WO2017110746A1 - ゼラチン粒子、ゼラチン粒子の製造方法、ゼラチン粒子内包細胞、およびゼラチン粒子内包細胞の製造方法 - Google Patents

ゼラチン粒子、ゼラチン粒子の製造方法、ゼラチン粒子内包細胞、およびゼラチン粒子内包細胞の製造方法 Download PDF

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田畑　泰彦
奈津実 平山
智惠 乾
前澤　明弘
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コニカミノルタ株式会社
田畑　泰彦
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    • B82Y5/00—Nanobiotechnology or nanomedicine, e.g. protein engineering or drug delivery

Definitions

  • the present invention relates to gelatin particles, a method for producing gelatin particles, gelatin particle-encapsulated cells, and a method for producing gelatin particle-encapsulated cells.
  • Gelatin is highly biocompatible and is a substance that is easily broken down and absorbed in the body. For this reason, gelatin is sometimes used as a capsule containing foods and pharmaceuticals.
  • Patent Document 1 the particle size of dried particles before swelling consisting of thermally crosslinked gelatin having a jelly strength of 80 to 120 g is 20 to 1600 ⁇ m, and the particle size of dried particles after swelling is 50 to 2000 ⁇ m. Swelled gelatin particles are described. According to Patent Document 1, the swollen gelatin particles are excellent in shape retention and are not easily crushed even when deformed due to external stress, so that they are suitable for administration into a blood vessel using a microcatheter or an injection needle. It is said that Patent Document 1 describes that the time until gelatin particles are completely dissolved can be adjusted by self-crosslinking the gelatin constituting the gelatin particles by heating.
  • Patent Document 2 describes gelatin particles consisting essentially of an aqueous gelatin gel, having an average diameter of 350 nm or less and a small size distribution width. According to Patent Document 2, this gelatin nanoparticle can selectively transport and release the active substance carried thereon, and is therefore suitable for target transport of the active substance in the body. Patent Document 2 describes that the degradation behavior of gelatin particles can be controlled by chemically crosslinking gelatin constituting the gelatin particles with a crosslinking agent such as glutaraldehyde.
  • a crosslinking agent such as glutaraldehyde.
  • Patent Document 1 and Patent Document 2 are considered to be suitably used for so-called drug delivery system (DDS) applications that are administered inside blood vessels or organs to transport and release reagents and the like. .
  • DDS drug delivery system
  • An electroporation method and a microinjection method can be considered as a method for introducing gelatin particles carrying a reagent or the like inside the cell.
  • these methods change the shape of the cell membrane and introduce a reagent or the like into the cell membrane, the cell membrane may be partially destroyed to reduce the cell activity.
  • the reagent or the like is taken up by the cell's own activity.
  • the gelatin particles carrying the reagent or the like are also taken up by the cell's own activity. It is desirable to be easy.
  • the gelatin particles described in Patent Document 1 have been difficult to be taken into cells by their own activities.
  • the gelatin particles have the ability to gradually release the supported reagents and the like in the cells by being decomposed and dissolved over a long period of time in the cells.
  • the time during which gelatin particles are decomposed and dissolved in a living body can be adjusted by crosslinking gelatin constituting the gelatin particles.
  • the crosslinking agent used for crosslinking gelatin in Patent Document 2 is often toxic to cells. Therefore, when the crosslinked gelatin particles described in Patent Document 2 are introduced into the cells, the cell activity may be lowered by the crosslinking agent released by the dissolution of the gelatin particles.
  • the present invention has been made in view of the above problems, and is a gelatin particle that is crosslinked without using a crosslinking agent and is easily taken up by the activity of the cell itself, and a method for producing such a gelatin particle It is an object of the present invention to provide a cell having such gelatin particles and a method for producing a cell having such gelatin particles.
  • the present invention relates to the following gelatin particles, a method for producing gelatin particles, cells, and a method for producing cells.
  • Gelatin particles having an average particle size of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less, and the gelatin constituting the particles is self-crosslinked.
  • the peak intensity ratio between COOH and CONH in the spectrum obtained by measurement with a Fourier transform infrared spectrophotometer (FT-IR) is 0.46 or more and 1.0 or less, [1] or [1] Gelatin particles according to [2].
  • FT-IR Fourier transform infrared spectrophotometer
  • Liquid droplets containing molten gelatin are discharged into a heating tube or drying chamber atmosphere having a temperature difference of 235 ° C. or less from the droplets and dried to form gelatin in the form of particles.
  • a method for producing gelatin particles comprising: a step; and a step of crosslinking the gelatin formed into the particles.
  • gelatin particles cross-linked without using a cross-linking agent which are easily taken up by the cells themselves, a method for producing such gelatin particles, cells having such gelatin particles, and A method for producing cells having such gelatin particles is provided.
  • the present inventors have intensively studied the conditions of gelatin particles that are easily taken into cells by the cells themselves. As a result, the present inventors have found that gelatin particles having a particle diameter of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less and self-crosslinking of the gelatin constituting the particles are taken into the cells by their own activities. As a result, the present invention was completed.
  • the present embodiment relates to gelatin particles and a method for producing gelatin particles.
  • Gelatin Particles Gelatin particles according to this embodiment are gelatin particles having a particle diameter of 5.0 ⁇ m or less and self-crosslinking of gelatin constituting the particles. Since the gelatin particles having the above-described structure have a feature that they are easily taken up by cells as described later, they are also referred to as “easy-uptake gelatin particles” in the present specification.
  • the easy-uptake gelatin particles may be a single particle or an aggregate composed of a plurality of gelatin particles.
  • the particle diameter, long diameter and short diameter of the gelatin particles mean the particle diameter, long diameter and short diameter of the gelatin particles when dried after standing in the atmosphere at 80 ° C. for 24 hours.
  • the short diameter and long diameter of the easy-uptake gelatin particles can be values obtained by analyzing an image taken with a scanning electron microscope (SEM).
  • SEM scanning electron microscope
  • the gelatin particles after the drying treatment for example, 20 gelatin particles
  • the major axis, the minor axis, the particle diameter, and the aspect ratio can be added and averaged.
  • the particle size of the easy-uptake gelatin particles is from 0.010 ⁇ m to 5.0 ⁇ m.
  • Gelatin particles having a particle size of 5.0 ⁇ m or less are likely to be taken into cells by their own activities. This is presumably because when gelatin is self-crosslinked by heating or the like, heat easily penetrates into the inside of the gelatin particles, and gelatin is not easily modified.
  • gelatin particles having a particle diameter exceeding 5.0 ⁇ m are self-crosslinked by heating or the like, the film thickness of the gelatin is large.
  • Gelatin located near the surface is denatured.
  • Gelatin particles in which gelatin in the vicinity of the surface is denatured are easily recognized as foreign substances by the cells, and are not easily taken up into the cells by their own activities.
  • the particle diameter of the easy-uptake gelatin particles is preferably 2.0 ⁇ m or less, and more preferably 1.8 ⁇ m or less.
  • gelatin particles having a particle size of 0.010 ⁇ m or more can easily carry a reagent or the like in the particles and can easily self-crosslink.
  • the particle diameter of the gelatin particles is preferably 0.010 ⁇ m or more, and preferably 0.020 ⁇ m or more.
  • the particle diameter of the easy-uptake gelatin particles can be a value obtained by adding and averaging the long and short diameters of the gelatin particles.
  • the aspect ratio of the easy-uptake gelatin particles is preferably 1.0 or more and 1.4 or less.
  • the gelatin particles tend to maintain a more spherical shape even after swelling in water, and in a solution containing gelatin particles and cells, the gelatin particles and cells have a more uniform shape and It is considered that the difference in ease of taking in between gelatin particles is unlikely to occur because it becomes easy to contact at a contact surface of a size. Therefore, it is considered that the easy-uptake gelatin particles having the above aspect ratio can more easily control the amount of gelatin particles taken into cells and the amount of cells taken up with gelatin particles.
  • the aspect ratio of the easy-uptake gelatin particles can be a value obtained by dividing the major axis of the gelatin particles by the minor axis of the gelatin particles.
  • the easy-uptake gelatin particles are particles whose main component is gelatin. Specifically, when analyzed by an amino acid measuring apparatus, 300 or more glycines are included in 1000 amino acid residues, alanine, Particles containing both proline.
  • the gelatin constituting the easy-uptake gelatin particles only needs to be able to form particles, and any known gelatin obtained by denaturing collagen derived from cow bone, cow skin, pig skin, pig tendon, fish scale, fish meat, etc. Gelatin may be used. Gelatin has been used for food and medical use for a long time, and even if it is taken into the body, it hardly causes harm to the human body.
  • gelatin has the advantage that it does not need to be removed from the living body because it disperses and disappears in the living body.
  • the easy-uptake gelatin particles may contain components other than gelatin as long as the gelatin particles can be taken into cells.
  • the amount of components other than the gelatin is in a range where the harm to the human body when ingested into the body can be ignored.
  • components other than the said gelatin consist of a substance which does not accumulate
