). ) Is a diagram in which the fluorescence intensities of the measurement point A and the measurement point B are plotted against time. The distance between the measurement point A and the measurement point B is 2465 ⁇ m.
  • cardiomyocytes cultured on a cell aggregate that is, a scaffold composed of a gelatin non-woven fabric and a gelatin film, have the same timing even in a wide area separated by 2 mm or more. It is clear that the intracellular calcium ion concentration is changing and the cells are beating synchronously.
  • FIG. 16 shows the results showing the responsiveness of E-4031 on the 4th day of culture
  • FIG. 16A is an image of fluorescence observation of intracellular calcium ions 120 minutes after the addition of E-4031.
  • (B) is an image of intracellular calcium ions observed by fluorescence 0.4 seconds after the time point (a)
  • (c) is a plot of the fluorescence intensity of measurement point A and measurement point B with respect to time. It is a figure.
  • E-4031 when E-4031 is added to cardiomyocytes cultured on a cell aggregate, that is, a cardiomyocyte composed of a gelatin non-woven fabric and a gelatin film, E-4031 is added at different timings depending on the site. The intracellular calcium ion concentration changed, and the synchronous pulsation was suppressed. From FIG. 16 (c), at the measurement point B, the pulsatile behavior was significantly different from that at the measurement point A, and arrhythmia was confirmed.
  • Example 7 ⁇ Evaluation of compounds using iPS cell-derived cardiomyocytes 3> (1) Preparation of cardiomyocyte aggregate Cell seeding and culturing were carried out in the same manner as in Example 6 except that the cells were seeded so that the seeding amount per scaffolding unit area was 6000 cells / mm 2. (2) Structural observation of cardiomyocyte aggregates On the 3rd and 7th days of culture, scaffolds (cardiomyocyte aggregates) containing cardiomyocytes were collected, fixed with 16% paraformaldehyde, and then fluorescently stained.
  • a signal waveform of calcium ions in cardiomyocytes was obtained by plotting the fluorescence intensity of the entire 10-fold visual field with respect to time using an image analyzer CellPathfinder manufactured by Yokogawa Electric Corporation. Verapamil is a Ca channel blocker having an IKr inhibitory effect.
  • the obtained images were evaluated for contractile force and contraction relaxation rate of cardiomyocyte aggregates using ImageJ's plug-in tool MUSCLEMOTION (Sala et al, Circu. Res., 2018).
  • FIG. 17 shows the results of fluorescent staining of cardiomyocyte aggregates in Example 7.
  • A is a cell nucleus and actin filament stained image on the third day of culture
  • (b) is an ⁇ -actinin immunostained image on the third day of culture
  • (c) is a partially enlarged image of (b).
  • D is a cell nucleus and actin filament stained image on the 7th day of culture
  • (e) is an ⁇ -actinin immunostained image on the 7th day of culture
  • (f) is a partially enlarged image of (e).
  • the scale bar shows 50 ⁇ m.
  • the sarcomere structure of cardiomyocytes is known to orient in one direction in mature cardiomyocytes, and cardiomyocyte aggregates early orient iPS cell-derived cardiomyocytes to obtain structurally mature cardiomyocytes. be able to. Further, the sarcomere length in the sarcomere structure is about 2 ⁇ m, which is about the same as the sarcomere length of the matured myocardium, indicating that the cardiomyocytes are mature.
  • FIG. 18 is a graph showing the responsiveness to each compound in Example 7.
  • A is the signal waveform of calcium ions before and after administration of 1000 nM of isoproterenol, and (b) is the number of beats at each concentration of isoproterenol.
  • C is the signal waveform of calcium ions before administration of E-4031 and after administration of 1000 nM, and (d) is the number of beats at each concentration of E-4031.
  • E is the signal waveform of calcium ions before and after administration of 1000 nM of verapamil, and (f) is the number of beats at each concentration of verapamil.
  • cardiomyocyte aggregates showed different responsiveness to compounds with different actions.
  • isoproterenol was administered, the signal waveform of calcium ions became sharper (a) and the heart rate became faster than before administration (b).
  • E-4031 was administered, the signal waveform of calcium ions was elongated (c), the heart rate was decreased, and arrhythmia occurred at 100 nM or more (d).
  • verapamil was administered, the signal waveform of calcium ions became smaller (e) and the heart rate increased (f) than before administration.
  • FIG. 19 is a graph showing the responsiveness to each compound in Example 7.
  • A shows the contractile force before and after the administration of 1000 nM of isoproterenol, and (b) shows the contraction and relaxation rate before and after the administration of 1000 nM of isoproterenol.
  • C shows the contractile force before administration of E-4031 and after administration of 1000 nM, and (d) shows the contraction relaxation rate before administration of E-4031 and after administration of 1000 nM.
  • E shows the contractile force before administration of verapamil and after administration of 1000 nM, and (f) indicates the contraction relaxation rate before administration of verapamil and after administration of 1000 nM.
  • cardiomyocyte aggregates showed different changes in contractile force and contraction relaxation rate for compounds having different actions, and the responsiveness to the compounds could be easily evaluated.
  • isoproterenol was administered, the contractile force increased (a) and the contraction relaxation rate also increased (b) as compared with before administration.
  • E-4031 was administered, the contractile force was reduced (c) and the contraction / relaxation rate was also reduced (d) as compared with before administration.
  • verapamil was administered, the contractile force was reduced (e) and the contraction / relaxation rate was also reduced (f) as compared with those before administration.
  • isoproterenol which is a ⁇ -receptor stimulant, increases the contractile force (a positive inotropic effect is observed), indicating that the cardiomyocytes in the cardiomyocyte assembly are matured.
  • Example 8 ⁇ Evaluation of compounds using iPS cell-derived cardiomyocytes 4> (1) Preparation of cardiomyocyte aggregate The cells were seeded and cultured in the same manner as in Example 7 except that the cells were seeded so that the seeding amount per scaffold area was 8000 cells / mm 2. (2) Evaluation of compound responsiveness by calcium imaging of cardiomyocyte aggregates On the day before the addition of the calcium indicator, cardiomyocyte aggregates were placed so that the surface where many cells were present faced the bottom surface of the culture dish, and culture 6-10. Calcium ions in cardiomyocytes were fluorescently stained in the same manner as in Example 7, except that a calcium indicator was added on the day.
  • the compounds shown in Table 5 below (used as a therapeutic agent for COVID-19) were cumulatively administered to the desired concentration, and a signal waveform of calcium ions in cardiomyocytes was obtained in the same manner as in Example 7.
  • (3) Evaluation of contractile force of cardiomyocyte aggregates The contractile force of cardiomyocyte aggregates was evaluated in each sample in which the responsiveness of the compounds in Table 5 below was observed by the above calcium ion indicator, in the same manner as in Example 7.
  • FIG. 20 is a graph showing the responsiveness (signal waveform of calsim ion) to each compound in Example 8.
  • A is azithromycin
  • (b) is chloroquine
  • (c) is hydroxychloroquine
  • (d) is azithromycin (3 ⁇ M) and chloroquine in combination
  • (e) is azithromycin (3 ⁇ M) and hydroxychloroquine in combination. Shown.
  • Example 8 when the compounds shown in Table 5 above were used, the probabilities of the specimens showing the calcium ion signal waveform of arrhythmia are shown in Table 6 below.
  • chloroquine and hydroxychloroquine have a high risk of arrhythmia, while the combined use of azithromycin and chloroquine or hydroxychloroquine reduces the risk of arrhythmia.
  • FIG. 21 is a graph showing the responsiveness (shrinkage force) when each compound is used in Example 8.
  • A shows the result of azithromycin
  • (b) shows the result of chloroquine
  • (c) shows the result of the combined use of azithromycin (3 ⁇ M) and chloroquine
  • (e) shows the result of the combined use of azithromycin (3 ⁇ M) and hydroxychloroquine.
  • Example 8 at each concentration of the compounds listed in Table 5 above, the probabilities of the samples whose contractile force was halved before the administration of the compounds are shown in Table 7 below.
  • Example 9 ⁇ Evaluation of compounds using iPS cell-derived cardiomyocytes 5> (1) Preparation of cardiomyocyte aggregates Except for using Pliricite (registered trademark) manufactured by Ncardia as iPS cell-derived cardiomyocytes and seeding the cells so that the seeding amount per unit area of the scaffold was 6000 cells / mm 2. Cell seeding and culturing were carried out in the same manner as in Example 3. (2) Evaluation of compound responsiveness by membrane potential indicator of cardiomyocyte aggregate On the 7th day of culture, the surface where many cells are present faces the bottom surface of the culture dish (IWAKI suspension culture microplate (without surface treatment) 6Well). After placing the cardiomyocyte aggregate as described above, the cells were allowed to stand for 1 day.
  • Pliricite registered trademark manufactured by Ncardia
  • a membrane potential indicator (FluoroVolt, Invitrogen) was added to the medium, incubated at 37 ° C. for 30 minutes, and the membrane potential in cardiomyocytes was measured by fluorescent staining.
  • E-4031 was cumulatively administered to the culture medium so as to have a concentration of 0,1,10,100,1000 nM, and the responsiveness was observed from the change in the membrane potential.
  • a fluorescence time-lapse image was taken at 20 fps using a confocal imaging device (CQ1) manufactured by Yokogawa Electric Corporation. From the obtained image, a signal waveform of the membrane potential in cardiomyocytes was obtained by plotting the fluorescence intensity of the entire visual field of x10 with respect to time using an image analyzer CellPathfinder manufactured by Yokogawa Electric Corporation.
  • FIG. 22 shows the results of compound responsiveness observed by the membrane potential indicator in Example 9. As is clear from FIG. 22, even in the change of the membrane potential by the membrane potential indicator, the addition of E-4031 produced an arrhythmia waveform, and the arrhythmia could be evaluated.
  • the signal waveforms of calcium ions, contractile force, membrane potential signal waveforms, etc. in cardiomyocytes before contacting the cell aggregate with the target compound and after contacting the cell aggregate with the target compound are compared. From this, it can be seen that it is possible to determine the effect of the compound on cardiomyocytes, for example, whether or not it has cardiotoxicity.
  • the cell aggregate can be used as a method for evaluating various properties such as metabolism, pharmacological action, and toxic action of a compound.
  • the present invention is not particularly limited, but preferably includes the following aspects.
  • the scaffold is composed of a gelatin non-woven fabric containing gelatin as a main component and a laminate containing a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven fabric.
  • a cell aggregate characterized in that the cells are present on at least one of the surface and the inside of the gelatin non-woven fabric.
  • the gelatin fibers constituting the gelatin non-woven fabric have an average fiber diameter of 2 ⁇ m or more and 400 ⁇ m or less after swelling, fiber intersections are at least partially welded, and the gelatin film constitutes the gelatin non-woven fabric.
  • the cells include stem cells, cancer cells, stem cell-derived myocardial cells, nerve cells, hepatocytes, fibroblasts, endothelial cells and epithelial cells, and living body-derived myocardial cells, nerve cells, hepatocytes, and fibroblasts.
  • the cells include mature myocardial cells, and the mature myocardial cells are matured myocardial cells differentiated from stem cells or somatic cells, according to [1] to [8].
  • a cell assembly according to any one.
  • a scaffold composed of a gelatin non-woven fabric containing gelatin as a main component and a laminate containing a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven fabric, and a culture container whose inner surface is not hydrolyzed.
  • the process of preparing Includes a step of arranging the swollen scaffold in a culture vessel with a dry inner surface so that the gelatin film side is in contact with the inner bottom surface of the culture vessel, and a step of dropping a cell suspension onto the gelatin non-woven material of the scaffold and culturing.
  • a method for producing a cell aggregate which is characterized by the above.
  • a scaffold composed of a gelatin non-woven fabric containing gelatin as a main component and a laminate containing a gelatin film containing gelatin as a main component laminated on one surface of the gelatin non-woven fabric, and a culture container whose inner surface is not hydrophilized.
  • a method for evaluating a compound for evaluating the properties of the compound The step of contacting the compound with the cell aggregate according to any one of [1] to [9] and A method for evaluating a compound, which comprises the step of determining whether or not contact with the compound changes the physiological properties of the cell aggregate.
  • the cell assembly contains cardiomyocytes. [15] or [16], wherein the determination step is performed by one or more selected from the group consisting of intracellular calcium ion imaging, intracellular membrane potential imaging, and cell assembly contractile force evaluation. Method for evaluating the compound of.
