WO2014171801A1 - 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염 및 이를 유효성분으로 함유하는 약학조성물 - Google Patents

아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염 및 이를 유효성분으로 함유하는 약학조성물 Download PDF

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cancer
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benzyloxy
alkyl
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정병선
김정애
남태규
이현지
김동국
강유라
빈재휘
진유진
렉미수실찬드라
가우탐자야
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영남대학교 산학협력단
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Definitions

  • the present invention relates to a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof, and diseases caused by angiogenesis, inflammatory bowel disease or cancer disease containing the same as an active ingredient.
  • Angiogenesis is the process by which new capillaries are formed from existing microvessels. Angiogenesis normally occurs when embryonic development, tissue regeneration and wound healing, and luteal corpus luteum, a change in the genital system of a woman, are developed.
  • vascular endothelial cells grow very slowly and do not divide relatively well compared to other types of cells.
  • the angiogenesis process is generally caused by stimulation of angiogenesis factors, resulting in the formation of lumen due to the degradation of the basal membrane, proliferation, proliferation, and differentiation of vascular endothelial cells due to proteases. Consists of being generated.
  • angiogenesis there are diseases caused by angiogenesis that is not controlled autonomously and grows pathologically.
  • Diseases related to angiogenesis in pathological conditions include hemangioma, hemangiofibroma, angioplasty and cardiovascular diseases such as arteriosclerosis, angiogenesis, and edema sclerosis.
  • Eye diseases caused by angiogenesis include macular degeneration, corneal transplantation, Angiogenic glaucoma, diabetic retinopathy, neovascularized corneal disease, spot degeneration, pterygium, retinal degeneration, posterior capsular fibrosis, granuloconjunctivitis, and the like.
  • Chronic inflammatory diseases such as arthritis, psoriasis, capillary dilatation, purulent granulomas, seborrheic dermatitis, dermatological diseases such as acne, Alzheimer's and obesity are also associated with angiogenesis, and cancer growth and metastasis necessarily depends on angiogenesis (D'Amato RJ et al., Ophthalmology, 102 (9), pp1261-1262, 1995; Arbiser JL, J. Am. Acad. Dermatol., 34 (3), pp486-497, 1996; O'Brien KD et al. Circulation, 93 (4), pp 672-682, 1996; Hanahan D et al., Cell, 86, pp 353-364, 1996).
  • diabetic retinopathy is a complication of diabetes, in which capillaries in the retina invade the vitreous body and eventually become blind.
  • Psoriasis which is characterized by red spots and skin, is also a chronic proliferative disease of the skin. It does not heal and involves pain and malformations. In normal cases, keratinocytes proliferate once a month, whereas psoriasis patients proliferate at least once a week. This rapid proliferation requires a lot of blood supply and angiogenesis is inevitably active (Folkman J, J. Invest. Dermatol., 59, pp 40-48, 1972).
  • angiogenesis plays an important role in the growth and metastasis of cancer cells.
  • Tumors are supplied with nutrients and oxygen for growth and proliferation through neovascularization, and new blood vessels that penetrate the tumor give metastasis to metastases by allowing metastatic cancer cells to enter the blood circulation (Folkman and Tyler, 1999).
  • Cancer Invasion and metastasis Biologic mechanisms and Therapy (SB Day ed.) Raven press, New York, pp 94-103, 1977; Polverini PJ, Crit. Rev. Oral. Biol. Med. , 6 (3), pp230-247, 1995).
  • the main cause of death of cancer patients is metastasis, and the current metastasis of cancer does not contribute to the survival of cancer patients.
  • cancer cells proliferate at the place where the cancer cells first appeared, and when the cancer mass grows larger, the cancer cells move away from the cancer mass, move through blood vessels, and then settle in the secondary site again to move to another place. Proliferation takes place. In this process, cancer cells must undergo cancer cell invasion process in order to move to another place through the blood vessel. At this time, cancer cells overexpress and secrete proteolytic enzymes to degrade extracellular matrix components, including matrix metalloproteinases (MMPs), cathepsins, and various proteinases (proteinases). There is this.
  • MMPs matrix metalloproteinases
  • cathepsins cathepsins
  • proteinases various proteinases
  • Cathepsin is a lysosomal enzyme that breaks down proteins at low pH, depending on the structure and type of catalyst, serine proteases (A, G), aspartyl proteases (D, E), cysteine proteases (B, C, F, H, K, L1, V, O, S, W, Z).
  • Cathepsins are involved in specific physiological processes: antigen presentation in the immune system, collagen turnover in bone and cartilage, neuropeptides and hormone processing, resulting in various disease symptoms when these cathepsin deficiencies occur, as well as overexpression of cathepsin. Various diseases also occur.
  • cysteine cathepsin cathepsin B, F, H, K, L, V, S, Z
  • cysteine cathepsin B, F, H, K, L, V, S, Z cysteine cathepsin
  • cathepsin is a lysosomal protease, which plays a role in regulating physiological function in cells, but cathepsin S is secreted outside the cell to perform proteolytic function.
  • Cathepsin S is involved in antigen processing or apoptosis when it is in intracellular lysosomes, but when secreted out of cells it degrades extracellular matrix components such as laminin, fibronectin elastin, collagen and the like. It is thought that cathepsin S is involved in cancer cell infiltration and angiogenesis.
  • cathepsin D staining in breast cancer tissues was significantly associated with the prognosis of breast cancer patients who had metastasized to lymph nodes, whereas cathepsin D was not reported in lymph node vision patients (Henry JA et al. , Cancer, 65 (2), 265-71, 1990). Based on these results, cathepsin D has been suggested to play an important role in breast cancer metastasis and invasion, but other studies have demonstrated metastasis experiments using breast cancer cell lines such as MCF7, MDA-MB-231 and MDA-MB-435. Cathepsin D was not associated with breast cancer cell invasion (Johnson MD et al., Cancer Res., 53 (4), 873-7, 1993). It is predicted that cathepsin S may play an important role in metastatic breast cancer cells as in liver cancer.
  • IBD Inflammatory bowel disease
  • Inflammatory diseases result in the release of various inflammatory cytokines from the intestinal mucosa.
  • TNF- ⁇ is highly expressed in colon lumen and colon epithelial cells of ulcerative colitis patients, and recent studies have shown that TNF- ⁇ plays an important role in the pathogenesis of ulcerative colitis.
  • Infliximab an anti-TNF- ⁇ antibody, is known to be effective not only in the treatment of boils, but also in the treatment of Crohn's disease.
  • these therapies are costly and in some patients cause side effects such as fluid response or infectious complications.
  • Monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) is a 14kDa member of the C-C chemokine family that mobilizes and activates monocytes / macrophages mainly in the inflammatory site.
  • MCP-1 is localized in the epithelial cells of the large intestine and its expression is associated with monocyte infiltration in mucosal membranes of inflammatory bowel disease, and unlike other chemokines, MCP-1 only binds to CCR2, thus MCP-1 / CCR2 binding It is a major regulator of this monocyte mobilization and is known to play an important role in IBD.
  • interleukin-8 IL-8
  • IBD interleukin-8
  • IL-8 interleukin-8
  • IBD interleukin-8
  • IL-8 specific antibodies reduce enteritis in animal models of rodents.
  • the change of intracellular Ca 2+ acts as an important factor of IL-8 induction.
  • 5-aminosalicylic acid 5-ASA
  • sulfasalazine sulfasalazine
  • steroidal immunosuppressants for example, sulfasalazine, or steroidal immunosuppressants.
  • Sulfasalazine is prone to side effects or adverse effects, such as fullness, headache, rash, liver disease, leukopenia, agranulocytosis, male infertility, and the like. It is also unclear whether sulfasalazine has a sufficient relapse inhibitory effect in patients with incisions in the intestine or in patients with remission.
  • Steroid immunosuppressants are adrenal corticosteroids, which have been recognized for their short-term effects, but cannot improve their long-term prognosis, induced infectious diseases, secondary corticosteroids, peptic ulcers, diabetes, mental disorders, steroidal kidney disease, etc. There are limitations that should be used only in acute cases in terms of the same side effects.
  • the angiogenesis inhibitor can be applied as a drug for the treatment of various angiogenesis-related diseases or inflammatory bowel disease, or as an anticancer agent that prevents the growth and metastasis of the cancer.
  • angiogenesis inhibitor can be applied as a drug for the treatment of various angiogenesis-related diseases or inflammatory bowel disease, or as an anticancer agent that prevents the growth and metastasis of the cancer.
  • the present inventors have confirmed that the present invention by confirming that the amidopyridinol derivative or the pharmaceutically acceptable salt thereof has excellent angiogenesis inhibitory effect, inflammatory bowel disease treatment effect, cancer disease treatment effect and cancer metastasis inhibiting effect, Was completed.
  • amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof Accordingly, it is an object of the present invention to provide amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof.
  • Another object of the present invention is to provide a pharmaceutical composition containing an amidopyridinol derivative or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides an amidopyridinol derivative represented by the following formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof:
  • R 1 , R 2 and R 4 are the same or different, respectively, selected from hydrogen, (C 1 to C 4) alkyl, (C 1 to C 4) alkoxy or halogen, R 3 is (C 1 to C 4) Any one selected from alkoxy, benzyloxy or hydroxy, R 5 is halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, phenoxy, (C1 to C12) alkylamino, (C6 to C14) aryl or (C1 to C4) (C1 to C15) alkyl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from alkyl; (C6 to C14) aryl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, (C1 to C12) alkylamino or (C1 to C4) alkyl; (C2 to C12) alkenyl substituted or unsubstituted with (C6
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • Amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention inhibit the increase in neovascularization following treatment of neovascularization inducers such as vascular endothelial growth factor in chicken choriocapillary model. It can be usefully used as a medicament for the prevention or treatment of diseases caused by angiogenesis, including.
  • amidopyridinol derivative or pharmaceutically acceptable salt thereof according to the present invention inhibits colitis in an inflammatory bowel disease model, and thus can be usefully used as a medicament for the prevention or treatment of inflammatory bowel disease.
  • amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention after inoculating lung cancer cells into the chorionic ureteric model, not only inhibit angiogenesis and tumor growth by tumor formation, but also prevent cancer metastasis and invasion. Since it inhibits the activity of cathepsin S, which plays an important role, it can be usefully used as an agent for inhibiting cancer growth and inhibiting cancer metastasis.
  • Figure 1 discloses the chemical formula of the amidopyridinol derivative according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 2 discloses the chemical formula of the amidopyridinol derivative according to another embodiment of the present invention.
  • Figure 4 is the result of observing the VEGF-induced ROS scavenging ability of the compounds 8a and 8b.
  • FIG. 5 shows the results of ROS scavenging ability of compounds 8a and 8b by treating macular degeneration risk factor 4-hydroxynonenal (4-HNE) in an ARPE-19 cell line.
  • FIG. 6 shows the results of ROS scavenging ability of compounds 8a and 8b by treating angiotensin II (Ang II), which is a macular degeneration risk factor, with an ARPE-19 cell line.
  • Ang II angiotensin II
  • FIG. 7 to 10 are the results of observing the inhibitory effect of amidopyridinol derivatives on colitis in TNBS-induced rats
  • Figure 7 is a body weight change recorded daily from day 1 to day 6 administration of amidopyridinol derivatives 8 is to observe the state of the large intestine observed with the naked eye
  • FIG. 9 is to measure the weight of the large intestine
  • Figure 10 is to measure the activity of myeloperoxidase (MPO).
  • MPO myeloperoxidase
  • 11 is a result of observing the inhibitory effect of angiogenesis and tumor growth by tumor formation of compounds 8a, 8b and 8g after inoculating 549 lung cancer cells in CAM.
  • the present invention provides an amidopyridinol derivative represented by the following formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof:
  • R 1 , R 2 and R 4 are the same or different, respectively, selected from hydrogen, (C 1 to C 4) alkyl, (C 1 to C 4) alkoxy or halogen, R 3 is (C 1 to C 4) Any one selected from alkoxy, benzyloxy or hydroxy, R 5 is halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, phenoxy, (C1 to C12) alkylamino, (C6 to C14) aryl or (C1 to C4) (C1 to C15) alkyl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from alkyl; (C6 to C14) aryl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, (C1 to C12) alkylamino or (C1 to C4) alkyl; (C2 to C12) alkenyl substituted or unsubstituted with (C6
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of diseases caused by angiogenesis, containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for treating or preventing inflammatory bowel disease, which comprises an amidopyridinol derivative represented by Chemical Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating cancer diseases containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for preventing or inhibiting cancer infiltration or metastasis of cancer, containing an amidopyridinol derivative represented by Chemical Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides an amidopyridinol derivative represented by the following formula (1) or a pharmaceutically acceptable salt thereof:
  • R 1 , R 2 and R 4 are the same or different, respectively, selected from hydrogen, (C 1 to C 4) alkyl, (C 1 to C 4) alkoxy or halogen, R 3 is (C 1 to C 4) Any one selected from alkoxy, benzyloxy or hydroxy, R 5 is halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, phenoxy, (C1 to C12) alkylamino, (C6 to C14) aryl or (C1 to C4) (C1 to C15) alkyl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from alkyl; (C6 to C14) aryl unsubstituted or substituted with one or two or more selected from halogen, hydroxy, (C1 to C12) alkoxy, (C1 to C12) alkylamino or (C1 to C4) alkyl; (C2 to C12) alkenyl substituted or unsubstituted with (C6
  • the amidopyridinol derivative in Formula 1, R 1 , R 2 and R 4 is any one of hydrogen, (C1 to C4) alkyl or (C1 to C4) alkoxy, R 3 is benzyloxy or Any one of hydroxy, R 5 is (C1 to C15) alkyl optionally substituted with halogen or (C1 to C4) alkyl; Phenyl unsubstituted or substituted with halogen, hydroxy, (C1 to C4) alkoxy or (C1 to C4) alkyl; (C1 to C4) alkyl substituted with phenyl or halophenyl; Cinnamil; Phenoxymethyl; (C3 to C8) cycloalkyl; Benzodioxol; naphthalene; And thiophene may be any one selected from the group consisting of.
  • the amidopyridinol derivative is N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) amide derivative or N- (5-hydroxy-3,4,6 -Trimethylpyridin-2-yl) amide derivative.
  • N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) amide derivative N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) acetic Amide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) dodecaneamide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) 4-chlorobutaneamide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) isobutyrylamide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethyl Pyridin-2-yl) -3-methylbutanamide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) pivalamide, N- (5-benzyloxy-3,4, 6-trimethylpyridin-2-yl) cyclopentanecarboxamide, N- (5-benzyloxy-3,4,6-trimethylpyridin
  • N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) amide derivative N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) acetate Amide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) dodecaneamide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) 4-chlorobutanamide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) isobutyrylamide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethyl Pyridin-2-yl) -3-methylbutanamide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) pivalamide, N- (5-hydroxy-3,4, 6-trimethylpyridin-2-yl) cyclopentanecarboxamide, N- (5-hydroxy-3,4,6-trimethylpyridin-2-yl) cyclohexanecarboxamide, N- (5-hydroxy Hydroxy-3,4,4
  • the pharmaceutically acceptable salt is an organic acid selected from the group consisting of oxalic acid, maleic acid, fumaric acid, malic acid, tartaric acid, citric acid and benzoic acid, or an acid addition salt formed by an inorganic acid selected from the group consisting of hydrochloric acid, sulfuric acid, phosphoric acid and hydrobromic acid. It may be in the form of.
  • Amidopyridinol derivatives represented by Formula 1 or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention may be prepared by a preparation method such as the following Scheme 1:
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of diseases caused by angiogenesis, containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the angiogenesis-related diseases include macular degeneration, diabetic retinopathy, proliferative vitreoretinopathy, immature retinopathy, glaucoma, degenerative plaque, pterygium, posterior capsular fibrosis, granular conjunctivitis, corneal transplant rejection, corneal ulcer, cone cornea And ophthalmic inflammation.
  • the angiogenesis-related diseases include rheumatoid arthritis, osteoarthritis, septic arthritis, psoriasis, Sjogren's syndrome, abnormal wound fusion, bone disease, proteinuria, abdominal aneurysm disease, degenerative cartilage loss due to traumatic joint damage, myelin demyelination disease It may be any one selected from the group consisting of cirrhosis, renal glomerular disease, immature rupture of the embryonic membrane, periodontal membrane disease, arteriosclerosis, restenosis, inflammatory diseases of the central nervous system, Alzheimer's disease and skin aging.
  • Amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention inhibit the increase in neovascularization following treatment of neovascularization inducers such as vascular endothelial growth factor in chicken choriocapillary model. It can be usefully used as a medicament for the prevention or treatment of diseases caused by angiogenesis, including.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of inflammatory bowel disease containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the inflammatory bowel disease may be selected from the group consisting of ulcerative colitis, Crohn's disease, intestinal Behcet's disease, hemorrhagic rectal ulcer and pouchitis.
  • Amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention inhibit colitis in an inflammatory bowel disease model, and thus can be usefully used as a medicament for the prevention or treatment of inflammatory bowel disease.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating cancer diseases containing an amidopyridinol derivative represented by Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for preventing or inhibiting cancer infiltration or metastasis of cancer, containing an amidopyridinol derivative represented by Chemical Formula 1 or a pharmaceutically acceptable salt thereof as an active ingredient.
  • the cancer is lung cancer, breast cancer, bladder cancer, bone cancer, thyroid cancer, parathyroid cancer, rectal cancer, throat cancer, laryngeal cancer, esophageal cancer, pancreatic cancer, colon cancer, stomach cancer, tongue cancer, skin cancer, brain tumor, uterine cancer, head or neck cancer, gallbladder cancer, oral cancer, colon cancer, anal It may be any one selected from the group consisting of nearby cancer, central nervous system tumor, liver cancer and colon cancer.
  • Amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention not only inhibit angiogenesis and tumor growth by tumor formation, but also play an important role in cancer metastasis and invasion after inoculation of lung cancer cells Since it inhibits the activity of cathepsin S, which can be used, it can be usefully used as an agent for inhibiting cancer growth and inhibiting cancer metastasis.
  • the amount and method of applying the pharmaceutical composition according to the present invention may vary depending on the formulation and the purpose of use.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention may include 0.1 to 50% by weight of the amidopyridinol derivative or a pharmaceutically acceptable salt thereof based on the total weight of the composition.
  • composition according to the present invention may further include suitable carriers, excipients and diluents commonly used in the manufacture of pharmaceutical compositions.
  • Such carriers, excipients and diluents include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, cellulose, methyl cellulose, undetermined. Vaginal cellulose, polyvinyl pyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate and mineral oil.
  • compositions according to the present invention may be used in the form of oral dosage forms, external preparations, suppositories, and sterile injectable solutions, such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, and aerosols, respectively, according to conventional methods.
  • sterile injectable solutions such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, and aerosols, respectively, according to conventional methods.
  • Solid preparations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules, and the like, and such solid preparations include at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose ( Prepare by mixing sucrose or lactose, gelatin, etc.
  • Oral liquid preparations include suspensions, solvents, emulsions, and syrups, and may include various excipients, such as wetting agents, sweeteners, fragrances, and preservatives, in addition to commonly used simple diluents such as water and liquid paraffin.
  • Formulations for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solvents, suspensions, emulsions, lyophilized preparations, suppositories.
  • non-aqueous solvent and suspending agent propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate and the like can be used.
  • base of the suppository witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin butter, glycerogelatin and the like can be used.
  • the amount of amidopyridinol derivative or pharmaceutically acceptable salt thereof according to the present invention may vary depending on the age, sex and weight of the patient, but the amount of 0.001 to 100 mg / kg, preferably 0.01 to 10 mg / kg It may be administered once to several times daily.
  • the dosage of the amidopyridinol derivative or a pharmaceutically acceptable salt thereof may be increased or decreased depending on the route of administration, the severity of the disease, sex, weight, age and the like. Therefore, the above dosage does not limit the scope of the present invention in any aspect.
  • the pharmaceutical composition may be administered to various mammals such as mice, mice, livestock, humans, and the like. All modes of administration can be expected, for example, by oral, rectal or intravenous, intramuscular, subcutaneous, intrauterine dural or intracerebroventricular injection.
  • Amidopyridinol derivatives or pharmaceutically acceptable salts thereof according to the present invention have a 50% lethal amount (LC 50 ) of 2 g / kg or more, and can be used in the pharmaceutical composition of the present invention.
  • Triethylamine (0.161 mL, 1.155 mmol) and acetyl chloride (0.073 mL, 0.990 mmol) were added sequentially to a solution of CH 6 Cl 2 (5 mL) in 6 (200 mg, 0.825 mmol), followed by stirring at room temperature for 8 hours. .
  • the reaction solution was diluted with CH 2 Cl 2 (100 mL) and washed with saturated aqueous sodium carbonate solution (10 mL ⁇ 2) and water (10 mL ⁇ 2).
  • the CH 2 Cl 2 solution was washed with saturated brine, dried over anhydrous MgSO 4 , filtered and concentrated under reduced pressure.
  • Triethylamine (0.161 mL, 1.155 mmol) and phenylacetyl chloride (0.134 mL, 0.990 mmol) were added sequentially to a solution of CH 2 Cl 2 (10 mL) in compound 6 (200 mg, 0.825 mmol), followed by stirring at room temperature for 5 hours. It was.
  • the reaction solution was diluted with CH 2 Cl 2 (100 mL) and washed with saturated aqueous sodium carbonate solution (10 mL ⁇ 2) and water (10 mL ⁇ 2).
  • the CH 2 Cl 2 solution was washed with saturated brine, dried over anhydrous MgSO 4 , filtered and concentrated under reduced pressure.
  • Triethylamine (0.136 mL, 0.965 mmol) and benzoyl chloride (0.096 mL, 0.827 mmol) were added sequentially to a solution of CH 2 Cl 2 (10 mL) in 6 (167 mg, 0.689 mmol), followed by stirring at room temperature for 12 hours. .
  • the reaction solution was diluted with CH 2 Cl 2 (100 mL) and washed with saturated aqueous sodium carbonate solution (10 mL ⁇ 2) and water (10 mL ⁇ 2).
  • the CH 2 Cl 2 solution was washed with saturated brine, dried over anhydrous MgSO 4 , filtered and concentrated under reduced pressure.
  • Triethylamine (0.161 mL, 1.155 mmol) and dichloroacetyl chloride (0.097 mL, 0.990 mmol) were sequentially added to a solution of Compound 6 (200 mg, 0.825 mmol) in CH 2 Cl 2 (10 mL), followed by stirring at room temperature for 4 hours. .
  • the reaction was diluted with CH 2 Cl 2 (100 mL) and washed with saturated aqueous sodium carbonate solution (10 mL ⁇ 2), water (10 mL ⁇ 2).
  • the CH 2 Cl 2 solution was washed with saturated brine, dried over anhydrous MgSO 4 , filtered and concentrated under reduced pressure.
  • Triethylamine (0.161 mL, 1.155 mmol) and cinnamoyl chloride (142 mg, 0.833 mmol) were sequentially added to a solution of Compound 6 (200 mg, 0.825 mmol) in CH 2 Cl 2 (10 mL), followed by stirring for 30 minutes under ice-cooling. .
  • the reaction was diluted with CH 2 Cl 2 (100 mL) and washed with saturated aqueous sodium carbonate solution (10 mL ⁇ 2), water (10 mL ⁇ 2).
  • the CH 2 Cl 2 solution was washed with saturated brine, dried over anhydrous MgSO 4 , filtered and concentrated under reduced pressure.
  • chorioallantoic membrane (CAM) analysis was performed (Nguyen M et al., Microvascular Res., 47, pp31-40, 1994).
  • Chicken eggs were incubated at 37 ° C and 55% relative humidity, and the first small hole was drilled on the air sac using a hypodermic needle (Green Cross Medical Industry, Korea) on the 10th day.
  • a second hole was drilled in the flat part of the fertilized egg for the window.
  • the villus is separated from the shell of the fertilized egg, which is then cut with a grinding wheel (Multipro 395JA, Dremel, Mexico). made.
  • vascular endothelial growth factor (VEGF) concentration was 20 ng / CAM after treatment with 3 mg / mL of cortisone acetate in whatman filter disk # 1, whatman, USA. Soaked in.
  • the filter disk was placed on the blood vessel through the created window, and the compounds of the examples were dissolved in dimethyl sulfoxide (DMSO), diluted with phosphate buffer solution (PBS), and treated at each concentration.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • PBS phosphate buffer solution
  • the CAM part on which the filter disc was placed was removed and washed with phosphate buffer solution, followed by a stereo microscope (Stemi SV6 stereomicroscope, Carl Zeiss, Germany) and Image-Pro Plus software (Media Cybernetics; Silver Spring, MD, USA) was used to measure the number of vascular branches and analyze data.
  • a stereo microscope Stemi SV6 stereomicroscope, Carl Zeiss, Germany
  • Image-Pro Plus software Media Cybernetics; Silver Spring, MD, USA
  • DCF-DA (2 ', 7'-dichlorofluorescein diacetate) was used to measure the scavenging ability of ROS in HUVEC cells induced by VEGF.
  • DCF-DA oxidizes to fluorescence DCF in the presence of ROS in cells to give green fluorescence.
  • 8-well plates coated with 0.2% gelatin were dispensed with HUVEC at a concentration of 1 ⁇ 10 5 and incubated for 24 hours.
  • Compounds 8a and 8b were pretreated for 3 hours, induced with VEGF for 15 minutes, washed three times with PBS (pH 7.4), and then 10 ⁇ M of DCF-DA was added to EBM-2 medium for 30 minutes in the dark. Again washed three times with PBS and the degree of intracellular fluorescence was measured using a fluorescence microscope.
  • Macular degeneration risk factors 4-HNE or Ang II, cause cell damage through ROS generation in ARPE cells, ultimately leading to Brueck's membrane damage and angiogenesis, resulting in macular degeneration and blindness. And 8b was confirmed to have a therapeutic effect of macular degeneration by strongly inhibiting the ROS development of 4-HNE and Ang II.
  • HT-29 cells were cultured in 24-well plates at a concentration of 2 ⁇ 10 cells / cm 2 , and pretreated with amidopyridinol compounds 8a-8z for 1 hour in serum-free medium containing only 1% PS. Then, the reaction was treated with TNF- ⁇ at 10 ng / ml for 3 hours at 37 ° C. After completion of the reaction, the medium of HT-29 cells was removed and washed once with PBS. Then, U937 cells reacted with 10 ⁇ g / mL BCECF-AM for 30 minutes at 37 ° C were reacted with HT-29 cells for 1 hour at 37 ° C. Washed twice. For cell lysis, 0.1% Triton X-100 in 0.1M Tris was treated for 30 minutes at room temperature, followed by fluorescence measurement using a Fluostar optima microplate reader (BMG Labtechnologies, Germany).
  • Table 2 shows the inhibitory effect of amidopyridinol compounds 8a to 8z on TNF- ⁇ induced human-derived colonic epithelial cells (HT-29) and monocyte cells (U937). * Is the case where the P value is less than 0.05 compared to the TNF- ⁇ treatment group. As shown in Table 2, it was found that the amidopyridinol compounds 8a to 8z inhibit adhesion of intestinal epithelial cells and U937 cells induced by TNF- ⁇ .
  • amidopyridinol derivatives 8a to 8z can inhibit the inflammatory response by inhibiting the adhesion of inflammatory cells such as neutrophils and lymphocytes, which are closely related to inflammatory cell migration and invasion.
  • the experimental group consisted of 6 rats in each group, which had an average weight of 180 ⁇ 10 g by the randomized block design (5 groups, control group, TNBS alone group, TNBS + 5-ASA 300 mg / kg, TNBS + 8a and 8j 0.1 mg / kg administration group, TNBS + 8a and 8j 1.0 mg / kg administration group) was tested. Rats fasted for 24 hours were anesthetized with diethyl ether (Et 2 O) and diluted with 50% (v / v) ethanol in the lumen of the large intestine through the anus using a 1 mL syringe with a polyethylene catheter. After slowly injecting 0.8 mL, the rats were left standing upside down for 60 seconds to prevent 3% TNBS from leaking into the anus.
  • Et 2 O diethyl ether
  • the control group was injected with vehicle (50% (v / v) ethanol) in the same manner as the other experimental group.
  • vehicle 50% (v / v) ethanol
  • the drug was administered once daily at a constant time every day at 8a and 8j 0.1 mg / kg or 1.0 mg / kg intraperitoneally for 5 days after the TNBS treatment 24 hours after fasting.
  • 5-ASA the active metabolite of sulfasalazine, best known as an IBD therapy, was used as a positive control.
  • mice All rats were sacrificed 7 days after TNBS administration. The severity of visible ulcers and colitis was assessed by two investigators who did not participate in the experiment. The large intestine of the rats was extracted, and tissues between 5 and 6 cm from the anus were cut into lengths of 1 cm and used for measuring the intestinal weight and MPO activity of the tissues and performing a biopsy. In addition, all experimental animals were observed the weight change of each rat during the fasting step from TNBS administration and drug administration using a digital mass meter. Animal experiments were conducted in accordance with institutional guidelines at the Laboratory Animal Resources Administration and Yeungnam University for the management and use of laboratory animals.
  • FIG. 7 to 10 are graphs showing the effects of amidopyridinol compounds 8a and 8j on colitis in rats induced by TNBS, and FIG. 7 is body weight recorded daily from day 1 to day 6 of administration of test substance, and FIG. 8 is Observed the state of the large intestine observed with the naked eye, Figure 9 is a graph measuring the weight of the colon, Figure 10 is a graph measuring the MPO (myeloperoxidase) activity. * Is the case where the P value is less than 0.05 when compared to the group not treated with both drug and TNBS, and # is when the P value is less than 0.05 when compared with the TNBS treatment group.
  • MPO myeloperoxidase
  • FIG. 8 shows the result of 5 days of drug administration after the colon was removed and visually examined.
  • the colon of TNBS-treated rats was observed with edema and hyperemia compared to the vehicle-treated normal group, with edema and congestion of the appendix. Adhesion occurred.
  • 5-ASA 100 mg / kg group the visual symptom and adhesion between other organs and colonic congestion were significantly suppressed compared to the TNBS alone group.
  • the compound 8a and 8j 1.0 mg / kg administration group showed a significant inhibitory effect of edema and hyperemia.
  • Figure 9 shows the result of measuring the tissue weight by extracting the colon of the rat, it can be seen that the weight of the intestinal edema is significantly increased in the TNBS alone treatment group compared to the normal vehicle treatment group.
  • the intestinal weight was significantly reduced compared to the TNBS treated group, and in the group treated with Compound 8a and 8j 1.0 mg / kg, the intestinal weight was significantly decreased.
  • FIG 10 is a graph measuring the MPO (myeloperoxidase) activity
  • MPO myeloperoxidase
  • the activity of MPO in tissues is an indicator of neutrophil infiltration, which correlates with the level of intestinal damage caused by inflammatory colitis as an indicator of inflammatory response.
  • MPO assay kit was used to measure MPO activity. Colon tissue was washed with cold PBS and weighed to add 200 ⁇ L of lysis buffer (pH7.4, 200 mM NaCl, 5 mM EDTA, 10 mM Tris, 10% glycerol) per 10 mg of tissue. Tissue homogenizer (Bio homogenizer M133, BIOSPEC PRODUCTS Inc. USA) was homogenized for 30 seconds. The homogenized sample was centrifuged twice at 1500 ⁇ g for 15 minutes to obtain a supernatant, and then the supernatant was measured for MPO activity using an MPO ELISA kit (HK210, Hycult Biotechnology, Netherlands).
  • MPO activity refers to the value of 1 ⁇ M hydrogen peroxide reduced in water for 1 minute at 25 °C, which was calculated as the amount of MPO contained in 1 mL of colon tissue homogenate. * Is the case where the P value is less than 0.05 when compared to the group not treated with both drug and TNBS, and # is when the P value is less than 0.05 when compared with the TNBS treatment group.
  • the MPO activity was significantly higher in the TNBS treatment group than the control group, and the MPO activity was significantly decreased in the 5-ASA 100 mg / kg administration group.
  • the compound 8a 1.0 mg / kg administration group, not only was the MPO activity lower than that in the TNBS treatment group, but also inhibited the MPO activity of the intestinal tissues better than the 5-ASA 100 mg / kg.
  • chorioallantoic membrane (CAM) analysis was performed (Nguyen M et al., Microvascular Res., 47, pp31-40, 1994). . Chicken eggs were incubated at 37 ° C and 55% relative humidity. On day 9, the first small holes were drilled using a hypodermic needle (Green Cross Medical Industry, Korea) in the air sac area. A second hole was drilled in the flat part of the fertilized egg for the window. By venting air through the hole in the vesicle area, the first hole, the villus is separated from the shell of the fertilized egg, which is then cut with a grinding wheel (Multipro 395JA, Dremel, Mexico). A549 lung cancer cells were mixed with Matrigel 1: 1 and treated with Compounds 8a, 8b and 8g, respectively, and inoculated at a density of 1.5 ⁇ 10 6 cells / CAM.
