WO2015119035A1 - マスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸の検出、定量方法及びそのデバイス - Google Patents

マスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸の検出、定量方法及びそのデバイス Download PDF

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WO2015119035A1
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nucleic acid
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target nucleic
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杉本　典彦
江田　宗司
昌博 朝倉
安部　加奈子
上原　啓嗣
数正 亀井
良彦 上坂
奥　裕一
裕亮 柴原
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扶桑薬品工業株式会社
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    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
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    • C12Q1/6832—Enhancement of hybridisation reaction
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q2565/10—Detection mode being characterised by the assay principle
    • C12Q2565/133—Detection mode being characterised by the assay principle conformational analysis
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q2565/00—Nucleic acid analysis characterised by mode or means of detection
    • C12Q2565/10—Detection mode being characterised by the assay principle
    • C12Q2565/137—Chromatographic separation

Definitions

  • the present invention relates to nucleic acids derived from various organisms including viruses, bacteria and microorganisms (for example, natural nucleic acids, genomic DNA, cDNA, RNA, nucleic acids amplified by polymerase chain reaction (PCR), etc.)
  • the present invention relates to a simple and highly sensitive method for detection and quantification, and a device and kit used for carrying out the method.
  • Mammals such as humans, host organisms, plants, foods and beverages, etc., the presence or degree of infection by bacteria and viruses, various diseases (infectious diseases) suspected of being infected by viruses or bacteria, or gene mutations
  • the genetic test method has been used as a very useful method in terms of its specificity and high sensitivity. Yes.
  • This genetic testing method can be roughly divided into a method using nucleic acid hybridization and a method using nucleic acid polymerase chain reaction (PCR).
  • PCR nucleic acid polymerase chain reaction
  • the method using nucleic acid hybridization when the target nucleic acid to be detected is a double strand, the double-stranded nucleic acid is denatured into a single strand and then labeled with a detectable label.
  • a complementary oligonucleotide probe is hybridized to a part of a certain single-stranded nucleic acid, and the target nucleic acid is detected using the label as an index.
  • the double-stranded nucleic acid is denatured by heat to form a single strand, or a single-stranded region is generated, and then the single-stranded nucleic acid A pair of complementary oligonucleotide primers is bound to a part, and the process of replicating the nucleic acid using DNA polymerase is repeated many times to amplify the target nucleic acid many times, and the amplified nucleic acid (PCR product)
  • the target nucleic acid is detected using as an index the presence or absence of the appearance of a band having a size predicted in advance by electrophoresis.
  • nucleic acid to be detected when the nucleic acid to be detected is double-stranded, it is necessary to denature the double-stranded nucleic acid into a single strand or generate a single-stranded region.
  • nucleic acid to be detected is already a single-stranded nucleic acid, such as when the nucleic acid to be detected is a single-stranded nucleic acid such as rRNA or already denatured DNA, it is necessary to make it a single strand in advance for detection by the above method .
  • a single-stranded nucleic acid such as rRNA has a secondary structure such as an intramolecular loop formed by self-association by hydrogen bonding between complementary nucleotide sequences present in the molecule. This is because in order to bind, it is necessary to obtain a single-stranded nucleic acid from which secondary structures such as intramolecular loops have been removed by denaturation.
  • the target nucleic acid When the target nucleic acid is single-stranded or a single-stranded region is generated, denaturation by alkali or heat is often performed. However, in any method, when the denaturation conditions are relaxed (neutralized), the target nucleic acid is It immediately returns to the double strand. Therefore, in order to hybridize the oligonucleotide probe to the single-stranded target nucleic acid, the intermolecular binding force such as hydrogen bonding is weakened to make it difficult to associate with the double strand, and to keep the target nucleic acid in a single-stranded state. It is necessary to maintain a high temperature state, adjust the salt concentration and pH, or add a denaturing agent such as chaotropic ion or formamide.
  • a denaturing agent such as chaotropic ion or formamide.
  • double-stranded nucleic acid reconstituted under denaturing conditions or from the state of single-stranded nucleic acid includes two molecules such as an intramolecular loop formed by hydrogen bonding between complementary nucleotide sequences present in the molecule. Some have the following structure, and some have incomplete double strands formed.
  • the above-mentioned rRNA and the like form a tertiary structure resulting from the same kind of attractive force as the double strand of DNA takes a helical structure.
  • a helper oligonucleotide is bound to a region adjacent to or separated from the region to which the oligonucleotide probe binds to the target rRNA, and the oligonucleotide
  • the region to which the probe binds is blocked, formation of a higher-order structure as described above that acts to suppress the binding of the oligonucleotide probe to rRNA, non-specificity of the oligonucleotide probe to the target rRNA Reported that the binding is reduced and the specific binding of the oligonucleotide probe to the target rRNA is increased, and as a result, the effect of detecting the target rRNA with the fluorescence emitted by the fluorescently labeled oligonucleotide probe as an index is increased.
  • nucleic acid amplification itself using a PCR instrument is not particularly complicated, and the time required for nucleic acid amplification is about 4 hours, which is relatively short. Is possible.
  • agarose electrophoresis is performed, followed by steps such as fluorescent staining and decoloring with EtBr, and a special device such as a UV transilluminator is used.
  • a complicated processing step of detecting the nucleic acid and measuring its molecular weight is required.
  • a non-specific PCR product having a molecular weight close to the molecular weight of the target PCR product may be detected, causing false positives.
  • the target nucleic acid to be detected is a wild-type nucleic acid
  • the nucleic acid mutation such as insertion or deletion of a base
  • PCR products with different molecular weights are detected, and PCR products that should be recognized as positive are recognized as PCR products by non-specific amplification, thereby causing false negatives.
  • lateral flow type immunochromatography which utilizes antigen-antibody reactions used for detection and identification of antigens and proteins, for detection and identification of nucleic acids.
  • a labeled antibody (capture antibody) for capturing an antigen is placed at one end of a string-like membrane (membrane strip) made of nitrocellulose or the like, and a sample containing the antigen is added thereto.
  • the principle is that the antigen-capture antibody complex developed in the membrane strip is bound to the detection antibody (detection antibody) fixed to the other end of the membrane, and the antigen is detected using the label as an indicator.
  • Patent Literature 2, Patent Literature 3 some variations are known.
  • oligonucleotide primers designed to hybridize to the target nucleic acid sequence and its complementary strand, each labeled with a different label (eg, biotin, fluorescent dye, digoxigenin, etc.).
  • the oligonucleotide primer is labeled with one of the reactive component pairs (for example, biotin) and the other oligonucleotide primer is labeled with a detectable substance (for example, a fluorescent dye).
  • PCR is performed using the pair of oligonucleotide primers to amplify the target nucleic acid to obtain a double-stranded DNA (target amplified nucleic acid) having the two different labels;
  • One end of the reactive component pair The amplified in a membrane strip with the other (eg avidin)
  • This is a method of developing a target nucleic acid and detecting the target amplified nucleic acid captured by a reactive component (eg, avidin) using the other label (eg, fluorescent dye) of the target nucleic acid as an index (Patent Document 4) .
  • Another approach is to detect a double-stranded nucleic acid.
  • the nucleic acid to be detected is subjected to PCR, and by devising a PCR primer, a double-stranded nucleic acid having a single-stranded overhang at each end is used.
  • a target nucleic acid is prepared, and a labeled oligonucleotide for capturing the target double-stranded nucleic acid via the nucleic acid at the end overhang is disposed at one end of the membrane strip, and the target double-stranded nucleic acid is added thereto,
  • the conjugate of the labeled oligonucleotide and target double-stranded nucleic acid developed in the membrane strip is bound to the detection oligonucleotide fixed at the other end of the membrane via the nucleic acid at the end overhang.
  • double-stranded nucleic acid is detected using a label as an index (Patent Document 5).
  • Yet another attempt is a method of detecting amplified RNA, preparing the amplified RNA, placing a labeled oligonucleotide on one end of the membrane strip to capture the target RNA, and placing the target RNA there
  • the conjugate of the labeled oligonucleotide and target RNA developed in the membrane strip is bound to the detection oligonucleotide immobilized on the other end of the membrane, and the labeled RNA is detected using the label as an indicator.
  • detection should be performed in the presence or absence of infection by bacteria and viruses in mammals including humans, host organisms, plants, foods and beverages, and in the detection of infection by viruses and bacteria, or gene mutations.
  • genetic testing methods using hybridization using oligonucleotide probes complementary to a part of the target nucleic acid and PCR using oligonucleotide primers are useful, the target nucleic acid is stable during the assay.
  • no method has yet been provided that can detect and quantify a target nucleic acid simply and with high sensitivity while maintaining a single-stranded state or a state having a single-stranded region without complicated operations.
  • Pandemic Concerns, Food Safety Needs, and Disease Cause Identification, Disease Treatment and Treatment Methods Capable of meeting the needs for the development, such detection, the development of new methods that enable quantitative, it is desired to provide.
  • the present invention relates to nucleic acids derived from various organisms including viruses, bacteria, microorganisms and genetically modified plants (for example, natural nucleic acids, genomic DNA, cDNA, RNA, nucleic acids amplified by PCR, etc.) It is an object to provide a simple and highly sensitive detection and quantification method, and a device and kit used for carrying out the method, thereby satisfying such social needs.
  • a mask oligonucleotide (an oligonucleotide M1 ′, oligonucleotide M2 ′,... Described later) is located in a region located across the region to which the oligonucleotide probe hybridizes.
  • the oligonucleotide MX ′ is hybridized to open the region to which the probe hybridizes and to keep the target nucleic acid stably in a single-stranded state or a single-stranded region. Then, the target nucleic acid having such a single-stranded region is developed on the membrane, and the oligonucleotide
  • the target nucleic acid captured by the lobe and having or generated by the captured target nucleic acid (in the present invention, a nucleic acid hybrid formed by hybridizing the target nucleic acid with one or more other oligonucleotides) is used as an indicator.
  • nucleic acid chromatography chromatography
  • immunoassay for detecting and quantifying the target nucleic acid.
  • a method for detecting or quantifying one or more different target nucleic acids contained in a sample by chromatography including the following: (A) One of the target nucleic acids N including the region R1, the regions M1 and M2 that are located across the region R1, the region R2 that is different from the region R1, and the regions M3 and M4 that are located across the region R2, respectively.
  • the hybridization in (a) includes any of the following: (I) at least one hybridization of oligonucleotide M1 ′ and oligonucleotide M2 ′ to at least one region of region M1 and region M2, respectively; (Ii) at least one hybridization of oligonucleotide M3 ′ and oligonucleotide M4 ′ to at least one region of region M3 and region M4, respectively; (Iii) at least one hybridization of oligonucleotide M1 ′ and oligonucleotide M2 ′ to at least one region of regions M1 and M2, respectively, and oligonucleotide M3 ′ to at least one region of regions M3 and M4, respectively.
  • chromatography comprises at least one detection zone for capturing, detecting or quantifying the nucleic acid hybrid formed via (a) and (b) or (a) to (c), The method according to embodiment 1 or 2, wherein the method is performed based on capillary action in the deployment element.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone, and A method according to aspect 3, wherein the following mixture is applied to a portion of the deployment element: (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) An oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, and A method according to aspect 3, wherein the following mixture is applied to a portion of the deployment element: (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1; and (Iv) An oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end.
  • a method according to embodiment 1 or 2, wherein the chromatography is performed on the basis of capillarity in the developing element using a device comprising: (I) a deployment element comprising at least one detection zone for capturing, detecting or quantifying the nucleic acid hybrid formed via (a) and (b) or (a) to (c); (Ii) An application zone for applying a sample containing at least the target nucleic acid N provided in contact with the development element.
  • the device further comprises: (Iii) an encapsulation zone for encapsulating a desired oligonucleotide provided in contact with both the application zone and the deployment element; The method of aspect 6, comprising.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone; In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, Is enclosed, and The method according to embodiment 6 or 7, wherein a sample containing the target nucleic acid N is applied to the application zone.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone; An oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1 is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone; At least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′ is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1; and (Iii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, Is enclosed, and The method according to embodiment 6 or 7, wherein a sample containing the target nucleic acid N is applied to the application zone.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1; and (Ii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, Is enclosed, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, An oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Ii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, Is enclosed, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1 A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, At least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′ is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1; and (Iii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Ii) oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1 Is enclosed, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, An oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1 is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′, the oligonucleotide M2 ′, the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; (Iii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, and (Iv) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, A method according to embodiment 6 or 7, wherein a mixture with is applied.
  • Aspect 20 Aspects 1 to 3, 5 to 7, and 12 to 12 in which the anchor A is an oligonucleotide, biotin, antibody, protein, or sugar chain, and the acceptor A ′ is an oligonucleotide, avidin, streptavidin, antibody, or protein. 20. The method according to any one of 19.
  • Embodiment 21 Embodiment 21. The method of embodiment 20, wherein the anchor A is biotin and the acceptor A ′ is avidin or streptavidin.
  • the acceptor A ′ is an antibody.
  • the development element is (i) two or more of which each of the oligonucleotides R2 ′ hybridizing to each target nucleic acid N is immobilized Detection zone, or (ii) two or more detections in which different acceptors A ′ capable of binding to oligonucleotides R2 ′ each having a different anchor A hybridizing to each target nucleic acid N are immobilized 23.
  • the device further comprises an absorption zone for absorbing the sample developed beyond the detection zone, provided in contact with the deployment element.
  • [Aspect 25] 25 The method according to any one of embodiments 1 to 24, wherein the label L1 is metal colloid particles, latex particles, colored liposomes, or an enzyme.
  • the metal colloid particles are gold colloid particles, platinum colloid particles, platinum-gold colloid particles, palladium particles, silver colloid particles, rhodium colloid particles, ruthenium colloid particles or iridium colloid particles.
  • the enzyme is peroxidase, glucose oxidase, alkaline phosphatase or ⁇ -galactosidase.
  • a method for detecting or quantifying one or more different target nucleic acids contained in a sample by chromatography including the following: (A) To at least one of the region R1 and the region M1 and the region M2 in the single-stranded region of the target nucleic acid N that includes the region R1 and the region M1 and the region M2 that are located across the region R1 and that is labeled with the label L2, At least one hybridization of oligonucleotide M1 ′ and oligonucleotide M2 ′ comprising a complementary base sequence in each region; (B) hybridization of region R1 with an oligonucleotide R1 ′ labeled with a label L1 and comprising a base sequence complementary to the region; and (C) Capture of the nucleic acid hybrid formed through (a) and (b) via binding between
  • a substance that binds to the label L2 is immobilized in the detection zone, and A method according to embodiment 31, wherein the following mixture is applied to a portion of the deployment element: (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′; and (Iii) An oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1.
  • a method according to aspect 29 or 30, wherein the chromatography is performed on the basis of capillary action in a deployment element using a device comprising: (I) a deployment element comprising at least one detection zone for capturing, detecting or quantifying the nucleic acid hybrid formed via said (a) and (b); and (Ii) An application zone for applying a sample containing at least the target nucleic acid N provided in contact with the development element.
  • the device further comprises: (Iii) an encapsulation zone for encapsulating a desired oligonucleotide provided in contact with both the application zone and the deployment element; 34.
  • a substance that binds to the label L2 is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′; and (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, Is enclosed, and
  • a substance that binds to the label L2 is immobilized in the detection zone, An oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1 is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′; 35.
  • a substance that binds to the label L2 is immobilized in the detection zone, At least one of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′ is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, 35.
  • a substance that binds to the label L2 is immobilized in the detection zone, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′; and (Iii) an oligonucleotide R1 ′ labeled with the label L1, 35.
  • each target nucleic acid N is labeled with a different label L2, and the developing element has different substances that bind to the respective labels L2. 39.
  • a method for detecting or quantifying one or more different types of target nucleic acids contained in a sample including: (A) For at least one of the region R2 and the region M3 and the region M4 in the single-stranded region of the target nucleic acid N labeled with the label L2, each of which includes the region M3 and the region M4 that are located across the region R2.
  • the detection or quantification is (A) Chromatography utilizing capillarity in the developing element in a developing element comprising at least one detection zone for capturing, detecting or quantifying the nucleic acid hybrid formed via (a) and (b) Or (B) (i) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; and (Iii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, Is applied to a solid support having a volume on which an acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized, and is captured via the binding between the anchor A and the acceptor A ′.
  • the device further comprises: (Iii) an encapsulation zone for encapsulating a desired oligonucleotide provided in contact with both the application zone and the deployment element; 45.
  • the method of aspect 44 comprising: [Aspect 46] The oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone; At least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′ is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and 46.
  • the oligonucleotide R2 ′ is immobilized in the detection zone, and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) at least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; 46.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the application zone or the encapsulation zone, (I) at least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; and (Ii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, Is enclosed, and 46.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, An oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) at least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; 46.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, At least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′ is encapsulated in the application zone or the encapsulation zone; and In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; and (Ii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, 46.
  • An acceptor A ′ capable of binding to the anchor A is immobilized in the detection zone, In the applicable zone, (I) a sample containing the target nucleic acid N; (Ii) at least one of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′; and (Iii) an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end, 46.
  • each target nucleic acid N is labeled with the same label L2, and each development element is a different anchor that hybridizes to each target nucleic acid N.
  • Aspect 53 52.
  • [Aspect 58] 40 The method according to any of aspects 29 to 39, wherein label L1 is metal colloid particles, latex particles, colored liposomes or enzymes.
  • label L1 is metal colloid particles, latex particles, colored liposomes or enzymes.
  • the metal colloid particles are gold colloid particles, platinum colloid particles, platinum-gold colloid particles, palladium particles, silver colloid particles, rhodium colloid particles, ruthenium colloid particles or iridium colloid particles.
  • the enzyme is peroxidase, glucose oxidase, alkaline phosphatase or ⁇ -galactosidase.
  • Aspect 61 61.
  • the single-stranded region of the target nucleic acid N is a single-stranded region generated by denaturing a double-stranded nucleic acid.
  • the target nucleic acid N is DNA or RNA.
  • the target nucleic acid N is a nucleic acid derived from the genome of a eukaryote, a prokaryote, a bacterium, or a virus, a nucleic acid derived from a genomic fragment generated by cleaving the genome with a restriction enzyme, or an artificially amplified nucleic acid 64.
  • nucleic acid derived from the bacterial genome is any of the following: 1) A region from 2653499 to 2662118, a region from 2656232 to 2657658, or a part of a region from 2656470 to 2656799 in the genomic DNA of Staphylococcus aureus (hereinafter referred to as SA) identified by GenBank Accession No. FR714927 or S.
  • SA Staphylococcus aureus
  • aureus genomic nucleic acid containing the entire nucleic acid sequence; 2) A part of the region 387431 to 393399, the region 385337 to 388504 or the part of the region 385517 to 385796 in the genomic DNA of Staphylococcus epidermidis (hereinafter referred to as SE) identified by GenBank Accession No. AE015929 or S.
  • SE Staphylococcus epidermidis
  • epidermidis genomic nucleic acid comprising the entire nucleic acid sequence; 3) The 2386558 to 2391818th region, the 2386678 to 2388735th region, or a part of the 2387395 to 2387664th region in the genomic DNA of Pseudomonas aeruginosa (hereinafter referred to as PA) identified by GenBank Accession No.
  • PA Pseudomonas aeruginosa
  • HF558530 Enterococcal genomic nucleic acid comprising the nucleic acid sequence of 5) Part or all of the region 168884-1291840, region 1290625-1291839 or region 1129152-12931460 in the genomic DNA of Escherichia coli (hereinafter referred to as EC) identified by GenBank Accession No. AP012306 E. coli genomic nucleic acid containing a nucleic acid sequence; 6) Genobic nucleic acid of Enterobacter cloacae containing a part or all of the nucleic acid sequence of the 1566239-1568859 region or the 1567632-1566956 region in the genomic DNA of Enterobacter cloacae identified by GenBank Accession No.
  • a device for use in a method according to any of aspects 24 to 28 and 57 to 66 comprising: (I) a deployment element comprising at least one detection zone for capturing, detecting or quantifying the formed nucleic acid hybrid; (Ii) an application zone for applying a sample containing at least the target nucleic acid N provided in contact with the development element; (Iii) an encapsulation zone for encapsulating a desired oligonucleotide provided in contact with both the application zone and the deployment element; and (Iv) an absorption zone for absorbing the sample developed beyond the detection zone provided in contact with the deployment element; [Aspect 68] 68.
  • the mask oligonucleotide of the present invention (“oligonucleotide M1 ′”, “oligonucleotide M2 ′”, “oligonucleotide M3 ′”, “oligonucleotide M4 ′”,.
  • the target nucleic acid is stably kept in a single-stranded state or a state in which a single-stranded region is retained throughout the assay. 3) As a result, the rate of hybridization of the oligonucleotide probe to the target nucleic acid is increased. 4) When the mask oligonucleotide is not used, the mask oligonucleotide is used for the target nucleic acid in which the oligonucleotide probe does not hybridize to the target nucleic acid, and the nucleic acid chromatography or immunoassay of the present invention is applied to the target nucleic acid. The target nucleic acid can be detected.
  • denaturing conditions high temperature, salt concentration, chaotropic ions, formamide, etc.
  • Proteins and enzymes are easily inactivated under non-physiological conditions such as the presence of denaturing agents), and labeling substances used in genetic testing using nucleic acid hybridization methods are fluorescent substances and digoxigenin.
  • denaturation conditions can be relaxed by using mask oligonucleotides, so proteins and other labeling substances that could not be used before, or DNA polymerases are used It becomes possible.
  • a method for detecting and quantifying a nucleic acid by nucleic acid chromatography or immunoassay using the mask oligonucleotide of the present invention and a device and kit for use in the method include the use of a mask oligonucleotide. It has never been reported so far by further adopting the technical feature of nucleic acid chromatography to stable single-stranded nucleic acids or single-stranded nucleic acids in which the region to which the protein binds has been opened. The target nucleic acid can be detected and quantified very easily, in a short time and with high sensitivity.
  • the method for detecting and quantifying nucleic acid by nucleic acid chromatography or immunoassay using the mask oligonucleotide of the present invention and the device and kit for use in the method have such advantageous effects, viruses, bacteria and Any nucleic acid derived from various organisms including microorganisms (for example, natural nucleic acid, genomic DNA, cDNA, RNA, nucleic acid amplified by PCR, etc.) can be detected and quantified easily and with high sensitivity. it can.
  • microorganisms for example, natural nucleic acid, genomic DNA, cDNA, RNA, nucleic acid amplified by PCR, etc.
  • the method, device and / or kit of the present invention is used, the presence or absence or degree of infection by bacteria or viruses, such as mammals including humans, host organisms, plants, food or beverages, infection by viruses or bacteria Or, the cause of various diseases suspected to be caused by gene mutation (infectious diseases, cancer, metabolic diseases, genetic diseases, etc.) and various genetic characteristics due to genetic diversity can be easily and highly accurately in a short time. It becomes possible to specify with this.
  • FIG. 1 The figure which shows typically the principle included by the nucleic acid chromatography or immunoassay using the mask oligonucleotide of this invention.
  • Fractions (1) and (2) show the principle of the method exemplarily shown in the above-mentioned modes 8 to 11 and 23 (corresponding to modes (a) to (d) shown in Table 1 described later), respectively.
  • Part (3) shows the principle of the method exemplarily shown in the above-mentioned modes 12 to 19 and 23 (corresponding to modes (e) to (l) shown in Table 1 described later), respectively.
  • FIG. (4) shows the principle of the method exemplarily shown in the above-described modes 35 to 39 (corresponding to modes (m) to (p) shown in Table 1 to be described later), respectively.
  • Partial diagrams (5) and (6) show the principle of the method exemplarily shown in the above aspects 46 and 47 (corresponding to the aspects (q) and (r) shown in Table 1 described later), respectively.
  • FIG. (7) shows the principle of the method exemplarily shown in the above-described modes 48 to 52 (corresponding to modes (s) to (v) shown in Table 1 described later), respectively.
  • corresponds to the aspect (e) thru
  • the figure which shows typically the principle of the aspect included by the aspect 11 illustrated above corresponds to the aspect (d) shown by Table 1 mentioned later).
  • the figure which shows typically the principle of the aspect included by the aspect 9 correspond to the aspect (b) shown in Table 1 described later) exemplified above.
  • the figure which shows typically the principle of the aspect included by the aspect 19 illustrated above correspond to the aspect (l) shown in Table 1 described later).
  • FIG. 1 The figure which shows typically the principle of the aspect included by the aspect 36 illustrated above (corresponding to the aspect (n) shown in Table 1 described later).
  • FIG. 39 The principle of the embodiment included in the embodiment 39 exemplified above (corresponding to embodiments (m) to (p) shown in Table 1 below when the sample contains two or more different types of target nucleic acids)
  • FIG. 52 The principle of the embodiment included in the embodiment 52 exemplified above (corresponding to embodiments (s) to (v) shown in Table 1 described later when two or more different types of target nucleic acids are contained in the sample)
  • FIG. The principle of the embodiment included in the embodiment 53 described above (corresponding to the embodiments (s) to (v) shown in Table 1 below when the sample contains two or more different target nucleic acids)
  • FIG. 1 which shows typically one exemplary aspect of the device (sheet
  • Staphylococcus aureus (abbreviated as “SA”; strain ATCC 12600), Staphylococcus aureus (abbreviated as “SE”; strain ATCC 14990), Pseudomonas aeruginosa (abbreviated as “PA”); Strain JCM5962), Enterococcus faecalis (abbreviated as “EF”; Strain JCM5803), Escherichia coli (abbreviated as “EC”; Strain JCM1649), Enterobacter cloacae (abbreviated as “ET”; Strain JCM1232)
  • M in the figure indicates a molecular weight marker, and the numerical value on the left indicates the molecular weight (bp).
  • Staphylococcus aureus (abbreviated as “SA”; strain ATCC 12600), Staphylococcus aureus (abbreviated as “SE”; strain ATCC 14990), Pseudomonas aeruginosa (abbreviated as “PA”); Strain JCM5962), Enterococcus faecalis (abbreviated as “EF”; Strain JCM5803), Escherichia coli (abbreviated as “EC”; Strain JCM1649), Enterobacter cloacae (abbreviated as “ET”; Strain JCM1232) And PCR products using the genomic DNA of Klebsiella pneumoniae (abbreviated as “KP”; strain JCM) 1662) as a template, nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of the present invention, and mask
  • Campylobacter jejuni (strain ATCC700819), Campylobacter jejuni (strain 81-176), Campylobacter coli (strain ATCC33559), Campylobacter coli (strain ATCC27374), Campylobacter fetus (strain ATCC27374), Campylobacter pytestinocal
  • the figure which shows the result of agarose gel electrophoresis detection of the PCR product by multiplex PCR using each genomic DNA of Campylobacter lari (strain ATCC43675) and Campylobacter upsaliensis (strain ATCC43956 strain) as a template.
  • Campylobacter jejuni (strain ATCC700819), Campylobacter jejuni (strain 81-176), Campylobacter coli (strain ATCC33559), Campylobacter coli (strain ATCC27374), Campylobacter fetus (strain ATCC27374), Campylobacter pytestinocal , PCR products by multiplex PCR using the genomic DNA of Campylobacter lari (strain ATCC43675), Campylobacter upsaliensis (strain ATCC43956) and Escherichia coli (strain C600) as templates, using the mask oligonucleotide of the present invention
  • the figure which shows the comparison result of the effect which mask oligonucleotide has on detection sensitivity in the nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of this invention The figure which shows the comparison result of the detection sensitivity according to the aspect of use of a mask oligonucleotide in the nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of this invention.
  • the figure which shows the comparison result of the detection sensitivity according to the use aspect of a mask oligonucleotide in the nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of this invention The figure which shows the comparison result of the detection sensitivity according to the use aspect of a mask oligonucleotide in the nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of this invention.
  • E._coli Esscherichiacoli, abbreviated as "EC”; strain JCM1649) as a template.
  • M in the figure indicates a molecular weight marker, and the numerical value on the left indicates the molecular weight (bp).
  • FIG. 1 shows the result of the detection by the agarose gel electrophoresis of the PCR product which uses the ITS area
  • Results of detection of PCR products when the PCR products using the ITS region of each genomic DNA of various genus Candida as a template are subjected to nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of the present invention.
  • the present invention is an invention as exemplarily described in the above [1] to [68], and a method for detecting and quantifying a nucleic acid by nucleic acid chromatography or immunoassay using the mask oligonucleotide in the present invention, And devices and kits for use in the method.
  • all prior art documents cited in the present specification are incorporated herein by reference.
  • the method of the present invention employs the principles (1) to (7) of the target nucleic acid capture and detection method schematically shown in FIG. 2 described above, and each aspect includes the following table: The embodiment shown as an example in 1 is included.
  • Aspects (a) to (d) shown in Table 1 correspond to Aspects 8 to 11 (and 23), respectively.
  • Aspects (e) to (l) shown in Table 1 correspond to Aspects 12 to 19 (and 23), respectively.
