WO2020079981A1 - 皮脂腺の観察方法およびその利用 - Google Patents

皮脂腺の観察方法およびその利用 Download PDF

Info

Publication number
WO2020079981A1
WO2020079981A1 PCT/JP2019/034898 JP2019034898W WO2020079981A1 WO 2020079981 A1 WO2020079981 A1 WO 2020079981A1 JP 2019034898 W JP2019034898 W JP 2019034898W WO 2020079981 A1 WO2020079981 A1 WO 2020079981A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
sebaceous gland
sebaceous
observing
support
observation
Prior art date
Application number
PCT/JP2019/034898
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
周太 石塚
倉田　隆一郎
Original Assignee
株式会社マンダム
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社マンダム filed Critical 株式会社マンダム
Priority to JP2020504739A priority Critical patent/JP6692593B1/ja
Priority to EP19874597.8A priority patent/EP3869194B1/en
Priority to US16/769,719 priority patent/US11047849B2/en
Publication of WO2020079981A1 publication Critical patent/WO2020079981A1/ja

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5082—Supracellular entities, e.g. tissue, organisms
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/15—Medicinal preparations ; Physical properties thereof, e.g. dissolubility
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/36—Embedding or analogous mounting of samples
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5082—Supracellular entities, e.g. tissue, organisms
    • G01N33/5088—Supracellular entities, e.g. tissue, organisms of vertebrates
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q