  • Heating tank 2 Spinning liquid 3 Nozzle discharge port 4, 6 Compressor 5 Fluid injection port 7 Pressure fluid 8 Gelatin fiber 9 Gelatin non-woven fabric 10 Gelatin film 11 Winding roll 12 Heat insulation container 20 Manufacturing equipment

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Abstract

本発明は、細胞及び足場を含む細胞集合体であって、前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体に関する。前記細胞集合体は、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルムが培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養することで作製することができる。これにより、足場からの細胞の脱落が抑制された播種効率の高い細胞集合体、その製造方法、その作製キット、それを用いた化合物の評価方法を提供することができる。

Description

細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法
　本発明は、足場からの細胞の脱落が抑制された高い播種効率の細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法に関する。
　生体内で、細胞は、３次元的に相互作用しており、生体外においても、細胞を３次元的に相互作用させることで、機能が高まることが知られている。繊維シートで構成された細胞培養足場材は、細胞を３次元的に培養するための場を提供し、相互作用を促すため、細胞の大量培養や、医療機器、細胞移植治療、薬の安全性評価、疾患モデル等への利用が期待されている。特に生体適合性ポリマーを用いた繊維シートは、医療用及び細胞培養の足場として好適に用いられている。例えば、特許文献１には、ガーゼやスポンジ等の支持体上に、ゼラチン、コラーゲン及びセルロース等の生体高分子からなるナノファイバーを形成させて培養基材として用いることが記載されている。特許文献２には、平均繊維径が１～７０μｍの生体適合性長繊維の繊維交点を部分的に溶着させた生体適合性長繊維不織布を細胞培養用足場として用いることが記載されている。
国際公開２０１４/１９６５４９号 国際公開２０１８/２３５７４５号
　しかし、繊維シートで構成された細胞培養足場材に細胞を播種すると、足場材の繊維径、空孔サイズ、粗密等の構造の違いにより、細胞分布が変わることが知られている。例として、密な足場では細胞が表層に留まりやすく、足場の周囲を回り込んで細胞が脱落する問題がある。一方で、疎な足場では細胞が内部に侵入するものの、足場を貫通したり、足場の側面から細胞が漏れて脱落する問題があった。
　本発明は、前記従来の問題を解決するため、足場からの細胞の脱落が抑制された播種効率の高い細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法を提供する。
　本発明は、細胞及び足場を含む細胞集合体であって、前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体に関する。
　本発明は、また、前記の細胞集合体の製造方法であって、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、内面が親水化処理されていない培養容器を準備する工程、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置する工程、及び足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養する工程を含むことを特徴とする細胞集合体の製造方法に関する。
　本発明は、また、化合物の性質を評価する化合物の評価方法であって、前記の細胞集合体に化合物を接触させる工程と、化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断する工程を含む、化合物の評価方法に関する。
　本発明は、足場からの細胞の脱落が抑制された播種効率の高い細胞集合体を提供することができる。
　本発明の製造方法によれば、足場からの細胞の脱落を抑制し、高い播種効率で、細胞集合体を作製することができる。
　本発明の作製キットを用いることで、足場からの細胞の脱落を抑制し、高い播種効率で、細胞集合体を作製することができる。
　本発明は、３次元培養された細胞集合体を用いることで、化合物の性質を効果的に評価することができる。
図１は本発明の一実施例で用いた足場（積層体）の走査型電子顕微鏡（１００倍）の写真である。 図２は本発明の他の一実施例で用いた足場（積層体）の走査型電子顕微鏡（１００倍）の写真である。 図３は実施例１において足場の端部を光学顕微鏡で観察した画像（４倍）であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。 図４は実施例１において足場中の生細胞を蛍光観察した画像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。 図５は実施例２において足場中の生細胞を蛍光観察した画像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。 図６は実施例３において足場の端部を光学顕微鏡で観察した画像（４倍であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。 図７は実施例３において足場中の生細胞を蛍光観察した画像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。 図８は実施例４において足場中の生細胞を蛍光観察した画像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。 図９は比較例１において足場の端部を光学顕微鏡で観察した画像（４倍）であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。 図１０は比較例２において足場の端部を光学顕微鏡で観察した画像（４倍）であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。 図１１は実施例１において７２時間培養した後の足場における生細胞の分布を観察した画像であり、（ａ）はゼラチン不織布側の表面を観察した結果であり、（ｂ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｃ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｄ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｅ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｆ）はゼラチンフィルム側の表面を観察した結果である。 図１２は実施例２において７２時間培養した後の足場における生細胞の分布を観察した画像であり、（ａ）はゼラチン不織布側の表面を観察した結果であり、（ｂ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｃ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｄ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｅ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｆ）はゼラチンフィルム側の表面を観察した結果である。 図１３は、実施例５において、培養４日目における細胞集合体のカルシウムイオンのイメージング観察結果であり、（ａ）は細胞集合体の明視野画像であり、（ｂ）は所定の時刻の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｃ）は（ｂ）の時点から０．７秒後の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｄ）は、測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットしたグラフである。 図１４は、実施例５において、培養４日目における細胞集合体のイソプロテレノールに対する応答性を示す結果である。 図１５は、実施例６において、培養４日目における細胞集合体のカルシウムイオンのイメージング観察結果であり、（ａ）は細胞集合体の明視野画像であり、（ｂ）は所定の時刻の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｃ）は（ｂ）の時点から０．７秒後の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｄ）は、測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットしたグラフである。 図１６は、実施例６において、培養４日目において、Ｅ-４０３１による応答性を示す結果であり、（ａ）はＥ-４０３１を添加した後１２０分経過した後の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した像であり、（ｂ）は、（ａ）の時点から０．４秒後の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した像であり、（ｃ）は測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットした図である。 図１７は、実施例７における心筋細胞集合体の蛍光染色結果である。（ａ）は培養３日目の細胞核及びアクチンフィラメント染色像であり、（ｂ）は培養３日目のα―アクチニン免疫染色像であり、（ｃ）は（ｂ）の部分拡大像である。（ｄ）は培養７日目の細胞核及びアクチンフィラメント染色像であり、（ｅ）は培養７日目のα―アクチニン免疫染色像であり、（ｆ）は（ｅ）の部分拡大像である。 図１８は、実施例７において、各化合物に対する応答性を示すグラフである。（ａ）はイソプロテレノールを投与する前後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｂ）は各濃度のイソプロテレノールにおける拍動数である。（ｃ）はＥ-４０３１を投与する前後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｄ）は各濃度のＥ-４０３１における拍動数である。（ｅ）はベラパミルを投与する前後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｆ）は各濃度のベラパミルにおける拍動数である。 図１９は、実施例７において、各化合物に対する応答性を示すグラフである。（ａ）はイソプロテレノールを投与する前後の収縮力を示し、（ｂ）はイソプロテレノールを投与する前後の収縮弛緩速度を示す。（ｃ）はＥ-４０３１を投与する前後の収縮力を示し、（ｄ）はＥ-４０３１を投与する前後の収縮弛緩速度を示す。（ｅ）はベラパミルを投与する前後の収縮力を示し、（ｆ）はベラパミルを投与する前後の収縮弛緩速度を示す。 図２０は、実施例８において、各化合物に対する応答性（カルシムイオンのシグナル波形）を示すグラフである。（ａ）はアジスロマイシン、（ｂ）はクロロキン、（ｃ）はヒドロキシクロロキン、（ｄ）はアジスロマイシン（３μＭ）とクロロキンの併用、（ｅ）はアジスロマイシン（３μＭ）とヒドロキシクロロキンの併用の場合の結果を示す。 図２１は、実施例８において、各化合物に対する応答性（収縮力）を示すグラフである。（ａ）はアジスロマイシン、（ｂ）はクロロキン、（ｃ）はヒドロキシクロロキン、（ｄ）はアジスロマイシン（３μＭ）とクロロキン、（ｅ）はアジスロマイシン（３μＭ）とヒドロキシクロロキンの結果である。 図２２は、実施例９において、化合物に対する応答性を示すグラフである。 図２３は本発明の一実施例で使用する足場の製造装置の模式的説明図である。
　本発明の発明者らは、上述した問題を解決するため、検討を重ねた。その結果、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場を用い、細胞を前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方、好ましくは両方に存在させることで、足場からの細胞の脱落を抑制された播種効率の高い細胞集合体が得られることを見出した。
　特に、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、培養容器の内面（内底面及び内側面）が親水化処理されていない（非親水性）培養容器を用い、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下することで、驚くことに、足場に細胞懸濁液が留まり、足場の周囲への細胞流出が抑制され、すなわち足場からの細胞の脱落が抑制され、播種効率が高まることを見出した。これは、ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムの積層体で構成された足場の親水性（濡れ性）が、培養容器の内面の親水性（濡れ性）を上回るため、足場から培養容器側へ細胞懸濁液が流れず、それゆえ、細胞が足場から脱落しないと推測される。また、足場内部及び／又は表面に細胞を留まらせた状態で、所定時間前培養し、細胞接着を促した後、追加の液体培地を添加して、足場を液体培地中に浸漬しても、細胞が足場に留まったまま、足場から脱落しない。
　一方、細胞との接着性を高めるために培養容器の内底面等の内面が親水化処理された（親水性）培養容器の場合、足場に細胞懸濁液を滴下すると、足場から周囲へ細胞懸濁液が流出し、足場から細胞が脱落する。
　通常、増殖性の細胞では、足場内で高密度化を達成するには、1週間以上の細胞増殖期間を設ける必要があり、また非増殖性の細胞では、播種効率が悪いと、足場内での細胞の高密度化が困難であるが、上述した播種方法であれば、播種効率が高く、高密度播種ができるため、培養初期からも高密度の培養が可能となる。
　それゆえ、培養初期から高密度で３次元培養した細胞集合体が得られ、該細胞集合体を用いることで化合物の性質を効果的に評価し得る。
　本発明において、「膨潤」とは、水、緩衝液又は液体培地からなる群から選ばれる一つ以上の液体で飽和状態まで膨潤することを意味する。