  • the modes (m) to (p) shown in Table 1 correspond to the modes 35 to 38 (and 39), respectively.
  • Aspects (q) and (r) shown in Table 1 correspond to the aforementioned aspects 46 and 47, respectively.
  • the modes (s) to (v) shown in Table 1 correspond to the modes 48 to 51 (and 52), respectively.
  • sample in the present invention refers to any living organism (animal, plant, microorganism, bacterium, etc.) or viral organism or a part thereof (organ, tissue, body fluid, organ or component, fetus, seed, egg, ovum or Sperm, excrement, or part thereof, etc.), processed product thereof, or “nucleic acid” (genomic DNA, cDNA, mRNA, tRNA, rRNA, etc.) described later or a fragment thereof derived from any of them Any preparation containing (solution, suspension, culture solution, culture supernatant, centrifugal supernatant, centrifugal residue, etc.) is meant.
  • the above arbitrary organisms include eukaryotes (eg, animals, plants, fungi (synonymous with fungi, eg, mold, yeast, mushrooms, etc.), algae, protists (protozoa, etc.), prokaryotes ( Bacteria, archaea, actinomycetes, cyanobacteria, etc.), microorganisms, and the like.
  • eukaryotes eg, animals, plants, fungi (synonymous with fungi, eg, mold, yeast, mushrooms, etc.), algae, protists (protozoa, etc.), prokaryotes ( Bacteria, archaea, actinomycetes, cyanobacteria, etc.), microorganisms, and the like.
  • the “animal” in the present invention includes, but is not limited to, vertebrates (for example, mammals, birds, reptiles, amphibians, fishes, jawlesss, etc.) and invertebrates.
  • the animal also includes genetically modified animals.
  • the “plant” in the present invention includes, but is not limited to, for example, a seed plant, a fern plant, a moss plant, a strept plant, a green plant, an archeplastida and a biconda.
  • the plant also includes genetically modified plants.
  • Microorganism in the present invention includes, but is not limited to, prokaryotes (eubacteria (bacteria), archaea), algae, protists, fungi, slime molds, fungi, and protozoa.
  • the microorganism also includes a genetically modified microorganism.
  • fungi examples include, but are not limited to, Candida, Aspergillus, Cryptococcus, Mucor, Pneumocystis, Trichofton, and Trichosporon.
  • protozoa examples include, but are not limited to, Cryptosporidium, Cyclospora, Kudo (Scarina), Amoeba dysentery, Sarcocystis, Leishmania, Toxoplasma, Trypanosoma, and the like.
  • the “bacteria” in the present invention includes, for example, any bacteria classified according to the International Code Nomenclature (Nomenclature of Bacteria) (for example, eubacteria such as Gram-positive bacteria and Gram-negative bacteria). Not limited.
  • the bacteria also include genetically modified bacteria.
  • bacteria examples include Staphylococcus, Streptococcus, Escherichia, Enterobacter, Hemophilis, Klebsiella, Pseudomonas, Campylobacter, Bacteroides, Serratia, Acinetobacter Genus, Mycoplasma, Mycobacterium, Clostridium, Bacillus, Proteus, Neisseria, Salmonella, Shigella, Vibrio, Eromonas, Yersinia, Listeria Genus, Cronobacter, Citrobacter, Brucella, Pasteurella, Helicobacter, Moraxella, Legionella, Treponema, Rickettsia, Chlamydia, Enterococcus, Bark Chorderia spp.
  • the “virus” in the present invention includes, but is not limited to, an arbitrary virus classified by the International Virus Classification Committee (International Taxonomy on Viruses) and variants thereof.
  • an arbitrary virus classified by the International Virus Classification Committee International Taxonomy on Viruses
  • double-stranded DNA virus single-stranded DNA virus, double-stranded RNA virus, single-stranded RNA (+ strand) virus, single-stranded RNA ( ⁇ strand) virus, single-stranded RNA (reverse transcription) virus, Or any virus classified as a double-stranded DNA (reverse transcription) virus.
  • the virus also includes genetically modified viruses.
  • viruses examples include human immunodeficiency virus, human T lymphophilic virus, cytomegalovirus, herpes virus, EB virus, influenza virus, hepatitis virus, norovirus, rotavirus, adenovirus, astrovirus, papilloma virus, RS virus. , Mumps virus, coronavirus, ruby virus, SARS virus, and the like.
  • Nucleic acid in the present invention refers to any nucleic acid (genomic DNA, cDNA, mitochondrial DNA (mtDNA), mRNA, tRNA, rRNA, short interfering (siRNA), shRNA (short hairpin RNA) prepared naturally or artificially. MiRNA (micro RNA), snRNA (small nuclear RNA), tmRNA (transfer messenger RNA, etc.) or a fragment thereof.
  • the target nucleic acid that is, the target nucleic acid N
  • the target nucleic acid N is a nucleic acid derived from a bacterium that is a prokaryote
  • a 23S, 16S, or 5S subunit in the bacterial rRNA gene may be mentioned.
  • target nucleic acid is a nucleic acid derived from a fungus that is eukaryotic, the 28S, 18S, 5.8S, or 5S subunit in the fungal rRNA gene, or an internal transcribed spacer (ITS ) Region, or intergenic spacer (IGS) region.
  • the nucleic acid may be either double-stranded or single-stranded, and when it is double-stranded, it can be made single-stranded by “denaturation” described later.
  • the nucleic acid also includes those having a secondary or tertiary structure including an intramolecular loop or the like by self-association. Such a higher order structure can be eliminated in accordance with “denaturation” described later and other conventional methods.
  • the natural nucleic acid is a nucleic acid derived from the above-mentioned organism, bacteria, virus, or the like, and nucleic acid obtained from the organism, bacteria, or virus living body or a part thereof, and an enzymatic reaction based on the obtained nucleic acid ( DNA polymerase, RNA polymerase, reverse transcriptase, etc.), but include, but are not limited to, nucleic acids that have been artificially amplified and prepared.
  • Amplification and preparation of nucleic acids by the enzymatic reaction include polymerase chain reaction (PCR), loop-mediated isothermal amplification (LAMP), transcription-mediated amplification (TMA), transcription-reverse transcription concerned reaction (TRC), and LCR. (Ligase chain reaction), SDA (standard displacement amplification), NASBA (nucleic acid sequence-based amplification) and the like (clinical medicine, Vol. 36, p. 19-24, 2007).
  • the nucleic acid artificially amplified and prepared also includes any nucleic acid prepared using a DNA / RNA synthesizer based on a base sequence designed according to the purpose.
  • nucleic acids amplified and prepared by the above-described methods such as PCR, LAMP, TMA, TRC, LCR, SDA or NASBA can be subjected to any conditions (concentration of each primer, salt concentration, reaction time, Nucleic acids amplified and prepared at reaction temperature, reaction cycle, etc.) are included.
  • concentration of each primer in the amplification of nucleic acid by PCR as an example, the concentration of forward primer and reverse primer in one pair or two or more pairs of primers (forward primer, reverse primer) used in PCR May be the same or different (non-control PCR).
  • the nucleic acids in the present invention may have any size, size and base length, for example, about 50 to about 100,000 bp, about 50 to about 50,000 bp, about 50 to about 10,000 bp, about 50 to about 5,000. bp, about 100 to about 100,000 bp, about 100 to about 50,000 bp, about 100 to about 10,000 bp, about 100 to about 5,000 bp, about 200 to about 100,000 bp, about 200 to about 50,000 bp, about 200 to about 10,000 bp About 200 to about 5,000 bp, about 300 to about 100,000 bp, about 300 to about 50,000 bp, about 300 to about 10,000 bp, about 300 to about 5,000 bp, about 400 to about 100,000 bp, about 400 to about 100,000 bp, about 400 to about 40,000 bp, About 400 to about 10,000 bp, about 400 to about 5,000 bp, about 500 to about 100,000 bp, about 500 to about 50,000 bp, about 500 to about 10,000 bp, about 500 to about
  • the nucleic acid fragments are processed by natural or artificial amplification and preparation of nucleic acids as described above with one or more of various commercially available restriction enzymes (eg, type I restriction enzymes, type II restriction enzymes, etc.). , Including nucleic acids of any size produced by cleavage.
  • restriction enzymes eg, type I restriction enzymes, type II restriction enzymes, etc.
  • Staphylococcus aureus (abbreviated as “SA”), Staphylococcus epidermidis (abbreviated as “SE”), Pseudomonas aeruginosa, “ PA ”), enterococcus faecalis (abbreviated“ EF ”), Escherichia coli (abbreviated“ EC ”), Enterobacter cloacae (abbreviated“ ET ”), and Klebsiella pneumoniae (abbreviated as “KP”), when detecting and quantifying a nucleic acid, a part or all of the following regions in the genome can be targeted.
  • SA Staphylococcus aureus
  • SE Staphylococcus epidermidis
  • PA Pseudomonas aeruginosa
  • PA enterococcus faecalis
  • EC Escherichia coli
  • ET Enterobacter cloacae
  • Klebsiella pneumoniae (abb
  • Staphylococcus aureus Genomic Accession No. FR714927 (Last entry date: November 21, 2011) Staphylococcus aureus (abbreviated as "SA") genomic DNA from 2653499 to 2621, 2nd region, 2656232 to 2657658 Part or all of the nucleic acid sequence of the second region or regions 2656470-2656799.
  • SA Staphylococcus aureus
  • SE Staphylococcus epidermidis
  • PA Pseudomonas aeruginosa
  • EF Enterococcus faecalis
  • EC Escherichia coli
  • GenBank Accession No. AP012306 (Last entry date: March 29, 2013) A part or all of the nucleic acid sequence of the region or the region from the 1129152 to the 1291460th region.
  • E Enterobacter cloacae
  • CP001918 Genomic Accession No. CP001918 (last registration date: April 23, 2010) Some or all nucleic acid sequences.
  • KP Klebsiella pneumoniae
  • KP Genomic Accession No. CP003785 (Date of Last Registration: March 12, 2013)
  • KP Klebsiella pneumoniae
  • the double-stranded nucleic acid or the nucleic acid having a higher order structure is converted into a single strand by denaturation (cutting a hydrogen bond between complementary nucleotide chains) with heat, acid, alkali, chaotropic agent or denaturant, Alternatively, some higher order structures can be eliminated.
  • denaturation cutting a hydrogen bond between complementary nucleotide chains
  • alkali alkali
  • chaotropic agent or denaturant Alternatively, some higher order structures can be eliminated.
  • subjecting the nucleic acid to conditions such as high temperature (about 90 ° C. or higher), high pH (alkaline; pH about 9 or higher), low salt concentration, chaotropic ion, presence of denaturing agent, pressurization, stirring, etc. Can be denatured to be single-stranded or to eliminate some higher-order structures.
  • chaotropic agent examples include formamide, urea, thiourea, guanidine, guanidine hydrochloride, guanidine isothiocyanate, iodide ion, and perchlorate ion.
  • target nucleic acid in the present invention means a nucleic acid contained in or derived from a sample to be detected and quantified by the detection or quantification method of the present invention or the device or kit used in the method.
  • the nucleic acid is originally a single-stranded nucleic acid, or a single-stranded nucleic acid or a nucleic acid having a single-stranded region resulting from denaturation.
  • the target nucleic acid includes nucleic acids labeled with various labeling substances described below, one or more oligonucleotide probes and / or one or more mask oligonucleotides (the above-described exemplary embodiments of the present invention and the following).
  • the target nucleic acid after hybridization of “oligonucleotide M1 ′”, “oligonucleotide M2 ′”, “oligonucleotide M3 ′”, “oligonucleotide M4 ′”,. Is included.
  • a nucleic acid formed by hybridizing one or more oligonucleotides to a target nucleic acid is referred to as a “nucleic acid hybrid”.
  • the single-stranded target nucleic acid is double-stranded again by annealing with a complementary nucleic acid after binding to the oligonucleotide probe and / or the mask oligonucleotide.
  • a complementary nucleic acid after binding to the oligonucleotide probe and / or the mask oligonucleotide.
  • hybridization of one or more oligonucleotide probes and / or one or more mask oligonucleotides to a single-stranded region of a target nucleic acid, which is included in the nucleic acid chromatography of the present invention described later, is performed.
  • the nucleic acid or nucleic acid hybrid described below can be adjusted by the presence of at least one of the aforementioned denaturing agent or chaotropic agent in a buffer for developing the developing element in the developing element.
  • the buffer may further contain at least one inorganic salt usually used in nucleic acid hybridization.
  • the presence of the denaturing agent or chaotropic agent reduces binding due to non-specific reaction between the target nucleic acid and various oligonucleotides and promotes the specific reaction.
  • Increasing the resolution and lowering the lower detection limit can increase target nucleic acid detection, quantitation sensitivity, accuracy, and speed.
  • the buffer for example, 10-40%, more preferably 15-30%, more preferably 20-25% formamide, 1-7M, more preferably 1-4M, more preferably 2.5-4M urea.
  • thiourea 0.5-5M, more preferably 1-4M, and even more preferably 1.2-3M guanidine or guanidine isothiocyanate, and / or chaotropic agents such as iodide ions and perchlorate ions can be added.
  • inorganic salts generally used in hybridization can be added to the buffer.
  • the sample may contain one type or two or more different types of target nucleic acids, and as described later, using the method and device or kit of the present invention, the two types or more contained in the sample. It is possible to detect and quantify different target nucleic acids simultaneously.
  • target nucleic acid N a single-stranded target nucleic acid (Hereinafter referred to as “target nucleic acid N”.
  • the letter N is an acronym N of nucleic acid.
  • An oligonucleotide probe R1 ′ (hereinafter referred to as “region R1”) may be applied to any region (hereinafter referred to as “region R1”).
  • the target nucleic acid N is captured by hybridization of an oligonucleotide R1 ′ ”(which may be labeled with a label L1 described later).
  • the oligonucleotide R1 ′ (which may be labeled with the label L1) may be referred to as a capture oligonucleotide.
  • Examples of the region R1 include a region close to the 5 ′ end or 3 ′ end of the target nucleic acid N.
  • the length of the region R1 is, for example, about 10 to about 300 mer, about 10 to about 200 mer, about 10 to about 150 mer, about 10 to about 100 mer, about 10 to about 90 mer, about 10 to about 80 mer, about 10 to about 70mer, about 10 to about 60mer, about 10 to about 50mer, about 10 to about 40mer, about 10 to about 30mer, about 10 to about 20mer, about 15 to about 300mer, about 15 to about 200mer, about 15 to about 150mer, About 15 to about 100 mer, about 15 to about 90 mer, about 15 to about 80 mer, about 15 to about 70 mer, about 15 to about 60 mer, about 15 to about 50 mer, about 15 to about 40 mer, about 15 to about 30 mer, about 15 To about 20mer, about 20 to about 300mer, about 20 to about 200mer, about 20 to about 250mer, about 20 to about 100mer
  • Oligonucleotide probe R1 ′ (oligonucleotide R1 ′) that hybridizes to region R1 is an oligonucleotide containing a base sequence complementary to the base sequence of region R1.
  • the length of the oligonucleotide probe R1 ′ corresponds to the length of the region R1, for example, about 10 to about 300 mer, about 10 to about 200 mer, about 10 to about 150 mer, about 10 to about 100 mer, about 10 to about 90 mer.
  • oligonucleotide probe R1 ′ (oligonucleotide R1 ′) hybridizes to the region R1, it may optionally have one or more mismatches or bulges with respect to the base sequence of the region R1. .
  • the oligonucleotide probe R1 ′ (oligonucleotide R1 ′) that hybridizes to the region R1 is labeled with a labeling substance (hereinafter referred to as “label L1”.
  • label L1 a labeling substance
  • the letter L is L of label). Also good.
  • the label L1 is, for example, metal colloid particles (gold colloid particles, platinum colloid particles, platinum-gold (Pt-Au) colloid particles, palladium colloid particles, silver colloid particles, copper colloid particles, nickel colloid particles, rhodium colloid particles, ruthenium.
  • metal colloid particles gold colloid particles, platinum colloid particles, platinum-gold (Pt-Au) colloid particles, palladium colloid particles, silver colloid particles, copper colloid particles, nickel colloid particles, rhodium colloid particles, ruthenium.
  • colloidal particles Colloidal particles, iridium colloidal particles, etc.
  • latex particles white latex particles, colored latex particles, fluorescent latex particles, magnetic latex particles, functional group-modified latex particles, etc.
  • colored liposomes non-metallic colloids (eg, selenium colloids)
  • enzymes alkaline phosphatase, peroxidase, glucose oxidase, or ⁇ -galactosidase, etc.
  • colored resin particles dye colloid, insoluble particulate matter, fluorescent dye, radioisotope, and the like.
  • an oligonucleotide probe R2 ′ (hereinafter referred to as “region R2”) other than the region R1 in the target nucleic acid N is further referred to. , Referred to as “oligonucleotide R2 ′”, which may have an anchor A described below at the end).
  • the target nucleic acid N bound to the L1-labeled oligonucleotide R1 ′ can be captured by chromatography via the oligonucleotide R2 ′ (for example, the above embodiments 1 to 23 of the present invention; Aspects (1) to (3); Aspects (a) to (l) in Table 1)
  • the oligonucleotide R2 ′ (which may have an anchor A) may be referred to as a detection oligonucleotide.
  • Examples of the region R2 in the labeled nucleic acid N to which the oligonucleotide R2 ′ hybridizes include a region close to the 5 ′ end or 3 ′ end of the target nucleic acid N.
  • the length of the region R2 is, for example, about 10 to about 300 mer, about 10 to about 200 mer, about 10 to about 150 mer, about 10 to about 100 mer, about 10 to about 90 mer, about 10 to about 80 mer, about 10 to about 70mer, about 10 to about 60mer, about 10 to about 50mer, about 10 to about 40mer, about 10 to about 30mer, about 10 to about 20mer, about 15 to about 300mer, about 15 to about 200mer, about 15 to about 150mer, About 15 to about 100 mer, about 15 to about 90 mer, about 15 to about 80 mer, about 15 to about 70 mer, about 15 to about 60 mer, about 15 to about 50 mer, about 15 to about 40 mer, about 15 to about 30 mer, about 15 To about 20mer
  • Oligonucleotide probe R2 ′ (oligonucleotide R2 ′) that hybridizes to region R2 is an oligonucleotide containing a base sequence complementary to the base sequence of region R2.
  • the length of the oligonucleotide probe R2 ′ corresponds to the length of the region R2, for example, about 10 to about 300 mer, about 10 to about 200 mer, about 10 to about 150 mer, about 10 to about 100 mer, about 10 to about 90 mer.
  • oligonucleotide probe R2 ′ may optionally have one or more mismatches or bulges with respect to the base sequence of region R2, as long as it hybridizes to region R2.
  • the oligonucleotide R2 ′ may have, for example, an arbitrary anchor (hereinafter referred to as “anchor A”) at its end.
  • anchor A examples include oligonucleotides, biotin, antibodies, proteins or sugar chains, and examples of the acceptor A ′ include oligonucleotides, avidin, streptavidin, antibodies, and proteins.
  • the anchor A is biotin and the acceptor A ′ is avidin or a combination of streptavidin.
  • a plurality of different target nucleic acids N are contained in a sample, such a plurality of different target nucleic acids are chromatographed by binding different anchors A to oligonucleotide probes R2 ′ for the respective target nucleic acids. Simultaneous detection and quantification are possible (for example, FIGS. 4-9, 4-11, 4-12, etc.).
  • the target nucleic acid N is labeled with a labeling substance (hereinafter referred to as “label L2”.
  • label L2 a labeling substance
  • the letter L is L of label
  • L2 labeled target nucleic acid N in some cases.
  • one or more mask oligonucleotides described later are hybridized to the L2-labeled target nucleic acid N, and any region in the target nucleic acid N (same as the above-mentioned “region R2”).
  • region R2 any region in the target nucleic acid N
  • Hybridization of oligonucleotide probe R2 ′ (same as “oligonucleotide R2 ′” above) or L1 labeled oligonucleotide probe R1 ′ to any region in target nucleic acid N (same as “region R1” above) Capture of L2 labeled target nucleic acid N through hybridization of (same as “L1 labeled oligonucleotide R1 ′” above).
  • L1-labeled oligonucleotide probe R1 ′ (“L1-labeled oligos”) can be added to any region R1 of the target nucleic acid N as in the above-described embodiments 1 to 23 of the present invention. Capture of the target nucleic acid N by hybridization of the nucleotide R1 '").
  • a nucleic acid hybrid containing the target nucleic acid N one or more mask oligonucleotides and an oligonucleotide probe R1 ′ labeled with the label L1 hybridize to the target nucleic acid N.
  • the target nucleic acid can be detected and quantified by capturing the formed nucleic acid hybrid).
  • fluorescent dyes for example, fluorescent dyes (FITC (fluorescein isothiocyanate), 6-FAM (6-Carboxyfluorescein), TET, VIC, HEX, NED, PET, ROX, Cy5, Cy3, Texas Red, JOE, TAMRA, etc.), biotin, digoxigenin (DIG), antibody, enzyme (for example, enzyme is peroxidase, glucose oxidase, alkaline phosphatase, ⁇ -galactosidase, etc.) and the like.
  • the antibody may be labeled with the aforementioned fluorescent dye, biotin, digoxigenin (DIG), or the like.
  • the target nucleic acid when the target nucleic acid is derived from a nucleic acid amplified by PCR or the like, the target nucleic acid N can be labeled with the label L2 in the course of the PCR according to a conventional method.
  • examples of the substance that binds to the label L2 include an antibody that binds to the label L2 or an antibody that is labeled with an enzyme.
  • the label L2 is biotin
  • the substance may be avidin or streptavidin.
  • the enzyme include alkaline phosphatase, peroxidase, glucose oxidase, or ⁇ -galactosidase.
  • target nucleic acid detection and quantification in the present invention for example, embodiments 46 and 47 of the present invention exemplified above; embodiments (5) and (6) in FIG. 2; embodiments (q) and ( r) and the like, but is not limited to this.
  • the nucleic acid can hybridize to an arbitrary region R2 of the target nucleic acid N in a “detection zone” of a “developing element” used for nucleic acid chromatography described later.
  • the target nucleic acid N is captured through hybridization of the region R2 and the oligonucleotide R2 ′, and the target nucleic acid is detected and quantified using the label L2 as an index. Can do.
  • the detection and quantification of the target nucleic acid N using the label L2 as an indicator can be carried out, for example, through the binding of an antibody that binds to the label L2 or an antibody labeled with an enzyme to the label L2.
  • oligonucleotide R2 ′ having an arbitrary anchor (hereinafter referred to as “anchor A”) at its end is included.
  • a “development element” “detection zone” used for nucleic acid chromatography, which will be described later, or a solid support such as a microplate used for nucleic acid immunoassay, which is capable of binding to the anchor A By immobilizing the acceptor A ′ ”, a nucleic acid hybrid containing the L2-labeled target nucleic acid N (one or more mask oligonucleotides is added to the L2-labeled target nucleic acid N) through the binding between the anchor A and the acceptor A ′. And a nucleic acid hybrid formed by hybridization of the oligonucleotide probe R2 ′ having the anchor A), and the target nucleic acid can be detected and quantified.
  • anchor A examples include oligonucleotides, low molecular weight compounds such as biotin and digoxigenin (DIG), antibodies, proteins or sugar chains, and the acceptor A ′ includes oligonucleotides, avidin, streptavidin, Examples include antibodies or proteins.
  • the anchor A is biotin and the acceptor A ′ is avidin or a combination of streptavidin.
  • the target nucleic acid N (or L2-labeled target nucleic acid N) is located across the region R1 (adjacent to or adjacent to both ends of the region R1).
  • region M1 and region M2 are “Regularly related” “region M1” and “region M2” (the letter M is the initial letter M of mask oligonucleotide (mask oligonucleotide) described later) and the region R2 in the target nucleic acid N (the region R2 Mask oligonucleotide M1 ′, mask oligonucleotide M2 ′, mask oligonucleotide M3 ′ and mask oligonucleotide M4 for at least one region of “region M3” and “region M4” adjacent to or adjacent to both ends At least one hybridization.
  • hybridization of the mask oligonucleotide to the target nucleic acid N includes the following aspects.
  • a mode in which the mask oligonucleotide M4 ′ is hybridized only to the region M4.
  • a mode in which the mask oligonucleotide M1 ′ and the mask oligonucleotide M2 ′ are hybridized to both the region M1 and the region M2, respectively.
  • one or more regions other than the region M1, the region M2, the region M3, and the region M4 in the target nucleic acid N regions M5, M6, M7, M8, etc.
  • a mask oligonucleotide containing a nucleic acid sequence complementary to the region capable of hybridizing to each region is included.
  • An embodiment in which M4 ′ is hybridized is preferred.
  • region M1 and “region M2” (adjacent to or adjacent to both ends of region R1) sandwiching region R1 in target nucleic acid N include, for example, target nucleic acid N It means that the respective regions are present in the order of the region M1-region R1-region M2 (or region M2-region R1-region M1) in the direction from the 5 ′ end to the 3 ′ end.
  • the region M1 and the region R1 are adjacent to each other without a one-base gap, or the region M1 and the region R1 are 1 to 30 mer, 1 to 29 mer, 1 to 28 mer, 1 to 27 mer, 1 ⁇ 26mer, 1-25mer, 1-24mer, 1-23mer, 1-22mer, 1-21mer, 1-20mer, 1-19mer, 1-18mer, 1-17mer, 1-16mer, 1-15mer, 1-14mer , 1-13mer, 1-12mer, 1-11mer, 1-10mer, 1-9mer, 1-8mer, 1-7mer, 1-6mer, 1-5mer, 1-4mer, 1-3mer, 2mer or 1mer apart It means to exist.
  • a preferred embodiment is one in which the region M1 and the region R1 are adjacent to each other without a one-base gap or are separated by 1 to 20 mer.
  • region M1 and region R1 are adjacent to each other without a one base gap, or are separated by 1 to 15 mer. More preferably, the region M1 and the region R1 are adjacent to each other without a one-base gap, or are separated by 1 to 10 mer. More preferably, the region M1 and the region R1 are adjacent to each other without a one-base gap, or are separated by 1 to 5 mer.
  • the positional relationship between the region M2 and the region R1, the region M3 and the region R2, and the region R4 and the region R2 is the same as the positional relationship between the region M1 and the region R1.
  • the mask oligonucleotide in the present invention refers to the region M1, the region M2, the region M3, and the region M4 in the target nucleic acid N or the L2 labeled target nucleic acid N (if desired, further regions M5, M6, M7, M8, Etc.), each of which contains a nucleotide sequence complementary to the nucleic acid sequence.
  • the length of the mask oligonucleotide corresponds to the length of each of the region M1, the region M2, the region M3, and the region M4, for example, about 5 to about 300 mer, about 5 to about 200 mer, about 5 to about 150 mer, About 5 to about 100 mer, about 5 to about 90 mer, about 5 to about 80 mer, about 5 to about 70 mer, about 5 to about 60 mer, about 5 to about 50 mer, about 5 to about 40 mer, about 5 to about 30 mer, about 5 To about 20mer, about 10 to about 300mer, about 10 to about 200mer, about 10 to about 150mer, about 10 to about 100mer, about 10 to about 90mer, about 10 to about 80mer, about 10 to about 70mer, about 10 to about 60mer, about 10 to about 50mer, about 10 to about 40mer, about 10 to about 30mer, about 10 to about 20mer, about 15 to about 300mer, about 15 to about 200mer, about 15 to about 150mer, about 15 to about 100mer, About 15 to about 90
  • each mask oligonucleotide (M1 ′, M2 ′, M3 ′, M4 ′) may be optionally combined with each region (M1, M2, M3, M4) as long as it hybridizes to each region (M1, M2, M3, M4).
  • One or a plurality of mismatches or bulges may be present with respect to the base sequence of M4).
  • two or more target nucleic acids for example, a plurality of target nucleic acids derived from different types of bacteria, a plurality of target nucleic acids derived from a plurality of variants of a specific bacterium, specific And a plurality of target nucleic acids derived from a plurality of mutant forms of the above gene, a plurality of target nucleic acids derived from a plurality of PCR products amplified by multiplex PCR, and the like. That is, by using the present invention, it is possible to simultaneously detect and quantify such a plurality of target nucleic acids in one assay.
  • the one target for each nucleic acid, or each of said two or more different target nucleic acids, said one or more mask oligonucleotides (M1 ′, M2 ′, M3 ′, M4 ′), oligonucleotide probe R1 ′ (oligonucleotide R1 ′) and If necessary, oligonucleotide probe R2 ′ (oligonucleotide R2 ′) is designed and prepared, and using these various oligonucleotides, for example, lateral flow type or flow-through type chromatography (nucleic acid chromatography) to be described later Or by applying hybridization-ELISA.
