JPWO2021100718A1 - 細胞集合体、その製造方法、その作製キット、及びそれを用いた化合物の評価方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明の製造方法によれば、足場からの細胞の脱落を抑制し、高い播種効率で、細胞集合体を作製することができる。
本発明の作製キットを用いることで、足場からの細胞の脱落を抑制し、高い播種効率で、細胞集合体を作製することができる。
本発明は、3次元培養された細胞集合体を用いることで、化合物の性質を効果的に評価することができる。
特に、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、培養容器の内面(内底面及び内側面)が親水化処理されていない(非親水性)培養容器を用い、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下することで、驚くことに、足場に細胞懸濁液が留まり、足場の周囲への細胞流出が抑制され、すなわち足場からの細胞の脱落が抑制され、播種効率が高まることを見出した。これは、ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムの積層体で構成された足場の親水性(濡れ性)が、培養容器の内面の親水性(濡れ性)を上回るため、足場から培養容器側へ細胞懸濁液が流れず、それゆえ、細胞が足場から脱落しないと推測される。また、足場内部及び/又は表面に細胞を留まらせた状態で、所定時間前培養し、細胞接着を促した後、追加の液体培地を添加して、足場を液体培地中に浸漬しても、細胞が足場に留まったまま、足場から脱落しない。
一方、細胞との接着性を高めるために培養容器の内底面等の内面が親水化処理された(親水性)培養容器の場合、足場に細胞懸濁液を滴下すると、足場から周囲へ細胞懸濁液が流出し、足場から細胞が脱落する。
通常、増殖性の細胞では、足場内で高密度化を達成するには、1週間以上の細胞増殖期間を設ける必要があり、また非増殖性の細胞では、播種効率が悪いと、足場内での細胞の高密度化が困難であるが、上述した播種方法であれば、播種効率が高く、高密度播種ができるため、培養初期からも高密度の培養が可能となる。
それゆえ、培養初期から高密度で3次元培養した細胞集合体が得られ、該細胞集合体を用いることで化合物の性質を効果的に評価し得る。
圧縮変形率(%)=100−{(H2/H1)×100}
また、ノズル吐出口3の後方に位置し、ノズル吐出口3とは非接触状態の流体噴射口5から前方に向けて圧力流体7を噴射させる。流体噴射口5にはコンプレッサー6から圧力流体(例えば圧空)が供給される。流体噴射口5とノズル吐出口3との距離は5〜30mmが好ましい。
押し出された紡糸液は圧力流体7に随伴されてゼラチン繊維8となり、巻き取りロール11上に配置されたゼラチンフィルム10上でゼラチン不織布9となって堆積される。この時、堆積された繊維は水分を含んでいたり、完全には固化していないので、繊維交点の少なくとも一部において接している繊維が互いに溶着するとともに、不織布を構成するゼラチン繊維がゼラチンフィルムと溶着してゼラチン不織布とゼラチンフィルムが一体化する。なお、巻き取りロールに変えてネット等の他の捕集手段を用いてもよい。
<平均繊維径>
膨潤後の足場をマイクロスコープ(横河電機社、CQ1)で観察し、任意に選択した50本の繊維を用いて、膨潤後の平均繊維径を測定した。
<厚み>
積層体(足場)の断面を走査型電子顕微鏡(日立ハイテクノロジーズ製FlexSEM1000、100倍及び500倍)で観察し、得られた走査型電子顕微鏡写真から任意に選択した10か所のゼラチンフィルム層厚み、ゼラチン不織布の厚み、及び積層体の厚みを計測し、平均値を算出した。
膨潤後の積層体(足場)の厚みをミツトヨ社製のデジタルノギスで計測した。
<目付(単位面積あたりの質量)>
ゼラチン不織布の目付はJIS L 1913に準じて測定した。
<見掛密度>
ゼラチン不織布の密度は不織布の厚み及び目付に基づいて算出した。
<細孔径>
ゼラチン不織布の細孔径は、Wrotnowskiの仮定に基づいて、下記計算式1にて算出した。
<積層体(足場)の作製>
ゼラチンとして新田ゼラチン社製(ゼリー強度262g、原料:アルカリ処理牛骨)を使用し、ゼラチン:水=95:5の質量比(ゼラチン濃度5質量%)とし、温度60℃で溶解した。このゼラチン水溶液を、ポリテトラフルオロエチレンフィルム(膜厚50μm)上に、TP技研株式会社製バーコーターNo.20で塗布し、室温で一晩風乾させることによりゼラチンフィルムを得た。