Definitions

  • the present invention relates to a method for observing sebaceous glands.
  • the present invention also relates to a sample for observing sebaceous glands, and a method for evaluating the sebum production-regulating action of a test substance using the sample.
  • Sebum is secreted from the sebaceous glands to the surface of the skin and has the function of protecting the skin from external stimuli. In order to maintain the health of the skin, it is important to secrete a proper amount of sebum without excess or deficiency, and therefore, an external preparation such as a cosmetic composition that appropriately regulates the production of sebum is desired.
  • a sweat gland isolated from skin tissue is (a) covered with a biomatrix gel, (b) adhered to a support by a biomatrix, (c) a membrane is placed on the sweat gland.
  • Methods such as mounting and fixing are disclosed.
  • Patent Document 1 since the method described in Patent Document 1 does not sufficiently reproduce the production of sebum from the sebaceous glands in the living body, it is not possible to accurately observe the dynamics of the sebaceous glands close to the living body.
  • An aspect of the present invention is to provide a method for observing a sebaceous gland that enables observation of the dynamics of a sebaceous gland close to a living body, and a technique for using the same.
  • the present inventors have conducted extensive studies to solve the above-mentioned problems, and as a result, the sebaceous gland structure is provided under the condition that the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure and the support are not in biological contact. It was the first time to observe the dynamics of the sebaceous glands in the fixed state by immobilizing them on a support. Further, the present inventors have found that the dynamics of sebaceous glands thus observed are similar to the dynamics of sebaceous glands in the living body. The present invention has been completed based on this finding.
  • one aspect of the present invention is a method for observing sebaceous glands, wherein the sebaceous gland structure in which all or part of each of the dermis and the subcutaneous tissue is removed from the skin tissue, and the sebaceous gland of the observation target in the sebaceous gland structure A fixing step of fixing to the support so as not to come into biological contact with the support, and an observation step of observing the sebaceous gland structure obtained in the fixing step, And a method for observing sebaceous glands.
  • another aspect of the present invention comprises a sebaceous gland structure obtained by removing all or part of each of dermis and subcutaneous tissue from skin tissue, a support, and a fixing member
  • the present invention relates to a sebaceous gland observation sample in which the sebaceous gland structure is fixed to a support through a fixing member so that the sebaceous gland to be observed does not come into biological contact with the support.
  • FIG. 3 is a schematic view showing an example of a mode of fixing a sebaceous gland structure to a support in the observation method according to the embodiment of the present invention. It is a figure which shows the result of having observed the sample for sebaceous gland observation by the observation method which concerns on one Embodiment of this invention. It is a figure which shows the result of having observed the sample for sebaceous gland observation at two time points by the observation method which concerns on one Embodiment of this invention. In the figure, the part surrounded by the dotted line shows the position of sebum.
  • a method for observing a sebaceous gland according to an embodiment of the present invention is a sebaceous gland structure obtained by removing all or part of each of dermis and subcutaneous tissue from skin tissue.
  • a fixing step (hereinafter, also referred to as “step (I)” for convenience of description) of fixing the sebaceous gland of the observation target in the structure to the support so as not to come into biological contact with the support, and the fixing step.
  • the method includes an observation step of observing the sebaceous gland structure obtained in step (hereinafter, also referred to as “step (II)” for convenience of description).
  • Patent Document 2 that is, the method of observing the dynamics of sweat glands
  • Patent Document 2 when the method described in Patent Document 2 is applied to the sebaceous glands, the present inventors independently found that the following problems occur.
  • the sebaceous gland is a follicular accessory organ, unlike the eccrine sweat gland (hereinafter referred to as “sweat gland”). Therefore, in order to observe the dynamics of the sebaceous gland closer to the living body, it is necessary to observe not the sebaceous gland alone, but the state in which the sebaceous gland maintains the connection with the epidermis and the hair follicle (in other words, the state of the sebaceous gland structure). There is. However, the sebaceous gland requires more time to respond to a stimulant or the like from the outside than the sweat gland. Then, when a biomatrix gel or biomatrix is used, cells may migrate to the biomatrix or the like used for immobilization over time, and as a result, the sebaceous gland structure may impair its original function.
  • the sebaceous gland contains a large amount of oil (sebum) and the epidermis is hydrophobic, so that the buoyancy of the sebaceous gland structure is generally high. Therefore, even if an attempt is made to place and fix the membrane on the sebaceous gland structure, it cannot be fixed sufficiently and the sebaceous gland structure floats.
  • the present inventors have fixed the sebaceous gland structure to the support under conditions such that the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support. It was found for the first time that the dynamics of the sebaceous glands can be observed in a fixed state. The present inventors have also found that the dynamics of sebaceous glands thus observed sufficiently reproduce the production of sebum from the sebaceous glands in the living body.
  • the dynamics of the sebaceous glands can be observed in a fixed state, and the dynamics of the sebaceous glands observed are similar to the dynamics of the sebaceous glands in the living body. Can be provided. Moreover, according to the present observation method, the dynamics of the sebaceous glands close to the living body can be observed with time.
  • This observation method supports the sebaceous gland structure in which all or part of the dermis and subcutaneous tissue are removed from the skin tissue so that the sebaceous gland of the observation target in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support.
  • the method comprises a fixing step of fixing to the body, and an observing step of observing the sebaceous gland structure obtained in the fixing step.
  • the “sebaceous gland structure” is a structure obtained by removing all or part of the dermis and the subcutaneous tissue from the skin tissue, and includes at least the hair follicle and the epidermis in addition to the sebaceous gland.
  • the sebaceous gland structure has a structure similar to that of the skin tissue in the living body except that the dermis and the subcutaneous tissue are wholly or partially removed from the skin tissue. Suitable for observation.
  • the sebaceous gland has a function of maintaining the connection between the hair follicle and the epidermis.
  • the sebaceous gland structure may further include dermis and subcutaneous tissue in addition to the sebaceous gland, epidermis, and hair follicle.
  • the number of sebaceous glands contained in the sebaceous gland structure is not particularly limited as long as it is 1 or more. From the viewpoint that a sebaceous gland more preferable for observation can be selected, the number of observable sebaceous glands contained in the sebaceous gland structure is preferably 5 or more.
  • the sebaceous gland structure will be specifically described based on FIG. That is, as shown in FIG. 1, the sebaceous gland structure 1 contains hair 2, a hair follicle 3 surrounding the hair 2, an epidermis 4, and a sebaceous gland 5.
  • the sebaceous gland 5 is an undifferentiated sebaceous gland basal cell 6 located in the outermost layer of the sebaceous gland 5 and cells that are located inside the localized position of the sebaceous gland basal cell 6 and generate lipid droplets (sebum) (hereinafter, (Also referred to as "differentiated sebaceous gland cells”) 7 and mature sebaceous gland cells 8 localized in the central part of the sebaceous gland 5 and the differentiated sebaceous gland cells 7 accumulate sebum and expand, and the mature sebaceous gland cells 8 die and collapse It contains sebum 9 flowing out from the inside of the cell.
  • the sebum 9 produced in the sebaceous glands 5 is released to the outside of the skin via the hair follicles 3.
  • the part of the sebaceous gland structure 1, which is composed of the sebaceous glands 5, the hairs 2, the hair follicles 3, and the epidermis 4, except that all or part of the dermis and the subcutaneous tissues are removed from the skin tissue It has the same structure as the part composed of sebaceous glands, hairs, hair follicles, and epidermis in the skin tissue.
  • the dermis and the subcutaneous tissue are partially removed from the skin tissue means that the dermis and the subcutaneous tissue are removed from the skin tissue and the sebaceous gland is exposed to such an extent that the sebaceous gland can be observed. It means doing.
  • the sebaceous gland structure is fixed to the support so that the sebaceous gland in the sebaceous gland structure to be observed does not come into biological contact with the support.
  • the sebaceous gland structure can be produced, for example, by removing all or part of each of the dermis and subcutaneous tissue from the isolated skin tissue. Therefore, the present observation method may further include a step of removing all or part of each of the dermis and the subcutaneous tissue from the isolated skin tissue to obtain the sebaceous gland structure before performing the step (I). it can.
  • a method for manufacturing the sebaceous gland structure for example, (A1) a step of excising all or part of subcutaneous tissue from the isolated skin tissue, and (a2) removing fibers such as collagen fibers from the tissue obtained in the step (a1) to expose sebaceous glands.
  • production method A To obtain the sebaceous gland structure (hereinafter, also referred to as “production method A”); (B1) excising all or part of the subcutaneous tissue from the isolated skin tissue, (B2) a step of bringing the tissue obtained in the step (b1) into contact with an enzyme for dissociating epidermal accessory organs such as dispase, collagenase, pronase from the dermis, and (b3) obtained in the step (b2) Examples thereof include a method including a step of separating the dermis from the tissue (hereinafter, also referred to as “production method B”), but the present invention is not limited to such an example.
  • the production method A and the production method B are preferable, and the production method A is preferable. More preferable.
  • the isolated skin tissue examples include, for example, a skin tissue in a living state, which is obtained from surplus skin generated during a surgical operation, but the present invention is limited to such an example. Not a thing.
  • the “living skin tissue” refers to a skin tissue in a state of exhibiting the same biological activity and movement as the original biological activity and movement in the living body.
  • the source of the skin tissue examples include humans, but the present invention is not limited to such examples.
  • the source of the skin tissue is preferably human. Since it has been conventionally difficult to accurately observe the dynamics of human sebaceous glands, the present observation method is suitable for observing human sebaceous glands.
  • the dynamics of the sebaceous gland include, for example, (i) changes in the shape of cells constituting the sebaceous gland at at least two time points during the production of sebum; (ii) at least during the production of sebum Changes in the differentiation state of cells when the differentiation states of cells constituting the sebaceous gland are compared at two time points; (iii) Differentiation when the shapes of differentiated cells at at least two time points during the production of sebum are compared Changes in cell shape; (iv) changes in the location of the localized site of the differentiated cell when comparing the location of the localized site of the differentiated cell at at least two time points during the production of sebum.
  • the present invention is not limited to such examples.
  • step (I) of the present observation method the sebaceous gland structure is fixed to the support so that the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support.
  • the sebaceous gland and the support are not in biological contact means that the sebaceous gland is not biologically affected by the contact with the support through the biomatrix.
  • the biological effects include, for example, migration of cells in the sebaceous gland into a biological matrix or a medium, disruption of the integrity of the sebaceous gland structure, and differentiation of sebaceous gland cells. Therefore, even if the sebaceous gland and the support are in physical contact, unless the sebaceous gland is biologically affected as described above, the definition of "the sebaceous gland and the support are not in biological contact” is defined. Included in the range.
  • the sebaceous gland not in biological contact with the support is a sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure, and may be in biological contact with the support as long as it is a sebaceous gland other than the observation target.
  • a plurality of sebaceous glands are contained in a sebaceous gland structure having a predetermined size (for example, 1 cm square).
  • the sebaceous glands at the ends are non-observation targets. Intended to be in contact with.
  • the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure is preferably not in contact with the support, but in some cases it is preferable that the sebaceous gland is contacted by a contact method other than biological contact.
  • a contact method other than biological contact For example, depending on the observation device (microscope, etc.) and the container used as the support (incubator for culturing the sebaceous gland structure), it is easier to observe when the sebaceous gland is in contact with the support. It may have advantages such as good accuracy. In such a case, the sebaceous gland to be observed may be in contact with the support by a contact method other than biological contact.
  • the support is an object that can fix the sebaceous gland structure so that the sebaceous gland of the observation target in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support, and is particularly limited as long as it is suitable for an observation device. Not done.
  • the support include containers such as petri dishes, dishes, plates, flasks, chambers and tubes.
  • the material various materials such as general plastic and glass can be preferably used. From the viewpoint of preventing biological contact between the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure and the support, it is preferable that the surface is not coated with a biological substrate.
  • the fixing of the sebaceous gland structure and the support in the step (I) is performed via a biomatrix.
  • the “biomatrix” is also referred to as a “fixing member” from the viewpoint that it is a material that mediates the fixation between the sebaceous gland structure and the support.
  • the biomatrix is not particularly limited as long as it binds to both the sebaceous gland structure and the support and can fix the sebaceous gland structure and the support.
  • Examples of the biomatrix include collagen, agarose, basement membrane matrix, poly-D-lysine and the like. Therefore, in one embodiment of the present invention, the sebaceous gland structure is fixed to the support by at least one selected from the group consisting of collagen, agarose, basement membrane matrix, and poly-D-lysine.