  • the weight average molecular weight of the gelatin constituting the easy-uptake gelatin particles is preferably 1000 or more and 100,000 or less from the viewpoint of easily forming gelatin particles that satisfy the conditions of the particle size and the degree of swelling.
  • the said weight average molecular weight can be made into the value measured according to the Pagii method 10th edition (2006), for example.
  • the gelatin constituting the easy-uptake gelatin particles is self-crosslinked.
  • Examples of the self-crosslinking include crosslinking by heating or irradiation with an electron beam or ultraviolet rays.
  • the above-mentioned easy-uptake gelatin particles having a particle size of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less can sufficiently crosslink the gelatin inside the particles, and thus can be improved from the sustained release property.
  • self-crosslinking can be formed in gelatin while suppressing gelatin modification on the particle surface, it is possible to further increase the ease of incorporation of self-crosslinked gelatin particles by the activity of cells themselves.
  • the gelatin constituting the gelatin particles is self-crosslinked, and the horizontal axis represents the wave number obtained by measuring the gelatin particles with a Fourier transform infrared spectrophotometer (FT-IR). It means that the peak intensity ratio (COOH peak intensity / CONH peak intensity) of COOH and CONH in the spectrum in which the absorbance is plotted on the vertical axis is 0.46 or more.
  • the peak intensity ratio of non-crosslinked gelatin particles is included in the range of 0.40 to 0.44.
  • gelatin self-crosslinks a large amount of COOH is produced, so that the peak intensity ratio is increased to 0.46 or more.
  • Reaction (1) —COOH + —NH 2 ⁇ —CONH + H 2 O
  • Reaction (2) Formation of —COOH by Oxidation of Constituent Amino Acid Side Chain
  • Reaction (1) COOH groups are consumed and CONH groups are generated, so that the peak intensity ratio becomes small.
  • reaction rate of reaction (2) is faster than that of reaction (1), the production of —COOH exceeds the consumption of —COOH, resulting in an increase in the peak intensity ratio.
  • COOH in the spectrum obtained by measuring easy-uptake gelatin particles by FT-IR and The peak intensity ratio with CONH is preferably 0.46 or more and 1.0 or less. Within this range, it is considered that the uptake efficiency of the easy-uptake gelatin particles by the cells is improved, and the easy-uptake gelatin particles can exhibit excellent release properties in the cells.
  • the peak intensity ratio is more preferably 0.46 or more and 0.50 or less.
  • the easy-uptake gelatin particles are glutaraldehyde, 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride, 1-cyclohexyl-3- ( It is preferable that the content of components having a low molecular weight derived from a water-soluble carbodiimide such as 2-morpholinoethyl) carbodiimide-meth-p-toluenesulfonate, a bisepoxy compound, formalin and the like is small.
  • the easy-uptake gelatin particles may carry a reagent or the like.
  • the gelatin particles carrying a reagent or the like means that the reagents or the like are present on the surface or inside of the gelatin particles. From the viewpoint of keeping the reagent or the like in the cell for a longer time, the reagent or the like is preferably present in the easy-uptake gelatin particles.
  • reagents and the like include reagents used for purposes such as testing of biological activity, measurement of in-vivo substances, and quantification of in-vivo substances, and drugs.
  • examples of the reagent include a contrast agent.
  • contrast agent examples include a magnetic substance used as a contrast agent for MRI.
  • contrast agents for MRI include contrast agents that include gadolinium (Gd) and iron (such as Fe 3 O 4 and ⁇ -Fe 2 O 3 ).
  • the drug may be any drug that can carry gelatin particles.
  • agents include proteins with pharmaceutical activity, plasmids, aptamers, antisense nucleic acids, ribozymes, nucleic acids used for pharmaceutical purposes including tRNA, snRNA, siRNA, shRNA, ncRNA and condensed DNA, and pharmaceutical uses.
  • the antigens used in are included.
  • Examples of the protein having the pharmaceutical activity include steroids, nonsteroidal anti-inflammatory drugs (NSAIDs), vitamin A (retinoids), vitamin D3 and vitamin D3 analogs, antibiotics, antiviral drugs, and antibacterial drugs. Is included.
  • NSAIDs nonsteroidal anti-inflammatory drugs
  • vitamin A retinoids
  • vitamin D3 and vitamin D3 analogs antibiotics, antiviral drugs, and antibacterial drugs. Is included.
  • the above-described easy-uptake gelatin particles can be produced by a known method in which gelatin is formed into particles and then self-crosslinked.
  • a method for forming gelatin into particles a method of drying by discharging droplets of a liquid containing molten gelatin (hereinafter also simply referred to as “gelatin solution”) into the atmosphere of a heating tube or a drying chamber.
  • gelatin solution a liquid containing molten gelatin
  • In-air dripping method a method in which droplets of gelatin solution are discharged and dispersed in a hydrophobic solvent
  • in-liquid dripping method a method in which gelatin solution is emulsified to disperse fine droplets containing gelatin (liquid) Medium dispersion method.
  • the air drop method include an ink jet method and a spray dry method.
  • the liquid dispersion method include an emulsion method and a coacervation method. From the viewpoint of making the particle diameter of the manufactured gelatin particles more uniform and reducing the aspect ratio, the air drop method is preferable, and the ink jet method is more preferable.
  • the particle diameter of the gelatin particles can be made more uniform.
  • a gelatin solution droplet can be discharged from an ink jet nozzle provided in a heated heating tube and collected by a filter provided in the same heating tube.
  • the heating tube is heated by passing hot air through the heating tube in the same direction as the droplet dropping direction (vertical direction from top to bottom). It is preferable to carry out.
  • the inside of the drying chamber in which the gelatin solution is sprayed from an atomizer or a nozzle may be heated.
  • the temperature difference between the temperature of the atmosphere in the heating tube or the drying chamber and the gelatin solution to be dropped is preferably 235 ° C. or less, and the gelatin particles are efficiently and stably formed.
  • the temperature is 20 ° C. or higher and 200 ° C. or lower, more preferably 20 ° C. or higher and 100 ° C. or lower. It is desirable that the temperature be 80 ° C. or higher.
  • the temperature of the droplets is 15 ° C. or higher and 80 ° C. or lower, more preferably 20 ° C. or higher and 50 ° C. or lower.
  • the atmospheric temperature in the heating tube or the drying chamber is 40 ° C. or higher and 250 ° C. or lower, more preferably 40 ° C. It is good to set it as 150 degreeC or more.
  • the gelatin concentration contained in the gelatin solution is 1.00 ⁇ 10 ⁇ 8 vol% or more and 60 vol. % Or less, more preferably 1.00 ⁇ 10 ⁇ 7 volume% or more and 50 volume% or less, further preferably 1.00 ⁇ 10 ⁇ 7 volume% or more and 20 volume% or less.
  • Examples of the method of self-crosslinking gelatin include a method of heating gelatin particles and a method of irradiating the gelatin particles with an electron beam or ultraviolet rays.
  • the irradiation of electron beam or ultraviolet rays causes both reactions of gelatin cross-linking and decomposition, and it is difficult to control the degree of cross-linking because which one has priority depends largely on irradiation conditions such as atmosphere and temperature. Therefore, in order to produce gelatin particles having a crosslinking degree such that the peak intensity ratio between COOH and CONH is 0.46 or more and 1.0 or less, crosslinking by heating is preferable because the degree of crosslinking is relatively easy to control. .
  • gelatin particles having a particle size of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less are 60 ° C. or more and 250 ° C. or less, preferably 100 ° C. or more and 200 ° C. or less. A method of heating for 5 hours or more and 100 hours or less is included.
  • an acceleration voltage of 100 kV to 3 MV and an irradiation dose of 2 kGy or more are applied to gelatin particles having a particle diameter of 0.010 ⁇ m to 5.0 ⁇ m.
  • a method of irradiating an electron beam as 3000 kGy is included.
  • An example of a method for self-crosslinking gelatin by irradiating gelatin particles with ultraviolet rays is as follows. Gelatin particles having a particle diameter of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less are irradiated with ultraviolet rays having a wavelength of 250 nm or more and 260 nm or less of 1 J / cm 2 or more. A method of irradiating with an integrated illuminance of 6 J / cm 2 or less is included.
  • Cell This embodiment relates to a cell having easy-uptake gelatin particles inside a cell membrane, and a method for producing such a cell.
  • the cell according to the present embodiment (hereinafter also simply referred to as “gelatin particle-encapsulating cell”) is a cell having an easily-uptakeable gelatin particle inside the cell membrane.
  • the phrase “having gelatin particles inside the cell membrane” means that the gelatin particles are confirmed inside the cell membrane in an image obtained by imaging cells with a TEM.
  • the gelatin particles containing the contrast agent are taken into the cells by staining the contrast agent and observing under a microscope. You can check whether or not.
  • the gelatin particles are fluorescently labeled in advance, and it is confirmed whether or not the fluorescently labeled gelatin particles are taken into the cells using a confocal microscope. be able to.
  • Fluorescent labeling of gelatin particles is, for example, a solution labeled with fluorescein isothiocyanate (FITC) (for example, a 10 mM acetic acid solution of FITC-collagen manufactured by Cosmo Bio), 0.4 M sodium chloride, 0.04% (W / V )
  • FITC-gelatin prepared as a substrate by mixing equal amounts of sodium azide, 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) containing 10 mM calcium chloride, followed by heat treatment at 60 ° C. for 30 minutes Can do.
  • the easy-uptake gelatin particles contained in the cells carry a contrast agent, in particular, a contrast agent for MRI.
  • a contrast agent for MRI.
  • Such a cell can be examined non-destructively by observing the presence or absence of a contrast agent in the cell after it is produced by a method to be taken up by the cell's own activity, which will be described later.