  • detection when there the target nucleic acid are three types to be determined (the target nucleic acid N 1, N 2, and N 3) is hybridized to the target nucleic acid N 1 necessary for the detection of a target nucleic acid N 1
  • One or more mask oligonucleotides (M1 ′, M2 ′, M3 ′, M4 ′), oligonucleotide probe R1 ′ (oligonucleotide R1 ′) and, optionally, oligonucleotide probe R2 ′ (oligonucleotide) R2 ′) is designed and prepared.
  • oligonucleotide probes R1 ' Oligonucleotide R1 ′
  • oligonucleotide probe R2 ′ oligonucleotide R2 ′
  • oligonucleotide probes R1 ' Oligonucleotide R1 ′
  • oligonucleotide probe R2 ′ oligonucleotide R2 ′
  • nucleic acid chromatography lateral flow type or flow through type
  • hybridization-ELISA using immunoassay can be used. It is not limited to these.
  • nucleic acid chromatography examples include the devices schematically shown in FIG. 2 (embodiments (1) to (7)), FIGS. 4-1 to 4-7, and FIGS. 4-9 to 4-12. Although the aspect using a principle can be shown as an example, it is needless to say that the aspect is not limited to these aspects.
  • the above-described target nucleic acid (labeled with the label L2) is applied to each of the “application zone”, “encapsulation zone” and “detection zone” of the device of the present invention described later.
  • the oligonucleotide R1 ′ (which may be labeled with the label L1)
  • the oligonucleotide R2 ′ (which may have an anchor A), each mask oligonucleotide, the acceptor A ′, and / or the label L2.
  • the nucleic acid chromatography according to the present invention may optionally include a part of a “developing element” (described later) provided with only one or more “detection zones” as a solid support (for example, a tube, A liquid sample containing a target nucleic acid and the above-mentioned various oligonucleotides in a vial, a plate, a beaker, etc.), or applying the liquid sample to a part of the solid support It can also be implemented depending on the embodiment.
  • a “developing element” described later
  • a solid support for example, a tube, A liquid sample containing a target nucleic acid and the above-mentioned various oligonucleotides in a vial, a plate, a beaker, etc.
  • FIG. 2 the embodiments schematically shown in FIG. 2 (embodiments (5) and (6)) and FIGS. 4-8 can be exemplified, but the embodiments are limited to these embodiments. It goes without saying that it is not done.
  • the target nucleic acid which may be labeled with a label L2
  • an oligonucleotide R1 ′ which may be labeled with a label L1
  • Binds to oligonucleotide R2 ′ which may have anchor A
  • each mask oligonucleotide and mutual hybridization between various nucleic acid hybrids, anchor A and acceptor A ′, and label L2 and label L2. Binding between substances encompasses all that occurs throughout the entire period from the start to the end of the assay and does not imply only hybridization or binding that occurs only at a particular location, site, or time point.
  • the target nucleic acid (which may be labeled with the label L2), the oligonucleotide R1 ′ (which may be labeled with the label L1), the oligonucleotide R2 ′ (which has an anchor A)
  • the mutual hybridization between each mask oligonucleotide and various nucleic acid hybrids is such that each of one specific hybridization and one or more different hybridizations gradually increases over time. Any embodiment is encompassed, such as completed embodiments, separately occurring embodiments, as well as simultaneously occurring embodiments.
  • FIGS. 4-1 to 4-7 and FIGS. 4-9 to 4-12 can be cited as examples.
  • an outline of the principle is as follows.
  • the target nucleic acid which may be labeled with the label L2
  • the oligonucleotide R1 ′ which may be labeled with the label L1
  • the oligonucleotide Mutual hybridization between R2 ′ which may have anchor A
  • each mask oligonucleotide and each nucleic acid hybrid
  • binding between anchor A and acceptor A ′ and binding to label L2 and label L2 Binding to the substance to be encompassed includes everything that occurs throughout the entire period from the start to the end of the assay and does not imply only hybridization or binding that occurs only at a specific location, site, or time point.
  • the target nucleic acid (which may be labeled with the label L2), the oligonucleotide R1 ′ (which may be labeled with the label L1), the oligonucleotide R2 ′ (which may have the anchor A) Good), the mutual hybridization between each mask oligonucleotide and each nucleic acid hybrid is gradually completed over time, each with one specific hybridization and one or more different hybridizations. Any embodiment is included, including embodiments, embodiments that occur separately, and embodiments that occur simultaneously. The same applies to the bond between anchor A and acceptor A ′.
  • a nucleic acid hybrid (a nucleic acid hybrid generated by hybridizing a target nucleic acid N, one or more mask oligonucleotides, and an oligonucleotide R1 ′ labeled with a label L1) is immobilized by an oligonucleotide R2 ′ immobilized on the detection zone.
  • a nucleic acid hybrid (a nucleic acid hybrid generated by hybridizing a target nucleic acid N, one or more mask oligonucleotides, an oligonucleotide R1 ′ labeled with a label L1 and an oligonucleotide R2 ′ having an anchor A at the end),
  • the presence and amount of the target nucleic acid N contained in the liquid sample can be measured by capturing with the acceptor A ′ that binds to the anchor A immobilized on the detection zone and detecting the label L1 as an indicator.
  • nucleic acid hybrid target nucleic acid N labeled with label L2, one or more mask oligonucleotides, and nucleic acid hybrid generated by hybridization of oligonucleotide R1 'labeled with label L1 is immobilized on the detection zone
  • the presence and amount of the target nucleic acid N contained in the liquid sample can be measured by capturing with the substance that binds to the labeled L2 and detecting the label L1 as an index.
  • the nucleic acid hybrid (labeled L2) that has reached the detection zone by moving the development element by capillary action and diffusion
  • the presence and amount of the target nucleic acid N contained in the liquid sample can be measured by capturing with the acceptor A ′ and detecting the label L2 as an index.
  • Lateral flow type nucleic acid chromatography using the principle and device (or kit) schematically shown in FIG. 4-9 is a mode of detecting and quantifying a plurality of target nucleic acids N (for example, target nucleic acids N1, N2) simultaneously.
  • nucleic acid hybrid 1 (target nucleic acid N1, one or more mask oligonucleotides prepared for target nucleic acid N1, which has reached the detection zone by moving the deployment element by capillary action and diffusion) Nucleic acid hybrid 1 generated by hybridization of oligonucleotide R1 ′ labeled with label L1 prepared for target nucleic acid N1 and oligonucleotide R2 ′ having anchor A1 at the terminal prepared for target nucleic acid N1) And nucleic acid hybrid 2 (target nucleic acid N2, one or more mask oligos prepared for target nucleic acid N2 Nucleic acid hybrid generated by hybridization of nucleotide, oligonucleotide R1 ′ labeled with label L1 prepared for target nucleic acid N2, and oligonucleotide R2 ′ having anchor A2 at the terminal prepared for target nucleic acid N2 2) is captured by the acceptor A1 ′ that binds to the anchor A
  • the lateral flow type nucleic acid chromatography using the principle and device (or kit) schematically shown in FIG. 4-10 is a mode of detecting and quantifying a plurality of target nucleic acids N (for example, target nucleic acids N1, N2) simultaneously.
  • the target nucleic acid N1 labeled with the nucleic acid hybrid 1 (labeled L2a (for example, FITC) labeled with the nucleic acid hybrid 1 that has reached the detection zone by moving the deployment element by capillary action and diffusion)
  • Nucleic acid hybrid 1 produced by hybridizing one or more prepared mask oligonucleotides and oligonucleotide R1 ′ labeled with label L1 prepared for target nucleic acid N1, and nucleic acid hybrid 2 (labeled L2b)
  • Target nucleic acid N2 labeled with eg Texas® Red
  • one or more masks prepared for target nucleic acid N2 Substance 1 that binds nucleic acid hybrid 2 produced by hybridization of oligonucleotide R1 ′ labeled with oligonucleotide L1 ′ prepared for oligonucleotide and target nucleic acid N2 to labeled L2a, respectively, immobilized in the detection zone
  • the lateral flow type nucleic acid chromatography using the principle and device (or kit) schematically shown in FIG. 4-11 is a mode of detecting and quantifying a plurality of target nucleic acids N (for example, target nucleic acids N1, N2) simultaneously.
  • target nucleic acids N for example, target nucleic acids N1, N2
  • nucleic acid hybrid 1 target nucleic acid N1 labeled with label L2, one or more prepared for target nucleic acid N1 has reached the detection zone by moving the deployment element by capillary action and diffusion.
  • One or more mask oligonucleotides prepared for the target nucleic acid N2, and for the target nucleic acid N2 The acceptor A1 'and the acceptor A2 that binds to the anchor A1 immobilized on the detection zone, respectively, of the nucleic acid hybrid 2) produced by hybridizing the oligonucleotide R2' having the anchor A2 at the terminal prepared in
  • the presence and amount of the target nucleic acids N1 and N2 contained in the liquid sample can be simultaneously measured by capturing with A2 ′ and detecting the label L2 as an index.
  • the lateral flow type nucleic acid chromatography using the principle and device (or kit) schematically shown in FIG. 4-12 is a mode of detecting and quantifying a plurality of target nucleic acids N (for example, target nucleic acids N1, N2) simultaneously.
  • the nucleic acid hybrid 1 labeled with a labeled L2a (for example, FITC) labeled with a target nucleic acid N1, prepared for the target nucleic acid N1 is moved to the detection zone by moving the development element by capillary action and diffusion).
  • nucleic acid hybrid 1 produced by hybridizing oligonucleotide R2 ′ having anchor A at the end prepared for target nucleic acid N1
  • nucleic acid hybrid 2 labeled L2b
  • target nucleic acid N2 labeled with Texas® Red one or more mask oligos prepared for target nucleic acid N2.
  • Acceptor A ′ that binds nucleotide and nucleic acid hybrid 2) produced by hybridizing oligonucleotide R2 ′ having anchor A at the end prepared for target nucleic acid N2 to anchor A immobilized respectively in the detection zone By detecting each of them with a label L2a and a label L2b that are different from each other, and the presence and amount of the target nucleic acids N1 and N2 contained in the liquid sample can be measured simultaneously.
  • the “deployment element” in the present invention is a sheet-like or strip-like support (membrane), and various nucleic acids (for example, target nucleic acids (which may be labeled) by capillary action).
  • nucleic acids for example, target nucleic acids (which may be labeled) by capillary action.
  • Oligonucleotide R1 ′ (which may be labeled), oligonucleotide R1 ′, oligonucleotide R2 ′ (which may have anchor A), each mask oligonucleotide, and one or more of them are mutually high
  • the liquid sample containing various nucleic acid hybrids formed through hybridization has a function of developing chromatographically.
  • a porous insoluble support for example, a porous insoluble support (membrane) can be used.
  • any commercially available porous insoluble support can be used as the development element as long as the development element has the above function.
  • the “application zone” in the present invention is a sheet-like or strip-like support made of the same or different material as the deployment element, disposed in contact with the deployment element.
  • the material include the same materials as the above-described development element, but a material different from the development element can be selected according to the purpose.
  • This application zone can also be referred to as a sample pad in terms of its functions.
  • the application zone has the following functions, but is not limited thereto.
  • Receive a liquid sample Receive a liquid sample.
  • (ii) Distribute the liquid sample homogeneously in the support.
  • reagents for changing the composition of the liquid sample may be included.
  • It may serve as a filter.
  • a substance such as an arbitrary oligonucleotide can be encapsulated.
  • the “enclosure zone” in the present invention is a sheet-like or strip-like support made of the same or different material as the deployment element disposed on the deployment element in contact with the application zone.
  • the material include the same materials as the above-described development element, but a material different from the development element can be selected according to the purpose.
  • This encapsulation zone can also be referred to as a conjugate pad in terms of its function. For example, it has the following functions, but is not limited thereto.
  • a substance such as an arbitrary oligonucleotide can be encapsulated. When analysis is not performed, the encapsulated oligonucleotide and the like are usually present in a dry state.
  • the various oligonucleotides are released quickly, uniformly and quantitatively.
  • the various oligonucleotides are uniformly moved to the development element.
  • a nucleic acid hybrid (a target nucleic acid N is hybridized with one or more other oligonucleotides) contained in a sample containing various nucleic acids that have moved in the development element by capillary action.
  • the aforementioned oligonucleotide R2 ′, the acceptor A ′ that binds to the anchor A, or the substance that binds to the label L2 can be immobilized.
  • the oligonucleotide probe R2 ′ (oligonucleotide R2 ′) is immobilized on the detection zone by introducing an amino group (for example, a linear chain to which a primary amino group is bound) into the oligonucleotide R2 ′. Carbon chain)), carboxyl groups, thiol groups, hydroxyl groups, etc., can be immobilized on the detection zone.
  • the amino linker included in the oligonucleotide R2 ′ is immobilized on a solid phase via a protein (eg, serum albumin, immunoglobulin, etc.), whereby the oligonucleotide R2 ′ is immobilized on the solid phase.
  • an acceptor A ′ that can bind to the anchor A of the oligonucleotide probe R2 ′ (oligonucleotide R2 ′) can be immobilized in the detection zone.
  • the anchor A examples include oligonucleotides, low molecular compounds such as biotin and digoxigenin (DIG), antibodies, proteins (for example, lectins) or sugar chains, and the acceptor A ′ includes oligonucleotides, avidin, and the like. , Streptavidin, antibodies or proteins (eg lectins).
  • the acceptor A ′ is an oligonucleotide, an amino group (amino linker (for example, linear carbon chain to which a primary amino group is bonded)), carboxyl group, thiol group, hydroxyl group, etc.
  • the anchor A is biotin
  • avidin or streptavidin can be immobilized as an acceptor A ′ in the detection zone.
  • a separate substance that specifically binds to each anchor A can be immobilized as an acceptor A ′ in an individual detection zone for separate detection.
  • a substance for example, an antibody or streptavidin
  • a target L2 for example, a fluorescent dye or biotin
  • an antibody that specifically binds to the fluorescent dye can be immobilized in the detection zone.
  • the target L2 is biotin
  • avidin or streptavidin can be immobilized in the detection zone.
  • the target labeled target nucleic acid N contained in the sample is detected using the label L1 and the label L2 as indicators, and therefore can be referred to as a test line.
  • the above-described label L1 is, for example, a metal colloid particle such as a gold colloid particle or a latex particle
  • a substance immobilized on the detection zone (the acceptor that binds to the oligonucleotide R2 ′ and anchor A described above) is used.
  • a ′ a nucleic acid hybrid formed by hybridizing one or more other oligonucleotides to the target nucleic acid N
  • a ′ a substance that binds to the label L2
  • lines such as red and blue of the particles appear.
  • the presence and amount of the target nucleic acid N can be measured using the degree of coloring of the coloring line as an index.
  • the label L2 is, for example, the above-described various fluorescent dyes (FITC, Texas® Red, etc.), the label L2 is specific to the fluorescent dye treated so as to be detectable.
  • the presence or amount of the target nucleic acid N can be measured by binding an antibody that binds to.
  • the lateral flow type nucleic acid chromatography is used to simultaneously detect and quantify two or more different target nucleic acids contained in or expected to be contained in a sample.
  • the embodiments shown in FIGS. 4-9 to 4-12 For example, it can be carried out as outlined below.
  • each respective target nucleic N X oligonucleotide probes R1 was labeled with a label L1, which can hybridize to '(oligonucleotide R1'), i.e., the target nucleic acid N 1 capable of hybridizing to L1 labeled oligonucleotide R1 'and target nucleic N 2 capable of hybridizing to L1 labeled oligonucleotide R1 'and the target nucleic acid N 3 capable of hybridizing to L1 labeled oligonucleotide R1' and can hybridize with a nucleic acid N 4 L1 labeled oligonucleotide R1 ', ⁇ ⁇ ⁇ - target nucleic acid N 4 L1 labeled oligonucleotide R1 ', ⁇ ⁇ ⁇ - target nucleic acid N 4 L1 labeled oligonucleotide R1 ', ⁇ ⁇ ⁇ - target nucleic
  • the two or more different target nucleic acids N (that is, target nucleic acid N 1 , target nucleic acid N 2 , target nucleic acid N 3 , target nucleic acid N 4 ,...
  • Target nucleic acid N X (X is an arbitrary number)
  • the respective target nucleic acid N oligonucleotide probes for detection can hybridize to R2 (oligonucleotide R2 '), i.e., a labeled oligonucleotide R2 capable of hybridizing to a target nucleic acid N 1', the target nucleic acid N 2 each oligonucleotides R2 which may be soybean ', the target nucleic acid N 3 oligonucleotides R2 capable of hybridizing to a' oligonucleotide R2'-4 capable of hybridizing to a target nucleic acid N 4, hybridized to ....
  • each target nucleic acid may be labeled with the same or different label L2 as desired. Further, the oligonucleotide R2 ′ may have the same or different anchors A.
  • Target nucleic acid N X (X is an arbitrary number)
  • a mask oligonucleotide that can hybridize to the region M1 and the region M2 located across the region R1 in the target nucleic acid N, that is, at least one or both of the oligonucleotide M1 ′ and the oligonucleotide M2 ′ is designed and prepared.
  • the target nucleic acid N least one oligonucleotide M1 'and oligonucleotide M2' respectively capable of hybridizing to a region M1 and the area M2 located across a region R1 in one or both; target nucleic acid in N 2 regions R1 at least one or both of the oligonucleotides M1 may each hybridize to a region M1 and the area M2 located across 'and oligonucleotide M2'; region M1 located across a region R1 of the target nucleic acid N 3 and the region M2 oligonucleotide M1 capable of hybridizing respectively 'and oligonucleotide M2' at least one of, or both; target nucleic N located across a region R1 in 4 regions M1 and oligonucleotide M1 respectively capable of hybridizing to a region M2 ' And oligonucleotides At least one of and oligonucleotide M2 '; de M
  • each different target nucleic acid N ie, target nucleic acid N 1 , target nucleic acid N 2 , target nucleic acid N 3 , target nucleic acid N 4 ,...
  • Target nucleic acid N X X is an arbitrary number
  • a mask oligonucleotide that hybridizes to each of the region M3 and the region M4 located across the region R2 in the target nucleic acid N that is, at least one or both of the oligonucleotide M3 ′ and the oligonucleotide M4 ′ is designed, Prepare.
  • the various oligonucleotides were prepared respectively for the target nucleic acid N X is hybridized to form a nucleic acid hybrid.
  • a substance in which each of a plurality of types of nucleic acid hybrids moved by capillary action in a deployment element of a device is immobilized in a detection zone for each of a plurality of target nucleic acids N provided at different positions of the device (the above-mentioned The oligonucleotide R2 ′, the acceptor A ′ that binds to the anchor A, or the substance that binds to the label L2).
  • the label L1 is, for example, metal colloid particles such as gold colloid particles, latex particles, etc.
  • the presence / absence and amount of each target nucleic acid N using as an index the degree of coloring that appears in each detection zone (test line) Can be measured.
  • the above-mentioned “development element” is added to the detection zone as a test line for detecting the target nucleic acid N described above.
  • a detection zone as one or more control lines for detecting a nucleic acid as an internal control can be provided.
  • the detection zone as one or more control lines is preferably disposed between a detection zone as a test line for detecting the target nucleic acid N and an “absorption zone” described later.
  • the internal control is a separate nucleic acid prepared separately from the target nucleic acid N to be detected, and moves in the development element by capillary action as in the case of the target nucleic acid N. However, the above-described labeled nucleic acid N is detected. Without being captured in a detection zone as a test line, the test line passes through the test line and is captured and detected in a detection zone as a control line. The capture and detection of the internal control in the detection zone as the control line are hybridized to the internal control in the same manner as the various methods for capturing and detecting the target nucleic acid N in the detection zone as the test line described above. It can be carried out using capture oligonucleotides, mask oligonucleotides and detection oligonucleotides.
  • Supplementation and detection of the internal control in the detection zone as the control line are performed when the desired target nucleic acid N is inspected and detected using the various devices for performing the lateral nucleic acid chromatography of the present invention described above.
  • the nucleic acid as the internal control is moved in the development element, and the internal control is captured and detected in the detection zone as the control line. The purpose is to check whether or not it worked properly.
  • the “absorption zone” in the present invention can be placed in contact with the deployment element to absorb the liquid sample moving in the deployment element due to capillary action (for example, opposite to the side where the application zone is located). Side position).
  • the absorption zone may be a sheet-like or strip-like support made of the same or different material as the development element. This absorption zone can also be called an absorption pad in terms of its function.
  • At least a liquid sample containing the above-described various nucleic acids is developed in a buffer for developing in the developing element.
  • One modifier or chaotropic agent can be present.
  • the buffer may further contain at least one inorganic salt usually used in nucleic acid hybridization.
  • the presence of a denaturing agent or chaotropic agent promotes appropriate formation of a single-stranded region in the target nucleic acid and specific binding between the target nucleic acid and various oligonucleotides,
  • the binding due to non-specific reactions between the target nucleic acid and various oligonucleotides is reduced, the resolution is improved by promoting the specific reaction, and the detection limit is lowered, so that the sensitivity and accuracy of target nucleic acid detection and quantification are reduced. And quickness can be increased.
  • any of the above-described devices can be placed in a case (housing) made of a moisture-impermeable solid material.
  • the embodiment schematically shown in FIGS. 5-1 and 5-2 can be exemplified.
  • the embodiment schematically illustrated in FIG. 5-2 is an example of a preferred embodiment of various embodiments included in the embodiment schematically illustrated in FIG. "In addition to the detection zone as a test line for detecting the target nucleic acid as described above, as described above, as an internal control (control) for confirming whether or not the device functions normally.
  • a detection zone as a control line for detecting a nucleic acid is also provided.
  • the case (housing) includes a sample application port for applying the sample to the application zone provided in the above-described device (kit) of the present invention, and a change caused by capture of the target nucleic acid in the detection zone (for example, the label L1) A detection window for observing (color change) may be provided. Further, by disposing the device of the present invention in the case (housing), the reagents and the like contained in the device can be kept in a dry state and can be stored for a long time at room temperature.
  • any case (housing) adopted by a known or commercially available product can be used.
  • the following known techniques and embodiments can be prepared and used as desired (for example, Japanese Patent No. 2705768, Japanese Patent No. 2825349, Japanese Patent Laid-Open No. 6-230009, and Japanese Patent Laid-Open No. 9-145712).
  • No. JP, 2000-356638, etc. can be referred to.
  • the device can be prepared and provided as a device (in this case, also referred to as a kit) for detecting and quantifying a desired specific target nucleic acid N in a sample. That is, for example, the device of the embodiment as exemplified above is further provided with one or more mask oligonucleotides (M1 ′, M2 ′, M3 ′ and / or necessary for detection and quantification of the specific target nucleic acid N. Or M4 ′), oligonucleotide probe R1 ′ (which may be labeled with label L1), and oligonucleotide probe R2 ′ (which may have anchor A) may be provided as a kit. .
  • M4 ′ mask oligonucleotides
  • oligonucleotide probe R1 ′ which may be labeled with label L1
  • kits when the target nucleic acid N contained in a sample is detected and quantified after amplification by PCR or the like, a pair of amplification nucleic acids necessary for amplification of the target nucleic acid N by PCR or the like is included in the kit.
  • a kit further provided with a primer eg, a PCR primer
  • a primer eg, a PCR primer
  • Flow-through type nucleic acid chromatography The principle of flow-through type nucleic acid chromatography is basically the same as the principle of lateral flow type nucleic acid chromatography described above, but in lateral flow type nucleic acid chromatography, In the flow-through type nucleic acid chromatography, the hybridization between the target nucleic acid N and the oligonucleotide R1 ′ and / or the oligonucleotide R2 ′ proceeds in the horizontal direction (laterally) in the support (membrane). Each such hybridization is different in that it proceeds in the vertical direction (from top to bottom).
  • this flow-through type nucleic acid chromatography uses, for example, a device comprising the following components arranged vertically (from top to bottom), and the above-described lateral flow type nucleic acid chromatography: The same operation can be performed.
  • a sample pad for applying a liquid sample comprising at least one or more different target nucleic acids N (which may be labeled with label L2).
  • One or more mask oligonucleotides designed and prepared for each target nucleic acid N (M1, M2, M3 and / or M4; one or more oligonucleotides R1 ′ (which may be labeled with a label L1) , And / or a conjugate pad (also referred to as reagent paper) that can optionally include one or more of oligonucleotides R2 ′ (which may have anchor A).
  • a detection pad (also referred to as detection paper or determination paper) on which a substance capable of capturing the nucleic acid hybrid (an oligonucleotide R2 ′, an acceptor A ′ that binds to anchor A or a substance that binds to label L2) is immobilized.
  • an absorption pad for absorbing liquid that has passed through the detection pad may be provided.
  • the label L1 is, for example, metal colloid particles such as gold colloid particles or latex particles
  • a detection pad also referred to as detection paper or case paper
  • the target nucleic acid N hybridized with the L1-labeled oligonucleotide R1 ′ is captured by a substance capable of capturing the nucleic acid hybrid (an oligonucleotide R2 ′, an acceptor A ′ that binds to the anchor A, or a substance that binds to the labeled L2).
  • the detection pad also referred to as detection paper or determination paper
  • the presence and amount of the target nucleic acid N can be measured using the degree of coloring as an index.
  • an oligonucleotide having one or more mask oligonucleotides eg, oligonucleotide M1 ′, oligonucleotide M2 ′, oligonucleotide M3 ′ and / or oligonucleotide M4 ′
  • anchor A to target nucleic acid N
  • Nucleic acid-to-nucleic acid hybridization including hybridization of nucleotide R2 ', label L2 (eg, fluorescent dye, biotin, DIG, antibody, enzyme, etc.) bound to target nucleic acid N and antibody that binds to the label L2
  • a target target nucleic acid can be detected and quantified by combining a reaction with (eg, enzyme-labeled antibody) (ie, ELISA; enzyme-labeled immunoassay).
  • this hybridization-ELISA can be used to detect and quantify the target nucleic acid in the sample, for example, as follows.
  • target nucleic acid N, region R2, oligonucleotide probe R1 ′, label L2, target nucleic acid N labeled with label L2, region M1, region M2, mask oligonucleotide (oligonucleotide M1 ′, oligonucleotide M2 ′ ), Nucleic acid hybrid, anchor A, acceptor A ′ and the like have the same meanings as defined above.
  • the following operations can be performed simultaneously or in any order.
  • the target nucleic acid N contained in or derived from the sample is referred to as a labeling substance (hereinafter referred to as “labeled L2”.
  • labeling substance hereinafter referred to as “labeled L2”.
  • fluorescent dyes FITC (fluorescein isothiocyanate), 6-FAM (6-Carboxyfluorescein), TET, VIC, HEX, NED, PET, ROX, Cy5, Cy3, Texas® Red, JOE, TAMRA, etc.
  • DIG digoxigenin
  • L2 labeled target nucleic acid N is obtained by attaching labeled L2 to the amplification product in the process of gene amplification by PCR or the like according to a conventional method. be able to.
  • the oligonucleotide oligonucleotide R2 ′ having the anchor A is hybridized to the L2 labeled target nucleic acid N.
  • a nucleic acid hybrid is formed by hybridizing an L2 labeled nucleic acid with one or more mask oligonucleotides and an oligonucleotide R2 'having an anchor A.
  • acceptor A which is a substance capable of binding to the anchor A on the surface of a solid support having a volume (for example, a tube, a vial, a plate, a beaker, a microplate having one or more wells, etc.) '(For example, avidin or streptavidin when the anchor A is biotin) is immobilized.
  • the mixture of the sample containing the target nucleic acid N and each oligonucleotide described above is added to the well of the microplate, and the nucleic acid hybrid generated through the hybridization is immobilized on the anchor A and the support. Captured via binding to acceptor A ′.
  • a substance capable of detecting the label L2 for example, an antibody labeled with an enzyme or the like that binds to the label L2
  • a color or signal generated by the binding of the substance to the label L2 is displayed.
  • the presence or amount of the target nucleic acid N is measured using the color or the level of signal as an index.
  • an anti-FITC antibody labeled with an enzyme for example, horseradish peroxidase (HRP)
  • HRP horseradish peroxidase
  • PrimeSTAR HS DNA Polymerase for nucleic acid amplification PCR by PCR, PrimeSTAR HS DNA Polymerase from TAKARA was used. First, PrimeSTAR HS DNA Polymerase (2.5 U / ⁇ L) 0.2 ⁇ L, 5 ⁇ PrimeSTAR Buffer (Mg 2+ plus) 4 ⁇ L, dNTP Mixture (2.5 mM each) 1.6 ⁇ L, template DNA 1 ⁇ L, and each bacterial template 0.4 ⁇ L each of a pair of oligonucleotide primers (10 pmol / ⁇ L) specific for genomic DNA was diluted to 20 ⁇ L with sterile water.
  • SA1F and SA1R shown below were used as PCR primers for SA.
  • -SA1F 5'-GGATTCAATGTCACATGAGCGTGATAAAAT-3 '[SEQ ID NO: 1]
  • -SA1R 5'-AAAGTCTCAAGGATATGCGATTACTGAAGCAG-3 '[SEQ ID NO: 2]
  • SE1F and SE1R shown below were used as PCR primers for SE.