  • the tumor-formed CAM was removed and washed with phosphate buffer solution, followed by stereomicroscopy (Stemi SV6 stereomicroscope, Carl Zeiss, Germany) and Image-Pro Plus software (Media Cybernetics; Silver Spring, MD, USA) was used to measure the number of vessel branches and analyze the data.
  • angiogenesis due to tumor formation was inhibited by treatment of compounds 8a, 8b, and 8g of each dose as shown in Table 3 and FIG. 11, and tumor growth was also inhibited.
  • cathepsin B D, K, L, and S inhibitors were used to examine the effects of inhibiting breast cancer cell infiltration.
  • Invasion assays were performed using a Transwell insert (BD FALCON, Bedford, USA) with an 8 ⁇ m pore size filter.
  • the transwell insert filter was coated with 20 ⁇ l of Matrigel (1 mg / ml) and the bottom with 30 ⁇ l of type 1 collagen (0.5 mg / ml).
  • MDA-MB-231 5 ⁇ 10 5 cells / 100 ⁇ l was added to the insert chamber and each inhibitor was also added to each insert chamber.
  • medium containing 5% FBS was added to each well of the bottom chamber and reacted in a 37 ° C. cell incubator.
  • the solution in the insert chamber was discarded and the remaining cells were removed with a cotton swab, and the cells under the membrane were fixed with methanol and stained with hematoxylin and eosin.
  • the cells on the membrane were observed under a microscope, 5 fields were selected at 200 ⁇ resolution, and the number of cells in each field was counted.
  • MDA-MB-231 cells treated with the cathepsin B inhibitor (CA-074 Me), the cathepsin K inhibitor (Odanacatib), and the cathepsin S inhibitor (Z-FL-COCHO) are shown in Table 4 below.
  • aminopyridinol derivatives BJ-1101 and BJ-1201 have no invasion inhibitory effect on breast cancer cell MDA-MB-231 as shown in Table 5, whereas compounds 8l and 8q infiltrated MDA-MB-231. Inhibitory effect was shown.
  • RT-PCR was performed as follows.
  • Each compound was treated with breast cancer cells MDA-MB-231 (1 ⁇ 10 5 cell / cm 2 ) and incubated in a 37 ° C. cell incubator for 24 hours to extract total mRNA using Trizol reagent. After 24 hours the culture was removed and 1 mL of Trizol reagent was added to each well and the cell eluate was transferred to a 1.5 mL tube. 200 ⁇ l of chloroform was added to each sample and centrifuged at 12,000 g for 15 minutes at 4 ° C., and then 500 ⁇ l of the supernatant was transferred to a new tube. 500 ⁇ l of isopropyl alcohol was added to each sample, followed by centrifugation at 4 ° C. and 12,000 g for 15 minutes. The supernatant of each sample was removed, the mRNA was rinsed with 75% ethanol and the precipitate dried. The extracted mRNA was dissolved in RNase-free water and heated at 55 ° C. for 10 minutes.
  • cDNA was synthesized using a GoScript TM reverse transcription system (Promega Corporation, Madison, Wis., USA). PCR was performed using TaKaRa TaqTM (Takara bio Inc., Shiga, Japan), and the cathepsin S primers were forward primers of SEQ ID NO: 1 (forward sequence: 5'-GCA GTG GCA CAG TTG CAT AA-3 ') A reverse primer set of SEQ ID NO: 2 (reverse sequence: 5'-AGC ACC ACA AGA ACC CAT GT-3 ') was used.
  • GAPDH glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase
  • the GAPDH primers comprise a forward primer of SEQ ID NO: 3 (forward sequence: 5'-GGT GAA GGT CGG AGT CAA CG-3 ') and a forward primer of SEQ ID NO: 4 (reverse sequence: 5'-CAA AGT TGT CAT GGA TGA CC-3'). Reverse primer set was used.
  • cathepsin S plays an important role in the invasion of breast cancer cell MDA-MB-231, and each compound 1 ⁇ M to screen for other amidopyridinol derivatives that inhibit the metastasis of breast cancer cells.
  • the effect of inhibiting cathepsin S gene expression during treatment was examined in the same manner as in Experimental Example 9.
  • compounds 8a, 8b and 8g were found to be more than 50% of the cathepsin S gene expression inhibition rate as shown in Table 7, and these compounds were excellent compounds capable of inhibiting invasion and metastasis of metastatic breast cancer cells. Confirmed.
  • Compound 8a was suspended in male Balb / c mice in 0.5% methylcellulose solution, and orally administered once at doses of 0.5 g / kg, 1 g / kg and 2 g / kg, and the survival and body weight of the mice were examined for 7 days.
  • oral administration intermediate dose was determined to be a safe substance of more than 2g / kg.
  • Powder was prepared by mixing 20 mg of compound 8a, 100 mg of lactose and 10 mg of talc and filling into an airtight bag.
  • a tablet was prepared by mixing 20 mg of compound 8a, 100 mg of corn starch, 100 mg of lactose, and 2 mg of magnesium stearate, followed by compression according to a conventional method for preparing tablets.
  • Compound 8a 10mg, PEG-4000 250mg, PEG-400 650mg, white Vaseline 10mg, paraoxybenzoic acid methyl 1.44mg, 0.18mg of paraoxybenzoic acid propyl and the remaining amount of purified water were prepared according to the conventional method for preparing an ointment. It was.

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Abstract

본 발명은 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염, 및 이를 유효성분으로 함유하는 약학조성물에 관한 것으로, 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 융모요막 모델에서의 신생혈관형성 억제 효과가 탁월하여, 황반변성 또는 관절염 등과 같은 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약제로서 유용하게 사용될 수 있으며, 염증성 장질환 모델에서의 대장염 억제 효과가 탁월하여, 염증성 장질환의 예방 또는 치료용 약제로서 유용하게 사용될 수 있을 뿐 아니라, 융모요막 모델에 폐암세포를 접종한 후, 종양 형성에 의한 혈관신생 및 종양 성장을 억제할 뿐 아니라, 암 전이 및 침윤에 중요한 역할을 수행하는 카텝신 S의 활성을 억제하므로, 암 성장 억제 및 암 전이 억제용 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.

Description

아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염 및 이를 유효성분으로 함유하는 약학조성물
본 발명은 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염, 및 이를 유효성분으로 함유하는 혈관신생으로 인한 질환, 염증성 장질환 또는 암질환의 예방 또는 치료용 약학조성물에 관한 것이다.
혈관신생(angiogenesis)이란 기존의 미세혈관으로부터 새로운 모세혈관이 형성되는 과정이다. 혈관신생이 정상적으로 일어나는 경우는 배아 발생(embryonic development), 조직재생 및 상처치료, 주기적인 여성의 생식기 계통의 변화인 황체가 발달될 때이며 이러한 경우에도 엄격히 조절되어 진행된다.
성인의 경우 혈관내피세포는 매우 느리게 자라며, 다른 종류의 세포에 비하여 상대적으로 잘 분열하지 않는다. 혈관신생이 일어나는 과정은 일반적으로 혈관신생 촉진인자의 자극에 의하여 프로테아제로 인한 혈관 기저막의 분해, 혈관 내피세포의 이동, 증식 및 혈관 내피세포 분화에 의한 관강의 형성으로 혈관이 재구성되어 새로운 모세혈관이 생성되는 것으로 이루어진다.
그러나 혈관신생이 자율적으로 조절되지 못하고 병적으로 성장함으로써 야기되는 질환들이 있다. 병리학적 상태에서 나타나는 혈관신생에 관련된 질환으로는 혈관종, 혈관섬유종, 혈관기형 및 심혈관 질환인 동맥경화, 혈관유착, 부종성 경화증이 있고, 혈관신생에 의한 안과 질환으로는 황반변성, 각막이식성 혈관신생, 혈관신생성 녹내장, 당뇨병성 망막증, 신생혈관에 의한 각막 질환, 반점의 변성, 익상편, 망막 변성, 후수정체 섬유 증식증, 과립성 결막염 등이 있다. 관절염과 같은 만성 염증성 질환, 건선, 모세관 확장증, 화농성 육아종, 지루성 피부염, 여드름과 같은 피부과 질환, 알츠하이머 및 비만도 혈관신생과 관련이 있으며, 암의 성장과 전이는 반드시 혈관신생에 의존한다(D'Amato RJ et al., Ophthalmology, 102(9), pp1261-1262, 1995; Arbiser JL, J. Am. Acad. Dermatol., 34(3), pp486-497, 1996; O'Brien KD et al. Circulation, 93(4), pp672-682, 1996; Hanahan D et al., Cell, 86, pp353-364, 1996).
염증성 질환의 대표적인 질환인 관절염은 자가면역 이상이 원인이지만, 병이 진행되면서 관절 사이의 활액강에 생긴 만성 염증이 혈관신생을 유도하여 연골이 파괴된다. 즉, 염증을 유도하는 사이토카인의 도움으로 활액세포와 혈관내피세포가 활액강에서 증식을 하여 혈관신생이 진행되면서 연골부에 발생하는 결합조직층인 관절 판누스를 형성하여 쿠션 역할을 하는 연골이 파괴된다(Koch AE et al., Arthritis. Rheum., 29, pp471-479, 1986; Stupack DG et al., Braz J. Med. Biol. Rcs., 32(5), pp578-581, 1999; Koch AE, Atrhritis. Rheum., 41(6), pp951-962, 1998).
해마다 전 세계적으로 수백만 명이 실명하게 되는 많은 안과질환도 혈관신생이 원인이 되고 있다(Jeffrey MI et al., J. Clin. Invest., 103, pp1231-1236, 1999). 그 대표적인 예로 노인에게 일어나는 퇴화반 (macular degeneration), 당뇨병성 망막증 (diabetic retinopathy), 조숙아의 망막증, 신생혈관성 녹내장과 신생혈관에 의한 각막 질환과 같은 질병은 혈관신생이 원인이 되는 질병들이다(Adamis AP et al., Angiogenesis, 3, pp9-14, 1999). 그 중 당뇨병성 망막증은 당뇨병의 합병증으로 망막에 있는 모세혈관이 초자체를 침습하여 결국 눈이 멀게 되는 질병이다.
붉은 반점과 인설의 피부가 특징인 건선도 피부에 생기는 만성의 증식성 질환인데 치유되지 않으며 고통과 기형을 수반한다. 정상인 경우 각질세포가 한달에 한번 증식하는데 비해 건선 환자는 적어도 일주일에 한번 증식한다. 이런 빠른 증식을 하기 위해서는 많은 혈액이 공급되어야 하므로 혈관신생이 활발히 일어날 수밖에 없다(Folkman J, J. Invest. Dermatol., 59, pp40-48, 1972).
특히, 암의 경우 혈관신생은 암세포의 성장과 전이에 중요한 역할을 한다. 종양은 신생혈관을 통하여 성장과 증식에 필요한 영양과 산소를 공급받으며, 또한 종양까지 침투한 신생 혈관들은 전이하는 암세포가 혈액순환계로 들어가는 기회를 줌으로써 암세포가 전이(metastasis) 되도록 한다(Folkman and Tyler, Cancer Invasion and metastasis, Biologic mechanisms and Therapy(S.B. Day ed.) Raven press, New York, pp94-103, 1977; Polverini PJ, Crit. Rev. Oral. Biol. Med., 6(3), pp230-247, 1995). 암 환자가 사망하는 주원인은 전이이며, 현재 임상에서 사용되는 화학요법이나 면역요법들이 암 환자의 생존율을 높이는데 기여하지 못하고 있는 것은 바로 암의 전이 때문이다.
대부분의 고형암 전이 과정을 살펴보면, 암세포가 처음 발생한 장소에서 증식이 이루어지고 암 덩어리가 점점 커지면 다른 장소로 이동하기 위하여 암세포가 암 덩어리에서 떨어져 나와서 혈관을 통하여 이동한 후 2차 장소에 정착하여 다시 세포 증식이 이루어진다. 이러한 과정에서 암세포가 혈관을 통하여 다른 장소로 이동하기 위해서는 암세포 침윤(invasion) 과정을 반드시 거쳐야 한다. 이때, 암세포는 세포외기질성분을 분해하기 위하여 단백질 분해 효소를 과발현하여 분비하며, 이에는 메트릭스 메탈로프로테나아제(matrix metalloproteinases; MMPs), 카텝신(cathepsins), 각종 단백질 분해효소(proteinases) 등이 있다.
카텝신(cathepsin)은 낮은 pH에서 단백질을 분해하는 라이소좀 효소로서, 구조와 촉매 유형에 따라 세린 프로테아제(A, G), 아스파틸 프로테아제(D, E), 시스테인 프로테아제(B, C, F, H, K, L1, V, O, S, W, Z)로 분류된다. 카텝신은 각기 특정한 생리적 프로세스 즉, 면역계에서 항원 제시, 뼈와 연골에서 콜라겐 턴오버, 뉴로펩타이드와 호르몬 프로세싱에 관여하고 있어, 이들 카텝신이 결핍되었을 때 다양한 질병 현상들이 발생할 뿐 아니라, 카텝신이 과발현된 경우도 여러 가지 질병들이 발생하게 된다. 특히 시스테인 카텝신(cathepsin B, F, H, K, L, V, S, Z)들의 과발현이 암 발생과 암 전이에 관여한다고 알려져 있다(Reiser J et al., J Clin Invest. 120(10), 3421-31, 2010).
대부분의 카텝신은 라이소좀 단백질 분해효소로 세포내에서 생리기능 조절 역할을 하고 있으나, 세포 외부로 분비되어 단백분해 기능을 수행하는 것으로 카텝신 S가 있다. 카텝신 S는 세포 내 라이소좀에 있을 때는 항원 프로세싱 또는 아팝토시스에 관여하지만, 세포 밖으로 분비되면 세포외 기질 성분인 라미닌, 피브로넥틴 엘라스틴, 콜라겐 등을 분해한다. 이러한 기능에 따라 카텝신 S가 암세포 침윤 및 혈관신생 과정에 관여하는 것으로 생각되고 있다.
최근 보고에서 대장암(colorectal cancer) 환자의 대장암 조직에서 카텝신 S의 발현이 정상 대장조직에 비하여 유의성 있게 증가되어 있음이 확인되었다 (Gormley JA et al., Br J Cancer, 105(10), 1487-94, 2011). 뿐만 아니라, 카텝신 S 유전자를 표적으로 한 siRNA를 간암세포에 도입하여 카텝신 S 발현을 감소시켰을 때, 간암세포의 증식, 침윤 그리고 혈관신생(angiogenesis)이 감소하는 결과가 보고 된 바 있다(Fan Q et al., Biochem Biophys Res Commun, 425(4), 703-10, 2012).
유방암의 경우는 림프절로 전이된 유방암 환자의 예후와 유방암 조직에서의 카텝신 D 염색이 유의성 있게 연관되어 있는 반면, 림프절 비전이 환자에서는 카텝신 D가 연관되어 있지 않음이 보고되었다(Henry JA et al., Cancer, 65(2), 265-71, 1990). 이러한 결과에 근거하여 유방암 전이와 침윤에 카텝신 D가 중요한 역할을 할 것으로 제기되었으나, 다른 연구에 의하면 MCF7, MDA-MB-231, MDA-MB-435 등과 같은 유방암 세포주를 사용하여 전이 실험을 수행하였을 때 카텝신 D는 유방암 세포의 침윤과 연관성이 없다는 결과를 얻었다(Johnson MD et al., Cancer Res., 53(4), 873-7, 1993). 전이성 유방암세포에서도 간암에서의 경우와 같이 카텝신 S의 작용이 중요한 역할을 할 수 있을 것으로 예측된다.
그리고, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD)은 임상적으로 유사하면서도 조직학적 소견과 내시경 및 면역학적 측면에서 서로 다른 궤양성 대장염 및 크론병의 두 가지 질환으로 분류되며, 이러한 IBD는 염증세포의 활성화가 중요한 병인인 것으로 알려져 있다.
장면역계의 지속적이거나 부적절한 활성화는 만성 점막성 염증의 병리생리에서 중요한 역할을 하며, 특히 호중구, 대식세포, 림프구 및 비만세포의 침윤에 의해 결국 점막 파괴 및 궤양을 초래한다. 침윤되고 활성화된 호중구는 활성산소질소종의 중요한 원인이 되며, 이러한 활성종은 세포독성 물질로서 가교 단백질, 지질 및 핵산에 의해 세포성 산화 스트레스를 유도하고 상피성 기능장애 및 손상을 초래한다.