次いで、ゼラチンとして新田ゼラチン社製(ゼリー強度262g、原料:アルカリ処理牛骨)を使用し、ゼラチン:水=3:5の質量比(ゼラチン濃度37.5質量%)とし、温度60℃で溶解した。60℃における粘度は960〜970mPa・sであった。このゼラチン水溶液を紡糸液とし、図23に示す製造装置を使用して、巻き取りロール上に配置されたゼラチンフィルム上にゼラチン繊維を集積して不織布にすることで積層体を製造した。紡糸液の温度は60℃、ノズル直径(内径)250μm、吐出圧0.2MPa、ノズル高さ5mm、エアー圧力0.375MPa、エアー温度100℃、流体噴射口とノズル吐出口との距離は5mm、捕集距離50cmとした。積層体は室温で一晩風乾し、次いで加熱脱水架橋させた。架橋条件は温度140℃、48時間とした。
得られた積層体を直径6mmの円柱に打ち抜き、足場を作製した。
<細胞集合体の作製>
(1)上記で得られた積層体(足場)をエチレンオキサイドガス滅菌後に、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)中に10分間静置して膨潤させた。膨潤後の積層体の直径は8mmであった。
(2)膨潤後の積層体から過剰の液体をピペットで除去した後、端部をピンセットで把持してゼラチンフィルムがウェルの内底面に接するようにIWAKI浮遊培養用マイクロプレート(表面処理なし)6Wellの一つのウェル中に設置した。
(3)ヒト胎児腎細胞HEK293細胞を液体培地中(Dulbecco's Modified Eagle's Medium、シグマ社(10%胎児牛血清、1%ペニシリンストレプトマイシン添加))に2×107cells/mLになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を積層体のゼラチン不織布の表面上に20μL滴下した。温度37℃、5%CO2のインキュベーター中で3時間静置培養して細胞を積層体に接着させた。足場単位面積当たりの細胞の播種量は6250細胞/mm2である。
(4)上記の液体培地3mLを加え、温度37℃、5%CO2のインキュベーター中で72時間静置培養した。
<積層体(足場)の作製>
ノズル直径(内径)150μm、ノズル吐出圧0.275MPa、ノズル高さ5mm、エアー圧力0.375MPa、エアー温度100℃、流体噴射口とノズル吐出口との距離は5mm、捕集距離50cmとした以外は、実施例1と同様にして積層体を作製した。
得られた積層体を直径6mmの円柱に打ち抜き、足場として用いた。
<細胞集合体の作製>
上記で得られた積層体(足場)を用いた以外は、実施例1と同様にして細胞集合体を作製した。膨潤後の積層体の直径は8mmであった。
<積層体(足場)の作製>
実施例1と同様にして得られた積層体を直径6mmの円柱に打ち抜き、足場として用いた。膨潤後の積層体の直径は8mmであった。
該足場をフィブロネクチン溶液(1mg/ml、シグマ社)をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)に対し1/100(体積比)になるよう添加したフィブロネクチン含有リン酸緩衝液中に、2時間浸漬した後、フィブロネクチン溶液を吸引除去した。
<細胞集合体の作製>
フィブロネクチンで処理した足場と、iPS細胞由来心筋細胞(iCell(登録商標)cardiomyocytes2、富士フイルム和光純薬社製)を液体培地中(iCell(登録商標)心筋細胞解凍培地、富士フイルム和光純薬社)に1×107cells/mLになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用い、4時間培養後に液体培地(iCell(登録商標)心筋細胞維持培地、富士フイルム和光純薬社)を添加した以外は、実施例1と同様にして細胞集合体を作製した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は3125細胞/mm2である。
<積層体(足場)の作製>
実施例2と同様にして得られた積層体を直径6mmの円柱に打ち抜き、足場として用いた。膨潤後の積層体の直径は8mmであった。
該足場をフィブロネクチン溶液(1mg/mL、シグマ社)をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)に対し1/100(体積比)になるよう添加したフィブロネクチン含有リン酸緩衝液中に、2時間浸漬した後、フィブロネクチン含有液体培地を吸引除去した。
<細胞集合体の作製>
フィブロネクチンで処理した足場と、iPS細胞由来心筋細胞(iCell(登録商標) cardiomyocytes2、富士フイルム和光純薬社製)を液体培地中(iCell(登録商標)心筋細胞解凍培地、富士フイルム和光純薬社製)に1×107cells/mLになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用い、4時間培養後に液体培地(iCell(登録商標)心筋細胞維持培地、富士フイルム和光純薬社製)を添加した以外は、実施例2と同様にして細胞集合体を作製した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は3125細胞/mm2である。