  • -SE1F 5'-TCAGAGGTCATGGAAAATCTTCACGAAC-3 '[SEQ ID NO: 3]
  • -SE1R 5'-ATTGCCTCAGATTTATTAAAGCCTGCTAATTCTTC-3 '[SEQ ID NO: 4]
  • PA1F and PA1R shown below were used as PCR primers for PA.
  • -PA1R 5'-CCCAGGTCCTGATAGACCAGTTGATACCC -3 '[SEQ ID NO: 6]
  • EF1F and EF1R shown below were used as PCR primers for EF.
  • EC1F and EC1R shown below were used as PCR primers for EC.
  • EC1F 5'-GTCAGGTAAGGCTAATTTCATTACCAGCAAAGG-3 '[SEQ ID NO: 9] (same sequence as oligonucleotide EFA1 of SEQ ID NO: 41)
  • EC1R 5′-CGGTCAGCCATAGGGTAAATGACCAC-3 ′ [SEQ ID NO: 10]
  • ET1F and ET1R were used as PCR primers for ET.
  • -ET1F 5'-GTTTCTGGCACGGCGTCAGC-3 '[SEQ ID NO: 11]
  • -ET1R 5'- TGTGTGTCTAATCAGTTCCGCAGGG-3 '[SEQ ID NO: 12]
  • KP1F and KP1R were used as PCR primers for KP.
  • -KP1F 5'-CAGCCATCAGGTTGAGCATCATTAATCTT-3 '[SEQ ID NO: 13]
  • -KP1R 5'-CAGCCGGAGAAATAGAGAAATCTTATGAATCAT-3 '[SEQ ID NO: 14]
  • PCR was performed using Veriti Thermal Cycler (AppliedsBiosystems), held at 94 ° C for 3 minutes, then repeated at 40 ° C for 10 cycles at 98 ° C for 10 seconds and 68 ° C for 1 minute. It was.
  • Gold colloidal particle labeled capture oligonucleotide used in the detection of EC-derived nucleic acid by nucleic acid chromatography was prepared as follows. Synthesized and biotinylated biotinylated oligonucleotide (biotin-CGGTCAACGAGATGTGGTCT-3 ′) [SEQ ID NO: 15] was weighed, 1 mM EDTA was added, and 0.1M MOPS (3-Morpholinopropanesulfonic acid) buffer (pH 7.8) was added. And diluted to 0.15 nmol of a biotinylated oligonucleotide solution.
  • biotinylated biotinylated oligonucleotide biotin-CGGTCAACGAGATGTGGTCT-3 ′
  • MOPS 3-Morpholinopropanesulfonic acid
  • colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotides used in the detection by nucleic acid chromatography of nucleic acids derived from various bacteria were prepared in the same manner as described above.
  • the sequence of the capture oligonucleotide was as follows.
  • BSA binding detection oligonucleotide to be immobilized on a membrane used for detection of EC-derived nucleic acid by nucleic acid chromatography was prepared as follows. 150 mg of bovine serum albumin (BSA) manufactured by Sigma was dissolved in 2 ml of 0.1 M phosphate buffer (pH 6.7) supplemented with 5 mM EDTA.
  • BSA bovine serum albumin
  • SATA N-succinimidyl-S -acetylthioacetate manufactured by Thermo Scientific was prepared so as to have 4 times mole of BSA, and incubated at 37 ° C for 90 minutes. Thereafter, a hydroxyamine solution is added to the mixed solution to a final concentration of 0.5 ⁇ M, and further incubated at 37 ° C. for 60 minutes. 2M M phosphate buffer was added to these mixed solutions to prepare a pH of 6.0 to obtain a maleimidated BSA solution.
  • the synthesized oligonucleotide (5′-CGACAGTACGCAGCCACGAT-3 ′) [SEQ ID NO: 22] was weighed and diluted with 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) containing 5 mM EDTA, and 650 nmol / ml oligo was added. A nucleotide solution was prepared.
  • EMCS N- [6-Maleimidocaproyloxy] succinimide manufactured by Dojin Chemical Co., Ltd. was prepared so as to be 50-fold mol of the oligonucleotide, mixed with the oligonucleotide solution, and incubated at 37 ° C. for 30 minutes. Thereafter, ethanol precipitation was performed according to a conventional method.
  • the precipitate was dissolved by adding 5 mM EDTA-added 0.1 mM phosphate buffer (pH 6.0), an equal amount of maleimidated BSA solution was added, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 60 minutes. Thereafter, N-ethylmaleimide was added to a final concentration of 0.1%.
  • the total amount of the mixture of maleimidated BSA and oligonucleotide was added to 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) with 5 mM EDTA using an ACA44 packed column (inner diameter: 1.5 cm x 60 cm) manufactured by Bio Sepra. Elute with and purify.
  • BSA-binding detection oligonucleotides to be immobilized on a membrane in the detection by nucleic acid chromatography of nucleic acids derived from various bacteria were prepared by the same method as described above.
  • the sequence of the detection oligonucleotide to be bound to BSA was as follows.
  • test strip for use in nucleic acid chromatography Using a BioDot XYXZ300 coater, 1.1 ⁇ g / test of BSA-conjugated detection oligonucleotide on an Advanced Microdevice nitrocellulose membrane (1 test is a 1 mm x 5 mm wide line) The detection oligonucleotide was immobilized on the test line on the membrane via BSA by drying at room temperature overnight.
  • the membrane on which the detection oligonucleotide was immobilized was immersed in 0.1 M phosphate buffer (pH 6.0) supplemented with 2% BSA at 4 ° C. overnight for blocking. Thereafter, the membrane was sufficiently dried at room temperature.
  • a sample pad manufactured by Advanced Microdevice, a water absorbing pad, and a conjugate pad manufactured by Nippon Pole Co., Ltd. were bonded to the dried membrane on which the detection oligonucleotide was immobilized.
  • the bonded sheet was cut into a width of 5 mm using a BioDot guillotine cutter to obtain a test strip used for nucleic acid chromatography (FIG. 5-1). Test strips were prepared for each bacterium using the BSA binding detection oligonucleotide prepared for each bacterium in the above.
  • SEA1 5'-TAAATATCGATTCTGCACATATTTTA-3 '[SEQ ID NO: 33]
  • SEA2 5'-CATTGCGAGTGAATTTACTG-3 '[SEQ ID NO: 34]
  • SEB1 5'-GTGATTACATTGACAATTGTTTC-3 '[SEQ ID NO: 35]
  • SEB2 5'-CAAATGGTTTCAACAAATTAATG-3 '[SEQ ID NO: 36]
  • PAA1 5'-AGCCTAGTCCAGCGGG-3 '[SEQ ID NO: 37]
  • PAA2 5'-TTGTCATTACGGGGCGT-3 '[SEQ ID NO: 38]
  • PAB1 5'- GACCTCAGGCCGTTAACAT -3 '[SEQ ID NO: 39]
  • PAB2 5'-CGTGCATCGGGCTGTG-3 '[SEQ ID NO: 40]
  • ⁇ ET nucleic acid detection (ETA1): 5′-GGTCAACACCCCACAGGA-3 ′ [SEQ ID NO: 49]
  • ETA2 5'-AAATCATTCAAAAGAATGCTGAAC-3 '[SEQ ID NO: 50]
  • -For ET nucleic acid detection (ETB1): 5'-TGGCGGTATGGATGGG-3 '[SEQ ID NO: 51]
  • -For ET nucleic acid detection EB2: 5'-TGCTGCATACGCTCTCTGA-3 '[SEQ ID NO: 52]
  • KP nucleic acid detection (KPA1): 5'-CGCGGCCCTTTTTT-3 '[SEQ ID NO: 53]
  • KP nucleic acid (KPA2): 5'-ATATTGCCATTGTTTATTTTTC-3 '[SEQ ID NO: 54]
  • KPB1 5'-CTATTTTTAGCAGCTTGTTCAA-3 '[SEQ ID NO: 55]
  • KP nucleic acid detection (KPB2): 5'-CTCATTTACCAGGAATAATCTTAC -3 '[SEQ ID NO: 56]
  • nucleic acid chromatography development buffer 28.6% Formamide, 1.43 ⁇ SSC, 0.143 49 ⁇ L of% BSA, 1.43 mM EDTA, 0.143% Dextran Sulfate
  • 10 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution, and the entire amount was dropped onto the sample pad (FIG. 5-1) of the membrane (test strip).
  • nucleic acid chromatography was similarly performed without using mask oligonucleotide.
  • FIG. 6 shows the results of agarose gel electrophoresis detection of PCR products using the respective genomic DNA of each bacterium as a template. As a result, it was shown by PCR that the target genomic DNA was amplified for each bacterium.
  • FIG. 7 shows the result of nucleic acid chromatography of genomic DNA amplified by PCR of each bacterium. As a result, the color development sensitivity was significantly increased by using the mask oligonucleotide.
  • E. coli Esscherichia coli, hereinafter abbreviated as “EC”; strain JCM1649) and Enterobacter cloacae (hereinafter abbreviated as “ET”; strain JCM1232) were mixed in 5 mL of BHI liquid medium (Becton Dickinson). Cultured overnight.
  • Bgl II (Takara Bio) was used as the restriction enzyme for the bacterial genome DAN .
  • Bacterial genomic DNA fragments that were dissolved in TE and treated with restriction enzymes were obtained.
  • test strip for use in nucleic acid chromatography Using a BioDot XYXZ300 coater, 1.1 ⁇ g / test of BSA-conjugated detection oligonucleotide on an Advanced Microdevice nitrocellulose membrane (1 test is a 1 mm x 5 mm wide line) The detection oligonucleotide was immobilized on the test line on the membrane via BSA by drying at room temperature overnight.
  • mask oligonucleotides A pair of mask oligonucleotides that hybridize to each of the 5 'and 3' regions located across the region on the bacterial genomic DNA nucleic acid to which the capture oligonucleotide prepared above hybridizes Each was prepared. Similarly, for each bacterium, a pair of mask oligonucleotides that hybridize to the 5′-side and 3′-side regions located across the region on the bacterial genomic nucleic acid to which the detection oligonucleotide prepared above hybridizes, for each bacterium. Prepared. The sequence of the prepared mask oligonucleotide was as follows.
  • ET nucleic acid detection (ETA3): 5'-ACCAGTGGGGAGATCACG -3 '[SEQ ID NO: 59] -ET nucleic acid detection (ETA4): 5'- GATAAACTCGTTACCGGTCA-3 '[SEQ ID NO: 60] ⁇ ET nucleic acid detection (ETB3): 5'-AGAACAGCCTGCAGGAGA-3 '[SEQ ID NO: 61] ⁇ ET nucleic acid detection (ETB4): 5'-AACTACGTATGGCTGAGCC-3 '[SEQ ID NO: 62]
  • nucleic acid chromatography development buffer 28.6% Formamide, 1.43 49 ⁇ L of ⁇ SSC, 0.143% BSA, 1.43 mM EDTA, 0.143% Dextran Sulfate
  • 10 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution, and the entire amount was dropped onto the sample pad (FIG. 5-1) of the membrane (test strip).
  • nucleic acid chromatography was similarly performed without using mask oligonucleotide.
  • Results The results of nucleic acid chromatography of bacterial genomic DNA fragments treated with restriction enzymes are shown in FIG. As a result, even when the nucleic acid to be detected was bacterial genomic DNA (not a PCR product), the target nucleic acid was detected with high sensitivity by using the mask oligonucleotide.
  • Campylobacter jejuni (strain ATCC700819), Campylobacter jejuni (strain 81-176), Campylobacter coli (strain ATCC33559), Campylobacter coli (strain ATCC43478), Campylobacter fetus (strain) ATCC27374), Campylobacter fetus (strain ATCC19438), Campylobacter hyointestinalis (strain ATCC35217), Campylobacter lari (strain ATCC43675) and Campylobacter upsaliensis (strain ATCC43956 strain) were cultured at 37 ° C.
  • TAKARA Ex Taq DNA Polymerase was used for nucleic acid amplification PCR by multiplex PCR .
  • Ex Taq DNA Polymerase (2.5 U / ⁇ L) 0.2 ⁇ L, 10 ⁇ Ex Taq Buffer 4 ⁇ L, dNTP Mixture (2.5 mM each) 3.2 ⁇ L, template genomic DNA 1 ⁇ L, and the following three bacterial species (Campylobacter jejuni, A pair of oligonucleotide primers specific for the cdtC gene in each template genomic DNA of Campylobacter coli and Campylobacter fetus (10 pmol / ⁇ L, 2 ⁇ L each, 12 ⁇ L in total) was made up to 40 ⁇ L with sterile water.
  • CjcdtCU1 and CjcdtCR2 shown below were used as PCR primers for Campylobacter jejuni.
  • -CjcdtCU1 5'-TTTAGCCTTTGCAACTCCTA-3 '[SEQ ID NO: 63]
  • -CjcdtCR2 5'- AAGGGGTAGCAGCTGTTAA-3 '[SEQ ID NO: 64]
  • CccdtCU1 and CccdtCR1 shown below were used as primers for Campylobacter coli.
  • -CccdtCU1 5'-TAGGGATATGCACGCAAAAG-3 '[SEQ ID NO: 65]
  • -CccdtCR1 5'- GCTTAATACAGTTACGATAG -3 '[SEQ ID NO: 66]
  • the following CfcdtCU2 and CfcdtCR1 were used as primers for Campylobacter fetus.
  • -CfcdtCU2 5'- AAGCATAAGTTTTGCAAACG-3 '[SEQ ID NO: 67]
  • -CfcdtCR1 5'-GTTTGGATTTTCAAATGTTCC-3 '[SEQ ID NO: 68]
  • PCR products amplified by multiplex PCR were analyzed by 2% agarose (Agarose I, AMRESCO), 1 ⁇ TAE buffer [40 mM Tris] by agarose gel electrophoresis using mupid (advance). -HCl (pH 8.0), 40 mM Acetic acid, 1.0 mM EDTA]. After electrophoresis, it was stained with a 1 ⁇ g / mL ethidium bromide solution, and the stained DNA was photographed under ultraviolet light (260 nm) using a gel documentation analysis system ChemiDoc XRS (Bio-Rad Laboratories, Inc.). .
  • Gold colloidal particle labeled oligonucleotide used in detection of each bacterial genomic DNA by nucleic acid chromatography was prepared in the same manner as in Example 2.
  • the sequence of the capture oligonucleotide for detection of each bacterium was as follows.
  • Cj nucleic acid detection (Cj-SH): 5'-CCTTGCACCCTAGATCCTAT-3 '[SEQ ID NO: 69]
  • Cc nucleic acid detection (Cc-SH): 5'-TCCTGACTCTAGTATCGCCA-3 '[SEQ ID NO: 70]
  • Cf nucleic acid detection (Cf-SH): 5'-TCAGATCGCTCCTAGCGGAT-3 '[SEQ ID NO: 71]
  • SATA N-succinimidyl-S-acetylthioacetate
  • BSA Bovine-Serum-Albumin
  • Sulfhydryl Addition Kit Thermo scientific. Specifically, 16 ⁇ L of a 17.3 ⁇ M SATA solution was added to 1 ⁇ mL of PBS (Phosphate buffered saline) in which 2 mg of BSA was dissolved, and reacted at room temperature for 30 minutes. Next, 100 ⁇ L of Conjugation Buffer Stock (10 ⁇ X) in which 5 mg of Hydroxylamine ⁇ HCl was dissolved was added and reacted at room temperature for 2 hours. Thereafter, the solvent was changed to Maleimide Conjugation Buffer. The amount of SH group-introduced BSA was determined from the absorbance at 280 nm of the collected eluate and used for the next reaction.
  • the maleimide group-introduced oligonucleotide prepared above and SH group-introduced BSA were mixed and reacted at 37 ° C. for 1 hour to prepare a BSA-binding detection oligonucleotide.
  • the BSA-binding detection oligonucleotide was concentrated using Amicon Ultra 30K (Millipore), and the amount was measured using Quick Start Bradford 1 X Dye Reagent (Bio-Rad).
  • the sequences of detection oligonucleotides for detection of each bacterium were as follows. ⁇ For Cj nucleic acid detection (Cj-NH): 5'-AGCGCCTTTAGGGATACCTC -3 '[SEQ ID NO: 72] -Cc nucleic acid detection (Cc-NH): 5'-TAAGCCCTAGGGGCGATGAT-3 '[SEQ ID NO: 73] ⁇ For Cf nucleic acid detection (Cf-NH): 5'-ACGCAATGCAAACACCGGAA-3 '[SEQ ID NO: 74]
  • the sequence of the prepared mask oligonucleotide was as follows.
  • Cjf1 5'- GCTTAGAAACGGGAATTTTTTTA-3 '[SEQ ID NO: 75]
  • Cj nucleic acid detection (Cjf2) 5'-AAAAGATCCTATTGATCAAAATTGG-3 '[SEQ ID NO: 76]
  • Cj nucleic acid detection (Cjg1) 5'-AAACGCTTTGGAATAGCC-3 '[SEQ ID NO: 77]
  • Cc nucleic acid detection (Ccf1): 5'- GCCTTTTGGCTATGTTCAGTTTA -3 '[SEQ ID NO: 79]
  • Cc nucleic acid detection (Ccf2): 5'-ATATGCCTAGCTGTTTTAAGTGAA-3 '[SEQ ID NO: 80]
  • -Cc nucleic acid detection (Ccg1): 5'-CAATCAATGCATGAGCACTTT-3 '[SEQ ID NO: 81]
  • Cc nucleic acid detection (Ccg2): 5'- TAGAAAATCGCTTTGGTTTAGG-3 '[SEQ ID NO: 82]
  • Cf nucleic acid detection (Cff1): 5'- CATAACCGACGCTTTTCAAAT-3 '[SEQ ID NO: 83]
  • Cf nucleic acid detection (Cff2): 5'- TTCCTATAAATATAAAGCGATTTTCAG-3 '[SEQ ID NO: 84]
  • Cf nucleic acid detection (Cfg1): 5'-CCGACGTAAAAATGTGCCT-3 '[SEQ ID NO: 85]
  • Cf nucleic acid detection (Cfg2): 5'-TTTTTAGCACTAAAAAACTGCAAG-3 '[SEQ ID NO: 86]
  • test strip used for nucleic acid chromatography A Hi Flow Plus 180 Membrane Card (Millipore), which is a nitrocellulose membrane equipped with Cellulose Fiber Sample Pad (Millipore) as an absorption pad, was cut to a width of about 5 mm. Spot 1 mg / mL of the BSA-conjugated detection oligonucleotide prepared above on a portion of the nitrocellulose (test line), air-dry, immobilize the detection oligonucleotide via BSA, A membrane (test strip) for nucleic acid chromatography was prepared (FIG. 5-1).
  • 1 ⁇ L of 4 ⁇ M mask oligonucleotide is added to 10 ⁇ L of the PCR product solution of genomic nucleic acid derived from each bacterium prepared above by multiplex PCR, and the nucleic acid chromatography development buffer (28.6% Formamide, 1.43 49 ⁇ L of SSC, 0.143% BSA, 1.43 mm EDTA, 0.143% Dextran Sulfate) was added, treated at 95 ° C. for 5 minutes, and then rapidly cooled at 4 ° C. Thereafter, 10 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution, and the entire amount was dropped onto the sample pad (FIG. 5-1) of the membrane (test strip).
  • the nucleic acid chromatography development buffer 28.6% Formamide, 1.43 49 ⁇ L of SSC, 0.143% BSA, 1.43 mm EDTA, 0.143% Dextran Sulfate
  • FIG. 9 shows the results of agarose gel electrophoresis detection of PCR products by multiplex PCR using C. jejuni, C. coli and C. fetus cdtC genes as templates. As a result, it was shown by multiplex PCR that the target cdtC gene was amplified for each of the three bacterial species. On the other hand, amplification bands were not detected in other related species of Campylobacter and E. coli. The PCR product for each bacterium was subjected to the nucleic acid chromatography for C. jejuni, the nucleic acid chromatography for C. coli and the nucleic acid chromatography for C. fetus prepared above. Detected (FIG. 10).
  • PCR template DNA for EC was prepared in the same manner as in Example 1. 2.
  • TAKARA Takara LA Taq was used for nucleic acid amplification PCR by PCR.
  • Takara LA Taq (5 U / ⁇ L) 0.2 ⁇ L, 10 ⁇ LA PCR Buffer II (Mg 2+ free) 2 ⁇ L, 25 mM MgCl 2 2 ⁇ L, dNTP Mixture (2.5 mM each) 1.6 ⁇ L, template DNA 1 ⁇ L, And 0.4 ⁇ L each of a pair of oligonucleotide primers (10 pmol / ⁇ L) was diluted to 20 ⁇ L with sterile water.
  • EC2F and EC2R shown below were used as PCR primers for EC.
  • PCR was performed using Veriti 96-well Thermal Cycler (Applied Biosystems), held at 94 ° C for 3 minutes, then repeated for 40 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 60 ° C for 1 minute, and 72 ° C for 1 minute at 72 ° C. The reaction was performed under the condition of holding for 5 minutes.
  • control test two nucleic acid sequences that are not included in the nucleic acid sequence of the PCR product amplified by PCR using the pair of oligonucleotide primers (EC2F and EC2R) for EC gene amplification prepared above.
  • Control oligonucleotides (CT7, CT8) were prepared.
  • the sequence of the prepared detection oligonucleotide mask oligonucleotide was as follows. -ECC3: 5'-CAACCAGTTGATGATGGATC-3 '[SEQ ID NO: 91] -ECC4: 5'-GCCACTCTCTCTGCCAGC-3 '[SEQ ID NO: 92] CT7: 5'-CGTGAAGATTTTCCATGACC -3 '[SEQ ID NO: 93] CT8: 5'-CATAAACCCGAGGAATAACG-3 '[SEQ ID NO: 94]
  • test strip used for nucleic acid chromatography was prepared in the same manner as in Example 1.
  • 1 ⁇ L of 4 ⁇ M mask oligonucleotide is added to 10 ⁇ L of the genomic nucleic acid PCR product solution derived from each bacterium prepared above, and a nucleic acid chromatography development buffer (20% Formamide, 1 ⁇ SSC, 0.1 % BSA, 1 mM EDTA) was added, treated at 95 ° C for 5 minutes, and then rapidly cooled at 4 ° C. Thereafter, 10 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution, and the entire amount was dropped onto the sample pad (FIG. 5-1) of the membrane (test strip). As a control test, nucleic acid chromatography without using mask oligonucleotide was performed.
  • a pair of mask oligonucleotides that hybridize to the 5 ′ side and 3 ′ side regions located across the region on the bacterial-derived PCR product to which the capture oligonucleotide prepared above hybridizes were prepared for each bacterium.
  • the sequence of the prepared mask oligonucleotide for capture oligonucleotide was as follows.
  • a pair of mask oligonucleotides that hybridize to each of the 5 ′ side and 3 ′ side regions across the region on the bacterial-derived PCR product to which the detection oligonucleotide prepared above hybridizes are separated for each bacterium.
  • the sequence of the prepared detection oligonucleotide mask oligonucleotide was as follows.
  • test strip for use in nucleic acid chromatography
  • the test strip was prepared in the same manner as in Example 3.
  • PCR products for nucleic acid amplification SA by PCR were prepared in the same manner as in Example 1.
  • the sequence of the mask oligonucleotide adjacent to the prepared detection oligonucleotide without a one-base gap was as follows.
  • SAA1 5'-CAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTTCTAAT-3 '[SEQ ID NO: 29]
  • SAA2 5'-ACTTGTAGAGACACCCGTTAATACT-3 '[SEQ ID NO: 30]
  • the sequence of the mask oligonucleotide 5 mer away from the prepared detection oligonucleotide was as follows.
  • -SAA3 5'- AAACAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTT -3 '[SEQ ID NO: 99]
  • SAA4 5'-TAGAGACACCCGTTAATACTAAATG-3 '[SEQ ID NO: 100]
  • the sequence of the mask oligonucleotide 10 mer away from the prepared detection oligonucleotide was as follows.
  • -SAA5 5'-TCTTCTAAAACAGTAATATAATAGTCTTTATCTAC-3 '[SEQ ID NO: 101]
  • SAA6 5'-ACACCCGTTAATACTAAATGATT-3 '[SEQ ID NO: 102]
  • test strip used for nucleic acid chromatography was prepared in the same manner as in Example 1.
  • Detection of nucleic acid by nucleic acid chromatography Prepared in the same manner as in Example 1.
  • the color intensity was measured using an immunochromatography reader (C10066-10, Hamamatsu Photonics).
  • a calibration curve was prepared with the PCR product concentration on the X-axis and the color intensity on the Y-axis as indicators, with adjacent mask oligonucleotides added.
  • a group to which mask oligonucleotides 5 mer or 10 mer apart using a constant concentration of PCR product were added, and as a control test, color intensity in nucleic acid chromatography without using mask oligonucleotides.
  • Results A calibration curve at the time of addition of the adjacent mask oligonucleotide is shown in FIG. As shown in the figure, the color intensity increased in a concentration-dependent manner, suggesting that quantification is possible. Table 2 shows a comparative study of the color intensity when each mask oligonucleotide is added.
  • the adjacent mask oligonucleotide had the highest color intensity, the same color intensity was obtained even when the mask oligonucleotide 5 mer away from the capture and detection oligonucleotides was added.
  • the color intensity was lower than when the adjacent mask oligonucleotide was added, but the color intensity was higher than when no mask oligonucleotide was added.
  • BSA-binding detection oligonucleotide Prepared in the same manner as in Example 3. The sequence of the detection oligonucleotide was as follows. -For SA nucleic acid detection (SAA): 5'-GCCGTGCTCAATACAGCTCC-3 '[SEQ ID NO: 23] -SE nucleic acid detection (SEA): 5'-GGACATGATATGGGGGGCAT-3 '[SEQ ID NO: 24]
  • conjugate pad The mask oligonucleotide was diluted to 4 ⁇ M with 2 mM phosphate buffer (pH 7.2) containing 5.0% sucrose. The solution was applied to glass fiber (Millipore) cut to a size of 10 mm ⁇ 150 mm, and then dried to obtain a conjugate pad. As a control, a dried conjugate pad was prepared by applying 2 mM phosphate buffer (pH 7.2) containing 5.0% sucrose without mask oligonucleotide. The sequence of the prepared mask oligonucleotide was as follows.
  • test strips for use in nucleic acid chromatography
  • Hi Flow Plus 180 Membrane Card (Millipore), a nitrocellulose membrane equipped with Cellulose Fiber Sample Pad (Millipore) as an absorption pad. (Millipore) was bonded and cut to a width of about 5 mm.
  • 1 ⁇ L of the 1 mg / mL BSA-binding detection oligonucleotide prepared above is spot-dried, air-dried, the detection oligonucleotide is immobilized via BSA, and a membrane (test strip) for nucleic acid chromatography is used. Produced.
  • nucleic acid chromatography Add 1 ⁇ L of 4 ⁇ M mask oligonucleotide or TE to 10 ⁇ L of the PCR product or TE solution prepared above, and use a nucleic acid chromatography development buffer (28.6% Formamide, 1.43 ⁇ SSC). , 0.143% BSA, 1.43 mM EDTA) was added, treated at 95 ° C for 5 minutes, and then rapidly cooled at 4 ° C. Thereafter, 10 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution, and the entire amount was dropped onto the sample pad of the membrane (test strip).
  • Genomic DNA containing human ⁇ -globin gene was prepared from human blood using QIAamp DNA Blood Midi Kit (QIAGEN).
  • template genomic DNA was prepared from Escherichia coli (hereinafter referred to as EC) using the Boyle method.
  • Escherichia coli (hereinafter abbreviated as “EC”; strain JCM1649) was cultured overnight in 3 mL of LB liquid medium (Becton Dickinson), and then 50 ⁇ L of the test bacterial solution was added to TE buffer [10 mM Tris- HCl (pH 8.0), 1 mM Ethylenediamine tetraacetic acid (EDTA)] was added to 450 ⁇ L and treated at 100 ° C. for 10 minutes. After the treatment at 100 ° C., it was centrifuged at 12,000 ⁇ g (MX-160, TOMY) for 10 minutes, and the supernatant was collected and obtained as template DNA.
  • TE buffer 10 mM Tris- HCl (pH 8.0), 1 mM Ethylenediamine tetraacetic acid (EDTA)
  • GM1F 5'-GGTTGGCCAATCTACTCCCAGG-3 '[SEQ ID NO: 103]
  • GM1R 5'-FITC-TGGTCTCCTTAAACCTGTCTTG-3 '[SEQ ID NO: 104]
  • PCR was carried out using Veriti Thermal Cycler (Applied Biosystems), held at 94 ° C for 3 minutes, then repeated 35 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 55 ° C for 1 minute, 72 ° C for 1 minute, 72 ° C for 5 minutes The reaction was carried out under the conditions of holding.