  • collagen examples include, but are not limited to, type I collagen such as collagen type IA and collagen type IB; type III collagen; type IV collagen and the like.
  • the agarose may be any agarose having a melting point at which the cells constituting the sebaceous gland can survive.
  • the basement membrane matrix may contain laminin, collagen type IV, nidogen and heparan sulfate proteoglycan as essential constituents.
  • Examples of the basement membrane matrix include, but are not limited to, Matrigel basement membrane matrix (manufactured by Corning).
  • the poly-D-lysine may be any one having a molecular weight that allows the cells constituting the sebaceous glands to adhere to the support.
  • the fixing of the sebaceous gland structure and the support in the step (I) is carried out by including epidermis, hair follicles, dermis, subcutaneous tissue, and sebaceous glands other than the observation target in the sebaceous gland structure. At least one selected from the group consisting of is carried out by binding to a support through the biomatrix.
  • the shape and size of the sebaceous gland structure to be fixed are not particularly limited.
  • a sebaceous gland structure prepared in a square of 3 to 5 mm square is preferable.
  • the fixing mode on the support is not particularly limited, but it is not desirable that all the ends of the sebaceous gland structure are fixed to the support from the viewpoint that the medium can contact the sebaceous glands in the sebaceous gland structure. That is, it is preferable that at least one end of the sebaceous gland structure is not fixed to the support.
  • the sebaceous gland structure is a quadrangle
  • one of the opposite ends of the four ends that is, two ends
  • the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure means a sebaceous gland arbitrarily selected from the sebaceous glands contained in the sebaceous gland structure in order to observe the dynamics of the sebaceous gland.
  • the sebaceous gland to be observed may be appropriately selected from sebaceous gland structures that are not in biological contact with the support. For example, since the sebaceous glands located near the ends of the sebaceous gland structure are likely to be in biological contact with the biological matrix, it is possible to target the sebaceous gland near the central part of the sebaceous gland structure as an observation target. preferable.
  • a weight stone material such as a membrane is placed on the sebaceous gland structure, and by fixing the membrane and the support, the sebaceous gland and the support of the observation target in the sebaceous gland structure are
  • the sebaceous gland structure can also be fixed to a support so that it does not come into biological contact.
  • the membrane can be fixed to the support through the biomatrix, for example.
  • the membrane may be a membrane having pores of a pore size that does not allow passage of the sebaceous gland structure but allows passage of a buffer solution, a test substance described below, and the like.
  • the pore size is preferably 5 mm or less, more preferably 1 mm or less from the viewpoint of suppressing passage through the sebaceous glands, and preferably 0.1 ⁇ m or more from the viewpoint of allowing passage of a test substance described below.
  • the sebaceous gland structure fixed to the support is cultured in the medium by adding the medium.
  • the sebaceous gland structure can be kept alive by being cultured in a medium. As a result, it becomes possible to observe the dynamics of the sebaceous glands in a state closer to that of a living body.
  • the medium may be a medium containing a differentiation promoting component suitable for differentiating the undifferentiated sebaceous gland basal cells contained in the sebaceous gland structure into mature sebaceous gland cells and a growth component for growing the cells, and is not particularly limited. is not.
  • the medium may be a conventional basal medium supplemented with the differentiation promoting component and the growth component, or may be a commercially available medium.
  • the differentiation promoting component include fetal bovine serum, fatty acids, peptides, hormones, etc., but the present invention is not limited to these examples. These differentiation promoting components may be used alone or in combination of two or more.
  • the content rate of the differentiation promoting component in the medium varies depending on the type of the medium, the type of the differentiation promoting component, and the like, and thus is not unconditionally determined. Therefore, it is preferable to set appropriately according to the type of the medium, the type of the differentiation promoting component, and the like.
  • the growth component include amino acids, vitamins, inorganic salts, saccharides, cell growth promoting factors, and the like, but the present invention is not limited to these examples.
  • the content rate of the growth component in the medium varies depending on the type of the medium, the type of the growth component, etc., and is not generally determined. Therefore, it is preferable to set appropriately according to the type of the medium, the type of the growth component, and the like.
  • These proliferative components may be used alone or in combination of two or more.
  • the basal medium include a mixed medium of Dulbecco's modified medium and F-12 medium, but the present invention is not limited to these examples.
  • the culture conditions for culturing the sebaceous gland structure differ depending on the type of the source of the skin tissue used in the production of the sebaceous gland structure, the type of dynamics of the sebaceous gland to be observed, etc., and therefore can be determined unconditionally. Can not. Therefore, it is desirable to determine it according to the type of the source of the skin tissue used for the production of the sebaceous gland structure, the type of dynamics of the sebaceous gland to be observed, and the like.
  • the culture conditions include, for example, culture temperature, culture time, medium pH, carbon dioxide concentration in the culture atmosphere, and the like.
  • the culture temperature is usually preferably 35 ° C to 38 ° C, more preferably 36.5 ° C to 37.5, from the viewpoint of accurately reproducing the state of the sebaceous gland in the living body. °C.
  • the culture time is usually preferably 6 to 168 hours, more preferably from the viewpoint of maintaining the physiological function of the sebaceous gland structure in a good state in the medium. Is 24-48 hours.
  • the pH of the medium is usually preferably 6.8 to 7.6, more preferably 7.0, from the viewpoint of accurately reproducing the state of the sebaceous glands in the living body. It is about 7.4.
  • the carbon dioxide concentration in the culture atmosphere is usually preferably 4 to 10% by volume, more preferably 5 to 7% by volume, from the viewpoint of accurately reproducing the state of the sebaceous glands in the living body.
  • step (II) the sebaceous gland structure obtained in step (I) is observed.
  • the sebaceous gland structure may be observed, for example, by using a sebaceous gland structure stained with a staining reagent before the step (I) as an observation sample, or using a sebaceous gland structure stained with the staining reagent after the step (I). It can be performed by using it as an observation sample.
  • the sebaceous gland structure can be stained by, for example, contacting the sebaceous gland structure with the staining reagent.
  • the staining reagent include a reagent containing a complex of a binding substance that binds to a marker and a detectable substance, a reagent containing the binding substance and not containing the detectable substance, and the like.
  • the invention is not limited to just such examples.
  • the "marker" means a substance contained in the sebaceous gland structure, an index for the presence of cells, cells, etc., and an index for the degree of differentiation of cells.
  • the binding substance varies depending on the application of the present observation method. Therefore, since it cannot be determined unconditionally, it is preferable to appropriately determine it according to the application of the method for observing the sebaceous gland.
  • the binding substance include an antibody that binds to the marker (hereinafter, simply referred to as “antibody”) or a fragment thereof (hereinafter, simply referred to as “antibody fragment”), a compound that binds to the marker, and the like.
  • antibody may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. Among the above antibodies, a monoclonal antibody is preferable because of its high specificity for the marker.
  • the polyclonal antibody, the monoclonal antibody, and the antibody fragment can be produced by a conventional method using the marker as an antigen. Further, as the polyclonal antibody, the monoclonal antibody and the antibody fragment, use of a commercially easily available polyclonal antibody, a commercially easily available monoclonal antibody and a commercially easily available antibody fragment You can
  • the binding substance may be a substance that produces a detectable signal or a substance that does not produce the signal.
  • Examples of the detectable substance include a fluorescent substance and an enzyme, but the present invention is not limited to such examples.
  • the fluorescent substance include fluorescein isothiocyanate and fluorescent substances of the Alexa Fluor series (eg, Invitrogen, trade name: Alexa Fluor 647), but the present invention is limited to these examples. is not.
  • the enzyme include peroxidase and alkaline phosphatase, but the present invention is not limited to these examples.
  • fluorescent substances are preferable because they are easy to detect and can detect an object to be detected with high accuracy, and fluorescent substances of the Alexa Fluor series (for example, manufactured by Invitrogen, trade name : Alexa Fluor 647) is more preferable.
  • the staining reagent may further include a labeled binding substance that binds to the antibody or the antibody fragment thereof, if necessary.
  • the label binding substance include a complex of a second binding substance that binds to the binding substance and a labeling substance, but the present invention is not limited to such an example.
  • the second binding substance include, for example, an antibody against an immunoglobulin possessed by an animal immunized when producing the antibody, an antibody against a fragment of the immunoglobulin, etc., but the present invention is limited to such an example. It is not something that will be done.
  • the labeling substance include the detectable substance and the like, but the present invention is not limited to such examples.
  • the type of the staining reagent cannot be unconditionally determined because it depends on the application of the method for observing the sebaceous gland of the invention. Therefore, it is preferable to appropriately determine according to the application of the method for observing the sebaceous glands.
  • staining reagent examples include a staining reagent for the undifferentiated sebaceous gland basal cells (hereinafter also referred to as “undifferentiated cell staining reagent”), a staining reagent for sebum (hereinafter also referred to as “sebum staining reagent”), Examples include staining reagents for cell nuclei (hereinafter also referred to as “nuclear staining reagents”), differentiated cell staining reagents, and the like, but the present invention is not limited to these examples.
  • the undifferentiated cell staining reagent is a substance that binds to a marker specific to undifferentiated sebaceous gland basal cells (hereinafter, also referred to as "undifferentiated marker”) (hereinafter, also referred to as "undifferentiated cell binding substance"). Including.
  • the undifferentiated cell staining reagent may be a reagent containing a complex of an undifferentiated cell binding substance and a detectable substance, and when the undifferentiated cell binding substance itself is a substance that produces a detectable signal May be a reagent containing the undifferentiated cell binding substance and not containing the detectable substance.
  • undifferentiated cell marker examples include keratin-5, keratin-7, keratin-14, B lymphocyte-derived mature protein 1 (Blimp1), leucine-rich repeat immunoglobulin-like domain protein 1 (Lrig1) and the like. However, it is not particularly limited.
  • the nuclear staining reagent contains a binding substance that binds to a substance forming the nucleus (hereinafter, also referred to as “nuclear binding substance”).
  • the nuclear staining reagent may be a reagent containing a complex of a nuclear binding substance and a detectable substance, and when the nuclear binding substance itself is a substance that produces a detectable signal, the nuclear binding substance And a reagent containing no detectable substance.
  • the substance forming the nucleus include nucleic acids such as DNA, but the present invention is not limited to these examples.
  • the nuclear binding substance may be any substance that penetrates the cell membrane. Examples of the nuclear binding substance include Hoechst 33342 and the like, but the present invention is not limited to such examples. Since Hoechst 33342 is a substance that produces detectable fluorescence, the nuclear staining reagent may be a reagent that does not contain the detectable substance.
  • Examples of the sebum staining reagent include fat-soluble dyes that are soluble in sebum, but the present invention is not limited to these examples.
  • Examples of the fat-soluble dyes include Nile Red, Nile Blue, Oil Red O, Sudan III, Sudan IV, and Sudan Black B, but the present invention is not limited to these examples. Since the fat-soluble dye dissolves in sebum and stains sebum, the sebum dyeing reagent containing the fat-soluble dye may be a reagent containing no detectable substance.
  • the differentiated cell staining reagent examples include a substance that binds to a marker specific to sebaceous gland cells differentiated from undifferentiated sebaceous gland basal cells (hereinafter, also referred to as “differentiation marker”) (hereinafter, “differentiated cell binding substance”). Also referred to as)).
  • the differentiated cell staining reagent may be a reagent containing a complex of a differentiated cell binding substance and a detectable substance, and when the differentiated cell binding substance itself is a substance that produces a detectable signal, A reagent containing a differentiated cell binding substance and not containing the detectable substance may be used.
  • the differentiated cell marker include, but are not limited to, stearoyl-CoA desaturase 1 (Scd-1), peroxisome proliferator-activated receptor ⁇ (PPAR ⁇ ), and the like.
  • the content of the binding substance in the staining reagent varies depending on the type of the binding substance, the application of the method for observing the sebaceous gland of the invention, etc., and therefore cannot be unconditionally determined. Therefore, it is preferable to appropriately determine depending on the type of the binding substance, the use of the method for observing the sebaceous gland of the invention, and the like.
  • the detectable substance contained in the undifferentiated cell staining reagent, the detectable substance contained in the sebum staining reagent and the detectable substance contained in the nuclear staining reagent are mutually distinguishable substances.
  • the mixing ratio and contact time of the sebaceous gland structure and the staining reagent differ depending on the type of the staining reagent, etc., and therefore cannot be determined unconditionally. Therefore, it is preferable to set appropriately according to the type of the staining reagent.
  • washing solution examples include phosphate buffered saline and phosphate buffer, but the present invention is not limited to these examples.
  • the staining reagent contains an antibody or an antibody fragment thereof
