WO2017039395A1 - 혈소판 응집 저해 효과를 갖는 화합물 및 그 염, 그리고 이를 포함하는 혈전성 질환 예방 또는 치료용 조성물 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a novel compound having a platelet aggregation inhibitory effect and a salt thereof, and more particularly, a novel platelet aggregation inhibitor and an active ingredient which selectively inhibits shear stress-induced platelet aggregation by shear stress. It relates to a pharmaceutical composition and a method for producing the same.
  • the human body has a self-healing or defense system to treat wounds and prevent blood loss, which is achieved by controlling and balancing platelet and plasma coagulation, fibrin breakdown, and coagulation inhibition.
  • a variety of factors when appropriate control and balance is broken, abnormal platelet aggregation occurs and further develops into thrombotic disease.
  • Thrombosis refers to the development of blood clots in the blood vessels, which can lead to disorders in the blood circulation or, in severe cases, blockage of blood flow.
  • Thrombosis includes arterial thrombosis, phlebothrombosis, hepatic portal vein thrombosis, pulmonary thromboembolism, chronic limb ischemia, varicose vein (Varicose vein), deep vein It causes deep vein thrombosis diseases, angina pectoris, cerebral infarction, cerebral hemorrhage, and also causes infection or blood vessel damage, postoperative complications, and coagulation disease.
  • thrombosis is produced by the interaction of abnormal blood vessel walls with hemodynamic forces, plasma coagulation proteins, and platelets.
  • Platelets are activated by a variety of agents (adenosine diphosphate, thromboxane A 2 , thrombin, etc.), and activated glycoprotein IIb / IIIa of platelets can be found in the blood conjugate proteins (fibrinogen; fibrinogen, von Willebrand factor; von Willebrand factor, etc.). ), Causing aggregation reaction.
  • shear stress is the most influential factor in the activation of platelets among physical stimuli, which means the force applied to blood vessels such as platelets, erythrocytes, and endothelial cells by blood flow.
  • Abnormal changes in shear stress are the leading cause of pathological arterial thrombus in vivo, and percutaneous coronary interventions such as stents, thoracotomy, and balloon angioplasty. due to interventions such as arterial detachment, vascular spasm or hypertension, atherosclerosis, and the like.
  • platelets When the shear stress rises abnormally, platelets are activated, and coagulation occurs by directly binding the bone protein urea and glycoprotein IIb / IIIa of activated platelets. This phenomenon accelerates the signaling system in platelets, increases intracellular calcium levels and releases various activators from granules, which in turn promotes platelet aggregation, producing thrombi (Nesbitt et al., Nature Medicine 15). , 665-673 (2009)
  • thrombosis diseases include antiplatelet agents (eg, aspirin, clopidogrel, etc.), anticoagulants (eg, heparin, warfarin, etc.) that antagonize chemical agents, and thrombolytic agents to treat formed clots (eg, tissue plasminogen activator). Etc. are used.
  • Aspirin is effective but is known to cause side effects such as gastrointestinal bleeding and peptic ulcers.
  • most of the drugs used as anticoagulants cannot be orally administered, and have low selectivity for blood clots, and thus have various side effects such as bleeding, hemolysis, immune response, fever, and allergies when taken for a long time.
  • the price of a commercially available therapeutic agent is very expensive, which makes it difficult for patients to use it easily.
  • the present application is based on the finding that compounds obtained through the structure activity relationship of anti-platelet aggregation inhibition including amide and ester structure are useful for preventing or treating thrombotic diseases while having fewer side effects such as bleeding.
  • the present application relates in one embodiment to a compound represented by formula (I) or (II) below, or a pharmaceutically acceptable salt or isomer thereof.
  • R 1 is hydroxy or C 1 -C 10 alkoxy
  • X is N or O
  • R 4 and R 5 are each independently C 1 -C 6 alkoxy group or a -CH 2 -5 to 12-membered heteroaryl, heterocycle and heteroaryl are N, O and Having 1 to 3 heteroatoms selected from S, heterocycle, heteroaryl and aryl are halogen, oxo, aminocarbonyl, C 1 -C 6 alkyl, nitro, C 1 -C 6 alkoxy, nitrile, C 1- C 6 alkyl may be substituted by aminocarbonyl, hydroxy, and hydroxy -C 1 -C 1 to 4 substituents selected from 6-alkyl;
  • R 3 is hydrogen
  • R 3 is absent when X is O;
  • R 2 and R 3 When X is N, together with R 2 and R 3 form a 5-12 membered heterocycle having 1-3 heteroatoms selected from O, N, and S, said heterocycle being C 6 -C 12 aryl, non- 6-12 membered heteroaryl having 1 to 3 heteroatoms selected from O, N and S, ring or substituted with halogen, -O-CHR 6 R 7 , wherein R 6 and R 7 are Each independently is C 6 -C 12 aryl unsubstituted or substituted with halogen or 6 to 10 membered heteroaryl having 1 to 3 heteroatoms selected from N, O and S.
  • the present application may be a compound, or a pharmaceutically acceptable salt or isomer thereof.
  • the present application may be a composition for preventing or treating thrombotic disease caused by platelet aggregation, which comprises a compound represented by Formula (I) or (II), or a pharmaceutically acceptable salt or isomer thereof as an active ingredient.
  • thrombotic disease herein may be, for example, but not limited to pulmonary embolism, thrombophlebitis, deep vein thrombosis, portal thrombosis, angina, arteriosclerosis or cerebral infarction.
  • compositions according to the invention can be formulated in a suitable form with the pharmaceutically acceptable carriers generally used.
  • pharmaceutically acceptable carriers refers to a component which is physiologically acceptable and which, when administered to a human, typically does not cause an allergic or similar reaction, such as gastrointestinal disorders, dizziness, and the like.
  • pharmaceutically acceptable carriers include, for example, water, suitable oils, saline, carriers for parenteral administration such as aqueous glucose and glycols, and the like.
  • compositions according to the invention may further comprise stabilizers and preservatives.
  • Suitable stabilizers include antioxidants such as sodium hydrogen sulfite, sodium sulfite or ascorbic acid.
  • Suitable preservatives include benzalkonium chloride, methyl- or propyl-paraben and chlorobutanol.
  • the composition according to the present invention if necessary according to the administration method or dosage form, suspensions, dissolution aids, stabilizers, isotonic agents, preservatives, adsorption agents, surfactants, diluents, excipients, pH adjusters, analgesics, buffers, Antioxidant etc. can be contained suitably.
  • compositions suitable for the present invention are described in detail in Remington's Pharmaceutical Sciences, latest edition. It may be prepared in unit dose form or incorporated into a multi-dose container.
  • the compounds of the invention are present in an amount of 0.0001 to 10% by weight, preferably 0.001 to 1% by weight, based on the total weight of the total composition.
  • the administration method of the pharmaceutical composition of the present application may be easily selected according to the formulation, and may be formulated and administered to mammals such as domestic animals and humans in various routes, oral or parenteral dosage forms described below.
  • Formulations for oral administration include, for example, tablets, pills, hard / soft capsules, solutions, suspensions, emulsifiers, syrups, granules, elixirs, troches, and the like. , Dextrose, sucrose, mannitol, sorbitol, cellulose and / or glycine), lubricants such as silica, talc, stearic acid and its magnesium or calcium salts and / or polyethylene glycols. Tablets may also contain binders such as magnesium aluminum silicate, starch paste, gelatin, methylcellulose, sodium carboxymethylcellulose and / or polyvinylpyrrolidine, and optionally such as starch, agar, alginic acid or its sodium salt. Disintegrant or boiling mixtures and / or absorbents, colorants, flavors, and sweeteners.
  • Formulations for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solvents, suspensions, emulsions, lyophilized preparations, suppositories.
  • non-aqueous solvent and the suspension solvent propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate, and the like can be used.
  • base of the suppository witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin butter, glycerol, gelatin and the like can be used.
  • the compounds represented by the formula (I) or (II) above or pharmaceutically acceptable salts thereof are sterilized and / or preservatives, stabilizers, wetting or emulsifying accelerators, salts and / or buffers for the control of osmotic pressure for formulation into parenteral dosage forms.
  • adjuvant, and other therapeutically useful substances may be mixed into water to prepare a solution or suspension, which may be prepared in ampoules or in vial unit dosage forms.
  • Preferred dosages for the human body of a pharmaceutical composition containing the compound represented by the above formula (I) or (II) as an active ingredient vary depending on the condition and weight of the patient, the extent of the disease, the form of the drug, the route of administration, and the duration of time. Can be appropriately selected.
  • the compounds of the invention are administered at 0.001 to 100 mg / kg body weight per day, more preferably 0.01 to 30 mg / kg body weight. Administration may be administered once a day or may be divided several times.
  • the dose may vary depending on various conditions such as the patient's weight, age, sex, health condition, diet, time of administration, method of administration, rate of excretion and the severity of the disease. Is apparent to those skilled in the art, and therefore the dosage does not limit the scope of the invention in any aspect.
  • the frequency of administration can be administered once a day or divided into several times within the desired range, the administration period is not particularly limited.
  • the compounds represented by the formula (I) or (II) of the present application as described above activate antiplatelet aggregation inhibition.
  • Shear stress is a physical stimulus applied to blood cells such as platelets and red blood cells and vascular endothelium by blood flow, and is maintained at a low level of 300-1500 s -1 under normal conditions, but stenosis, arteriosclerosis, cancer, and blood vessels. In pathological narrowing of blood vessels, such as convulsions, they rise abnormally and even rise above 10,000 s -1 . This excessively elevated shear stress can directly activate and aggregate platelets, which is defined as shear stress-induced platelet aggregation (SIPA).
  • SIPA shear stress-induced platelet aggregation
  • Platelet aggregation by shear stress begins with the binding of von Willebrand factor (vWF) and glycoprotein (GP) Ib, and then stabilizes platelet aggregation by increasing intracellular calcium concentration, secretion of activators from granules, and expression of adherent proteins. And causes thrombus formation.
  • vWF von Willebrand factor
  • GP glycoprotein
  • shear stress is one of the most important causes of pathological arterial thrombus in vivo, and there is no drug developed or targeted for platelet aggregation caused by shear stress.
  • First-in-class will not only replace existing products but also open up new markets.
  • a drug-induced platelet activation through a new mechanism unlike other chemical agonist is advantageous to reflect the in vivo environment caused by the change in the blood flow and the mechanism of action is vWF-GP Ib bond, intracellular Ca 2 + variation, It is expected to work by subdividing into five levels of GP IIb / IIIa activation, vWF secretion, and ADAMTS13 activation.
  • the compound represented by the formula (I) or (II) of the present application shows little side effects such as bleeding even after long-term administration.
  • prevention means any action that inhibits or delays the onset of a related disease by administration of a composition according to the invention. It will be apparent to those skilled in the art that the compositions herein can be prevented when administered prior to or at the onset of symptoms.
  • treatment means any action that ameliorates or beneficially alters the symptoms of a related disease by administration of a composition according to the present application, wherein treatment includes alleviation or amelioration.
  • treatment includes alleviation or amelioration.
  • the present application relates to a method for treating or preventing a thrombus, comprising administering to a subject in need thereof a therapeutically effective amount of the composition according to the invention.
  • the term “individual” refers to a subject in need of treatment of a disease, and more specifically, human or non-human primates, mice, rats, dogs, cats, horses and cattle, etc. Mean mammal.
  • a method of administering a composition according to the present disclosure to an individual may refer to the foregoing.
  • the term “therapeutically effective amount” refers to an amount of a compound according to the invention or a pharmaceutical composition comprising the same, which is sufficient to treat, inhibit, alleviate, or prevent a thrombus as described above. This can be determined by applying the benetif / risk ratio judgment. However, the total daily dose may be determined by the physician's reasonable findings. In addition, the daily dose of a particular patient may also vary a number of factors, such as the type of specific disease, the severity of the disease, the type of drug administered, the type of composition used, the age, body weight, general health, sex, and diet of the patient.
  • the dose is started in an amount less than that required for the desired effect, and the dose is gradually increased until the desired effect is obtained.
  • the compound according to the present invention or a pharmaceutically acceptable salt or isomer thereof has an effect of inhibiting platelet aggregation, and a composition including the same can efficiently prevent or treat thrombotic disease while having less side effects such as bleeding.
  • TLC Thin layer chromatography
  • the reagents used in this experiment were purchased from Sigma-Aldrich, Lancaster, and Fluka, and the solvent used in the reaction was Sigma-Aldrich, Merck.
  • a first grade reagent from Merck, Junsei Chemical Co. was used without purification.
  • THF used in the solvent was used when the Na metal and benzophenone were added and heated to reflux in argon to turn blue.