  • EC2F 5'-FITC-GTCAGGTAAGGCTAATTTCATTACCAGCAAAGG-3 '[SEQ ID NO: 105]
  • EC2R 5'-CGGTCAGCCATAGGGTAAATGACCAC-3 '[SEQ ID NO: 106]
  • PCR was carried out using Veriti Thermal Cycler (AppliedsBiosystems), held at 94 °C for 3 minutes, then repeated 40 cycles of reaction at 98 °C for 10 seconds and 68 °C for 1 minute and 30 seconds, and maintained at 68 °C for 5 minutes. Reacted.
  • PCR product is purified using the QIAquick PCR Purification Kit (QIAGEN) and then 2% agarose (Agarose I, AMRESCO) by agarose gel electrophoresis using mupid (advance). Separated using 1 ⁇ TAE buffer. After electrophoresis, it was stained with a 1 ⁇ g / mL ethidium bromide solution, and the stained DNA was photographed under ultraviolet light (260 nm) using a gel documentation analysis system ChemiDoc XRS (Bio-Rad Laboratories, Inc.). .
  • a nucleic acid sequence not included in the nucleic acid sequence of the PCR product amplified by PCR using the pair of oligonucleotide primers (GM1F and GM1R) for amplification of the human ⁇ -globin gene prepared above is used.
  • Two control oligonucleotides (CT5, CT6) were prepared.
  • GMA1 5'-AGCAACCTCAAACAGACACC-3 '[SEQ ID NO: 108]
  • GMA2 5'-GGAGAAGTCTGCCGTTACTG-3 '[SEQ ID NO: 109]
  • CT5 5'-GGTCAGCCATAGGGTAAATGAC-3 '[SEQ ID NO: 110]
  • CT6 5'-TTATGATGTCAGAGGTCATGG-3 '[SEQ ID NO: 111]
  • Results The results of detection of each PCR product by agarose gel electrophoresis are shown in FIG. PCR using primers for amplification of the human ⁇ -globin gene detected the desired 262 bp PCR product.
  • the target PCR product of 309 bp was also detected by PCR using primers for amplification of EC genomic DNA.
  • the results of detection of each PCR product by hybridization-ELISA are shown in Table 3 below.
  • the absorbance of the PCR product of the human ⁇ -globin gene was 0.473 ⁇ 0.036, whereas by adding the mask oligonucleotide when denaturing the PCR product, the absorbance was about 1.5. Doubled to 0.739 ⁇ 0.037.
  • the absorbance is low. showed that.
  • the absorbance in the assay added with control oligonucleotides (CT5, CT6) having a nucleic acid sequence not included in the nucleic acid sequence of the human ⁇ -globin gene PCR product is the absorbance in the assay performed without adding the mask oligonucleotide.
  • CT5, CT6 control oligonucleotides having a nucleic acid sequence not included in the nucleic acid sequence of the human ⁇ -globin gene PCR product
  • Bacteroides fragilis (strain JCM 11019) cultured at 37 ° C under anaerobic condition on BHI agar medium; Bacteroides thetaiotaomicron (strain JCM 5827); Bacteroides vulgatus (strain JCM 5826); Porphyromonas asaccharolytica (strain JCM 6326); Porphyromonas gingivalis (strain JCM 8525); Prevotella intermedia (strain JCM 12248); Fusobacterium necrophorum subsp funduliforme (strain JCM 3724); Lactobacillus acidophilus (strain JCM 1132); Lactobacillus fermentum (strain JCM 1173); Clostridium difficile (strain JCM 1296); Clostridium perfringens (strain JCM 1290); Peptoniphilus asaccharolyticus (strain JCM 1765); Eggerthella lenta (strain JCM 9979); and Pro
  • PrimeSTAR HS DNA Polymerase for nucleic acid amplification PCR by PCR, PrimeSTAR HS DNA Polymerase from TAKARA was used. First, PrimeSTAR HS DNA Polymerase (2.5 U / ⁇ L) 0.2 ⁇ L, 5 ⁇ PrimeSTAR Buffer (Mg 2+ plus) 4 ⁇ L, dNTP Mixture (2.5 mM each) 1.6 ⁇ L, template DNA 0.1 ng, a pair of oligonucleotide primers (10 pmol) / ⁇ L) Each 0.4 ⁇ L was diluted to 20 ⁇ L with sterile water. The following PCR primers were prepared and used.
  • PCR reaction was performed according to “Rapid identification of microorganisms by gene analysis” (Japanese Pharmacopoeia reference information). PCR was carried out using Veriti Thermal Cycler (Applied Biosystems), held at 94 ° C for 1 minute, then repeated 30 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 55 ° C for 1 minute, 72 ° C for 1 minute, and 5 hours at 72 ° C. The reaction was carried out under conditions of holding for 1 minute.
  • test strip used for nucleic acid chromatography The test strip was prepared in the same manner as in Example 3. In the above, the BSA binding detection oligonucleotide was immobilized on a membrane, cut to 5 mm width, and used as a test strip for nucleic acid chromatography (FIG. 5-1).
  • nucleic acid chromatography development buffer (24% Formamide, 1 ⁇ SSC, 0.1% BSA, 1 mM EDTA, 0.5 M guanidine hydrochloride) was added to 30 ⁇ L and TE to a total volume of 70 ⁇ L, treated at 95 ° C. for 5 minutes, and then rapidly cooled at 4 ° C. Thereafter, 5 ⁇ L of the colloidal gold particle-labeled capture oligonucleotide prepared above was added to the solution. The test strip was immersed in this solution and subjected to nucleic acid chromatography.
  • Results Table 4 and FIG. 16 show the results of detecting PCR products using the genomic DNA of each bacterium and each fungus as a template by nucleic acid chromatography.
  • the target nucleic acid to be detected (16S subunit of the rRNA gene) was detected with high sensitivity for all the bacteria tested by nucleic acid chromatography using a mask oligonucleotide.
  • the test result was negative about any fungus carried out as a negative control test.
  • PCR Template DNA for PCR was prepared as genomic DNA using ZR Fungal / Bacterial DNA MiniPrep (ZYMO RESARCH). Specifically, 1 mL of the test bacteria obtained by culturing each of the following fungi in 3 mL of YPD liquid medium (Q-Biogene) overnight at 30 ° C for 3 minutes at 6,000 x g, After suspending in ⁇ L of PBS, the precipitate was collected by centrifugation at 6,000 ⁇ g for 3 minutes.
  • ZYMO RESARCH ZR Fungal / Bacterial DNA MiniPrep
  • Candida albicans (abbreviated as “CA”; strain NBRC1385); Candida glabrata (abbreviated as “CG”; strain NBRC0005); Candida krusei (abbreviated as “CK”; strain NBRC0011); Candida parapsilosis (abbreviated as “CP”; strain NBRC1396); Candida tropicalis (abbreviated as “CT”; strain NBRC1400); Candida guilliermondii (abbreviated as “CGu”; strain NBRC0566); Candida kefyr (abbreviated as “CKf”; strain NBRC0586); Candida lusitaniae (abbreviated as “CL”; strain ATCC66035); and Candida metapsilosis (abbreviated as “CM”; strain NBRC0640)
  • Each sample was dissolved by adding 300 ⁇ L of an enzyme reagent (PBS 1 mL containing 5 mg of Zymolyase 20T (SEIKAGAKU)), and then reacted at 37 ° C. for 1 hour.
  • 450 ⁇ L of Lysis Buffer was added and mixed, then transferred to a ZR BashingBead Lysis Tube, mixed for 5 minutes with Vortex, and centrifuged at 10,000 ⁇ g, 4 ° C. for 1 minute. 400 ⁇ L of the supernatant was transferred to a Zymo Spin IV spin filter and centrifuged at 7,000 ⁇ g for 1 minute.
  • PrimeSTAR HS DNA Polymerase for nucleic acid amplification PCR by PCR, PrimeSTAR HS DNA Polymerase from TAKARA was used. First, PrimeSTAR HS DNA Polymerase (2.5 U / ⁇ L) 0.2 ⁇ L, 5 ⁇ PrimeSTAR Buffer (Mg 2+ plus) 4 ⁇ L, dNTP Mixture (2.5 mM each) 1.6 ⁇ L, template DNA 0.1 ng, a pair of oligonucleotide primers (10 pmol) / ⁇ L) Each 0.4 ⁇ L was diluted to 20 ⁇ L with sterile water. The following PCR primers were prepared and used.
  • ITS1F 5'-GTAACAAGGT (T / C) TCCGT-3 '[SEQ ID NO: 119]
  • ITS1R 5'-CGTTCTTCATCGATG-3 '[SEQ ID NO: 120]
  • the PCR reaction was performed according to “Rapid identification of microorganisms by gene analysis” (Japanese Pharmacopoeia reference information). PCR was performed using Veriti Thermal Cycler (Applied Biosystems), held at 94 ° C for 1 minute, then repeated 30 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 55 ° C for 1 minute, 72 ° C for 1 minute, 72 ° C for 5 minutes The reaction was carried out under the conditions of holding.
  • BSA-binding detection oligonucleotide Prepared in the same manner as in Example 1.
  • the sequence of the detection oligonucleotide to be bound to the prepared BSA was as follows.
  • -For CA nucleic acid detection 5'-TTGGCGGTGGGCCCAGCCTG-3 '[SEQ ID NO: 122]
  • -For CG nucleic acid detection 5'-CACACGACTCGACACTTTCT-3 '[SEQ ID NO: 123]
  • -For CT nucleic acid detection 5'-TCTTTGGTGGCGGGAGCAAT-3 '[SEQ ID NO: 126]
  • test strip used for nucleic acid chromatography The test strip was prepared in the same manner as in Example 1. In the above, the BSA-binding detection oligonucleotide prepared for each fungus was immobilized on a membrane, cut to a width of 5 mm, and used as a test strip for nucleic acid chromatography (FIG. 5-1).
  • CA nucleic acid detection 5'-GTAACAAGGT (T / C) TCCG-3 '[SEQ ID NO: 119] (Same sequence as the above-mentioned oligonucleotide ITS1F) -For CA nucleic acid detection (CAA2): 5'-CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC-3 '[SEQ ID NO: 127] ⁇
  • CAA2 5'-CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC-3 '[SEQ ID NO: 127]
  • CA nucleic acid detection 5'-GTTTTTCTTTGAAACAAACTTGCT-3 '[SEQ ID NO: 128]
  • CA nucleic acid detection 5'-CCGCCAGAGGTCTAAACTTAC -3 '[SEQ ID NO: 129]
  • nucleic acid chromatography For the nucleic acid chromatography, the test strip prepared for each fungus was used. In the test line, the detection oligonucleotide prepared above is immobilized via BSA. 1 ⁇ L of 4 ⁇ M mask oligonucleotide is added to 1.25 ⁇ L of the genomic nucleic acid PCR product solution derived from each fungus prepared above, and a nucleic acid chromatography development buffer (20% Formamide, 1 ⁇ SSC, 0.1 % BSA, 1 mM EDTA, 0.5M guanidine hydrochloride) was added to make 30 ⁇ L and TE to a total volume of 65 ⁇ L, treated at 95 ° C.
  • a nucleic acid chromatography development buffer (20% Formamide, 1 ⁇ SSC, 0.1 % BSA, 1 mM EDTA, 0.5M guanidine hydrochloride
  • FIG. 17 shows the results of agarose gel electrophoresis detection of PCR products using the genomic DNA of each fungus as a template
  • FIG. 18 shows the results of nucleic acid chromatography.
  • a method for detecting and quantifying nucleic acid by nucleic acid chromatography using the mask oligonucleotide of the present invention, and a device and kit for use in the method include various eukaryotes, prokaryotes, viruses, bacteria and microorganisms. Any nucleic acid derived from a living organism (for example, a natural nucleic acid, genomic DNA, cDNA, RNA, nucleic acid amplified by PCR, etc.) can be detected and quantified simply and with high sensitivity.
  • the method, device and / or kit of the present invention is used, the presence or absence or degree of infection by bacteria or viruses, such as mammals including humans, host organisms, plants, food or beverages, infection by viruses or bacteria Or simply, in a short time, with high accuracy, the causes of various diseases suspected to be caused by gene mutations (infectious diseases, cancer, metabolic diseases, genetic diseases, etc.) and various genetic characteristics due to genetic diversity It becomes possible to specify with this.

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Abstract

アッセイに供する核酸の1本鎖領域におけるオリゴヌクレオチドプローブがハイブリダイズする領域を挟んで位置する領域にマスクオリゴヌクレオチドをハイブリダイズさせることで、該プローブがハイブリダイズする領域をオープンにし、且つ標的核酸の1本鎖領域を安定な状態に保ち、その上で、斯かる１本鎖領域を有する核酸を、核酸クロマトグラフィーに供することで、目的とする標的核酸を極めて簡便に、且つ高感度で検出、定量することを達成した。

Description

マスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸の検出、定量方法及びそのデバイス
　本発明は、ウイルス、細菌および微生物をはじめとする様々な生物に由来する核酸（例えば、天然の核酸、ゲノムDNA、cDNA、RNA、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR）等で増幅された核酸など）を、簡便且つ高感度で検出、定量する方法、ならびにその方法の実施に用いるデバイスおよびキットに関する。
　ヒトをはじめとする哺乳動物、宿主生物、植物、食品あるいは飲料等の細菌やウイルスによる感染の有無や程度の検査、ウイルスや細菌による感染あるいは遺伝子の変異が原因と疑われる様々な疾患（感染症、癌、代謝性疾患、遺伝病、等）の原因を特定するための検査の方法として、遺伝子検査法は、その特異性ならびに感度の高さの点において非常に有用な方法として用いられてきている。
　この遺伝子検査法は、大きく分けて核酸のハイブリダイゼーションを用いる方法と、核酸のポリメラーゼ連鎖反応（PCR）を用いる方法に大別できる。
　核酸のハイブリダイゼ―ションを用いる方法は、検出すべき標的核酸が２本鎖である場合には、２本鎖核酸を変性させ１本鎖とした後に、検出可能な標識で標識された、標的である１本鎖核酸の一部に相補的なオリゴヌクレオチドプローブをハイブリダイズさせ、当該標識を指標に標的核酸の検出を行う方法である。
　PCRを用いる方法は、検出すべき核酸が２本鎖である場合には、２本鎖核酸を熱により変性させ１本鎖とし、または１本鎖領域を生じさせた後に、１本鎖核酸の一部に相補的な一対のオリゴヌクレオチドプライマーを結合させ、DNAポリメラーゼを用いて核酸を複製する工程を何度も繰り返し、標的である核酸を何倍にも増幅させ、増幅された核酸（PCR産物）を電気泳動により予め予測される大きさのバンドの出現の有無を指標として標的核酸を検出する方法である。
　いずれの方法による場合においても、検出すべき核酸が２本鎖である場合には、２本鎖核酸を変性させ１本鎖とし、または１本鎖領域を生じさせる必要がある。一方、検出すべき核酸がrRNAや既に変性したDNAなどの１本鎖核酸である場合のように既に１本鎖核酸である場合においても、上記方法による検出に際して予め１本鎖とする必要がある。これは、rRNA等の１本鎖核酸は、分子内に存在する相補的ヌクレオチド配列間の水素結合による自己会合により形成される分子内ループなどの二次構造を有しており、オリゴヌクレオチドプローブを結合させるために、変性により分子内ループなどの二次構造を取り除いた１本鎖核酸とする必要があるためである。
　標的核酸を１本鎖とし、または１本鎖領域を生じさせる場合、多くはアルカリまたは熱による変性が行われるが、いずれの方法による場合でも、変性条件を緩和（中和）すると、標的核酸は即座に２本鎖に戻ってしまう。従って、１本鎖とした標的核酸にオリゴヌクレオチドプローブをハイブリダイズさせるため、水素結合等の分子間結合力を弱め２本鎖に会合しにくくし、標的核酸を１本鎖の状態に保つために、高温状態を保ち、あるいは、塩濃度やpHを調節し、あるいはカオトロピックイオン、ホルムアミドなどの変性剤を加える必要がある。
　また、変性条件下からもしくは１本鎖核酸の状態から再構成された２本鎖核酸の中には、分子内に存在する相補的ヌクレオチド配列間の水素結合により形成される分子内ループなどの二次構造を有しているものや、一部で不完全な２本鎖が形成されたものがある。
　また、上述のrRNAなどは、DNAの２本鎖が螺旋構造を採るのと同種の引力に起因する３次構造を形成している。
　これらの二次および三次構造の本質的な部分は、高温、塩の存在、カオトロピックイオン、ホルムアミドなどの変性剤の存在のような変性の条件では消失しにくく、標的核酸がそのような高次構造を有することにより、オリゴヌクレオチドプローブと標的核酸とのハイブリッド形成が抑制され、または妨害される。さらに斯かるハイブリダイゼーションが抑止されることにより、オリゴヌクレオチドプローブが、標的核酸における本来結合すべき標的とする相補的な領域以外の領域に非特異的に結合し、標的１本鎖核酸の標的部分に新たな二次、三次構造が形成される。その結果、標的核酸を正確に検出することができない。
　一方、標的とするrRNAの蛍光標識オリゴヌクレオチドプローブを用いたハイブリダイゼーションアッセイによる検出において、標的であるrRNAにオリゴヌクレオチドプローブが結合する領域に隣接または隔たった領域にヘルパーオリゴヌクレオチドを結合させ、オリゴヌクレオチドプローブが結合する領域が塞がれないようにすることにより、rRNAへのオリゴヌクレオチドプローブの結合の抑止に働く上述のような高次構造の形成、オリゴヌクレオチドプローブの標的rRNAへの非特異的な結合を低減させ、オリゴヌクレオチドプローブの標的rRNAへの特異的な結合が増大すること、ならびにその結果、蛍光標識オリゴヌクレオチドプローブが発する蛍光を指標とした標的rRNAの検出の効果が増大したことが報告されている（特許文献１、非特許文献１、および非特許文献２）。
　次に、PCRを用いる標的核酸の検出法においては、PCR機器を用いた核酸増幅自体は、その操作は特に煩雑なものではなく、また核酸増幅に要する時間も約４時間程度と比較的短時間で可能である。
　しかしながら、PCRにより増幅された核酸（PCR産物）を検出、同定するにはアガロース電気泳動を行った後、EtBr等の蛍光染色および脱色という工程を経て、UVトランスイルミネーターなどの特殊な装置を用いて核酸を検出し、その分子量を測定するという煩雑な処理工程が必要とされる。また、斯かるPCR産物の検出、同定においては、目的とするPCR産物の分子量に近い分子量の非特異的なPCR産物が検出されることがあり、偽陽性の原因となる。さらに、検出すべき標的核酸が野生型の核酸である場合に、試料中の核酸の変異（塩基の挿入や欠損など）が認められる場合、野生型の核酸のPCR産物の予測される分子量とは異なる分子量のPCR産物が検出され、本来陽性として認められるべきPCR産物が非特異的増幅によるPCR産物として認められることにより、偽陰性の原因となる。
　一方、抗原やタンパク質の検出、同定に用いられる抗原抗体反応を利用するラテラルフロー型のイムノクロマトグラフィーを核酸の検出、同定に利用する試みも報告されている。
　このラテラルフロー型のイムノクロマトグラフィーは、ニトロセルロース等を材質とする紐状の膜（メンブレンストリップ）の一端に抗原の捕捉用の標識抗体（キャプチャー抗体）を配置し、そこへ抗原を含む試料を加え、メンブレンストリップ中を展開された抗原とキャプチャー抗体との複合体を、メンブレンの他の一端に固定された検出用の抗体（検出抗体）に結合させ、標識を指標に抗原を検出することを原理とする方法であり、いくつかの変法が知られている（特許文献２、特許文献３）
　１つの試みは、標的核酸配列およびその相補鎖にハイブリダイズし得るよう設計され、それぞれ異なる標識（たとえはビオチン、蛍光色素、ジゴキシゲニン、等）で標識された一対のオリゴヌクレオチドプライマー（例えば、一方のオリゴヌクレオチドプライマーは、反応性成分ペアの一方（例えばビオチン）で標識されており、もう一方のオリゴヌクレオチドプライマーは検出可能な物質（例えば蛍光色素）で標識されている、一対のオリゴヌクレオチドプライマー）を設計し；　該一対のオリゴヌクレオチドプライマーを用いてPCRを行い標的核酸を増幅し、該２種類の異なる標識を有する２本鎖DNA（標的増幅核酸）を得；　その一端に該反応性成分ペアのもう一方（例えばアビジンン）を配置したメンブレンストリップ中に該増幅された標的核酸を展開させ、反応性成分（例えばアビジンン）によって捕捉された標的増幅核酸を、標的核酸が有するもう一方の標識（例えば蛍光色素）を指標に核酸を検出する方法である（特許文献４）。
　他の１つの試みは、２本鎖の核酸を検出する方法であり、検出すべき核酸をPCRに供し、PCRプライマーの工夫により、それぞれの末端に１本鎖のオーバーハングを有する２本鎖の標的核酸を調製し、メンブレンストリップの一端に、標的２本鎖核酸を該末端のオーバーハング部分の核酸を介して捕捉するための標識オリゴヌクレオチドを配置し、そこへ標的２本鎖核酸を加え、メンブレンストリップ中を展開された標識オリゴヌクレオチドと標的２本鎖核酸との結合物を該末端のオーバーハング部分の核酸を介して、メンブレンの他の一端に固定された検出用のオリゴヌクレオチドに結合させ、標識を指標に２本鎖核酸を検出する方法である（特許文献５）。
　さらなる他の１つの試みは、増幅したRNAを検出する方法であり、増幅したRNAを調製し、メンブレンストリップの一端に、標的RNAを捕捉するための標識オリゴヌクレオチドを配置し、そこへ標的RNAを加え、メンブレンストリップ中を展開された標識オリゴヌクレオチドと標的RNAとの結合物を、メンブレンの他の一端に固定された検出用のオリゴヌクレオチドに結合させ、標識を指標に標識RNAを検出する方法である（特許文献６）。
特許第2820749号公報 特許第3197277号公報 特開平10-253632号公報 特許第3001906号公報 国際公開WO 2012/070618号公報 特開平2006-201062号公報
Applied and Environmental Microbiology, Vol.66, No.8, p.3603-3607, 2000 BioTechniques, Vol.36, No.1, p.124-132, 2004
　上述のとおり、ヒトをはじめとする哺乳動物、宿主生物、植物、食品あるいは飲料等の細菌やウイルスによる感染の有無や程度の検査、ウイルスや細菌による感染あるいは遺伝子の変異の検出において、検出すべき標的核酸の一部の領域に相補的なオリゴヌクレオチドプローブを用いるハイブリダイゼーションやオリゴヌクレオチドプライマーを用いるPCRを利用する遺伝子検査法が有用とされているものの、アッセイを実施する間、標的核酸を安定的に１本鎖の状態または１本鎖領域を有した状態に維持しながら、且つ煩雑な操作を伴わずに標的核酸を簡便且つ高感度で検出、定量できる方法は未だ提供されておらず、昨今のパンデミックに対する懸念、食の安全に対するニーズ、ならびに疾患の原因の特定、該疾患の治療および治療方法の開発に対するニーズに応え得る、斯かる検出、定量を可能とする新たな方法の開発、提供が望まれている。
　本発明は、ウイルス、細菌、微生物および遺伝子組み換え植物をはじめとする様々な生物に由来する核酸（例えば、天然の核酸、ゲノムDNA、cDNA、RNA、PCR等で増幅された核酸など）を、極めて簡便で、且つ高感度で検出、定量する方法、ならびにその方法の実施に用いるデバイスおよびキットを提供し、それにより斯かる社会的なニーズを充足することを目的とする。
　本発明者らは上記課題を解決すべく、ウイルス、細菌、微生物および遺伝子組み換え植物をはじめとする様々な生物に由来する核酸を簡便かつ高感度で検出、定量する方法について精力的に研究を行い、アッセイに供する1本鎖領域を有する標的核酸における、オリゴヌクレオチドプローブがハイブリダイズする領域を挟んで位置する領域にマスクオリゴヌクレオチド（後述するオリゴヌクレオチドＭ１'、オリゴヌクレオチドＭ２'、．．．．．．オリゴヌクレオチドＭＸ'）をハイブリダイズさせることで、該プローブがハイブリダイズする領域をオープンにし、且つ標的核酸を安定的に１本鎖の状態または１本鎖領域を保持した状態に保ち、その上で、斯かる１本鎖領域を有する標的核酸を、メンブレン上で展開し、オリゴヌクレオチドプローブで捕捉し、捕捉された標的核酸（本発明においては、該標的核酸が他の１つ以上のオリゴヌクレオチドとハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッドを意味する）が有するまたは生ずる標識を指標に標的核酸を検出、定量するクロマトグラフィー（以下、「核酸クロマトグラフィー」という）またはイムノアッセイに供することで、目的とする標的核酸を極めて簡便に、且つ高感度で検出、定量できることを見出し、本発明を完成した。
　即ち本発明は、具体的には、以下に記載する方法、デバイスおよびキット等に関する。
〔態様１〕
　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を、クロマトグラフィーにより検出または定量する方法：
　（ａ）　領域Ｒ１、それぞれ領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２、領域Ｒ１とは異なる領域Ｒ２、ならびにそれぞれ領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４を含む標的核酸Ｎの１本鎖領域中の、領域Ｍ１、領域Ｍ２、領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ１'、オリゴヌクレオチドＭ２'、オリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（ｂ）　領域Ｒ１への、標識Ｌ１で標識された、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ１'のハイブリダイゼーション；
　（ｃ）　領域Ｒ２への、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ２'または末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'のハイブリダイゼーション；および
　（ｄ）前記（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、標識Ｌ１を指標とする検出または定量；ならびに
　（ｅ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｄ）の事項。
〔態様２〕
　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、以下のいずれかを含む、態様１記載の方法：
　（i）領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（ii）領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（iii）領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション、ならびに領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（iv）領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーション；
　（v）領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;
　（vi）領域Ｍ１および領域Ｍ３の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ３'のハイブリダイゼーション;
　（vii）領域Ｍ１および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;
　（viii）領域Ｍ２および領域Ｍ３の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ２'およびオリゴヌクレオチドＭ３'のハイブリダイゼーション;
　（ix）領域Ｍ２および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ２'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;または
　（x）領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーション、ならびに領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション。
〔態様３〕
　該クロマトグラフィーが、前記（ａ）および（ｂ）、または（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象に基づいて実施される、態様１または２記載の方法。
〔態様４〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、態様３記載の方法：
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'。
〔態様５〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、且つ
　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、態様３記載の方法：
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；ならびに
　（iv）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'。
〔態様６〕
　該クロマトグラフィーが、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象に基づいて実施される、態様１または２記載の方法：
　（i）前記（ａ）および（ｂ）、または（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
〔態様７〕
該デバイスがさらに、
　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
を備える、態様６記載の方法。