培養容器として、IWAKI組織培養用マイクロプレート(付着性細胞用)6Wellを用いた以外は、実施例1と同様にして細胞播種及び細胞培養を行った。
培養容器として、IWAKI組織培養用マイクロプレート(付着性細胞用)6Wellを用いた以外は、実施例3と同様にして細胞播種及び細胞培養を行った。
播種後及び3時間培養後(実施例1〜2)又は4時間培養後(実施例3〜4)の足場の端部を、光学顕微鏡(Zeiss社製、Axio Vert.A1)にて4倍で観察した。
(2)生細胞の蛍光観察
核染色蛍光試薬であるビスベンズイミドH33342フルオロクロム三塩酸塩のDMSO溶液(1mg/mL、ナカライテスク社)を液体培地に対して、1/100体積濃度(v/v)で添加し、37℃、5%CO2の条件下で30分間培養した後、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)で洗浄し、再度液体培地を添加した。
その後、横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、生細胞を蛍光観察した。足場材の表裏それぞれを観察するため、足場材の端部をピンセットで把持して、反転して観察した。観察像は、厚さ方向に対して10μm間隔で行い、50枚を最大値投影法(MIP)により、重ね合わせた。足場の全体像は、4倍の観察像を連結した。拡大像は20倍の観察像である。画像において、白く見える部分が細胞核である。
(3)生細胞数及び生細胞割合の算出
播種1日後の足場をダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)で洗浄した後、該足場を15mL遠心チューブに移し、2.5g/L トリプシン/1mmol/L EDTA溶液(ナカライテスク社)を1mL滴下した。37℃、5%CO2下で25分間培養し、該足場が溶解していることを目視で確認した後、0.5%トリパンブルー染色液(ナカライテスク社)で死細胞を染色し、全自動セルカウンター(TC20TM、バイオ・ラッドラボラトリーズ社)で生細胞数及び生細胞割合を算出した。
(4)足場内の細胞分布
72時間培養した足場を核染色蛍光試薬であるビスベンズイミドH33342フルオロクロム三塩酸塩のDMSO溶液(1mg/mL、ナカライテスク社)を液体培地に対して、1/100体積濃度(v/v)で添加し、37℃、5%CO2の条件下で30分間培養した後、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS(-)(1x)、ナカライテスク社)で洗浄し、再度液体培地を添加した。
その後、横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、生細胞を蛍光観察した。足場材の表裏それぞれを観察するため、足場材の端部をピンセットで把持して、反転して観察した。観察は、厚さ方向に対して10μm間隔で行い、ゼラチン不織布側及びゼラチンフィルム側から、それぞれ、厚さが0μm(表面)、100μm、200μmの箇所を観察することで、細胞の深さ方向への分布を調べた。
図4は足場中の生細胞(HEK293細胞)を蛍光観察した足場の全体像であり、(a)は細胞播種後の足場の全体像であり、(b)は同中心部の拡大像であり、(c)は3時間培養後に液体培地を添加した際の足場(細胞集合体)の全体像であり、(d)は同中心部の拡大像であり、(e)は72時間培養した後の足場(細胞集合体)の全体像であり、(f)は同中心部の拡大像である。図4の(a)、(c)及び(e)において、スケールバーは1000μmを示し、図4の(b)、(d)及び(f)において、スケールバーは100μmを示す。
図5は実施例2において足場中の生細胞(HEK293細胞)を蛍光観察した足場の全体像であり、(a)は細胞播種後の足場の全体像であり、(b)は同中心部の拡大像であり、(c)は3時間培養後に液体培地を添加した際の足場(細胞集合体)の全体像であり、(d)は同中心部の拡大像であり、(e)は72時間培養した後の足場(細胞集合体)全体像であり、(f)は同中心部の拡大像である。図5の(a)、(c)及び(e)において、スケールバーは1000μmを示し、図5の(b)、(d)及び(f)において、スケールバーは100μmを示す。
図6は実施例3において足場の端部を光学顕微鏡で観察した(4倍)結果であり、(a)は細胞播種後の結果であり、(b)は3時間培養後に液体培地を添加した際の結果である。