  • Cells that can contain gelatin particles inside the cell membrane include bone marrow, heart, lung, liver, kidney, pancreas, spleen, intestine, small intestine, heart valve, skin, blood vessel, cornea, eyeball, dura mater, bone, trachea and ear Cells derived from biological samples or specimens extracted from various organs including small bones, commercially available cell lines, and skin stem cells, epidermal keratinized stem cells, retinal stem cells, retinal epithelial stem cells, cartilage stem cells, hair follicle stem cells, muscle stem cells, Stem cells including osteoprogenitor cells, adipose precursor cells, hematopoietic stem cells, neural stem cells, hepatic stem cells, pancreatic stem cells, ectodermal stem cells, mesodermal stem cells, endoderm stem cells, mesenchymal stem cells, ES cells and iPS cells, and these Well-known cells including cells differentiated from the stem cells can be used.
  • cells transplanted to patients in regenerative medicine especially stem cells or cells differentiated from stem cells, have easy-to-uptake gelatin particles carrying a contrast agent, particularly a contrast agent for MRI.
  • a contrast agent for MRI By observing the contrast medium at the transplant site after transplantation into the patient, it is possible to observe whether the gelatin particle-encapsulated cells have settled at the transplant site without re-operation. Therefore, these cells, which contain gelatin particles carrying a contrast medium for MRI, reduce the physical, mental, financial and time burdens of patients undergoing regenerative medicine treatment, It is thought that the quality (QOL) can be improved.
  • Gelatin particle-encapsulated cells can be produced by introducing easy-uptake gelatin particles into the cells.
  • methods for introducing gelatin particles into cells include adding gelatin particles and cells into a liquid and allowing them to be taken up by their own activities such as uptake by endocytosis, or by external manipulation. Methods are included.
  • Examples of the method of incorporating cells by their own activities include a method of stirring gelatin particles and cells in a liquid and a method of culturing cells in a cell culture solution containing gelatin particles.
  • an operation for forming a complex with other components is not particularly required to promote uptake into the cells.
  • the method of mixing easy-uptake gelatin particles and cells in a liquid and culturing is preferable.
  • the method introduced by external operation include an electroporation method and a microinjection method.
  • a method of introducing cells by their own activity is preferable, and a method of incorporating cells into cells without forming the complex is more preferable. .
  • a cell culture solution As the liquid to which gelatin particles and cells are added, a cell culture solution can be used.
  • the cell culture solution for example, Hanks culture solution and HEPES culture solution can be used.
  • the cell culture solution may be a known buffer or physiological saline, for example, Hanks balanced salt solution (HBSS), 4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazine etheric acid (HEPES), and other known buffer solutions.
  • HBSS Hanks balanced salt solution
  • HEPES 4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazine etheric acid
  • PBS Phosphate buffered saline
  • the temperature of the cell culture solution during the stirring is preferably 15 ° C. or more and 50 ° C. or less, 35 It is more preferable that the temperature is at least 45 ° C and at most 45 ° C.
  • the introduction may be promoted by shaking a cell culture solution containing the gelatin particles and the cells.
  • predetermined non-crosslinked gelatin particles prepared in the above are put into an emulsion in which glutaraldehyde is dispersed in isopropanol, stirred for 12 hours, crosslinked with glutaraldehyde, and crosslinked gelatin particles. 10 and gelatin particles 11 were obtained.
  • Table 1 shows the volume percentage of gelatin and Fe 2 O 3 in the raw material solution used for the production of gelatin particles 1 to 18, the particle production method, the droplet amount when the particles were produced by the inkjet method, and the crosslinking method. The heating time when self-crosslinking and the concentration of the added crosslinking agent are shown.
  • “self-crosslinking” means that self-crosslinking was performed by the heating
  • “crosslinking agent” means that crosslinking was performed with glutaraldehyde.
  • Table 2 shows the average particle diameter and aspect ratio of gelatin particles 1 to 18.
  • Peak intensity ratio between COOH and CONH Gelatin particles 13 to 18 prepared above were measured with a Fourier transform infrared spectrophotometer (FT-IR), and a spectrum was obtained by plotting wave number on the horizontal axis and absorbance on the vertical axis. .
  • FT-IR Fourier transform infrared spectrophotometer
  • Measureasuring apparatus Fourier transform infrared spectrophotometer
  • Nicolet 380 manufactured by Thermo Fisher Scientific
  • FT-IR measurement conditions 1-point reflection type ATR method Detection range: 4000-700 cm-1 Number of scans: 32 Use windows: Ge Resolution: 4 Beam splitter: KBr Gain: 2 Light source: IR Detector: DTGS KBr
  • Cell and Fe staining 1 ml of 1% paraformaldehyde was added to the cultured cells for cell fixation treatment. Subsequently, 1 ml of Fe staining solution having the following composition was added to stain Fe. Further, 1 ml of a nuclear staining solution adjusted to the following concentration was added to stain the cells.
  • composition of Fe staining solution The following two solutions were mixed in the same volume to prepare an Fe staining solution. ⁇ 20 vol% HCL (concentrated hydrochloric acid diluted 5-fold) -10% by mass K 4 (Fe (CN 6 )) aqueous solution (100 mg / ml)
  • composition of nuclear stain A nuclear staining solution was prepared by mixing 5 parts by mass of ammonium sulfate and 0.1 part by mass of Nuclear fast red in 100 parts by mass of distilled water.
  • ⁇ Of the 20 cells 50% or more (10 or more) cells confirmed that gelatin was taken up inside the cell membrane. ⁇ Of the 20 cells, 10% to 50%. It was confirmed that gelatin was incorporated into the inner side of the cell membrane in less than (less than 2 and less than 10) cells. ⁇ Of the above 20 cells, less than 10% (less than 2) cells had cell membranes. It was confirmed that gelatin was taken up inside the cell. ⁇ Of the above 20 cells, no cell containing gelatin was found.
  • Enzymatic degradation time (degradation test) Using the evaluation samples of gelatin particles 13 to 18, the time required for gelatin particles to be degraded by intracellular enzymes was measured by the following method. 1 ml of cell dispersion medium was added to each well in a 12-well multiwell plate (Corning), and the cells were seeded so that the number of cells per well was 5 ⁇ 10 6 cells. The number of wells for seeding cells was 17 wells for each particle. After incubating the cells at 40 ° C. for 24 hours, the medium was removed, and 1 ml of a medium containing gelatin particles (gelatin particles were 200 ⁇ g / ml) was added. After further incubation at 40 ° C.
  • the amount of Fe obtained from cells on day 0 after incubation is defined as the reference value (initial Fe amount), and the time taken for the measured Fe amount to be 10% or less of the initial Fe amount is defined as the enzyme degradation time. did.
  • Gelatin particles 1 to 9 having an average particle diameter of 0.010 ⁇ m or more and 5.0 ⁇ m or less and having self-crosslinked gelatin constituting the particles were easily taken into the cells by their own activities.
  • gelatin particles having an aspect ratio of 1.0 or more and 1.4 or less are generally easily taken into cells in a short time.
  • gelatin particles 2 and 6 have an average particle diameter of about the same and an aspect ratio of 1. Compared with gelatin particles 9 larger than 4, it was easily taken into cells in a short time.
  • the gelatin particles produced by the ink jet method generally have a small aspect ratio.
  • the gelatin particles 2 and 6 have a smaller aspect ratio than the gelatin particles 9 having the same average particle diameter produced by the spray drying method.
  • gelatin particles 1 and 2 having an average particle size of 0.010 ⁇ m or more and 2.0 ⁇ m or less are cells in a shorter time than gelatin particles 3 and 4 having the same aspect ratio and an average particle size of 2.0 ⁇ m or less. It was easy to be taken in.
  • gelatin particles 6 having an average particle size of 0.010 ⁇ m or more and 2.0 ⁇ m or less enter the cells in a shorter time than gelatin particles 7 and 8 having the same aspect ratio and an average particle size of greater than 2.0 ⁇ m. It was easy to be taken in.
  • gelatin particles 10 and 11 cross-linked with glutaraldehyde had a low survival rate after 2 weeks of cells incorporating gelatin particles. This is presumably because the activity of the cells was reduced by glutaraldehyde having toxicity to the cells.
  • gelatin particles 12 having an average particle diameter of more than 5.0 ⁇ m were difficult to be taken into cells due to their own activities.
  • Gelatin particles 13 to 16 having a peak intensity ratio between COOH and CONH of 0.46 or more and 1.00 or less are easily taken into cells by their own activities, and the degradation time by enzymes is 7 to 14 days. there were. This is presumably because the gelatin particles are self-cross-linked and have a moderately high degree of cross-linking and are not easily degraded by enzymes.
  • gelatin particles 17 and 18 having a peak intensity ratio of COOH and CONH exceeding 1.00 were less likely to be taken into cells by their own activities, compared to gelatin particles 13-16. This is presumably because COOH present on the surface of gelatin particles increased with the increase in the degree of crosslinking, and the affinity between gelatin particles and cells decreased. The degradation time by the enzyme was as long as 40 days or more, and showed a higher sustained release property. This is presumably because gelatin had a high degree of cross-linking and was not easily degraded by enzymes.
  • the gelatin particles of the present invention can be introduced into cells for transplantation used in regenerative medicine, for example, by containing a contrast agent for MRI.
  • the activity of such cells can be measured nondestructively by observing whether or not gelatin particles have been taken into the cells by imaging with MRI. Therefore, it is considered that the gelatin particles of the present invention can reduce the exhaust rate of cells used for regenerative medicine and increase the utilization efficiency of the cells.
  • the gelatin particles of the present invention can reduce physical, mental, monetary and time burdens on patients undergoing cell transplantation and can improve the quality of life (QOL) of patients.