〔態様８〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；および
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様９〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１０〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１１〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１２〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；ならびに
　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１３〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；および
　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１４〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１５〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１６〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；および
　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１７〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１８〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様１９〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、ならびに
　（iv）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を適用する、態様６または７記載の方法。
〔態様２０〕
　該アンカーＡが、オリゴヌクレオチド、ビオチン、抗体、蛋白質または糖鎖であり、該アクセプターＡ'が、オリゴヌクレオチド、アビジン、ストレプトアビジン、抗体または蛋白質である、態様１乃至３、５乃至７ならびに１２乃至１９のいずれかに記載の方法。
〔態様２１〕
　該アンカーＡが、ビオチンであり、該アクセプターＡ'が、アビジンまたはストレプトアビジンである、態様２０記載の方法。
〔態様２２〕
　該アクセプターＡ'が抗体である、態様２０記載の方法。
〔態様２３〕
　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、該展開要素が、(i)それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズする該オリゴヌクレオチドＲ２'のそれぞれが固定化された２つ以上の検出ゾーン、または(ii)それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズするそれぞれ異なるアンカーＡをその末端に有するオリゴヌクレオチドＲ２'とそれぞれ結合し得るそれぞれ異なるアクセプターＡ'が固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、態様３乃至２２のいずれかに記載の方法。
〔態様２４〕
　該デバイスがさらに、該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーンを備える、態様６乃至２３のいずれかに記載の方法。
〔態様２５〕
　標識Ｌ１が、金属コロイド粒子、ラテックス粒子、着色リポソームまたは酵素である、態様１乃至２４のいずれかに記載の方法。
〔態様２６〕
　金属コロイド粒子が、金コロイド粒子、白金コロイド粒子、白金-金コロイド粒子、パラジウム粒子、銀コロイド粒子、ロジウムコロイド粒子、ルテニウムコロイド粒子またはイリジウムコロイド粒子である、態様２５記載の方法。
〔態様２７〕
　酵素が、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼまたはβガラクトシダーゼである、態様２５記載の方法。
〔態様２８〕
　該展開要素または該デバイスが、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、態様３乃至２７のいずれかに記載の方法。
〔態様２９〕
　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を、クロマトグラフィーにより検出または定量する方法：
　（ａ）　領域Ｒ１、ならびにそれぞれ領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２を含み、標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎの１本鎖領域中の領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つに対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（ｂ）　領域Ｒ１への、標識Ｌ１で標識された、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ１'のハイブリダイゼーション；および
　（ｃ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、該標識Ｌ２と該標識Ｌ２に結合する物質との結合を介した捕捉、ならびに該標識Ｌ１を指標とする検出または定量；ならびに
　（ｄ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｃ）の事項。
〔態様３０〕
　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーションを含む、態様２９記載の方法。
〔態様３１〕
　該クロマトグラフィーが、前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象に基づいて実施される、態様２９または３０記載の方法。
〔態様３２〕
　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、且つ
　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、態様３１記載の方法：
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'。
〔態様３３〕
　該クロマトグラフィーが、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象に基づいて実施される、態様２９または３０記載の方法：
　（i）前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
〔態様３４〕
該デバイスがさらに、
　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
を備える、態様３３記載の方法。
〔態様３５〕
　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；および
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、態様３３または３４記載の方法。
〔態様３６〕
　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ、
との混合物を適用する、態様３３または３４記載の方法。
〔態様３７〕
　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つが封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
との混合物を適用する、態様３３または３４記載の方法。
〔態様３８〕
　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
との混合物を適用する、態様３３または３４記載の方法。
〔態様３９〕
　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎがそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されており、該展開要素が、該それぞれの標識Ｌ２に結合する異なる物質がそれぞれ固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、態様３１乃至３８のいずれかに記載の方法。
〔態様４０〕
　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を検出または定量する方法：
　（ａ）　領域Ｒ２、ならびにそれぞれ領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４を含み、標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎの１本鎖領域中の領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つに対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
　（ｂ）　領域Ｒ２への、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ２'または末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'のハイブリダイゼーション；および
　（ｃ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、該標識Ｌ２を指標とする検出または定量；ならびに
　（ｄ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｃ）の事項。
〔態様４１〕
　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーションを含む、態様４０記載の方法。
〔態様４２〕
　該検出または定量が、
　（Ａ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象を利用するクロマトグラフィー；または
　（Ｂ）　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　　　　　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　　　　　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を、その表面に該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化された容積を有する固体支持体に適用し、該アンカーＡと該アクセプターＡ'との結合を介して捕捉された前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの検出または定量、により実施される、態様４０または４１記載の方法。
〔態様４３〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、態様４２記載の方法：
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;および
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ。
〔態様４４〕
　該検出または定量が、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象を利用するクロマトグラフィーにより実施される、態様４０または４１記載の方法：
　（i）前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
〔態様４５〕
該デバイスがさらに、
　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
を備える、態様４４記載の方法。
〔態様４６〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様４７〕
　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
との混合物を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様４８〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
　（i）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様４９〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'が封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
との混合物を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様５０〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様５１〕
　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
　該適用ゾーンに、
　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
との混合物を適用する、態様４４または４５記載の方法。
〔態様５２〕
　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合において、それぞれの標的核酸Ｎが同一の標識Ｌ２で標識されており、該展開要素が、それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズするそれぞれ異なるアンカーＡをその末端に有するオリゴヌクレオチドＲ２'とそれぞれ結合し得るそれぞれ異なるアクセプターＡ'が固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、態様４８乃至５１のいずれかに記載の方法。
〔態様５３〕
　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎがそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていることを特徴とする、態様４８乃至５１のいずれかに記載の方法。
〔態様５４〕
　該標識Ｌ２が、ビオチン、蛍光色素、ジゴキシゲニン（DIG）、抗体または酵素である、態様２９乃至５３のいずれかに記載の方法。
〔態様５５〕
　該標識Ｌ２がビオチンであり、且つ該標識Ｌ２に結合する物質がアビジン若しくはストレプトアビジンである、態様５４記載の方法。
〔態様５６〕
　該標識Ｌ２に結合する物質が、抗体または酵素で標識された抗体である、態様２９乃至３８のいずれかに記載の方法。
〔態様５７〕
　該デバイスがさらに、該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーンを備える、態様３３乃至３９ならびに４４乃至５６のいずれかに記載の方法。
〔態様５８〕
　標識Ｌ１が、金属コロイド粒子、ラテックス粒子、着色リポソームまたは酵素である、態様２９乃至３９のいずれかに記載の方法。
〔態様５９〕
　金属コロイド粒子が、金コロイド粒子、白金コロイド粒子、白金-金コロイド粒子、パラジウム粒子、銀コロイド粒子、ロジウムコロイド粒子、ルテニウムコロイド粒子またはイリジウムコロイド粒子である、態様５８記載の方法。
〔態様６０〕
　酵素が、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼまたはβガラクトシダーゼである、態様５８記載の方法。
〔態様６１〕
　該展開要素または該デバイスが、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、態様３１乃至３９ならびに４１乃至６０のいずれかに記載の方法。
〔態様６２〕
　該標的核酸Ｎの１本鎖領域が、２本鎖の核酸を変性して生成される１本鎖領域である、態様１乃至６１のいずれかに記載の方法。
〔態様６３〕
　該標的核酸Ｎが、DNAまたはRNAである、態様１乃至６２のいずれかに記載の方法。
〔態様６４〕
　該標的核酸Ｎが、真核生物、原核生物、細菌若しくはウイルスのゲノムに由来する核酸、該ゲノムを制限酵素で切断されて生ずるゲノム断片に由来する核酸、または人為的に増幅された核酸である、態様１乃至６３のいずれかに記載の方法。
〔態様６５〕
　細菌のゲノム由来の核酸が、以下のいずれかである、態様６４記載の方法：
　１）GenBank Accession No. FR714927で識別される黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、以下SA）のゲノムDNA中の2653499～2662118番目の領域、2656232～2657658番目の領域または2656470～2656799番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む黄色ブドウ球菌のゲノム核酸；
　２）GenBank Accession No. AE015929で識別される表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、以下SE）のゲノムDNA中の384731～393399番目の領域、385337～388504番目の領域または385517～385796番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む表皮ブドウ球菌のゲノム核酸；
　３）GenBank Accession No. CP004061で識別される緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、以下PA）のゲノムDNA中の2386558～2391818番目の領域、2386678～2388735番目の領域または2387395～2387664番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む緑膿菌のゲノム核酸；
　４）GenBank Accession No. HF558530で識別される腸球菌（Enterococcus faecalis、以下EF）のゲノムDNA中の1837695～1841178番目の領域、1838789～1839704番目の領域または1839147～1839386番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む腸球菌のゲノム核酸；
　５）GenBank Accession No. AP012306で識別される大腸菌（Escherichia coli、以下EC）のゲノムDNA中の1286884～1291840番目の領域、1290625～1291839番目の領域または1291152～1291460番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む大腸菌のゲノム核酸；
　６）GenBank Accession No. CP001918で識別されるEnterobacter cloacaeのゲノムDNA中の1566239～1568859番目の領域または1566732～1566956番目の領域の一部または全部の核酸配列を含むEnterobacter cloacaeのゲノム核酸；または
　７）GenBank Accession No. CP003785で識別される肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、以下KP）のゲノムDNA中の4082686～4083937番目の領域、4082686～4083380番目の領域または4082799～4083096番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む肺炎桿菌のゲノム核酸。
〔態様６６〕
　該展開要素を用いるクロマトグラフィーが、少なくとも１つの変性剤若しくはカオトロピック剤、または少なくとも１つの変性剤若しくはカオトロピック剤および少なくとも１つの無機塩を含むバッファー中で実施される、態様１乃至６５のいずれかに記載に方法。
〔態様６７〕
　以下を備える、態様２４乃至２８ならびに５７乃至６６のいずれかに記載の方法に用いるためのデバイス：
　（i）該形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；
　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン；
　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン；および
　（iv）該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーン。
〔態様６８〕
　該展開要素が、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、態様６７記載のデバイス。
　本発明のマスクオリゴヌクレオチド（前記の例示的態様における「オリゴヌクレオチドＭ１'」、「オリゴヌクレオチドＭ２'」、「オリゴヌクレオチドＭ３'」、「オリゴヌクレオチドＭ４'」、．．．．．「オリゴヌクレオチドＭＸ'」）を用いた核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイによる核酸を検出、定量する方法、並びに該方法に用いるためのデバイスおよびキットは、第1に、マスクオリゴヌクレオチドという技術的特徴を採用することで、以下の効果が奏される。
　１）　検出すべき標的核酸中の1本鎖領域におけるオリゴヌクレオチドプローブがハイブリダイズする領域が、アッセイの間中、オープンな状態に保たれる。
　２）　アッセイの間中、標的核酸を安定的に１本鎖の状態または１本鎖領域を保持した状態に保たれる。
　３）　その結果、オリゴヌクレオチドプローブの標的核酸へのハイブリダイゼーションの速度が増大する。
　４）　マスクオリゴヌクレオチドを使用しない場合には、オリゴヌクレオチドプローブが標的核酸にハイブリダイズしないような標的核酸においても、マスクオリゴヌクレオチドを用いるとともに、本発明の核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイを適用することで該標的核酸の検出が可能となる。
　５）　また、通常の核酸ハイブリダイゼーションにおいて、２本鎖核酸を１本鎖の状態または1本鎖領域を保持した状態にするために適用される変性条件（高温、塩濃度、カオトロピックイオンやホルムアミド等の変性剤の存在）のような非生理的条件下ではタンパク質や酵素などは容易に失活することから、核酸ハイブリダイゼーション法を利用した遺伝子検査において用いられる標識物質は、蛍光物質やジゴキシゲニンなどの低分子化合物や、ラジオアイソトープなどに限定されるところ、マスクオリゴヌクレオチドを用いることにより、変性条件を緩和することができることから、これまで利用できなかったタンパク等の標識物質、またはDNAポリメラーゼ等が利用可能となる。
　その上で、本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイによる核酸を検出、定量する方法、並びに該方法に用いるためのデバイスおよびキットは、マスクオリゴヌクレオチドを用いることでオリゴヌクレオチドプロ―ブが結合する領域がオープンな状態となった安定的な１本鎖核酸または1本鎖領域を有する核酸に、核酸クロマトグラフィーという技術的特徴をさらに採用することにより、これまで全く報告されていない、極めて簡便に、短時間で、且つ高感度で標的核酸を検出、定量できるという効果を奏する。
　本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイによる核酸を検出、定量する方法、並びに該方法に用いるためのデバイスおよびキットは、このような有利な効果を奏することから、ウイルス、細菌および微生物をはじめとする様々な生物に由来する任意の核酸（例えば、天然の核酸、ゲノムDNA、cDNA、RNA、PCR等で増幅された核酸など）を簡便、且つ高感度で検出、定量することができる。
　その結果、本発明の方法、デバイスおよび／またはキットを用いれば、ヒトをはじめとする哺乳動物、宿主生物、植物、食品あるいは飲料等の細菌やウイルスによる感染の有無や程度、ウイルスや細菌による感染あるいは遺伝子の変異が原因と疑われる様々な疾患（感染症、癌、代謝性疾患、遺伝病、等）の原因、並びに、遺伝子の多様性による様々な遺伝的特性を簡便且つ短時間で高い精度を以って特定することが可能となる。
本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイに包含される原理を模式的に示す図。 前記に例示した各態様における標的核酸の捕捉と検出の方法の原理を模式的に示す図。　分図（１）および（２）は、前記の態様８～１１ならびに２３（後述の表１に示される態様（ａ）乃至（ｄ）にそれぞれ対応）で例示的に示される方法の原理を示す。　分図（３）は、前記の態様１２～１９ならびに２３（後述の表１に示される態様（ｅ）乃至（ｌ）にそれぞれ対応）で例示的に示される方法の原理を示す。　分図（４）は、前記の態様３５～３９（後述の表１に示される態様（ｍ）乃至（ｐ）にそれぞれ対応）で例示的に示される方法の原理を示す。　分図（５）および（６）は、前記の態様４６および４７（後述の表１に示される態様（ｑ）および（ｒ）にそれぞれ対応）で例示的に示される方法の原理を示す。　分図（７）は、前記の態様４８～５２（後述の表１に示される態様（ｓ）乃至（ｖ）にそれぞれ対応）で例示的に示される方法の原理を示す。 前記に例示した態様８～１１ならびに２３（後述の表１に示される態様（ａ）乃至（ｄ）にそれぞれ対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様１２～１９ならびに２３（後述の表１に示される態様（ｅ）乃至（ｌ）にそれぞれ対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様３５～３９（後述の表１に示される態様（ｍ）乃至（ｐ）にそれぞれ対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様４６および４７（後述の表１に示される態様（ｑ）および（ｒ）にそれぞれ対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様４８乃至５２（後述の表１に示される態様（ｓ）乃至（ｖ）にそれぞれ対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様１１（後述の表１に示される態様（ｄ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様９（後述の表１に示される態様（ｂ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様１９（後述の表１に示される態様（ｌ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様１８（後述の表１に示される態様（ｋ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様３８（後述の表１に示される態様（ｐ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様３６（後述の表１に示される態様（ｎ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様５１（後述の表１に示される態様（ｖ）に対応）に包含される態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様４０（後述の表１に示される態様（ｖ）に対応）に包含されるハイブリダイゼーション-ELISAの態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様２３（試料中に異なる２種類以上の標的核酸が含まれる場合における、後述の表１に示される態様（ｅ）～（ｌ）に対応）に包含されるの態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様３９（試料中に異なる２種類以上の標的核酸が含まれる場合における、後述の表１に示される態様（ｍ）～（ｐ）に対応）に包含されるの態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様５２（試料中に異なる２種類以上の標的核酸が含まれる場合における、後述の表１に示される態様（ｓ）～（ｖ）に対応）に包含されるの態様の原理を模式的に示す図。 前記に例示した態様５３（試料中に異なる２種類以上の標的核酸が含まれる場合における、後述の表１に示される態様（ｓ）～（ｖ）に対応）に包含されるの態様の原理を模式的に示す図。 本発明における核酸クロマトグラフィーを実施するためのシート状の展開要素を含むデバイス、並びに該デバイスが配置されるケース（ハウジング）の一つの例示的な態様を模式的に示す図。 本発明における核酸クロマトグラフィーを実施するためのシート状の展開要素を含むデバイス（標的核酸を検出するためのテストラインとしての検出ゾーンに加え、該デバイスが正常に機能するか否かを確認するための、インターナルコントロール（対照）としての核酸を検出するためのコントロールラインとしての検出ゾーンを併せて備える）、並びに該デバイスが配置されるケース（ハウジング）の一つの例示的な態様を模式的に示す図。 黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、「SA」と略記する；菌株ATCC12600）、表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」と略記する；菌株ATCC14990）、緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」と略記する；菌株JCM5962）、腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」と略記する；菌株JCM5803）、大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する；菌株JCM1649）、Enterobacter cloacae（「ET」と略記する；菌株JCM1232）、および肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」と略記する；菌株JCM 1662）のそれぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を示す図。　図中のＭは分子量マーカーを示し、左側の数値は分子量（bp）を示す。 黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、「SA」と略記する；菌株ATCC12600）、表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」と略記する；菌株ATCC14990）、緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」と略記する；菌株JCM5962）、腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」と略記する；菌株JCM5803）、大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する；菌株JCM1649）、Enterobacter cloacae（「ET」と略記する；菌株JCM1232）、および肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」と略記する；菌株JCM 1662）のそれぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物を、本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーおよびマスクオリゴヌクレオチドを用いない核酸クロマトグラフィーのそれぞれに供した場合の、該PCR産物の検出の結果を示す図。 Enterobacter cloacae（「ET」と略記する；菌株JCM1232）および大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する；菌株JCM1649）のそれぞれのゲノムDNAの制限酵素処理断片を、ETに特異的にハイブリダイズするよう設計した本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーに供した場合の、該ゲノム断片の検出の結果を示す図。 Campylobacter jejuni (菌株ATCC700819)、Campylobacter jejuni (菌株81-176)、Campylobacter coli (菌株ATCC33559）、Campylobacter coli (菌株ATCC43478）、Campylobacter fetus (菌株ATCC27374）、Campylobacter fetus (菌株ATCC19438）、Campylobacter hyointestinalis (菌株ATCC35217）、Campylobacter lari (菌株ATCC43675)およびCampylobacter upsaliensis (菌株ATCC43956株）のそれぞれのゲノムDNAを鋳型としたマルチプレックスPCRによるPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を示す図。 Campylobacter jejuni (菌株ATCC700819)、Campylobacter jejuni (菌株81-176)、Campylobacter coli (菌株ATCC33559）、Campylobacter coli (菌株ATCC43478）、Campylobacter fetus (菌株ATCC27374）、Campylobacter fetus (菌株ATCC19438）、Campylobacter hyointestinalis (菌株ATCC35217）、Campylobacter lari (菌株ATCC43675)、Campylobacter upsaliensis (菌株ATCC43956）およびEscherichia coli（菌株C600）のそれぞれのゲノムDNAを鋳型としたマルチプレックスPCRによるPCR産物を、本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーおよびマスクオリゴヌクレオチドを用いない核酸クロマトグラフィーのそれぞれに供した場合の、該PCR産物の検出の結果を示す図。 本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いる核酸クロマトグラフィーにおける、マスクオリゴヌクレオチドが検出感度に及ぼす効果の比較結果を示す図。 本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いる核酸クロマトグラフィーにおける、マスクオリゴヌクレオチドの使用の態様に応じた検出感度の比較結果を示す図。 本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いる核酸クロマトグラフィーの定量性を示す図。 本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いる核酸クロマトグラフィーにおいて、マスクオリゴヌクレオチドの使用の態様に応じた検出感度の比較結果を示す図。 ヒトβグロビンおよび大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する；菌株JCM1649）のそれぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を示す図。　図中のMは分子量マーカーを示し、左側の数値は分子量（bp）を示している。 各種の細菌のそれぞれの16S rRNAを鋳型とするPCR産物を、本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーに供した場合の、該PCR産物の検出の結果を示す図。 各種のカンジダ（Candida）属菌のそれぞれのゲノムDNAのITS領域を鋳型とするPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を示す図。 各種のカンジダ（Candida）属菌のそれぞれのゲノムDNAのITS領域を鋳型とするPCR産物を、本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーに供した場合の、該PCR産物の検出の結果を示す図。
　本発明は、上述した〔１〕乃至〔６８〕に例示的に記載されるとおりの発明であって、本発明におけるマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーまたはイムノアッセイにより核酸を検出、定量する方法、並びに該方法に用いるためのデバイスおよびキット等を提供する。
　なお、本明細書において引用された全ての先行技術文献は、参照として本明細書に組み入れられる。
　本発明の方法は、上述の図２において模式的に示される標的核酸の捕捉と検出の方法の各原理（１）～（７）を採用することを特徴とし、各態様には、以下の表１に例示的に示される態様が包含される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 　表１に示される態様（ａ）乃至（ｄ）は、前記の態様８～１１（ならびに２３）にそれぞれ対応する。
　表１に示される態様（ｅ）乃至（ｌ）は、前記の態様１２～１９（ならびに２３）にそれぞれ対応する。
　表１に示される態様（ｍ）乃至（ｐ）は、前記の態様３５～３８（ならびに３９）にそれぞれ対応する。
　表１に示される態様（ｑ）および（ｒ）は、前記の態様４６および４７にそれぞれ対応する。
　表１に示される態様（ｓ）乃至（ｖ）は、前記の態様４８～５１（ならびに５２にそれぞれ対応する。
　本発明における「試料」とは、任意の生物（動物、植物、微生物、細菌、等）またはウイルスの生体もしくはその一部（器官、組織、体液、臓器もしくは成分、胎児、種子、卵、卵子もしくは精子、排泄物、またはそれらの一部、等）、それらの処理物、またはそれらのいずれかに由来する後述する「核酸」（ゲノムDNA、cDNA、mRNA、tRNA、rRNA、等）またはその断片を含む任意の調製物（溶液、懸濁液、培養液、培養上清、遠心上清、遠心残渣、等）を意味する。
　なお、上記の任意の生物には、真核生物（例えば、動物、植物、菌類（真菌と同義。例えば、カビ、酵母、キノコ等）、藻類、原生生物（原虫）、等）、原核生物（細菌、古細菌、放線菌、ラン藻、等）、微生物、等が包含される。
　本発明における「動物」は、例えば、脊椎動物（例えば、哺乳類、鳥類、爬虫類、両生類、魚類、無顎類、等）および無脊椎動物を包含するがこれらに限られない。また、該動物には、遺伝子組み換え動物も包含される。
　本発明における「植物」は、例えば、種子植物、シダ植物、コケ植物、ストレプト植物、緑色植物、アーケプラスチダおよびバイコンダを包含するがこれらに限られない。また、該植物には、遺伝子組み換え植物も包含される。
　本発明における「微生物」は、例えば、原核生物（真正細菌（細菌）、古細菌）、藻類、原生生物、菌類、粘菌、真菌、原虫を包含するがこれらに限られない。また、該微生物には、遺伝子組み換え微生物も包含される。
　真菌としては、例えば、カンジダ属菌、アスペルギルス属菌、クリプトコッカス属菌、ムコール属菌、ニューモシスチス属菌、トリコフィートン属菌、トリコスポロン属菌、等を挙げることができるがこれらに限られない。
　原虫類としては、例えば、クリプトスポリジウム、サイクロスポラ、クドア（住肉胞子虫）、アメーバ赤痢、ザルコシスティス、リューシュマニア、トキソプラズマ、トリパノソーマ、等を挙げることができるがこれらに限られない。
　本発明における「細菌」は、例えば、国際細菌命名規約（International Code of Nomenclature of Bacteria）に従って分類される任意の細菌（例えば、グラム陽性菌、グラム陰性菌等の真正細菌）を包含するがこれらに限られない。また、該細菌には、遺伝子組み換え細菌も包含される。
　細菌としては、例えば、スタフィロコッカス属菌、ストレプトコッカス属菌、エシェリヒア属菌、エンテロバクター属菌、ヘモフィリス属菌、クレブシエラ属菌、シュードモナス属菌、カンピロバクター属菌、バクテロイデス属菌、セラチア属菌、アシネトバクター属菌、マイコプラズマ属菌、マイコバクテリウム属菌、クロストリジウム属菌、バシラス属菌、プロテウス属菌、ナイセリア属菌、サルモネラ属菌、シゲラ属菌、ビブリオ属菌、エロモナス属菌、エルシニア属菌、リステリア属菌、クロノバクター属菌、シトロバクター属菌、ブルセラ属菌、パスツレラ属菌、ヘリコバクター属菌、モラクセラ属菌、レジオネラ属菌、トレポネーマ属菌、リケッチア属菌、クラミジア属菌、エンテロコッカス属菌、バークホルデリア属菌、ステノトロフォモナス属菌、エドワードシエラ属菌、ハフニア属菌、クルイベラ属菌、モルガネラ属菌、パントエア属菌、プロビデンシア属菌、コリネバクテリウム属菌、ミクロコッカス属菌、スフィンゴバクテリウム属菌、ブレバンディモナス属菌、アクロモバクター属菌、アルカリゲネス属菌、クロモバクテリウム属菌、ポルフィロモナス属菌、プレボテラ属菌、フソバクテリウム属菌、ラクトバシラス属菌、ペプトニフィラス属菌、エガセラ属菌、プロピオニバクテリウム属菌、カプノシトファーガ属菌、ヘモフィルス属菌、ガードネレラ属菌、等を挙げることができるがこれらに限られない。