  • dichloromethane (CH 2 Cl 2 ) was used by adding reflux with CaH 2 in an argon stream. Ethyl acetate and hexane were purified by heating under reflux in an argon stream.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAC and 10 mL of purified water were added, and the layers were separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAC and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated and the resulting solid was filtered and washed with purified water to give 0.55 g of the target compound as a white solid.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAC and 10 mL of purified water were added, and the layers were separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAC and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated, 10 mL EtOAc, 10 mL purified water, and the layers were separated. The organic layer was concentrated by distillation under reduced pressure, purified by flash column chromatography, and concentrated to obtain 0.34 g of the target compound as a white solid.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAC and 10 mL of purified water were added, and the layers were separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAC and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated and the resulting solid was filtered and washed with purified water to give 0.35 g of the target compound as a white solid.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAc and 10 mL of purified water were added and the layers separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAc and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated, 10 mL EtOAc, 10 mL purified water, and the layers were separated. The organic layer was concentrated by distillation under reduced pressure and purified by flash column chromatography to obtain 0.54 g of the target compound as a red solid.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAC and 10 mL of purified water were added, and the layers were separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAC and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated, 10 mL EtOAc, 10 mL purified water, and the layers were separated. The organic layer was concentrated by distillation under reduced pressure. To the resulting solid was added to a small amount of IPA and stirred to obtain 0.30 g of the target compound as a white solid.
  • TEA 0.5 mL of TEA was added dropwise while maintaining at 0 ° C., and the temperature was gradually raised to room temperature, followed by stirring for 2 hours.
  • DCM was concentrated, 10 mL of EtOAc and 10 mL of purified water were added and the layers separated. The aqueous layer was extracted with 10 mL of EtOAc and the aqueous layer was discarded. The organic layer was concentrated. 5 mL of MeOH, 5 mL of purified water, and 3.3 mL of TEA were added to the concentrate, and the mixture was refluxed for 4 hours. MeOH was concentrated, 10 mL EtOAc, 10 mL purified water, and the layers were separated. The organic layer was concentrated by distillation under reduced pressure and purified by flash column chromatography to obtain 0.48 g of the target compound as a pale yellow solid.
  • Example 18 4 -((4- Chlorophenyl ) (Pyridin-2-yl) Methoxy ) Piperidin-1-yl) (4- Hydroxy -3-methoxyphenyl) methanone
  • gentisic acid 0.68 g of EDC, 0.48 g of HOBt, 0.4 mL of TEA, and 0.55 g of homosystein thiolactone hydrochloride were added to 10 mL of DMF, and the mixture was stirred at 60 to 80 ° C for 4 hours.
  • 10 mL of EtOAc and 10 mL of purified water were added to the reaction mixture, and the layers were separated.
  • 10 mL of EtOAc was added to the aqueous layer, and extracted once. The aqueous layer was discarded.
  • the organic layer was washed three times with 10 mL of purified water, dried over Na 2 SO 4 , and filtered. Distillation under reduced pressure was carried out, and the residue was purified by flash column chromatography to obtain 0.21 g of the target compound as a white solid.
  • PRP was diluted with PPP to include 3 ⁇ 10 8 platelets per ml and used in the experiment.
  • PRP was placed on a cone-plate viscometer (RotoVisco 1, Thermo Fischer Scientific, USA) and subjected to shear stress at 37 ° C. for 3 minutes at a shear rate of 10,800 s ⁇ 1 .
  • 1.2 ⁇ l of 25 ⁇ M candidate was treated with PRP 598.8 ⁇ l before induction of platelet aggregation, and incubated at 37 ° C. for 3 min using a thermomixer.
  • A The number of platelets alone in sample subjected to shear stress after treatment with candidate substance
  • Example 14 As shown in Table 2, it was confirmed that the platelet aggregation inhibition effect by the shear stress is at least 30% in Example 14, Example 20 (each 25 ⁇ M). In addition, in Example 1, Example 12, Example 13, Example 15, Example 23 (25 ⁇ M each), it was confirmed that the 20 to 30%.
  • WPs human washed platelets
  • ACD acidic citrarate-dextrose
  • PGE 1 Prostaglandin E 1 , PGE 1 was treated with 1 ⁇ M of blood to inhibit platelet activation.
  • the collected blood was centrifuged at 150 g for 15 minutes to obtain PRP in the supernatant, which was centrifuged at 500 g for 10 minutes to obtain platelets.
  • Washing buffer 134 mM NaCl, 2.9 mM KCl, 1.0 mM MgCl 2 .6H 2 O, 10.0 mM HEPES, 5.0 mM dextrose, 12.0 mM NaHCO 3 , 0.34 mM Na 2 HPO 4 , 10% ACD, 0.3%
  • the suspension was washed with bovine serum albumin, 1 ⁇ M PGE 1 , pH 7.4), and then centrifuged at 400 g for 10 minutes. Platelets obtained here were suspended in suspension buffer.
  • Platelet counts in WP were counted using a hemacytometer, diluted with suspension buffer to contain 3 ⁇ 10 8 platelets per ml, and then CaCl 2 was added to a final concentration of 2 mM. It was used for the experiment.
  • WP added vWF to a final concentration of 10 ⁇ g / ml, and placed on a cone-plate viscometer, and then subjected to shear stress at 37 ° C. for 3 minutes at a shear rate of 10,800 s ⁇ 1 .
  • 10, 25, and 50 ⁇ M of candidates were treated with WP before induction of platelet aggregation, and incubated at 37 ° C. for 3 minutes using a thermomixer.
  • a Doppler flow probe (0.5 mm-diameter, MA0.5PSB, Transonic System Inc., USA) was fixed to the exposed carotid artery and connected to a doppler flow-meter (TS420, Transonic System Inc., USA). 50% FeCl 3 at 60 minutes after oral administration Whatman No. soaked in solution
  • Example 1 the candidate material exhibiting at least 2.5 times the effect of the control (Control) in the thrombus generation model by the iron chloride is Example 1, Example 20.
  • Vehicle, clopidogrel, aspirin or candidates were orally administered twice a day for 3 days. Two hours after the final administration on day 4, rats were intraperitoneally administered with urethane (100 mg / 300 ⁇ l / 100 g) to induce anesthesia. 0.9% physiological saline was perfused 0.2 ml per minute to 0.3 ml / min to remove residual blood, and then, it was quenched in 1 ml of protein lysis buffer (lysis buffer, NaOH 2g, Na 2 CO 3 0.1g in 500 ml DW). . After vascular clots were collected, they were bathed in boiling water with protein lysis buffer.
  • lysis buffer NaOH 2g, Na 2 CO 3 0.1g in 500 ml DW
  • reaction solution 10 ml bicinchoninic acid solution + 200 ⁇ l 4% copper sulfate solution
  • 10 ⁇ l of the thrombus was then reacted at 37 ° C. for 30 minutes, and quantitated by an ELISA reader (562 nm).
  • Example 1 Example 12, Example 13, Example 14, Example 15, Example 20 and Example 23 compared to the control group in the oral administration of the shear stress (Shear It was confirmed that thrombus formation by stress was significantly suppressed. Compared with the clopidogrel administration group, which is currently used as the most antiplatelet agent, it was found that the degree of inhibition of thrombogenesis of candidate substance was almost similar to that of clopidogrel.
  • Inhibition Degree (%) 100-[(C-A) X 100 / (B-A)]
  • the inhibitory effect of the candidate material was studied after activating platelets with physiological agonists such as thrombin, collagen and ADP.
  • 1.2 ⁇ l of the candidate substance was treated in 598.8 ⁇ l of human PRP by concentration (25, 100, 250 ⁇ M) and reacted for 3 minutes at 37 ° C. using a thermomixer. Then, 495 ⁇ l of PRP was placed in an aggregometer cuvette, preincubated for 1 minute, and then platelet aggregation-inducing samples, thrombin (0.6 to 0.8 U / ml), collagen (collagen, 2 to 5 ⁇ g / ml), and ADP (ADP). : Adenosine diphosphate (15 ⁇ 20 ⁇ M) was added to the minimum concentration causing maximum aggregation.
  • the degree of aggregation of platelets was measured by the change in turbidity (lumi-aggregometer, Chrono-Log Co., USA).
  • the turbidity of PRP was 0%, and the turbidity of PPP was 100%.
  • the stirring was continued at 1,000 rpm while the reaction occurred with a magnetic stir bar coated with silicon. The reaction was observed for 5 minutes for thrombin and ADP and 6 minutes for collagen.
  • EA.hy926 is 1 ⁇ 10 in DMEM (Dulbecco's minimum essential medium) with 10% FBS (fetal bovine serum) and sub-cultured under the conditions of 5% CO 2/37 °C in culture medium, the test when a 96-well plate (96 well plate) After 48 hours of incubation with 4 cells / well, the cells were washed twice with DMEM and then incubated for 24 hours. Candidates were prepared at a final concentration of 25 and 100 ⁇ M, treated with 200 ⁇ l per well and incubated for 24 hours. After the color development in purple using the MTT assay was measured for absorbance at 570 nm.
  • the lactate dehydrogenase (LDH) effluent from platelets was used by spectro-photometry method.
  • 1.2 ⁇ l of the test substance was added to 598.8 ⁇ l of PRP, and the mixture was reacted at 37 ° C for 3 minutes using a thermomixer. After the reaction, 100 ⁇ l of the sample was taken, centrifuged at 12,000 g for 2 minutes, 80 ⁇ l of the supernatant was taken and refrigerated until evaluation, and evaluation was made within 24 hours. 50 ⁇ M digitonin was treated for 1 hour as a positive control.
  • the rate of absorbance decrease refers to the rate of oxidation of NADH, which indicates the activity of LDH released from platelets.
  • the total activity of LDH was measured by inducing platelet lysis with 0.3% Triton X-100, and the LDH control was measured in plasma. The activity of each sample was measured as a percentage of the total activity of LDH.
  • HepG2 cells a human liver carcinoma cell line, were cultured at 37 ° C. and 5% CO 2 in a medium containing DMEM (Dulbecco's minimum essential medium), 10% FBS (fetal bovine serum), and 1% penicillin / streptomycin. After 48 hours of incubation at 4 x 10 4 cells / well in a 48 well plate was used for the experiment. HepG2 cells were treated with candidate material (250 ⁇ M) for 18 hours, and then the medium was removed and WST-1 was added, followed by shading for 3 hours. After 3 hours, the supernatant was taken and the absorbance was measured at 450 nm. Cell viability was calculated by comparing the absorbance measured after adding WST-1 to HepG2 cells not treated with candidate substances. Acetaminophen (40 mM, acetaminophen) was used as a control.
  • DMEM Disulbecco's minimum essential medium
  • FBS fetal bovine serum
  • penicillin / streptomycin
  • Plasma was obtained by centrifuging whole blood at 2000 g for 20 minutes. Plasma coagulation time was measured after treatment with plasma for 3 minutes. Plasma clotting time was measured AP entity (Activated Partial Thromboplastin Time, aPTT) , repetition (Prothrombin Time, PT) by using a (Becton Dickinson, Cockeysville, MD) ® BBL Fibrometer.
  • aPTT Activated Partial Thromboplastin Time
  • PT Prothrombin Time
  • CaCl 2 was added after the reaction and blood coagulation time was measured immediately.
  • PT PT reagent was added to warmed plasma and blood clotting time was immediately measured.
  • diti DTI
  • the overnight fasted male rats (Sprague-Dawley rat, 250-300 g) were orally administered with a candidate substance by concentration, and then anesthetized by intraperitoneal injection of urethane (1.25 g / kg). 3 mm of the tail tip of the rat was cut and carefully wiped every 30 seconds. The bleeding time was measured by the time until no more blood was buried, and the bleeding time was recorded as 30 minutes if the bleeding lasted more than 30 minutes.
  • Candidates 50 mg / kg
  • clopidogrel 15 mg / kg
  • aspirin 100 mg / kg
  • ICR mice male, 35-40 g
  • 1 hour after the last dose of anesthesia cut 4 mm from the tail end of the mouse, immerse the tip of the mouse in a transparent 15 ml tube containing 37 ° C saline solution prepared before Was measured.
  • clopidogrel was delayed about 22 times the bleeding time compared to the control group because the time taken from the clinical dose to hemostasis exceeded 35 minutes.
  • aspirin was found to be delayed by about 7.6 times bleeding time over 12 minutes.
  • the time taken for hemostasis showed a bleeding time of about 1 minute and 30 seconds to a degree similar to that of the control group. Therefore, the side effects of bleeding on the candidate were hardly observed, and thus, it was confirmed that the anti-platelet candidate was a novel substance that overcomes the bleeding side effect of the existing antiplatelet agent.