　前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムは、いずれも、ゼラチンを主成分とする。本発明において、主成分とは、ゼラチンを９０質量％以上含むことを意味する。１０質量％以下の他の成分は、必要に応じて、他の生体適合性ポリマー、架橋剤、薬剤、可塑剤、他の添加剤等であってもよい。実質的に１００質量％のゼラチンであってもよい。本発明の足場は、安全性が高く、生体吸収性に優れるゼラチンを主成分とすることから、該足場は、生体に移植して再生治療用、細胞研究及び創薬研究に必要となる三次元細胞組織体等として好適に用いることができる。
　前記ゼラチンの原材料となるコラーゲンが由来する動物の種類や部位は特に限定されない。コラーゲンは、例えば脊髄動物由来でもよく、魚由来でもよい。また、真皮、靭帯、腱、骨、軟骨等の様々な器官や組織由来のコラーゲンを適宜用いることができる。また、コラーゲンからゼラチンを調製する方法も特に限定されず、例えば酸処理、アルカリ処理、及び酵素処理等が挙げられる。前記ゼラチンの分子量も特に限定されず、様々な分子量のものを適宜選択して用いることができる。また、ゼラチンは、１種を用いてもよく、２種以上を併用してもよい。
　前記ゼラチンは、特に限定されないが、適度な柔軟性及び硬さを有し、足場のハンドリング性を高める観点から、ゼリー強度が１００ｇ以上４００ｇ以下であることが好ましく、より好ましくは１５０ｇ以上３６０ｇ以下である。本発明において、ゼリー強度は、ＪＩＳ　Ｋ　６５０３に準じて測定する。前記ゼラチンは、市販品であってもよい。
　前記他の生体適合性ポリマーとしては、特に限定されないが、例えば、天然高分子や合成高分子を用いることができる。天然高分子としては、例えばタンパク質や多糖類が挙げられる。タンパク質としては、例えばコラーゲン、フィブロネクチン、フィブリノーゲン、ラミニン、フィブリン等が挙げられる。多糖類としては、例えばキトサン、アルギン酸カルシウム、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、ヘパリン、 デンプン、ジェランガム、アガロース、グァーガム、キサンタンガム、カラギーナン、ペクチン、ローカストビーンガム、タマリンドガム、ダイユータンガム等の天然高分子を用いてもよく、カルボキシメチルセルロース等の天然高分子の誘導体を用いてもよい。合成高分子としては、例えば、ポリエチレングリコールポロエチレングリコール、ポリエチレンテレフタレート、ポリビニルアルコール、熱可塑性エラストマー、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリスチレン、ポリメタクリル酸メチル、ポリカーボネート、ポリジメチルシロキサン、シクロオレフィンポリマー、アモルファスフッ素樹脂等の非吸収性の合成高分子や、ポリ乳酸、ポリグルコール酸、ポリカプロラクトン、ポリジオキサノン等の生体吸収性高分子等が挙げられる。上述した他の生体適合ポリマーは、１種を用いてもよく、２種以上を用いてもよい。
　前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、膨潤後の平均繊維径が２μｍ以上４００μｍ以下であることが好ましく、より好ましくは５μｍ以上２００μｍ以下であり、さらに好ましくは１０μｍ以上１００μｍ以下であり、特に好ましくは１５μｍ以上４５μｍ以下である。ゼラチン繊維の平均繊維径が上記範囲内であると、足場のゼラチン不織布の表面上に細胞を播種した際、細胞が足場に侵入しやすい上、足場の内部に均一に分布しやすい。本発明において、「膨潤後の平均繊維径」は、膨潤後の足場におけるゼラチン不織布から任意に選択した５０本の繊維の直径の平均値を意味する。
　前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、繊維交点が部分的に溶着していることが好ましい。この部分的溶着は、特に限定されないが、例えば、後述するように、足場の製造時に圧力流体によって吹き飛ばされた完全に固化していない状態のゼラチン繊維を堆積することで発現させることができる。この部分的溶着により、ゼラチン不織布はブリッジ構造となり、所望の形に成形しやすく、かつ成形安定性も高いものとなる。また、繊維交点が部分的に溶着していることにより、ゼラチン不織布は水に濡れてもへたらない。また、ゼラチン不織布において、繊維交点は一部が溶着してもよく、繊維交点の全部が溶着してもよい。
　前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、ハンドリング性及び細胞の侵入性を高める観点から、厚みが０．１ｍｍ以上であることが好ましく、０．２ｍｍ以上であることがより好ましく、０．３ｍｍ以上であることがさらに好ましく、０．４ｍｍ以上であることが特に好ましい。また、前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、３次元培養における細胞の生存率を高める観点から、厚みが２ｍｍ以下であることが好ましく、１．５ｍｍ以下であることがより好ましく、１ｍｍ以下であることがさらに好ましく、０．７ｍｍ以下であることが特に好ましい。
　前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、細胞の脱落を抑制する観点から、目付が１０ｇ／ｍ2以上であることが好ましく、２５ｇ／ｍ2以上であることがより好ましく、５０ｇ／ｍ2以上であることがより好ましい。また、前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、細胞の侵入性及び３次元培養における細胞の生存率を高める観点から、目付が６００ｇ／ｍ2以下であることが好ましく、５００ｇ／ｍ2以下であることがより好ましく、４００ｇ／ｍ2以下であることがさらに好ましい。
　前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、細胞の侵入性及び３次元培養における細胞の生存率を高める観点から、細孔径が２０μｍ以上であることが好ましく、３０μｍ以上であることがより好ましく、４０μｍ以上であることがさらに好ましい。また、前記ゼラチン不織布は、特に限定されないが、例えば、細胞の脱落を抑制する観点から、細孔径が２５０μｍ以下であることが好ましく、２００μｍ以下であることがより好ましく、１８０μｍ以下であることがさらに好ましい。本発明において、ゼラチン不織布の細孔径は、Ｗｒｏｔｎｏｗｓｋｉの仮定に基づいて、下記計算式（１）にて算出することができる。
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　前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布の一方の表面に配置されており、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着していることが好ましい。この部分的溶着は、特に限定されないが、例えば、後述するように、足場の製造時に圧力流体によって吹き飛ばされた完全に固化していない状態のゼラチン繊維をゼラチンフィルム上に堆積することで発現させることができる。この部分的溶着により、ゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化されており、細胞が足場を貫通して細胞から脱落することが抑制される。また、ゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化されていることにより、細胞集合体を培養容器から剥離しやすく、また細胞への障害が少ないことで、移植先における定着性も良好になる。
　前記ゼラチンフィルムは、一例として、簡便性及びハンドリング性の観点から、厚みが０．５μｍ以上であることが好ましく、０．６μｍ以上であることがより好ましく、０．７μｍ以上であることがさらに好ましく、０．８μｍ以上であることが特に好ましい。また、前記ゼラチンフィルムは、一例として、ゼラチン不織布との一体性及び細胞の３次元培養の効率を高める観点から、厚みが１０μｍ以下であることが好ましく、８μｍ以下であることがより好ましく、６μｍ以下であることがさらに好ましく、４μｍ以下であることがさらにより好ましく、２μｍ以下であることが特に好ましい。
　前記ゼラチンフィルムは、無孔フィルムであることが好ましいが、細胞が貫通しないぐらいの大きさ、例えば細孔径が１０μｍ以下又は５μｍ以下程度の微小孔を有してもよい。
　前記ゼラチン不織布の厚みＴｎと前記ゼラチンフィルムの厚みＴｆの比Ｔｆ／Ｔｎが７．５×１０-3以下であることが好ましい。これにより、膨潤後における積層体の反りが抑制され、細胞懸濁液が足場により留まりやすい。さらに、積層体が膨潤した場合でも、ゼラチン不織布にゼラチンフィルムが追従しやすく、ゼラチンフィルムの剥離や破壊が生じにくい。前記Ｔｆ／Ｔｎは、７．０×１０-3以下であることがより好ましく、６．０×１０-3以下であることがさらに好ましい。また、前記Ｔｆ／Ｔｎは、ゼラチンフィルムの剥離や破壊を抑制しやすい観点から、１．０×１０-3以上であることが好ましく、１．５×１０-3以上であることがより好ましい。
　前記積層体は、特に限定されないが、例えば、細胞培養時に強度を保ち、３次元培養における細胞の生存率を高める観点から、水で飽和状態まで膨潤した後における１．０ｋＰａの圧縮応力時の圧縮変形率（以下において、単に「圧縮変形率」とも記す。）が４０％以下であることが好ましく、３５％以下であることがより好ましく、３０％以下がさらに好ましい。前記飽和状態とは、水が最大限に含まれた状態であり、水の含有量が一定限度にとどまりそれ以上増えない状態を意味する。本明細書において、圧縮変形率は、水で飽和状態まで膨潤した後の積層体において、無荷重の時の厚さを（Ｈ１）とし、１．０ｋＰａの圧縮応力時の厚さを（Ｈ２）とした場合、下記式で算出したものである。圧縮試験は、後述のとおりに行う。
　圧縮変形率（％）＝１００－｛（Ｈ２／Ｈ１）×１００｝
　前記ゼラチン不織布及び前記ゼラチンフィルムは、細胞培養時の形態を維持しやすく、効果的に細胞の３次元培養を行う観点から、架橋されていることが好ましい。架橋は、具体的には、後述のとおりに行うことができる。
　本発明の１以上の実施形態において、前記ゼラチン不織布とゼラチンフィルムの積層体は、細胞接着因子、細胞誘導因子、細胞増殖因子、細胞に栄養やエネルギ－を与える物質、細胞の機能を抑制又は亢進する物質等でコーティングされてもよい。細胞接着因子としては、特に限定されないが、例えば、フィブロネクチン等が挙げられる。細胞接着因子で積層体をコーティングすることで、細胞が足場により留まりやすくなる。細胞に栄養やエネルギ－を与える物質としては、特に限定されないが、例えば、ＡＴＰ、ピルビン酸、グルタミン等が挙げられる。また、本発明の１以上の実施形態において、前記ゼラチン不織布とゼラチンフィルムの積層体を細胞誘導因子、細胞増殖因子等の生理活性物質を含む溶液に浸して、これらの成分を含ませてもよい。細胞培養過程において、積層体から、これらの生理活性物質が徐々に放出されることで、細胞培養を促進することができる。
　前記足場は、特に限定されないが、夾雑物の発生を抑制し、製品汚染を防ぐとともに、バインダー成分や熱圧着手段を用いることなく、ゼラチン不織布とゼラチンフィルムを一体化する観点から、ゼラチンを含む紡糸液をノズル吐出口から空気中に押し出し、前記ノズル吐出口の後方に位置し、前記ノズル吐出口とは非接触状態の流体噴射口から前方に向けて圧力流体を噴射し、前記押し出された紡糸液を前記圧力流体に随伴させて繊維形成させ、ゼラチンを主成分とするゼラチンフィルム上に前記繊維形成した繊維を集積させてゼラチン不織布とすることで、前記ゼラチンフィルムと前記ゼラチン不織布の積層体を得ることで作製することが好ましい。
　前記ゼラチンフィルムは、特に限定されず、公知のフィルムの製造方法で作製することができる。例えば、ゼラチン溶液を基材表面に塗布した後、乾燥することで作製することができる。前記基材としては、例えば、ポリエチレンテレフタレートフィルム（ＰＥＴフィルム）、ガラス板、ポリスチレンシート、フッ素樹脂シート等を用いることができる。ＰＥＴフィルム、ガラス板、ポリスチレンシート、フッ素樹脂シート等は撥水処理されてもよい。
　前記ゼラチン溶液は、ゼラチン単独、或いは、必要に応じてゼラチンと上述した他の成分として用いることができる他の生体適合ポリマーを溶媒に溶解することで得ることができる。溶媒としては、例えば、水、エタノール、１－プロパノール、２－プロパノール、グリセリン等のアルコール類、あるいはジメチルホルムアミド、ジメチルアセトアミド等のアミド類等が挙げられる。これらの溶媒は、１種を単独で用いてもよく、２種以上を混合して用いてもよい。中でも、取扱い性の観点から、蒸留水、純水、超純水、イオン交換水等の水を用いることが好ましい。ゼラチンが水溶性であることで、水溶液の状態でフィルム化に用いることができ、生体に対する安全性が高くなる。
　ゼラチンの濃度は、特に限定されないが、例えば、成膜性及び流延性の観点から、ゼラチン溶液を１００質量％とした時、０．１質量％以上３５質量％以下であることが好ましく、１質量％以上３０質量％以下であることがより好ましく、３質量％以上２０質量％以下であることがさらに好ましい。溶解温度（溶媒の温度）は１０℃以上９０℃以下が好ましく、２０℃以上８０℃以下であることがより好ましく、３０℃以上７０℃以下であることがさらに好ましい。必要に応じて、ゼラチンを溶媒に溶解した後、フィルトレーションして異物やごみ等を除去してもよい。また、必要に応じて、その後、減圧又は真空脱泡して溶解空気を除去してもよい。効率よく気体（気泡）を除去する観点から、減圧脱泡時の真空度は５ｋＰａ以上３０ｋＰａ以下であることが好ましい。
　前記乾燥は特に限定されず、例えば、自然乾燥、加熱乾燥、減圧乾燥（真空乾燥）、強制排気乾燥、強制循環対流等により行うことができる。具体的に、乾燥温度は、例えば、－４０℃以上９０℃以下であってもよく、０℃以上６０℃以下であってもよく、１０℃以上４０℃以下であってもよい。また、乾燥時間は、例えば、１時間以上２００時間以下の範囲であってもよく、好ましくは３時間以上１００時間以下の範囲であり、より好ましくは５時間以上４８時間以下の範囲である。
　前記のメルトブロー法は、ゼラチンを含む紡糸液をノズル吐出口から押し出し、ノズル吐出口の後方に位置し、前記ノズル吐出口とは非接触状態の流体噴射口から前方に向けて圧力流体を噴射し、前記押し出された紡糸液を前記圧力流体に随伴させて乾式でダイレクトに繊維化し、得られたゼラチン繊維をゼラチンフィルム上に集積させて不織布にすることから、コンタミ（夾雑物）の発生は防止され、衛生的に製造できる。紡糸後に繊維を集積（堆積）させる時に繊維同士が、水分を含んだ状態で積層されるため、繊維同士が溶着したり互いに絡んで一体化されるとともに、該不織布を構成するゼラチン繊維がゼラチンフィルムと溶着してゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化する。繊維を堆積させる際の捕集距離を変えることで、容易に不織布密度を変えることができる。
　図２３は本発明の一実施例で使用する足場の製造装置の模式的説明図である。足場の製造装置２０において、加温槽１に入れたゼラチンを含む紡糸液２をノズル吐出口３から空気中に押し出す。加温槽１にはコンプレッサー４により、所定の圧力をかけておく。１２は保温容器である。