염증성 질환이 있으면 장관의 점막에서 다양한 염증성 사이토카인들이 분비된다. TNF-α는 궤양성 대장염 환자의 대장 루멘과 대장 상피세포에서 높게 나타나며, 최근 연구에 의하면, TNF-α는 궤양성 대장염의 병인으로 중요한 역할을 한다고 알려졌다. 항-TNF-α 항체인 인플릭시맵(infliximab)은 종기의 치료 뿐 아니라, 기존에 치료되지 않던 크론병의 치료에 효과적이라고 알려졌다. 그러나, 이러한 치료법은 비용이 많이 들고, 일부 환자에게서는 수액 반응 또는 전염성 합병증과 같은 부작용이 야기된다.
단핵구 화학주성 단백질-1(monocyte chemoattractant protein-1; MCP-1)은 C-C 케모카인 패밀리 중 14kDa으로서, 염증부위에서 주로 단핵구/대식세포를 동원하고 활성화시킨다. MCP-1은 대장의 상피세포에 국재되며 이의 발현이 염증성 장질환의 점막에서 단핵구 침윤과 관련된다는 보고가 있고, 다른 케모카인과는 달리 MCP-1은 단지 CCR2에만 결합하므로, MCP-1/CCR2 결합이 단핵구 동원의 주요한 조절자이며 IBD에서 중요한 역할을 수행하는 것으로 알려져 있다.
또한, IBD를 지닌 환자의 점막에서는 유의성 있게 인터루킨-8(IL-8)이 상승하고, 모세혈관 신생을 촉진하는 것으로 알려져 있다. 대장에서의 염증이 심할수록 IL-8의 발현이 증가하며, 설치류를 이용한 동물실험 모델에서 IL-8 특이적 항체가 장염증을 감소시킨다는 것이 알려졌다. 이때, 세포내 Ca2+의 변화가 IL-8 유도의 중요한 요소로 작용한다.
현재 염증성 장질환 치료제로는 프로스타글란딘(prostaglandins)의 생성을 차단하는 5-아미노살리실산(5-aminosalicylic acid; 5-ASA) 계통 약물 예를 들어, 설파살라진 등을 이용하거나 스테로이드류의 면역억제제를 사용하고 있다.
설파살라진은 복부허실(fullness), 두통, 발진, 간질환, 백혈구 감소증, 무과립구증, 남성 불임 등과 같은 부작용 또는 역효과를 일으키기 쉽다. 또한, 설파살라진이 장의 환부를 절개한 환자 또는 차도가 있는 환자에게 충분한 재발 억제 효과가 있는지는 불분명하다.
스테로이드류의 면역억제제는 부신피질 스테로이드로서, 단기적인 효과는 인정받고 있지만, 장기적인 예후를 향상시킬 수는 없으며, 유도된 감염성 질환, 2차 부신피질 부전증, 소화성 궤양, 당뇨병, 정신장애, 스테로이드성 신장병 등과 같은 부작용의 측면에서 단지 급성인 경우에만 사용되어야 하는 한계가 있다.
한편, 혈관 신생 억제제를 이러한 각종 혈관신생 관련 질환 또는 염증성 장질환의 치료를 위한 약제나, 암의 성장과 암의 전이를 방지하는 항암제로 적용할 수 있으므로, 최근에 혈관신생을 억제시켜서 상기 질환들을 치료하려는 연구가 활발히 진행되고 있다.
이에, 본 발명자들은 특정 구조의 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염이 우수한 혈관신생 억제 효과, 염증성 장질환 치료 효과, 암질환 치료 효과 및 암전이 억제 효과를 가짐을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다.
따라서, 본 발명의 목적은 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 제공하는 데에 있다.
따라서, 본 발명의 다른 목적은 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 약학조성물을 제공하는 데에 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 제공한다:
[화학식 1]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000001
상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 약학조성물을 제공한다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 닭의 융모요막 모델에서 혈관내피성장인자와 같은 신생혈관형성 유도물질의 처리에 따른 신생혈관형성 증가를 억제하므로, 황반변성, 관절염 등을 포함한 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료를 위한 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 염증성 장질환 모델에서 대장염을 억제하므로, 염증성 장질환의 예방 또는 치료를 위한 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 융모요막 모델에 폐암세포를 접종한 후, 종양 형성에 의한 혈관신생 및 종양 성장을 억제할 뿐 아니라, 암 전이 및 침윤에 중요한 역할을 수행하는 카텝신 S의 활성을 억제하므로, 암 성장 억제 및 암 전이 억제용 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명의 일실시예에 따른 아미도피리딘올 유도체의 화학식을 개시한 것이다.
도 2는 본 발명의 다른 일실시예에 따른 아미도피리딘올 유도체의 화학식을 개시한 것이다.
도 3은 화합물 8a, 8b 및 8g의 혈관신생 억제에 대한 ID50를 나타낸 것이다.
도 4는 화합물 8a 및 8b의 VEGF-유도성 ROS 소거능을 관찰한 결과이다.
도 5는 황반변성 위험인자인 4-하이드록시노네날(4-HNE)을 ARPE-19 세포주에 처리하여 화합물 8a 및 8b의 ROS 소거능을 관찰한 결과이다.
도 6은 황반변성 위험인자인 안지오텐신 II(Ang II)를 ARPE-19 세포주에 처리하여 화합물 8a 및 8b의 ROS 소거능을 관찰한 결과이다.
도 7 내지 도 10은 TNBS로 유발된 랫드의 대장염에 대한 아미도피리딘올 유도체의 억제 효과를 관찰한 결과로서, 도 7은 아미도피리딘올 유도체 투여 1일부터 6일까지 매일 기록한 체중 변화를 관찰한 것이고, 도 8은 육안으로 관찰되는 대장의 상태를 관찰한 것이고, 도 9는 대장의 무게를 측정한 것이고, 도 10은 MPO(myeloperoxidase) 활성을 측정한 것이다.
도 11은 CAM에 A549 폐암세포를 접종한 후, 화합물 8a, 8b 및 8g의 종양 형성에 의한 혈관신생 및 종양 성장의 억제 효과를 관찰한 결과이다.
도 12는 혈청(5%)으로 유도한 MDA-MB-231 유방암세포 침윤에 대한 카텝신 억제제의 억제 효과를 관찰한 결과이다.
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 제공한다:
[화학식 1]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000002
상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 염증성 장질환 치료 또는 예방용 약학조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암질환 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암 침윤 또는 암 전이 예방 또는 억제용 약학조성물을 제공한다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 제공한다:
[화학식 1]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000003
상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
바람직하게는, 상기 아미도피리딘올 유도체는 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 수소, (C1 내지 C4)알킬 또는 (C1 내지 C4)알콕시 중 어느 하나이고, R3는 벤질옥시 또는 하이드록시 중 어느 하나이고, R5는 할로겐 또는 (C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C4)알콕시 또는 (C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 페닐; 페닐 또는 할로페닐로 치환된 (C1 내지 C4)알킬; 신나밀; 페녹시메틸; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 벤조다이옥솔; 나프탈렌; 및 티오펜으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
보다 바람직하게는, 상기 아미도피리딘올 유도체는 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체 또는 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
상기 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체로는 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-에틸부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드, 3-벤질옥시-N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-(4-클로로페닐)아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,2-디클로로아세트아마이드 및 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
상기 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체로는 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드 및 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드, 2-에틸-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드, 3-하이드록시-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드, 2-(4-클로로페닐)-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, 2,2-디클로로-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드 및 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
상기 약제학적 허용가능한 염은 옥살산, 말레산, 푸마르산, 말산, 타르타르산, 시트르산 및 벤조산으로 이루어진 군에서 선택된 유기산이거나, 또는 염산, 황산, 인산 및 브롬화수소산으로 이루어진 군에서 선택된 무기산에 의해 형성되는 산부가염의 형태일 수 있다.
본 발명에 따른 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 하기 반응식 1과 같은 제조방법에 의해 제조될 수 있다:
[반응식 1]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000004
보다 상세하게는, 피리독신 염산염에 SOCl2와 디메틸포름아마이드(DMF)를 가한 후 환류 교반하여 화합물 1을 얻고, 상기 화합물 1을 아세트산에 현탁시킨 반응액에 아연 분말을 소량 첨가하고 환류 교반하여 화합물 2를 얻으며, 상기 화합물 2를 테트라하이드로퓨란(THF)에 현탁시킨 반응액에 1,3-디브로모-5,5-디메틸히단토인(DBDMH)을 첨가하고 교반하여 화합물 3을 얻으며, 상기 화합물 3을 DMF에 용해시킨 반응액에 K2CO3와 염화벤질(PhCH2Cl)을 첨가하고 교반하여 화합물 4를 얻으며, 상기 화합물 4와 NaOtBu, 트리(디벤질리덴아세톤)디팔라듐(Pd2(dba)3), 및 2,2'-비스(디페닐포스피노)-1,1'-비나프틸(BINAP)을 톨루엔에 용해시킨 반응액에 벤조페논 이민을 첨가하고 환류 교반하여 화합물 5를 얻으며, 상기 화합물 5를 메탄올-THF 혼합용매에 용해시킨 반응액에 아세틸 클로라이드를 소량 첨가한 메탄올 용액을 첨가하고 교반하여 화합물 6을 얻으며, 상기 화합물 6을 CH2Cl2에 용해시킨 반응액에 트라이에틸아민, 아세틸 클로라이드를 순차적으로 첨가하고 교반하여 화합물 7을 얻는다. 또한, 상기 화합물 7을 메탄올에 용해시킨 반응액에 Pd/C 첨가하고 수소 기류 하에서 교반하거나, 상기 화합물 7을 CH2Cl2에 용해시킨 반응액에 BCl3을 첨가하여 화합물 8을 얻을 수도 있다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공한다.
상기 혈관신생으로 인한 질환은 황반 변성, 당뇨성 망막병증, 증식성 유리체 망막병증, 미성숙 망막병증, 녹내장, 퇴화반, 익상편, 후수정체 섬유 증식증, 과립성 결막염, 각막이식 거부, 각막궤양, 원추 각막 및 안과 염증으로 이루어진 군에서 선택된 안과질환일 수 있다.
상기 혈관신생으로 인한 질환은 류마티스성 관절염, 골관절염, 패혈증성 관절염, 건선, 쇼그렌 증후군, 이상 창상 유합, 골질환, 단백뇨증, 복대동맥류 질환, 외상성 관절 손상에 따른 퇴행성 연골손실, 신경계의 수초탈락 질환, 간경변, 신사구체 질환, 배태막의 미성숙 파열, 치근막 질환, 동맥경화증, 재협착증, 중추신경계의 염증질환, 알츠하이머 질환 및 피부노화로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 닭의 융모요막 모델에서 혈관내피성장인자와 같은 신생혈관형성 유도물질의 처리에 따른 신생혈관형성 증가를 억제하므로, 황반변성, 관절염 등을 포함한 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료를 위한 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 염증성 장질환의 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공한다.
상기 염증성 장질환은 궤양성 대장염, 크론병(Crohn's disease), 장관형 베체트병, 출혈성 직장 궤양 및 회장낭염(pouchitis)으로 이루어진 군에서 선택될 수 있다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 염증성 장질환 모델에서 대장염을 억제하므로, 염증성 장질환의 예방 또는 치료를 위한 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암질환 예방 또는 치료용 약학조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암 침윤 또는 암 전이 예방 또는 억제용 약학조성물을 제공한다.
상기 암은 폐암, 유방암, 방광암, 뼈암, 갑상선암, 부갑상선암, 직장암, 인후암, 후두암, 식도암, 췌장암, 대장암, 위암, 설암, 피부암, 뇌종양, 자궁암, 두부 또는 경부암, 담낭암, 구강암, 결장암, 항문 부근암, 중추신경계 종양, 간암 및 대장암으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나일 수 있다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 융모요막 모델에 폐암세포를 접종한 후, 종양 형성에 의한 혈관신생 및 종양 성장을 억제할 뿐 아니라, 암 전이 및 침윤에 중요한 역할을 수행하는 카텝신 S의 활성을 억제하므로, 암 성장 억제 및 암 전이 억제용 약제로서 유용하게 사용될 수 있다.
본 발명에 따른 약학조성물의 적용량 및 적용방법은 제형 및 사용목적에 따라 다를 수 있다.
본 발명에 따른 약학조성물은, 조성물 총 중량에 대하여 상기 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 0.1 내지 50 중량%로 포함할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 약학조성물은 약학조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더 포함할 수 있다.
이러한 담체, 부형제 및 희석제로는, 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다.
본 발명에 따른 약학조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다.
제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 화합물에 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트(calcium carbonate), 수크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제한다.
또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염의 사용량은 환자의 나이, 성별, 체중에 따라 달라질 수 있으나, 0.001 내지 100 mg/㎏, 바람직하게는 0.01 내지 10 mg/kg의 양을 일일 1회 내지 수회 투여할 수 있다. 또한, 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염의 투여량은 투여경로, 질병의 정도, 성별, 체중, 나이 등에 따라서 증감될 수 있다. 따라서, 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.
상기 약학조성물은 쥐, 생쥐, 가축, 인간 등의 포유동물에 다양한 경로로 투여될 수 있다. 투여의 모든 방식은 예상될 수 있는데, 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁내 경막 또는 뇌혈관내(intracerebroventricular) 주사에 의해 투여될 수 있다.
본 발명에 따른 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염은 50% 치사량(LC50)이 2 g/kg 이상으로 안정성이 확보된 것으로서, 본 발명의 약학조성물에 사용할 수 있다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 실시예를 들어 상세하게 설명하기로 한다. 다만 하기의 실시예는 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1> 4,5-비스(클로로메틸)-2-메틸피리딘-3-올 하이드로클로라이드(1)의 제조
피리독신 염산염 (5 g, 24.31 mmol)에 티오닐 클로라이드 (30 mL)와 DMF (0.2 mL, 2.583 mmol)를 가한 후 80℃에서 3시간 환류 교반하였다. 반응액을 실온으로 냉각한 후 에틸 에터 (70 mL)를 가하고 빙냉 하에서 1시간 교반하였다. 석출된 고체를 감압 여과하고 걸러진 고체를 에틸 에터로 세척한 후 건조시켜 목적화합물 1 (5.5 g, 93%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 8.42 (s, 1H), 4.99 (s, 2H), 4.96 (s, 2H), 2.63 (s, 3H) ppm
<실시예 2> 2,4,5-트라이메틸피리딘-3-올(2)의 제조
화합물 1 (10 g, 41.23 mmol)의 아세트산 (50 mL) 현탁액에 아연분말 (8.08 g, 123.69 mmol)을 소량씩 나누어 가하고 130 ℃에서 2시간 환류 교반하였다. 반응액을 실온으로 식힌 뒤 반응액을 감압 여과하고, 10 M NaOH 용액을 사용하여 여액의 pH를 6으로 조절하였다. 이 액을 소금으로 포화시킨 후 EtOAc (100 mL ｘ 6)로 추출하였다. EtOAc 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=20:1)로 정제하여 목적화합물 2 (5.2 g, 92%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 8.49 (s, 1H), 7.72 (s, 1H), 2,31 (s, 3H), 2.12 (s, 3H), 2.08 (s, 3H) ppm
<실시예 3> 6-브로모-2,4,5-트라이메틸피리딘-3-올(3)의 제조
화합물 2 (2.5 g, 18.22 mmol)의 THF (30 mL) 현탁액에 1,3-다이브로모-5,5-다이메틸하이단토인 (DBDMH, 2.5 g, 9.11 mmol)을 가한 뒤 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 농축시킨 후 잔사를 EtOAc (500 mL)과 물 (20 mL)로 희석하고 수층을 EtOAc (100 mL x 3)로 추출하였다. EtOAc 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAc:Hex=1:4)로 정제하여 목적화합물 3 (3.22 g, 80%)을 연노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 5.56 (br s, 1H), 2.42 (s, 3H), 2.31 (s, 3H), 2.25 (s, 3H) ppm
<실시예 4> 3-(벤질옥시)-6-브로모-2,4,5-트라이메틸피리딘(4)의 제조
화합물 3 (6.5 g, 30.08 mmol)의 DMF (15 mL) 용액에 K2CO3 (20.78 g, 150.04 mmol), 벤질 클로라이드 (5.2 mL, 45.12 mmol)를 차례로 가한 후, 실온에서 12시간 교반하였다. 반응액을 EtOAc (700 mL)로 희석하고 물 (20 mL ｘ 10)로 세척하였다. EtOAc 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:20)로 정제하여 목적화합물 4 (8.9 g, 97%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.38-7.43 (m, 5H), 4.77 (s, 2H), 2.46 (s, 3H), 2.32 (s, 3H), 2.24 (s, 3H) ppm
<실시예 5> 5-(벤질옥시)-N-(다이페닐메틸렌)-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-아민(5)의 제조
화합물 4 (3 g, 9.80 mmol), 트리스(다이벤질리덴아세톤)다이팔라듐(0) (Pd2(DBA)3,203mg, 0.20mmol), 2,2'-비스(다이페닐포스피노)-1,1'-바이나프틸 (BINAP, 249 mg, 0.39 mmol), NaOtBu (1.36 g, 13.71 mmol)의 톨루엔 (30 mL) 용액에 벤조페논 이민 (1.73 mL, 9.80 mmol)을 가한 후 120 ℃에서 12시간 환류 교반하였다. 반응액을 실온으로 식힌 뒤 EtOAc (700 mL)와 물 (10 mL)로 희석하고 EtOAc 용액을 포화소금물 (30 mL ｘ 5)로 세척하였다. 무수 MgSO4로 건조, 여과한 후 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAc:Hex=1:4)로 정제하여 목적화합물 5 (3.28 g, 83%)를 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.80 (d, J=7.1 Hz, 2H), 7.17-7.48 (m, 13H), 4.69 (s, 2H), 2.29 (s, 3H), 2.03 (s, 3H), 1.91 (s, 3H) ppm
<실시예 6> 5-(벤질옥시)-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-아민(6)의 제조
메탄올 (50 mL)에 아세틸 클로라이드 (2 mL)를 빙냉 하에서 조금씩 떨어뜨려 녹이고, 이 용액을 화합물 5 (2 g, 4.920 mmol)의 메탄올(50 mL)-THF(5 mL) 혼합 용액에 가한 다음 실온에서 12시간 교반하였다. 반응액을 감압 농축한 후 반응액을 EtOAc (300 mL)로 희석시키고 포화탄산수소나트륨용액 (20 mL ｘ 4)으로 세척하였다. EtOAc 용액을 포화소금물 (20 mL) 로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과한 후 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=20:1)로 정제하여 목적화합물 6 (992 mg, 83%)을 연노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.31-7.45 (m, 5H), 4.68 (s, 2H), 4.25 (br s, 1H), 2.34 (s, 3H), 2.16 (s, 3H), 1.99 (s, 3H) ppm
<실시예 7> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체(7a-7z)의 제조
하기와 같이 제조된 각각의 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체를 도 1에 나타내었다.