  • ICR mice female, male, 18-26g
  • vehicle 0.5% methylcellulose
  • candidates were orally administered at low, medium and high doses (100, 300, 1000 mg / kg) once a day for 2 weeks.
  • the NOAEL values of the candidates were calculated by observing and recording mortality, mortality, weight change, clinical symptoms, feed and drinking intake, gross anatomical findings, histopathological readings of organs, and organ weights.

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Abstract

본 발명은 혈소판 응집 저해 효과를 갖는 신규한 화합물 및 그 염류에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 전단응력에 의한 혈소판 응집(shear stress-induced platelet aggregation)을 선택적으로 저해하는 새로운 혈소판 응집 저해제 및 이를 유효성분으로 하는 약학적 조성물 및 그 제조 방법에 관한 것이다.

Description

혈소판 응집 저해 효과를 갖는 화합물 및 그 염, 그리고 이를 포함하는 혈전성 질환 예방 또는 치료용 조성물
본 발명은 혈소판 응집 저해 효과를 갖는 신규한 화합물 및 그 염류에 관한 것으로서, 더욱 상세하게는 전단응력에 의한 혈소판 응집(shear stress-induced platelet aggregation)을 선택적으로 저해하는 새로운 혈소판 응집 저해제 및 이를 유효성분으로 하는 약학적 조성물 및 그 제조 방법에 관한 것이다.
인체는 상처부위의 치료와 혈액의 손실을 막기 위한 자가치료 또는 방어체계를 가지고 있으며, 이것은 혈소판과 혈장의 응고, 섬유소 분해, 그리고 응고억제의 조절과 균형으로 이루어진다. 그러나, 여러 가지 요인으로 적절한 조절과 균형이 깨어지면 비정상적인 혈소판 응집이 발생하고 나아가 혈전성 질환으로 발전하게 된다.
혈전증(thrombosis)은 혈관 내 혈전(blood clot)이 생겨 혈액 순환계에 장애가 생기거나, 심할 경우 혈액의 흐름이 막히는 것을 뜻한다. 혈전증은 동맥 혈전증(atherothrombosis), 정맥 혈전증(phlebothrombosis), 간문맥 혈전증(hepatic portal vein thrombosis), 폐동맥 색전증(pulmonary thromboembolism), 만성정맥허혈(chronic limb ischemia), 하지정맥류(Varicose vein), 심부정맥혈전증(deep vein thrombosis diseases), 협심증(angina pectoris), 뇌경색(cerebral infarction), 뇌출혈(cerebral hemorrhage) 등을 일으키며, 또한 감염 또는 혈관의 손상, 수술 후의 합병증, 응고성 질환 등을 일으킨다. 이러한 혈전증은 비정상적 혈관벽과 혈역학적 힘, 혈장의 응고단백질, 혈소판의 상호작용에 의해 생성된다. 혈소판은 다양한 작용제(adenosine diphosphate, thromboxane A2, thrombin 등)에 의해 활성화되며, 활성화된 혈소판의 당단백질 IIb/IIIa 등이 혈액내 접합 단백질들(피브리노겐; fibrinogen, 본윌레브란드요소; von Willebrand factor 등)과 결합하여 응집반응을 일으킨다.
최근에는 화학적 작용제뿐 아니라, 물리적 자극에 의해 혈소판이 비정상적으로 활성화되어 혈전증을 유발하는 것이 알려졌다. 물리적 자극 중 혈소판의 활성화에 가장 큰 영향을 미치는 것은 전단응력(shear stress)이며, 이는 혈류에 의해 혈소판, 적혈구, 내피세포 등 혈관 내 세포들에 가해지는 힘을 의미한다. 전단응력의 비정상적인 변화는 생체 내에서 야기되는 병리학적 동맥 혈전 발생의 가장 주요한 원인이며, 스텐트(stent), 죽 상반 절제술(atherectory), 풍선 혈관 성형술(balloon angioplasty)와 같은 경피적 관상 동맥 중재술(percutaneous coronary intervention)에 의한 동맥박리, 혈관 경력(vascular spasm) 또는 고혈압(hypertension), 동맥경화(atherosclerosis) 등과 같은 질환에 기인한다.
전단응력이 비정상적으로 상승할 경우 혈소판이 활성화되고, 직접적으로 본윌레브란드요소와 활성화된 혈소판의 당단백질 IIb/IIIa가 결합하여 응집이 일어난다. 이러한 현상은 혈소판내의 신호체계를 가속화 시키고, 세포내 칼슘농도를 증가시키며, granules로부터 다양한 활성인자를 방출하게 함으로 결국 혈소판의 응집을 촉진시켜, 혈전을 생성한다.(Nesbitt et al., Nature Medicine 15, 665 - 673 (2009))
현재 혈전 질환의 예방과 치료에는 화학적 작용제에 길항하는 항혈소판제(예로, 아스피린, 클로피도그렐 등), 항응고제(예로, 헤파린, 와파린 등), 형성된 혈전을 치료하기 위한 혈전용해제(예로, tissue plasminogen activator 등) 등이 사용되고 있다. 아스피린은 효과는 뛰어나지만 위장관 출혈과 소화성 궤양 등의 부작용을 일으키는 것으로 알려져 있다. 또한, 그 외의 항응고제로 쓰이는 약물들은 대부분 경구 투여가 불가능하며, 혈전에 대한 선택성이 적어 장기간 복용시 출혈, 용혈현상, 면역반응, 발열, 알러지 등의 다양한 부작용을 나타내고 있다. 이러한 부작용과 효능미비와 더불어, 시판되고 있는 치료제의 가격이 매우 고가로서 환자들이 쉽게 사용하기 어려운 문제점이 대두되었다.
이와 같은 이유로 전단응력에 의한 혈소판응집에만 선택적으로 관여하고, 부작용이 적은 항혈소판제 개발의 필요성이 대두되고 있다. (Kiefer and Becker, Circulation, 2009, 120:2488-2495/Gilbert et al., Circulation, 2007, 116:2678-2686)
본원은 아마이드 및 에스터 구조를 포함하는 항혈소판 응집 억제의 구조활성연구(structure activity relationship)를 통해 얻은 화합물이 출혈 등의 부작용이 적으면서도 혈전성 질환 예방 또는 치료에 유용하다는 발견에 근거한 것이다.
본원은 한 양태에서 하기 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물, 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체에 관한 것이다.
[화학식 I]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000001
[화학식 II]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000002
상기 화학식에서,
R1은 하이드록시 또는 C1-C10 알콕시이고;
X는 N 또는 O이며;
R2는 -(CH2)p-5 내지 12원 헤테로사이클-(CH2)p-C6-C12 아릴, 5 내지 12원 헤테로사이클, -(CH2)p-NHC(=O)-C6-C12 아릴, -CHR4R5, 5 내지 12원 헤테로아릴, C6-C12 아릴, -C6-C12 아릴-O-5 내지 12원 헤테로아릴, -(CH2)p-5 내지 12원 헤테로아릴 또는 -(CH2)p-C6-C12 아릴이고,
여기에서 p는 1 내지 10의 정수이며, R4 및 R5는 각각 독립적으로 C1-C6 알콕시카르보닐기 또는 -CH2-5 내지 12원 헤테로아릴이고, 헤테로사이클 및 헤테로아릴은 N, O 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 가지며, 헤테로사이클, 헤테로아릴 및 아릴은 할로겐, 옥소, 아미노카르보닐, C1-C6 알킬, 니트로, C1-C6 알콕시, 니트릴, C1-C6 알킬아미노카르보닐, 하이드록시 및 하이드록시-C1-C6 알킬로부터 선택되는 1 내지 4개의 치환기로 치환될 수 있고;
R3는 수소이며;
X가 O인 경우 R3는 존재하지 않고;
X가 N인 경우 R2 및 R3와 함께 O, N 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 5 내지 12원 헤테로사이클을 형성하며, 상기 헤테로사이클은 C6-C12 아릴, 비치환되거나 할로겐으로 치환된 O, N 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 6 내지 12원 헤테로아릴, -O-CHR6R7 로 치환될 수 있고, 여기에서 R6 및 R7은 각각 독립적으로 비치환 또는 할로겐으로 치환된 C6-C12 아릴 또는 N, O 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 6 내지 10원 헤테로아릴이다.
화합물의 구체적인 예는 다음과 같다:
1.(6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논
2. (3,4-디하이드록시페닐)(4-(5-플루오로벤조[d]이속사졸-3-일)피페리딘-1-일)메타논
3. N-((4-(4-플루오로벤질)몰포린-2-일)메틸)-3,4-디하이드록시벤즈아마이드
4. 3,4-디하이드록시-N-(2-옥소테트라하이드로티오펜-3-일)벤즈아마이드
5. N,N '-(노난-1,9-디일)비스(3,4-디하이드록시벤즈아마이드)
6. (4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논
7. (S)-(4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논
8. (S)-메틸-2-(3,4-디하이드록시벤즈아미도)-3-(1H-인돌-3-일)프로파노에이트
9. 4-(3,4-디하이드록시벤즈아미도)-1-메틸-3-프로필-1H-피라졸-5-카르복스아마이드
10. 2-메틸-4-옥소-4H-피란-3-일 3,4-디하이드록시벤조에이트
11. (3,4-디하이드록시페닐)(4-페닐피페라진-1-일)메타논
12. (6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(4-하이드록시-3-메톡시페닐)메타논
13. 2-에틸-4-옥소-4H-피란-3-일 4-하이드록시-3-메톡시벤조에이트
14. 2-메틸-4-옥소-4H-피란-3-일 4-하이드록시-3-메톡시벤조에이트
15. 4-하이드록시-3-메톡시-N-(4-메톡시-2-니트로페닐)벤즈아마이드
16. N-(3-에티닐페닐)-4-하이드록시-3-메톡시벤즈아마이드
17. 4-(4-(4-하이드록시-3-메톡시벤즈아미도)페녹시)-N-메틸피코린아마이드
18. 4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(4-하이드록시-3-메톡시페닐)메타논
19.4-하이드록시-N-((3-하이드록시-5-(하이드록시메틸)-2-메틸피리딘-4-일)메틸)-3-메톡시벤즈아마이드
20. (6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(2,5-디하이드록시페닐)메타논
21. (4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(2,5-디하이드록시페닐)메타논
22. N-((4-(4-플루오로벤질)몰포린-2-일)메틸)-2,5-디하이드록시벤즈아마이드
23. (2,5-디하이드록시페닐)(4-(5-플루오로벤조[d]이속사졸-3-일)피페리딘-1-일)메타논
24. N-(3,4-디메톡시펜에틸)-2,5-디하이드록시벤즈아마이드
25. 2,5-디하이드록시-N-(2-(티오펜-2-일)에틸)벤즈아마이드
26. 2,5-디하이드록시-N-(2-옥소테드라하이드로티오펜-3-일)벤즈아마이드.
따라서, 또 다른 양태에서 본원은 상기 중 택일적으로 선택되는 화합물, 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체일 수 있다.
또 다른 양태에서 본원은 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물, 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체를 유효성분으로 포함하는 혈소판 응집에 의한 혈전성 질환의 예방 또는 치료용 조성물일 수 있다. 본원에서 혈전성 질환은 예를 들면 폐색전증, 혈전성정맥염, 심부정맥혈전증, 문맥혈전증, 협심증, 동맥경화증 또는 뇌경색일 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
본원에 따르는 약학적 조성물은 일반적으로 사용되는 약학적으로 허용가능한 담체와 함께 적합한 형태로 제형화될 수 있다. '약학적으로 허용되는'이란 생리학적으로 허용되고 인간에게 투여될 때, 통상적으로 위장 장애, 현기증 등과 같은 알레르기 반응 또는 이와 유사한 반응을 일으키지 않는 성분을 말한다. 예로서 약학적으로 허용되는 담체로는 예를 들면, 물, 적합한 오일, 식염수, 수성 글루코스 및 글리콜 등과 같은 비경구 투여용 담체 등이 있다.