　本発明における「ウイルス」は、例えば、国際ウイルス分類委員会（International Committee on Taxonomy of Viruses）により分類される任意のウイルスおよびその変異体を包含するがこれらに限られない。例えば、二本鎖DNAウイルス、一本鎖DNAウイルス、二本鎖RNAウイルス、一本鎖RNA（＋鎖）ウイルス、一本鎖RNA（－鎖）ウイルス、一本鎖RNA（逆転写）ウイルス、または二本鎖DNA（逆転写）ウイルスに分類される任意のウイルスが包含される。また、該ウイルスには、遺伝子組み換えウイルスも包含される。
　ウイルスとしては、例えば、ヒト免疫不全ウイルス、ヒトＴリンパ好性ウイルス、サイトメガロウイルス、ヘルペスウイルス、ＥＢウイルス、インフルエンザウイルス、肝炎ウイルス、ノロウィルス、ロタウィルス、アデノウィルス、アストロウィルス、パピローマウイルス、ＲＳウイルス、ムンプスウイルス、コロナウイルス、ルビウイルス、ＳＡＲＳウイルス、等を挙げることができるがこれらに限られない。
　本発明における「核酸」は、天然の、または人為的に調製した任意の核酸（ゲノムDNA、cDNA、ミトコンドリアDNA（mtDNA）、mRNA、tRNA、rRNA、short interfering （siRNA）、shRNA（short hairpin RNA）、miRNA（micro RNA）、snRNA（small nuclear RNA）、tmRNA（transfer messenger RNA）、等）またはその断片を意味する。
　例えば、標的核酸（即ち、標的核酸Ｎ）が原核生物である細菌由来の核酸の場合には、細菌のrRNA遺伝子中の23S、16Sまたは5Sサブユニットが挙げられる。標的核酸（即ち、標的核酸Ｎ）が真核生物である真菌由来の核酸の場合には、真菌のrRNA遺伝子中の28S、18S、5.8S若しくは5Sサブユニット、またはその周辺のinternal transcribed spacer (ITS）領域、またはintergenic spacer (IGS)領域が挙げられる。
　該核酸は、二本鎖または一本鎖のいずれであってもよく、二本鎖である場合には、後述する「変性」により、一本鎖とすることができる。
　該核酸はまた、自己会合により分子内ループ等を含む、二次または三次構造を有するものも包含される。斯かる高次構造は、後述する「変性」や他の常法に従って解消させることができる。
　該天然の核酸は、前記の生物、細菌またはウイルス等に由来する核酸であって、該生物、細菌またはウイルスの生体もしくはその一部から取得される核酸並びに該取得された核酸に基づき酵素反応（DNAポリメラーゼ、RNAポリメラーゼ、逆転写酵素、等）により人為的に増幅、調製された核酸を包含するがこれらに限定されない。
　該酵素反応による核酸の増幅、調製は、ポリメラーゼ連鎖反応（PCR；polymerase chain reaction）、LAMP（loop-mediated isothermal amplification）、TMA（transcription-mediated amplification）、TRC（transcription-reverse transcription concerned reaction）、LCR（ligase chain reaction）、SDA（standard displacement amplification）、NASBA（nucleic acid sequence-based amplification）等（臨床医学、Vol.36、p.19-24、2007）により行うことができる。
　該人為的に増幅、調製される核酸にはまた、目的に応じて設計された塩基配列に基づきDNA/RNA合成機器を用いて調製される任意の核酸が包含される。
　本願発明においては、前記のPCR、LAMP、TMA、TRC、LCR、SDAあるいはNASBA等の方法により増幅、調製された核酸は、当該方法において任意の条件（各プライマーの濃度、塩濃度、反応時間、反応温度、反応サイクル、等）において増幅、調製された核酸が包含される。例えば、PCRによる核酸の増幅ににおける各プライマーの濃度を例に挙げれば、PCRで使用される一組または２組以上の一対のプライマー（フォワードプライマー、リバースプライマー）において、フォワードプライマーとリバースプライマーの濃度は同一または異なっても良い（非対照PCR）。
　本発明における核酸は任意の大きさ、サイズ、塩基長を有していてもよく、例えば、約50～約100,000bp、約50～約50,000bp、約50-約10,000bp、約50-約5,000bp、約100～約100,000bp、約100～約50,000bp、約100-約10,000bp、約100-約5,000bp、約200～約100,000bp、約200～約50,000bp、約200-約10,000bp、約200-約5,000bp、約300～約100,000bp、約300～約50,000bp、約300-約10,000bp、約300-約5,000bp、約400～約100,000bp、約400～約40,000bp、約400-約10,000bp、約400-約5,000bp、約500～約100,000bp、約500～約50,000bp、約500-約10,000bp、約500-約5,000bp、約600～約100,000bp、約600～約50,000bp、約600-約10,000bp、約600-約5,000bp、約700～約100,000bp、約700～約50,000bp、約700-約10,000bp、約700-約5,000bp、約800～約100,000bp、約800～約50,000bp、約800-約10,000bp、約800-約5,000bp、約900～約100,000bp、約900～約50,000bp、約900-約10,000bp、約900-約5,000bp、
約1,000～約100,000bp、約1,000～約50,000bp、約1,000-約10,000bp、約1,000-約5,000bp、等であり得る。
　該核酸の断片は、前記の如くの天然または人為的に増幅、調製した核酸を、市販の様々な制限酵素（例えば、I型制限酵素、II型制限酵素、等）の１つまたは複数により処理、切断して生成される任意の大きさの核酸を包含する。
　例えば、本発明の方法およびデバイスを用いて、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、「SA」と略記する）、表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」と略記する）、緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」と略記する）、腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」と略記する）、大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する）、Enterobacter cloacae（「ET」と略記する）、および肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」と略記する）のゲノム由来の核酸を検出、定量する場合には、それぞれ、以下のゲノム中の領域の一部または全部を標的とすることができる。
・黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）
　GenBank Accession No. FR714927（最終登録日：2011年11月21日）で識別される黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、「SA」と略記する）のゲノムDNA中の2653499～2662118番目の領域、2656232～2657658番目の領域または2656470～2656799番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」）
　GenBank Accession No. AE015929（最終登録日：2010年3月5日）で識別される表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」と略記する）のゲノムDNA中の384731～393399番目の領域、385337～388504番目の領域または385517～385796番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」）
　GenBank Accession No. CP004061（最終登録日：2013年4月9日）で識別される緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」と略記する）のゲノムDNA中の2386558～2391818番目の領域、2386678～2388735番目の領域または2387395～2387664番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」）
　GenBank Accession No. HF558530（最終登録日：2012年12月3日）で識別される腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」と略記する）のゲノムDNA中の1837695～1841178番目の領域、1838789～1839704番目の領域または1839147～1839386番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・大腸菌（Escherichia coli、「EC」）
　GenBank Accession No. AP012306（最終登録日：2013年3月29日）で識別される大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する）のゲノムDNA中の1286884～1291840番目の領域、1290625～1291839番目の領域または1291152～1291460番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・Enterobacter cloacae（「ET」）
　GenBank Accession No. CP001918（最終登録日：2010年4月23日）で識別されるEnterobacter cloacae（「ET」と略記する）のゲノムDNA中の1566239～1568859番目の領域または1566732～1566956番目の領域の一部または全部の核酸配列。
・肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」）
　GenBank Accession No. CP003785（最終登録日：2013年3月12日）で識別される肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」と略記する）のゲノムDNA中の4082686～4083937番目の領域、4082686～4083380番目の領域または4082799～4083096番目の領域の一部または全部の核酸配列。
　前記の２本鎖の核酸や高次構造を有する核酸は、熱、酸、アルカリ、カオトロピック剤または変性剤により変性（相補的ヌクレオチド鎖の間の水素結合を切断）させることにより１本鎖とし、あるいは一部の高次構造を解消させることができる。例えば、該核酸を、高温（約９０℃以上）、高いpH（アルカリ性；pH約９以上）、低塩濃度、カオトロピックイオン、変性剤の存在、加圧、撹拌、等の条件下に付することにより、変性させ、一本鎖とし、あるいは一部の高次構造を解消させることができる。
　カオトロピック剤としては、例えば、ホルムアミド、尿素、チオ尿素、グアニジン、グアニジン塩酸、グアニジンイソチオシアネート、ヨウ化物イオン、または過塩素酸イオンが挙げられる。
　本発明における「標的核酸」は、本発明の検出、定量の方法または該方法に用いられるデバイスまたはキットにより検出、定量されるべき、試料中に含まれるか、または該試料に由来する核酸を意味し、好ましくは、もともと一本鎖である核酸、または変性の結果生じる１本鎖の核酸若しくは1本鎖領域を有する核酸である。
　該標的核酸には、後述する各種の標識物質で標識された核酸、１つまたは複数のオリゴヌクレオチドプローブおよび／または１つまたは複数のマスクオリゴヌクレオチド（前記の本発明の例示的な態様ならびに後述の「オリゴヌクレオチドＭ１'」、「オリゴヌクレオチドＭ２'」、「オリゴヌクレオチドＭ３'」、「オリゴヌクレオチドＭ４'」、．．．．．．「オリゴヌクレオチドＭＸ'」）がハイブリダイズした後の標的核酸も包含される。
　本発明においては、このような、標的核酸に１つ以上のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズして形成された核酸を、「核酸ハイブリッド」と称する。
　該１本鎖の標的核酸は、本発明の検出、定量の過程において、該オリゴヌクレオチドプローブおよび／または該マスクオリゴヌクレオチドとの結合の後に、相補的な核酸とアニールすることにより再び２本鎖となる場合があるが、斯かる態様も本願発明の１つの態様に包含される。
　本発明においては、後述する本発明の核酸クロマトグラフィーに含まれる、標的核酸の1本鎖領域への、１つまたは複数のオリゴヌクレオチドプローブおよび／または１つまたは複数のマスクオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションを、後述する核酸または核酸ハイブリッドを展開要素中で展開させるためのバッファー中に少なくとも１つの前記の変性剤またはカオトロピック剤を存在させることにより調節することができる。該バッファー中には、さらに核酸のハイブリダイゼーションにおいて通常使用される少なくとも１つの無機塩を存在させることができる。
　即ち、斯かるハイブリダイゼーションの工程において、前記の変性剤またはカオトロピック剤を存在させることにより、標的核酸と各種のオリゴヌクレオチドとの非特異的反応による結合を低減し、特異的反応を促進することにより分解能を高め、検出下限を低下させることにより、標的核酸の検出、定量の感度、正確性および迅速性を増大させることができる。
　該バッファー中には、例えば、10-40%、より好ましくは15-30%、さらに好ましくは20-25%のホルムアミド、1-7M、より好ましくは1-4M、さらに好ましくは2.5-4Mの尿素若しくはチオ尿素、0.5-5M、より好ましくは1-4M、さらに好ましくは1.2-3Mのグアニジン若しくはグアニジンイソチオシアネート、および／またはヨウ化物イオンや過塩素酸イオン等のカオトロピック剤を加えことができる。該バッファーには、さらにハイブリダイゼーションにおいて一般的に使用される無機塩類を加えることができる。
　該試料中には、1種類またはそれぞれ異なる2種類以上の標的核酸が含まれていてもよく、後述するとおり、本発明の方法ならびにデバイス若しくはキットを用いれば、試料中に含まれる該2種類以上の異なる標的核酸を同時に検出、定量することが可能である。
　本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様１～６６に代表されるが、この限りではない。）においては、例えば、１本鎖の標的核酸（以下、「標的核酸Ｎ」と称する。文字Ｎは、nucleic acidの頭文字Ｎ。）の任意の領域（以下、「領域Ｒ１」と称する。）への、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（以下、「オリゴヌクレオチドＲ１'」と称する。後述する標識Ｌ１で標識されていても良い。）のハイブリダイゼーションによる、標的核酸Ｎの捕捉（capture）を含む。
　なお、本発明においては、該オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていても良い）を、キャプチャーオリゴヌクレオチドと称する場合がある。
　領域Ｒ１としては、例えば、標的核酸Ｎの５'末端または３'末端の近縁の領域が挙げられる。該領域Ｒ１の長さは、例えば、約10～約300mer、約10～約200mer、約10～約150mer、約10～約100mer、約10～約90mer、約10～約80mer、約10～約70mer、約10～約60mer、約10～約50mer、約10～約40mer、約10～約30mer、約10～約20mer、約15～約300mer、約15～約200mer、約15～約150mer、約15～約100mer、約15～約90mer、約15～約80mer、約15～約70mer、約15～約60mer、約15～約50mer、約15～約40mer、約15～約30mer、約15～約20mer、約20～約300mer、約20～約200mer、約20～約250mer、約20～約100mer、約20～約90mer、約20～約80mer、約20～約70mer、約20～約60mer、約20～約50mer、約20～約40mer、約20～約30mer、約25～約300mer、約25～約200mer、約25～約150mer、約25～約100mer、約25～約90mer、約25～約80mer、約25～約70mer、約25～約60mer、約25～約50mer、約25～約40mer、約25～約30merであり得る。
　領域Ｒ１にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）は、領域Ｒ１の塩基配列と相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドプローブＲ１'の長さは、領域Ｒ１の長さに対応し、例えば、約10～約300mer、約10～約200mer、約10～約150mer、約10～約100mer、約10～約90mer、約10～約80mer、約10～約70mer、約10～約60mer、約10～約50mer、約10～約40mer、約10～約30mer、約10～約20mer、約15～約300mer、約15～約200mer、約15～約150mer、約15～約100mer、約15～約90mer、約15～約80mer、約15～約70mer、約15～約60mer、約15～約50mer、約15～約40mer、約15～約30mer、約15～約20mer、約20～約300mer、約20～約200mer、約20～約250mer、約20～約100mer、約20～約90mer、約20～約80mer、約20～約70mer、約20～約60mer、約20～約50mer、約20～約40mer、約20～約30mer、約25～約300mer、約25～約200mer、約25～約150mer、約25～約100mer、約25～約90mer、約25～約80mer、約25～約70mer、約25～約60mer、約25～約50mer、約25～約40mer、約25～約30merであり得る。
　また、斯かるオリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）は、領域Ｒ１にハイブリダイズする限り、所望により、領域Ｒ１の塩基配列に対し、１または複数のミスマッチまたはバルジを有していてもよい。
　本発明においては、領域Ｒ１にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）は、標識物質（以下、「標識Ｌ１」と称する。文字Ｌは、labelのＬ。）で標識されていてもよい。
　標識Ｌ１は、例えば、金属コロイド粒子（金コロイド粒子、白金コロイド粒子、白金-金（Pt-Au)コロイド粒子、パラジウムコロイド粒子、銀コロイド粒子、銅コロイド粒子、ニッケルコロイド粒子、ロジウムコロイド粒子、ルテニウムコロイド粒子、イリジウムコロイド粒子、等）、ラテックス粒子（白色ラテックス粒子、着色ラテックス粒子、蛍光ラテックス粒子、磁気ラテックス粒子、官能基修飾ラテックス粒子、等）、着色リポソーム、非金属コロイド（例えば、セレニウムコロイド）、各種の酵素（アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、またはβガラクトシダーゼ、等）、着色樹脂粒子、染料コロイド、不溶性粒状物質、蛍光色素、放射性同位体、等が挙げられる。
　本発明における標的核酸の検出、定量においては、さらに、標的核酸Ｎ中の領域Ｒ１とは異なる他の任意の領域（以下、「領域Ｒ２」と称する。）への、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（以下、「オリゴヌクレオチドＲ２'」と称する。末端に後述するアンカーＡを有していても良い。）のハイブリダイゼーションを含む。
　後述するとおり、このオリゴヌクレオチドＲ２'を介して、Ｌ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'と結合した標的核酸Ｎをクロマトグラフィーにより捕捉することができる（例えば、前記の本発明の態様１～２３；図２における態様（１）～（３）；表1における態様(ａ)～（ｌ））。
　なお、本発明においては、該オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）を、ディテクションオリゴヌクレオチドと称する場合がある。
　前記のオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズする標識核酸Ｎ中の領域Ｒ２としては、例えば、標的核酸Ｎの５'末端または３'末端の近縁の領域が挙げられる。該領域Ｒ２の長さは、例えば、約10～約300mer、約10～約200mer、約10～約150mer、約10～約100mer、約10～約90mer、約10～約80mer、約10～約70mer、約10～約60mer、約10～約50mer、約10～約40mer、約10～約30mer、約10～約20mer、約15～約300mer、約15～約200mer、約15～約150mer、約15～約100mer、約15～約90mer、約15～約80mer、約15～約70mer、約15～約60mer、約15～約50mer、約15～約40mer、約15～約30mer、約15～約20mer、約20～約300mer、約20～約200mer、約20～約250mer、約20～約100mer、約20～約90mer、約20～約80mer、約20～約70mer、約20～約60mer、約20～約50mer、約20～約40mer、約20～約30mer、約25～約300mer、約25～約200mer、約25～約150mer、約25～約100mer、約25～約90mer、約25～約80mer、約25～約70mer、約25～約60mer、約25～約50mer、約25～約40mer、約25～約30merであり得る。
　領域Ｒ２にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）は、領域Ｒ２の塩基配列と相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドプローブＲ２'の長さは、領域Ｒ２の長さに対応し、例えば、約10～約300mer、約10～約200mer、約10～約150mer、約10～約100mer、約10～約90mer、約10～約80mer、約10～約70mer、約10～約60mer、約10～約50mer、約10～約40mer、約10～約30mer、約10～約20mer、約15～約300mer、約15～約200mer、約15～約150mer、約15～約100mer、約15～約90mer、約15～約80mer、約15～約70mer、約15～約60mer、約15～約50mer、約15～約40mer、約15～約30mer、約15～約20mer、約20～約300mer、約20～約200mer、約20～約250mer、約20～約100mer、約20～約90mer、約20～約80mer、約20～約70mer、約20～約60mer、約20～約50mer、約20～約40mer、約20～約30mer、約25～約300mer、約25～約200mer、約25～約150mer、約25～約100mer、約25～約90mer、約25～約80mer、約25～約70mer、約25～約60mer、約25～約50mer、約25～約40mer、約25～約30merであり得る。
　また、斯かるオリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）は、領域Ｒ２にハイブリダイズする限り、所望により、領域Ｒ２の塩基配列に対し、１または複数のミスマッチまたはバルジを有していてもよい。
　本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様１２～１９、２３、４８～５２、等に代表されるが、この限りではない。）においては、前記のオリゴヌクレオチドＲ２'は、例えばその末端に任意のアンカー（以下、「アンカーＡ」と称する）を有していてもよい。一方で、後述する核酸のクロマトグラフィーに用いる「展開要素」の「検出ゾーン」に、該アンカーＡに結合し得る、アンカーＡとは別の「アクセプターＡ'」を固定化しておくことにより、該アンカーＡとアクセプターＡ'との結合を介して、標的核酸Ｎを含む核酸ハイブリッド（標的核酸Ｎに、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドプローブＲ１'および／または該アンカーＡを有するオリゴヌクレオチドプローブＲ２'がハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッド）が捕捉され、標的核酸を検出、定量することができる。
　該アンカーＡとしては、オリゴヌクレオチド、ビオチン、抗体、蛋白質または糖鎖、等が挙げられ、また、該アクセプターＡ'としては、オリゴヌクレオチド、アビジン、ストレプトアビジン、抗体または蛋白質が挙げられる。
　好ましい態様の１つとしては、該アンカーＡがビオチンであり、および該アクセプターＡ'がアビジンまたはストレプトアビジンの組み合わせである。
　また、試料中に複数の異なる標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸に対するオリゴヌクレオチドプローブＲ２'にそれぞれ異なアンカーＡを結合させることにより、斯かる複数の異なる標的核酸をクロマトグラフィーで同時に検出、定量することができる（例えば、図４－９、４－１１、４－１２、等）。
　一方、本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様２９～５２；図２における態様（４）～（７）；表1における態様(ｍ)～（ｖ））に代表されるが、この限りではない。）においては、標的核酸Ｎは、標識物質（以下、「標識Ｌ２」と称する。文字Ｌは、labelのＬ。）で標識されている（以下、場合により、「Ｌ２標識標的核酸Ｎ」と称する。）。
　そして、本発明においては、該Ｌ２標識標的核酸Ｎへの、後述する１つ以上のマスクオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーション、および標的核酸Ｎ中の任意の領域（前記の「領域Ｒ２」に同じ）への、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（前記の「オリゴヌクレオチドＲ２'」に同じ）のハイブリダイゼーション若しくは標的核酸Ｎ中の任意の領域（前記の「領域Ｒ１」に同じ）への、Ｌ１標識オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（前記の「Ｌ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'」に同じ）のハイブリダイゼーションを通じて、Ｌ２標識標的核酸Ｎの捕捉を含む。
　本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様３５～３９；図２における態様（４）；表1における態様(ｍ)～（ｐ）、等に代表されるが、この限りではない。）においては、上述した本発明の態様１～２３と同様に、標的核酸Ｎの任意の領域Ｒ１への、Ｌ１標識オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（「Ｌ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'」）のハイブリダイゼーションによる、標的核酸Ｎの捕捉（capture）を含む。
　その上で、これらの態様においては、後述する核酸のクロマトグラフィーに用いる「展開要素」の「検出ゾーン」に、該標識Ｌ２に結合し得る物質を固定化しておくことにより、該標識Ｌ２と当該固定化された物質との結合を介して、標的核酸Ｎを含む核酸ハイブリッド（標的核酸Ｎに、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドプローブＲ１'がハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッド）を捕捉して、標的核酸を検出、定量することができる。
　ここで、標識Ｌ２としては、例えば、蛍光色素（FITC（フルオレセインイソチオシアネート）、6-FAM（6-Carboxyfluorescein）、TET、VIC、HEX、NED、PET、ROX、Cy5、Cy3、Texas Red、JOE、TAMRA、等）、ビオチン、ジゴキシゲニン（DIG）、抗体、酵素（例えば、酵素が、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼまたはβガラクトシダーゼ、等）等が挙げられる。なお、該抗体は、前記の蛍光色素、ビオチン、ジゴキシゲニン（DIG）等で標識されていても良い。
　標的核酸Ｎの斯かる標識Ｌ２による標識は、例えば、標的核酸がPCR等により増幅された核酸に由来する場合には、常法に従って、該PCRの過程で標識を付することができる。
　ここで、標識Ｌ２に結合する物質としては、例えば、標識Ｌ２に結合する抗体または酵素で標識した抗体が挙げられ、さらに、標識Ｌ２がビオチンの場合には、該物質としてはアビジンまたはストレプトアビジンが挙げられる。
　また、該酵素としては、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、またはβガラクトシダーゼ、等が挙げられる。
　本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様４６、４７、；図２における態様（５）、（６）；表1における態様(ｑ)、（ｒ）等に代表されるが、この限りではない。）においては、後述する核酸のクロマトグラフィーに用いる「展開要素」の「検出ゾーン」に、標的核酸Ｎの任意の領域Ｒ２へハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＲ２'を固定化しておくことにより、該領域Ｒ２と該オリゴヌクレオチドＲ２'とのハイブリダイゼーションを介して、標的核酸Ｎを捕捉して、標識Ｌ２を指標に標的核酸を検出、定量することができる。
　標識Ｌ２を指標とした該標的核酸Ｎの検出、定量は、例えば、標識Ｌ２への、該標識Ｌ２に結合する抗体または酵素で標識した抗体の結合を介して実施することができる。
　本発明における標的核酸の検出、定量の一つの態様（例えば、前記に例示した本発明の態様４８～５１、等に代表されるが、この限りではない。）においては、標的核酸Ｎへの、その末端に任意のアンカー（以下、「アンカーＡ」と称する）を有しているオリゴヌクレオチドプローブＲ２'（「オリゴヌクレオチドＲ２'」）のハイブリダイゼーションを含む。一方で、後述する核酸のクロマトグラフィーに用いる「展開要素」の「検出ゾーン」または核酸のイムノアッセイに用いるマイクロプレート等の固体支持体に、該アンカーＡに結合し得る、アンカーＡとは別の「アクセプターＡ'」を固定化しておくことにより、該アンカーＡとアクセプターＡ'との結合を介して、Ｌ２標識標的核酸Ｎを含む核酸ハイブリッド（Ｌ２標識標的核酸Ｎに、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチドおよび該アンカーＡを有するオリゴヌクレオチドプローブＲ２'がハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッド）を捕捉して、標的核酸を検出、定量することができる。
　該アンカーＡとしては、オリゴヌクレオチド、ビオチン、ジゴキシゲニン(DIG）等の低分子化合物、抗体、蛋白質または糖鎖、等が挙げられ、また、該アクセプターＡ'としては、オリゴヌクレオチド、アビジン、ストレプトアビジン、抗体または蛋白質が挙げられる。
　好ましい態様の１つとしては、該アンカーＡがビオチンであり、および該アクセプターＡ'がアビジンまたはストレプトアビジンの組み合わせである。
　本発明における標的核酸の検出、定量においては、いずれの態様においても、標的核酸Ｎ（またはＬ２標識標的核酸Ｎ）中の領域Ｒ１を挟んで位置する（領域Ｒ１の両端に隣接する、または両端の近縁の）「領域Ｍ１」および「領域Ｍ２」（文字Ｍは、後述するmask oligonucleotide（マスクオリゴヌクレオチド）の頭文字Ｍ）、並びに標的核酸Ｎ中の領域Ｒ２を挟んで位置する（領域Ｒ２の両端に隣接する、または両端の近縁の）「領域Ｍ３」および「領域Ｍ４」の少なくとも１つの領域に対する、マスクオリゴヌクレオチドＭ１'、マスクオリゴヌクレオチドＭ２'、マスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーションを含む。
　即ち、標的核酸Ｎへのマスクオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションは、以下の態様を含む。
　・領域Ｍ１のみへマスクオリゴヌクレオチドＭ１'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ２のみへマスクオリゴヌクレオチドＭ２'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ３のみへマスクオリゴヌクレオチドＭ３'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ４のみへマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ２'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１および領域Ｍ３の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ３'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１および領域Ｍ４の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ２および領域Ｍ３の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ２'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ３'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ２および領域Ｍ４の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ２'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１、領域Ｍ２及び領域Ｍ３にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'、マスクオリゴヌクレオチドＭ２'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ３'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１、領域Ｍ２及び領域Ｍ４にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'、マスクオリゴヌクレオチドＭ２'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ１、領域Ｍ３及び領域Ｍ４にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'、マスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・領域Ｍ２、領域Ｍ３及び領域Ｍ４にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ２'、マスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　・ならびに領域Ｍ１、領域Ｍ２、領域Ｍ３及び領域Ｍ４にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'、マスクオリゴヌクレオチドＭ２'、マスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイズさせる態様。
　また、本発明においては、必要に応じ、さらに、標的核酸Ｎ中の領域Ｍ１、領域Ｍ２，領域Ｍ３および領域Ｍ４以外の他の１つ以上の領域（領域Ｍ５、Ｍ６、Ｍ７、Ｍ８、等）にそれぞれの領域にハイブリダイズし得る該領域に相補的な核酸配列を含むマスクオリゴヌクレオチドをハイブリダイズさせる態様が包含される。
　本願発明においては、領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ１'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ２'をハイブリダイゼーションさせる態様、または領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方にそれぞれマスクオリゴヌクレオチドＭ３'およびマスクオリゴヌクレオチドＭ４'をハイブリダイゼーションさせる態様が好ましい。
　ここで、「標的核酸Ｎ中の領域Ｒ１を挟んで位置する（領域Ｒ１の両端に隣接する、または両端の近縁の）「領域Ｍ１」および「領域Ｍ２」とは、例えば、標的核酸Ｎの５'末端から３'末端の方向で、各領域が、領域Ｍ１－領域Ｒ１－領域Ｍ２（または領域Ｍ２－領域Ｒ１－領域Ｍ１）の順序で存在することを意味する。
　また、併せて、領域Ｍ１と領域Ｒ１が、その間に１塩基のギャップもなく隣接していること、または領域Ｍ１と領域Ｒ１が1～30mer、1～29mer、1～28mer、1～27mer、1～26mer、1～25mer、1～24mer、1～23mer、1～22mer、1～21mer、1～20mer、1～19mer、1～18mer、1～17mer、1～16mer、1～15mer、1～14mer、1～13mer、1～12mer、1～11mer、1～10mer、1～9mer、1～8mer、1～7mer、1～6mer、1～5mer、1～4mer、1～3mer、2merまたは1mer離れて存在することを意味する。
　領域Ｍ１と領域Ｒ１が、その間に１塩基のギャップもなく隣接するか、または1～20merまで離れて存在する態様が好ましい。
　好ましくは、領域Ｍ１と領域Ｒ１が、その間に１塩基のギャップもなく隣接するか、または1～15merまで離れて存在する。
　より好ましくは、領域Ｍ１と領域Ｒ１が、その間に１塩基のギャップもなく隣接するか、または1～10merまで離れて存在する。
　さらに好ましくは、領域Ｍ１と領域Ｒ１が、その間に１塩基のギャップもなく隣接するか、または1～5merまで離れて存在する。
　領域Ｍ２と領域Ｒ１、領域Ｍ３と領域Ｒ２、および領域Ｒ４と領域Ｒ２との位置関係も、上記の領域Ｍ１と領域Ｒ１との位置関係と同様である。
　前記のとおり、本発明におけるマスクオリゴヌクレオチドとは、標的核酸ＮまたはＬ２標識標的核酸Ｎ中の領域Ｍ１、領域Ｍ２、領域Ｍ３および領域Ｍ４（所望に応じ、さらなる領域Ｍ５、Ｍ６、Ｍ７、Ｍ８、等を含む）のそれぞれの核酸配列と相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドである。
　マスクオリゴヌクレオチドの長さは、領域Ｍ１、領域Ｍ２、領域Ｍ３および領域Ｍ４のそれぞれの長さに対応し、それぞれ、例えば、約5～約300mer、約5～約200mer、約5～約150mer、約5～約100mer、約5～約90mer、約5～約80mer、約5～約70mer、約5～約60mer、約5～約50mer、約5～約40mer、約5～約30mer、約5～約20mer、約10～約300mer、約10～約200mer、約10～約150mer、約10～約100mer、約10～約90mer、約10～約80mer、約10～約70mer、約10～約60mer、約10～約50mer、約10～約40mer、約10～約30mer、約10～約20mer、約15～約300mer、約15～約200mer、約15～約150mer、約15～約100mer、約15～約90mer、約15～約80mer、約15～約70mer、約15～約60mer、約15～約50mer、約15～約40mer、約15～約30mer、約15～約20mer、約20～約300mer、約20～約200mer、約20～約250mer、約20～約100mer、約20～約90mer、約20～約80mer、約20～約70mer、約20～約60mer、約20～約50mer、約20～約40mer、約20～約30mer、約25～約300mer、約25～約200mer、約25～約150mer、約25～約100mer、約25～約90mer、約25～約80mer、約25～約70mer、約25～約60mer、約25～約50mer、約25～約40mer、約25～約30merであり得る。
　また、各マスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'、Ｍ４'）は、各領域（Ｍ１、Ｍ２、Ｍ３、Ｍ４）にハイブリダイズする限り、所望により、各領域（Ｍ１、Ｍ２、Ｍ３、Ｍ４）の塩基配列に対し、１または複数のミスマッチまたはバルジを有していてもよい。
　本願発明の核酸の検出、定量は、試料中に２以上の標的核酸（例えば、異なる種類の細菌に由来する複数の標的核酸、特定の細菌の複数の変異型に由来する複数の標的核酸、特定の遺伝子の複数の変異型に由来する複数の標的核酸、マルチプレックスPCRにより増幅された複数のPCR産物に由来する複数の標的核酸、等）が含まれる場合にも適用することができる。即ち、本発明を用いれば、1回のアッセイで、斯かる複数の標的核酸を同時に検出、定量することができる。