　また、ノズル吐出口３の後方に位置し、ノズル吐出口３とは非接触状態の流体噴射口５から前方に向けて圧力流体７を噴射させる。流体噴射口５にはコンプレッサー６から圧力流体（例えば圧空）が供給される。流体噴射口５とノズル吐出口３との距離は５～３０ｍｍが好ましい。
　押し出された紡糸液は圧力流体７に随伴されてゼラチン繊維８となり、巻き取りロール１１上に配置されたゼラチンフィルム１０上でゼラチン不織布９となって堆積される。この時、堆積された繊維は水分を含んでいたり、完全には固化していないので、繊維交点の少なくとも一部において接している繊維が互いに溶着するとともに、不織布を構成するゼラチン繊維がゼラチンフィルムと溶着してゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化する。なお、巻き取りロールに変えてネット等の他の捕集手段を用いてもよい。
　まず、ゼラチン単独、或いは、必要に応じてゼラチンと上述した他の成分として用いることができる他の生体適合ポリマーを溶媒、好ましくは水に溶解して紡糸液を調製する。溶解温度（水等の溶媒の温度）は２０℃以上９０℃以下が好ましく、４０℃以上９０℃以下であることがより好ましい。必要に応じて、ゼラチンを水等の溶媒に溶解した後、フィルトレーションして異物やごみ等を除去してもよい。また、必要に応じて、その後、減圧又は真空脱泡して溶解空気を除去してもよい。効率よく気体（気泡）を除去する観点から、減圧脱泡時の真空度は５ｋＰａ以上３０ｋＰａ以下であることが好ましい。ゼラチンが水溶性であることで、紡糸液として水溶液の状態で紡糸でき、生体に対する安全性が高くなる。水としては、例えば、純水、蒸留水、超純水等を適宜用いることができる。なお、他の成分として、他の生体適合性水溶性高分子を用いる場合、ゼラチンと同時に水に溶解することで、紡糸液を調製することができる。
　前記紡糸液の温度は２０℃以上９０℃以下であることが好ましく、４０℃以上９０℃以下であることがより好ましい。前記の範囲であればゼラチンは安定したゾル状態を維持できる。また、前記ゼラチン水溶液のゼラチン濃度は、ゼラチン水溶液を１００質量％とした時、３０質量％以上５５質量％以下であることが好ましい。さらに好ましい濃度は３５質量％以上５０質量％以下である。前記の濃度であれば安定したゾル状態を維持できる。前記ゼラチン水溶液（紡糸液）の粘度は５００ｍＰａ・ｓ以上３０００ｍＰａ・ｓ以下が好ましい。ゼラチン水溶液の粘度が前記の範囲であれば安定した紡糸ができる。
　前記紡糸液を紡糸機のノズルから吐出し、前記ノズル周囲から圧力流体を供給し、前記吐出したゼラチン水溶液を前記圧力流体に随伴させて繊維形成させ、得られたゼラチン繊維をゼラチンフィルム上で集積させてゼラチン不織布とする。ノズルの吐出圧は、特に限定されないが、例えば０.１ＭＰａ以上１ＭＰａ以下であってもよい。
　前記圧力流体の温度は、２０℃以上１２０℃以下であることが好ましく、８０℃以上１２０℃以下であることがより好ましい。圧力流体の流速及び周囲雰囲気の温度にもよるが、前記の温度範囲であれば安定した紡糸ができる。圧力流体は空気を使用することが好ましく、圧力は０.１ＭＰａ以上１ＭＰａ以下であることが好ましい。前記の範囲であれば、ノズル吐出口から空気中に押し出された紡糸液を吹き飛ばして繊維化できる。
　ノズル径（内径）等適宜を調整することで、所望の平均繊維径を有する前記ゼラチン不織布を得ることができる。
　前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムの積層体は、架橋することが好ましい。これにより形態安定性及び耐水性を高めることができる。架橋は、架橋剤等の化合物を用いた化学架橋であってもよいが、生体安全性の観点から、生体安全性を有する架橋剤を用いる架橋、架橋剤を用いない架橋であることが好ましい。架橋剤を用いない架橋としては、例えば、熱架橋、電子線架橋、γ線等の放射線架橋、紫外線架橋等が挙げられる。電子線照射、γ線等の放射線照射の場合は、滅菌と架橋を同時にすることもできる。簡便に所望の架橋効果を得やすい観点から、熱架橋であることが好ましく、熱脱水架橋であることがより好ましい。熱脱水架橋は、例えば、１００℃以上１６０℃以下で、２４時間以上９６時間以下で行ってもよい。また、熱脱水架橋は、例えば、１ｋＰａ以下の真空下で行ってもよい。前記積層体は、架橋する前に乾燥してもよい。乾燥は、室温における風乾でもよく、真空凍結乾燥でもよい。
　ゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化された積層体を必要に応じて所定の形状や大きさにカットして足場として用いることができる。ゼラチンは生体適合性、生分解性を有することから、ゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化された積層体は、医療用又は細胞培養の足場用に好適である。足場は、使用時に、エチレンオキサイドガス滅菌、水蒸気（オートクレーブ）、電子線照射、γ線等の放射線照射等で滅菌したり、エタノール処理等で殺菌することができる。電子線照射、γ線等の放射線照射の場合は、滅菌とともに架橋を同時にすることもできる。
　上記ゼラチンフィルムや積層体の製造工程は、例えば、クリーンベンチ、クリーンルーム内で無菌的に行うことが好ましい。作業中における雑菌の繁殖によって、ゼラチンフィルムや積層体が汚染することを防止することができる。使用する製造器具は、例えば、オートクレーブ、電子線照射、γ線等の放射線照射等で滅菌処理されたものを使用することが好ましい。また、上記ゼラチン溶液も、例えば、従来公知のフィルターろ過滅菌を行ってから前記フィルム製造工程に供することが好ましい。
　本発明において、一例として、架橋させた後の積層体を所定の形に打ち抜く等して成形し、足場とする。或いは、水、緩衝液又は所定の液体培地で膨潤した後に、目的の足場とする。
　本発明の１以上の実施形態において、細胞集合体は、足場及び細胞を含み、細胞がゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在すればよいが、細胞はゼラチン不織布の表面及び内部の両方に存在することが好ましい。このように細胞が立体的に配置された３次元培養細胞集団の場合、組織としての利用が可能となる。本発明の１以上の実施形態において、細胞集合体は、必要に応じて、シート状やブロック状等の各種形状にすることができる。また、細胞集合体は、２層以上の構造であり、各々の層が足場及び細胞を含み、細胞がゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方、好ましくは両方に存在するものであってもよい。
　本発明の１以上の実施形態において、細胞は、動物細胞であればよく、その由来は特に限定されない。動物としては、ヒトでもよく、ヒト以外の動物でもよい。ヒト以外の動物としては、例えば、サル、チンパンジー等の霊長類、マウス、ラット、ハムスター等の齧歯類、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ等の有蹄類等が挙げられる。また、本発明において、細胞は、個々の細胞、細胞株、初代培養等培養で得られる細胞等を含む。前記細胞としては、特に限定されないが、例えば、体細胞、幹細胞、前駆細胞、生殖細胞、免疫細胞等が挙げられる。
　体細胞は、生体を構成する体細胞や体細胞から派生した癌細胞を含む。生体を構成する体細胞としては、特に限定されず、例えば、線維芽細胞、筋細胞、内皮細胞、骨芽細胞、膀胱細胞、肺細胞、骨細胞、神経細胞、肝細胞、軟骨細胞、上皮細胞、中皮細胞等が挙げられる。癌細胞としては、特に限定されず、例えば、乳癌細胞、腎癌細胞、前立腺癌細胞、肺癌細胞、肝癌細胞、子宮頸癌細胞、食道上皮癌、膵癌、大腸癌、膀胱癌等が挙げられる。
　幹細胞は、様々な特殊化した細胞型へ分化する可能性がある細胞である。幹細胞としては、特に限定されず、例えば、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、胚性癌腫細胞（ＥＣ）、胚性生殖幹細胞（ＥＧ）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、成体幹細胞、胚盤胞由来幹細胞、生殖隆起由来幹細胞、奇形腫由来幹細胞、オンコスタチン非依存性幹細胞（ＯＩＳＣ）、骨髄由来間葉系幹細胞、脂肪由来間葉系幹細胞、羊水由来間葉系幹細胞、皮膚由来間葉系幹細胞、骨膜由来間葉系幹細胞等が挙げられる。
　前駆細胞は、前記幹細胞から発生し生体を構成する最終分化細胞へ分化することができる細胞である。
　生殖細胞としては、例えば、精子、精細胞、卵子、卵細胞等が挙げられる。
　免疫細胞としては、特に限定されないが、例えば、マクロファージ、リンパ球、樹状細胞等が挙げられる。
　上述した細胞は、１種を単独で用いてもよく、目的等に応じて２種以上を併用してもよい。例えば、前記細胞は、幹細胞、がん細胞、幹細胞由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞、並びに生体由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞からなる群から選ばれる１種以上であることが好ましい。
　本発明の１以上の実施形態において、特に限定されないが、前記細胞集合体は、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下することで、細胞を播種した後に培養することで作製することができる。これにより、足場からの細胞の脱落が抑制され、播種効率が高くなり、好適には培養初期から高密度で細胞を培養することができる。足場の配置は、具体的には、ピンセットで足場の端部を把持して行うことができる。
　本発明は、１以上の実施形態において、細胞を足場に播種する細胞播種方法であって、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、培養容器の内面が親水化処理されていない培養容器を準備し、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下することを特徴とする細胞播種方法を提供することができる。該細胞播種方法によれば、足場からの細胞の脱落が抑制され、播種効率が高まる。本発明は、１以上の実施形態において、また、前記の細胞播種方法において、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して所定時間静置した後、液体培地を添加して細胞培養を行う細胞培養方法を提供することができる。該細胞培養法によれば、培養初期から高密度で細胞を培養することができる。
　本発明の１以上の実施形態において、培養容器は、細胞培養用足場や液体培地と接する内面が親水化処理されていないものであればよく、特に限定されず、例えば、ディッシュ、プレート、及びフラスコ等を適宜用いることができる。具体的には、細胞接着性（付着性）を向上する処理を行っていない未処理（細胞非接着性）の培養皿を用いることができ、浮遊培養用の培養皿を好適に用いることができる。例えば、「ＩＷＡＫＩ浮遊培養用マイクロプレート（表面処理なし）６ｗｅｌｌ」、「Ｃｏｒｎｉｎｇノントリートメントプレート６ウェル」等の市販品を用いることができる。
　細胞懸濁液は、細胞を液体培地中に懸濁したものを用いることができる。足場の単位表面積当たりの細胞懸濁液の液量（滴下量）は、足場の厚みや目付、細胞懸濁液の濃度などにより適宜決めることができ、特に限定されないが、０．１μＬ／ｍｍ2以上０．６μＬ／ｍｍ2以下であることが好ましく、より好ましくは０．２μＬ／ｍｍ2以上０．５μＬ／ｍｍ2以下であり、さらに好ましくは０．３μＬ／ｍｍ2以上０．４μＬ／ｍｍ2以下である。上述した範囲内であると、足場内に均一に細胞懸濁液が行き届きやすく、かつ、足場内に細胞懸濁液を保持しやすくなる。
　足場の単位表面積当たりの細胞の播種量は、特に限定されず、細胞種類、足場の厚み及び目付等に基づいて適宜決めることができるが、例えば、高密度に播種する観点から、２００細胞/ｍｍ2以上２００００細胞/ｍｍ2以下であることが好ましく、２０００細胞/ｍｍ2以上１５０００細胞/ｍｍ2以下であることがより好ましく、４０００細胞/ｍｍ2以上１２０００細胞/ｍｍ2以下であることがさらに好ましい。
　前記液体培地としては、特に限定されず、細胞の種類に応じて、細胞の生存増殖に必要な成分を含むものを適宜用いることができる。前記培地は、血清、抗生物質及び成長因子等を含んでもよい。血清は、例えば、ウシ血清、ウシ胎児血清、ウマ血清、ヒト血清等を適宜用いることができる。抗生物質は、ペニシリン、ストレプトマイシン、ゲンタマイシン、アンフォテリシン、アンピシリン、ミノマイシン、カナマイシン等を適宜用いることができる。成長因子は、細胞増殖因子、分化誘導因子、細胞接着因子等を適宜用いることができる。
　本発明の１以上の実施形態において、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下した後、所定時間例えば３～４時間静置して細胞をゼラチン不織布（足場）に接着させるための前培養を行った後に、液体培地を添加して細胞培養を行うことができる。
　培養は、例えば、２７℃以上４０℃以下で行ってもよく、３１℃以上３７℃以下であってもよい。二酸化炭素は、２％以上１０％以下の範囲であってもよい。
　培養時間は、細胞種類、細胞数等に応じて適宜決めればよいが、例えば、２～２１日継続して培養してもよく、３～１４日継続して行ってもよく、４～１０日継続して行ってもよい。培地は、２～４日毎に交換してもよい。
　一例として、細胞播種３～４時間後に細胞が足場に接着したのを確認してから、培養容器中に液体培地を加え、所定条件（例えば温度３７℃、５％ＣＯ2）のインキュベーター中で静置培養してもよい。液体培地は、２～４日毎に交換してもよい。或いは、細胞播種後に、培養容器中に液体培地を加え、３７℃、５％ＣＯ2のインキュベーター中に置いたマグネティックスターラー上で液体培地を撹拌して循環させながら、撹拌培養してもよい。３～４日毎に、液体培地を半分量除き、等量の新たな液体培地を加えることで、培地交換を行ってもよい。或いは、細胞播種後に、培養容器中に液体培地を加え、３７℃、５％ＣＯ2のインキュベーター中で振とうさせながら培養してもよい。３～４日毎に、液体培地を半分量除き、等量の新たな液体培地を加えることで、培地交換を行ってもよい。本発明の足場は、水に濡れると透明になるため、培養液中で倒立顕微鏡により足場の内部まで観察することができる。
　上記のように足場に細胞を播種することで播種効率が向上するとともに、高密度の播種を行うことができ、播種後に細胞培養を行うことで高密度培養が可能となる。
　本発明は、１以上の実施形態において、細胞集合体の作製キットであって、上述したゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場、及び内面が親水化処理されていない培養容器を含み、細胞集合体の作製時に、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下する細胞集合体の作製キットを提供する。上述のような細胞集合体の作製キットは、細胞播種キットや細胞培養キットとして用いることもできる。