또한, 본 발명에 따른 조성물은 안정화제 및 보존제를 추가로 포함할 수 있다. 적합한 안정화제로는 아황산수소나트륨, 아황산나트륨 또는 아스코르브산과 같은 항산화제가 있다. 적합한 보존제로는 벤즈알코늄 클로라이드, 메틸- 또는 프로필-파라벤 및 클로로부탄올이 있다. 또한 본 발명에 따른 조성물은 그 투여방법이나 제형에 따라 필요한 경우, 현탁제, 용해보조제, 안정화제, 등장화제, 보존제, 흡착방지제, 계면활성화제, 희석제, 부형제, pH 조정제, 무통화제, 완충제, 산화방지제 등을 적절히 포함할 수 있다. 상기에 예시된 것들을 비롯하여 본 발명에 적합한 약학적으로 허용되는 담체 및 제제는 문헌[Remington's Pharmaceutical Sciences, 최신판]에 상세히 기재되어 있다. 단위 용량 형태로 제조되거나 또는 다용량 용기 내에 내입시켜 제조될 수 있다. 약학적 조성물에서 본 발명의 화합물은 전체 조성물 총 중량에 대하여 0.0001 내지 10 중량%, 바람직하게는 0.001 내지 1 중량%의 양으로 존재한다.
본원의 약학 조성물의 투여방법은 제형에 따라 용이하게 선택될 수 있으며, 가축, 인간 등의 포유동물에 다양한 경로, 하기의 경구 또는 비경구 투여 형태로 제제화되어 투여될 수 있다.
경구 투여용 제형으로는 예를 들면 정제, 환제, 경/연질 캅셀제, 액제, 현탁제, 유화제, 시럽제, 과립제, 엘릭시르제, 트로키제 등이 있는데, 이들 제형은 유효성분 이외에 희석제(예: 락토즈, 덱스트로즈, 수크로즈, 만니톨, 솔비톨, 셀룰로즈 및/ 또는 글리신), 활택제(예: 실리카, 탈크, 스테아르산 및 그의 마그네슘 또는 칼슘염 및/또는 폴리에틸렌 글리콜)를 함유하고 있다. 정제는 또한 마그네슘 알루미늄 실리케이트, 전분 페이스트, 젤라틴, 메틸셀룰로즈, 나트륨 카복시메틸셀룰로즈 및/또는 폴리비닐피롤리딘과 같은 결합제를 함유할 수 있으며, 경우에 따라 전분, 한천, 알긴산 또는 그의 나트륨 염과 같은 붕해제 또는 비등 혼합물 및/또는 흡수제, 착색제, 향미제, 및 감미제를 함유할 수 있다.
비경구 투여를 위한 제형에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세롤, 젤라틴 등이 사용될 수 있다. 비경구 투여용 제형으로 제제화하기 위하여 상기 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용되는 염을 멸균되고/되거나 방부제, 안정화제, 수화제 또는 유화 촉진제, 삼투압 조절을 위한 염 및/또는 완충제 등의 보조제, 및 기타 치료적으로 유용한 물질과 함께 물에 혼합하여 용액 또는 현탁액으로 제조하고, 이를 앰플 또는 바이알 단위 투여형으로 제조할 수 있다.
본원의 상기 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물을 유효성분으로 함유하는 약학적 조성물의 인체에 대한 바람직한 투여량은 환자의 상태 및 체중, 질병의 정도, 약물 형태, 투여경로 및 기간에 따라 다르지만, 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 그러나, 바람직하게는, 본 발명의 화합물을 1일 0.001 내지 100 mg/체중kg으로, 보다 바람직하게는 0.01 내지 30 mg/체중kg으로 투여한다. 투여는 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수 있다. 투여량은 환자의 체중, 연령, 성별, 건강상태, 식이, 투여시간, 투여방법, 배설율 및 질환의 중증도 등의 여러 가지 조건에 따라 변동가능하기 때문에, 상기 투여량에 가감이 있을 수 있다는 사실은 당업자에게 자명하며, 따라서 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다. 투여횟수는 원하는 범위 내에서 하루에 1회, 또는 수회로 나누어 투여할 수 있으며, 투여 기간도 특별히 한정되지 않는다.
상술한 바와 같은 본원의 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물은 항혈소판 응집억제를 활성화한다.
전단응력(shear stress)이란 혈류에 의해 혈소판, 적혈구 등의 혈구세포와 혈관 내피에 가해지는 물리적인 자극으로 정상적인 상태에서는 300-1500 s-1의 낮은 정도로 유지되지만, 협착증, 동맥경화, 암, 혈관 경련 등 혈관이 병적으로 좁아지는 상태에서는 비정상적으로 상승하며 심지어 10,000 s-1 이상으로 높아진다. 이렇게 과도하게 상승된 전단응력은 직접적으로 혈소판을 활성화 및 응집시킬 수 있으며, 이를 전단응력에 의한 혈소판 응집(shear stress-induced platelet aggregation, SIPA)이라 정의한다. 전단응력에 의한 혈소판 응집은 von Willebrand factor(vWF)와 glycoprotein(GP) Ib의 결합으로부터 시작되며 이후에 세포 내 calcium 농도 증가, 과립(granule)으로부터 활성인자 분비, 부착 단백들의 발현을 통해 안정적인 혈소판 응집 및 혈전 생성을 유발한다.
실제적으로 전단응력(shear stress)은 생체 내에서 야기되는 병리학적 동맥 혈전 발생의 가장 중요한 원인 중 하나로 현재까지 전단응력에 의한 혈소판 응집을 타겟으로 개발되거나, 개발중인 약물은 없어, 이 약물의 개발은 First-in-class로 기존 제품의 대체뿐 아니라 신규 시장의 개척이 가능할 것으로 여겨진다. 특히 이 약물의 경우 다른 chemical agonist와는 달리 새로운 기전을 통해 혈소판 활성화를 유발하며 혈류의 변화에 의해 유발되는 in vivo 환경을 반영하기 유리하며 작용기전은 vWF-GP Ib 결합, 세포 내 Ca2 + 변화, GP IIb/IIIa 활성화, vWF 분비, ADAMTS13 활성화 5단계로 세분하여 작용되는 것으로 예측된다.
또한, 본원의 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물은 종래의 항혈소판제와는 달리 장기간 복용하여도 출혈 등의 부작용을 거의 나타내지 않는다.
본원에 사용된 용어 “예방”은 본원에 따른 조성물의 투여로 관련 질환의 발병을 억제 또는 지연시키는 모든 행위를 의미한다. 본원의 조성물이 증상 발생 전이나 초기에 투여할 경우 이러한 질환을 예방할 수 있다는 것은 당업자에게 자명할 것이다.
본원에 사용된 용어 “치료”는 본원에 따른 조성물의 투여로 관련 질환의 증세를 호전시키거나 이롭게 변경하는 모든 행위를 의미하며, 치료는 완화 또는 개선을 포함한다. 본원이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자라면, 대한 의학협회 등에서 제시된 자료를 참조하여 질환의 정확한 기준을 알고, 개선, 향상 및 치료된 정도를 판단할 수 있을 것이다.
또 다른 양태에서 본원은 본원에 따른 조성물을 항혈전의 치료에 유효한 양으로, 혈전의 치료가 필요한 개체에 투여하는 단계를 포함하는 혈전전의 치료 또는 예방 방법에 관한 것이다.
본원의 용어 “개체”는 질병의 치료를 필요로 하는 대상을 의미하고, 보다 구체적으로는 인간 또는 비-인간인 영장류, 생쥐(mouse), 쥐(rat), 개, 고양이, 말 및 소 등의 포유류를 의미한다.
본원에 따른 조성물을 개체에 투여하는 방법은 앞서 설명한 바를 참조할 수 있다.
본원의 용어“치료적으로 유효한 양”은 앞서 기술한 바와 같은 혈전전을 치료, 억제, 경감 또는 방지에 충분한, 본원에 따른 화합물 또는 이를 포함하는 약학조성물의 양을 일컫는 것으로 임의의 약물에 적용되는 효과대비위험성 (benetif/risk ratio) 판단을 적용하여 결정할 수 있을 것이다. 하지만 하루 총 투여량은 의사의 합리적 소견에 따라 결정될 수 있을 것이다. 아울러, 특정 환자의 하루 투여량 또한 다양한 요인, 예를 들면, 구체적 질환의 종류, 질환의 심각성, 구체적 투여 약물의 종류, 사용된 조성물의 종류, 환자의 나이, 체중, 일반적 건강상태, 성별, 식이, 투여시간, 투여경로, 약물의 흡수, 분포 및 배설률, 투여기간, 사용되는 다른 약물의 종류 등과 같은 당업계에 알려진 요인을 고려하여 결정될 수 있을 것이다. 나아가, 초기 약물 투여시에는 목적하는 효과에 필요한 양보다 적은 양으로 투여를 시작하여, 목적하는 효과를 얻을 때까지 점차적으로 투여량을 증가시킨다.
본원에 따르는 화합물 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체는 혈소판 응집 저해 효과를 가지며, 이를 포함하는 조성물은 출혈 등의 부작용이 적으면서도 혈전성 질환을 효율적으로 예방 또는 치료할 수 있다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위해서 실시예를 제시한다.　그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐 본 발명이 하기의 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예
실험 준비 및 기기
1. 분석기기
본 실험에서 얻은 생성물의 구조 확인을 위해 사용된 기기는 하기와 같다. 핵자기 공명 스펙트럼(1H-NMR)은 300 MHz 또는 400 MHz를, 용매는 CDCl3, DMSO-d6를 사용하였다. 짝지음(coupling) 상수(J)는 Hz로 표시하였다. 질량(mass) 스펙트럼(제조사: JEOL 모델명: JMS-AX 505wA 또는 제조사: JEOL 모델명: JMS-HX/HX 110A spectrometer)을 제조자의 방법대로 사용하였으며 m/z 형태로 표시하였다.
2. TLC 및 컬럼크로마토그래피
TLC(thin layer chromatography)은 Merck사 제품인 실리카겔(Merck F254)을 사용하였으며 컬럼 크로마토그래피(column chromatography)를 위해서는 실리카(Merck EM 9385, 230-400 mesh)를 사용하였다. 또한, TLC 상에서 분리된 물질을 확인하기 위해서 UV 램프(=254 nm)를 이용하거나 아니스알데히드(anisaldehyde), 과망간산칼륨(KMnO4)발색 시약에 담근 후, 플레이트를 가열하여 확인하였다.
3. 사용 시약
본 실험에서 사용된 시약은 시그마-알드리치(Sigma-Aldrich), 란캐스터(Lancaster), 플루카(Fluka) 제품을 구입하여 사용하였으며, 반응에 사용된 용매는 시그마-알드리치(Sigma-Aldrich), 머크(Merck), 준세이 화학(Junsei Chemical Co.) 제품의 1급 시약을 정제 없이 사용하였다. 용매에 사용한 THF는 아르곤 기류에서 Na 금속과 벤조페논(benzophenone)을 넣고 가열환류하여 청색으로 되었을 때 사용하였다. 또한, 디클로로메탄(CH2Cl2)은 아르곤 기류에서 CaH2를 첨가하고, 가열 환류하여 사용하였다. 에틸아세테이트와 헥산은 아르곤 기류에서 가열환류하여 정제하여 사용하였다.
제조예 1: 3 ,4- Diacetoxybenzoic acid 의 제조
PCA 10.0 g을 정제수 150 mL 및 TEA 36.1 mL의 혼합액에 가하고 무수초산 18.4 mL를 20℃ 이하를 유지하며 적가하고 하루 밤 실온에서 교반하였다. 여기에 염산을 가해 pH=3.0으로 조절하고 상온에서 1시간 교반하였다. 생성된 고체를 여과하고 정제수로 세척하였다. 40℃에서 건조하여 백색의 고체로 된 목적화합물 9.2 g을 수득하였다.
Yield: 59.5%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 8.05 (dd, J = 2.0 and 8.4 Hz, 1H), 7.97 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.35(d, J = 8.8 Hz, 1H), 2.35(s, 3H), 2.34 (s, 3H)
제조예 2: 4 - Acetoxy -3- methoxybenzoic acid 의 제조
Vanillic acid 10.0 g을 정제수 150 mL 및 TEA 16.5 mL의 혼합액에 가하고 무수초산 8.4 mL를 20℃ 이하를 유지하며 적가하고 하루 밤 실온에서 교반하였다. 여기에 염산을 가해 pH=3.0으로 조절하고 상온에서 1시간 교반하였다. 생성된 고체를 여과하고 정제수로 세척하였다. 40℃에서 건조하여 황토색의 고체로 된 목적화합물 10.7 g을 수득하였다.