図7は実施例3において足場中の生細胞(心筋細胞)を蛍光観察した結果であり、(a)は細胞播種後の足場の全体像であり、(b)は同中心部の拡大像であり、(c)は3時間培養後に液体培地を添加した際の足場(細胞集合体)の全体像であり、(d)は同中心部の拡大像であり、(e)は72時間培養した後の足場(細胞集合体)の全体像であり、(f)は同中心部の拡大像である。図7の(a)、(c)及び(e)において、スケールバーは1000μmを示し、図7の(b)、(d)及び(f)において、スケールバーは100μmを示す。
図8は実施例4において足場中の生細胞(心筋細胞)を蛍光観察した結果であり、(a)は細胞播種後の足場の全体像であり、(b)は同中心部の拡大像であり、(c)は3時間培養後に液体培地を添加した際の足場(細胞集合体)の全体像であり、(d)は同中心部の拡大像であり、(e)は72時間培養した後の足場(細胞集合体)の全体像であり、(f)は同中心部の拡大像である。図8の(a)、(c)及び(e)において、スケールバーは1000μmを示し、図8の(b)、(d)及び(f)において、スケールバーは100μmを示す。
<iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価1>
(1)心筋細胞の同期拍動の評価
実施例4と同様にして細胞播種を行い、4時間後に液体培地と添加して細胞培養を行った。培養4日目に、カルシウム指示薬(EarlyTox Cardiotoxicity Kit,Molecular Device社)を培地に対して5/100(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、20FPSで動画撮影した。得られた動画から、横河電機社製画像解析装置CellPathfinderを用い、呈色領域を認識させ、時間に対する蛍光強度をプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
上記と同様、カルシウム指示薬を培地に対して5/100(質量比)添加し、2時間培養後、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色観察した。観察後、心筋の拍動を早める化合物として、徐脈、房室ブロック、気管支喘息の治療に用いられるベータ刺激薬であるイソプロテレノールを100nMになるように液体培地に添加し、5分後に、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色観察した。
<iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価2>
(1)心筋細胞の同期拍動の評価
細胞数を2×107cells/mLになるように懸濁して得られた細胞懸濁液を用いた以外は、実施例4と同様にして細胞播種を行い、4時間後に液体培地と添加して細胞培養を行った。培養4日目以降に、カルシウム指示薬(EarlyTox Cardiotoxicity Kit,Molecular Device社)を培地に対して5/100(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。足場単位面積当たりの細胞の播種量は6250細胞/mm2である。
横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、20FPSで動画撮影した。得られた動画から、横河電機社製画像解析装置CellPathfinderを用い、呈色領域を認識させ、時間に対する蛍光強度をプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
上記と同様、カルシウム指示薬を培地に対して5/100(体積比)添加し、2時間培養後、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光観察した。その後、不整脈を誘発する化合物として、遅延整流性カリウム電流(Ikr)の阻害剤であるE-4031(富士フイルム和光純薬社)を900nMになるように液体培地に添加し、添加から120分後に蛍光観察した。
<iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価3>
(1)心筋細胞集合体の作製
足場単位面積当たりの播種量が6000細胞/mm2になるように細胞を播種した以外は、実施例6と同様にして細胞播種及び培養を行った。
(2)心筋細胞集合体の構造観察