<실시예 7-1> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드 (7a)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (5 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 아세틸 클로라이드 (0.073 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 8시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=2:1)로 정제하여 목적화합물 7a (184 mg, 78%)를 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.44 (br s, 1H), 7.30-7.45 (m, 5H), 4.75 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.16 (s, 3H), 2.13 (s, 3H) ppm
<실시예 7-2> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드(7b)의 제조
화합물 6 (150 mg, 0.619 mmol)의 CH2Cl2 (5 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.120 mL, 0.867 mmol), 도데카노일 클로라이드 (0.176 mL, 0.743 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7b (184 mg, 70%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.74 (br s, 1H), 7.35-7.46 (m, 5H), 4.76 (s, 2H), 2.41 (s, 3H), 2.35-2.40 (m, 2H), 2.23 (s, 3H), 2.11 (s, 3H), 1.65-1.77 (m, 2H), 1.25 (s, 16H), 0.86 (t, J=6.8 Hz, 3H) ppm
<실시예 7-3> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드(7c)의 제조
화합물 6 (500 mg, 2.063 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민(0.688 mL, 2.475 mmol), 4-클로로부타노일 클로라이드(1.155 mL, 2.887 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:1)로 정제하여 목적화합물 7c (102 mg, 14%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.37 (br s, 1H), 7.33-7.44 (m, 5H), 4.76 (s, 2H), 3.63 (t, J=6.3 Hz, 2H), 2.59 (t, J=7.1 Hz, 2H), 2.41 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.16 (t, J=6.8 Hz, 2H), 2.11 (s, 3H) ppm
<실시예 7-4> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드(7d)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 아이소부티릴 클로라이드 (107 mg, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7d (177 mg, 72%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.51 (br s, 1H), 7.34-7.47 (m, 5H), 4.75 (s, 2H), 2.56-2.67 (m, 1H), 2.41 (s, 3H), 2.24 (s, 3H), 2.09 (s, 3H), 1.25 (s,3H), 1.22 (s, 3H) ppm
<실시예 7-5> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드(7e)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 아이소바레릴 클로라이드 (0.124 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7e (197 mg, 73%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.59 (br s, 1H), 7.31-7.45 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.24-2.25 (m, 6H), 2.12 (s, 3H), 1.00 (d, J=6.3 Hz, 6H) ppm
<실시예 7-6> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드(7f)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 피바로일 클로라이드(0.123 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7f (207 mg, 77%)를 흰색의 카라멜상으로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.90 (br s, 1H), 7.30-7.45 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.22 (s, 3H), 2.04 (s, 3H), 1.32 (s, 9H) ppm
<실시예 7-7> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드(7g)의 제조
화합물 6 (113 mg, 0.467 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.091 mL, 0.654 mmol), 사이클로펜탄카르보닐 클로라이드(0.069 mL, 0.560 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7g (148 mg, 93%)를 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.71 (br s, 1H), 7.34-7.45 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 2.73-2.85 (m, 1H), 2.40 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.09 (s, 3H), 1.55-1.90 (m, 8H) ppm
<실시예 7-8> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드(7h)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 사이클로헥사노닐 클로라이드(0.132 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:1)로 정제하여 목적화합물 7h (103 mg, 35%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.00 (br s, 1H), 7.33-7.45 (m, 5H), 4.75 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.29-2.35 (m, 1H), 2.23 (s, 3H), 2.08 (s, 3H), 1.94-2.00 (m, 2H), 1.78-1.81 (m, 2H), 1.46-1.61 (m, 2H), 1.19-1.38 (m, 4H) ppm
<실시예 7-9> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드(7i)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 페닐아세틸 클로라이드 (0.134 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:1)로 정제하여 목적화합물 7i (190 mg, 64%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.08 (br s, 1H), 7.26-7.44 (m, 10H), 4.72 (s, 2H), 3.74 (s, 2H), 2.36 (s, 3H), 2.20 (s, 3H), 2.04 (s, 3H) ppm
<실시예 7-10> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드(7j)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 하이드로신나모일 클로라이드 (0.147 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 8시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7j (310 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.33 (br s, 1H), 7.14-7.44 (m, 10H), 4.74 (s, 2H), 3.02 (t, J=7.2 Hz, 2H), 2.70 (t, J= 8.2 Hz, 2H), 2.38 (s, 3H), 2.22 (s, 3H), 2.03 (s, 3H) ppm
<실시예 7-11> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드 (7k)의 제조
화합물 6 (167 mg, 0.689 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.136 mL, 0.965 mmol), 벤조일 클로라이드 (0.096 mL, 0.827 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 12시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7k (206 mg, 86%)를 흰색의 카라멜상으로 얻었다.
<실시예 7-12> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드(7l)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 4-플루오로벤조일 클로라이드 (0.119 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7l (218 mg, 72%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.86 (br s, 1H), 7.93-7.98 (m, 2H), 7.31-7.46 (m, 5H), 7.06-7.13 (m, 2H), 4.76 (s, 2H), 2.39 (s, 3H), 2.27 (s, 3H), 2.17 (s, 3H) ppm
<실시예 7-13> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드(7m)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 4-메톡시벤조일 클로라이드 (0.135 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7m (220 mg, 71%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.61 (br s, 1H), 7.91 (dd, J=6.8, 1.9 Hz, 2H), 7.31-7.46 (m, 5H), 6.91 (dd, J=6.9, 1.9 Hz, 2H), 4.75 (s, 2H), 3.83 (s, 3H), 2.40 (s, 3H), 2.26 (s, 3H), 2.16 (s, 3H) ppm
<실시예 7-14> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드(7n)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 4-tert-부틸벤조일 클로라이드 (0.197 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cll2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7n (218 mg, 66%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.96 (br s, 1H), 7.89 (dd, J=6.7, 1.7 Hz, 2H), 7.31-7.47 (m, 7H), 4.76 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.26 (s, 3H), 2.17 (s, 3H), 1.32 (s, 9H) ppm
<실시예 7-15> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드(7o)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 피페로닐오일 클로라이드 (186 mg, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7o (233 mg, 73%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.86 (br s, 1H), 7.31-7.52 (m, 7H), 6.80 (d, J=8.1 Hz, 1H), 6.00 (s, 2H), 4.75 (s, 2H), 2.39 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.14 (s, 3H) ppm
<실시예 7-16> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드(7p)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 1-나프토일 클로라이드 (0.153 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 2시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7p (170 mg, 60%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.69 (br s, 1H), 8.49-8.53 (m, 1H), 7.83-7.95 (m, 3H), 7.31-7.58 (m, 8H), 4.76 (s, 2H), 2.35 (s, 3H), 2.28-2.29 (m, 6H) ppm
<실시예 7-17> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드(7q)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 2-티오펜카르보닐 클로라이드 (0.109 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2 (100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL ｘ 2), 물 (10 mL ｘ 2)로 세척하였다. CH2Cl2 용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:5)로 정제하여 목적화합물 7q (188 mg, 64%)를 노란색의 카라멜상으로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.74 (dd, J=3.7, 1.0 Hz, 1H), 7.33-7.49 (m, 6H), 7.05 (dd, J=4.9, 3.7 Hz, 1H), 4.76 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.18 (s, 3H) ppm
<실시예 7-18> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-에틸부탄아마이드(7r)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 2-에틸부티릴 클로라이드 (0.140 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:2)로 정제하여 목적화합물 7r (215 mg, 76%)를 흰색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.77 (br s, 1H), 7.30-7.46 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 2.40 (s, 3H), 2.22 (s, 3H), 2.15-2.18 (m, 1H), 2.10 (s, 3H), 1.68-1.83 (m, 2H), 1.49-1.65 (m, 2H), 0.98 (t, J=7.4 Hz, 3H) ppm
<실시예 7-19> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드(7s)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 페녹시아세틸 클로라이드 (0.140 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 2시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:2)로 정제하여 목적화합물 7s (263 mg, 85%)를 흰색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.53 (br s, 1H), 7.29-7.47 (m, 7H), 6.94-7.05 (m, 3H), 4.76 (s, 2H), 4.64 (s, 2H), 2.44 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.12 (s, 3H) ppm
<실시예 7-20> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드(7t)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 2-페닐부티릴 클로라이드 (0.169 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7t (248 mg, 77%)를 노란색 엿상으로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.90 (br s, 1H), 7.20-7.45 (m, 10H), 4.72 (s, 2H), 3.45 (t, J=7.4 Hz, 1H), 2.34 (s, 3H), 2.16-2.27 (m, 4H), 1.94 (s, 3H), 1.74-1.89 (m, 1H), 0.88 (t, J=7.3 Hz, 3H) ppm
<실시예 7-21> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드(7u)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 2,4,6-트라이메틸벤조일 클로라이드 (0.168 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 12시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:4)로 정제하여 목적화합물 7u (104 mg, 33%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 7.56 (br s, 1H), 7.32-7.48 (m, 5H), 6.85 (s, 2H), 4.76 (s, 2H), 2.41 (s, 9H), 2.27 (s, 9H) ppm
<실시예 7-22> 3-벤질옥시-N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드(7v)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 3-벤질옥시벤조일 클로라이드 (260 mg, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7v (276 mg, 74%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.46 (br s, 1H), 7.31-7.57 (m, 13H), 7.13 (dd, J=7.8, 2.4 Hz, 1H), 5.08 (s, 2H), 4.75 (s, 2H), 2.42 (s, 3H), 2.27 (s, 3H), 2.17 (s, 3H) ppm
<실시예 7-23> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드(7w)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 3,5,5-트라이메틸헥사노일 클로라이드 (0.192 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:2)로 정제하여 목적화합물 7w (268 mg, 85%)를 노란색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.47 (br s, 1H), 7.30-7.46 (m, 5H), 4.74 (s, 2H), 2.35-2.48 (m, 4H), 2.23 (s, 3H), 2.15-2.19 (m, 2H), 2.12 (s, 3H), 1.30 (dd, J=14.0, 3.4 Hz, 1H), 1.12 (dd, J=14.0, 6.2 Hz, 1H), 1.04 (d, J=6.1 Hz, 3H), 0.90 (s, 9H) ppm
<실시예 7-24> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-(4-클로로페닐)아세트아마이드(7x)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 4-클로로페닐아세틸 클로라이드 (0.149 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 2시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:1)로 정제하여 목적화합물 7x (235 mg, 72%)를 미색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.29 (br s, 1H), 7.21-7.44 (m, 9H), 4.74 (s, 2H), 3.68 (s, 2H), 2.36 (s, 3H), 2.21 (s, 3H), 2.04 (s, 3H) ppm
<실시예 7-25> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,2-디클로로아세트아마이드(7y)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 디클로로아세틸 클로라이드 (0.097 mL, 0.990 mmol)를 차례로 가한 후 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7y (217 mg, 74%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 9.53 (br s, 1H), 7.31-7.44 (m, 5H), 6.10 (br s, 1H), 4.77 (s, 2H), 2.42 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.14 (s, 3H) ppm
<실시예 7-26> N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드(7z)의 제조
화합물 6 (200 mg, 0.825 mmol)의 CH2Cl2(10mL)용액에 트라이에틸아민 (0.161 mL, 1.155 mmol), 신나모일 클로라이드 (142 mg, 0.833 mmol)를 차례로 가한 후 빙냉하에서 30분 교반하였다. 반응액을 CH2Cl2(100mL)로 희석하고 포화탄산나트륨수용액 (10 mL x 2), 물 (10 mL x 2)로 세척하였다. CH2Cl2용액을 포화소금물로 세척하고 무수 MgSO4로 건조, 여과하여 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAC:Hex=1:3)로 정제하여 목적화합물 7z (211 mg, 69%)를 흰색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CHCl3-d) δ 8.37 (br s, 1H), 7.72 (d, J=16 Hz, 1H), 7.33-7.51 (m, 10H), 6.67 (d, J=16 Hz, 1H), 4.77 (s, 2H), 2.43 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.17 (s, 3H) ppm
<실시예 8> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체(8a-8z)의 제조
하기에서 제조된 각각의 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체를 도 2에 나타내었다.