Yield: 85.5%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 7.78 (dd, J = 6.4 and 8.0 Hz, 1H), 7.73 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.16(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.93(s, 3H), 2.37 (s, 3H)
실시예 1: (6,7- 디하이드로티에노[3,2-c]피리딘 -5(4H)-일)(3,4- 디하이드록시페닐 )메타논
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃ 에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 4,5,6,7-Tetrahydrothieno[3,2,c] pyridine hydrochloride 0.33 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 농축하고 소량의 DCM을 가하고 5분간 sonication 하였다. 생성된 고체를 여과하고 소량의 DCM으로 세척하여 목적화합물 0.38 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 65.7%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.30 (brs, 2H), 7.35(d, J = 4.0 Hz, 1H), 6.88(brs, 1H), 6.84 (s, 1H), 6.77(d, J = 4.0 Hz, 1H), 4.64(s, 1H), 3.96(s, 1H), 3.87 (s, 1H), 2.89 (s, 1H), 2.81 (s, 1H)
실시예 2: (3,4- 디하이드록시페닐 )(4-(5- 플루오로벤조[d]이속사졸 -3-일)피페리딘-1-일)메타논
제조예 1에서 얻은 3,4-Diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 6-fluoro-3-(4-piperidinyl)-1,2-benzisoxazole hydrochloride 0.48 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 농축하고 소량의 DCM을 가하고 5분간 sonication 하였다. 생성된 고체를 여과하고 소량의 DCM으로 세척하여 목적화합물 0.42 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 56.1%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.23 (brs, 2H), 8.07(dd, J = 5.6 and 8.8 Hz, 1H), 7.71(dd, J = 2.0 and 9.2 Hz, 1H), 7.30(td, J = 2.0 and 9.2 Hz, 1H), 6.84(d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.76~6.75(m, 2H), 4.19(brs, 2H), 3.53~3.46(m, 2H), 3.12(brs, 1H), 2.10~2.07(m, 2H), 1.83~1.73(m, 1H)
실시예 3: N -((4-(4- 플루오로벤질 ) 몰포린 -2-일) 메틸 )-3,4- 디하이드록시벤즈아마이드
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 3.0 g을 DCM 60 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 3.9 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 60 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 60 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 3-aminomethy-4-(4-fluorobenzyl)morpholine 2.7 g을 가하였다. 0℃ 를 유지하며 TEA 5.2 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 60 mL와 정제수 60 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 60 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 3 mL, 정제수 3 mL, TEA 17.5 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 60 mL, 정제수 60 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 진공건조하여 목적화합물 2.9 g을 foam 형태로 수득하였다.
Yield: 63.8%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.45 (brs, 1H), 9.11(brs, 1H), 8.18(t, J = 5.6 Hz, 1H), 7.33(dd, J = 5.6 and 8.4 Hz, 2H), 7.27(d, J = 1.6 Hz, 1H), 7.19~7.11(m, 3H), 6.75(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.77(d, J = 10.8 Hz, 1H), 3.59~3.40(m, 4H), 3.29~3.17(m, 2H), 2.73(d, J = 11.2 Hz, 1H), 2.55(d, J = 11.2 Hz, 1H), 2.04(t, J = 10.4 Hz, 1H), 1.82(d, J = 10.4 Hz, 1H)
실시예 4: 3 ,4- 디하이드록시 -N-(2- 옥소테트라하이드로티오펜 -3-일) 벤즈아마이드
DMF 10 mL에 protocatechuic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, homosystein thiolactone hydrochloride 0.55 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.28 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 34.1%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 9.52(brs, 1H), 9.17(brs, 1H), 8.42(d, J=8.0, 1H), 7.29(d, J=2.0, 1H), 7.20(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 6.77(d, J=8.8, 1H), 4.79(sex, J=7.6, 1H), 3.47~3.29(m, 2H), 2.46~2.22(m, 2H)
실시예 5: N,N ' - (노난-1,9-디일)비스(3,4-디하이드록시벤즈아마이드 )
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 1,9-diaminononane 0.13 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 농축한다. 목적화합물 0.65 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 71.9%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.40 (brs, 2H), 9.08(brs, 2H), 8.10(t, J = 5.6 Hz, 2H), 7.26(d, J = 2.4 Hz, 2H), 7.17(dd, J = 2.0 and 8.0 Hz, 2H), 6.74(d, J = 8.0 Hz, 2H), 3.09(q, J = 6.8 Hz, 4H), 1.47(t, J = 6.0 Hz, 4H), 1.27(s, 10H)
실시예 6: (4-((4- 클로로페닐 )(피리딘-2-일) 메톡시 )피페리딘-1-일)(3,4- 디하이드록시페닐 )메타논
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 2-[(4-chlorophenyl)(4-piperidinyloxy)methyl]pyridine 0.57 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 농축하였다. 목적화합물 0.72 g을 foam형태로 수득하였다.
Yield: 78.1%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.25 (brs, 2H), 8.47 (d, J = 4.8 Hz, 1H), 7.81 (td, J = 1.6 and 7.6 Hz, 1H), 7.57(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.44~7.24(m, 5H), 6.80~6.67(m, 3H), 5.70(s, 1H), 3.76(brs, 1H), 3.66(brs, 2H), 3.19(brs, 2H), 1.85(brs, 2H), 1.53(brs, 2H)
실시예 7: (S)-(4-((4- 클로로페닐 )(피리딘-2-일) 메톡시 )피페리딘-1-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 (s)-2-[(4-chlorophenyl)(4-piperidinyloxy)methyl]pyridine 0.57 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 농축하였다. 목적화합물 0.47 g을 foam형태로 수득하였다.
Yield: 51.0%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 8.50 (brs, 2H), 7.72 (t, J = 6.8 Hz, 1H), 7.52 (d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.38~7.21(m, 5H), 6.84(s, 1H), 6.72(s, 2H), 5.65(s, 1H), 3.91(brs, 1H), 3.69(brs, 2H), 3.40(brs, 1H), 3.31(brs, 1H), 1.73(brs, 4H)
실시예 8: (S)- 메틸 -2-(3,4- 디하이드록시벤즈아미도 )-3-(1H-인돌-3-일) 프로파노에이트
DMF 10 mL에 Protocatechuic acid 0.5 g(3.24 mmol), EDC 0.68 g(3.57 mmol), HOBt 0.48 g(3.57 mmol), TEA 1.58 mL(11.35 mmol), D-tryptophan methylester hydrochloride　1.0 g(3.89 mmol)을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응 혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.37 g을 foam 형태로 수득하였다.
Yield: 33.6%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 10.84 (s, 1H), 9.51(s, 1H), 9.14(s, 1H), 8.42(d, J = 7.2 Hz, 1H), 7.54(d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.33(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.26(d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.21~7.19(m, 2H), 7.08~6.97(m, 2H), 6.75(d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.63(td, J = 5.6 and 7.6 Hz, 1H), 3.61(s, 3H), 3.27~3.21(m, 2H)
실시예 9: 4 -(3,4- 디하이드록시벤즈아미도 )-1- 메틸 -3-프로필-1H- 피라졸 -5- 카르복스아마이드
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 4-amino-1-methyl-3-propyl-1H-pyrazole-5-carboxamide hydrochloride 0.41 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 얻은 foam 형태의 residue를 EtOAC/DCM의 혼합용매에서 결정화하여 목적화합물 0.21 g을 미백색의 고체로 수득하였다.
Yield: 31.4%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.83(s, 1H), 9.69(brs, 1H), 9.29(brs, 1H), 7.38 (d, J = 2.0 Hz, 1H), 7.34(dd, J = 2.0 and 8.0 Hz, 1H), 6.84(d, J = 8.4 Hz, 1H), 3.94(s, 3H), 1.56(sextet, J = 7.2 Hz, 2H), 1.17(t, J = 7.2 Hz, 2H), 0.85(t, J = 7.2 Hz, 3H)
실시예 10: 2 - 메틸 -4-옥소-4H-피란-3-일 3,4- 디하이드록시벤조에이트
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 maltol 0.24 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 농축하고 소량의 DCM을 가하고 5분간 sonication 하였다. 생성된 고체를 여과하고 소량의 DCM으로 세척하여 목적화합물 0.40 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 72.6%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.79(brs, 2H), 8.19 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 7.47~7.44(m, 2H), 6.89(d, J = 8.8 Hz, 1H), 6.46(d, J = 6.0 Hz, 1H), 2.26(s, 3H)
실시예 11: (3,4- 디하이드록시페닐 )(4- 페닐피페라진 -1-일) 메타논
제조예 1에서 얻은 3,4-diacethoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.66 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 1-Phenylpiperazine 0.31 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.44 mL를 적가하고 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 2.9 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 농축하여 목적화합물 0.28 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 45.2%
1H NMR (400MHz, CDCl3) δ 9.35(s, 1H), 9.21(s, 1H), 7.24~7.21(m, 2H), 6.96~6.75(m, 6H), 3.62(brs, 4H), 3.14(brs, 4H)
실시예 12: (6,7- 디하이드로티에노[3,2-c]피리딘 -5(4H)-일)(4- 하이드록시 -3-메톡시페닐)메타논
제조예 2에서 얻은 4-acetoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 4,5,6,7-tetrahydrothieno[3,2,c] pyridine hydrochloride 0.4g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 생성된 고체를 여과하고 정제수로 세척하여 목적화합물 0.55 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 79.9%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.48 (s, 1H), 7.35 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.01 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.93~6.90(m, 2H), 6.83 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.60(s, 1H), 3.79(s, 3H), 3.74(brs, 2H), 2.88 (t, J = 4.8 Hz, 2H)
실시예 13: 2 -에틸-4-옥소-4H-피란-3-일 4- 하이드록시 -3- 메톡시벤조에이트
제조예 2에서 얻은 4-acetoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 ethylmaltol 0.31 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하고 농축하여 목적화합물 0.34 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 49.2%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 10.24 (s, 1H), 8.23 (d, J = 5.2 Hz, 1H), 7.63 (d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.53(s, 1H), 6.95 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 6.48 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 3.85(s, 3H), 2.62 (q, J = 6.8 Hz, 2H), 1.15 (t, J = 7.2 Hz, 3H)
실시예 14: 2 - 메틸 -4-옥소-4H-피란-3-일 4- 하이드록시 -3- 메톡시벤조에이트
제조예 2에서 얻은 4-acetoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 maltol 0.27 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 생성된 고체를 여과하고 정제수로 세척하여 목적화합물 0.35 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 53.2%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 10.24 (s, 1H), 8.21 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 7.63 (d, J = 8.4 Hz, 1H), 7.53(s, 1H), 6.95 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 6.48 (d, J = 5.6 Hz, 1H), 3.85(s, 3H), 2.83(s, 3H)
실시예 15: 4 - 하이드록시 -3- 메톡시 -N-(4- 메톡시 -2- 니트로페닐 ) 벤즈아마이드
제조예 2에서 얻은 4-acethoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl3 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 4-methoxy-2-nitroaniline 0.40 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAc 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAc 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.54 g을 적색의 고체로 수득하였다.
Yield: 71.3%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 10.32(s, 1H), 9.81(brs, 1H)7.63(d, J=8.8, 1H), 7.52~7.46(m, 3H), 7.35(dd, J=2.8 and 8.8, 1H), 3.86(s, 1H), 3.85(s, 3H)
실시예 16: N -(3- 에티닐페닐 )-4- 하이드록시 -3- 메톡시벤즈아마이드
제조예 2에서 얻은 4-acetoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl5 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 3-aminophenylacetylene 0.25 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAC 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAC 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하였다. 생성된 고체에 소량의 IPA에 가하고 교반하여 목적화합물 0.30 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 47.2%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 10.07 (s, 1H), 9.75(brs, 1H), 7.92 (d, J = 1.2 Hz, 1H), 7.80 (dd, J = 1.2 and 8.4 Hz, 1H), 7.54~7.50(m, 2H), 7.36 (t, J = 8.0 Hz, 1H), 7.10 (dd, J = 1.2 and 8.0 Hz, 1H), 6.90 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.18(s, 1H), 3.87(s, 3H)
실시예 17: 4 -(4-(4- 하이드록시 -3- 메톡시벤즈아미도 ) 페녹시 )-N- 메틸피코린아마이드
제조예 2에서 얻은 4-acethoxy-3-methoxybenzoic acid 0.5 g을 DCM 10 mL에 가하고 10℃에서 교반하였다. 10℃ 이하에서 PCl3 0.74 g을 가하고 0~10℃를 유지하며 2시간 교반 후 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 폐기하고 유기층을 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 여과액을 농축하고 DCM 10 mL를 가하고 0℃로 냉각하여 4-(4-aminophenoxy)-N-methylpicolinamide 0.55 g을 가하였다. 0℃를 유지하며 TEA 0.5 mL를 적가하고, 서서히 상온으로 승온하여 2시간 교반하였다. DCM을 농축하고 EtOAc 10 mL와 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층을 EtOAc 10 mL로 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 농축하였다. 이 농축물에 MeOH 5 mL, 정제수 5 mL, TEA 3.3 mL를 가하고 4시간 환류하였다. MeOH를 농축하고 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 유기층을 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.48 g을 미황색의 고체로 수득하였다.