培養3日目及び7日目に心筋細胞を含む足場(心筋細胞集合体)を回収し、16%パラホルムアルデヒドで固定後、蛍光染色を行った。細胞核をビスベンズイミドH33342フルオロクロム三塩酸塩のDMSO溶液(1mg/mL、ナカライテスク社)を用いて染色し、アクチンフィラメントをAlexa FluorTM 568 phalloidin(Invitrogen社)を用いて染色し、α―アクチニンを1次抗体としてAnti-α-Actinin (Sarcomeric) antibody(Sigma社)を用いて免疫染色し、構造観察を行った。
(3)心筋細胞集合体のカルシウムイメージングによる化合物の応答性評価
培養6日目に、細胞が多く存在する面を培養皿(IWAKI浮遊培養用マイクロプレート(表面処理なし)6Well)底面に面するように心筋細胞集合体を設置後、1日静置した。培養7日目に、カルシウム指示薬(EarlyTox Cardiotoxicity Kit,Molecular Device社)を培地に対して25/100(体積比)添加し、心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
下記表4に示す化合物をそれぞれ目的の濃度まで累積投与し、カルシウムイオンの濃度変化から、化合物応答性を観察した。各濃度で化合物投与10分後に、横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、20fpsで蛍光タイムラプス像を撮影した。得られた画像から、横河電機社製画像解析装置CellPathfinderを用い、10倍の視野全体の蛍光強度を、時間に対してプロットすることで、心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。ベラパミルは、IKr阻害作用を有するCaチャネル拮抗剤である。
(4)心筋細胞集合体の収縮力の評価
上記のカルシウムイオン指示薬により、下記表4の化合物の応答性を観察した各標本において、横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、20fpsで、明視野像を撮影した。得られた画像をImageJのプラグインツール MUSCLEMOTION(Sala et al, Circu. Res., 2018)を用いて、心筋細胞集合体の収縮力と収縮弛緩速度を評価した。
<iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価4>
(1)心筋細胞集合体の作製
足場の面積当たりの播種量が8000細胞/mm2になるように細胞を播種した以外は、実施例7と同様にして細胞播種、培養を行った。
(2)心筋細胞集合体のカルシウムイメージングによる化合物の応答性評価
カルシウム指示薬の添加前日に、細胞が多く存在する面を培養皿底面に面するように心筋細胞集合体を設置し、培養6−10日目にカルシウム指示薬を添加した以外は、実施例7と同様に心筋細胞内のカルシウムイオンを蛍光染色した。
下記表5に示す化合物(COVID-19の治療薬として使用されている。)を目的の濃度まで累積投与し、実施例7と同様に心筋細胞におけるカルシウムイオンのシグナル波形を得た。
(3)心筋細胞集合体の収縮力の評価
上記のカルシウムイオン指示薬により、下記表5の化合物の応答性を観察した各標本において、実施例7と同様に心筋集合体の収縮力を評価した。
<iPS細胞由来心筋細胞を用いた化合物の評価5>
(1)心筋細胞集合体の作製
iPS細胞由来心筋細胞としてNcardia社製のPluricyte(登録商標)を用い、足場の単位面積あたりの播種量が6000細胞/mm2になるように細胞を播種した以外は、実施例3と同様にして細胞播種及び培養を行った。
(2)心筋細胞集合体の膜電位インジケーターによる化合物の応答性評価
培養7日目に、細胞が多く存在する面を培養皿(IWAKI浮遊培養用マイクロプレート(表面処理なし)6Well)底面に面するように心筋細胞集合体を設置後、1日静置した。培養8日目に、膜電位インジケーター(FluoVolt、Invitrogen社)を培地に加え、37℃で30分間インキュベートし、心筋細胞内の膜電位を蛍光染色により測定した。
E-4031を、0,1,10,100,1000nMとなるよう培養液に累積投与し、膜電位の変化から、応答性を観察した。各濃度で化合物投与10分後に、横河電機社製共焦点イメージング装置(CQ1)を用い、20fpsで蛍光タイムラプス像を撮影した。得られた画像から、横河電機社製画像解析装置CellPathfinderを用い、x10の視野全体の蛍光強度を、時間に対してプロットすることで、心筋細胞における膜電位のシグナル波形を得た。
[1] 細胞及び足場を含む細胞集合体であって、
前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、
前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体。