<실시예 8-1> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드 (8a)의 제조
화합물 7a (164 mg, 0.577 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (33 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터 (Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8a (105 mg, 94%)을 연노란색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 2.30 (s, 3H), 2.15 (s, 3H), 2.08 (s, 3H), 2.05 (s, 3H) ppm
<실시예 8-2>N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드(8b)의 제조
화합물 7b (130 mg, 0.306 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (25 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터 (Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8b (77 mg, 75%)을 연노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 9.60 (s, 1H), 2.28 (s, 3H), 2.15-2.26 (m, 2H), 2.11 (s, 3H), 1.94 (s, 3H), 1.44-1.54 (m, 2H), 1.23 (s, 16H), 0.85 (t, J=5.5 Hz, 3H) ppm
<실시예 8-3> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드(8c)의 제조
화합물 7c (102 mg, 0.294 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (21 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8c (75 mg, 99%)을 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 3.64 (t, J= 6.3 Hz, 2H), 2.55 (t, J=7.2 Hz, 2H), 2.33 (s, 3H), 2.18 (s, 3H), 2.12 (t, J=7.0 Hz, 2H), 2.07 (s, 3H) ppm
<실시예 8-4> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드(8d)의 제조
화합물 7d (155 mg, 0.496 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (31 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8d (95 mg, 86%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 2.55-2.72 (m, 1H), 2.33 (s, 3H), 2.18 (s, 3H), 2.05 (s, 3H), 1.22 (s, 3H), 1.19 (s, 3H) ppm
<실시예 8-5> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드(8e)의 제조
화합물 7e (170 mg, 0.520 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (34 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8e (102 mg, 82%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 2.33 (s, 3H), 2.20-2.25 (m, 2H), 2.18 (s, 3H), 2.12-2.15 (m, 1H), 2.07 (s, 3H), 1.02 (s, 3H), 1.00 (s, 3H) ppm
<실시예 8-6> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드(8f)의 제조
화합물 7f (160 mg, 0.490 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (32 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8f (80 mg, 69%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 2.38 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.08 (s, 3H), 1.30 (s, 9H) ppm
<실시예 8-7> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드(8g)의 제조
화합물 7g (108 mg, 0.319 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (20 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8g (66 mg, 83%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 2.77-2.86 (m, 1H), 2.33 (s, 3H), 2.19 (s, 3H), 2.06 (s, 3H), 1.61-1.96 (m, 8H) ppm
<실시예 8-8> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드(8h)의 제조
화합물 7h (73 mg, 0.207 mmol)의 메탄올-THF (10 mL) 용액에 10% Pd/C (15 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8h (54 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 9.43 (s, 1H), 2.28 (s, 3H), 2.11 (s, 3H), 1.92 (s, 3H), 1.62-1.81 (m, 4H), 1.13-1.46 (m, 6H) ppm
<실시예 8-9> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드(8i)의 제조
화합물 7i (141 mg, 0.393 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (28 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8i (37 mg, 35%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.16-7.36 (m, 5H), 3.63 (s, 2H), 2.29 (s, 3H), 2.11 (s, 3H), 1.91 (s, 3H) ppm
<실시예 8-10> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드(8j)의 제조
화합물 7j (291 mg, 0.779 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (58 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8j (186 mg, 84%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.11-7.25 (m, 5H), 2.98 (t, J=7.3 Hz, 2H), 2.68 (t, J=7.9 Hz, 2H), 2.33 (s, 3H), 2.15 (s, 3H), 1.89 (s, 3H) ppm
<실시예 8-11> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드 (8k)의 제조
화합물 7k (186 mg, 0.539 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (37 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 관크로마토그래피(EtOAc:Hex=1:1)로 정제한 후 감압 농축하였다. 잔사를 다시 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8k (86 mg, 62%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.93-7.97 (m, 2H), 7.44-7.59 (m, 3H), 2.36 (s, 3H), 2.21 (s, 3H), 2.13 (s, 3H) ppm
<실시예 8-12> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드(8l)의 제조
화합물 7l (180 mg, 0.493 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (38 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8l (135 mg, 99%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.99-8.05 (m, 2H), 7.18-7.25 (m, 2H), 2.37 (s, 3H), 2.22 (s, 3H), 2.13 (s, 3H) ppm
<실시예 8-13> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드(8m)의 제조
화합물 7m (200 mg, 0.531 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (40 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8m (151 mg, 99%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.93-7.96 (m, 2H), 6.99-7.03 (m, 2H), 3.85 (s, 3H), 2.37 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.13 (s, 3H) ppm
<실시예 8-14> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드(8n)의 제조
화합물 7n (205 mg, 0.509 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (40 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8n (157 mg, 99%)을 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 7.94 (d, J=8.3 Hz, 2H), 7.52 (d, J=8.4 Hz, 2H), 2.37 (s, 3H), 2.19 (s, 3H), 2.03 (s, 3H), 1.31 (s, 9H) ppm
<실시예 8-15> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드(8o)의 제조
화합물 7o (222 mg, 0.568 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (44 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8o (170 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 7.55 (dd, J=8.1, 1.8 Hz, 1H), 7.40 (d, J=1.2 Hz 1H), 6.89 (d, J=8.1 Hz, 1H), 6.03 (s, 2H), 2.36 (s, 3H), 2.23 (s, 3H), 2.12 (s, 3H) ppm
<실시예 8-16> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드(8p)의 제조
화합물 7p (110 mg, 0.277 mmol)의 메탄올 (5 mL) 용액에 10% Pd/C (22 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 10시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8p (104 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, CH3OH-d4) δ 8.31-8.35 (m, 1H), 7.95-7.96 (m, 1H), 7.86-7.89 (m, 2H), 7.47-7.53 (m, 3H), 2.42 (s, 3H), 2.25 (s, 3H), 2.23 (s, 3H) ppm
<실시예 8-17> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드(8q)의 제조
화합물 7q (160 mg, 0.454 mmol), 펜타메틸벤젠 (201 mg, 1.362 mmol)의 CH2Cl2 (10 mL) 용액에 1 M BCl3 (0.91 mL, 0.91 mmol)용액을 빙냉 하에서 적가한 후 30분 더 교반하였다. 반응액에 CHCl3:MeOH=9:1용액 (1 mL)을 가하고 실온에서 1시간 교반하였다. 반응액을 감압 농축하고, 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=9:1)로 정제하여 목적화합물 8q (115 mg, 96%)를 노란색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ 10.2 (s, 1H), 8.56 (s, 1H), 7.98 (d, J=3.1 Hz, 1H), 7.80 (d, J=4.5 Hz, 1H), 7.17-7.21 (m, 1H), 2.33 (s, 3H), 2.16 (s, 3H), 2.02 (s, 3H) ppm
<실시예 8-18> 2-에틸-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)부탄아마이드(8r)의 제조
화합물 7r (150 mg, 0.441 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (30 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8r (110 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.55 (s, 1H), 2.29 (s, 3H), 2.16-2.25 (m, 1H), 2.12 (s, 3H), 1.97 (s, 3H), 1.33-1.64 (m, 4H), 0.90 (t, J=7.4 Hz, 6H) ppm
<실시예 8-19> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드(8s)의 제조
화합물 7s (150 mg, 0.398 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (30 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 5시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8s (120 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.79 (s, 1H), 7.27-7.35 (m, 2H), 6.94-7.02 (m, 3H), 4.66 (s, 2H), 2.30 (s, 3H), 2.13 (s, 3H), 1.97 (s, 3H) ppm
<실시예 8-20> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드(8t)의 제조
화합물 7t (176 mg, 0.453 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (35 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8t (135 mg, 99%)를 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.81 (s, 3H), 8.44 (s, 1H), 7.19-7.40 (m, 5H), 3.57 (dd, J=8.6, 6.5 Hz, 1H), 2.26 (s, 3H), 2.09 (s, 3H), 1.97-2.06 (m, 1H), 1.80 (s, 3H), 1.61-1.72 (m, 1H), 0.88 (t, J= 7.3 Hz, 3H) ppm
<실시예 8-21> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드(8u)의 제조
화합물 7u (94 mg, 0.242 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (19 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 7시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8u (72 mg, 99%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.82 (s, 1H), 6.88 (s, 2H), 2.33 (s, 9H), 2.25 (s, 3H), 2.16 (s, 3H), 2.15 (s, 3H) ppm
<실시예 8-22> 3-하이드록시-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드(8v)의 제조
화합물 7v (150 mg, 0.33 mmol)의 메탄올 (10 mL) 용액에 10% Pd/C (30 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 3시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8v (42 mg, 47%)를 흰색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 10.02 (s, 1H), 7.24-7.43 (m, 3H), 6.95 (dd, J=7.6, 2.1 Hz, 1H), 2.32 (s, 3H), 2.16 (s, 3H), 2.00 (s, 3H) ppm
<실시예 8-23> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드(8w)의 제조
화합물 7w (186 mg, 0.48 mmol)의 메탄올 (12 mL) 용액에 10% Pd/C (37 mg)을 가하고 수소기류 하 실온에서 4시간 교반하였다. 반응액을 여과하고 여액을 감압 농축하였다. 잔사를 메탄올에 녹인 후 이 용액을 시린지 필터(Advantec™ JP050AN)를 사용하여 여과하고 농축하여 목적화합물 8w (130 mg, 93%)를 노란색의 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.52 (s, 1H), 2.28 (s, 3H), 2.18-2.25 (m, 1H), 2.11 (s, 3H), 2.04-2.09 (m, 2H), 1.96 (s, 3H), 1.31 (dd, J=13.8, 3.0 Hz, 1H), 1.07 (dd, J=13.9, 6.2 Hz, 1H), 0.97 (d, J=6.1 Hz, 3H), 0.89 (s, 9H) ppm
<실시예 8-24> 2-(4-클로로페닐)-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드(8x)의 제조
화합물 7x (130 mg, 0.329 mmol), 펜타메틸벤젠 (146 mg, 0.987 mmol)의 CH2Cl2 (5 mL) 용액에 1 M BCl3 (0.66 mL, 0.66 mmol)용액을 빙냉 하에서 적가한 후 2시간 교반하였다. 반응액에 CHCl3:MeOH=9:1용액 (1 mL)을 가하고 실온에서 1시간 교반하였다. 반응액을 감압 농축하고, 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=9:1)로 정제하여 목적화합물 8x (94 mg, 94%)를 흰색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 9.85 (br s, 1H), 8.46 (s, 1H), 7.32-7.40 (m, 4H), 3.59 (s, 2H), 2.29 (s, 3H), 2.10 (s, 3H), 1.87 (s, 3H) ppm
<실시예 8-25> 2,2-디클로로-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드(8y)의 제조
화합물 7y (161 mg, 0.456 mmol), 펜타메틸벤젠 (203 mg, 1.367 mmol)의 CH2Cl2 (7 mL) 용액에 1 M BCl3 (0.91 mL, 0.91 mmol)용액을 빙냉 하에서 적가한 후 1시간 교반하였다. 반응액에 CHCl3:MeOH=9:1용액 (1 mL)을 가하고 실온에서 1시간 교반하였다. 반응액을 감압 농축하고, 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=9:1)로 정제하여 목적화합물 8y (110 mg, 92%)를 흰색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 10.34 (br s, 1H), 8.64 (br s, 1H), 6.60 (s, 1H), 2.31 (s, 3H), 2.14 (s, 3H), 1.98 (s, 3H) ppm
<실시예 8-26> N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드(8z)의 제조
화합물 7z (140 mg, 0.376 mmol), 펜타메틸벤젠 (167 mg, 1.127 mmol)의 CH2Cl2 (7 mL) 용액에 1 M BCl3 (0.75 mL, 0.75 mmol)용액을 빙냉 하에서 적가한 후 2시간 교반하였다. 반응액에 CHCl3:MeOH=9:1용액 (1 mL)을 가하고 실온에서 1시간 교반하였다. 반응액을 감압 농축하고, 잔사를 관크로마토그래피(CHCl3:MeOH=9:1)로 정제하여 목적화합물 8z (45 mg, 42%)를 노란색 고체로 얻었다.
1H-NMR (250 MHz, DMSO-d 6 ) δ 10.34 (br s, 1H), 8.64 (br s, 1H), 6.60 (s, 1H), 2.31 (s, 3H), 2.14 (s, 3H), 1.98 (s, 3H) ppm
<실험예 1> CAM 분석을 통한 혈관신생 억제효과 검토
생체 내 시험상(in vivo)에서의 혈관신생 억제효과를 확인하기 위하여, 융모요막 (chorioallantoic membrane, CAM) 분석을 실시하였다 (Nguyen M et al., Microvascular Res., 47, pp31-40, 1994). 닭의 유정란을 온도 37 ℃, 상대습도 55%를 유지해주면서 배양시켜 10일째에 기낭 (air sac) 부위에 피하주사침(hypodermic needle, 녹십자의료공업, 한국)을 이용하여 첫 번째 작은 구멍을 뚫고, 창(window)을 낼 유정란의 평평한 부위에 두 번째 구멍을 뚫었다. 첫 번째 구멍인 기낭 부위의 구멍을 통해 공기를 빼냄으로써, 융모요막(CAM)이 유정란의 껍질로부터 분리가 되게 하여 이 부위를 회전연마기(grinding wheel, Multipro 395JA, Dremel, Mexico)로 절단하여 창을 만들었다. 다음으로, 와트만 필터 디스크(whatman filter disk #1, whatman사, USA)에 코티존 아세테이트(cortisone acetate) 3 mg/mL을 처리하여 건조시킨 후 혈관내피성장인자(VEGF)는 20 ng/CAM의 농도로 적셔두었다. 만들어 둔 창을 통해 필터 디스크를 혈관 위에 얹고, 실시예의 화합물들을 각각 디메틸술폭사이드(DMSO)로 녹여 인산완충용액(PBS)으로 희석하여 각 농도별로 처리하였다. 화합물 처리 3일 뒤, 필터 디스크가 얹힌 CAM 부분을 떼어내어 인산완충용액을 이용하여 씻어준 후, 입체현미경(Stemi SV6 stereomicroscope, Carl Zeiss, Germany)과 Image-Pro Plus software(Media Cybernetics; Silver Spring, MD, USA)를 이용하여 이미지를 촬영하여 혈관 가지의 개수를 측정하고 자료를 분석하였다.
그 결과, 하기 표 1과 같이, VEGF로 유도된 신생혈관형성 증가가 본 발명에 따른 화합물들의 처리(CAM 당 각 화합물 0.01 nmol을 처리)로 인해 감소됨을 확인할 수 있었으며, 대부분의 경우 우수한 혈관신생 억제효과를 나타내었다. 또한, 화합물 8a, 8b 및 8g를 용량별로 CAM에 처리하여 ID50을 구한 결과, 도 3과 같이 각각 1.7 pg/CAM (8.7 fmol/CAM), 5.0 pg/CAM (14.9 fmol/CAM) 및 0.9 pg/CAM (3.6 fmol/CAM) 이었다.
표 1
실험군 억제율 (%)
VEGF(20 ng/CAM)+화합물(0.01 nmol/CAM) SU4312 74.6±8.5#
8a 84.8±10.0#
8b 59.3±5.4#
8c 70.2±4.6#
8d 53.2±11.5#
8e 75.6±8.9#
8f 73.2±6.4#
8g 81.8±8.4#
8h 76.3±7.2#
8i 69.6±11.0#
8j 74.2±3.9#
8k 77.3±13.1#
8l 75.3±6.3#
8m 69.7±4.5#
8n 74.2±7.0#
8o 64.8±17.4#
8p 75.8±5.4#
8q 74.8±13.2#
#P<0.05 compared to VEGF-treated group.
<실험예 2> HUVEC 세포에서의 활성산소종(reactive oxygen species, ROS) 소거능 측정
VEGF로 유도된 HUVEC 세포 내 ROS의 소거능을 측정하기 위해 DCF-DA (2',7'-dichlorofluorescein diacetate)를 이용하였다. DCF-DA는 세포 내 ROS의 존재 시 형광의 DCF로 산화하여 녹색의 형광을 나타낸다. 0.2% 젤라틴으로 코팅된 8-well plates에 1ｘ105의 농도로 HUVEC을 분주한 다음 24시간 배양하였다. 화합물 8a 및 8b를 3시간 동안 전처리 하고 VEGF로 15분간 유도한 후 PBS (pH 7.4)로 3회 세척한 다음 10 μM의 DCF-DA를 EBM-2 배지에 넣어 암소에서 30분간 처리하였다. 다시 PBS로 3회 세척하고 세포 내 형광의 정도를 형광 현미경을 사용하여 측정하였다.
그 결과, 도 4와 같이 화합물 8a 및 8b를 처리한 경우 VEGF에 비해 세포 내 형광의 정도가 현저히 감소한 것을 확인할 수 있다.
<실험예 3> 황반변성 위험인자 유도 활성산소종(ROS) 소거능 측정
앞선 실험예 2와 동일한 방법으로 실험을 수행하되, 황반변성 위험인자인 4-하이드록시노네날(4-hydroxynonenal; 4-HNE) 또는 안지오텐신 II(angiotensin II; Ang II)를 ARPE-19(adult retinal pigment epithelium-19) 세포주에 처리하여 화합물 8a와 8b의 ROS 소거능을 관찰하였다.
그 결과, 도 5 및 도 6과 같이 화합물 8a 및 8b를 처리한 경우 대조군에 비해 세포 내 형광의 정도가 현저히 감소한 것을 확인 할 수 있다.
황반변성 위험인자인 4-HNE 또는 Ang II는 ARPE 세포에서 ROS 발생을 통해 세포 손상을 야기하여 궁극적으로 브루크막 손상 및 혈관신생을 야기하여 황반변성 및 실명을 초래하게 되는데, 상기의 실험결과를 토대로 화합물 8a 및 8b가 4-HNE 및 Ang II의 ROS 발생을 강력하게 억제함으로써 황반변성의 치료 효과가 있을 것으로 확인되었다.