Yield: 51.3%
1H NMR(400MHz, CDCl3) 8.60(s, 1H), 8.39(d, J=5.6, 1H), 8.10(q, J=5.2, 1H), 7.71~7.65(m, 3H), 7.52(d, J=2.0, 1H), 7.43(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 7.04~6.90(m, 4H), 6.73(brs, 1H), 3.78(s, 3H), 3.01(d, J=5.2, 3H)
실시예 18: 4 -((4- 클로로페닐 )(피리딘-2-일) 메톡시 )피페리딘-1-일)(4- 하이드록시 -3-메톡시페닐)메타논
DMF 10 mL에 vanillic acid 0.5 g, EDC 0.51 g, HOBt 0.44 g, TEA 1.44 mL, 2-[(4-Chlorophenyl)(4-piperidinyloxy)methyl]pyridine 0.99g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.40 g을 담황색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 31.6%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.41 (brs, 1H), 8.47 (d, J = 4.0 Hz, 1H), 7.81 (t, J = 7.0, 1H), 7.57(d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.44~6.94(m, 6H), 6.84~6.67(m, 3H), 5.71(s, 1H), 3.87(s, 3H), 3.74~3.69(m, 2H), 3.37(brs, 2H), 1.85(brs, 2H), 1.72(brs, 2H)
실시예 19: 4 - 하이드록시 -N-((3- 하이드록시 -5-( 하이드록시메틸 )-2- 메틸피리딘 -4-일)메틸)-3-메톡시벤즈아마이드
DMF 10 mL에 vanillic acid 0.5 g, EDC 0.51 g, HOBt 0.44 g, TEA 1.44 mL, Pyridoxoamine 2HCl 0.72 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용하여 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.62 g을 담황색 고체의 형태로 수득하였다.
Yield: 65.6%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 10.50(s, 1H), 9.76(s, 1H), 9.18(t, J=5.6, 1H), 7.29(s, 1H), 7.47(d, J=2.0, 1H), 7.42(dd, J=2.0 and 8.4, 1H), 6.83(d, J=8.4, 1H), 5.25(t, J=5.2, 1H), 4.67(d, J=4.8, 2H), 4.48(d, J=6.0, 2H), 3.82(s, 3H), 2.35(s, 3H)
실시예 20: (6,7- 디하이드로티에노[3,2-c]피리딘 -5(4H)-일)(2,5- 디하이드록시 -
페닐) 메타논
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.93 g, HOBt 0.66 g, TEA 1.35 mL, 4,5,6,7-tetrahydrothieno[3,2,c] pyridine hydrochloride　0.62 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 반응물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 교반하였다. 생성된 고체를 여과하고 EtOAc 10 mL에 1시간 동안 환류하고 여과하였다. 소량의 EtOAc로 세척하여 0.38 g의 목적화합물을 살구색 고체로 수득하였다.
Yield: 42.6%
1H NMR (400MHz, DMSO-d 6) δ 9.08 (s, 1H), 8.93 (s, 1H), 7.34 (brs, 1H), 7.35 (d, J = 4.4 Hz, 1H), 7.01 (d, J = 1.6 Hz, 1H), 6.93~6.90(m, 2H), 6.83 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 4.60(s, 1H), 3.79(s, 3H), 3.74(brs, 2H), 2.86 (t, J = 4.8 Hz, 1H)
실시예 21: (4-((4- 클로로페닐 )(피리딘-2-일) 메톡시 )피페리딘-1-일)(2,5- 디하이드록시페닐 )메타논
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, 2-[(4-chlorophenyl)(4-piperidinyloxy)methyl]pyridine 1.08 g을 가하고 60~80℃ 에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.78 g을 foam 형태로 수득하였다.
Yield: 54.9%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 9.05(s, 1H), 8.89(s, 1H), 8.47(dd, J=0.8 and 4.0, 1H), 7.81(td, J=1.6 and 8.0, 1H), 7.57(d, J=7.6, 1H), 7.43~7.25(m, 5H), 6.67~6.60(m, 2H), 6.46(d, J=2.8, 1H), 5.69(s, 1H), 3.93(brs, 1H), 3.64(p, J=4.4, 1H), 3.14(brs, 2H), 1.85(brs, 1H), 1.55~1.52(m, 2H)
실시예 22: N-((4-(4- 플루오로벤질 ) 몰포린 -2-일) 메틸 )-2,5- 디하이드록시벤즈아마이드
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, 3-aminomethyl-4-(4-fluorobenzyl)morpholine 0.73 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.80 g을 foam 형태로 수득하였다.
Yield: 68.5%
1H NMR(400MHz, CDCl3) 7.31~7.27(m, 2H), 7.05~7.00(m, 4H), 6.89~6.88(m, 2H), 3.96~3.67(m, 4H), 3.49~3.33(m, 3H), 2.79(d, J=11.6, 1H), 2.69(d, J=11.6, 1H), 2.24~1.91(m, 2H)
실시예 23: (2,5- 디하이드록시페닐 )(4-(5- 플루오로벤조[d]이속사졸 -3-일)피페리딘-1-일)메타논
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, 6-fluoro-3-(4-piperidinyl)-1,2-benzoisoxazole hydrochloride 0.83 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL 를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.64 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 55.4%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 9.07(s, 1H), 8.92(s, 1H), 8.02(dd, J=5.6 and 8.8, 1H), 7.70(dd, J=1.6 and 8.8, 1H), 6.70~6.54(m, 3H), 4.57(brs, 1H), 3.61~3.45(m, 3H), 3.09(brs, 2H), 2.06(brs, 2H), 1.80(brs, 2H)
실시예 24: N-(3,4- 디메톡시펜에틸 )-2,5- 디하이드록시벤즈아마이드
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, 3,4-Dimethoxyphenethylamine 0.6 mL를 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.73 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 71.0%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 11.63(brs, 1H), 9.00(brs, 1H), 8.72(t, J=5.2, 1H), 7.22(d, J=2.8, 1H), 6.88~6.71(m, 5H), 3.72(s, 3H), 3.71(s, 3H), 3.50(q, J=6.8, 2H), 2.78(t, J=7.6, 2H)
실시예 25: 2 ,5- 디하이드록시 -N-(2-(티오펜-2-일)에틸) 벤즈아마이드
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, thiophene-2-ethylamine 0.4 mL를 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.56 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 65.6%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 11.62(brs, 1H), 9.03(brs, 1H), 8.83(t, J=5.2, 1H), 7.34(dd, J=1.2 and 4.8, 1H), 7.23(d, J=3.2, 1H), 6.97~6.85(m, 3H), 6.73(d, J=8.8, 1H), 3.53(q, J=6.8, 2H), 3.08(t, J=6.8, 2H)
실시예 26: 2 ,5- 디하이드록시 -N-(2- 옥소테트라하이드로티오펜 -3-일) 벤즈아마이드
DMF 10 mL에 gentisic acid 0.5 g, EDC 0.68 g, HOBt 0.48 g, TEA 1.4 mL, homosystein thiolactone hydrochloride 0.55 g을 가하고 60~80℃에서 4시간동안 교반하였다. 이 반응혼합물에 EtOAc 10 mL, 정제수 10 mL를 가하고 층분리하였다. 수층에 EtOAc 10 mL를 가하여 1회 추출하고 수층을 폐기하였다. 유기층을 정제수 10 mL를 이용해 3회 세척한 후 Na2SO4를 이용해 건조, 여과하였다. 감압증류하여 농축하고 flash column chromatography의 방법으로 정제하여 목적화합물 0.21 g을 백색의 고체형태로 수득하였다.
Yield: 25.6%
1H NMR(400MHz, DMSO-d 6) 11.33(brs, 1H), 9.06(brs, 1H), 8.92(d, J=8.0, 1H), 7.24(d, J=3.2, 1H), 6.89(dd, J=2.8 and 8.8, 1H), 6.77(d, J=8.8, 1H), 4.84(sex, J=5.6, 1H), 3.50~3.25(m, 2H), 2.56~2.26(m, 2H)
[표 1]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000003
Figure PCTKR2016009859-appb-I000004
Figure PCTKR2016009859-appb-I000005
Figure PCTKR2016009859-appb-I000006
실험예
실험예 1: 전단응력에 의한 혈소판 응집 저해 효과 측정
1-1. 사람 혈소판 풍부 혈장 (human platelet rich plasma, PRP )를 이용한 혈소판 응집 저해 효과 측정
혈액은 2 주일 이상 약물을 복용하지 않은 건강한 남성 자원자의 정맥으로부터 채취되었으며, 이와 관련된 실험 과정은 모두 서울대학교 생명윤리심의위원회의 승인하에 진행되었으며(IRB No. 1305/001-016), 실험 전 과정에서 유리 용기나 유리 pipette의 사용은 피하였고, 상온에서 수행하였다. Platelet rich plasma(PRP)를 분리하기 위하여 3.2% 소듐 시트레이트(sodium citrate)를 항응고제로 하여 혈액을 채취하였다. 전혈을 150 g에서 15 분간 원심분리한 후 상층액(PRP)을 얻었고 잔사를 2,000 g에서 20 분간 원심분리하여 platelet poor plasma(PPP)를 얻었다. 이와 같이 얻은 PRP의 혈소판 수는 헤마사이토미터 (hemacytometer)를 이용하여 광학 현미경으로 세었으며. PRP를 PPP로 희석하여 1 ml 당 3×108개의 혈소판이 포함되도록 한 후 실험에 사용하였다. PRP는 콘플레이트 점도계(cone-plate viscometer, RotoVisco 1, Thermo Fischer Scientific, USA)에 올린 후 10,800 s-1의 shear rate로 37℃에서 3 분 동안 shear stress를 주었다. 후보물질 평가를 위하여 혈소판 응집 유도 이전에 25 μM의 후보물질 1.2 ㎕을 PRP 598.8 ㎕에 처리하여, 써모믹서(thermomixer)를 이용하여 37℃에서 3 분간 배양하였다. 전단응력을 가한 후, 20 ㎕의 PRP를 0.5% 글루타알데하이드(glutaraldehyde)를 포함한 부유완충액(suspension buffer, 134 mM NaCl, 2.9 mM KCl, 1.0 mM MgCl2·6H2O, 10.0 mM HEPES, 5.0 mM dextrose, 12.0 mM NaHCO3, 0.34 mM Na2HPO4, 0.3% BSA, pH 7.4) 280 ㎕에 넣어 고정시켰다. 그 후 현탁액 중에 단독 존재하는 혈소판 수를 헤마사이토미터(hemacytometer)를 이용하여 계수하였다. 수학식 1의 방식으로 후보물질의 저해정도를 계산하였다. 저해정도는 전단응력을 가하지 않은 것을 대조군으로 하고 전단응력만을 가한 것을 Control로 하여, 아래와 같은 방법으로 구하였다.
수학식1
저해정도(%) = [(1-A/B) X 100]/ [(1-A/C) X 100]
A: 후보물질 처리 후 전단응력을 가한 sample의 단독 혈소판 수
B: 전단응력을 가하지 않은 대조군의 단독 혈소판 수
C: 전단응력만을 가한 Control의 단독 혈소판 수
[표 2]
PRP에서 후보물질의 혈소판 응집 저해 효과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000007
상기 표 2에서 볼 수 있듯이, 전단응력에 의한 혈소판 응집 저해 효과는 실시예 14, 실시예 20(각 25 μM)에서 30% 이상임을 확인하였다. 또한, 실시예 1, 실시예 12, 실시예 13, 실시예 15, 실시예 23(각 25 μM)에서 20 ~ 30%임을 확인하였다.