[2] 前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、膨潤後の平均繊維径が2μm以上400μm以下であり、繊維交点が少なくとも部分的に溶着しており、かつ前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着している、[1]に記載の細胞集合体。
[3] 前記ゼラチン不織布は、厚みが0.1mm以上2.0mm以下であり、目付が10g/m2以上600g/m2以下である、[1]又は[2]に記載の細胞集合体。
[4] 前記ゼラチンフィルムは、厚みが0.80μm以上3.20μm以下である、[1]〜[3]のいずれかに記載の細胞集合体。
[5] 前記ゼラチン不織布の厚みTnと前記ゼラチンフィルムの厚みTfとの比Tf/Tnが7.5×10-3以下である、[1]〜[4]のいずれかに記載の細胞集合体。
[6] 前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムは、熱脱水架橋されている、[1]〜[5]のいずれかに記載の細胞集合体。
[7] 前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の両方に存在する、[1]〜[6]のいずれかに記載の細胞集合体。
[8] 前記細胞は、幹細胞、がん細胞、幹細胞由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞、並びに生体由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞からなる群から選ばれる1種以上である、[1]〜[7]のいずれかに記載の細胞集合体。
[9] 前記細胞は、成熟した心筋細胞を含み、前記成熟した心筋細胞は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞が成熟したものである、[1]〜[8]のいずれかに記載の細胞集合体。
[10] [1]〜[9]のいずれかに記載の細胞集合体の製造方法であって、
ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、内面が親水化処理されていない培養容器を準備する工程、
内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置する工程、及び
足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養する工程を含むことを特徴とする細胞集合体の製造方法。
[11] 足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して所定時間静置した後、液体培地を添加して細胞培養を行う、[10]に記載の細胞集合体の製造方法。
[12] 前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、所定時間細胞培養することで心筋細胞を成熟させる、[10]又は[11]に記載の細胞集合体の製造方法。
[13] [1]〜[9]のいずれかに記載の細胞集合体の作製キットであって、
ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場、及び内面が親水化処理されていない培養容器を含み、
細胞集合体の作製時に、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下する細胞集合体の作製キット。
[14] 前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、成熟した心筋細胞の作製に用いる、[13]に記載の細胞集合体の作製キット。
[15] 化合物の性質を評価する化合物の評価方法であって、
[1]〜[9]の何れかに記載の細胞集合体に化合物を接触させる工程と、
化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断する工程を含む、化合物の評価方法。
[16] 前記化合物の性質は、代謝、薬理作用及び毒性作用からなる群から選ばれる一つ以上である、[15]に記載の化合物の評価方法。
[17] 前記細胞集合体は、心筋細胞を含み、
前記判断工程は、細胞内のカルシウムイオンのイメージング、細胞内の膜電位のイメージング及び細胞集合体の収縮力評価からなる群から選ばれる一つ以上にて行う、[15]又は[16]に記載の化合物の評価方法。
2 紡糸液
3 ノズル吐出口
4、6 コンプレッサー
5 流体噴射口
7 圧力流体
8 ゼラチン繊維
9 ゼラチン不織布
10 ゼラチンフィルム
11 巻き取りロール