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Abstract

架橋剤を用いずに架橋させたゼラチン粒子であって、細胞自らによる取り込みがなされやすいゼラチン粒子、およびそのようなゼラチン粒子の製造方法の提供を目的とする。本発明は、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であって、粒子を構成するゼラチンが自己架橋している、ゼラチン粒子に関する。このゼラチン粒子は、溶融したゼラチンを含む液体の液滴を加熱管または乾燥室の中で空気中に吐出して乾燥させてゼラチンを粒子状に形成し、このとき加熱管または乾燥室の中の温度と、液体との温度差を２３５℃以下とし、さらに、粒子状に形成されたゼラチンを架橋させることで、製造可能である。

Description

ゼラチン粒子、ゼラチン粒子の製造方法、ゼラチン粒子内包細胞、およびゼラチン粒子内包細胞の製造方法
　本発明は、ゼラチン粒子、ゼラチン粒子の製造方法、ゼラチン粒子内包細胞、およびゼラチン粒子内包細胞の製造方法に関する。
　ゼラチンは生体適合性が高く、かつ体内で分解して容易に吸収される物質である。そのため、ゼラチンは、食品や医薬品を内包するカプセル剤として用いられることがある。
　たとえば、特許文献１には、ゼリー強度が８０～１２０ｇの熱架橋されたゼラチンからなる、膨潤前の乾燥粒子の粒子径が２０～１６００μｍであり、膨潤後の乾燥粒子の粒子径が５０～２０００μｍである、膨潤ゼラチン粒子が記載されている。特許文献１によれば、この膨潤ゼラチン粒子は、保形性に優れ、かつ、外部応力が加わって変形しても破砕しにくいため、マイクロカテーテルまたは注射針を用いた血管内への投与に適しているとされている。特許文献１には、ゼラチン粒子を構成するゼラチンを、加熱によって自己架橋させることで、ゼラチン粒子が完全に溶解するまでの時間を調整できると記載されている。
　また、特許文献２には、水性ゼラチンゲルから本質的になる、平均直径が３５０ｎｍ以下であり、サイズ分布の幅が小さいゼラチン粒子が記載されている。特許文献２によれば、このゼラチンナノ粒子は、担持する活性物質を選択的に輸送および放出できるため、体内での活性物質の標的輸送に適しているとされている。特許文献２には、ゼラチン粒子を構成するゼラチンを、グルタルアルデヒドなどの架橋剤で化学的に架橋することで、ゼラチン粒子の分解挙動を調節できると記載されている。
特開２０１４－５８４６５号公報 特表２００８－５１０６８８号公報
　特許文献１および特許文献２に記載のゼラチン粒子は、血管や臓器などの内部に投与して試薬等を運搬および放出させる、いわゆるドラッグ・デリバリー・システム（ＤＤＳ）用途に好適に用いられると考えられる。
　一方で、近年、生細胞の内部に試薬等を直接導入する技術に対する要求が高まっている。たとえば、生細胞に造影剤を導入すれば、非破壊で細胞の活性を検査することができる。また、造影剤を導入した細胞を患者に移植すれば、移植した細胞が定着したか否かを、移植部位を再切開せずに低侵襲で外部から観察することができる。ゼラチンは生体適合性が高いため、ゼラチン粒子は、生細胞の内部に導入する試薬等を担持する担体としても好適であると考えられる。
　細胞の内部に試薬等を担持するゼラチン粒子を導入する方法として、エレクトロポレーション法およびマイクロインジェクション法が考えられる。しかし、これらの方法は、細胞膜の形状を変化させて試薬等を細胞膜の内部に導入するため、細胞膜を部分的に破壊して細胞の活性を低下させるおそれがある。この細胞の活性の低下を最小限に抑える観点からは、試薬等は、細胞自らの活動によって取り込まれることが好ましく、そのためには、試薬等を担持するゼラチン粒子も、細胞自らの活動によって取り込まれやすいことが望ましい。しかし、本発明者らの知見によれば、特許文献１に記載のゼラチン粒子は、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされにくかった。
　ところで、上記ゼラチン粒子は、細胞内である程度長い時間をかけて分解し溶解することで、担持する試薬等を細胞内で徐放する性能を有することが望まれる。特許文献１および特許文献２にも記載のように、ゼラチン粒子が生体内で分解し溶解する時間は、ゼラチン粒子を構成するゼラチンを架橋させることにより、調整することができる。
　しかし、特許文献２でゼラチンを架橋するために用いている架橋剤は、細胞に対する毒性を有することが多い。そのため、特許文献２に記載の架橋したゼラチン粒子を細胞内に導入すると、ゼラチン粒子の溶解により放出された架橋剤によって、細胞の活性が低下するおそれがある。
　本発明は、前記課題に鑑みてなされたものであり、架橋剤を用いずに架橋させたゼラチン粒子であって、細胞自らの活動による取り込みがなされやすいゼラチン粒子、そのようなゼラチン粒子の製造方法、そのようなゼラチン粒子を有する細胞、およびそのようなゼラチン粒子を有する細胞の製造方法を提供することを、その目的とする。
　本発明は、以下のゼラチン粒子、ゼラチン粒子の製造方法、細胞、および細胞の製造方法に関する。
　［１］平均粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であって、粒子を構成するゼラチンが自己架橋している、ゼラチン粒子。
　［２］アスペクト比が１．０以上１．４以下である、［１］に記載のゼラチン粒子。
　［３］フーリエ変換型赤外分光光度計（ＦＴ－ＩＲ）で測定して得られるスペクトルにおけるＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が、０．４６以上１．０以下である、［１］または［２］に記載のゼラチン粒子。
　［４］前記平均粒子径は０．０１０μｍ以上２．０μｍ以下である、［１］～［３］のいずれかに記載のゼラチン粒子。
　［５］造影剤をさらに担持する、［１］～［４］のいずれかに記載のゼラチン粒子。
　［６］溶融したゼラチンを含む液体の液滴を、該液滴との温度差が２３５℃以下である、加熱管または乾燥室の雰囲気中に吐出して乾燥させてゼラチンを粒子状に形成する工程と、前記粒子状に形成されたゼラチンを架橋させる工程とを含む、ゼラチン粒子の製造方法。
　［７］前記液滴は、インクジェットヘッドのノズルから吐出される、［６］に記載のゼラチン粒子の製造方法。
　［８］前記ゼラチンの架橋が、加熱による自己架橋である、［６］または［７］に記載のゼラチン粒子の製造方法。
　［９］前記加熱を、６０℃以上２５０℃以下で行う、［８］に記載のゼラチン粒子の製造方法。
　［１０］［１］～［５］のいずれかに記載のゼラチン粒子を細胞膜の内側に有する、ゼラチン粒子内包細胞。
　［１１］［１］～［５］のいずれかに記載のゼラチン粒子と細胞とを液体に添加して前記細胞の活動により前記ゼラチン粒子を前記細胞の細胞膜の内側に取り込ませる、ゼラチン粒子内包細胞の製造方法。
　本発明によれば、架橋剤を用いずに架橋させたゼラチン粒子であって、細胞自らによる取り込みがなされやすいゼラチン粒子、そのようなゼラチン粒子の製造方法、そのようなゼラチン粒子を有する細胞、およびそのようなゼラチン粒子を有する細胞の製造方法が提供される。
　前記の課題を解決すべく、本発明者らは細胞自らによって細胞内に取り込まれやすいゼラチン粒子の条件について鋭意研究を行った。その結果、本発明者らは、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であり、かつ、粒子を構成するゼラチンが自己架橋しているゼラチン粒子は、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされやすいことを見出し、もって本発明を完成させた。
　以下、本発明の代表的な実施形態を詳細に説明する。
　１．ゼラチン粒子およびその製造方法
　本実施形態は、ゼラチン粒子およびゼラチン粒子の製造方法に係る。
　１－１．ゼラチン粒子
　本実施形態に係るゼラチン粒子は、粒子径が５．０μｍ以下であり、かつ、粒子を構成するゼラチンが自己架橋しているゼラチン粒子である。上記構成を有するゼラチン粒子は、後述するように細胞に取り込まれやすいという特徴を有しているため、本明細書においては、「易取込性ゼラチン粒子」ともいう。上記易取込性ゼラチン粒子は、単一の粒子でもよく、複数のゼラチン粒子からなる集合体でもよい。
　なお、本明細書において、ゼラチン粒子の粒子径、長径および短径は、８０℃の大気中に２４時間静置した後の、乾燥時のゼラチン粒子の粒子径、長径および短径を意味する。
　易取込性ゼラチン粒子の短径および長径は、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で撮像した画像を解析して得られる値とすることができる。ゼラチン粒子が上記集合体であるとき、ゼラチン粒子の長径、短径、粒子径およびアスペクト比は、上記集合体から任意に選択した複数の乾燥処理後のゼラチン粒子（たとえば、２０個のゼラチン粒子）の長径、短径、粒子径およびアスペクト比を加算平均した値とすることができる。
　上記易取込性ゼラチン粒子の粒子径は、０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下である。上記粒子径が５．０μｍ以下であるゼラチン粒子は、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされやすい。これは、加熱等によってゼラチンの自己架橋を形成させる際に、ゼラチン粒子の内部まで熱が浸透しやすく、ゼラチンの変性が生じにくいためと考えられる。逆に、上記粒子径が５．０μｍを超えるゼラチン粒子を加熱等によって自己架橋させると、ゼラチンの膜厚が大きいため、内部のゼラチンを架橋させるためには長時間の加熱等が必要となり、粒子表面の近傍に位置するゼラチンが変性してしまう。表面近傍のゼラチンが変性したゼラチン粒子は、細胞によって異物と認識されやすくなり、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされにくくなる。上記観点からは、上記易取込性ゼラチン粒子の粒子径は、２．０μｍ以下であることが好ましく、１．８μｍ以下であることがより好ましい。一方で、上記粒子径が０．０１０μｍ以上であるゼラチン粒子は、粒子内に試薬等を担持させやすく、かつ自己架橋をさせやすい。上記観点からは、ゼラチン粒子の粒子径は、０．０１０μｍ以上であることが好ましく、０．０２０μｍ以上であることが好ましい。また、ゼラチン粒子の粒子径を０．５０μｍ以上とすることで、ハンドリング性がよく、また、試薬等の収容量を大きくすることができる。なお、上記易取込性ゼラチン粒子の粒子径は、ゼラチン粒子の長径と短径とを加算平均した値とすることができる。