1-2. 사람 세척 혈소판 (human washed platelet, WP )를 이용한 혈소판 응집 저해 효과 측정
사람 세척 혈소판(WP)을 분리하기 위하여, 건강한 남성의 정맥으로부터 애시드-시트레이트-덱스트로스(acid-citrate-dextrose, ACD)를 항응고제로 하여 혈액을 채취하였다. 채혈 시 프로스타그란딘(prostaglandin E1, PGE1) 1 μM을 처리하여 혈소판의 활성화를 억제하였다. 채혈한 혈액을 150 g에서 15 분간 원심분리하여 상층액에서 PRP를 얻고, 이를 500 g에서 10 분간 원심분리하여 혈소판을 얻었다. 이를 세척용액(washing buffer, 134 mM NaCl, 2.9 mM KCl, 1.0 mM MgCl2.6H2O, 10.0 mM HEPES, 5.0 mM dextrose, 12.0 mM NaHCO3, 0.34 mM Na2HPO4, 10 % ACD, 0.3 % bovine serum albumin, 1 μM PGE1, pH 7.4)로 현탁하여 세척한 후, 다시 400 g에서 10 분간 원심분리하였다. 여기서 얻어진 혈소판을 부유완충액으로 현탁하였다. WP 중의 혈소판 수는 헤마사이토미터(hemacytometer)를 이용하여 계수하였으며, 부유완충액으로 희석하여 1 ml당 3×108 개의 혈소판이 포함되도록 한 후, CaCl2를 최종 농도가 2 mM이 되도록 가한 후 실험에 사용하였다. WP는 vWF를 최종 농도가 10 μg/ml가 되도록 가하고, 콘플레이트 점도계(cone-plate viscometer)에 올린 후 10,800 s-1의 shear rate로 37℃에서 3 분 동안 shear stress를 주었다. 후보물질의 효력 평가를 위하여 혈소판 응집 유도 이전에 후보물질 10, 25, 50 μM을 WP에 처리하고, 써모믹서(thermomixer)를 이용하여 37℃에서 3 분간 배양하였다. 전단응력을 가한 후, 20 ㎕의 WP를 0.5 % 글루타알데하이드(glutaraldehyde)를 포함한 부유완충액 280 ㎕에 넣어 고정시켰다. 그 후 이 현탁액 중에 단독 존재하는 혈소판 수를 헤마사이토미터를 이용하여 계수하였다. 수학식 1의 방식으로 후보물질의 저해정도를 계산하였다. 저해정도는 전단응력을 가하지 않은 것을 대조군으로 하고, 전단응력만을 가한 것을 Control로 하였다.
[표 3]
WP에서 후보물질의 혈소판 응집 저해 효과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000008
상기 표 3에서 볼 수 있듯이, 전단응력에 의한 혈소판 응집 저해 효과는 WP에서 실시예 1, 실시예 12, 실시예 13, 실시예 14, 실시예 15, 실시예 20에 의해 용량상관적으로 저해됨을 확인하였다.
실험예 2: 동맥 혈전 생성 모델에서의 약효 평가
하룻밤 절식시킨 수컷 흰쥐 (Sprague-Dawley rat, 250~300 g)에 vehicle (DMSO:Tween 80:DW = 1:2:17) 또는 후보물질(25 mg/kg)을 경구 투여한 후 30 분 뒤에 urethane(1.25 g/kg)을 복강 투여하여 마취시켰다. 마취가 되면 수술대 위해 실험 동물을 고정시켰고, 전 수술 과정 동안 heating pad를 이용하여 체온을 유지시켰다. 실험 동물의 목 부근을 절개하여 right carotid artery를 조심스럽게 노출시키고, 혈관에 붙은 지방조직을 조심스럽게 제거하였다. Doppler flow probe(0.5 mm-diameter, MA0.5PSB, Transonic System Inc., USA)를 노출된 carotid artery에 고정하고, doppler flow-meter(TS420, Transonic System Inc., USA)에 연결시켰다. 경구 투여 후 60 분이 되는 시점에서 50% FeCl3 용액에 적신 Whatman No. 1 여과지(2 mm × 1 mm) 조각을 probe가 고정된 바로 밑 혈관 위에 부착하였다. 여과지는 10 분 후 제거하였으며, 제거한 시점부터 60 분 동안 carotid artery 내의 혈전 생성에 의한 혈류의 변화를 측정하였다. 폐색 시간 (occlusion time)은 최초로 혈류가 0이 되어 1 분 이상 지속되는 시점으로 하였다.
[표 4]
후보물질의 혈전 생성 저해 효과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000009
상기 표 4에서 볼 수 있듯이, 염화철에 의한 혈전 생성 모델에서 대조군(Control) 대비 2.5배 이상의 효력을 나타낸 후보물질은 실시예 1, 실시예 20 임을 확인하였다.
실험예 3: 목동맥 혈관 압박 모델에서 후보물질의 혈전 저해 효과 측정
수컷 흰쥐(Sprague-Dawley rat, 250~300 g)에 vehicle(0.5% methylcellulose), 클로피도그렐(8 mg/kg), 아스피린(50 mg/kg) 또는 후보물질을 경구 투여한 후 2시간 후 케타민/럼푼(ketamine/xylazine) 칵테일 0.1 ml/100 g으로 마취하였다. Normal C. 그룹을 제외한 실험 동물의 우측 경부 피부를 절개하여 총목동맥(common carotid artery)을 노출시켰다. 노출된 우측 목동맥에 길이 1 mm, 내경 0.58 mm의 시술용 관을 장착하고 단사로 묶어준 후, 개방된 부위 및 시술 부위에 유착방지제 처리를 한 후, 봉합하여 회복시켰다. 시술 후 1일 2회 3일간 vehicle, 클로피도그렐, 아스피린 또는 후보물질을 경구투여 하였다. 4일째 최종 투여 2시간 후 쥐에 urethane(100 mg/ 300 ㎕/ 100 g)을 복강 투여하여 마취를 유도하고, 시술부를 열어 시술관 상하 5 mm씩 총 1 cm를 분리하였다. 분리된 혈관에 0.9% 생리식염수를 0.3 ml/min으로 0.2 ml 관류하여 잔여 혈액을 제거한 후 1 ml의 단백질용해 완충액(lysis buffer, NaOH 2g, Na2CO3 0.1g in 500 ml D.W)에 징치하였다. 이후 혈관내 혈전을 수집한 뒤, 단백질용해 완충액과 함께 끓는 물에 중탕하였다. 중탕된 혈전 10 ㎕에 반응액(10 ml bicinchoninic acid solution + 200 μl 4% 황산구리 수용액) 200 ㎕를 혼합한 뒤 30분간 37℃에서 반응시키고 이를 항원항체반응판독기(ELISA reader, 562 nm)로 정량하였다.
[표 5]
목동맥 혈관압박 발생모델에서 후보물질들의 혈전 저해 효과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000010
상기 표 5에서 볼 수 있듯이, 실시예 1, 실시예 12, 실시예 13, 실시예 14, 실시예 15, 실시예 20 및 실시예 23을 각각 경구 투여한 동물에서 대조군과 비교하여 전단응력(Shear stress)에 의한 혈전생성이 유의적으로 현저히 억제됨을 확인할 수 있었다. 이는 현재 항 혈소판제로 가장 많이 사용되는 클로피도그렐 투여그룹과 비교하였을 경우 후보물질의 혈전생성 억제 정도가 클로피도그렐과 거의 유사할 정도로 우수함을 알 수 있었다.
수학식 2
저해 정도 (%) = 100 - [(C - A) X 100 / (B - A)]
A: Normal Control의 혈전량
B: Negative Control의 혈전량
C: 후보물질 처리시의 혈전량
실험예 4: 후보물질의 화학적 작용제 (physiological agonist )에 의한 혈소판 응집 저해 효과 측정
후보물질이 물리적 자극인 전단응력에 의한 혈소판응집 억제에 선택성을 갖음을 확인하기 위하여 화학적 작용제(physiological agonist)인 thrombin, collagen, ADP로 혈소판을 활성화시킨 후 후보물질의 억제효과를 연구하였다.
사람 PRP 598.8 ㎕에 후보물질을 농도별로(25, 100, 250 μM) 1.2 ㎕를 처리하고 thermomixer를 이용하여 37℃에서 3 분간 반응하였다. 이후, PRP 495 ㎕를 aggregometer cuvette에 넣고 1 분간 예열(preincubation)한 다음 혈소판 응집 유발 시료인 트롬빈(thrombin, 0.6 ~ 0.8 U/ml), 콜라겐(collagen, 2 ~ 5 μg/ml), 에이디피(ADP: adenosine diphosphate, 15 ~ 20 μM)를 최대응집을 일으키는 최소농도로 가하였다. 혈소판의 응집 정도는 어그리고미터(lumi-aggregometer, Chrono-Log Co., USA)를 이용하여 혼탁도(turbidity) 변화로 측정하였다. PRP의 혼탁도를 0%, PPP의 혼탁도를 100%로 하였다. 측정 시 실리콘으로 코팅된 교반용 바(magnetic stir bar)로 반응이 일어나는 동안 1,000 rpm에서 지속적으로 교반하였다. 트롬빈(thrombin)과 에이디피(ADP)는 5 분, 콜라겐 (collagen)은 6 분간 반응을 관찰하였다.
[표 6]
트롬빈에 의한 응집정도 측정 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000011
상기 표 6에서 볼 수 있듯이, 트롬빈만을 처리한 것과 비교하였을 때 후보물질에 의한 혈소판 응집 저해 효과는 250 μM까지 나타나지 않는 것을 확인하였다. 양성대조군 디티아이(DTI)를 처리할 경우 혈소판의 응집이 저해됨을 확인하였다.
[표 7]
콜라겐(collagen)에 의한 응집정도 측정 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000012
상기 표 7에서 볼 수 있듯이, 콜라겐만을 처리한 것과 비교하였을 때 후보물질에 의한 혈소판 응집 저해 효과는 250 μM까지 나타나지 않는 것을 확인하였다.
[표 8]
에이디피(ADP)에 의한 응집정도 측정 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000013
상기 표 8에서 볼 수 있듯이, 에이디피만을 처리한 것과 비교하였을 때 후보물질에 의한 혈소판 응집 저해 효과는 250 μM까지 나타나지 않는 것을 확인하였다. 반면에 양성대조군 클로피도그렐을 처리할 경우 혈소판의 응집을 저해됨을 확인하였다.
실험예 5. 후보물질의 세포독성 평가
5-1. EA . hy926 세포주를 이용한 후보물질의 세포독성 평가
사람의 혈관내피세포(EA.hy926)에서 후보물질의 세포독성 유무를 확인하고자 실험을 진행하였다. EA.hy926은 DMEM(Dulbecco's minimum essential medium)과 10% FBS(fetal bovine serum) 배양액으로 5% CO2/37℃의 조건에서 계대 배양하며, 시험시 96웰플레이트(96 well plate)에 1×104 cells/well으로 48시간 배양 후, DMEM으로 2번 Washing한 다음 24시간 동안 배양시켰다. 후보물질은 최종농도 25, 100 μM를 제조하여 well 당 200 ㎕씩 처리하고 24시간 배양하였다. MTT assay를 이용하여 보라색으로 발색시킨 뒤 570 nm에서 흡광도를 측정하였다.
[표 9]
EA.hy926 세포주에서 후보물질의 세포독성 평가 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000014
상기 표 9에서 볼 수 있듯이, Ea.hy926 세포주에서 후보물질은 100 μM까지 독성을 나타내지 않음을 확인하였다.
5-2. 사람의 혈소판을 이용한 후보물질의 세포독성 평가
혈소판으로부터 락테이트 디하이드로게네이즈(lactate dehydrogenase, LDH) 유출은 분광광도계 (spectro-photometry) 방법을 이용하였다. PRP 598.8 ㎕에 시험물질을 1.2 ㎕ 가하고 써모믹서(thermomixer)를 이용하여 37℃에서 3 분간 반응하였다. 반응 후 시료 100 ㎕를 취해 12,000 g에서 2 분간 원심 분리하고, 상층액 80 ㎕를 취하여 평가 전까지 냉장 보관하였으며, 평가는 24 시간 이내에 이루어졌다. 대조군(positive control)으로 50 μM 디기토닌(digitonin)을 1 시간 동안 처리하였다. 미리 가온한 트리스-이디티에이 엔에이디에이치(Tris-EDTA NADH) 용액(56 mM Tris(hydroxymethyl) aminomethane, 5.6 mM EDTA, 0.17mM β-NADH pH 7.4) 1 ml에 시료 25 ㎕를 넣고, 37℃에서 5 분 동안 반응하였다. 이 후 37℃에서 미리 가온하여 놓았던 100 ㎕의 14 mM 피루베이트(pyruvate) 용액을 가하고, 즉시 분광광도계(UV-Vis spectrophotometer, UV-2201, Shidmadzu, Japan)를 이용하여 339 nm의 파장에서 1 분간 흡광도를 측정하였다. 흡광도 감소 속도는 NADH의 산화속도를 의미하며, 이는 혈소판으로부터 유리된 LDH의 활성도를 나타낸다. 0.3% 트리톤 엑스-100(Triton X-100)으로 혈소판의 lysis를 유발하여 LDH의 총 활성도를 측정하였으며, LDH의 기저 수준(Control)은 plasma에서 측정하였다. 각 시료의 활성도는 LDH의 총 활성도에 대한 백분율로 측정하였다.
[표 10]
혈소판에서 후보물질의 세포독성 평가 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000015
상기 표 10에서 볼 수 있듯이, 혈소판에서 후보물질은 250 μM까지 독성을 나타내지 않음을 확인하였다.