<실험예 4> HT-29 장 상피세포에서 아미도피리딘올 유도체의 장 상피 세포-단핵구 부착능 억제 효과
HT-29 세포를 24-웰 플레이트에 2ｘ10 cells/cm2의 농도로 배양하여 1% PS만 함유된 무혈청 배지에 아미도피리딘올 화합물 8a~8z를 농도별로 1시간 동안 전처리하였다. 그 다음 TNF-α를 10 ng/㎖ 처리하여 37 ℃에서 3시간 동안 반응시키고, 반응 종결 후 HT-29 세포의 배지를 제거하고 PBS로 1회 세척하였다. 그 후 37 ℃에서 30분 동안 10 μg/mL BCECF-AM으로 처리하여 반응시킨 U937 세포를 HT-29 세포와 37 ℃에서 1시간 동안 반응시킨 후, 부착되지 않은 U937 세포를 제거하기 위하여 PBS로 2회 세척하였다. 세포 용해를 위하여, 0.1M Tris 중 0.1% Triton X-100를 처리하여 30분 동안 실온에서 반응시킨 후, Fluostar optima microplate reader(BMG Labtechnologies, Germany)을 사용하여 형광을 측정하여 정량하였다.
그 결과, 하기 표 2에 TNF-α로 유도된 사람 유래 대장 상피세포(HT-29)와 단핵구 세포(U937) 부착에 대한 아미도피리딘올 화합물 8a~8z의 억제 효과를 나타내었다. 이때 *는 TNF-α 처리 그룹과 비교하였을 때 P 값이 0.05 미만인 경우이다. 표 2에 나타난 바와 같이, 아미도피리딘올 화합물 8a~8z는 TNF-α에 의해 유도된 장 상피 세포와 U937 세포의 부착을 억제하는 것을 알 수 있었다.
표 2
실험군 억제율 (%)
5-ASA (20 mM) 46.8*
8a (1 M) 55.4*
8b (1 M) 55.8*
8c (1 M) 24.7
8d (1 M) 52.3*
8e (1 M) 64.2*
8f (1 M) 37.5
8g (1 M) 42.8*
8h (1 M) 64.5*
8i (1 M) 56.6*
8j (1 M) 72.5*
8k (1 M) 18.5
8l (1 M) 13.7
8m (1 M) 13.9
8n (1 M) 22.5
8o (1 M) 40.2
8p (1 M) 64.9*
8q (1 M) 68.4*
8r (1 M) 4.2
8s (1 M) 10.8
8t (1 M) 23.6*
8u (1 M) 30.4
8v (1 M) 54.1*
8w (1 M) 54.5*
8x (1 M) 41.5*
8y (1 M) 60.6*
8z (1 M) 25.2
이러한 결과는 염증세포의 이동과 침윤을 일으키는 데 밀접한 관련이 있는 중성구와 림프구 같은 염증세포들의 부착을 아미도피리딘올 유도체 8a 내지 8z가 억제함으로써 염증반응을 억제할 수 있음을 나타낸다.
<실험예 5> TNBS로 유도된 염증성 장질환 모델을 이용한 아미도피리딘올 유도체의 대장염 억제 효과
본 발명의 화합물의 염증성 대장염 완화 효과를 보기 위하여 TNBS (2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid)로 유도된 대장염 동물모델을 이용하여 실험하였다. 실험에 사용된 동물은 7~8주령 된 Sprague Dawley 종을 Samtaco Bio Korea로부터 구입하여 2일간 일반 고형사료로 안정화시킨 후 실험에 이용하였다. 실험 기간 중 사료와 물을 자유로이 공급하였고, 사육실의 온도는 25±1 ℃, 상대습도는 50±10%로 유지시켰다. 점등 관리는 자동조명조절기에 의해 12시간 명암주기(light-dark cycle)로 조절하였다.
실험군은 각 군당 6마리로 하여 평균체중이 180±10 g이 되도록 난괴법(randomized block design)에 의하여 5군(대조군, TNBS 단독 투여군, TNBS + 5-ASA 300 mg/kg 투여군, TNBS + 8a 및 8j 0.1 mg/kg 투여군, TNBS + 8a 및 8j 1.0 mg/kg 투여군)으로 나누어 실험하였다. 24 시간 절식한 랫드를 디에틸에테르(Et2O)로 마취하고, 폴리에틸렌 카테터를 연결한 1 mL 주사기를 이용하여 항문을 통해 대장의 관강 내에 50%(v/v) 에탄올로 희석한 3% TNBS 0.8 mL을 천천히 주입한 후, 항문으로 3% TNBS가 새어 나오는 것을 방지하기 위하여 랫드를 거꾸로 세운 상태에서 60초 동안 정치시켰다.
대조군은 vehicle (50%(v/v) 에탄올)만을 다른 실험군과 마찬가지 방법으로 주입하였다. 약물의 효과를 조사하기 위하여 절식 24시간 후에 TNBS 처치 다음날부터 5일 동안 약물을 복강으로 8a 및 8j 0.1 mg/kg 또는 1.0 mg/kg로 매일 일정한 시간에 일회 투여하였다. 비교 시험물질로 IBD 치료제로 가장 잘 알려진 설파살라진의 활성 대사체인 5-ASA를 양성 대조군으로 사용하였다.
모든 랫드들은 TNBS 투여 후 7일째 희생되었다. 육안으로 보이는 궤양과 대장염의 심각성은 실험에 참가하지 않은 두 명의 조사자에 의해 평가되었다. 랫드의 대장을 적출하여 항문으로부터 5~6 cm 사이의 조직을 1 cm 길이로 잘라서 조직의 장 무게 및 MPO 활성을 측정하고 조직검사를 실시하는 데 사용하였다. 또한, 모든 실험동물은 digital mass meter를 이용하여 절식단계부터 TNBS 투여 및 약물 투여 과정 동안 각 랫드의 체중 변화를 관찰하였다. 동물실험은 실험동물의 관리와 사용을 위해 실험동물자원관리원과 영남대학교에 제도화된 지침에 따라 수행되었다.
도 7 내지 도 10은 TNBS로 유발된 랫드의 대장염에 대한 아미도피리딘올 화합물 8a 및 8j의 효력을 보여주는 그래프로, 도 7은 시험물질 투여 1일부터 6일까지 매일 기록한 체중이고, 도 8은 육안으로 관찰되는 대장의 상태를 관찰한 것이고, 도 9는 대장의 무게를 측정한 그래프이고, 도 10은 MPO(myeloperoxidase) 활성을 측정한 그래프이다. *는 약물과 TNBS 모두 처리되지 않은 그룹과 비교하였을 때 P 값이 0.05 미만인 경우이고, #는 TNBS 처리 그룹과 비교하였을 때 P 값이 0.05 미만인 경우이다.
도 7에 나타난 바와 같이, 체중 180~190 g인 랫드에 3% TNBS를 이용하여 장내에 염증을 유발한 대장염 모델에서 TNBS 처리 전의 몸무게를 기준으로 5일 간 매일 일정 시간에 몸무게의 변화를 관찰한 결과, vehicle 처리 대조군은 계속해서 몸무게가 증가함을 보이고 TNBS 군은 계속하여 몸무게가 감소하며 5일째부터 몸무게가 약간 회복되었으나, 정상군과 비교했을 때 몸무게가 현저히 감소된 것을 알 수 있다. 양성대조군 5-ASA 300 mg/kg을 처리한 군은 3일째부터 몸무게가 서서히 회복되어 TNBS 단독 투여군에 비해 몸무게가 증가하였다. TNBS 처리 후 화합물 8a 1.0 mg/kg을 투여한 군은 TNBS 단독 처리군에 비해 몸무게가 3일째부터 급격히 증가하여 5-ASA 보다 몸무게 회복이 우수하게 나타났다. 화합물 8j 1.0 mg/kg을 투여한 경우는 투여 다음날부터 곧바로 현저한 몸무게 회복 및 증가를 보였으며 정상군의 몸무게에 근접하였다.
도 8은 5일간의 약물투여가 끝난 후에 대장을 적출하여 육안으로 살펴 본 결과이며, TNBS를 처리한 랫드의 대장은 vehicle 처리 정상군에 비하여 부종과 충혈이 관찰되었으며, 충수 돌기의 부종과 울혈 및 유착현상이 나타났다. 양성대조군 5-ASA 100 mg/kg 투여군에서는 TNBS 단독 투여군과 비교하여 육안적 증상과 다른 기관들 사이의 유착이나 대장의 충혈도 현저히 억제되었다. 화합물 8a 및 8j 1.0 mg/kg 투여군에서 부종과 충혈의 억제 효과가 크게 나타났다.
또한, 도 9에는 랫드의 대장을 적출하여 조직 무게를 측정한 결과를 나타내었으며, vehicle 처리 정상군에 비해 TNBS 단독 처리군의 경우 부종이 있는 장의 무게가 유의적으로 증가한 것을 볼 수 있다. 양성 대조군인 5-ASA 100 mg/kg를 처리한 군에서는 장의 무게가 TNBS 처리군에 비해 유의적으로 감소하였고, 화합물 8a 및 8j 1.0 mg/kg를 처리한 군에서는 장 무게가 현저히 감소하는 것을 관찰할 수 있었다.
도 10은 MPO(myeloperoxidase) 활성을 측정한 그래프로 MPO는 호중구에서 주로 발견되는 효소이다. 조직에서 MPO의 활성은 호중구 침윤 지표가 되며, 이는 곧 염증반응의 지표로써 염증성 대장염에 의한 장 손상 수치와 상관성을 나타낸다.
MPO 활성을 측정하기 위해서 MPO assay 키트를 이용하였다. 대장 조직을 차가운 PBS로 세척하고 무게를 측정하여 조직의 무게 10 mg 당 용해 완충액(lysis buffer: pH7.4, 200 mM NaCl, 5 mM EDTA, 10 mM Tris, 10% 글리세롤) 200 μL를 첨가한 후 tissue homogenizer(Bio homogenizer M133, BIOSPEC PRODUCTS Inc. USA)를 이용하여 30초간 균질화하였다. 균질화한 시료를 1500ｘg에서 15분 동안 2회 원심분리하여 상등액을 얻은 다음, 이 상등액을 MPO ELISA 키트(HK210, Hycult Biotechnology, Netherlands)를 이용하여 MPO 활성을 측정하였다. 즉, 항-마우스 MPO 항체가 코팅된 96-웰에 상기 상등액 100 μL를 첨가하여 실온에서 1시간 반응 시키고, 세척 완충액으로 3 회 반복 세척하였다. 여기에 reconstituted tracer를 100 μL 첨가하여 실온에서 1시간 반응하고 3회 반복 세척한 다음, 스트렙트아비딘-퍼옥시다제 복합체(streptavidin-peroxidase conjugate) 100 μL를 첨가하였다. 실온에서 1시간 반응시킨 후 세척하고, TMB 기질 용액 100 μL를 첨가하여 반응 30분 후 정지 용액 100 μL를 첨가해서 반응을 정지시킨 후 450 nm에서 흡광도를 측정하였다. MPO 활성도는 25 ℃에서 1분 동안 물에서 과산화수소 1 μM이 환원되는 수치를 의미하며, 이것을 대장 조직 균질액 1 mL에 포함된 MPO 양으로 계산하였다. *는 약물과 TNBS 모두 처리되지 않은 그룹과 비교하였을 때 P 값이 0.05 미만인 경우이고, #는 TNBS 처리 그룹과 비교하였을 때 P 값이 0.05 미만인 경우이다.
도 10에 도시된 바와 같이, 대조군에 비해 TNBS 단독 처리군에서 MPO 활성이 현저히 높게 나타났으며, 5-ASA 100 mg/kg 투여군에서는 MPO 활성이 유의적으로 감소한 것을 알 수 있다. 화합물 8a 1.0 mg/kg 투여군에서는 TNBS 단독 처리군에 비해 MPO 활성이 낮게 관찰되었을 뿐 아니라, 5-ASA 100 mg/kg보다 우수하게 장 조직의 MPO 활성을 억제하였다.
<실험예 6> 종양 형성에 의한 혈관신생 및 종양 성장의 억제 효과 검토
생체 내 시험상(in vivo)에서의 혈관신생 억제효과를 확인하기 위하여, 융모요막 (chorioallantoic membrane, CAM) 분석을 실시하였다 (Nguyen M et al., Microvascular Res., 47, pp31-40, 1994). 닭의 유정란을 온도 37 ℃, 상대습도 55%를 유지해주면서 배양시켜 9일째에 기낭 (air sac) 부위에 피하주사침(hypodermic needle, 녹십자의료공업, 한국)을 이용하여 첫 번째 작은 구멍을 뚫고, 창(window)을 낼 유정란의 평평한 부위에 두 번째 구멍을 뚫었다. 첫 번째 구멍인 기낭 부위의 구멍을 통해 공기를 빼냄으로써, 융모요막(CAM)이 유정란의 껍질로부터 분리가 되게 하여 이 부위를 회전연마기(grinding wheel, Multipro 395JA, Dremel, Mexico)로 절단하여 창을 만들고, A549 폐암세포를 매트리젤(matrigel)과 1:1로 혼합하며, 화합물 8a, 8b 및 8g를 각각 처리하여 1.5ｘ106 세포/CAM의 밀도로 접종시켰다.
접종 5일 뒤, 종양이 형성된 CAM 부분을 떼어내어 인산완충용액을 이용하여 씻어준 후, 입체현미경(Stemi SV6 stereomicroscope, Carl Zeiss, Germany)과 Image-Pro Plus software(Media Cybernetics; Silver Spring, MD, USA)를 이용하여 이미지를 촬영하여 혈관 가지의 개수를 측정하고 자료를 분석하였다.
그 결과, 하기 표 3 및 도 11과 같이 용량별 화합물 8a, 8b 및 8g의 처리에 의해 종양 형성에 의한 혈관신생을 억제하였으며 종양의 성장 또한 억제하였다.
표 3
실험군 (pmol/CAM) 혈관신생 억제율(%) 종양 성장 억제율(%)
SU4312 0.01 20.8±1.4* 16.2±20.4
0.1 25.1±2.8* 23.4±9.3
1.0 36.2±1.9* 26.8±4.9
8a 0.001 12.7±6.5 20.3±5.9
0.01 23.8±5.2* 34.2±5.3*
0.1 30.4±3.7* 37.9±8.0*
1.0 41.2±1.4* 47.7±4.1*
8b 0.001 12.2±4.4 21.7±8.9
0.01 18.0±3.2* 26.0±10.0
0.1 21.3±2.0* 31.3±7.3*
1.0 24.7±2.2* 38.2±7.2*
8g 0.001 30.9±8.5* 13.2±3.5
0.01 48.4±4.1* 24.0±1.6*
0.1 54.4±6.7* 45.1±3.1*
1.0 58.1±6.8* 62.7±2.3*
*P<0.05 compared to the vehicle-treated group.
<실험예 7> 카텝신 억제제를 사용한 유방암 세포의 침윤 억제 효과 검토
전이성이 강한 유방암 세포 MDA-MB-231의 침윤에 중요한 역할을 하는 카텝신 종류를 조사하기 위하여 카텝신 B, D, K, L, S 억제제를 사용하여 유방암 세포 침윤 억제 효과를 검토하였다.
침윤 실험 (invasion assay)는 8 ㎛ 포어 사이즈 필터를 가진 트랜스웰 인서트(Transwell insert; BD FALCON, Bedford, USA)를 사용하여 수행하였다. 트랜스웰 인서트 필터 위쪽에는 매트리겔(1 mg/ml) 20 ㎕로 코팅하고 아래쪽은 제1유형 콜라겐(0.5 mg/ml) 30 ㎕로 코팅하였다. MDA-MB-231 (5x105 cells/100 ㎕)을 인서트 챔버에 추가하고 각 억제제도 각 인서트 챔버에 추가하였다. 세포의 침윤을 유도하기 위하여 5% FBS를 포함한 배지를 바텀 챔버의 각 웰에 추가하여 37℃ 세포 배양기에서 반응시켰다. 18시간 후, 인서트 챔버 안의 용액을 버리고 남아 있는 세포를 면봉으로 제거한 후 멤브레인 아래에 있는 세포는 메탄올로 고정하고, 헤마톡실린과 에오신으로 염색하였다. 현미경으로 멤브레인에 있는 세포를 관찰하고 200x 해상도로 5 필드를 선택한 후 각 필드에 있는 세포 수를 계수하였다.
그 결과, 다음 표 4와 같이 카텝신 B 억제제(CA-074 Me), 카텝신 K 억제제(Odanacatib), 카텝신 S 억제제(Z-FL-COCHO)를 처리한 MDA-MB-231 세포들은 억제제를 처리하지 않은 세포에 비하여 침윤이 감소되었다. 그 중 카텝신 S 억제제에 의해 MDA-MB-231 세포 침윤이 가장 효과적으로 억제되었다(도 12). 따라서 유방암 세포 침윤에 카텝신 S가 중요한 역할을 수행함을 알 수 있었다.