  • a blocking agent include a phosphate buffered physiological saline solution containing albumin, but the present invention is not limited to such examples.
  • the sebaceous glands can be observed using, for example, an optical microscope such as a fluorescence microscope or a confocal laser microscope. Specifically, the sebaceous gland can be observed by, for example, observing the stained sebaceous gland structure as it is or detecting a signal derived from a staining reagent in the stained sebaceous gland structure.
  • the sebaceous gland structure may be observed from either the pore / epidermal side or the sebaceous gland side of the sebaceous gland structure.
  • the sebaceous gland structure is preferably observed from the sebaceous gland side.
  • the sebaceous gland structure can be observed from the side where the support 12 is located (sebaceous gland side) (that is, the support 12 It can be observed from below.)
  • sample for sebaceous gland observation is a sebaceous gland structure in which all or part of each of dermis and subcutaneous tissue is removed from skin tissue, and a support. And a fixing member, wherein the sebaceous gland structure is fixed to the support through a fixing member so that the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support. .
  • the sample 20 includes a sebaceous gland structure 1, a support 12, and a biological substrate (fixing member) 10.
  • the sebaceous gland structure 1 is cultured in the medium 11 in the container 13.
  • the bottom of the container 13 functions as the support 12, but the present invention is not limited to this, and the support 12 may be a member separate from the container 13.
  • the sebaceous gland structure 1 includes hairs 2, epidermis 4, and sebaceous glands 5 to be observed.
  • the sebaceous gland structure 1 has the epidermis 4 at the end thereof and the support 12 fixed to the support 12 via a biological substrate (fixing member) 10.
  • the sebaceous gland 5 to be observed is immobilized so as not to come into biological contact with the support 12. That is, the sebaceous gland 5 to be observed is not in contact with the biological substrate (fixing member) 10.
  • the sebaceous gland structure exists in the medium of the container, for example, and therefore it will float in the medium and cannot be observed unless it is immobilized on the biological substrate.
  • this sample 20 is fixed to the support 12 so that the sebaceous glands 5 in the sebaceous gland structure 1 do not come into biological contact.
  • the sebaceous wire 5 does not contact the biological substrate (fixing member) 10
  • the cells of the sebaceous gland 5 do not migrate and the sebaceous gland structure does not break. Therefore, using this sample 20, it is possible to accurately observe the dynamics of the sebaceous glands close to the living body.
  • the sebaceous gland structure and the support in this sample are as described in [2.
  • the observation method is the same as that described in [2. Observing method].
  • the sebaceous gland structure and the support are the same as those described in [2. Observing method], it is fixed by the mode and method as described above.
  • a method for evaluating a sebum production-regulating action of a test substance according to an embodiment of the present invention includes a contact step of contacting a sample for sebaceous gland observation with the test substance (hereinafter , For convenience of description, and also referred to as “step (A)”, and an evaluation step of observing the sebaceous gland structure in the contact step and evaluating the sebum production-regulating action of the test substance (hereinafter, for convenience of description, “step ( B) ".)) Is also included.
  • the "contact with the test substance” may be a mode in which the test substance and the sebaceous gland structure contact, for example, a mode of culturing the sebaceous gland structure in the presence of the test substance, the test substance to the sebaceous gland structure Various methods such as direct sprinkling can be applied.
  • a mode of culturing the sebaceous gland structure in the presence of the test substance, the test substance to the sebaceous gland structure Various methods such as direct sprinkling can be applied.
  • a case where the sebaceous gland structure is cultured in a culture medium containing a test substance will be described as an example.
  • the sample for observing the sebaceous glands is observed in contact with the test substance, so that the sebum production regulating action of the test substance can be evaluated over time. Therefore, according to the present evaluation method, it can be accurately evaluated whether the test substance is a substance that regulates the production of sebum.
  • the sebum production regulating action includes sebum production promoting action to increase sebum production and sebum production suppressing action to decrease sebum production.
  • step (A) a sample for observing sebaceous glands is cultured in the presence of the test substance.
  • the sample and medium for observing the sebaceous glands used in the step (A) are the same as those described in [3.
  • the culture of the sample for observing the sebaceous glands in the step (A) is performed according to the above [2. Observation method] can be performed by a method similar to the method of culturing the sebaceous gland structure described in [1].
  • the culture conditions of the sample for sebaceous gland observation cannot be unconditionally determined because it varies depending on the evaluation content, the type of test substance to be evaluated, the type of the source of the skin tissue used to manufacture the sebaceous gland structure, etc. . Therefore, it is desirable to determine it according to the content of evaluation, the type of test substance to be evaluated, the type of source of the skin tissue used in the production of the sebaceous gland structure, and the like.
  • step (B) the sebaceous gland structure in the step (A) is observed to evaluate the sebum production regulating action of the test substance.
  • the step (C) of culturing a sample for sebaceous gland observation in the absence of the test substance may be performed.
  • the medium used in the step (C) is the same type of medium as the medium used in the step (A).
  • the culture of the sample for observing the sebaceous glands in the absence of the test substance is obtained, for example, by adding the test substance to the same kind of medium as that used in the step (A). Except that a test substance-containing medium is used.
  • Observation method] can be performed by a method similar to the method of culturing the sebaceous gland structure described in [1].
  • the culture conditions for the sebaceous gland observation sample in the step (C) are the same as the culture conditions for the sebaceous gland observation sample in the step (A) except that no test substance is used.
  • the sample (A) for observing the sebaceous gland after the culture obtained in step (A) is observed, and the dynamics of the sebaceous gland and the normal sebaceous gland structure in the sample (A) for observing the sebaceous gland are observed. Based on the difference from the dynamics of the sebaceous glands in the body, the sebum production-regulating effect of the test substance can be evaluated. In this case, control is not used, and evaluation is performed by comparing with normal kinetics.
  • the sample (A) for observing sebaceous glands after culture obtained in step (A) and the sample for observing sebaceous glands after culture obtained in step (C) (C) is observed, and the sebum production regulating action of the test substance is based on the difference between the sebaceous gland dynamics in the sebaceous gland observing sample (A) and the sebaceous gland dynamics in the sebaceous gland observing sample (C). Can be evaluated.
  • the same sample as the sample (C) is used in the step (A) is carried out, the obtained sample (A) is observed, and then the dynamics of the sebaceous glands in the sample (C) for observing the sebaceous glands after culture obtained in the step (C) and the sample (A) Based on the difference with the dynamics of the sebaceous glands, the sebum production regulating action of the test substance can be evaluated.
  • the order of performing steps (A) and (C) may be the order of performing step (C) after performing step (A).
  • the order may be such that step (A) is performed after performing step (A). Further, step (A) and step (C) may be performed simultaneously.
  • the difference between the sebaceous gland dynamics in the sebaceous gland observation sample (A) and the sebaceous gland dynamics in a normal sebaceous gland structure or the sebaceous gland dynamics in the sebaceous gland observation sample (C) is as follows: Difference in kinetics of cells containing sebum in the outermost layer of sebaceous gland depending on presence or absence; (ii) Difference in rate of differentiation of undifferentiated sebaceous gland basal cells into mature sebaceous gland cells in sebaceous gland depending on presence or absence of test substance; (iii) test substance Differences in the dynamics of collapsed mature sebaceous gland cells in the vicinity of the central part of the sebaceous gland depending on the presence or absence of (g) Differences in the amount of sebum existing near the central part of the sebaceous gland depending on the presence or absence of the test substance; Differences in the expression position of the differentiation marker depending on the presence / absence; (vi) Differences in the expression level of the differentiation marker depending on the presence / absence
  • the index that the test substance has a sebum production promoting action because it depends on the type of the source of the skin tissue used for the production of the test substance and sebaceous gland structures, etc., it cannot be determined unconditionally, for example, the following
  • the indices (1a) to (3a) of the above are listed. These indexes may be used alone or in combination of two or more kinds.
  • the indicator that the test substance has a sebum production inhibitory action because it varies depending on the type of the source of the skin tissue used in the production of the test substance and sebaceous gland structure, etc., it can not be determined unconditionally, for example,
  • the following indicators (1b) to (3b) are listed. These indexes may be used alone or in combination of two or more kinds.
  • the sample (A) for observing sebaceous glands and the sample (C) for observing sebaceous glands are examples, and the difference in the dynamics of sebaceous glands described above, an index that the test substance has an action of promoting sebum production, and the test substance producing sebum
  • the index of having a suppressive action is also applied to other embodiments of the present evaluation method.
  • the sebum production-regulating substance is expected to be used as a sebum production inhibitor, sebum production promoter, etc., which is mixed into cosmetics for skin such as face, axilla, and scalp.
  • one aspect of the present invention includes the following inventions.
  • the fixing step the sebaceous gland structure is fixed to a support with at least one selected from the group consisting of collagen, agarose, basement membrane matrix, and poly-D-lysine.
  • the fixing step at least one selected from the group consisting of epidermis, hair follicle, dermis, subcutaneous tissue, and sebaceous glands other than the observation target, which are contained in the sebaceous gland structure, and the support are fixed.
  • a sebaceous gland structure obtained by removing all or part of dermis and subcutaneous tissue from skin tissue, a support, and a fixing member, A sample for observing sebaceous glands, wherein the sebaceous gland structure is fixed to a support through a fixing member so that the sebaceous gland to be observed in the sebaceous gland structure does not come into biological contact with the support.
  • a method for evaluating a sebum production regulating action of a test substance comprising: A contact step of contacting the sample for sebaceous gland observation according to ⁇ 4> with a test substance, and an evaluation step of observing the sebaceous gland structure in the contact step to evaluate the sebum production-regulating action of the test substance Evaluation method for substances.
  • DMEM Dulbecco's modified medium
  • FBS Fetal bovine serum
  • PBS Phosphate buffered saline
  • HEPES 4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazineethanesulfonic acid
  • Preparation method (1. Mixed medium) FBS was added to a mixed medium of DMEM and F-12 medium (DMEM / F-12 medium, volume ratio 1: 1) so that the concentration of FBS was 10% by volume to obtain a mixed medium.
  • Staining reagent A A nuclear stain (manufactured by Invitrogen, trade name: hoechst33342) was added to the PBS solution so that the concentration of the nuclear stain was 10 ⁇ g / mL to obtain a staining reagent A.
  • Staining reagent B A fat staining reagent (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., trade name: Nile Red) was added to the PBS solution to a concentration of 10 ⁇ g / mL to obtain a staining reagent B.
  • the subcutaneous tissue was removed from the skin tissue using scissors under a stereoscopic microscope. Next, the collagen fibers were removed from the dermis in the skin tissue after the subcutaneous tissue was removed using scissors and tweezers to obtain a sebaceous gland structure having a square shape of about 3 to 5 mm square with the sebaceous gland exposed.
  • the sebaceous gland structure contained sebaceous glands, hairs, hair follicles, and epidermis in skin tissue, but did not substantially contain dermis and subcutaneous tissue, and the sebaceous glands were exposed.
  • Collagen type IA solution (content of collagen type IA: 3% by mass, manufactured by Nitta Gelatin Co., Ltd.) 800 ⁇ L and 10 ⁇ PBS (composition: 1370 mM sodium chloride, 27 mM potassium chloride, 100 mM dihydrogen phosphate) 100 ⁇ L of sodium dodecahydrate and 18 mM potassium dihydrogen phosphate, pH 7.4) and 100 ⁇ L of the collagen reconstitution buffer (composition: 50 mM sodium hydroxide, 260 mM HEPES and 200 mM sodium bicarbonate, pH 10.0) By mixing, a collagen-containing liquid A was obtained.
  • Example 1 Staining of nuclei and sebum in the sebaceous gland structure By incubating the sebaceous gland structure obtained in (4. Preparation of sebaceous gland structure) in the staining reagent A at room temperature (25 ° C) for 30 minutes, The nuclei of sebaceous gland basal cells in the outermost layer of the sebaceous glands were stained. The sebaceous gland structure after staining was washed by rinsing with PBS.
  • the sebum contained in the sebaceous gland structure was stained.
  • the sebaceous gland structure after staining was washed by rinsing with PBS.
  • sebaceous gland structure of about 3 to 5 mm square. Since the sebaceous gland near the edge is presumed to be in contact with the biomatrix, one sebaceous gland existing in the middle was used as an observation target. The observation was performed over time while culturing the sebaceous gland structure at 37 ° C. under 5% CO 2 for 24 hours. The observation results are shown in FIGS.
  • FIG. 3 shows the observation results of the sebaceous glands at the start of observation.
  • FIG. 4 is an enlarged view of FIG. 3, where (a) shows the state of sebum at the start of observation, and (b) shows the state of sebum after 24 hours have elapsed.
  • 5 and 6 are enlarged views of FIG. 3, respectively, (a) shows the state of the nucleus at the start point, and (b) shows the state of the nucleus after 24 hours have passed.
  • the sebaceous gland structure observed was a sebaceous gland covered with sebaceous gland basal cells, because sebum leakage could not be confirmed, and the sebaceous gland structure that was originally maintained in the living body was maintained. I understand.
  • sebaceous gland structure 1 sebaceous gland structure 2 hair 3 hair follicle 4 epidermis 5 sebaceous gland 6 sebaceous gland basal cell 7 differentiated sebaceous gland cell 8 mature sebaceous gland cell 9 sebum 10 biomatrix (fixing member) 11 medium 12 support 13 container 14 nucleus 20 sample