　本発明の１以上の実施形態において、前記心筋細胞が、幹細胞、又はダイレクトリプログラミングされた体細胞から分化された心筋細胞の場合、足場は心筋細胞の成熟を促進することができ、成熟した心筋細胞および心筋細胞の細胞集合体を得ることができる。本発明の１以上の好ましい実施形態において、心筋細胞が足場（ゼラチン不織布）を構成するゼラチン繊維上に存在する場合、繊維の直径方向よりも、繊維の長さ方向に細胞が伸展できる領域が広く存在するため、ゼラチン繊維に付着した細胞は、繊維の長さ方向に配向し、かつゼラチン不織布は柔軟で変形回復性に優れるため、ゼラチン繊維が心筋細胞とともに収縮・弛緩することで、心筋細胞に力学的な刺激が付与され、心筋細胞の成熟を促進することができる。
　幹細胞、又はダイレクトリプログラミングされた体細胞から分化された心筋細胞の場合、生体の心筋細胞と比べると未成熟で、機能が不十分なことがある。心筋細胞が未成熟な場合、化合物の副作用の検出において、催不整脈予測に関わるイオンチャネルや、心収縮障害に関わるサルコメア構造の発達や、薬剤添加時に収縮力が増強する作用（陽性変力作用）が示されないことがある。
　心筋細胞の成熟を促進する方法としては、心筋細胞の伸張刺激や、電気刺激の付与といった外部刺激を与えることが知られているが、特殊な培養皿を用いる必要がある。本発明の１以上の好ましい実施形態においては、心筋細胞が、幹細胞、又はダイレクトリプログラミングされた体細胞から分化された心筋細胞の場合でも、特殊な培養皿を用いることなく、成熟した心筋細胞の細胞集合体を得ることができる。
　成熟化した心筋細胞の特徴としては、例えば、心筋細胞の構造、収縮性、電気生理、カルシウムハンドリング、及び代謝等の特徴が挙げられる。成熟化した心筋細胞の構造特徴として、サイズが大きくなる、細胞形状が縦長となる、サルコメア構造が配向する、及びサルコメア長が１．８μｍ～２．２μｍであること等が挙げられる。成熟化した心筋細胞の収縮性特徴として、収縮力の増加、α－ＭＨＣ／β－ＭＨＣの向上、Ｔｉｔｉｎ　Ｎ２ＡのＴｉｔｉｎ　Ｎ２Ｂへの変化、β－受容体刺激による収縮力の増加、及びＰｒｏｔｅｉｎ　ｋｉｎａｓｅ　Ａ依存の収縮力増加等が挙げられる。成熟化した心筋細胞の電気生理的特徴として、興奮速度の増加、静止膜電位の低下、及び活動電位持続時間の延長等が挙げられる。成熟化した心筋細胞のカルシウムハンドリング特徴として、筋小胞体のカルシウム貯蔵量の増加、アドレナリン刺激によるカルシウムサイクルの増加、及びＴ管の発達等が挙げられる。成熟化した心筋細胞の代謝特徴として、脂肪酸の利用、及びミトコンドリア数の増加等が挙げられる。前記成熟化した心筋細胞の特徴は、イメージング測定、収縮力測定、収縮速度、薬理評価、遺伝子解析等で確認することができる。
　成熟した心筋細胞に発現する遺伝子としては、電気生理に関わるものとして、例えば、ＳＣＮ５Ａ，ＫＣＮＪ２，ＧＪＡ１，及びＣＮ４等が挙げられ、カルシウムハンドリングに関わるものとして、例えば、ＡＴＰ２Ａ２，ＣＡＣＮＡ１Ｃ，ＲＹＲ２，ＳＬＣ８Ａ１，ＰＬＮ，ＢＩＮ１，及びＪＰＨ２が挙げられ，収縮に関連するものとして、例えば、ＭＹＨ７，ＭＹＨ６，ＭＹＬ２，ＴＮＮＩ３，ＰＬＮ，ＳＥＲＣＡ２Ａ等が挙げられ、代謝に関連するものとして、例えば、ＣＰＴ１Ｂ，ＰＧＣ１Ａ，及びＴＦＡＭ等が挙げられる。
　本発明の１以上の実施形態において、細胞集合体は、細胞移植治療、化合物の安全性評価、化合物の毒性評価、医療機器、疾患モデル、疾患モデルを用いた創薬研究等への好適に利用することができる。
　本発明の１以上の実施形態において、例えば、細胞集合体は化合物の性質を評価する化合物の評価方法に用いることができる。具体的には、細胞集合体に化合物を接触させた後、化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断することで化合物の性質を評価することができる。化合物の性質は、特に限定されないが、例えば、代謝、薬理作用及び毒性作用等であってもよい。より具体的には、上述したように足場に細胞を播種し所定時間培養して細胞集合体を得た後、細胞培養に用いた液体培地に目的の化合物を添加し、化合物添加後に細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを観察評価してもよい。
　前記細胞が心筋細胞の場合、細胞集合体は目的化合物の電気生理学的特性、心収縮等に対する影響、例えば、催不整脈リスク評価、心収縮障害、心毒性評価に用いることができる。本発明の１以上の好ましい実施形態において、心筋細胞が足場の表面及び内部に存在し、かつ足場（具体的には、ゼラチン繊維及びゼラチンフィルムのゼラチン不織布側の表面）に接着している細胞集合体、すなわち心筋細胞が立体的に配置された３次元培養の細胞集合体は、心筋細胞の収縮時に細胞集合体が全体として心筋細胞の動きに追従しやすく、心拍、活動電位、収縮挙動等の心筋細胞の機能性を効果的に評価することができる。具体的には、細胞集合体の活動電位は、細胞内のカルシウムイオンのイメージング、細胞の膜電位のイメージング、微小電極アレイ等により評価することができ、収縮挙動は、足場及び足場を構成する繊維の動きを観察することで評価でき、明視野、カルシウムイオンイメージング、膜電位イメージング等を自由に使用できる。
　以下、実施例を用いてさらに具体的に説明する。なお、本発明は下記の実施例に限定されるものではない。
　測定・評価方法は下記のとおりである。
　＜平均繊維径＞
　膨潤後の足場をマイクロスコープ（横河電機社、CQ1)で観察し、任意に選択した５０本の繊維を用いて、膨潤後の平均繊維径を測定した。
　＜厚み＞
　積層体（足場）の断面を走査型電子顕微鏡（日立ハイテクノロジーズ製ＦｌｅｘＳＥＭ１０００、１００倍及び５００倍）で観察し、得られた走査型電子顕微鏡写真から任意に選択した１０か所のゼラチンフィルム層厚み、ゼラチン不織布の厚み、及び積層体の厚みを計測し、平均値を算出した。
　膨潤後の積層体（足場）の厚みをミツトヨ社製のデジタルノギスで計測した。
　＜目付（単位面積あたりの質量）＞
　ゼラチン不織布の目付はＪＩＳ　Ｌ　１９１３に準じて測定した。
　＜見掛密度＞
　ゼラチン不織布の密度は不織布の厚み及び目付に基づいて算出した。
　＜細孔径＞
　ゼラチン不織布の細孔径は、Ｗｒｏｔｎｏｗｓｋｉの仮定に基づいて、下記計算式１にて算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000002
　（実施例１）
　＜積層体（足場）の作製＞
　ゼラチンとして新田ゼラチン社製（ゼリー強度２６２ｇ、原料：アルカリ処理牛骨）を使用し、ゼラチン：水＝９５：５の質量比（ゼラチン濃度５質量％）とし、温度６０℃で溶解した。このゼラチン水溶液を、ポリテトラフルオロエチレンフィルム（膜厚５０μｍ）上に、ＴＰ技研株式会社製バーコーターＮｏ．２０で塗布し、室温で一晩風乾させることによりゼラチンフィルムを得た。
　次いで、ゼラチンとして新田ゼラチン社製（ゼリー強度２６２ｇ、原料：アルカリ処理牛骨）を使用し、ゼラチン：水＝３：５の質量比（ゼラチン濃度３７．５質量％）とし、温度６０℃で溶解した。６０℃における粘度は９６０～９７０ｍＰａ・ｓであった。このゼラチン水溶液を紡糸液とし、図２３に示す製造装置を使用して、巻き取りロール上に配置されたゼラチンフィルム上にゼラチン繊維を集積して不織布にすることで積層体を製造した。紡糸液の温度は６０℃、ノズル直径（内径）２５０μｍ、吐出圧０．２ＭＰａ、ノズル高さ５ｍｍ、エアー圧力０．３７５ＭＰａ、エアー温度１００℃、流体噴射口とノズル吐出口との距離は５ｍｍ、捕集距離５０ｃｍとした。積層体は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度１４０℃、４８時間とした。
　得られた積層体を直径６ｍｍの円柱に打ち抜き、足場を作製した。
　＜細胞集合体の作製＞
（１）上記で得られた積層体（足場）をエチレンオキサイドガス滅菌後に、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）中に１０分間静置して膨潤させた。膨潤後の積層体の直径は８ｍｍであった。
（２）膨潤後の積層体から過剰の液体をピペットで除去した後、端部をピンセットで把持してゼラチンフィルムがウェルの内底面に接するようにＩＷＡＫＩ浮遊培養用マイクロプレート（表面処理なし）６Ｗｅｌｌの一つのウェル中に設置した。
（３）ヒト胎児腎細胞ＨＥＫ２９３細胞を液体培地中（Dulbecco's Modified Eagle's Medium、シグマ社（１０％胎児牛血清、１％ペニシリンストレプトマイシン添加））に２×１０7ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を積層体のゼラチン不織布の表面上に２０μＬ滴下した。温度３７℃、５％ＣＯ2のインキュベーター中で３時間静置培養して細胞を積層体に接着させた。足場単位面積当たりの細胞の播種量は６２５０細胞／ｍｍ2である。
（４）上記の液体培地３ｍＬを加え、温度３７℃、５％ＣＯ2のインキュベーター中で７２時間静置培養した。
　（実施例２）
　＜積層体（足場）の作製＞
　ノズル直径（内径）１５０μｍ、ノズル吐出圧０．２７５ＭＰａ、ノズル高さ５ｍｍ、エアー圧力０．３７５ＭＰａ、エアー温度１００℃、流体噴射口とノズル吐出口との距離は５ｍｍ、捕集距離５０ｃｍとした以外は、実施例１と同様にして積層体を作製した。
　得られた積層体を直径６ｍｍの円柱に打ち抜き、足場として用いた。
　＜細胞集合体の作製＞
　上記で得られた積層体（足場）を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞集合体を作製した。膨潤後の積層体の直径は８ｍｍであった。
　（実施例３）
　＜積層体（足場）の作製＞
　実施例１と同様にして得られた積層体を直径６ｍｍの円柱に打ち抜き、足場として用いた。膨潤後の積層体の直径は８ｍｍであった。
　該足場をフィブロネクチン溶液（１ｍｇ／ｍｌ、シグマ社）をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）に対し１／１００（体積比）になるよう添加したフィブロネクチン含有リン酸緩衝液中に、２時間浸漬した後、フィブロネクチン溶液を吸引除去した。
　＜細胞集合体の作製＞
　フィブロネクチンで処理した足場と、iPS細胞由来心筋細胞（iCell（登録商標）cardiomyocytes2、富士フイルム和光純薬社製)を液体培地中（iCell（登録商標）心筋細胞解凍培地、富士フイルム和光純薬社）に１×１０7ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用い、４時間培養後に液体培地（iCell（登録商標）心筋細胞維持培地、富士フイルム和光純薬社）を添加した以外は、実施例１と同様にして細胞集合体を作製した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は３１２５細胞／ｍｍ2である。
　（実施例４）
　＜積層体（足場）の作製＞
　実施例２と同様にして得られた積層体を直径６ｍｍの円柱に打ち抜き、足場として用いた。膨潤後の積層体の直径は８ｍｍであった。
　該足場をフィブロネクチン溶液（１ｍｇ／ｍＬ、シグマ社）をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）に対し１／１００（体積比）になるよう添加したフィブロネクチン含有リン酸緩衝液中に、２時間浸漬した後、フィブロネクチン含有液体培地を吸引除去した。
　＜細胞集合体の作製＞
　フィブロネクチンで処理した足場と、iPS細胞由来心筋細胞（iCell（登録商標） cardiomyocytes2、富士フイルム和光純薬社製)を液体培地中（iCell（登録商標）心筋細胞解凍培地、富士フイルム和光純薬社製）に１×１０7ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用い、４時間培養後に液体培地（iCell（登録商標）心筋細胞維持培地、富士フイルム和光純薬社製）を添加した以外は、実施例２と同様にして細胞集合体を作製した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は３１２５細胞／ｍｍ2である。
　（比較例１）
　培養容器として、ＩＷＡＫＩ組織培養用マイクロプレート（付着性細胞用）６Ｗｅｌｌを用いた以外は、実施例１と同様にして細胞播種及び細胞培養を行った。
　（比較例２）
　培養容器として、ＩＷＡＫＩ組織培養用マイクロプレート（付着性細胞用）６Ｗｅｌｌを用いた以外は、実施例３と同様にして細胞播種及び細胞培養を行った。
　実施例で用いた足場の各種測定・評価結果を下記表１に示した。図１及び２に実施例１及び２で用いた足場の断面写真をそれぞれ示した。図１及び２から分かるように、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、繊維交点が少なくとも部分的に溶着しており、かつ前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着していた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　実施例１～２及び比較例１において、細胞を播種した直後（以下、「播種後」とも記す。）、その後３時間培養し、液体培地を添加した後（以下、「３時間培養後」とも記す。）、７２時間培養後の足場を下記のように観察した。その結果を図３～５、図９、及び表２に示した。実施例３～４及び比較例２において、細胞を播種した直後（以下、「播種後」とも記す。）、その後４時間培養し、液体培地を添加した後（以下、「４時間培養後」とも記す。）、７２時間培養後の足場を下記のように観察した。その結果を図６～８、図１０、及び表３に示した。
（１）細胞の脱落有無
　播種後及び３時間培養後（実施例１～２）又は４時間培養後（実施例３～４）の足場の端部を、光学顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ社製、Ａｘｉｏ　Ｖｅｒｔ．Ａ１）にて４倍で観察した。
（２）生細胞の蛍光観察
　核染色蛍光試薬であるビスベンズイミドＨ３３３４２フルオロクロム三塩酸塩のＤＭＳＯ溶液（１ｍｇ／ｍＬ、ナカライテスク社）を液体培地に対して、１／１００体積濃度（ｖ／ｖ）で添加し、３７℃、５％ＣＯ2の条件下で３０分間培養した後、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）で洗浄し、再度液体培地を添加した。
　その後、横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、生細胞を蛍光観察した。足場材の表裏それぞれを観察するため、足場材の端部をピンセットで把持して、反転して観察した。観察像は、厚さ方向に対して１０μｍ間隔で行い、５０枚を最大値投影法（ＭＩＰ）により、重ね合わせた。足場の全体像は、４倍の観察像を連結した。拡大像は２０倍の観察像である。画像において、白く見える部分が細胞核である。