12 保温容器
20 製造装置
Claims (17)
- 細胞及び足場を含む細胞集合体であって、
前記足場は、ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成されており、
前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の少なくとも一方に存在することを特徴とする細胞集合体。 - 前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維は、膨潤後の平均繊維径が2μm以上400μm以下であり、繊維交点が少なくとも部分的に溶着しており、かつ前記ゼラチンフィルムは、前記ゼラチン不織布を構成するゼラチン繊維と部分的に溶着している請求項1に記載の細胞集合体。
- 前記ゼラチン不織布は、厚みが0.1mm以上2.0mm以下であり、目付が10g/m2以上600g/m2以下である請求項1又は2に記載の細胞集合体。
- 前記ゼラチンフィルムは、厚みが0.80μm以上3.20μm以下である請求項1〜3のいずれかに記載の細胞集合体。
- 前記ゼラチン不織布の厚みTnと前記ゼラチンフィルムの厚みTfとの比Tf/Tnが7.5×10-3以下である請求項1〜4のいずれかに記載の細胞集合体。
- 前記ゼラチン不織布及びゼラチンフィルムは、熱脱水架橋されている請求項1〜5のいずれかに記載の細胞集合体。
- 前記細胞は、前記ゼラチン不織布の表面及び内部の両方に存在する請求項1〜6のいずれかに記載の細胞集合体。
- 前記細胞は、幹細胞、がん細胞、幹細胞由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞、並びに生体由来の心筋細胞、神経細胞、肝細胞、線維芽細胞、内皮細胞及び上皮細胞からなる群から選ばれる1種以上である請求項1〜7のいずれかに記載の細胞集合体。
- 前記細胞は、成熟した心筋細胞を含み、前記成熟した心筋細胞は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞が成熟したものである請求項1〜8のいずれかに記載の細胞集合体。
- 請求項1〜9のいずれかに記載の細胞集合体の製造方法であって、
ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場と、内面が親水化処理されていない培養容器を準備する工程、
内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置する工程、及び
足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して培養する工程を含むことを特徴とする細胞集合体の製造方法。 - 足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下して所定時間静置した後、液体培地を添加して細胞培養を行う請求項10に記載の細胞集合体の製造方法。
- 前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、所定時間細胞培養することで心筋細胞を成熟させる請求項10又は11に記載の細胞集合体の製造方法。
- 請求項1〜9のいずれかに記載の細胞集合体の作製キットであって、
ゼラチンを主成分とするゼラチン不織布、及び前記ゼラチン不織布の一方の表面に積層されたゼラチンを主成分とするゼラチンフィルムを含む積層体で構成された足場、及び内面が親水化処理されていない培養容器を含み、
細胞集合体の作製時に、内面が乾燥状態の培養容器中に膨潤後の足場をゼラチンフィルム側が培養容器の内底面に接するように配置し、足場のゼラチン不織布上に細胞懸濁液を滴下する細胞集合体の作製キット。 - 前記細胞懸濁液は、幹細胞から分化した心筋細胞又は体細胞から分化した心筋細胞を含み、成熟した心筋細胞の作製に用いる請求項13に記載の細胞集合体の作製キット。
- 化合物の性質を評価する化合物の評価方法であって、
請求項1〜9の何れかに記載の細胞集合体に化合物を接触させる工程と、
化合物と接触することで細胞集合体の生理学的特性が変更するか否かを判断する工程を含む、化合物の評価方法。 - 前記化合物の性質は、代謝、薬理作用及び毒性作用からなる群から選ばれる一つ以上である請求項15に記載の化合物の評価方法。
- 前記細胞集合体は、心筋細胞を含み、
前記判断工程は、細胞内のカルシウムイオンのイメージング、細胞内の膜電位のイメージング及び細胞集合体の収縮力評価からなる群から選ばれる一つ以上にて行う請求項15又は16に記載の化合物の評価方法。
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