　易取込性ゼラチン粒子のアスペクト比は、１．０以上１．４以下であることが好ましい。上記アスペクト比が１．４以下であると、ゼラチン粒子は水中で膨潤した後もより球形に近い形状を保ちやすく、ゼラチン粒子および細胞を含む溶液において、ゼラチン粒子と細胞とがより均一な形状および大きさの接触面で接しやすくなるため、ゼラチン粒子間での取り込まれやすさの差が生じにくいと考えられる。そのため、上記アスペクト比を有する易取込性ゼラチン粒子は、細胞へ取り込まれるゼラチン粒子の量、およびゼラチン粒子を取り込む細胞の量、をより制御しやすいと考えられる。易取込性ゼラチン粒子のアスペクト比は、ゼラチン粒子の長径をゼラチン粒子の短径で除算して求めた値とすることができる。
　易取込性ゼラチン粒子は、その主成分がゼラチンからなる粒子であり、具体的には、アミノ酸測定装置で分析した際、アミノ酸１０００残基の内、グリシンが３００以上含まれており、アラニン、プロリン両方を含む粒子である。易取込性ゼラチン粒子を構成するゼラチンは、粒子を形成することができればよく、牛骨、牛皮、豚皮、豚腱、魚鱗および魚肉などに由来するコラーゲンを変性して得られる、公知のいかなるゼラチンを用いてもよい。ゼラチンは、以前から食用や医療用に使用されており、体内に摂取しても人体に害を与えることが少ない。また、ゼラチンは生体内で分散消失するため、生体内から除去する必要がないという利点を有する。なお、上記易取込性ゼラチン粒子は、細胞内へのゼラチン粒子取り込みが可能な限りにおいて、ゼラチン以外の成分を含有してもよい。なお、上記ゼラチン以外の成分の量は、体内に摂取したときに人体に与える害が無視できる範囲であることが好ましい。また、上記ゼラチン以外の成分は、生体内に蓄積せず排出されやすい物質からなることが好ましい。
　上記易取込性ゼラチン粒子を構成するゼラチンの重量平均分子量は、上記粒子径および膨潤度の条件を満たすゼラチン粒子を形成しやすくする観点から、１０００以上１０００００以下であることが好ましい。上記重量平均分子量は、たとえばパギイ法第１０版（２００６年）に準じて測定された値とすることができる。
　易取込性ゼラチン粒子を構成するゼラチンは、自己架橋している。上記自己架橋の例には、加熱または電子線もしくは紫外線の照射による架橋が含まれる。粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下である上記易取込性ゼラチン粒子は、粒子内部全体のゼラチンを十分に架橋させることができるため、徐放性より高めることができる。また、粒子表面のゼラチンの変性を抑制しつつゼラチンに自己架橋を形成させることができるため、細胞自らの活動による自己架橋したゼラチン粒子の取り込ませやすさをより高めることができる。
　なお、本明細書において、ゼラチン粒子を構成するゼラチンが自己架橋しているとは、ゼラチン粒子をフーリエ変換型の赤外分光光度計（ＦＴ－ＩＲ）で測定して得られる、横軸に波数、縦軸に吸光度をプロットしたスペクトルにおける、ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比（ＣＯＯＨのピーク強度／ＣＯＮＨのピーク強度）が０．４６以上であることを意味する。架橋していないゼラチン粒子の上記ピーク強度比は、０．４０以上０．４４以下の範囲に含まれる。これに対し、ゼラチンが自己架橋すると、ＣＯＯＨが多く生成するため、上記ピーク強度比は上昇して、０．４６以上となる。
　ゼラチンの自己架橋によってＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が上昇する理由は、次のように考えられる。
　ゼラチンの自己架橋は、次の２つの反応により進行する。
　　反応（１）：　－ＣＯＯＨ＋－ＮＨ２　→　－ＣＯＮＨ＋Ｈ２Ｏ
　　反応（２）：　構成アミノ酸側鎖の酸化による－ＣＯＯＨの生成
　反応（１）では、ＣＯＯＨ基が消費されて、ＣＯＮＨ基が生成されるため、上記ピーク強度比は小さくなる。しかしながら、反応（２）の反応速度の方が反応（１）よりも速いため、－ＣＯＯＨの生成が－ＣＯＯＨの消費を上回り、結果として、上記ピーク強度比は上昇する。
　ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比は、大きければ大きいほど架橋度が高いことを意味する。架橋度が高いほど、易取込性ゼラチン粒子の細胞内での酵素による分解速度が低下し、粒子内部に存在する物質の徐放性が高まると考えられる。しかしながら、易取込性ゼラチン粒子の表面に存在するＣＯＯＨが多くなりすぎると、易取込性ゼラチン粒子と細胞との親和性が低下し、その結果、細胞による易取込性ゼラチン粒子の取り込み効率が低下すると考えられる。よって、細胞による易取込性ゼラチン粒子の取り込み効率および易取込性ゼラチン粒子の徐放性の両方を鑑みると、易取込性ゼラチン粒子をＦＴ－ＩＲで測定して得られるスペクトルにおけるＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比は、０．４６以上１．０以下であることが好ましい。この範囲内であれば、細胞による易取込性ゼラチン粒子の取り込み効率が向上し、且つ、細胞内で易取込性ゼラチン粒子が優れた除放性を発揮することができると考えられる。上記ピーク強度比は、より好ましくは０．４６以上０．５０以下である。
　一方で、生細胞に対する毒性をより低減する観点からは、易取込性ゼラチン粒子は、グルタルアルデヒド、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩、１－シクロヘキシル－３－（２－モルホリノエチル）カルボジイミド－メト－ｐ－トルエンスルホナート等の水溶性カルボジイミド、ビスエポキシ化合物、ホルマリン等の架橋剤に由来する分子量の小さい成分の含有量が少ないことが好ましい。
　易取込性ゼラチン粒子は、試薬等を担持してもよい。ゼラチン粒子が試薬等を担持するとは、試薬等がゼラチン粒子の表面または内部に存在することを意味する。試薬等をより長い時間細胞内に留める観点からは、試薬等は、易取込性ゼラチン粒子の内部に存在することが好ましい。
　試薬等の例には、生体の活性などの検査、生体内の物質の測定および生体内の物質の定量などの用途に用いられる試薬、ならびに薬剤が含まれる。上記試薬の例には、造影剤が含まれる。
　上記造影剤の例には、ＭＲＩ用の造影剤として用いられる磁性物質が含まれる。ＭＲＩ用の造影剤の例には、ガドリニウム（Ｇｄ）ならびに鉄（Ｆｅ３Ｏ４およびγ－Ｆｅ２Ｏ３など）を含む造影剤が含まれる。
　上記薬剤は、ゼラチン粒子が担持できるものであればよい。このような薬剤の例には、医薬活性を有するタンパク質、プラスミド、アプタマー、アンチセンス核酸、リボザイム、ｔＲＮＡ、ｓｎＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｎｃＲＮＡおよび凝縮型ＤＮＡを含む医薬用途に用いられる核酸、ならびに医薬用途に用いられる抗原が含まれる。
　上記医薬活性を有するタンパク質の例には、ステロイド、非ステロイド性抗炎症薬（ＮＳＡＩＤ）、ビタミンＡ（レチノイド）、ビタミンＤ３およびビタミンＤ３類似体、抗生物質、抗ウィルス性薬剤、ならびに抗細菌性薬剤が含まれる。
　１－２．ゼラチン粒子の製造方法
　上記易取込性ゼラチン粒子は、ゼラチンを粒子状に形成し、その後自己架橋させる公知の方法で製造することができる。
　ゼラチンを粒子状に形成する方法の例には、溶融したゼラチンを含む液体（以下、単に「ゼラチン溶液」ともいう。）の液滴を加熱管または乾燥室の雰囲気中に吐出して乾燥させる方法（気中滴下法）、ゼラチン溶液の液滴を疎水性溶媒内に吐出して分散させる方法（液中滴下法）、およびゼラチン溶液をエマルジョン化してゼラチンを含む微小液滴を分散させる方法（液中分散法）が含まれる。気中滴下法の例には、インクジェット法およびスプレードライ法が含まれる。液中分散法の例には、エマルション法およびコアセルベーション法が含まれる。製造されるゼラチン粒子の粒子径をより均一にし、かつ、アスペクト比をより小さくする観点からは、気中滴下法が好ましく、インクジェット法がより好ましい。
　本発明者らの新たな知見によれば、気中滴下法において、温度変化が少ない条件で上記液滴を乾燥させることが特に好ましい。このようにすることで、温度変化によるゼラチン粒子の変形または崩壊が防がれるため、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であるゼラチン粒子が製造される割合をより高め、かつ、製造されるゼラチン粒子の粒子径をさらに均一にできると考えられる。
　たとえば、インクジェット法において、加熱された加熱管の内部に設けたインクジェットのノズルからゼラチン溶液の液滴を吐出して、同じ加熱管の内部に設けたフィルタで捕集することができる。ゼラチン粒子の変形または崩壊をより抑制する観点からは、上記加熱管の加熱は、加熱管の内部に、液滴の滴下方向と同じ方向（鉛直方向上方から下方に向かう方向）に熱風を通過させて行うことが好ましい。
　また、スプレードライ法において、アトマイザーまたはノズルからゼラチン溶液を噴霧する乾燥室の内部を加熱してもよい。
　上記効果をより高める観点からは、上記加熱管または乾燥室の中の雰囲気の温度と、滴下されるゼラチン溶液との温度差は、２３５℃以下であることが好ましく、効率よく安定してゼラチン粒子を得る観点からは、２０℃以上２００℃以下、さらに２０℃以上１００℃以下であることが望ましく、特に、加熱管又は乾燥室内の雰囲気温度を液滴温度よりも高くして、温度差２０℃以上８０℃以下とすることが望ましい。液滴の温度は、１５℃以上８０℃以下、より好ましくは２０℃以上５０℃以下とするのがよく、加熱管または乾燥室内の雰囲気温度は、４０℃以上２５０℃以下、より好ましくは４０℃以上１５０℃以下とするのがよい。
　粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であるゼラチン粒子が形成される割合をより高める観点からは、上記ゼラチン溶液が含有するゼラチンの濃度は、１．００×１０－８体積％以上６０体積％以下であることが好ましく、１．００×１０－７体積％以上５０体積％以下であることがより好ましく、１．００×１０－７体積％以上２０体積％以下とすることがさらに好ましい。