（３）生細胞数及び生細胞割合の算出
　播種１日後の足場をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）で洗浄した後、該足場を１５ｍＬ遠心チューブに移し、２．５ｇ／Ｌ　トリプシン／１ｍｍｏｌ／Ｌ　ＥＤＴＡ溶液（ナカライテスク社）を１ｍＬ滴下した。３７℃、５％ＣＯ2下で２５分間培養し、該足場が溶解していることを目視で確認した後、０．５％トリパンブルー染色液(ナカライテスク社)で死細胞を染色し、全自動セルカウンター（ＴＣ２０TM、バイオ・ラッドラボラトリーズ社）で生細胞数及び生細胞割合を算出した。
（４）足場内の細胞分布
　７２時間培養した足場を核染色蛍光試薬であるビスベンズイミドＨ３３３４２フルオロクロム三塩酸塩のＤＭＳＯ溶液（１ｍｇ／ｍＬ、ナカライテスク社）を液体培地に対して、１／１００体積濃度（ｖ／ｖ）で添加し、３７℃、５％ＣＯ2の条件下で３０分間培養した後、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（D-PBS(-)（1x）、ナカライテスク社）で洗浄し、再度液体培地を添加した。
　その後、横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、生細胞を蛍光観察した。足場材の表裏それぞれを観察するため、足場材の端部をピンセットで把持して、反転して観察した。観察は、厚さ方向に対して１０μｍ間隔で行い、ゼラチン不織布側及びゼラチンフィルム側から、それぞれ、厚さが０μｍ（表面）、１００μｍ、２００μｍの箇所を観察することで、細胞の深さ方向への分布を調べた。
　図３は実施例１において、足場端部を光学顕微鏡で観察した（４倍）結果であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。
　図４は足場中の生細胞（ＨＥＫ２９３細胞）を蛍光観察した足場の全体像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。図４の（ａ）、（ｃ）及び（ｅ）において、スケールバーは１０００μｍを示し、図４の（ｂ）、（ｄ）及び（ｆ）において、スケールバーは１００μｍを示す。
　図５は実施例２において足場中の生細胞（ＨＥＫ２９３細胞）を蛍光観察した足場の全体像であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。図５の（ａ）、（ｃ）及び（ｅ）において、スケールバーは１０００μｍを示し、図５の（ｂ）、（ｄ）及び（ｆ）において、スケールバーは１００μｍを示す。
　図６は実施例３において足場の端部を光学顕微鏡で観察した（４倍）結果であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。
　図７は実施例３において足場中の生細胞（心筋細胞）を蛍光観察した結果であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。図７の（ａ）、（ｃ）及び（ｅ）において、スケールバーは１０００μｍを示し、図７の（ｂ）、（ｄ）及び（ｆ）において、スケールバーは１００μｍを示す。
　図８は実施例４において足場中の生細胞（心筋細胞）を蛍光観察した結果であり、（ａ）は細胞播種後の足場の全体像であり、（ｂ）は同中心部の拡大像であり、（ｃ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｄ）は同中心部の拡大像であり、（ｅ）は７２時間培養した後の足場（細胞集合体）の全体像であり、（ｆ）は同中心部の拡大像である。図８の（ａ）、（ｃ）及び（ｅ）において、スケールバーは１０００μｍを示し、図８の（ｂ）、（ｄ）及び（ｆ）において、スケールバーは１００μｍを示す。
　図３～８から分かるように、実施例１～４においては、細胞播種後、３時間（実施例１～２）又は４時間（実施例３～４）培養後に液体培地を添加した段階、及び７２時間培養のいずれの段階においても、足場からの細胞脱落がほぼなく、播種効率が高く、培養初期から高密度で培養することが可能であった。
　図９は比較例１において足場端部の細胞の脱落の有無を光学顕微鏡で観察した（４倍）結果であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は３時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。図９から明らかなように、比較例１では、細胞播種直後から足場から多くの細胞が脱落しており、播種効率が低かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　表２のデータから分かるように、比較例１では播種効率が６２．５％であるのに対し、実施例１～２では播種効率が９７．８％以上であり、播種効率が格段に向上していた。
　図１０は比較例２において足場端部の細胞の脱落の有無を光学顕微鏡で観察した（４倍）結果であり、（ａ）は細胞播種後の結果であり、（ｂ）は４時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。図１０から明らかなように、比較例２では、細胞播種後から足場から多くの細胞が脱落しており、播種効率が低かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　表３のデータから分かるように、比較例２では播種効率が１０．５％であるのに対し、実施例３では播種効率が３１．７％、実施例４では４７．８％であり、播種効率が格段に向上していた。ｉＰＳ由来心筋細胞は、細胞の定着率が低く、細胞接着性培養皿上で培養した場合においても、定着率が４０～５０％程度であり、該ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムで構成された足場での播種効率は優れたものである。
　図１１は実施例１において７２時間培養した後の足場における生細胞の分布を観察した結果であり、（ａ）はゼラチン不織布側の表面を観察した結果であり、（ｂ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｃ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｄ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｅ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｆ）はゼラチンフィルム側の表面を観察した結果である。図１１において、スケールバーは５００μｍを示す。
　図１２は実施例２において７２時間培養した後の足場における生細胞の分布を観察した写真であり、（ａ）はゼラチン不織布側の表面を観察した結果であり、（ｂ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｃ）はゼラチン不織布表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｄ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に２００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｅ）はゼラチンフィルム表面から厚さ方向に１００μｍ離れた箇所の結果であり、（ｆ）はゼラチンフィルム側の表面を観察した結果である。図１２において、スケールバーは５００μｍを示す。
　図１１及び１２から分かるように、実施例において、細胞は足場内部にも侵入しており３次元培養可能であった。ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維の平均繊維径が大きい（ゼラチン不織布の細孔径が大きい）実施例１の場合、ゼラチン不織布側には細胞が少なく、厚み方向に沿ってゼラチンフィルム側に行くほど細胞が多くなっていた。これに対し、ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維の平均繊維径が小さい（ゼラチン不織布の細孔径が小さい）実施例２の場合、ゼラチン不織布側には細胞がゼラチンフィルム側の細胞より多かった。
　（実施例５）
　＜iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価１＞
　（１）心筋細胞の同期拍動の評価
　実施例４と同様にして細胞播種を行い、４時間後に液体培地と添加して細胞培養を行った。培養４日目に、カルシウム指示薬（ＥａｒｌｙＴｏｘ　Ｃａｒｄｉｏｔｏｘｉｃｉｔｙ　Ｋｉｔ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｄｅｖｉｃｅ社）を培地に対して５／１００(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
　横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、２０ＦＰＳで動画撮影した。得られた動画から、横河電機社製画像解析装置ＣｅｌｌＰａｔｈｆｉｎｄｅｒを用い、呈色領域を認識させ、時間に対する蛍光強度をプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
　図１３は、培養４日目にカルシウム指示薬を添加した後の細胞集合体の細胞内のカルシウムイオンのイメージング評価結果であり、（ａ）は明視野画像であり、（ｂ）はカルシウム指示薬を添加してから１２０分後に細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｃ）は、（ｂ）の時点から０．７秒後に細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｄ）は、測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットした図である。なお、測定点Ａと測定点Ｂ間の距離は３１４５μｍである。
　図１３の（ｂ）～（ｄ）から分かるように、ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムで構成された足場上で培養した心筋細胞は、３ｍｍ以上離れた広範囲の領域においても、同タイミングで細胞内カルシウムイオン濃度が変化しており、同期して拍動していることが明らかである。
　（２）イソプロテレノールに対する応答性の評価
　上記と同様、カルシウム指示薬を培地に対して５／１００(質量比)添加し、２時間培養後、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色観察した。観察後、心筋の拍動を早める化合物として、徐脈、房室ブロック、気管支喘息の治療に用いられるベータ刺激薬であるイソプロテレノールを１００ｎＭになるように液体培地に添加し、５分後に、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色観察した。
　図１４は、実施例５において、培養４日目において、イソプロテレノールに対する応答性を示す結果である。イソプロテレノール１００ｎＭ添加により、細胞内のカルシウムイオン濃度変化が早くなり、拍動数が添加前では６０ｂｐｍであるのに対し、添加後では７６ｂｐｍであり、拍動数が変化していた。
　以上から分かるように、細胞集合体に目的化合物を接触させる前と、細胞集合体に目的化合物と接触した後の心筋細胞の拍動数及び／又は時間に伴う蛍光強度のピーク形状を比較することで、該化合物が心筋細胞に与える効果を判断することが可能である。
　（実施例６）
　＜iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価２＞
　（１）心筋細胞の同期拍動の評価
　細胞数を２×１０7ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用いた以外は、実施例４と同様にして細胞播種を行い、４時間後に液体培地と添加して細胞培養を行った。培養４日目以降に、カルシウム指示薬（ＥａｒｌｙＴｏｘ　Ｃａｒｄｉｏｔｏｘｉｃｉｔｙ　Ｋｉｔ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｄｅｖｉｃｅ社）を培地に対して５／１００(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は６２５０細胞／ｍｍ2である。
　横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、２０ＦＰＳで動画撮影した。得られた動画から、横河電機社製画像解析装置ＣｅｌｌＰａｔｈｆｉｎｄｅｒを用い、呈色領域を認識させ、時間に対する蛍光強度をプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
　図１５は、培養４日目におけるカルシウム指示薬を添加した後の細胞集合体の細胞内のカルシウムイオンのイメージング評価結果であり、（ａ）は明視野画像であり、（ｂ）はカルシウム指示薬を添加してから１２０分後に細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｃ）は、（ｂ）の時点から０．７秒後に細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｄ）は、測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットした図である。なお、測定点Ａと測定点Ｂ間の距離は２４６５μｍである。
　図１５の（ｂ）～（ｄ）から分かるように、細胞集合体、すなわちゼラチン不織布及びゼラチンフィルムで構成された足場上で培養した心筋細胞は、２ｍｍ以上離れた広範囲の領域においても、同タイミングで細胞内カルシウムイオン濃度が変化しており、同期して拍動していることが明らかである。
　（２）不整脈を誘発する化合物に対する応答性の評価
　上記と同様、カルシウム指示薬を培地に対して５／１００（体積比）添加し、２時間培養後、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した。その後、不整脈を誘発する化合物として、遅延整流性カリウム電流（Ｉｋｒ）の阻害剤であるＥ-４０３１（富士フイルム和光純薬社）を９００ｎＭになるように液体培地に添加し、添加から１２０分後に蛍光観察した。
　図１６は、培養４日目において、Ｅ-４０３１による応答性を示す結果であり、（ａ）はＥ-４０３１を添加してから１２０分後の細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｂ）は（ａ）の時点から０．４秒後に細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した画像であり、（ｃ）は測定点Ａと測定点Ｂの蛍光強度を時間に対してプロットした図である。