5-3. 사람의 간세포를 이용한 후보물질의 세포독성 평가
사람의 간세포(HepG2)를 대상으로 세포독성 평가를 진행하였다. Human liver carcinoma cell line인 HepG2 cell을 DMEM(Dulbecco's minimum essential medium)과 10% FBS(fetal bovine serum), 1% penicillin/streptomycin을 첨가한 배양액에서 37℃, CO2 5% 조건으로 배양하였다. 48웰 프레이트(well plate)에 4×104 cells/well로 24시간 배양 후 실험에 사용하였다. HepG2 세포에 후보물질(250 μM)을 18 시간 동안 처리한 후, 배지를 제거하고 WST-1을 가한 후 3시간 동안 차광하여 반응시켰다. 3시간 후 상층액을 취하여 450 nm에서 흡광도를 측정하였다. 생존률(cell viability)은 후보물질을 처리하지 않은 HepG2 세포에 WST-1을 가한 후 측정한 흡광도를 대비하여 계산하였다. 대조물질로는 아세트아미노펜(40 mM, acetaminophen)을 사용하였다.
[표 11]
HepG2 세포주에서 후보물질 250 μM의 세포독성 평가 결과
Figure PCTKR2016009859-appb-I000016
상기 표 11에서 볼 수 있듯이, HepG2 세포주에서 후보물질은 250 μM까지 간독성을 나타내지 않음을 확인하였다.
실험예 6: 혈장 응고시간 측정
혈장을 분리하기 위하여 3.2% 소듐 시트레이트(sodium citrate)를 항응고제로 하여 혈액을 채취하였다. 전혈을 2000 g에서 20 분간 원심분리하여 혈장을 얻었다. 혈장에 시험물질을 3분간 처리한 후 혈장 응고시간을 측정하였다. 혈장 응고시간은 BBL® Fibrometer (Becton Dickinson, Cockeysville, MD)를 이용하여 에이피티티(Activated Partial Thromboplastin Time, aPTT), 피티 (Prothrombin Time, PT)를 측정하였다. aPTT 측정을 위하여 혈장과 aPTT 시약을 fibrometer cup에 처리한 후 3 분간 37℃에서 반응하였다. 반응 후 CaCl2를 가하고, 즉시 혈액 응고 시간을 측정하였다. PT의 측정을 위해서 가온된 혈장에 PT 시약을 가하고 즉시 혈액응고 시간을 측정하였다. 대조군으로 혈장 응고시간을 연장하는 것으로 알려진 디티아이(DTI)를 사용하였다.
[표 12]
혈장 응고시간 측정 결과 - aPTT
Figure PCTKR2016009859-appb-I000017
상기 표 12에서 볼 수 있듯이, 후보물질에 의해 aPTT 가 Control 대비 유의적으로 변화하지 않음으로 후보물질이 aPTT에 영향이 미치지 않음을 확인하였다.
[표 13]
혈장 응고시간 측정 결과 - PT
Figure PCTKR2016009859-appb-I000018
상기 표 13에서 볼 수 있듯이, 후보물질에 의해 PT 가 Control 대비 유의적으로 변화하지 않음으로 후보물질이 PT에 영향이 미치지 않음을 확인하였다.
실험예 7: 실험동물에서의 출혈부작용 (Bleeding time) 평가
하룻밤 절식시킨 수컷 흰쥐(Sprague-Dawley rat, 250~300 g)에 후보물질을 농도별로 경구 투여하고 1 시간 후, urethane(1.25 g/kg)을 복강 주사하여 마취시켰다. 쥐의 꼬리 끝 3 mm 부분을 자르고 매 30초마다 조심스럽게 닦아주었다. 출혈시간은 더 이상 혈액이 묻어 나오지 않을 때까지 시간으로 측정하였으며, 출혈이 30분 이상 지속될 경우 출혈시간은 30분으로 기록하였다.
[표 14]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000019
상기 표 14에서 볼 수 있듯이, 후보물질의 효력에 의한 부작용으로 예상되는 출혈이 대조물질인 클로피도그렐과 아스피린에 비하여 낮게 확인되었다. 실시예의 화합물 모두 출혈부작용을 나타내지 않는 것을 확인하였다.
실험예 8: 반복투여에 의한 출혈부작용 평가
ICR 마우스(male, 35~40 g)를 이용하여 후보물질(50 mg/kg), 클로피도그렐(15 mg/kg), 아스피린(100 mg/kg)을 각각 1일 1회 7일 간 경구 투여하였다. 마지막 투여 1시간 후에 호흡 마취를 한 후 마우스의 꼬리 끝부분에서 4 mm 지점을 자른 다음 미리 준비한 37℃ 식염수가 들어있는 투명한 15 ml 튜브에 마우스 꼬리 끝을 담궈 혈액이 더 이상 퍼지지 않고 출혈이 멈춘 시간을 측정 하였다.
[표 15]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000020
상기 표 15에서 볼 수 있듯이, 클로피도그렐은 임상용량에서 지혈되는데 까지 걸리는 시간이 35분을 초과해 대조군 대비 약 22배 출혈시간이 지연되었다. 또한, 아스피린도 12분을 초과해 약 7.6배 출혈시간이 지연됨을 알 수 있었다. 그러나 실시예 13 및 실시예 14의 화합물을 7일간 1일 1회 반복 투여했을 때 지혈되는데 까지 걸리는 시간은 대조군과 거의 유사한 정도로 1분 30초 정도의 출혈시간을 보였다. 따라서 후보물질에 대한 출혈 부작용이 거의 관찰되지 않음으로써 기존 항 혈소판제의 출혈부작용 문제를 극복한 신규 항 혈소판제 후보물질임을 확인할 수 있었다.
실험예 9: 2주 반복투여 독성평가
ICR 마우스(암, 수, 18~26g)를 이용하여 vehicle(0.5% methylcellulose)과 후보물질을 저용량, 중용량, 고용량 (100, 300, 1000 mg/kg)으로 1일 1회 2주간 경구 투여한 후, 사망률, 체중변화, 임상증상, 사료 및 음수 섭취량, 육안적 해부소견 및 이상장기에 대한 조직병리학적 판독, 장기 무게 등을 관찰, 기록하여 후보물질의 NOAEL 값을 산출하였다.
[표 16]
Figure PCTKR2016009859-appb-I000021
상기 표 16에서 볼 수 있듯이, 실시예 13 및 실시예 14의 화합물을 100, 300 및 1000 mg/kg의 용량으로 1일 1회 2주간 경구 투여했을 경우 사망개체가 관찰되지 않았으며 체중변화, 임상증상, 사료 및 음수 섭취량, 육안적 해부소견, 장기 무게 등을 관찰한 결과, 이상소견이 관찰되지 않았다. 따라서, 후보물질의 NOAEL 값은 1000 mg/kg 이상임을 확인하였다.
실험예 10: 통계처리
시험결과의 유의성은 실험결과를 스투던트 t-테스트(Student's t-Test) 및 일원본산 분석(one-way ANOVA test)를 통하여 p가 0.05 이하인 경우 유의한 차이로 판정하였다.

Claims (4)

  1. 하기 화학식 I 또는 II로 표시되는 화합물, 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체:
    [화학식 I]
    Figure PCTKR2016009859-appb-I000022
    [화학식 II]
    Figure PCTKR2016009859-appb-I000023
    상기 화학식에서,
    R1은 하이드록시 또는 C1-C10 알콕시이고;
    X는 N 또는 O이며;
    R2는 -(CH2)p-5 내지 12원 헤테로사이클-(CH2)p-C6-C12 아릴, 5 내지 12원 헤테로사이클, -(CH2)p-NHC(=O)-C6-C12 아릴, -CHR4R5, 5 내지 12원 헤테로아릴, C6-C12 아릴, -C6-C12 아릴-O-5 내지 12원 헤테로아릴, -(CH2)p-5 내지 12원 헤테로아릴 또는 -(CH2)p-C6-C12 아릴이고,
    여기에서 p는 1 내지 10의 정수이며, R4 및 R5는 각각 독립적으로 C1-C6 알콕시카르보닐기 또는 -CH2-5 내지 12원 헤테로아릴이고, 헤테로사이클 및 헤테로아릴은 N, O 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 가지며, 헤테로사이클, 헤테로아릴 및 아릴은 할로겐, 옥소, 아미노카르보닐, C1-C6 알킬, 니트로, C1-C6 알콕시, 니트릴, C1-C6 알킬아미노카르보닐, 하이드록시 및 하이드록시-C1-C6 알킬로부터 선택되는 1 내지 4개의 치환기로 치환될 수 있고;
    R3는 수소이며;
    X가 O인 경우 R3는 존재하지 않고;
    X가 N인 경우 R2 및 R3와 함께 O, N 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 5 내지 12원 헤테로사이클을 형성할 수 있으며, 상기 헤테로사이클은 C6-C12 아릴, 비치환되거나 할로겐으로 치환된 O, N 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 6 내지 12원 헤테로아릴, -O-CHR6R7 로 치환될 수 있고, 여기에서 R6 및 R7은 각각 독립적으로 비치환 또는 할로겐으로 치환된 C6-C12 아릴 또는 N, O 및 S로부터 선택되는 1 내지 3개의 헤테로 원자를 갖는 6 내지 10원 헤테로아릴이다.
  2. 제1항에 있어서, 다음의 그룹으로부터 선택되는 화합물:
    (6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논;
    (3,4-디하이드록시페닐)(4-(5-플루오로벤조[d]이속사졸-3-일)피페리딘-1-일)메타논;
    N-((4-(4-플루오로벤질)몰포린-2-일)메틸)-3,4-디하이드록시벤즈아마이드;
    3,4-디하이드록시-N-(2-옥소테트라하이드로티오펜-3-일)벤즈아마이드;
    N,N '-(노난-1,9-디일)비스(3,4-디하이드록시벤즈아마이드);
    (4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논;
    (S)-(4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(3,4-디하이드록시페닐)메타논;
    (S)-메틸-2-(3,4-디하이드록시벤즈아미도)-3-(1H-인돌-3-일)프로파노에이트;
    4-(3,4-디하이드록시벤즈아미도)-1-메틸-3-프로필-1H-피라졸-5-카르복스아마이드;
    2-메틸-4-옥소-4H-피란-3-일 3,4-디하이드록시벤조에이트;
    (3,4-디하이드록시페닐)(4-페닐피페라진-1-일)메타논;
    (6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(4-하이드록시-3-메톡시페닐)메타논;
    2-에틸-4-옥소-4H-피란-3-일 4-하이드록시-3-메톡시벤조에이트;
    2-메틸-4-옥소-4H-피란-3-일 4-하이드록시-3-메톡시벤조에이트;
    4-하이드록시-3-메톡시-N-(4-메톡시-2-니트로페닐)벤즈아마이드;
    N-(3-에티닐페닐)-4-하이드록시-3-메톡시벤즈아마이드;
    4-(4-(4-하이드록시-3-메톡시벤즈아미도)페녹시)-N-메틸피코린아마이드;
    4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(4-하이드록시-3-메톡시페닐)메타논;
    4-하이드록시-N-((3-하이드록시-5-(하이드록시메틸)-2-메틸피리딘-4-일)메틸)-3-메톡시벤즈아마이드;
    (6,7-디하이드로티에노[3,2-c]피리딘-5(4H)-일)(2,5-디하이드록시페닐)메타논;
    (4-((4-클로로페닐)(피리딘-2-일)메톡시)피페리딘-1-일)(2,5-디하이드록시페닐)메타논;
    N-((4-(4-플루오로벤질)몰포린-2-일)메틸)-2,5-디하이드록시벤즈아마이드;
    (2,5-디하이드록시페닐)(4-(5-플루오로벤조[d]이속사졸-3-일)피페리딘-1-일)메타논;
    N-(3,4-디메톡시펜에틸)-2,5-디하이드록시벤즈아마이드;
    2,5-디하이드록시-N-(2-(티오펜-2-일)에틸)벤즈아마이드; 및
    2,5-디하이드록시-N-(2-옥소테드라하이드로티오펜-3-일)벤즈아마이드,
    또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체.
  3. 제1항 또는 제2항에 따른 화합물, 또는 이의 약제학적으로 허용 가능한 염 또는 이성질체를 유효성분으로 포함하는 혈전성 질환의 예방 또는 치료용 조성물.
  4. 제3항에 있어서, 혈전성 질환이 폐색전증, 혈전성정맥염, 심부정맥혈전증, 문맥혈전증, 협심증, 동맥경화증 및 뇌경색으로 이루어지는 그룹으로부터 선택되는 조성물.
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