표 4
카텝신 억제제 종류 농도 억제율 (%)*
CA-074 Me (카텝신 B 억제제) 1 nM 19.73±2.31#
5 nM 34.26±2.30#
25 nM 44.45±1.43#
펩스타틴 A (카텝신 D 억제제) 1 μM 3.42±0.42
5 μM 4.04±0.33
25 μM 5.54±0.77
오다나카팁 (카텝신 K 억제제) 0.04 μM 14.9±4.14
0.2 μM 19.95±3.77#
1 μM 22.33±3.70#
Z-FF-FMK (카텝신 L 억제제) 0.04 μM 3.42±2.08
0.2 μM 6.97±2.35
1 μM 10.16±2.16#
Z-FL-COCHO (카텝신 S 억제제) 0.4 nM 34.36±3.00#
2 nM 44.67±2.61#
10 nM 50.12±2.76#
* 억제제에 의해 감소된 세포 수의 백분율 ± 표준오차
# 5% FBS와 비교하여 t-test, p<0.05
<실험예 8> 아미도피리딘올 유도체에 의한 MBA-MB-231 세포 침윤 억제 효과 검토
앞선 실험예 7과 동일한 방법으로 실시예에서 합성된 아미도피리딘올 유도체들의 유방암세포 MDA-MB-231의 침윤 억제 효과를 검토하였다. 이때, 비교를 위하여, 아미노피리딘올 유도체인 6-아미노-2,4,5-트리메틸피리딘-3-올(BJ-1101)과 6-다이페닐아미노-2,4,5-트리메틸피리딘-3-올(BJ-1201)에 대한 유방암세포 MDA-MB-231의 침윤 억제 효과를 함께 검토하였다.
[BJ-1101]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000005
[BJ-1201]
Figure PCTKR2014003450-appb-I000006
그 결과, 다음 표 5와 같이 아미노피리딘올 유도체인 BJ-1101과 BJ-1201은 유방암세포 MDA-MB-231에 대한 침윤 억제 효과가 없는 반면, 화합물 8l과 8q는 MDA-MB-231에 대한 침윤 억제 효과를 나타내었다.
표 5
화합물 농도 (μM) 침윤 억제율 (%)*
BJ-1101 0.01 0.45±15.60
0.1 0±17.25
1 0.30±31.76
10 1.73±22.66
BJ-1201 0.01 2.52±18.74
0.1 0±19.27
1 1.78±22.05
10 1.96±6.78
8l 0.01 8.57±21.48
0.1 11.04±23.06
1 33.04±4.366#
10 49.64±7.82#
8q 0.01 47.59±18.08#
0.1 58.96±10.42#
1 65.77±5.03#
10 67.83±4.25#
* 화합물에 의해 감소된 세포 수의 백분율 ± 표준편차
# 5% FBS와 비교하여 t-test, p<0.05
<실험예 9> 아미도피리딘올 유도체에 의한 카텝신 S 발현 억제 효과 검토
실시예에서 합성된 아미도피리딘올 유도체들을 MDA-MB-231 세포에 처리하였을 때 카텝신 S 유전자 발현에 미치는 영향을 검토하기 위하여 다음과 같이 RT-PCR을 수행하였다.
유방암세포 MDA-MB-231 (1x105 cell/cm2)에 각 화합물을 각각 처리하여 37℃ 세포 배양기에서 24시간동안 배양 후 트리졸 시약을 사용하여 전체 mRNA를 추출하였다. 24시간 후 배양액을 제거하고 트리졸 시약 1 mL을 각 웰에 첨가 후 세포 용출물을 1.5 mL 튜브로 옮겼다. 각 샘플에 클로로포름 200 ㎕를 첨가하여 4℃, 12,000 g에서 15분간 원심분리한 후 상층액 500 ㎕를 새 튜브로 옮겼다. 각 샘플에 이소프로필알코올 500 ㎕를 첨가 후 4℃, 12,000 g에서 15분간 원심분리 하였다. 각 샘플의 상등액을 제거하고 75% 에탄올로 mRNA를 헹군 후 침전을 말렸다. 그리고 추출한 mRNA는 RNase가 없는 물로 녹인 후 55℃에서 10분간 가열하였다.
RNA 정량 후, GoScriptTM 역전사반응계(Promega Corporation, Madison, WI, USA)를 사용하여 cDNA를 합성하였다. PCR은 TaKaRa TaqTM (Takara bio Inc., Shiga, Japan)을 사용하여 실시하였으며, 카텝신 S 프라이머는 서열번호 1(정방향 서열: 5'-GCA GTG GCA CAG TTG CAT AA-3')의 정방향 프라이머와 서열번호 2(역방향 서열: 5'-AGC ACC ACA AGA ACC CAT GT-3')의 역방향 프라이머 세트를 사용하였다. PCR 산물을 아가로스 겔에서 전기영동한 후 에티듐 브로마이드(0.5 μg/ml)로 염색하여 겔 이미징 시스템(UVP, Cambridge, UK)을 사용하여 사진을 얻었다. 이때, 글리세르알데히드 3-포스페이트 디하이드로게나아제(Glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase; GAPDH)를 기준으로 정량하였다. GAPDH 프라이머는 서열번호 3(정방향 서열: 5'-GGT GAA GGT CGG AGT CAA CG-3')의 정방향 프라이머와 서열번호 4(역방향 서열: 5'-CAA AGT TGT CAT GGA TGA CC-3')의 역방향 프라이머 세트를 사용하였다.
그 결과, 다음 표 6과 같이 MDA-MB-231 세포 침윤 억제 효과가 없었던 BJ-1101과 BJ-1201 모두 카텝신 S 유전자 발현 감소 효과가 없음을 확인하였다. 또한, 세포 침윤 억제 효과가 가장 큰 화합물 8q는 카텝신 S 유전자 발현 감소 효과 또한 가장 큼을 확인할 수 있었다. 따라서, MDA-MB-231 세포의 침윤 억제 효과와 카텝신 S 유전자의 발현 억제 효과는 매우 높은 상관성이 있음을 확인하였다.
표 6
화합물 농도 (μM) 카텝신 S 발현 억제율 (%)*
BJ-1101 1 3.3±0.82
BJ-1201 1 2.7±0.12
8l 1 0±0.17
10 12±0.35
8q 0.01 42±1.21
0.1 52±1.68
1 57±1.55
* 화합물을 처리하지 않은 PCR 밴드 (대조군)를 기준으로 화합물에 의해 감소한 백분율 ± 표준편차
<실험예 10> 유방암세포 MDA-MB-231에서 cathepsin S 발현을 억제하는 화합물 스크리닝
앞선 실험예를 통하여 유방암세포 MDA-MB-231의 침윤 작용에 카텝신 S가 중요하게 작용함을 확인하였는 바, 유방암세포의 전이를 억제하는 다른 아미도피리딘올 유도체를 스크리닝 하기 위하여 각 화합물 1 μM 처리 시의 카텝신 S 유전자 발현 억제 효과를 실험예 9와 동일한 방법으로 검토하였다.
그 결과, 다음 표 7과 같이 카텝신 S 유전자 발현 억제율이 50%를 넘는 화합물은 화합물 8a, 8b 및 8g로 나타났으며, 이러한 화합물들은 전이성 유방암세포의 침윤과 전이를 억제할 수 있는 우수한 화합물로서 확인되었다.
표 7
화합물 카텝신 S 발현 억제율 (%)*
8a 56±0.21
8b 55±0.35
8c 27±1.33
8d 33±1.23
8f 16.4±0.12
8g 60.4±3.55
8n 8±0.41
8p 44±2.47
8r 3.9±0.22
8s 4.2±0.31
8t 8.2±0.43
8u 2.9±0.08
* 화합물을 처리하지 않은 PCR 밴드 (대조군)를 기준으로 화합물에 의해 감소한 백분율 ± 표준편차
<실험예 11> 독성실험
웅성 Balb/c 마우스에 화합물 8a를 0.5% 메틸셀룰로즈 용액에 각각 현탁하여 0.5g/kg, 1g/kg 및 2g/kg의 용량으로 1회 단회 경구투여하고 7일간 마우스의 생존율 및 체중을 조사하였다.
이러한 투여 후 동물의 폐사여부, 임상증상, 체중변화를 관찰하고 혈액학적 검사와 혈액생화학적 검사를 실시하였으며, 부검하여 육안으로 복강장기와 흉강장기의 이상여부를 관찰하였다.
그 결과, 모든 동물에서 특기할 만한 임상증상이나 폐사된 동물은 없었으며, 체중변화, 혈액검사, 혈액생화학 검사, 부검소견 등에서도 독성변화는 관찰되지 않았다.
이상의 결과, 본 발명의 화합물들은 마우스에서 2g/㎏까지 독성변화를 나타내지 않으며, 따라서, 경구 투여 중간치사량(LD50)은 2g/kg 이상인 안전한 물질로 판단되었다.
하기에 본 발명에 따른 화합물 8a를 포함하는 조성물의 제제예를 설명하나, 본 발명은 이를 한정하고자 함이 아닌 단지 구체적으로 설명하고자 함이다.
<제제예 1> 산제의 제조
화합물 8a 20 mg, 유당 100 mg 및 탈크 10 mg을 혼합하고 기밀포에 충진하여 산제를 제조하였다.
<제제예 2> 정제의 제조
화합물 8a 20 mg, 옥수수전분 100 mg, 유당 100 mg 및 스테아린산 마그네슘 2 mg을 혼합한 후 통상의 정제의 제조방법에 따라서 타정하여 정제를 제조하였다.
<제제예 3> 캅셀제의 제조
화합물 8a 10 mg, 옥수수전분 100 mg, 유당 100 mg 및 스테아린산 마그네슘 2mg을 혼합한 후 통상의 캡슐제 제조방법에 따라 상기의 성분을 혼합하고 젤라틴 캡슐에 충전하여 캡슐제를 제조하였다.
<제제예 4> 주사제의 제조
화합물 8a 10 mg, 주사용 멸균 증류수 적량 및 pH 조절제 적량을 혼합한 후 통상의 주사제의 제조방법에 따라 1 앰플당(2㎖) 상기의 성분 함량으로 제조하였다.
<제제예 5> 연고제의 제조
화합물 8a 10mg, PEG-4000 250mg, PEG-400 650mg, 백색바셀린 10mg, 파라옥시안식향산메칠 1.44mg, 파라옥시안식향산프로필 0.18mg 및 잔량의 정제수를 혼합한 후 통상의 연고제의 제조방법에 따라서 연고제를 제조하였다.
이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시예일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (15)

  1. 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2014003450-appb-I000007
    상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나임.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 아미도피리딘올 유도체는 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 수소, (C1 내지 C4)알킬 또는 (C1 내지 C4)알콕시 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐 또는 (C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C4)알콕시 또는 (C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 페닐; 페닐 또는 할로페닐로 치환된 (C1 내지 C4)알킬; 신나밀; 페녹시메틸; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 벤조다이옥솔; 나프탈렌; 및 티오펜으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 아미도피리딘올 유도체는 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체 또는 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염.
  4. 청구항 3에 있어서, 상기 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체는 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-에틸부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드, 3-벤질옥시-N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-(4-클로로페닐)아세트아마이드, N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,2-디클로로아세트아마이드 및 N-(5-벤질옥시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염.
  5. 청구항 3에 있어서, 상기 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아마이드 유도체는 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)도데칸아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-클로로부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아이소부티릴아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-메틸부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)피발아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로펜탄카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)사이클로헥산카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3-페닐프로판아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-플루오로벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-메톡시벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-4-(tert-부틸)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤조[d][1,3]다이옥솔-5-카르복사마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-1-나프타아마이드 및 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)티오펜-2-카르복사마이드, 2-에틸-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페녹시아세트아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2-페닐부탄아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-2,4,6-트라이메틸벤즈아마이드, 3-하이드록시-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)벤즈아마이드, N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)-3,5,5-트라이메틸헥산아마이드, 2-(4-클로로페닐)-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드, 2,2-디클로로-N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)아세트아마이드 및 N-(5-하이드록시-3,4,6-트라이메틸피리딘-2-일)신나마이드로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염.
  6. 청구항 1에 있어서, 상기 약제학적 허용가능한 염은 옥살산, 말레산, 푸마르산, 말산, 타르타르산, 시트르산 및 벤조산으로 이루어진 군에서 선택된 유기산이거나, 또는 염산, 황산, 인산 및 브롬화수소산으로 이루어진 군에서 선택된 무기산에 의해 형성되는 산부가염의 형태인 것을 특징으로 하는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염.
  7. 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약학조성물:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2014003450-appb-I000008
    상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고; R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고; R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬, 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 C1 내지 C4)알킬로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴, (C6 내지 C14)아릴옥시가 치환되거나 치환되지 않는 알케닐, (C3 내지 C8)사이클로알킬, (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나임.
  8. 청구항 7에 있어서, 상기 혈관신생으로 인한 질환은 황반 변성, 당뇨성 망막병증, 증식성 유리체 망막병증, 미성숙 망막병증, 녹내장, 퇴화반, 익상편, 후수정체 섬유 증식증, 과립성 결막염, 각막이식 거부, 각막궤양, 원추 각막 및 안과 염증으로 이루어진 군에서 선택된 안과질환인 것을 특징으로 하는 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약학조성물.
  9. 청구항 7에 있어서, 상기 혈관신생으로 인한 질환은 류마티스성 관절염, 골관절염, 패혈증성 관절염, 건선, 쇼그렌 증후군, 이상 창상 유합, 골질환, 단백뇨증, 복대동맥류 질환, 외상성 관절 손상에 따른 퇴행성 연골손실, 신경계의 수초탈락 질환, 간경변, 신사구체 질환, 배태막의 미성숙 파열, 치근막 질환, 동맥경화증, 재협착증, 중추신경계의 염증질환, 알츠하이머 질환 및 피부노화로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 혈관신생으로 인한 질환의 예방 또는 치료용 약학조성물.
  10. 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 염증성 장질환 예방 또는 치료용 약학조성물:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2014003450-appb-I000009
    상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나임.
  11. 청구항 10에 있어서, 상기 염증성 장질환은 궤양성 대장염, 크론병(Crohn's disease), 장관형 베체트병, 출혈성 직장 궤양 및 회장낭염(pouchitis)으로 이루어진 군에서 선택된 것을 특징으로 하는 염증성 장질환의 예방 또는 치료용 약학조성물.
  12. 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암질환 예방 또는 치료용 약학조성물:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2014003450-appb-I000010
    상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나임.
  13. 청구항 12에 있어서, 상기 암은 폐암, 유방암, 방광암, 뼈암, 갑상선암, 부갑상선암, 직장암, 인후암, 후두암, 식도암, 췌장암, 대장암, 위암, 설암, 피부암, 뇌종양, 자궁암, 두부 또는 경부암, 담낭암, 구강암, 결장암, 항문 부근암, 중추신경계 종양, 간암 및 대장암으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 암질환 예방 또는 치료용 약학조성물.
  14. 하기 화학식 1로 표시되는 아미도피리딘올 유도체 또는 이의 약제학적 허용가능한 염을 유효성분으로 함유하는 암 침윤 또는 암 전이 예방 또는 억제용 약학조성물:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2014003450-appb-I000011
    상기 화학식 1에서, R1, R2 및 R4는 각각 같거나 다르며, 수소, (C1 내지 C4)알킬, (C1 내지 C4)알콕시 또는 할로겐 중에서 선택된 어느 하나이고, R3는 (C1 내지 C4)알콕시, 벤질옥시 또는 하이드록시 중에서 선택된 어느 하나이고, R5는 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, 페녹시, (C1 내지 C12)알킬아미노, (C6 내지 C14)아릴 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C1 내지 C15)알킬; 할로겐, 하이드록시, (C1 내지 C12)알콕시, (C1 내지 C12)알킬아미노 또는 (C1 내지 C4)알킬에서 선택된 하나 또는 둘 이상으로 치환되거나 치환되지 않은 (C6 내지 C14)아릴; (C6 내지 C14)아릴로 치환되거나 치환되지 않는 (C2 내지 C12)알케닐; (C3 내지 C8)사이클로알킬; 및 (C3 내지 C14)헤테로고리 화합물로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나임.
  15. 청구항 14에 있어서, 상기 암은 폐암, 유방암, 방광암, 뼈암, 갑상선암, 부갑상선암, 직장암, 인후암, 후두암, 식도암, 췌장암, 대장암, 위암, 설암, 피부암, 뇌종양, 자궁암, 두부 또는 경부암, 담낭암, 구강암, 결장암, 항문 부근암, 중추신경계 종양, 간암 및 대장암으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 암 침윤 또는 암 전이 예방 또는 억제용 약학조성물.
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