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)

Abstract

生体に近い皮脂腺の動態を観察することができる、皮脂腺の観察方法を提供する。皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ、および前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ、を含む、皮脂腺の観察方法である。

Description

皮脂腺の観察方法およびその利用
　本発明は、皮脂腺の観察方法に関する。本発明はまた、皮脂腺観察用の試料、およびそれを用いた、被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価する方法に関する。
　皮脂は、皮脂腺から皮膚の表面に分泌され、体外の刺激から皮膚を保護する機能を有する。皮膚の健康を保つためには、過不足のない適度な皮脂の分泌が重要であることから、皮脂の産生を適度に調節する化粧料等の外用剤が望まれている。
　物質が皮脂の産生に与える影響を分析する方法としては、例えば、皮脂腺細胞を、被験物質を含む培地中で培養し、当該細胞中の脂質量を測定する方法が知られている（特許文献１参照）。
　また、皮脂腺と同じ外分泌腺である汗腺については、生体に近い動態での観察方法が報告されている。例えば、特許文献２には、皮膚組織中から単離した汗腺を、（ａ）生体基質ゲルで覆う、（ｂ）生体基質により、支持体と接着する、（ｃ）上記汗腺の上にメンブレンを載せて固定する、等の方法が開示されている。これらの方法により、汗腺が容器内で位置ずれを起こすことを回避することができ、その結果、汗腺の動態を的確に観察することができる。
特開２０１３－３２３３１号公報 国際公開第２０１８／０１６５０１号
　しかし、特許文献１に記載の方法では、生体における皮脂腺からの皮脂の産生を十分に再現していないため、生体に近い皮脂腺の動態を的確に観察することができない。
　また、特許文献２に記載の汗腺の動態を観察する方法を、皮脂腺に適用することについても、全く検討されていない。
　本発明の一態様は、生体に近い皮脂腺の動態を観察することができる、皮脂腺の観察方法およびその利用技術を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、皮脂腺構造体中の観察対象となる皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないような条件下で、皮脂腺構造体を支持体に固定することにより、固定した状態で皮脂腺の動態を観察することに初めて成功した。また、本発明者らは、そのようにして観察された皮脂腺の動態が、生体における皮脂腺の動態と近いものであることを見出した。この知見に基づき、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明の一態様は、皮脂腺を観察する方法であって、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ、および前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ、
を含む、皮脂腺の観察方法に関する。
　また、本発明の別の一態様は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体と、支持体と、固定部材と、を備え、前記皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、前記皮脂腺構造体が固定部材を介して支持体に固定された、皮脂腺観察用の試料に関する。
　本発明の一態様によれば、生体に近い皮脂腺の動態を観察し得る、皮脂腺の観察方法を提供することができる。
皮脂腺構造体の皮脂腺を含む要部の構造を示す概略図である。 本発明の一実施形態に係る観察方法において、皮脂腺構造体を支持体に固定する態様の一例を示す概略図である。 本発明の一実施形態に係る観察方法により、皮脂腺観察用の試料を観察した結果を示す図である。 本発明の一実施形態に係る観察方法により、皮脂腺観察用の試料を２つの時点で観察した結果を示す図である。図中、点線で囲まれた部分は、皮脂の位置を示す。 本発明の一実施形態に係る観察方法により、皮脂腺観察用の試料を２つの時点で観察した結果を示す図である。図中、点線で囲まれた部分は、核の位置を示す。 本発明の一実施形態に係る観察方法により、皮脂腺観察用の試料を２つの時点で観察した結果を示す図である。図中、点線で囲まれた部分は、核の位置を示す。
　本発明の一実施形態に関して以下に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。本発明は、以下に説明する各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態に関しても本発明の技術的範囲に含まれる。なお、本明細書において特記しない限り、数値範囲を表す「Ａ～Ｂ」は、「Ａ以上、Ｂ以下」を意味する。
　〔１．概要〕
　本発明の一実施形態に係る皮脂腺を観察する方法（以下、「本観察方法」と称する。）は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ（以下、説明の便宜上、「ステップ（Ｉ）」とも称する。）、および前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ（以下、説明の便宜上、「ステップ（ＩＩ）」とも称する。）、を含む、方法である。
　本発明者らは、皮脂腺の動態を観察する方法を検討するにあたり、まず、特許文献２に記載の方法（すなわち、汗腺の動態を観察する方法）を皮脂腺に適用できないかにつき、検討を行った。
　しかし、特許文献２に記載の方法を皮脂腺に適用する場合には、以下の問題が生じることを、本発明者らは独自に見出した。
　（ｉ）皮脂腺は、エクリン汗腺（以下、「汗腺」と称する。）とは異なり毛包付属器官である。それ故に、皮脂腺についてより生体に近い動態を観察するためには、皮脂腺単独ではなく、皮脂腺が表皮および毛包との接続を維持した状態（換言すれば、皮脂腺構造体の状態）で観察する必要がある。しかし、皮脂腺は、汗腺と比べて、外部からの刺激物質等に対する応答に時間を要する。そうすると、生体基質ゲルまたは生体基質を用いる場合には、時間の経過とともに、固定に用いる生体基質等へ細胞が遊走してしまい、その結果、皮脂腺構造体が本来の機能を損なう恐れがあること。
　（ｉｉ）皮脂腺構造体においては、皮脂腺は内部に油脂（皮脂）を多く含んでおり、また表皮は疎水性であることから、皮脂腺構造体の浮力は全体として高い状態にある。それ故、皮脂腺構造体の上にメンブレンを載せて固定することを試みても、十分には固定できず、皮脂腺構造体が浮遊してしまうこと。
　そこで、本発明者らは、さらに検討を進めた結果、皮脂腺構造体中の観察対象となる皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないような条件下で、皮脂腺構造体を支持体に固定することにより、固定した状態で皮脂腺の動態を観察できることを初めて見出した。また、本発明者らは、そのようにして観察された皮脂腺の動態が、生体における皮脂腺からの皮脂の産生を十分に再現していることを見出した。
　本観察方法によれば、固定した状態で皮脂腺の動態を観察でき、かつ、観察された皮脂腺の動態が生体における皮脂腺の動態と近いものであることから、生体に近い皮脂腺の動態を観察する方法を提供することができる。また、本観察方法によれば、生体に近い皮脂腺の動態を経時的に観察することもできる。
　〔２．観察方法〕
　本観察方法は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ、および前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ、を含む、方法である。
　本観察方法によれば、前記皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定するという操作が採られている。そのため、前記皮脂腺構造体において、真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去されていても、生体における皮脂腺からの皮脂の産生等に代表される生体における皮脂腺の動態が、観察しやすい状態で的確に再現される。したがって、本観察方法によれば、生体内により近い環境下で皮脂腺の動態を観察することができる。
　本明細書において「皮脂腺構造体」は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された構造体であり、皮脂腺に加えて、少なくとも毛包および表皮を含む。
　皮脂腺構造体は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去されている点を除き、生体内の皮膚組織と同様の構造を有するため、生体に近い状態での皮脂腺の動態の観察に適している。皮脂腺構造体において、皮脂腺は、毛包と表皮との接続を維持する機能を有する。
　皮脂腺構造体は、前記皮脂腺、表皮および毛包に加えて、真皮および皮下組織をさらに含んでいてもよい。
　皮脂腺構造体に含まれる皮脂腺の数は、特に限定されることなく、１個以上であればよい。より観察に好ましい皮脂腺が選択できるという観点から、皮脂腺構造体に含まれる観察可能な皮脂腺の数は、５個以上であることが好ましい。
　前記皮脂腺構造体について、図１に基づき、具体的に説明する。すなわち、図１に示されるように、皮脂腺構造体１は、毛２と、毛２を取り囲む毛包３と、表皮４と、皮脂腺５とを含有する。皮脂腺５は、皮脂腺５の最外層に局在する未分化の皮脂腺基底細胞６と、皮脂腺基底細胞６の局在位置よりも内側に局在し、脂肪滴（皮脂）を生成する細胞（以下、「分化皮脂腺細胞」とも称する。）７と、皮脂腺５の中心部に局在し、分化皮脂腺細胞７が皮脂をため込み膨張した成熟皮脂腺細胞８と、成熟皮脂腺細胞８が死滅して崩壊することで細胞内部より流出した皮脂９と、を含有している。皮脂腺５で生成された皮脂９は、毛包３を介して皮膚の外に放出される。前記皮脂腺構造体１における皮脂腺５と毛２と毛包３と表皮４とから構成される部分は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去されている点を除き、生体中の皮膚組織における皮脂腺と毛と毛包と表皮とから構成される部分と同じ構造を有する。
　なお、本明細書において、「皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの一部が除去された」とは、皮膚組織から真皮および皮下組織が除去され、皮脂腺を観察することができる程度に皮脂腺が露出していることを意味する。
　前記ステップ（Ｉ）では、皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する。前記皮脂腺構造体は、例えば、単離した皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部を除去すること等によって製造することができる。したがって、本観察方法は、前記ステップ（Ｉ）を行なう前に、単離された皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部を除去して前記皮脂腺構造体を得るステップをさらに含むことができる。
　前記皮脂腺構造体の製造方法としては、例えば、
　（ａ１）単離された皮膚組織から皮下組織の全部または一部を切除するステップ、および
　（ａ２）前記ステップ（ａ１）で得られた組織から膠原繊維等の繊維を除去して皮脂腺を露出させて前記皮脂腺構造体を得るステップを含む方法（以下、「製法Ａ」とも称する。）；
　（ｂ１）単離された皮膚組織から皮下組織の全部または一部を切除するステップ、
　（ｂ２）前記ステップ（ｂ１）で得られた組織をディスパーゼ、コラゲナーゼ、プロナーゼ等の表皮付属器官を真皮から解離させるための酵素と接触させるステップ、および
　（ｂ３）前記ステップ（ｂ２）で得られた組織から真皮を分離するステップを含む方法（以下、「製法Ｂ」とも称する。）等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。これらの皮脂腺構造体の製法のなかでは、皮脂腺構造体を容易に製造することができ、しかも生体における皮脂腺の動態を的確に観察することができることから、製法Ａおよび製法Ｂが好ましく、製法Ａがより好ましい。
　前記単離された皮膚組織としては、例えば、外科手術の際に生じた余剰皮膚等から取得され、生きている状態の皮膚組織等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。なお、本明細書において、「生きている状態の皮膚組織」とは、生体内における本来の生物学的活性および本来の動きと同様の生物学的活性および動きを示す状態の皮膚組織をいう。
　前記皮膚組織の供給源としては、例えば、ヒト等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。本観察方法をヒトにおける皮脂の産生時の皮脂腺の観察等に用いる場合、前記皮膚組織の供給源は、ヒトであることが好ましい。従来、ヒトの皮脂腺の動態を的確に観察することが困難であったことから、本観察方法は、ヒトの皮脂腺の観察に好適である。
　皮脂腺の動態としては、例えば、（ｉ）皮脂の産生の際の少なくとも２つの時点における皮脂腺を構成する細胞の形状を対比したときの細胞の形状の変化；（ｉｉ）皮脂の産生の際の少なくとも２つの時点における皮脂腺を構成する細胞の分化状態を対比したときの細胞の分化状態の変化；（ｉｉｉ）皮脂の産生の際の少なくとも２つの時点における分化した細胞の形状を対比したときの分化した細胞の形状の変化；（ｉｖ）皮脂の産生の際の少なくとも２つの時点における分化した細胞の局在部位の位置を対比したときの分化した細胞の局在部位の位置の変化等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　本観察方法のステップ（Ｉ）において、皮脂腺構造体は、該皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、支持体に固定される。
　本明細書において「皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しない」とは、皮脂腺が、生体基質を介した支持体との接触によって、生物学的な影響を受けていないことを意味する。生物学的な影響とは、例えば、皮脂腺中の細胞が生体基質や培地中へ遊走すること、皮脂腺構造体の一体性が破壊されること、他に皮脂腺細胞が分化すること等が挙げられる。したがって、皮脂腺と支持体とが物理的に接触していたとしても、皮脂腺が前記の生物学的な影響を受けていなければ、「皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しない」の定義の範囲に含まれる。
　前記支持体と生物学的に接触しない皮脂腺は、皮脂腺構造体中の観察対象となる皮脂腺であり、観察対象以外の皮脂腺であれば支持体と生物学的に接触していてもよい。一般的に、所定の大きさ（例えば、１ｃｍ角）の皮脂腺構造体中には、複数の皮脂腺が含まれている。当該皮脂腺構造体において、例えば、中央部の皮脂腺を観察対象とする場合、端部の皮脂腺は非観察対象となるため、観察対象の皮脂腺に影響を与えない範囲であれば支持体と生物学的に接触していてもかまわないことを意図する。
　皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺は、支持体に接触していないことが好ましいが、生物学的な接触以外の接触方法で接触していることが好ましい場合もある。例えば、観察機器（顕微鏡等）や支持体として使用される容器（皮脂腺構造体を培養するための培養器等）によっては、皮脂腺が支持体に接触している方が、観察がし易い、観察精度が良好である等の利点を有する場合がある。このような場合には、観察対象の皮脂腺は、生物学的な接触以外の接触方法で、支持体と接触していてもよい。
　前記支持体は、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、皮脂腺構造体を固定できる物体であり、かつ観察機器に適するものであれば、特に限定されない。支持体としては、例えば、シャーレ、ディッシュ、プレート、フラスコ、チャンバーおよびチューブ等の容器等が挙げられる。また、材質についても、一般的なプラスチック、ガラス等、種々のものを好適に利用可能である。皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないようにするという観点から、表面に生体基質がコーティングされていないものが好ましい。
　本発明の一実施形態において、前記ステップ（Ｉ）における皮脂腺構造体と支持体との固定は、生体基質を介して行われる。本明細書において「生体基質」は、皮脂腺構造体と支持体との固定を仲介する材料であるとの観点から、「固定部材」とも称する。前記生体基質は、皮脂腺構造体および支持体のいずれにも結合し、皮脂腺構造体と支持体とを固定できるものであれば特に限定されない。前記生体基質としては、例えば、コラーゲン、アガロース、基底膜マトリックス、ポリ－Ｄ－リジン等が挙げられる。したがって、本発明の一実施形態において、皮脂腺構造体は、コラーゲン、アガロース、基底膜マトリックス、およびポリ－Ｄ－リジンからなる群より選択される少なくとも１つによって、支持体に固定される。
　前記コラーゲンとしては、例えば、コラーゲン　タイプＩ－Ａ、コラーゲン　タイプＩ－Ｂ等のＩ型コラーゲン；ＩＩＩ型コラーゲン；ＩＶ型コラーゲン等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
　前記アガロースは、皮脂腺を構成する細胞が生存することができる温度を融点として有するアガロースであればよい。
　前記基底膜マトリックスは、構成必須成分として、ラミニン、コラーゲン　タイプＩＶ、ニドゲンおよびヘパラン硫酸プロテオグリカンを含んでいればよい。前記基底膜マトリックスとしては、例えば、マトリゲル基底膜マトリックス（コーニング社製）等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