　図１６（ａ）～（ｃ）から分かるように、細胞集合体、すなわちゼラチン不織布及びゼラチンフィルムで構成された足場上で培養した心筋細胞にＥ-４０３１を添加すると、部位により、別々のタイミングで細胞内のカルシウムイオン濃度が変化し、同期拍動が抑制されていた。図１６（ｃ）より、測定点Ｂでは、測定点Ａとは拍動挙動が大きく変化し、不整脈が確認された。
　（実施例７）
　＜iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価３＞
　（１）心筋細胞集合体の作製
　足場単位面積当たりの播種量が６０００細胞／ｍｍ2になるように細胞を播種した以外は、実施例６と同様にして細胞播種及び培養を行った。
　（２）心筋細胞集合体の構造観察
　培養3日目及び7日目に心筋細胞を含む足場（心筋細胞集合体）を回収し、１６％パラホルムアルデヒドで固定後、蛍光染色を行った。細胞核をビスベンズイミドＨ３３３４２フルオロクロム三塩酸塩のＤＭＳＯ溶液（１ｍｇ／ｍＬ、ナカライテスク社）を用いて染色し、アクチンフィラメントをAlexa FluorTM 568 phalloidin（Invitrogen社）を用いて染色し、α―アクチニンを1次抗体としてAnti-α-Actinin (Sarcomeric) antibody（Sigma社）を用いて免疫染色し、構造観察を行った。
　（３）心筋細胞集合体のカルシウムイメージングによる化合物の応答性評価
　培養6日目に、細胞が多く存在する面を培養皿（ＩＷＡＫＩ浮遊培養用マイクロプレート（表面処理なし）６Ｗｅｌｌ）底面に面するように心筋細胞集合体を設置後、1日静置した。培養7日目に、カルシウム指示薬（ＥａｒｌｙＴｏｘ　Ｃａｒｄｉｏｔｏｘｉｃｉｔｙ　Ｋｉｔ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｄｅｖｉｃｅ社）を培地に対して２５／１００(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
　下記表４に示す化合物をそれぞれ目的の濃度まで累積投与し、カルシウムイオンの濃度変化から、化合物応答性を観察した。各濃度で化合物投与10分後に、横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、２０ｆｐｓで蛍光タイムラプス像を撮影した。得られた画像から、横河電機社製画像解析装置ＣｅｌｌＰａｔｈｆｉｎｄｅｒを用い、１０倍の視野全体の蛍光強度を、時間に対してプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。ベラパミルは、ＩＫｒ阻害作用を有するＣａチャネル拮抗剤である。
　（４）心筋細胞集合体の収縮力の評価
　上記のカルシウムイオン指示薬により、下記表４の化合物の応答性を観察した各標本において、横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、２０fpsで、明視野像を撮影した。得られた画像をImageJのプラグインツール　MUSCLEMOTION（Sala et al, Circu. Res., 2018）を用いて、心筋細胞集合体の収縮力と収縮弛緩速度を評価した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　図１７は、実施例７における心筋細胞集合体の蛍光染色結果である。（a）は培養３日目の細胞核及びアクチンフィラメント染色像であり、（ｂ）は培養３日目のα―アクチニン免疫染色像であり、（ｃ）は（ｂ）の部分拡大像である。（ｄ）は培養７日目の細胞核及びアクチンフィラメント染色像であり、（ｅ）は培養７日目のα―アクチニン免疫染色像であり、（ｆ）は（ｅ）の部分拡大像である。図１７において、スケールバーは５０μｍを示す。
　図１７（ａ）のphalloidin染色の結果から分かるように、心筋細胞集合体では、培養３日目の短期間の培養日時で、足場を構成するゼラチン繊維を覆うようにアクチンフィラメントが存在し、広範囲に連結していた。図１７（ｂ）及び（ｃ）のα―アクチニン免疫染色結果から分かるように、ゼラチン繊維の長さ方向に沿って、心筋細胞を構成するサルコメア構造（縞模様）が発現しており、配向していた。また、培養７日目には、同サルコメア構造がより太く発達し、ゼラチン繊維の長さ方向への配向がさらに明瞭になった。心筋細胞のサルコメア構造は、成熟した心筋細胞では１方向に配向することが知られており、心筋細胞集合体は、iPS細胞由来心筋細胞を早期に配向させ、構造的に成熟した心筋細胞を得ることができる。また同サルコメア構造内のサルコメア長は約２μｍであり、成熟化した心筋のサルコメア長と同程度であることから、心筋細胞が成熟していることが分かる。
　図１８は、実施例７において、各化合物に対する応答性を示すグラフである。（ａ）はイソプロテレノールを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｂ）は各濃度のイソプロテレノールにおける拍動数である。（ｃ）はＥ-４０３１を投与する前及び１０００ｎＭを投与した後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｄ）は各濃度のＥ-４０３１における拍動数である。（ｅ）はベラパミルを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後のカルシウムイオンのシグナル波形であり、（ｆ）は各濃度のベラパミルにおける拍動数である。
　図１８から分かるように、心筋細胞集合体は、異なる作用を有する化合物に対して異なる応答性を示した。イソプロテレノールを投与した場合、投与する前に比べて、カルシウムイオンのシグナル波形がシャープになり（ａ）、心拍数も早くなった（ｂ）。E-4031を投与した場合は、投与する前に比べて、カルシウムイオンのシグナル波形が伸びており（ｃ）、心拍数が低下し、１００ｎＭ以上で不整脈が生じた（ｄ）。ベラパミルを投与した場合は、投与する前に比べて、カルシウムイオンのシグナル波形が小さくなり（ｅ）、また心拍数が増加した（ｆ）。
　図１９は、実施例７において、各化合物に対する応答性を示すグラフである。（ａ）はイソプロテレノールを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮力を示し、（ｂ）はイソプロテレノールを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮弛緩速度を示す。（ｃ）はＥ-４０３１を投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮力を示し、（ｄ）はＥ-４０３１を投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮弛緩速度を示す。（ｅ）はベラパミルを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮力を示し、（ｆ）はベラパミルを投与する前及び１０００ｎＭを投与した後の収縮弛緩速度を示す。
　図１９から分かるように、心筋細胞集合体は、異なる作用を有する化合物に対して異なる収縮力変化及び収縮弛緩速度の変化を示し、化合物に対する応答性を容易に評価することができた。イソプロテレノールを投与した場合、投与する前に比べて、収縮力が増加し（ａ）、収縮弛緩速度も増加した（ｂ）。E-4031を投与した場合、投与する前に比べて、収縮力が低下し（ｃ）、収縮弛緩速度も低下した（ｄ）。ベラパミルを投与した場合、投与する前に比べて、収縮力が低下し（ｅ）、収縮弛緩速度も低下した（ｆ）。β受容体刺激薬であるイソプロテレノールの添加により、収縮力が増加する（陽性変力作用が認められる）ことから、該心筋細胞集合体内の心筋細胞が成熟化していることが分かる。
　（実施例８）
　＜iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価４＞
　（１）心筋細胞集合体の作製
　足場の面積当たりの播種量が８０００細胞／ｍｍ2になるように細胞を播種した以外は、実施例７と同様にして細胞播種、培養を行った。
　（２）心筋細胞集合体のカルシウムイメージングによる化合物の応答性評価
　カルシウム指示薬の添加前日に、細胞が多く存在する面を培養皿底面に面するように心筋細胞集合体を設置し、培養６－１０日目にカルシウム指示薬を添加した以外は、実施例７と同様に心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
　下記表５に示す化合物（COVID-19の治療薬として使用されている。）を目的の濃度まで累積投与し、実施例７と同様に心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
　（３）心筋細胞集合体の収縮力の評価
　上記のカルシウムイオン指示薬により、下記表５の化合物の応答性を観察した各標本において、実施例７と同様に心筋集合体の収縮力を評価した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　図２０は、実施例８において、各化合物に対する応答性（カルシムイオンのシグナル波形）を示すグラフである。（ａ）はアジスロマイシン、（ｂ）はクロロキン、（ｃ）はヒドロキシクロロキン、（ｄ）はアジスロマイシン(３μＭ)とクロロキンの併用、（ｅ）はアジスロマイシン(３μＭ)とヒドロキシクロロキンの併用の場合の結果を示す。
　実施例８において、上記表５の記載の化合物を用いた場合、不整脈のカルシウムイオンシグナル波形が示された標本の確率を下記表６に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　図２０及び表６から、クロロキンとヒドロキシクロロキンは、不整脈のリスクが高く、一方でアジスロマイシンと、クロロキン又はヒドロキシクロロキンを併用すると不整脈のリスクが低減することが分かる。
　図２１は、実施例８において、各化合物を用いた場合の応答性（収縮力）を示すグラフである。（a）はアジスロマイシン、（ｂ）はクロロキン、（ｃ）はヒドロキシクロロキン、（ｄ）はアジスロマイシン(３μＭ)とクロロキンの併用、（ｅ）はアジスロマイシン（３μＭ）とヒドロキシクロロキン併用の結果を示す。
　実施例８において、上記表５の記載の化合物の各濃度における、化合物投与前から収縮力が半減した標本の確率を下記表７に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　図２１及び表７から、アジスロマイシンと、クロロキン又はヒドロキシクロロキンを併用すると、クロロキン、ヒドロキシクロロキン単独よりも低濃度で収縮力が低下し、心収縮障害が生じるリスクが高くなることが分かる。
　（実施例９）
　＜iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価５＞
　（１）心筋細胞集合体の作製
　iPS細胞由来心筋細胞としてＮｃａｒｄｉａ社製のＰｌｕｒｉｃｙｔｅ（登録商標）を用い、足場の単位面積あたりの播種量が６０００細胞／ｍｍ2になるように細胞を播種した以外は、実施例３と同様にして細胞播種及び培養を行った。
　（２）心筋細胞集合体の膜電位インジケーターによる化合物の応答性評価
　培養７日目に、細胞が多く存在する面を培養皿（ＩＷＡＫＩ浮遊培養用マイクロプレート（表面処理なし）６Ｗｅｌｌ）底面に面するように心筋細胞集合体を設置後、1日静置した。培養８日目に、膜電位インジケーター（ＦｌｕｏＶｏｌｔ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を培地に加え、３７℃で３０分間インキュベートし、心筋細胞内の膜電位を蛍光染色により測定した。
　Ｅ-４０３１を、０，１，１０，１００，１０００ｎＭとなるよう培養液に累積投与し、膜電位の変化から、応答性を観察した。各濃度で化合物投与１０分後に、横河電機社製共焦点イメージング装置（ＣＱ１）を用い、２０ｆｐｓで蛍光タイムラプス像を撮影した。得られた画像から、横河電機社製画像解析装置ＣｅｌｌＰａｔｈｆｉｎｄｅｒを用い、ｘ１０の視野全体の蛍光強度を、時間に対してプロットすることで、心筋細胞における膜電位のシグナル波形を得た。
　図２２に、実施例９における膜電位インジケーターによって観察した化合物応答性の結果を示した。図２２から明らかなとおり、膜電位インジケーターによる膜電位の変化においても、Ｅ-４０３１の添加により、不整脈の波形が生じており、不整脈を評価可能であった。
　以上から分かるように、細胞集合体に目的化合物を接触させる前と、細胞集合体に目的化合物と接触した後の心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形、収縮力、膜電位のシグナル波形等を比較することで、該化合物が心筋細胞に与える影響、例えば心毒性を有するか否かを判断することが可能であることが分かる。
　上記から分かるように、本発明の１以上の実施形態において、細胞集合体は、化合物の代謝、薬理作用、毒性作用の等の各種性質の評価方法に用いることができる。
　本発明は、特に限定されないが、好ましくは以下の態様を含む。
［１］　細胞及び足場を含む細胞集合体であって、
　前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、
　前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体。
［２］　前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、膨潤後の平均繊維径が２μｍ以上４００μｍ以下であり、繊維交点が少なくとも部分的に溶着しており、かつ前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着している、［１］に記載の細胞集合体。
［３］　前記ゼラチン不織布は、厚みが０．１ｍｍ以上２．０ｍｍ以下であり、目付が１０ｇ／ｍ2以上６００ｇ／ｍ2以下である、［１］又は［２］に記載の細胞集合体。
［４］　前記ゼラチンフィルムは、厚みが０．８０μｍ以上３．２０μｍ以下である、［１］～［３］のいずれかに記載の細胞集合体。
［５］　前記ゼラチン不織布の厚みＴｎと前記ゼラチンフィルムの厚みＴｆとの比Ｔｆ／Ｔｎが７．５×１０-3以下である、［１］～［４］のいずれかに記載の細胞集合体。
［６］　前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムは、熱脱水架橋されている、［１］～［５］のいずれかに記載の細胞集合体。
［７］　前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の両方に存在する、［１］～［６］のいずれかに記載の細胞集合体。
［８］　前記細胞は、幹細胞、がん細胞、幹細胞由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞、並びに生体由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞からなる群から選ばれる１種以上である、［１］～［７］のいずれかに記載の細胞集合体。