　ゼラチンを自己架橋させる方法の例には、ゼラチン粒子を加熱する方法、およびゼラチン粒子に電子線または紫外線を照射する方法が含まれる。電子線や紫外線の照射では、ゼラチンの架橋と分解の両方の反応が起こり、どちらの反応が優先するかは、雰囲気や温度などの照射条件に大きく依存することから、架橋度のコントロールが難しい。従って、上述したＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が０．４６以上１．０以下となるような架橋度のゼラチン粒子を製造する上では、架橋度のコントロールが比較的容易な加熱による架橋が好ましい。
　ゼラチン粒子を加熱してゼラチンを自己架橋させる方法の例には、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であるゼラチン粒子を６０℃以上２５０℃以下、好ましくは１００℃以上２００℃以下で０．５時間以上１００時間以下加熱する方法が含まれる。
　ゼラチン粒子に電子線を照射してゼラチンを自己架橋させる方法の例には、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であるゼラチン粒子に、加速電圧を１００ｋＶ以上３ＭＶ以上、照射線量を２ｋＧｙ以上３０００ｋＧｙとして電子線を照射する方法が含まれる。
　ゼラチン粒子に紫外線を照射してゼラチンを自己架橋させる方法の例には、粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であるゼラチン粒子に、波長が２５０ｎｍ以上２６０ｎｍ以下の紫外線を１Ｊ／ｃｍ２以上６Ｊ／ｃｍ２以下の積算照度で照射する方法が含まれる。
　２．細胞
　本実施形態は、易取込性ゼラチン粒子を細胞膜の内側に有する細胞、およびそのような細胞の製造方法に係る。
　２－１．細胞
　本実施形態に係る細胞（以下、単に「ゼラチン粒子内包細胞」ともいう。）は、易取込性ゼラチン粒子を細胞膜の内側に有する細胞である。
　ゼラチン粒子を細胞膜の内側に有するとは、細胞をＴＥＭで撮像した画像において、ゼラチン粒子が細胞膜の内側に確認されることを意味する。細胞へのゼラチン粒子の取り込みは、例えば、ゼラチン粒子が造影剤を含有している場合は、造影剤を染色し顕微鏡観察することにより、造影剤を含むゼラチン粒子が細胞内に取りこまれているか否かを確認することができる。また、造影剤を含有していないゼラチン粒子の場合は、予めゼラチン粒子を蛍光標識しておき、共焦点顕微鏡を用いて蛍光標識されたゼラチン粒子が細胞内に取り込まれているか否かを確認することができる。ゼラチン粒子の蛍光標識は、例えば、イソチオシアン酸フルオレセイン（ＦＩＴＣ）で標識した溶液（例えば、コスモ・バイオ社製ＦＩＴＣ－コラーゲンの１０ｍＭ酢酸溶液）、０．４Ｍ塩化ナトリウム、０．０４％（Ｗ／Ｖ）アジ化ナトリウム、１０ｍＭ塩化カルシウム含有５０ｍＭトリス－塩酸緩衝液（ｐＨ７．５) を等量混合した後、６０℃で３０分間加熱処理することにより調製したＦＩＴＣ－ゼラチンを基質として用いることで行うことができる。
　細胞に含まれる易取込性ゼラチン粒子は、造影剤、特には特にはＭＲＩ用の造影剤を担持していることが好ましい。このような細胞は、後述する、細胞自らの活動によって取り込ませる方法によって製造した後、細胞内の造影剤の有無を観察することで、非破壊で細胞の活性を検査することができる。
　ゼラチン粒子を細胞膜の内側に含み得る細胞としては、骨髄、心臓、肺、肝臓、腎臓、膵臓、脾臓、腸管、小腸、心臓弁、皮膚、血管、角膜、眼球、硬膜、骨、気管および耳小骨を含む各種臓器から摘出された生体試料または検体に由来する細胞、市販の株化細胞、ならびに皮膚幹細胞、表皮角化幹細胞、網膜幹細胞、網膜上皮幹細胞、軟骨幹細胞、毛包幹細胞、筋幹細胞、骨前駆細胞、脂肪前駆細胞、造血幹細胞、神経幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、外胚葉系幹細胞、中胚葉系幹細胞、内胚葉系幹細胞、間葉系幹細胞、ＥＳ細胞およびｉＰＳ細胞を含む幹細胞ならびにこれらの幹細胞から分化した細胞を含む公知の細胞を用いることができる。
　これらの細胞のうち、再生医療で患者に移植される細胞、特には幹細胞または幹細胞から分化した細胞は、造影剤、特にはＭＲＩ用の造影剤を担持する易取込性ゼラチン粒子を有することで、患者への移植後、移植部位の造影剤を観察することで、再手術をすることなく、ゼラチン粒子内包細胞が移植部位に定着したか否かを観測することができる。そのため、ＭＲＩ用の造影剤を担持するゼラチン粒子を含ませた、これらの細胞は、再生医療の治療を受ける患者の身体的、精神的、金銭的および時間的な負担を低減し、患者の生活の質（ＱＯＬ）を高めることができると考えられる。
　２－２．細胞の製造方法
　ゼラチン粒子内包細胞は、易取込性ゼラチン粒子を上記細胞に導入して、製造することができる。ゼラチン粒子を細胞に導入する方法の例には、液体中にゼラチン粒子と細胞とを添加して、エンドサイトーシスによる取り込みなどの細胞自らの活動によって取り込ませる方法、および外部からの操作によって導入する方法が含まれる。細胞自らの活動によって取り込ませる方法の例には、ゼラチン粒子と細胞とを液中で撹拌する方法や、ゼラチン粒子が含まれる細胞培養液中で細胞を培養する方法が含まれる。なお、上記易取込性ゼラチン粒子は、細胞自らによる取り込み効率が高いため、細胞への取り込みを促進するために他の成分との複合体を形成させる操作は特に必要ない。細胞の活性の低下を最小限に抑える観点からは、上記のうち、易取込性ゼラチン粒子と細胞とを液中で混合し培養する方法が好ましい。上記外部からの操作によって導入する方法の例には、エレクトロポレーション法およびマイクロインジェクション法が含まれる。これらのうち、ゼラチン粒子を導入させる際に細胞の活性を低下させにくくする観点からは、細胞自らの活動によって導入する方法が好ましく、上記複合体を形成せずに細胞に取り込ませる方法がより好ましい。
　ゼラチン粒子及び細胞が添加される液体としては、細胞培養液を用いることができる。上記細胞培養溶液としては、たとえばＨａｎｋｓ培養液およびＨＥＰＥＳ培養液を用いることができる。上記細胞培養溶液は、公知の緩衝液または生理食塩水であってもよく、例えば、ハンクス平衡塩溶液（ＨＢＳＳ）、４－（２－ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ）－１－ｐｉｐｅｒａｚｉｎｅｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ　ａｃｉｄ（ＨＥＰＥＳ）およびその他の公知のリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）を用いることができる。
　細胞の活性を高めて細胞自らの活動によってゼラチン粒子を細胞内に取り込ませやすくする観点からは、上記撹拌時の上記細胞培養溶液の温度は、１５℃以上５０℃以下であることが好ましく、３５℃以上４５℃以下であることがより好ましい。
　細胞自らの活動によってゼラチン粒子を細胞膜の内側へ導入するとき、たとえば、ゼラチン粒子と上記細胞とを含む細胞培養液を振とうして、導入を促進するようにしてもよい。
　なお、細胞自らの活動によってゼラチン粒子を細胞膜の内側に取り込ませるとき、活性が高い細胞はゼラチン粒子をより取り込みやすく、活性が低い細胞はゼラチン粒子を取り込みにくいと考えられる。そのため、造影剤を担持するゼラチン粒子と細胞とを液体に添加し必要に応じて振とうした後、細胞の内部に造影剤があるか否かを観察することで、非破壊で細胞の活性を検査することができる。
　以下において、本発明の具体的な実施例を説明する。なお、これらの実施例によって、本発明の範囲は限定して解釈されない。
　１．ゼラチン粒子の作製
　１－１．原料溶液の調製
　ゼラチン（新田ゼラチン株式会社製、Ｇ－２６１３Ｐ）、純水、Ｆｅ２Ｏ３粉末（コアフロント社製３３１０ＤＸ(α－Ｆｅ２Ｏ３)）を混合し、ゼラチンとＦｅ２Ｏ３粉末との体積比が（ゼラチン：Ｆｅ２Ｏ３粉末＝１０：１）の原料溶液を調製した。ゼラチンおよびＦｅ２Ｏ３粉末の量は、上記原料溶液中の濃度がそれぞれ表１に記載した数値になるよう調整し、純水に対する固形分の含有比率が異なる複数種類の原料溶液を得た。
　１－２．インクジェット法によるゼラチン粒子の作製
　１００℃に加熱した加熱管の内部に、鉛直方向上方から下方に向けて３Ｌ／ｍｉｎの空気流を送流した。インクジェットヘッド（コニカミノルタ社製、５１２Ｓ）から、４０℃に加熱した上記各原料溶液の４ｐＬまたは４２ｐＬの液滴を吐出周波数５ＫＨｚで上記空気流の中に滴下し、インクジェットヘッドの２００ｃｍ下方に設けた親水化処理された四フッ化エチレン樹脂（ＰＴＦＥ）のフィルタ（メルク（日本ミリポア）社製ミリポア、０．４５メッシュ）に上記滴下した液滴を着弾させた。上記滴下を５時間行ったのち、フィルタ上に捕集されたゼラチン粒子を回収した。
　１－３．スプレードライ法によるゼラチン粒子の作製
　スプレードライヤー（株式会社プリス製、スプレーボーイ）を用いて、上記各原料溶液のうち所定のものを二流体ノズル方式のノズルから１ｋｇ／ｈで２００℃に加熱した乾燥室内に噴霧し、乾燥室の下部でゼラチン粒子を捕集し、回収した。
　１－４．架橋形成
　上記作製された未架橋の各ゼラチン粒子を、真空状態にした加熱炉（ヤマト科学株式会社社製、真空角型乾燥機ＡＤＰ２００）内で表１に記載の時間１６０℃で加熱し、自己架橋したゼラチン粒子１～９およびゼラチン粒子１２～１８を得た。
　また、上記作製された未架橋の各ゼラチン粒子のうち所定のものを、イソプロパノールにグルタルアルデヒドを分散させたエマルション中に投入し１２時間撹拌して、グルタルアルデヒドで架橋させて、架橋されたゼラチン粒子１０およびゼラチン粒子１１を得た。
　表１に、ゼラチン粒子１～１８の作製に用いた原料溶液中のゼラチンおよびＦｅ２Ｏ３の体積％、粒子作製方法、およびインクジェット法で粒子を作製したときの液滴量、ならびに架橋方法、自己架橋させたときの加熱時間、および上記添加した架橋剤の濃度を示す。なお、表１の「架橋方法」の欄において、自己架橋とは上記加熱により自己架橋させたことを示し、架橋剤とはグルタルアルデヒドによって架橋させたことを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　２．ゼラチン粒子の測定
　２－１．平均粒子径およびアスペクト比