　前記ポリ－Ｄ－リジンは、皮脂腺を構成する細胞を支持体に接着する程度の分子量を有するものであればよい。
　本発明の一実施形態において、前記ステップ（Ｉ）における皮脂腺構造体と支持体との固定は、皮脂腺構造体に含まれている、表皮、毛包、真皮、皮下組織、および観察対象以外の皮脂腺からなる群より選択される少なくとも１つが、前記生体基質を介して支持体と結合することにより行われる。
　本明細書において「皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する」とは、観察対象の皮脂腺が、生体基質を介した支持体との接触によって、生物学的な影響を受けない状態で、皮脂腺構造体が支持体に固定されることを意味する。固定された皮脂腺構造体は、観察中に支持体上を移動することがないため、観察に適している。
　本発明の一実施形態において、固定される皮脂腺構造体の形状およびサイズは特に限定されない。例えば、操作上の容易さの観点から、３～５ｍｍ角の四角形に調製された皮脂腺構造体が好ましい。
　支持体上での固定態様も特に限定されないが、皮脂腺構造体中の皮脂腺に培地が接触できるという観点から、皮脂腺構造体の全ての端部が支持体に固定されていることは望ましくない。すなわち、皮脂腺構造体の少なくとも１つの端部は、支持体に固定されていないことが好ましい。例えば、皮脂腺構造体が四角形の場合、４つの端部のうち、対向する１つの両端部（すなわち、２つの端部）が固定され得る。
　本明細書において「皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺」とは、皮脂腺構造体中に含まれる皮脂腺のうち、皮脂腺の動態を観察するために任意で選択された皮脂腺を意味する。
　観察対象の皮脂腺は、皮脂腺構造体の中から、支持体と生物学的に接触していない皮脂腺を適宜選択すればよい。例えば、皮脂腺構造体の端部に近い位置に存在する皮脂腺は生体基質と生物学的に接触している可能性が高いことから、皮脂腺構造体の中央部付近の皮脂腺を観察対象とすることが好ましい。
　本発明の別の実施形態において、皮脂腺構造体の上にメンブレン等の重石材を載せ、当該メンブレンと、支持体とを固定することにより、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように皮脂腺構造を支持体に固定することもできる。このとき、メンブレンは、例えば、前記生体基質を介して、支持体に固定できる。
　前記メンブレンは、皮脂腺構造体を通過させず、緩衝液、後述の被験物質等を通過させることができる孔径の孔を有するメンブレンであればよい。前記孔径は、皮脂腺の通過を抑制するという観点から、好ましくは５ｍｍ以下、より好ましくは１ｍｍ以下であり、後述の被験物質を通過させるという観点から、好ましくは０．１μｍ以上である。
　前記ステップ（Ｉ）において、支持体に固定された皮脂腺構造体は、培地を添加することにより、培地中で培養される。皮脂腺構造体は、培地中で培養されることにより、生存状態を維持することができる。その結果、より生体に近い状態で皮脂腺の動態を観察することが可能となる。
　前記培地は、皮脂腺構造体に含まれる未分化の皮脂腺基底細胞を成熟皮脂腺細胞に分化させるのに適した分化促進成分および細胞を増殖させる増殖成分を含む培地であればよく、特に限定されるものではない。前記培地は、慣用の基本培地に、前記分化促進成分および増殖成分を補った培地であってもよく、市販されている培地であってもよい。前記分化促進成分としては、例えば、ウシ胎児血清、脂肪酸、ペプチド、ホルモン等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。これらの分化促進成分は、単独で用いてもよく、２種類以上を併用してもよい。前記培地における前記分化促進成分の含有率は、前記培地の種類、前記分化促進成分の種類等によって異なるので一概に決定されるものではない。従い、前記培地の種類、前記分化促進成分の種類等に応じて適宜設定することが好ましい。前記増殖成分としては、例えば、アミノ酸、ビタミン、無機塩、糖類、細胞増殖促進因子等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記培地における前記増殖成分の含有率は、前記培地の種類、前記増殖成分の種類等によって異なるので一概に決定されるものではない。従い、前記培地の種類、前記増殖成分の種類等に応じて適宜設定することが好ましい。これらの増殖成分は、単独で用いてもよく、２種類以上を併用してもよい。前記基本培地としては、例えば、ダルベッコ改変培地とＦ－１２培地との混合培地等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　前記皮脂腺構造体の培養を行なう際の培養条件は、前記皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類、観察対象の皮脂腺の動態の種類等によって異なるので一概には決定することができない。従い、前記皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類、観察対象の皮脂腺の動態の種類等に応じて決定することが望ましい。前記培養条件は、例えば、培養温度、培養時間、培地のｐＨ、培養雰囲気における二酸化炭素濃度等を含む。
　前記皮膚組織の供給源がヒトである場合、培養温度は、生体における皮脂腺の状態を的確に再現する観点から、通常、好ましくは３５℃～３８℃、より好ましくは３６．５℃～３７．５℃である。また、前記皮膚組織の供給源がヒトである場合、培養時間は、培地中において、前記皮脂腺構造体における生理機能を良好な状態で維持する観点から、通常、好ましくは６～１６８時間、より好ましくは２４～４８時間である。さらに、前記皮膚組織の供給源がヒトである場合、培地のｐＨは、生体における皮脂腺の状態を的確に再現する観点から、通常、好ましくは６．８～７．６、より好ましくは７．０～７．４である。培養雰囲気における二酸化炭素濃度は、生体における皮脂腺の状態を的確に再現する観点から、通常、好ましくは４～１０体積％、より好ましくは５～７体積％である。
　続いて、前記ステップ（ＩＩ）では、前記ステップ（Ｉ）で得られた皮脂腺構造体を観察する。皮脂腺構造体の観察は、例えば、前記ステップ（Ｉ）の前に染色試薬によって染色された皮脂腺構造体を観察試料として用いたり、前記ステップ（Ｉ）の後に染色試薬によって染色された皮脂腺構造体を観察試料として用いたりして行うことができる。
　前記皮脂腺構造体の染色は、例えば、前記皮脂腺構造体と前記染色試薬とを接触させること等によって行なうことができる。前記染色試薬としては、例えば、マーカーに結合する結合物質と検出可能な物質との複合体を含む試薬、前記結合物質を含有し、前記検出可能な物質を含まない試薬等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。なお、本明細書において「マーカー」とは、皮脂腺構造体に含まれる組織、細胞等の存在の指標、細胞の分化度等の指標となる物質を意味する。
　前記結合物質は、本観察方法の用途等によって異なる。したがって、一概には決定することができないことから、皮脂腺の観察方法の用途等に応じて適宜決定することが好ましい。前記結合物質としては、例えば、前記マーカーに結合する抗体（以下、単に、「抗体」と称する。）またはその断片（以下、単に「抗体断片」と称する。）、前記マーカーに結合する化合物等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記抗体は、ポリクローナル抗体であってもよく、モノクローナル抗体であってもよい。前記抗体のなかでは、前記マーカーに対する特異性が高いことから、モノクローナル抗体が好ましい。前記抗体断片としては、例えば、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント、単鎖抗体等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記ポリクローナル抗体、前記モノクローナル抗体および前記抗体断片は、前記マーカーを抗原として用い、慣用の手法によって製造することができる。また、前記ポリクローナル抗体、前記モノクローナル抗体および前記抗体断片として、商業的に容易に入手可能なポリクローナル抗体、商業的に容易に入手可能なモノクローナル抗体および商業的に容易に入手可能な抗体断片を用いることができる。前記結合物質は、検出可能なシグナルを生じる物質であってもよく、当該シグナルを生じない物質であってもよい。
　前記検出可能な物質としては、例えば、蛍光物質、酵素等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記蛍光物質としては、例えば、フルオレセインイソチオシアネート、Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒシリーズの蛍光物質（例えば、インビトロジェン製、商品名：Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　６４７等）等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。また、前記酵素としては、例えば、ペルオキシダーゼ、アルカリホスフォターゼ等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。これらの検出可能な物質のなかでは、検出操作が容易であり、高い精度で検出対象物を検出することができることから、蛍光物質が好ましく、Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒシリーズの蛍光物質（例えば、インビトロジェン製、商品名：Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　６４７等）がより好ましい。
　なお、前記結合物質が抗体またはその抗体断片である場合、前記染色試薬は、必要に応じ、前記抗体またはその抗体断片に結合する標識結合物質をさらに含んでいてもよい。前記標識結合物質としては、例えば、前記結合物質に結合する第２の結合物質と標識物質との複合体等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記第２の結合物質としては、例えば、前記抗体を製造する際に免疫した動物が有する免疫グロブリンに対する抗体、当該免疫グロブリンの断片に対する抗体等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記標識物質としては、例えば、前記検出可能な物質等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　前記染色試薬の種類は、発明の皮脂腺の観察方法の用途等によって異なるので一概には決定することができない。従い、皮脂腺の観察方法の用途等に応じて適宜決定することが好ましい。前記染色試薬としては、例えば、前記未分化の皮脂腺基底細胞に対する染色試薬（以下、「未分化細胞染色試薬」とも称する。）、皮脂に対する染色試薬（以下、「皮脂染色試薬」とも称する。）、細胞核に対する染色試薬（以下、「核染色試薬」とも称する。）、分化細胞染色試薬等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　前記未分化細胞染色試薬は、未分化の皮脂腺基底細胞に特異的なマーカー（以下、「未分化マーカー」とも称する。）に結合する物質（以下、「未分化細胞結合物質」とも称する。）を含む。前記未分化細胞染色試薬は、未分化細胞結合物質と検出可能な物質との複合体を含む試薬であってもよく、前記未分化細胞結合物質自体が検出可能なシグナルを生じる物質である場合には、前記未分化細胞結合物質を含有し、前記検出可能な物質を含まない試薬であってもよい。前記未分化細胞マーカーとしては、例えば、ケラチン－５、ケラチン―７、ケラチン―１４、Ｂリンパ球誘導成熟タンパク質１（Ｂｌｉｍｐ１）、ロイシン－リッチリピート・イムノグロブリン様ドメインタンパク質１（Ｌｒｉｇ１）等が挙げられるが、特に限定されるものではない。
　前記核染色試薬は、核を構成する物質に結合する結合物質（以下、「核結合物質」とも称する。）を含む。前記核染色試薬は、核結合物質と検出可能な物質との複合体を含む試薬であってもよく、前記核結合物質自体が検出可能なシグナルを生じる物質である場合には、前記核結合物質を含有し、前記検出可能な物質を含まない試薬であってもよい。前記核を構成する物質としては、例えば、ＤＮＡ等の核酸等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記核結合物質は、細胞膜を透過する物質であればよい。前記核結合物質としては、例えば、Ｈｏｅｃｈｓｔ　３３３４２等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。なお、Ｈｏｅｃｈｓｔ　３３３４２は、検出可能な蛍光を生じる物質であることから、前記核染色試薬は、前記検出可能な物質を含有しない試薬であってもよい。
　前記皮脂染色試薬としては、例えば、皮脂に溶解する脂溶性色素等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。前記脂溶性色素としては、例えば、ナイルレッド、ナイルブルー、オイルレッドＯ、ズダンＩＩＩ、ズダンＩＶ、ズダンブラックＢ等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。なお、前記脂溶性色素は、皮脂に溶解して皮脂を染色することから、前記脂溶性色素を含む皮脂染色試薬は、前記検出可能な物質を含有しない試薬であってもよい。
　前記分化細胞染色試薬としては、例えば、未分化の皮脂腺基底細胞から分化した皮脂腺細胞に特異的なマーカー（以下、「分化マーカー」とも称する。）に結合する物質（以下、「分化細胞結合物質」とも称する。）を含む。前記分化細胞染色試薬は、分化細胞結合物質と検出可能な物質との複合体を含む試薬であってもよく、前記分化細胞結合物質自体が検出可能なシグナルを生じる物質である場合には、前記分化細胞結合物質を含有し、前記検出可能な物質を含まない試薬であってもよい。前記分化細胞マーカーとしては、例えば、ステアロイル－ＣｏＡ不飽和化酵素１（Ｓｃｄ－１）、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体γ（ＰＰＡＲγ）等が挙げられるが、特に限定されるものではない。
　前記染色試薬中における前記結合物質の含有率は、前記結合物質の種類、発明の皮脂腺の観察方法の用途等によって異なるので一概に決定されるものではない。従い、前記結合物質の種類、発明の皮脂腺の観察方法の用途等に応じて適宜決定することが好ましい。
　前記未分化細胞染色試薬に含まれる検出可能な物質、前記皮脂染色試薬に含まれる検出可能な物質および前記核染色試薬に含まれる検出可能な物質は、互いに識別可能な物質であることが好ましい。
　前記皮脂腺構造体と前記染色試薬との混合比および接触時間は、前記染色試薬の種類等によって異なるので一概に決定されるものではない。従い、前記染色試薬の種類等に応じて適宜設定することが好ましい。
　前記皮脂腺構造体と前記染色試薬との接触後、皮脂腺の動態をより的確に観察する観点から、染色された皮脂腺構造体を適切な洗浄液で洗浄することが好ましい。前記洗浄液としては、例えば、リン酸緩衝生理的食塩水、リン酸緩衝液等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　なお、前記染色試薬が抗体またはその抗体断片を含む場合、皮脂腺の動態をより的確に観察する観点から、前記染色された皮脂腺構造体に対し、ブロッキング剤を用いてブロッキング処理を施すことが好ましい。前記ブロッキング剤としては、例えば、アルブミンを含有するリン酸緩衝生理的食塩水溶液等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　前記染色された皮脂腺構造体を用いて皮脂腺の動態を観察する。皮脂腺の観察は、例えば、蛍光顕微鏡、共焦点レーザー顕微鏡等の光学顕微鏡等を用いて行なうことができる。具体的には、皮脂腺の観察は、例えば、染色された皮脂腺構造体をそのまま観察すること、染色された皮脂腺構造体における染色試薬に由来するシグナルを検出することによって行なうことができる。
　本発明の一実施形態において、皮脂腺構造体の観察は、皮脂腺構造体の毛穴／表皮側および皮脂腺側のいずれから行ってもよい。皮脂腺構造体の観察は、皮脂腺側から行うことが好ましく、例えば、図２で説明すると、支持体１２の位置する側（皮脂腺側）から皮脂腺構造体を観察することができる（すなわち、支持体１２の下側から観察できる。）。
　以上で説明したように、本観察方法によれば、皮脂腺からの皮脂の産生を的確に観察することができることから、皮脂産生調節物質のスクリーニング、皮脂産生調節物質の有効性の評価等に用いられることが期待される。
　〔３．皮脂腺観察用の試料〕
　本発明の一実施形態に係る皮脂腺観察用の試料（以下、「本試料」と称する。）は、皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体と、支持体と、固定部材と、を備え、前記皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、前記皮脂腺構造体が固定部材を介して支持体に固定されている。
　本試料について、模式的に示した図２を用いて説明する。本試料２０は、皮脂腺構造体１と支持体１２と生体基質（固定部材）１０とを備える。皮脂腺構造体１は、容器１３において培地１１中にて培養される。本図では、容器１３の底部が支持体１２として機能するが、これに限定されず、支持体１２は容器１３とは別部材であってもよい。皮脂腺構造体１は、毛２、表皮４、観察対象の皮脂腺５を備える。皮脂腺構造体１は、その端部の表皮４と支持体１２とを生体基質（固定部材）１０を介して、支持体１２に固定化されている。ここで、観察対象の皮脂腺５は、支持体１２と生物学的に接触しないように固定化されている。つまり、観察対象の皮脂腺５は、生体基質（固定部材）１０と接触していない。