［９］　前記細胞は、成熟した心筋細胞を含み、前記成熟した心筋細胞は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞が成熟したものである、［１］～［８］のいずれかに記載の細胞集合体。
［１０］　［１］～［９］のいずれかに記載の細胞集合体の製造方法であって、
　ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、内面が親水化処理されていない培養容器を準備する工程、
　内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置する工程、及び
　足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養する工程を含むことを特徴とする細胞集合体の製造方法。
［１１］　足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して所定時間静置した後、液体培地を添加して細胞培養を行う、［１０］に記載の細胞集合体の製造方法。
［１２］　前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、所定時間細胞培養することで心筋細胞を成熟させる、［１０］又は［１１］に記載の細胞集合体の製造方法。
［１３］　［１］～［９］のいずれかに記載の細胞集合体の作製キットであって、
　ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場、及び内面が親水化処理されていない培養容器を含み、
　細胞集合体の作製時に、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下する細胞集合体の作製キット。
［１４］　前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、成熟した心筋細胞の作製に用いる、［１３］に記載の細胞集合体の作製キット。
［１５］　化合物の性質を評価する化合物の評価方法であって、
　［１］～［９］の何れかに記載の細胞集合体に化合物を接触させる工程と、
　化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断する工程を含む、化合物の評価方法。
［１６］　前記化合物の性質は、代謝、薬理作用及び毒性作用からなる群から選ばれる一つ以上である、［１５］に記載の化合物の評価方法。
［１７］　前記細胞集合体は、心筋細胞を含み、
　前記判断工程は、細胞内のカルシウムイオンのイメージング、細胞内の膜電位のイメージング及び細胞集合体の収縮力評価からなる群から選ばれる一つ以上にて行う、［１５］又は［１６］に記載の化合物の評価方法。
１　加温槽
２　紡糸液
３　ノズル吐出口
４、６　コンプレッサー
５　流体噴射口
７　圧力流体
８　ゼラチン繊維
９　ゼラチン不織布
１０　ゼラチンフィルム
１１　巻き取りロール
１２　保温容器
２０　製造装置

Claims (17)

  1. 　細胞及び足場を含む細胞集合体であって、
    　前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、
    　前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体。
  2. 　前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、膨潤後の平均繊維径が２μｍ以上４００μｍ以下であり、繊維交点が少なくとも部分的に溶着しており、かつ前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着している請求項１に記載の細胞集合体。
  3. 　前記ゼラチン不織布は、厚みが０．１ｍｍ以上２．０ｍｍ以下であり、目付が１０ｇ／ｍ2以上６００ｇ／ｍ2以下である請求項１又は２に記載の細胞集合体。
  4. 　前記ゼラチンフィルムは、厚みが０．８０μｍ以上３．２０μｍ以下である請求項１～３のいずれかに記載の細胞集合体。
  5. 　前記ゼラチン不織布の厚みＴｎと前記ゼラチンフィルムの厚みＴｆとの比Ｔｆ／Ｔｎが７．５×１０-3以下である請求項１～４のいずれかに記載の細胞集合体。
  6. 　前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムは、熱脱水架橋されている請求項１～５のいずれかに記載の細胞集合体。
  7. 　前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の両方に存在する請求項１～６のいずれかに記載の細胞集合体。
  8. 　前記細胞は、幹細胞、がん細胞、幹細胞由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞、並びに生体由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞からなる群から選ばれる１種以上である請求項１～７のいずれかに記載の細胞集合体。
  9. 　前記細胞は、成熟した心筋細胞を含み、前記成熟した心筋細胞は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞が成熟したものである請求項１～８のいずれかに記載の細胞集合体。
  10. 　請求項１～９のいずれかに記載の細胞集合体の製造方法であって、
    　ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、内面が親水化処理されていない培養容器を準備する工程、
    　内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置する工程、及び
    　足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養する工程を含むことを特徴とする細胞集合体の製造方法。
  11. 　足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して所定時間静置した後、液体培地を添加して細胞培養を行う請求項１０に記載の細胞集合体の製造方法。
  12. 　前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、所定時間細胞培養することで心筋細胞を成熟させる請求項１０又は１１に記載の細胞集合体の製造方法。
  13. 　請求項１～９のいずれかに記載の細胞集合体の作製キットであって、
    　ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場、及び内面が親水化処理されていない培養容器を含み、
    　細胞集合体の作製時に、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下する細胞集合体の作製キット。
  14. 　前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、成熟した心筋細胞の作製に用いる請求項１３に記載の細胞集合体の作製キット。
  15. 　化合物の性質を評価する化合物の評価方法であって、
    　請求項１～９の何れかに記載の細胞集合体に化合物を接触させる工程と、
    　化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断する工程を含む、化合物の評価方法。
  16. 　前記化合物の性質は、代謝、薬理作用及び毒性作用からなる群から選ばれる一つ以上である請求項１５に記載の化合物の評価方法。
  17. 　前記細胞集合体は、心筋細胞を含み、
    　前記判断工程は、細胞内のカルシウムイオンのイメージング、細胞内の膜電位のイメージング及び細胞集合体の収縮力評価からなる群から選ばれる一つ以上にて行う請求項１５又は１６に記載の化合物の評価方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023223946A1 (ja) * 2022-05-17 2023-11-23 帝人株式会社 ゼラチン繊維束と熱可塑性樹脂繊維束とからなる合糸束を含む繊維シート構造体

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP7267172B2 (ja) * 2019-11-21 2023-05-01 日本毛織株式会社 細胞培養用立体足場、その製造方法、それを用いた細胞播種方法及び細胞培養方法

Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2004148014A (ja) * 2002-10-31 2004-05-27 Nipro Corp 生分解性基材及び組織再生用補綴材並びに培養組織
JP2010284373A (ja) * 2009-06-12 2010-12-24 Kb Seiren Ltd 吸水伸縮性シート
JP2014514942A (ja) * 2011-04-05 2014-06-26 ウニベルジテートスクリニクム フライブルク 再生医療及び組織支持のための生体適合性且つ生分解性の勾配層系
WO2014196549A1 (ja) 2013-06-03 2014-12-11 国立大学法人京都大学 ファイバー・オン・ファイバーを用いた細胞の３次元培養方法及びそのための基材
WO2016068266A1 (ja) * 2014-10-31 2016-05-06 国立大学法人京都大学 生分解性ポリマーを用いた３次元培養方法、及び細胞移植を可能にする培養基材
JP2018007608A (ja) * 2016-07-13 2018-01-18 パナソニックＩｐマネジメント株式会社 培地および繊維集合体の製造方法、ならびに培地の製造装置
JP2018023361A (ja) * 2016-07-29 2018-02-15 パナソニックＩｐマネジメント株式会社 繊維集合体、それを用いた培地、および生物組織もしくは微生物の電位測定装置
WO2018235745A1 (ja) 2017-06-20 2018-12-27 日本毛織株式会社 生体適合長繊維不織布、その製造方法、細胞培養用立体足場及びこれを用いた細胞培養方法
JP2019123955A (ja) * 2018-01-15 2019-07-25 日本バイリーン株式会社 ゼラチン溶液と該ゼラチン溶液からなる紡糸液、および、該紡糸液を用いた繊維集合体の製造方法と該ゼラチン溶液を用いたフィルムならびに複合体の製造方法
JP2019526255A (ja) * 2016-08-26 2019-09-19 ザ ユニバーシティ オブ クィーンズランド 心筋細胞の成熟

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4440881B2 (ja) * 2003-03-18 2010-03-24 裕之 本多 細胞シート移送方法
AU2007222949B2 (en) * 2006-03-06 2011-04-21 Teijin Limited Scaffold material
CA2690610C (en) * 2007-07-31 2023-03-28 Asubio Pharma Co., Ltd. Method of constructing masses of myocardial cells and use of the myocardial cell mass
JPWO2015005349A1 (ja) * 2013-07-09 2017-03-02 国立大学法人 東京大学 細胞培養支持体、細胞培養装置、細胞培養キット、及び細胞シート
JP6452304B2 (ja) * 2014-03-31 2019-01-16 学校法人東京女子医科大学 細胞シート培養基材、細胞シート培養基材複合物、及び細胞シート／培養基材複合の製造方法

Patent Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2004148014A (ja) * 2002-10-31 2004-05-27 Nipro Corp 生分解性基材及び組織再生用補綴材並びに培養組織
JP2010284373A (ja) * 2009-06-12 2010-12-24 Kb Seiren Ltd 吸水伸縮性シート
JP2014514942A (ja) * 2011-04-05 2014-06-26 ウニベルジテートスクリニクム フライブルク 再生医療及び組織支持のための生体適合性且つ生分解性の勾配層系
WO2014196549A1 (ja) 2013-06-03 2014-12-11 国立大学法人京都大学 ファイバー・オン・ファイバーを用いた細胞の３次元培養方法及びそのための基材
WO2016068266A1 (ja) * 2014-10-31 2016-05-06 国立大学法人京都大学 生分解性ポリマーを用いた３次元培養方法、及び細胞移植を可能にする培養基材
JP2018007608A (ja) * 2016-07-13 2018-01-18 パナソニックＩｐマネジメント株式会社 培地および繊維集合体の製造方法、ならびに培地の製造装置
JP2018023361A (ja) * 2016-07-29 2018-02-15 パナソニックＩｐマネジメント株式会社 繊維集合体、それを用いた培地、および生物組織もしくは微生物の電位測定装置
JP2019526255A (ja) * 2016-08-26 2019-09-19 ザ ユニバーシティ オブ クィーンズランド 心筋細胞の成熟
WO2018235745A1 (ja) 2017-06-20 2018-12-27 日本毛織株式会社 生体適合長繊維不織布、その製造方法、細胞培養用立体足場及びこれを用いた細胞培養方法
JP2019123955A (ja) * 2018-01-15 2019-07-25 日本バイリーン株式会社 ゼラチン溶液と該ゼラチン溶液からなる紡糸液、および、該紡糸液を用いた繊維集合体の製造方法と該ゼラチン溶液を用いたフィルムならびに複合体の製造方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SALA ET AL., CIRC. RES., 2018
See also references of EP4063477A4

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023223946A1 (ja) * 2022-05-17 2023-11-23 帝人株式会社 ゼラチン繊維束と熱可塑性樹脂繊維束とからなる合糸束を含む繊維シート構造体

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Publication number Publication date
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EP4063477A1 (en) 2022-09-28
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