　上記作製したゼラチン粒子１～１８を走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で撮像し、撮像された画像をＭｏｕｎｔｅｃｈ社製画像解析式粒度分布ソフトウェアＭａｃ－Ｖｉｅｗを用いて解析することにより、任意に選択した２０個のゼラチン粒子の短径および長径を測定し、その平均値をそれぞれのゼラチン粒子の短径および長径とした。上記ゼラチン粒子の短径と長径との平均値をそれぞれのゼラチン粒子の平均粒子径とした。また、任意に選択した１０個のゼラチン粒子のアスペクト比を測定し、その平均値をそれぞれのゼラチン粒子のアスペクト比とした。
　表２に、ゼラチン粒子１～１８の平均粒子径およびアスペクト比を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　２－２．ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比
　上記作製したゼラチン粒子１３～１８をフーリエ変換型赤外分光光度計（ＦＴ－ＩＲ）で測定し、横軸に波数、縦軸に吸光度をプロットしたスペクトルを得た。尚、以下の測定条件を使用した。
　測定装置：フーリエ変換型赤外分光光度計Ｎｉｃｏｌｅｔ３８０（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）
　ＦＴ－ＩＲ測定条件　：１点反射型ＡＴＲ法
　　検出範囲　　：４０００－７００ｃｍ－１
　　スキャン回数：３２回
　　使用窓材　　：Ｇｅ
　　分解能　　　：４
　　ビームスプリッタ：ＫＢｒ
　　ゲイン　　　：２
　　光源　　　　：ＩＲ
　　検出器　　　：ＤＴＧＳ　ＫＢｒ
　得られたスペクトルにおける、ＣＯＯＨのピーク強度と、ＣＯＮＨのピーク強度との比を求め、ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比（ＣＯＯＨ／ＣＯＮＨ）とした。
　表４に、ゼラチン粒子１３～１８のＣＯＯＨ／ＣＯＮＨを示す。
　３．細胞内への導入および評価
　３－１．細胞内への導入
　Ｌｉｆｅ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製細胞培養液ＭＥＭ　Ａｌｐｈａ　ｂａｓｉｃ（１Ｘ）５００ｍｌにウシ胎児血清（Ｆｅｔａｌ　ｂｏｖｎｅ　ｓｅｒｕｍ）５０ｍｌを加えたものを細胞培養液として使用した。３ｍｌの細胞培養液に、それぞれ１ｍｇのゼラチン粒子１～１８を加え、マウス骨芽由来の細胞（ＭＣ３Ｔ３Ｅ１）を６０００ｃｅｌｌｓ／ｍｌになるように添加し、細胞添加後の細胞培養液を２４時間４０℃で保温して、１８個の評価用サンプルを作製した。
　更にゼラチン粒子１～１２については、細胞と共に保温する時間を４８時間に延長した評価用サンプルを１２個作製した。
　３－２．細胞による取り込みの評価
　上記評価用サンプルから、それぞれの細胞分散液の一部を取り出し、以下の手順によって、細胞膜の内側に取り込まれたゼラチンが確認できるか否かを観察し、以下の基準によって判定した。
　（細胞及びＦｅの染色）
　培養した細胞に１％パラホルムアルデヒド１ｍｌを加えて細胞固定化処理を行った。次いで、下記組成のＦｅ染色液１ｍｌを加えてＦｅを染色した。さらに、下記の濃度に調整した核染色液１ｍｌを加えて細胞を染色した。
　（Ｆｅ染色液の組成）
　下記の２液を同体積混合してＦｅ染色液を調製した。
　・２０体積％　ＨＣＬ（濃塩酸を５倍希釈したもの）
　・１０質量％　Ｋ４（Ｆｅ（ＣＮ６））水溶液（１００ｍｇ／ｍｌ）
　（核染色液の組成）
　硫酸アンモニウム５質量部と、Ｎｕｃｌｅａｒ　ｆａｓｔ　ｒｅｄ　０．１質量部とを、蒸留水１００質量部に混合して核染色液を調製した。
　（Ｆｅを取り込んだ細胞数のカウント）
　染色された細胞を光学顕微鏡で観察して、任意に選択された細胞２０個の中に青く染色されたＦｅが含まれているかどうかを評価した。
　◎　上記２０個の細胞のうち、５０％以上（１０個以上）の細胞で、細胞膜の内側にゼラチンが取り込まれていることが確認できた
　○　上記２０個の細胞のうち、１０％以上５０％未満（２個以上１０個未満）の細胞で、細胞膜の内側にゼラチンが取り込まれていることが確認できた
　△　上記２０個の細胞のうち、１０％未満（２個未満）の細胞で、細胞膜の内側にゼラチンが取り込まれていることが確認できた
　×　上記２０個の細胞のうち、ゼラチンが取り込まれている細胞は確認できなかった
　３－３．細胞生死の評価
　ゼラチン粒子１～１２の評価サンプルを用いて、各ゼラチン粒子を取り込んだ細胞の生死を評価した。
　上記の各評価用サンプルを４０℃に保ち、１週間後に一度細胞培養液を新しいものに交換して、２週間培養した。タカラバイオ社製Ｌｉｖｅ／Ｄｅａｄ　Ｃｅｌｌ　Ｓｔａｉｎｉｎｇ　Ｋｉｔ　ＩＩを用いて、上記培養後の培地に見られる細胞のうち任意に選択した２０個の細胞の生死を観察し、以下の基準によって判定した。
　○　上記２０個の細胞のうち、７０％以上（１４個以上）の細胞が生きていた
　×　上記２０個の細胞のうち、生きている細胞は７０％未満（１４個未満）であった
　３－４．酵素による分解時間（分解試験）
　ゼラチン粒子１３～１８の評価サンプルを用いて、細胞内の酵素によってゼラチン粒子が分解されるのにかかる時間を、以下の方法で測定した。
　１２穴のマルチウェルプレート（Corning社）のウェル内に細胞分散培地を１ｍｌずつ添加し、ウェル当たりの細胞数が５×１０細胞となるように細胞を播種した。尚、細胞を播種するウェルの数は、各粒子当たり、１７ウェルとした。
　細胞を４０℃で２４時間インキュベートした後、培地を除去し、ゼラチン粒子を含有する培地（ゼラチン粒子が２００μｇ／ｍｌ）を１ｍｌずつ添加した。更に４０℃で２４時間インキュベートした後、培地を除去し、細胞をＰＢＳ（Gibco社）で３回洗浄した。
　ウェル内の細胞に、０．２５質量％のトリプシン－ＥＤＴＡ溶液（０．２５％トリプシン－ＥＤＴＡ（１×），フェノールレッドを含む）（Gibco社）を１ｍｌずつ添加し、ウェルから細胞を剥離した。剥離した細胞を次に新たな１２穴のマルチウェルプレートに再播種し、４０℃でインキュベートした。インキュベートの開始から、０、１、３、５、７、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０日後に、細胞内のＦｅ濃度を下記手法で測定した。
（細胞中のＦｅ濃度の測定）
　細胞をインキュベートしたウェルから培地を取り除き、細胞をＰＢＳで３回洗浄した。次に、１Ｍ塩酸（和光純薬工業社製）溶液を細胞に加え、５分間放置し、細胞を溶解させた。ウェル内の細胞溶解液をエッペンチューブに回収し、原子吸光光度計A4-6800（島津製作所製）でＦｅを定量した。
（評価方法）
　インキュベート後０日の細胞から得られたＦｅ量を基準値（初期Ｆｅ量）とし、測定されるＦｅ量が初期Ｆｅ量の１０％以下になるまでに掛かった時間を、酵素による分解時間と定義した。
　ゼラチン粒子１～１２の上記判定結果を表３に示し、ゼラチン粒子１３～１８の上記判定結果を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　平均粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であって、粒子を構成するゼラチンが自己架橋しているゼラチン粒子１～９は、細胞自らの活動によって細胞内へ取り込まれやすかった。
　特に、アスペクト比が１．０以上１．４以下であるゼラチン粒子は概して短時間で細胞内へ取り込まれやすく、例えば、ゼラチン粒子２および６は、同程度の平均粒子径でアスペクト比が１．４より大きいゼラチン粒子９に比べて短時間で細胞内へ取り込まれやすかった。なお、インクジェット法で製造したゼラチン粒子は概してアスペクト比が小さく、特にゼラチン粒子２および６は、スプレードライ法で製造した同程度の平均粒子径を有するゼラチン粒子９よりもアスペクト比が小さかった。
　また、平均粒子径が０．０１０μｍ以上２．０μｍ以下であるゼラチン粒子１および２は、同程度のアスペクト比で平均粒子径が２．０μｍ以下より大きいゼラチン粒子３および４よりも短時間で細胞内へ取り込まれやすかった。同様に、平均粒子径が０．０１０μｍ以上２．０μｍ以下であるゼラチン粒子６は、同程度のアスペクト比で平均粒子径が２．０μｍより大きいゼラチン粒子７および８よりも短時間で細胞内へ取り込まれやすかった。
　一方で、グルタルアルデヒドで架橋したゼラチン粒子１０および１１は、ゼラチン粒子を取り込んだ細胞の２週間後の生存率が低かった。これは、細胞に対する毒性を有しているグルタルアルデヒドによって細胞の活性が低下したためと考えられる。
　また、平均粒子径が５．０μｍより大きいゼラチン粒子１２は、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされにくかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が０．４６以上１．００以下であるゼラチン粒子１３～１６は、細胞自らの活動によって細胞内へ取り込まれやすく、且つ酵素による分解時間も７日～１４日であった。これは、ゼラチン粒子が自己架橋しており、且つその架橋度が適度に高く、酵素によって容易には分解されないためと考えられる。
　一方、ＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が１．００を超えるゼラチン粒子１７と１８は、ゼラチン粒子１３～１６と比べて、細胞自らの活動による細胞内への取り込みがなされにくかった。これは、架橋度の上昇に伴い、ゼラチン粒子表面に存在するＣＯＯＨが増加し、ゼラチン粒子と細胞との親和性が低下したためと考えられる。酵素による分解時間は４０日以上と長く、より高い徐放性を示した。これは、ゼラチンの架橋度が高く、酵素によって分解されにくくなっていたためと考えられる。
　本出願は、２０１５年１２月２５日出願の特願２０１５－２５４９５４および２０１６年６月２３日出願の特願２０１６－１２４５０７に基づく優先権を主張する。当該出願明細書に記載された内容は、すべて本願明細書に援用される。
　本発明のゼラチン粒子は、たとえばＭＲＩ用の造影剤を含有させて、再生医療に用いられる移植用の細胞に導入することができる。このような細胞は、ＭＲＩで撮像してゼラチン粒子を細胞の内部に取り込んだか否かを観察することで、非破壊で活性を測定することができる。そのため、本発明のゼラチン粒子は、再生医療に用いられる細胞の排気率を低減して、上記細胞の利用効率を高めることができると考えられる。また、このような細胞を移植すれば、移植部位をＭＲＩで撮像することで、再手術をすることなく、細胞が移植部位に定着したか否かを観測することができる。そのため、本発明のゼラチン粒子は、細胞移植を受ける患者への身体的、精神的、金銭的および時間的な負担を低減し、患者の生活の質（ＱＯＬ）を高めることができると考えられる。