　一般的に、皮脂腺構造体は、例えば、容器の培地の中に存在するため、生体基質で固定化しない場合、培地中に浮遊し、観察できない。これに対して、本試料２０は、皮脂腺構造体１中の皮脂腺５が生物学的に接触しないように、支持体１２に固定されている。特に、皮脂線５が生体基質（固定部材）１０とも接触していないため、皮脂腺５の細胞が遊走し、皮脂腺構造体が壊れることもない。したがって、本試料２０を用いると、生体に近い皮脂腺の動態を正確に観察することができる。
　本試料における皮脂腺構造体および支持体は、前記〔２．観察方法〕に記載したものと同じであるため詳細な説明は〔２．観察方法〕を援用する。また、本試料において、前記皮脂腺構造体と支持体とは、前記〔２．観察方法〕に記載したとおりの態様および方法により、固定されている。
　〔４．被験物質の評価方法〕
　本発明の一実施形態に係る被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価する方法（以下、「本評価方法」と称する。）は、皮脂腺観察用の試料を、被験物質と接触させる接触ステップ（以下、説明の便宜上、「ステップ（Ａ）」とも称する。）、および前記接触ステップにおける皮脂腺構造体を観察し、被験物質の皮脂産生調節作用を評価する評価ステップ（以下、説明の便宜上、「ステップ（Ｂ）」とも称する。）、を含む、方法である。なお、「被験物質と接触」とは、被験物質と皮脂腺構造体とが接触する態様であればよく、例えば、被験物質の存在下で皮脂腺構造体を培養する態様、被験物質を皮脂腺構造体に直接振りかける態様等、種々の方法を適用できる。以下では、被験物質を含む培養液中で皮脂腺構造体を培養する場合を例に挙げて説明する。
　本評価方法は、被験物質と接触させた状態で皮脂腺観察用の試料を観察するので、前記被験物質が有する皮脂産生調節作用を経時的に評価することができる。したがって、本評価方法によれば、被験物質が皮脂の産生を調節する物質であるかどうかを的確に評価することができる。前記皮脂産生調節作用には、皮脂産生を増加させる皮脂産生促進作用および皮脂産生を減少させる皮脂産生抑制作用が含まれる。
　前記ステップ（Ａ）では、皮脂腺観察用の試料を、被験物質の存在下で培養する。前記ステップ（Ａ）で用いられる皮脂腺観察用の試料および培地は、前記〔３．皮脂腺観察用の試料〕に記載の本試料および前記〔２．観察方法〕に記載の培地と同様である。前記ステップ（Ａ）における前記皮脂腺観察用の試料の培養は、前記〔２．観察方法〕に記載の皮脂腺構造体の培養の手法と同様の手法で行なうことができる。前記皮脂腺観察用の試料の培養条件は、評価内容、評価対象の被験物質の種類、前記皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類等によって異なるので一概には決定することができない。従い、評価内容、評価対象の被験物質の種類、前記皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類等に応じて決定することが望ましい。
　前記ステップ（Ｂ）では、前記ステップ（Ａ）における皮脂腺構造体を観察し、被験物質の皮脂産生調節作用を評価する。
　また、比較のため、皮脂腺観察用の試料を被験物質の非存在下で培養するステップ（Ｃ）を行ってもよい。前記ステップ（Ｃ）で用いられる培地は、前記ステップ（Ａ）で用いられる培地と同じ種類の培地である。前記ステップ（Ｃ）において、被験物質の非存在下での前記皮脂腺観察用の試料の培養は、例えば、前記ステップ（Ａ）で用いられる培地と同じ種類の培地に被験物質を添加して得られた被験物質含有培地を用いることを除き、前記〔２．観察方法〕に記載の皮脂腺構造体の培養の手法と同様の手法で行なうことができる。前記ステップ（Ｃ）における皮脂腺観察用の試料の培養条件は、被験物質を用いないことを除き、前記ステップ（Ａ）における皮脂腺観察用の試料の培養条件と同じである。
　本発明の一実施形態において、前記ステップ（Ａ）で得られた培養後の皮脂腺観察用の試料（Ａ）を観察し、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）における皮脂腺の動態と通常の皮脂腺構造体における皮脂腺の動態との違いに基づき、前記被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価することができる。この場合、コントロールは用いず、通常の動態と比較して評価することになる。
　また、本発明の他の一実施形態において、前記ステップ（Ａ）で得られた培養後の皮脂腺観察用の試料（Ａ）と前記ステップ（Ｃ）で得られた培養後の皮脂腺観察用の試料（Ｃ）とを観察し、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）における皮脂腺の動態と前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）における皮脂腺の動態との違いに基づき、前記被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価することができる。
　さらに、本発明の他の一実施形態において、前記ステップ（Ｃ）で得られた培養後の皮脂腺観察用の試料（Ｃ）を観察した後、前記試料（Ｃ）と同じ試料を用いて前記ステップ（Ａ）を行い、得られた試料（Ａ）を観察し、その後、前記ステップ（Ｃ）で得られた培養後の皮脂腺観察用の試料（Ｃ）における皮脂腺の動態と前記試料（Ａ）における皮脂腺の動態との違いに基づき、前記被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価することができる。
　なお、前記ステップ（Ｃ）を行う場合、前記ステップ（Ａ）およびステップ（Ｃ）を行なう順は、ステップ（Ａ）を行なった後にステップ（Ｃ）を行なう順であってもよく、ステップ（Ｃ）を行なった後にステップ（Ａ）を行なう順であってもよい。また、ステップ（Ａ）およびステップ（Ｃ）を同時に行なってもよい。
　前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）における皮脂腺の動態と、通常の皮脂腺構造体における皮脂腺の動態または前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）における皮脂腺の動態との違いとしては、（ｉ）被験物質の有無による皮脂腺の最外層における皮脂を内包する細胞の動態の違い；（ｉｉ）被験物質の有無による皮脂腺における未分化の皮脂腺基底細胞から成熟皮脂腺細胞への分化の速度の違い；（ｉｉｉ）被験物質の有無による皮脂腺の中心部付近に存在する崩壊した成熟皮脂腺細胞の動態の違い；（ｉｖ）被験物質の有無による皮脂腺の中心部付近に存在する皮脂量の変化の違い；（ｖ）被験物質の有無による分化マーカーの発現位置の変化の違い；（ｖｉ）被験物質の有無による分化マーカーの発現量の変化の違い等が挙げられるが、本発明は、かかる例示のみに限定されるものではない。
　前記被験物質が皮脂産生促進作用を有することの指標は、被験物質や皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類等によって異なるため、一概に決定することはできないが、例えば、以下の（１ａ）～（３ａ）の指標等が挙げられる。これらの指標は、単独で用いてもよく、２種類以上を併用してもよい。
　（１ａ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺の最外層における皮脂を内包する細胞の数に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺の最外層における皮脂を内包する細胞の数が多いこと、
　（２ａ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺における未分化の皮脂腺基底細胞から成熟皮脂腺細胞への分化の速度に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺における未分化の皮脂腺基底細胞から成熟皮脂腺細胞への分化の速度が大きいこと、および
　（３ａ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺の中心部付近に存在する崩壊した成熟皮脂腺細胞の数に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺の中心部付近に存在する崩壊した成熟皮脂腺細胞の数が多いこと。
　また、前記被験物質が皮脂産生抑制作用を有することの指標は、被験物質や皮脂腺構造体の製造に用いられる皮膚組織の供給源の種類等によって異なるため、一概に決定することはできないが、例えば、以下の（１ｂ）～（３ｂ）の指標等が挙げられる。これらの指標は、単独で用いてもよく、２種類以上を併用してもよい。
　（１ｂ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺の最外層における皮脂を内包する細胞の数に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺の最外層における皮脂を内包する細胞の数が少ないこと、
　（２ｂ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺における未分化の皮脂腺基底細胞から成熟皮脂腺細胞への分化の速度に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺における未分化の皮脂腺基底細胞から成熟皮脂腺細胞への分化の速度が小さいこと、および
　（３ｂ）前記皮脂腺観察用の試料（Ｃ）の皮脂腺の中心部付近に存在する崩壊した成熟皮脂腺細胞の数に比べて、前記皮脂腺観察用の試料（Ａ）の皮脂腺の中心部付近に存在する崩壊した成熟皮脂腺細胞の数が少ないこと。
　なお、皮脂腺観察用の試料（Ａ）および皮脂腺観察用の試料（Ｃ）は一例であり、上述した皮脂腺の動態の違い、被験物質が皮脂産生促進作用を有することの指標、被験物質が皮脂産生抑制作用を有することの指標は、本評価方法の他の実施形態にも援用される。
　以上説明したように、本評価方法によれば、前記被験物質が有する皮脂産生調節作用を的確に評価することができることから、皮脂産生調節物質のスクリーニング、皮脂産生調節物質の有効性の評価等に用いられることが期待される。前記皮脂産生調節物質は、例えば、顔、腋、頭皮等の皮膚用の化粧料に配合される皮脂産生抑制剤、皮脂産生促進剤等に用いられることが期待されるものである。
　すなわち、本発明の一態様は、以下の発明を包含する。
＜１＞皮脂腺を観察する方法であって、
　皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ、および
　前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ、
を含む、皮脂腺の観察方法。
＜２＞前記固定ステップにおいて、コラーゲン、アガロース、基底膜マトリックス、およびポリ－Ｄ－リジンからなる群より選択される少なくとも１つによって、皮脂腺構造体を、支持体に固定する、＜１＞に記載の皮脂腺の観察方法。
＜３＞前記固定ステップにおいて、皮脂腺構造体に含まれている、表皮、毛包、真皮、皮下組織、および観察対象以外の皮脂腺からなる群より選択される少なくとも１つと、支持体とを固定する、＜１＞または＜２＞に記載の皮脂腺の観察方法。
＜４＞皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体と、支持体と、固定部材と、を備え、
　前記皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、前記皮脂腺構造体が固定部材を介して支持体に固定された、皮脂腺観察用の試料。
＜５＞被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価する方法であって、
　＜４＞に記載の皮脂腺観察用の試料を、被験物質と接触させる接触ステップ、および
　前記接触ステップにおける皮脂腺構造体を観察し、被験物質の皮脂産生調節作用を評価する評価ステップ、を含む、被験物質の評価方法。
　本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。
　以下に実施例により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明は、かかる実施例のみに限定されるものではない。以下において、各略語の意味は、以下のとおりである。
　〔略語の説明〕
ＤＭＥＭ：ダルベッコ改変培地
ＦＢＳ：ウシ胎児血清
ＰＢＳ：リン酸緩衝生理食塩水
ＨＥＰＥＳ：４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジンエタンスルホン酸
　〔調製方法〕
　（１．混合培地）
　ＤＭＥＭとＦ－１２培地との混合培地（ＤＭＥＭ／Ｆ－１２培地、体積比１：１）に、ＦＢＳを、ＦＢＳの濃度が１０体積％となるように添加して、混合培地を得た。
　（２．染色試薬Ａ）
　核染色剤（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（株）製、商品名：ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２）を、核染色剤の濃度が１０μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳ溶液に添加して、染色試薬Ａを得た。
　（３．染色試薬Ｂ）
　脂肪染色試薬（和光純薬（株）製、商品名：ナイルレッド（Ｎｉｌｅ　Ｒｅｄ））を、その濃度が１０μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳ溶液に添加して、染色試薬Ｂを得た。
　（４．皮脂腺構造体の調製）
　実体顕微鏡下で、ハサミを用い、皮膚組織から皮下組織を除去した。つぎに、ハサミおよびピンセットを用いて、皮下組織除去後の皮膚組織中の真皮から膠原繊維を除去することにより、皮脂腺が露出した３～５ｍｍ角程度の四角形の皮脂腺構造体を得た。なお、皮脂腺構造体は、皮膚組織における皮脂腺と毛と毛包と表皮とを含有しているが、真皮および皮下組織を実質的に含有しておらず、皮脂腺が露出していた。
　（５．生体基質の調製）
　コラーゲン　タイプＩ－Ａ液（コラーゲン　タイプＩ－Ａの含有率：３質量％、新田ゼラチン（株）製）８００μＬと、１０×ＰＢＳ（組成：１３７０ｍＭ塩化ナトリウム、２７ｍＭ塩化カリウム、１００ｍＭリン酸水素二ナトリウム十二水和物および１８ｍＭリン酸二水素カリウム、ｐＨ７．４）１００μＬと、前記コラーゲン再構成緩衝液１００μＬ（組成：５０ｍＭ水酸化ナトリウム、２６０ｍＭ　ＨＥＰＥＳおよび２００ｍＭ炭酸水素ナトリウム、ｐＨ１０．０）とを混合することにより、コラーゲン含有液Ａを得た。
　〔実施例１〕
　（１）皮脂腺構造体中の核および皮脂の染色
　前記（４．皮脂腺構造体の調製）で得られた皮脂腺構造体を、染色試薬Ａ中、室温（２５℃）で３０分間インキュベートすることにより、皮脂腺の最外層に存在する皮脂腺基底細胞の核を染色した。染色後の皮脂腺構造体を、ＰＢＳですすぐことにより洗浄を行った。
　洗浄後の皮脂腺構造体を、染色試薬Ｂ中、室温（２５℃）で３０分間インキュベートすることにより、皮脂腺構造体に含まれる皮脂を染色した。染色後の皮脂腺構造体を、ＰＢＳですすぐことにより洗浄を行った。
　（２）観察用試料の調製
　核および皮脂を染色した皮脂腺構造体を空のチャンバー（ｉｂｉｄｉ製、商品名：μ－ｓｌｉｄｅ　８　ｗｅｌｌ）のウェルに入れた。次いで、前記ウェルにコラーゲン含有液Ａを滴下し、前記チャンバーを３７℃で５分間インキュベートすることにより、皮脂腺構造体の４つの端部のうち対向する両端部を固定した。その後、皮脂腺構造体が固定されたチャンバーのウェルに、混合培地０．５ｍＬを添加した。このとき、皮脂腺構造体のうち１対の対向する端部は未固定であるため、ここから混合培地が入り込み、皮脂腺と接触することができる。完成した観察用試料の概略図を図２に示す。
　（３）皮脂腺構造体の観察
　前記（２）で得られた観察用試料を、生物用共焦点レーザー走査型顕微鏡（オリンパス（株）製の商品名：ＦＶ１２００を搭載した倒立顕微鏡（オリンパス（株）製、商品名：ＩＸ－８３））を用いて観察した。観察は、チャンバーの底面側から行われた。
　１つの観察用試料（３～５ｍｍ角程度の皮脂腺構造体）中には、数十個程度の皮脂腺が存在する。端部に近い皮脂腺は、生体基質と接触していると推測されるため、真ん中あたりに存在する１つの皮脂腺を観察対象とした。観察は、皮脂腺構造体を、５％ＣＯ２下、３７℃で２４時間培養しながら経時的に行った。観察結果を図３～図６に示す。
　＜結果＞
　図３は、観察開始時点での皮脂腺の観察結果を示す。図４は、図３の拡大図であり、（ａ）は、観察開始時点の皮脂の状態、および（ｂ）は、２４時間経過後の皮脂の状態を示す。また、図５および図６は、それぞれ図３の拡大図であり、（ａ）は、開始時点の核の状態、および（ｂ）は、２４時間経過後の核の状態を示す。
　図３に示された結果から、観察された皮脂腺構造体は、皮脂の漏出が確認できないことから、皮脂腺基底細胞で覆われた皮脂腺であり、生体における皮脂腺本来の構造を維持していることが分かる。
　図４に示された結果から、時間の経過に伴い、小さかった皮脂が合一して大きくなっていることが分かる。また、図５および６に示された結果から、時間の経過に伴い、核が消失していることが分かる。したがって、本観察方法によると、皮脂腺中の皮脂および核の動態が継時的に観察できることが分かった。図４～６の結果より、時間の経過に伴い、合一して大きくなった皮脂が細胞を破裂させて（核の消滅）、細胞の外に放出されたことが推察される。
　以上の結果より、本観察方法によると、生体に近い皮脂腺の動態を経時的に観察できることが示された。
　１　皮脂腺構造体
　２　毛
　３　毛包
　４　表皮
　５　皮脂腺
　６　皮脂腺基底細胞
　７　分化皮脂腺細胞
　８　成熟皮脂腺細胞
　９　皮脂
　１０　生体基質（固定部材）
　１１　培地
　１２　支持体
　１３　容器
　１４　核
　２０　試料

 

Claims (5)

  1. 　皮脂腺を観察する方法であって、
    　皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体を、皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように支持体に固定する固定ステップ、および
    　前記固定ステップで得られた皮脂腺構造体を観察する観察ステップ、
    を含む、皮脂腺の観察方法。
  2. 　前記固定ステップにおいて、コラーゲン、アガロース、基底膜マトリックス、およびポリ－Ｄ－リジンからなる群より選択される少なくとも１つによって、皮脂腺構造体を、支持体に固定する、請求項１に記載の皮脂腺の観察方法。
  3. 　前記固定ステップにおいて、皮脂腺構造体に含まれている、表皮、毛包、真皮、皮下組織、および観察対象以外の皮脂腺からなる群より選択される少なくとも１つと、支持体とを固定する、請求項１または２に記載の皮脂腺の観察方法。
  4. 　皮膚組織から真皮および皮下組織それぞれの全部または一部が除去された皮脂腺構造体と、支持体と、固定部材と、を備え、
    　前記皮脂腺構造体中の観察対象の皮脂腺と支持体とが生物学的に接触しないように、前記皮脂腺構造体が固定部材を介して支持体に固定された、皮脂腺観察用の試料。
  5. 　被験物質が有する皮脂産生調節作用を評価する方法であって、
    　請求項４に記載の皮脂腺観察用の試料を、被験物質と接触させる接触ステップ、および
    　前記接触ステップにおける皮脂腺構造体を観察し、被験物質の皮脂産生調節作用を評価する評価ステップ、を含む、被験物質の評価方法。
PCT/JP2019/034898 2018-10-17 2019-09-05 皮脂腺の観察方法およびその利用 WO2020079981A1 (ja)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2020504739A JP6692593B1 (ja) 2018-10-17 2019-09-05 皮脂腺の観察方法およびその利用
EP19874597.8A EP3869194B1 (en) 2018-10-17 2019-09-05 Method for observing sebaceous gland and utilization thereof
US16/769,719 US11047849B2 (en) 2018-10-17 2019-09-05 Method for observing sebaceous gland and use thereof

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2018-196079 2018-10-17
JP2018196079 2018-10-17

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2020079981A1 true WO2020079981A1 (ja) 2020-04-23

Family

ID=70284516

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2019/034898 WO2020079981A1 (ja) 2018-10-17 2019-09-05 皮脂腺の観察方法およびその利用

Country Status (4)

Country Link
US (1) US11047849B2 (ja)
EP (1) EP3869194B1 (ja)
JP (1) JP6692593B1 (ja)
WO (1) WO2020079981A1 (ja)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05268949A (ja) * 1992-03-30 1993-10-19 Nippon Zeon Co Ltd 皮脂腺細胞培養法
JP2011523548A (ja) * 2008-05-07 2011-08-18 ガルデルマ・リサーチ・アンド・デヴェロップメント ざ瘡、脂漏性皮膚炎、または皮脂分泌過多の治療におけるアセチルＣｏＡアシルトランスフェラーゼ１またはアセチルＣｏＡアシルトランスフェラーゼ２の調節剤
JP2013032331A (ja) 2011-07-06 2013-02-14 Kose Corp 脂質産生抑制剤、皮脂産生抑制剤およびトリアシルグリセロール産生抑制剤
JP2015530122A (ja) * 2012-10-05 2015-10-15 チルドレンズ ホスピタル メディカル センター 脂腺細胞の培養及び使用方法
WO2017221870A1 (ja) * 2016-06-21 2017-12-28 株式会社オーガンテクノロジーズ 毛包、皮脂腺、および毛穴を有する人工皮膚の製造方法
WO2018016501A1 (ja) 2016-07-19 2018-01-25 株式会社マンダム 汗腺の動態の観察方法
WO2018114784A1 (en) * 2016-12-22 2018-06-28 L'oreal Model of reconstructed sebocyte epithelium differentiated from primary human sebocytes

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5514555A (en) * 1993-03-12 1996-05-07 Center For Blood Research, Inc. Assays and therapeutic methods based on lymphocyte chemoattractants
TW200734462A (en) * 2006-03-08 2007-09-16 In Motion Invest Ltd Regulating stem cells
WO2008056779A1 (fr) * 2006-11-09 2008-05-15 Japan As Represented By The President Of International Medical Center Of Japan Procédé destiné à la culture et au passage d'une cellule souche embryonnaire de primate, et procédé destiné à induire la différenciation de la cellule souche embryonnaire
KR101204894B1 (ko) * 2008-07-14 2012-11-26 (주)마리아 바이오텍 줄기세포의 외배엽성 세포로의 분화 방법
EP2349286A4 (en) * 2008-10-31 2012-07-04 Univ Columbia PROCESS FOR THE APCDD1-MEDIATED REGULATION OF HAIR GROWTH AND PIGMENTATION AND MUTANTS THEREOF
CN102911912B (zh) * 2011-08-01 2014-12-31 清华大学 培养基体及使用该培养基体的神经移植体
EP2872178A1 (en) * 2012-07-11 2015-05-20 Dermira, Inc. Pharmaceutical compositions for topical delivery of photosensitizers and uses thereof
EP2885423B1 (en) * 2012-08-15 2017-09-27 The Procter and Gamble Company Systems for identifying and evaluating skin-active agents effective for treating an array of skin disorders
DE102013015560A1 (de) * 2013-09-20 2015-03-26 Cutech Srl. Ex vivo Kulturen auf Basis humaner Talgdrüsen und deren Verwendung als Screening Werkzeug
CN107267383A (zh) * 2013-12-18 2017-10-20 东洋制罐集团控股株式会社 培养容器的制造方法和固相化装置
US10959997B2 (en) * 2013-12-27 2021-03-30 Kyoto Prefectural Public University Corporation Combined agent for cell therapy of corneal endothelial cell
DK3277799T3 (en) * 2015-04-03 2020-12-14 Propagenix Inc Ex vivo proliferation af epithelceller

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH05268949A (ja) * 1992-03-30 1993-10-19 Nippon Zeon Co Ltd 皮脂腺細胞培養法
JP2011523548A (ja) * 2008-05-07 2011-08-18 ガルデルマ・リサーチ・アンド・デヴェロップメント ざ瘡、脂漏性皮膚炎、または皮脂分泌過多の治療におけるアセチルＣｏＡアシルトランスフェラーゼ１またはアセチルＣｏＡアシルトランスフェラーゼ２の調節剤
JP2013032331A (ja) 2011-07-06 2013-02-14 Kose Corp 脂質産生抑制剤、皮脂産生抑制剤およびトリアシルグリセロール産生抑制剤
JP2015530122A (ja) * 2012-10-05 2015-10-15 チルドレンズ ホスピタル メディカル センター 脂腺細胞の培養及び使用方法
WO2017221870A1 (ja) * 2016-06-21 2017-12-28 株式会社オーガンテクノロジーズ 毛包、皮脂腺、および毛穴を有する人工皮膚の製造方法
WO2018016501A1 (ja) 2016-07-19 2018-01-25 株式会社マンダム 汗腺の動態の観察方法
WO2018114784A1 (en) * 2016-12-22 2018-06-28 L'oreal Model of reconstructed sebocyte epithelium differentiated from primary human sebocytes

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP3869194A4

Also Published As

Publication number Publication date
EP3869194A4 (en) 2022-08-17
JP6692593B1 (ja) 2020-05-13
EP3869194B1 (en) 2024-01-10
EP3869194A1 (en) 2021-08-25
JPWO2020079981A1 (ja) 2021-02-15
US20200371090A1 (en) 2020-11-26
US11047849B2 (en) 2021-06-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1896572B1 (en) Method of producing organotypic cell cultures
Staton et al. A critical analysis of current in vitro and in vivo angiogenesis assays
JP2950519B2 (ja) 皮膚の未変性状態組織培養法
JP6817610B2 (ja) 三次元培養表皮モデル及びその製造方法、ならびに三次元培養表皮モデルの使用方法
Brey et al. Three-dimensional, quantitative analysis of desmin and smooth muscle alpha actin expression during angiogenesis
JP6692593B1 (ja) 皮脂腺の観察方法およびその利用
JP6276487B1 (ja) 汗腺の動態の観察方法
Khoshyomn et al. Four-dimensional analysis of human brain tumor spheroid invasion into fetal rat brain aggregates using confocal scanning laser microscopy
Yang et al. An improved method for the isolation and culture of rat epidermal stem cells
Pozzobon et al. Alveolar rhabdomyosarcoma decellularization
Epperlein et al. Immunohistochemical demonstration of hyaluronan and its possible involvement in axolotl neural crest cell migration
KR20210119210A (ko) 오가노이드 투명화 키트, 이를 이용한 오가노이드 투명화 방법 및 3차원 이미지화를 위한 면역염색 방법
JP6529691B2 (ja) 皮脂腺の観察方法
Nicosia et al. Rat aortic ring assay of angiogenesis
Ferkowicz et al. Whole embryo imaging of hematopoietic cell emergence and migration
Liu et al. Development and evaluation of a tissue-engineered fibrin-based canine mitral valve three-dimensional cell culture system
JP7296785B2 (ja) アポクリン汗腺の動態の観察方法、および被験物質の評価方法
Hubka et al. Dissociative and nondissociative models for culture of human eccrine glands for toxicology testing and tissue engineering applications
US6399380B1 (en) Native-state histoculturing skin extracellular support
Juliar Proteolytic and Mechanical Matrix Remodeling During Capillary Morphogenesis
JP2021013396A (ja) 三次元培養表皮モデル及びその製造方法、ならびに三次元培養表皮モデルの使用方法
JP2021132624A (ja) 皮脂腺細胞における皮脂分泌の観察方法、ならびに皮脂分泌制御物質のスクリーニング方法およびその用に供するキット
WO2023059601A1 (en) Methods and compositions relating to 3-d cultures
Jaafar The Effect of Thymosin Beta 4 on Cell Mechanics and Motility
Schulz Inaugural-Dissertation zur Erlangung der Doktorwürde der Naturwissenschaftlich-Mathematischen Gesamtfakultät

Legal Events

Date Code Title Description
ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2020504739

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 19874597

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019874597

Country of ref document: EP

Effective date: 20210517