Claims (11)

  1. 　平均粒子径が０．０１０μｍ以上５．０μｍ以下であって、粒子を構成するゼラチンが自己架橋している、ゼラチン粒子。
  2. 　アスペクト比が１．０以上１．４以下である、請求項１に記載のゼラチン粒子。
  3. 　フーリエ変換型赤外分光光度計（ＦＴ－ＩＲ）で測定して得られるスペクトルにおけるＣＯＯＨとＣＯＮＨとのピーク強度比が、０．４６以上１．０以下である、請求項１に記載のゼラチン粒子。
  4. 　前記平均粒子径は０．０１０μｍ以上２．０μｍ以下である、請求項１に記載のゼラチン粒子。
  5. 　造影剤をさらに担持する、請求項１に記載のゼラチン粒子。
  6. 　溶融したゼラチンを含む液体の液滴を、該液滴との温度差が２３５℃以下である、加熱管または乾燥室の雰囲気中に吐出して乾燥させてゼラチンを粒子状に形成する工程と、前記粒子状に形成されたゼラチンを架橋させる工程とを含む、ゼラチン粒子の製造方法。
  7. 　前記液滴は、インクジェットヘッドのノズルから吐出される、請求項６に記載のゼラチン粒子の製造方法。
  8. 　前記ゼラチンの架橋が、加熱による自己架橋である、請求項６に記載のゼラチン粒子の製造方法。
  9. 　前記加熱を、６０℃以上２５０℃以下で行う、請求項８に記載のゼラチン粒子の製造方法。
  10. 　請求項１に記載のゼラチン粒子を細胞膜の内側に有する、ゼラチン粒子内包細胞。
  11. 　請求項１に記載のゼラチン粒子と細胞とを液体に添加して前記細胞の活動により前記ゼラチン粒子を前記細胞の細胞膜の内側に取り込ませる、ゼラチン粒子内包細胞の製造方法。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019088292A1 (ja) * 2017-11-06 2019-05-09 コニカミノルタ株式会社 ハイドロゲル粒子およびその製造方法、ハイドロゲル粒子を内包する細胞または細胞構造体、ハイドロゲル粒子を用いた細胞活性の評価方法、並びにハイドロゲル粒子の徐放性製剤としての使用
WO2019087829A1 (ja) * 2017-11-06 2019-05-09 コニカミノルタ株式会社 候補物質が生体の活性に与える影響を評価する方法、生分解性粒子、キット、および候補物質が生体の活性に与える影響を評価するシステム
JPWO2020261569A1 (ja) * 2019-06-28 2020-12-30

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008150596A (ja) * 2006-11-24 2008-07-03 Canon Inc 粒子の製造方法、及び粒子
JP2009519894A (ja) * 2005-12-20 2009-05-21 富士フイルム株式会社 タンパク質ナノ粒子およびその使用
WO2014192909A1 (ja) * 2013-05-31 2014-12-04 ｉＨｅａｒｔ Ｊａｐａｎ株式会社 ハイドロゲルを組み込んだ積層化細胞シート

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8293819B2 (en) * 2006-11-24 2012-10-23 Canon Kabushiki Kaisha Method for producing particles and particles
JP2014226097A (ja) * 2013-05-23 2014-12-08 株式会社日立ハイテクノロジーズ 細胞培養方法、粒子状培養担体、及び粒子包含細胞凝集体

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2009519894A (ja) * 2005-12-20 2009-05-21 富士フイルム株式会社 タンパク質ナノ粒子およびその使用
JP2008150596A (ja) * 2006-11-24 2008-07-03 Canon Inc 粒子の製造方法、及び粒子
WO2014192909A1 (ja) * 2013-05-31 2014-12-04 ｉＨｅａｒｔ Ｊａｐａｎ株式会社 ハイドロゲルを組み込んだ積層化細胞シート

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DOI, N. ET AL.: "Preparation of Biodegradable Gelatin Nanospheres with a Narrow Size Distribution for Carrier of Cellular Internalization of Plasmid DNA, 2012", JOURNAL OF BIOMATERIALS SCIENCE, vol. 23, no. 8, January 2012 (2012-01-01), pages 991 - 1004, XP055495396 *
ISHIKAWA, H. ET AL.: "Gelatin nanospheres incorporating siRNA for controlled intracellular release", BIOMATERIALS, vol. 33, no. 35, December 2012 (2012-12-01), pages 9097 - 9104, XP055393420 *
See also references of EP3395830A4 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019088292A1 (ja) * 2017-11-06 2019-05-09 コニカミノルタ株式会社 ハイドロゲル粒子およびその製造方法、ハイドロゲル粒子を内包する細胞または細胞構造体、ハイドロゲル粒子を用いた細胞活性の評価方法、並びにハイドロゲル粒子の徐放性製剤としての使用
WO2019087829A1 (ja) * 2017-11-06 2019-05-09 コニカミノルタ株式会社 候補物質が生体の活性に与える影響を評価する方法、生分解性粒子、キット、および候補物質が生体の活性に与える影響を評価するシステム
JPWO2019087829A1 (ja) * 2017-11-06 2020-11-26 コニカミノルタ株式会社 候補物質が生体の活性に与える影響を評価する方法、生分解性粒子、キット、および候補物質が生体の活性に与える影響を評価するシステム
JPWO2019088292A1 (ja) * 2017-11-06 2020-11-26 コニカミノルタ株式会社 ハイドロゲル粒子およびその製造方法、ハイドロゲル粒子を内包する細胞または細胞構造体、ハイドロゲル粒子を用いた細胞活性の評価方法、並びにハイドロゲル粒子の徐放性製剤としての使用
JP7217473B2 (ja) 2017-11-06 2023-02-03 コニカミノルタ株式会社 ハイドロゲル粒子およびその製造方法、ハイドロゲル粒子を内包する細胞または細胞構造体、ハイドロゲル粒子を用いた細胞活性の評価方法、並びにハイドロゲル粒子の徐放性製剤としての使用
JP7328654B2 (ja) 2017-11-06 2023-08-17 コニカミノルタ株式会社 候補物質が生体の活性に与える影響を評価する方法、生分解性粒子、キット、および候補物質が生体の活性に与える影響を評価するシステム
JPWO2020261569A1 (ja) * 2019-06-28 2020-12-30
WO2020261569A1 (ja) * 2019-06-28 2020-12-30 コニカミノルタ株式会社 細胞の分化状態を評価する方法およびゼラチンナノ粒子
JP7484906B2 (ja) 2019-06-28 2024-05-16 コニカミノルタ株式会社 細胞の分化状態を評価する方法およびゼラチンナノ粒子

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