　本発明においては、試料中に含まれるか、または含まれることが予測される１の標的核酸を検出、定量し、または２以上の異なる標的核酸を同時に検出、定量するには、該１つの標的核酸、または該２以上のそれぞれの異なる標的核酸ごとに、前記の１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'、Ｍ４'）、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）および、必要に応じ、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）を設計、調製し、これら各種のオリゴヌクレオチドを用いて、後述する例えば、ラテラルフロー型若しくはフロースルー型のクロマトグラフィー（核酸クロマトグラフィー）、またはハイブリダイゼーション-ELISAを適用することにより実施することができる。
　即ち、例えば、検出、定量すべき標的核酸が３種類（標的核酸Ｎ１、Ｎ２、およびＮ３）ある場合には、標的核酸Ｎ１の検出のために必要な該標的核酸Ｎ１にハイブリダイズし得る、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'、Ｍ４'）、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）および、必要に応じ、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）を設計、調製する。また、標的核酸Ｎ２の検出のために必要な該標的核酸Ｎ２にハイブリダイズし得る、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'、Ｍ４'）、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）および、必要に応じ、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）を設計、調製する。さらに、標的核酸Ｎ３の検出のために必要な該標的核酸Ｎ３にハイブリダイズし得る、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'、Ｍ４'）、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）および、必要に応じ、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）を設計、調製する。
　本発明における核酸の検出、定量には、例えば、イムノクロマトグラフィーの原理を応用した核酸クロマトグラフィー（ラテラルフロー型、またはフロースルー型）、またはイムノアッセイを利用したハイブリダイゼーション-ELISAを用いることができるが、これらに限られない。
　核酸クロマトグラフィーによる態様としては、例えば、図２（態様（１）～（７））、図４－１～図４－７、図４－９～図４－１２に模式的に示されるデバイスおよび原理を用いる態様を例示的に示すことができるが、これらの態様に限定されないことは言うまでもない。
　また、斯かる本発明における核酸クロマトグラフィーには、後述する本願発明におけるデバイスの「適用ゾーン」、「封入ゾーン」および「検出ゾーン」のそれぞれに、上述した標的核酸（標識Ｌ２で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、アクセプターＡ'、および／または標識Ｌ２に結合する物質を、前記の表1に例示的に示されるような組み合わせで適用、封入、および固定化する態様を例示的に示すことができるが、これらの態様に限定されないことは言うまでもない。
　なお、斯かる本発明における核酸クロマトグラフィーは、所望により、１つ以上の「検出ゾーン」のみを備えた「展開要素」（後述）の一部を、容積を有する固体支持体（例えば、チューブ、バイアル、プレート、ビーカー、等）中の、標的核酸と上述の各種オリゴヌクレオチドとを含む液体試料に適用する（接触させる）態様、または該固体支持体の一部に、該液体試料を適用すること態様によっても実施することができる。
　ハイブリダイゼーション-ELISAによる態様としては、例えば、図２（態様（５）、（６））、図４－８に模式的に示される態様を例示的に示すことができるが、これらの態様に限定されないことは言うまでもない。
　以下にこれらの方法を概略するが、以下に概略する事項のそれぞれについても、本願発明に包含される様々な態様を実施における必要性に応じ所望の改変、変更、追加、等を行うことができることは言うまでもない。
　なお、以下に例示的に示す各態様を含め、本願発明においては、前記の標的核酸（標識Ｌ２で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、ならびに各種の核酸ハイブリッドの間の相互のハイブリダイゼーション、アンカーＡおよびアクセプターＡ'、ならびに標識Ｌ２と標識Ｌ２に結合する物質の間の結合は、アッセイの開始から終了までの間の全体を通じて生じるものの全てを包含し、特定の場所、部位、あるいは時点においてのみ生じるハイブリダイゼーションまたは結合のみを意味するものではない。
　また、本願発明においては、前記の標的核酸（標識Ｌ２で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、ならびに各種の核酸ハイブリッドの間の相互のハイブリダイゼーションは、ある特定の一のハイブリダイゼーションと、それと異なる一または二以上のハイブリダイゼーションのそれぞれが経時的に徐々に完成される態様、別々に起こる態様、ならびに同時に起こる態様、等、任意の態様が包含される。
１．　ラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィー
　例えば、図４－１～図４－７、図４－９～図４－１２に模式的示した態様を例示的に挙げることができるが、これらの態様において採用される基本原理の平易な理解の目的のみのため、同原理について概説すると概ね以下のとおりである。
　しかしながら、以下に概略する同原理の説明を含め、本願発明においては、標的核酸（標識Ｌ２で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていてもよい）、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、ならびに各核酸ハイブリッドの間の相互のハイブリダイゼーション、ならびにアンカーＡおよびアクセプターＡ'の間の結合および標識Ｌ２と標識Ｌ２に結合する物質との結合は、アッセイの開始から終了までの間の全体を通じて生じるものの全てを包含し、特定の場所、部位、あるいは時点においてのみ生じるハイブリダイゼーションまたは結合のみを意味するものではない。
　また、本願発明においては、標的核酸（標識Ｌ２で標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていてもよい）、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、ならびに各核酸ハイブリッドの間の相互のハイブリダイゼーションは、ある特定の一のハイブリダイゼーションと、それと異なる一または二以上のハイブリダイゼーションのそれぞれが経時的に徐々に完成される態様、別々に起こる態様、ならびに同時に起こる態様、等、任意の態様が包含される。アンカーＡおよびアクセプターＡ'の間の結合についても同様である。
　図４－１および図４－２に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド（標的核酸Ｎ、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド）を、検出ゾーンに固定化したオリゴヌクレオチドＲ２'によって捕捉し、標識Ｌ１を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎの存在および量を測定することができる。
　図４－３および図４－４に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド（標的核酸Ｎ、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、および末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド）を、検出ゾーンに固定化したアンカーＡに結合するアクセプターＡ'によって捕捉し、標識Ｌ１を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎの存在および量を測定することができる。
　図４－５および図４－６に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド（標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎ、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド）を、検出ゾーンに固定化した標識Ｌ２に結合する物質によって捕捉し、標識Ｌ１を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎの存在および量を測定することができる。
　図４－７に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド（標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎ、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド）を、検出ゾーンに固定化したアンカーＡに結合するアクセプターＡ'によって捕捉し、標識Ｌ２を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎの存在および量を測定することができる。
　図４－９に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーは、複数の標的核酸Ｎ（例えば、標的核酸Ｎ１、Ｎ２）を同時に検出、定量する態様の例示であって、この態様においては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド１（標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ１用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、標的核酸Ｎ１用に調製された標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、および標的核酸Ｎ１用に調製された末端にアンカーＡ１を有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド１）、および核酸ハイブリッド２（標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ２用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、標的核酸Ｎ２用に調製された標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、および標的核酸Ｎ２用に調製された末端にアンカーＡ２を有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド２）を、検出ゾーンにそれぞれ固定化したアンカーＡ１に結合するアクセプターＡ１'およびアンカーＡ２に結合するアクセプターＡ２'によってそれぞれ捕捉し、標識Ｌ１を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎ１およびＮ２の存在および量を同時に測定することができる。
　図４－１０に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーは、複数の標的核酸Ｎ（例えば、標的核酸Ｎ１、Ｎ２）を同時に検出、定量する態様の例示であって、この態様においては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド１（標識Ｌ２ａ（例えば、FITC）で標識された標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ１用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ１用に調製された標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１' がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド１）、および核酸ハイブリッド２（標識Ｌ２ｂ（例えば、Texas Red）で標識された標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ２用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ２用に調製された標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド２）を、検出ゾーンにそれぞれ固定化した標識Ｌ２ａに結合する物質１（例えば、抗FITC抗体）および標識Ｌ２ｂに結合する物質２（例えば、抗Texas Red抗体）によってそれぞれ捕捉し、標識Ｌ１を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎ１およびＮ２の存在および量を同時に測定することができる。
　図４－１１に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーは、複数の標的核酸Ｎ（例えば、標的核酸Ｎ１、Ｎ２）を同時に検出、定量する態様の例示であって、この態様においては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド１（標識Ｌ２で標識した標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ１用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ１用に調製された末端にアンカーＡ１を有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド１）、および核酸ハイブリッド２（標識Ｌ２で標識した標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ２用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ２用に調製された末端にアンカーＡ２を有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド２）を、検出ゾーンにそれぞれ固定化したアンカーＡ１に結合するアクセプターＡ１'およびアンカーＡ２に結合するアクセプターＡ２'によってそれぞれ捕捉し、標識Ｌ２を指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎ１およびＮ２の存在および量を同時に測定することができる。
　図４－１２に模式的に示される原理およびデバイス（またはキット）を用いるラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーは、複数の標的核酸Ｎ（例えば、標的核酸Ｎ１、Ｎ２）を同時に検出、定量する態様の例示であって、この態様においては、毛管現象と拡散により展開要素を移動して検出ゾーンに達した核酸ハイブリッド１（標識Ｌ２ａ（例えば、FITC）で標識した標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ１用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ１用に調製された末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド１）、および核酸ハイブリッド２（標識Ｌ２ｂ（例えば、Texas Red）で標識した標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ２用に調製された１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド、および標的核酸Ｎ２用に調製された末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズして生成される核酸ハイブリッド２）を、検出ゾーンにそれぞれ固定化したアンカーＡに結合するアクセプターＡ'によってそれぞれ捕捉し、それぞれ異なる標識Ｌ２ａおよび標識Ｌ２ｂを指標に検出することによって、液体試料中に含まれている標的核酸Ｎ１およびＮ２の存在および量を同時に測定することができる。
　本発明における「展開要素」とは、好ましい態様においては、シート状またはストリップ状の支持体（メンブレン）であって、毛管現象により、各種の核酸（例えば、標的核酸（標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識されていても良い）、オリゴヌクレオチドＲ１'、オリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）、各マスクオリゴヌクレオチド、ならびにそれらの１つ以上が相互のハイブリダイゼーションを通じて形成される各種の核酸ハイブリッド）を含む液体試料がクロマトグラフ的に展開する機能を有する。
　展開要素としては、例えば、多孔質不溶性支持体（メンブレン）を使用することができ、例えば、プラスチック製多孔質支持体（メンブレン）、セルロース系多孔質支持体（メンブレン）、無機系多孔質支持体（メンブレン）が挙げられる。より具体的には、多孔質の、セルロース、ニトロセルロース、酢酸セルロース、ナイロン、シリカ、グラスファイバーまたはこれらの誘導体などから調製されている支持体（メンブレン）が挙げられる。また、本発明おいては、展開要素が上記のような機能を有する限り、市販されるいずれの多孔質不溶性支持体（メンブレン）をも展開要素として用いることができる。
　本発明における「適用ゾーン」は、展開要素に接して配置される、前記の展開要素と同一または異なる材質からなるシート状またはストリップ状の支持体である。材質としては、前記の展開要素と同様のものが挙げられるが、目的に応じ、展開要素とは異なる材質を選択することができる。
　この適用ゾーンは、その機能の面からサンプルパッドと称することもでき、例えば以下のような機能を備えるものであるが、この限りではない。
　(i)液体試料を受ける。
　(ii)液体試料を支持体中に均質に分配する。
　(iii)所望により、液体試料の組成を変えるための試薬を含み得る。
　(iv)フィルターとしての役割を果たすこともある。
　(v)任意のオリゴヌクレオチド等の物質を封入し得る。
　本発明における「封入ゾーン」は、適用ゾーンと接して展開要素上に配置される前記の展開要素と同一または異なる材質からなるシート状またはストリップ状の支持体である。材質としては、前記の展開要素と同様のものが挙げられるが、目的に応じ、展開要素とは異なる材質を選択することができる。
　この封入ゾーンは、その機能の面からコンジュゲートパッドと称することもでき、例えば、以下のような機能を備えるものであるが、この限りではない。
　（i）任意のオリゴヌクレオチド等の物質を封入し得る。分析が行なわれないときは、該封入されたオリゴヌクレオチド等は、通常、乾燥して存在する。
　（ii）該各種のオリゴヌクレオチドを素早く、均一に、定量的に放出する。
　（iii）展開要素に該各種のオリゴヌクレオチドを均一に移動させる。
　本発明における「検出ゾーン」には、展開要素中を毛管現象により移動してきた各種の核酸を含む試料中に含まれる核酸ハイブリッド（該標的核酸Ｎに他の１つ以上のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッド）を捕捉し、検出するための物質（例えば、前述のオリゴヌクレオチドＲ２'、アンカーＡに結合するアクセプターＡ'または標識Ｌ２に結合する物質）を固定化することができる。
　本発明においては、検出ゾーンへのオリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）の固定化は、該オリゴヌクレオチドＲ２'に導入し得るアミノ基（アミノリンカー（例えば、一級アミノ基が結合した直鎖炭素鎖））、カルボキシル基、チオール基、ヒドロキシル基などを介して検出ゾーンに固定化され得る。
　例えば、該オリゴヌクレオチドＲ２'が有するアミノリンカーが、蛋白質（例えば、血清アルブミン、免疫グロブリン、等）を介して固相に固定化されることにより、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固相に固定化され得る。
　本発明においては、該検出ゾーンには、オリゴヌクレオチドプローブＲ２'（オリゴヌクレオチドＲ２'）が有するアンカーＡに結合し得る、アクセプターＡ'を固定化することができる。
　該アンカーＡとしては、オリゴヌクレオチド、ビオチン、ジゴキシゲニン（DIG）等の低分子化合物、抗体、蛋白質（例えばレクチン）または糖鎖、等が挙げられ、また、該アクセプターＡ'としては、オリゴヌクレオチド、アビジン、ストレプトアビジン、抗体または蛋白質（例えばレクチン）が挙げられる。該アクセプターＡ'が、オリゴヌクレオチドである場合には、前記と同様に、アミノ基（アミノリンカー（例えば、一級アミノ基が結合した直鎖炭素鎖））、カルボキシル基、チオール基、ヒドロキシル基などを介して検出ゾーンに固定化され得る。
　例えば、該アンカーＡがビオチンである場合には、検出ゾーンには、アビジンまたはストレプトアビジンがアクセプターＡ'として固定化され得る。
　また前記のとおり、試料中に含まれる複数の異なる標的核酸Ｎを検出するために、それぞれの標的核酸に対するオリゴヌクレオチドプローブＲ２'にそれぞれ異なるアンカーＡを結合させる場合には、それぞれの標的核酸Ｎを別個に検出するための個々の検出ゾーンに、それぞれのアンカーＡに特異的に結合する別個の物質（抗原、抗体、等）がアクセプターＡ'として固定化され得る。
　本発明においては、該検出ゾーンには、標的核酸Ｎが有する標的Ｌ２（例えば、蛍光色素、ビオチン）に結合する物質（例えば、抗体、ストレプトアビジン）を固定化することができる。
　例えば、標的Ｌ２が蛍光色素である場合には、検出ゾーンには、該蛍光色素に特異的に結合する抗体が固定化され得る。また、標的Ｌ２がビオチンである場合には、検出ゾーンには、アビジンまたはストレプトアビジンが固定化され得る。
　この検出ゾーンにおいて、試料中に含まれる目的の標識標的核酸Ｎを、標識Ｌ１、標識Ｌ２を指標に検出することから、テストラインと称することができる。
　本発明においては、上述の標識Ｌ１が例えば、金コロイド粒子などの金属コロイド粒子や、ラテックス粒子などである場合、検出ゾーンに固定された物質（前記のオリゴヌクレオチドＲ２'、アンカーＡに結合するアクセプターＡ'または標識Ｌ２に結合する物質）により、標的核酸Ｎを含む核酸ハイブリッド（該標的核酸Ｎに他の１つ以上のオリゴヌクレオチドがハイブリダイズして形成された核酸ハイブリッド）が捕捉されることにより、検出ゾーンに該粒子が有する赤色や青色などが線（ライン）が現れる。この着色ラインの着色の程度を指標に、標的核酸Ｎの有無、量を測定することができる。
　また、上述の標識Ｌ２が、例えば、上述した種々の蛍光色素（FITC、Texas Red、等）である場合には、該標識Ｌ２に、検出可能なように処置された、該蛍光色素に特異的に結合する抗体を結合させることにより標的核酸Ｎの有無、量を測定することができる。
　上述のとおり、本発においては、前記のラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーを用いて、試料中に含まれるか、または含まれることが予測される２以上の異なる標的核酸を同時に検出、定量することができる（例えば、図４－９～図４－１２の態様、等）。例えば、以下に概略するとおりに実施することができる。
　・当該２以上のそれぞれの異なる標的核酸Ｎ（即ち、標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ３、標的核酸Ｎ４、・・・・標的核酸ＮＸ（Ｘは任意の数））ごとに、それぞれの標的核酸ＮＸにハイブリダイズし得る標識Ｌ１で標識したオリゴヌクレオチドプローブＲ１'（オリゴヌクレオチドＲ１'）、即ち、標的核酸Ｎ１にハイブリダイズし得るＬ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'、標的核酸Ｎ２にハイブリダイズし得るＬ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'、標的核酸Ｎ３にハイブリダイズし得るＬ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'、標的核酸Ｎ４にハイブリダイズし得るＬ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'、・・・・標的核酸ＮＸにハイブリダイズし得るＬ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'、を設計、調製する。ここで、該各標的核酸は、所望により、同一またはそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていても良い。また、標識Ｌ１は、所望により、標的核酸Ｎごとに、異なる標識物質も用いてもよい。
　・当該２以上のそれぞれの異なる標的核酸Ｎ（即ち、標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ３、標的核酸Ｎ４、・・・・標的核酸ＮＸ（Ｘは任意の数））ごとに、それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズし得る検出用のオリゴヌクレオチドプローブＲ２（オリゴヌクレオチドＲ２'）、即ち、標的核酸Ｎ１にハイブリダイズし得る標識オリゴヌクレオチドＲ２'、標的核酸Ｎ２にハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＲ２'、標的核酸Ｎ３にハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＲ２'、標的核酸Ｎ４にハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＲ２'－４、・・・・標的核酸ＮＸにハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＲ２'、を設計、調製する。ここで、該各標的核酸は、所望により、同一またはそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていても良い。また、該オリゴヌクレオチドＲ２'は、同一またはそれぞれ異なるアンカーＡを有していても良い。
　・それぞれの異なる標的核酸Ｎ（即ち、標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ３、標的核酸Ｎ４、・・・・標的核酸ＮＸ（Ｘは任意の数））ごとに、該標的核酸Ｎ中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るマスクオリゴヌクレオチド、即ち、オリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方を設計、調製する。即ち、標的核酸Ｎ１中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ２中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ３中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ４中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方；・・・・標的核酸Ｎｘ中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方、を設計、調製する。ここで、該各標的核酸は、所望により、同一またはそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていても良い。
　・所望に応じ、それぞれの異なる標的核酸Ｎ（即ち、標的核酸Ｎ１、標的核酸Ｎ２、標的核酸Ｎ３、標的核酸Ｎ４、・・・・標的核酸ＮＸ（Ｘは任意の数））ごとに、該標的核酸Ｎ中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズするマスクオリゴヌクレオチド、即ち、オリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方を設計、調製する。即ち、標的核酸Ｎ１中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ２中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ３中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方；　標的核酸Ｎ４中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方；・・・・標的核酸Ｎｘ中の領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４にそれぞれハイブリダイズし得るオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも一方、または両方、を設計、調製する。ここで、該各標的核酸は、所望により、同一またはそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていても良い。
　・試料中の該複数の標的核酸ＮＸに、それぞれの標的核酸ＮＸ用に調製した前記の種々のオリゴヌクレオチドをハイブリダイズさせ、核酸ハイブリッドを形成させる。
　・デバイスの展開要素中を毛管現象により移動した複数種類の核酸ハイブリッドのそれぞれを、前記デバイスのそれぞれ異なる位置に設けられた、複数の標的核酸Ｎごとの検出ゾーン中に固定化された物質（前記のオリゴヌクレオチドＲ２'、アンカーＡに結合するアクセプターＡ'または標識Ｌ２に結合する物質）により捕捉する。
　・標識Ｌ１が例えば、金コロイド粒子などの金属コロイド粒子や、ラテックス粒子などである場合、それぞれの検出ゾーン（テストライン）ごとに現れる着色の程度を指標に、それぞれの標的核酸Ｎの有無、量を測定することができる。
　本発明のラテラル型の核酸クロマトグラフィーにおいては、図５－２に模式的に示されるとおり、上述した「展開要素」が、上述した標的核酸Ｎを検出するためのテストラインとしての検出ゾーンに加え、インターナルコントロール（内部対照）としての核酸を検出するための１または２以上のコントロールラインとしての検出ゾーンを併せて備えることができる。該１または２以上のコントロールラインとしての検出ゾーンは、標的核酸Ｎを検出するためのテストラインとしての検出ゾーンと後述する「吸収ゾーン」の間に配置されるのが好ましい。
　インターナルコントロールは、検出されるべき標的核酸Ｎとは別に用意される別個の核酸であって、標的核酸Ｎと同様に毛管現象により展開要素中を移動するが、上述した標識核酸Ｎが検出されるテストラインとしての検出ゾーンにおいて捕捉されることなく、該テストラインを通過し、コントロールラインとしての検出ゾーンにおいて捕捉、検出される。
　コントロールラインとしての検出ゾーンにおけるインターナルコントロールの捕捉、検出は、上述したテストラインとしての検出ゾーンにおける標的核酸Ｎの捕捉、検出のための各種の手法と同様にして、インターナルコントロールにハイブリダイズするキャプチャーオリゴヌクレオチド、マスクオリゴヌクレオチドおよびディテクションオリゴヌクレオチドを用いて実施することができる。
　該コントロールラインとしての検出ゾーンにおけるインターナルコントロールの補足、検出は、上述した本発明のラテラル型の核酸クロマトグラフィーを実施するための各種デバイスを用いて所望の標的核酸Ｎの検査、検出を行うに際し、標的核酸Ｎの展開要素中の移動と併せて、インターナルコントロールとしての核酸を展開要素中を移動させ、インターナルコントロールを、コントロールラインとしての検出ゾーンで捕捉、検出することにより、そのデバイスが正常に機能したか否かを確認することを目的とする。
　上述したとおり、標的核酸Ｎおよびインターナルコントロールの各検出ゾーンでの検出を、金コロイド粒子などの金属コロイド粒子やラテックス粒子が有する赤色や青色の色彩を利用して行う場合には、テストラインの着色の有無に拘わらず、コントロールラインにおいて着色ラインが現れた場合には、デバイスは正常に機能したことが確認される。一方、テストラインの着色の有無に拘わらず、コントロールラインにおいて着色ラインが現れない場合には、デバイスは正常に機能していないことが確認される。
　本発明における「吸収ゾーン」は、展開要素中を毛管現象により移動してくる液体試料を吸収するために、展開要素に接して配置することができる（例えば、適用ゾーンが配置された側と反対側の位置）。該吸収ゾーンは、前記の展開要素と同一または異なる材質からなるシート状またはストリップ状の支持体であっても良い。
　この吸収ゾーンは、その機能の面から吸収パッドと称することもできる。
　上記のいずれの態様も含め、本発明においては、上述した種々の核酸（標的核酸、各種のオリゴヌクレオチド、核酸ハイブリッド、等）を含む液体試料を前記展開要素中で展開させるためのバッファー中に少なくとも１つの変性剤またはカオトロピック剤を存在させることができる。該バッファー中には、さらに核酸のハイブリダイゼーションにおいて通常使用される少なくとも１つの無機塩を存在させることができる。即ち、本発明の核酸クロマトグラフィーにおいては、変性剤またはカオトロピック剤を存在させることにより、標的核酸における1本鎖領域の適度な形成および標的核酸と各種のオリゴヌクレオチドとの特異的結合が促進され、また標的核酸と各種のオリゴヌクレオチドとの非特異的反応による結合が低減し、特異的反応の促進により分解能が高められ、検出下限が低下することにより、標的核酸の検出、定量の感度、正確性および迅速性を増大させることができる。
　本発明においては、前記のいずれの態様のデバイスも、不透湿性固体材料からなるケース（ハウジング）中に配置させておくことができる。
　このケース（ハウジング）中へ配置された本発明のデバイスの一つの態様としては、図５－１および図５－２に模式的に示される態様を例示することができる。
　図５－２に模式的に記載される態様は、図５－１に模式的に記載される態様に包含される各種の態様のうちの好ましい態様の一例であって、当該デバイスにおける「展開要素」が、上述した標的核酸を検出するためのテストラインとしての検出ゾーンに加え、上述のとおりの、該デバイスが正常に機能するか否かを確認するための、インターナルコントロール（対照）としての核酸を検出するためのコントロールラインとしての検出ゾーンを併せて備える態様である。
　該ケース（ハウジング）は、上述した本発明のデバイス（キット）が備える適用ゾーンに試料を適用するための試料適用口、および検出ゾーンでの標的核酸の捕捉により生じる変化（例えば、標識Ｌ１に生じる色の変化）を観察するための検出窓を備え得る。
　また、本発明のデバイスを該ケース（ハウジング）中に配置することにより、デバイスに含まれる試薬等が乾燥状態で保ち、室温での長期保存が可能となる。
　不透湿性固体材料からなるケース（ハウジング）としては、公知のまたは市販の製品が採用している任意のケース（ハウジング）を用いることができる。例えば、以下のような公知の技術および態様を、所望により改変しながら調製、使用できる（例えば、特許第2705768号公報、特許第2825349号公報、特開平6-230009号公報、特開平9-145712号公報、特開平2000-356638号公報、等を参照することができる。）。
　本発明においては、前記のデバイスは、試料中の所望の特定の標的核酸Ｎの検出、定量のためのデバイス（この場合、キットとも称する）として調製、提供することができる。
　即ち、例えば、前記に例示されるような態様のデバイスに、さらに、該特定の標的核酸Ｎの検出、定量に必要な、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１'、Ｍ２'、Ｍ３'および／またはＭ４'）、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'（標識Ｌ１で標識されていてもよい）、ならびにオリゴヌクレオチドプローブＲ２'（アンカーＡを有していても良い）を配備させることによりキットとすることができる。
　また、例えば、試料中に含まれる標的核酸Ｎを、PCRに等により増幅した後に検出、定量する場合には、前記のキットに、該標的核酸ＮのPCR等による増幅に必要な一対の増幅用プライマー（例えばPCRプライマー）をさらに配備したキットを提供することができる。
２．　フロースルー型の核酸クロマトグラフィー
　フロースルー型の核酸クロマトグラフィーの原理は、基本的には、上述のラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーの原理と同様であるが、ラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、標的核酸ＮとオリゴヌクレオチドＲ１'および／またはオリゴヌクレオチドＲ２'とのハイブリダイゼーションが支持体（メンブレン）中において水平方向に（横に向かって）進むのに対し、フロースルー型の核酸クロマトグラフィーにおいては、斯かる各ハイブリダイゼーションが、垂直方向に（上から下へ）進む点で相違する。
　本発明においては、このフロースルー型の核酸クロマトグラフィーは、例えば、以下のコンポーネントを垂直方向に（上から下へ）に配置して備えるデバイスを用いて、上述のラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーと同様の操作により行うことができる。
　・少なくとも１または２以上の異なる標的核酸Ｎ（標識Ｌ２で標識されていても良い）を含む液体試料を適用するためのサンプルパッド。
　・標的核酸Ｎごとに設計、調製された、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（Ｍ１、Ｍ２、Ｍ３および／またはＭ４；　1種類以上の、オリゴヌクレオチドＲ１'（標識Ｌ１で標識されていても良い）、および／またはオリゴヌクレオチドＲ２'（アンカーＡを有していても良い）の１つ以上を、所望により含ませることができるコンジュゲートパッド（試薬紙とも称する）。
　・コンジュゲートパッド（試薬紙とも称する）を通過した、核酸ハイブリッド（該標的核酸Ｎと上記の１つ以上の各種オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションにより生成される核酸ハイブリッド）を捕捉し、検出するために、該核酸ハイブリッドを捕捉し得る物質（オリゴヌクレオチドＲ２'、アンカーＡに結合するアクセプターＡ'または標識Ｌ２に結合する物質）が固定化されている検出パッド（検出紙、判定紙とも称する）。
　・所望により、検出パッド（検出紙、判定紙）を通過した液体を吸収するための吸収パッドを備えていてもよい。
　上記のデバイスを用いたフロースルー型の核酸クロマトグラフィーにおいて、標識Ｌ１が例えば、金コロイド粒子などの金属コロイド粒子や、ラテックス粒子などである場合、検出パッド（検出紙、判例紙とも称する）に固定された該核酸ハイブリッドを捕捉し得る物質（オリゴヌクレオチドＲ２'、アンカーＡに結合するアクセプターＡ'または標識Ｌ２に結合する物質）により、Ｌ１標識オリゴヌクレオチドＲ１'がハイブリダイズした標的核酸Ｎを捕捉することにより、検出パッド（検出紙、判定紙とも称する）が、該粒子が有する赤色や青色により着色する。この着色の程度を指標に、標的核酸Ｎの有無、量を測定することができる。
　上記に例示したフロースルー型の核酸クロマトグラフィー用のデバイスおよび該デバイスを用いる核酸クロマトグラフィーの手法の説明における各用語は、前記のラテラルフロー型の核酸クロマトグラフィーにおける各用語と同様に意味を有する。
３．　ハイブリダイゼーション-ELISA
　この方法を用いる本発明の核酸の検出、定量方法は、前述したとおりの、例えば、図２（態様（５）、（６）、（７））、および図４－８に模式的に例示されるとおりの態様を挙げることができる。
　斯かる態様においては、標的核酸Ｎへの、１つ以上のマスクオリゴヌクレオチド（例えば、オリゴヌクレオチドＭ１'、オリゴヌクレオチドＭ２'、オリゴヌクレオチドＭ３'および／またはオリゴヌクレオチドＭ４'）およびアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'のハイブリダイゼーションを含む、核酸と核酸によるハイブリダイゼーションと、標的核酸Ｎに結合させた標識Ｌ２（例えば、蛍光色素、ビオチン、DIG、抗体、酵素、等）と該標識Ｌ２に結合する抗体（例えば、酵素標識抗体）との反応（即ち、ELISA; 酵素標識イムノアッセイ）を組み合わせて、目的の標的核酸を検出、定量することができる。
　本発明においては、このハイブリダイゼーション-ELISAを用いて、試料中の標的核酸を、例えば、以下のようにして検出、定量することができる。
　なお、以下において、標的核酸Ｎ、領域Ｒ２、オリゴヌクレオチドプローブＲ１'、標識Ｌ２、標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎ、領域Ｍ１、領域Ｍ２、マスクオリゴヌクレオチド（オリゴヌクレオチドＭ１'、オリゴヌクレオチドＭ２'）、核酸ハイブリッド、アンカーＡ、アクセプターＡ'等の用語の意義は、上記に定義したとおりである。
　また、以下各操作は、同時または任意の順序で実施され得る。
　・試料中に含まれるか、由来する標的核酸Ｎを、標識物質（以下、「標識Ｌ２」と称する。例えば、蛍光色素（FITC（フルオレセインイソチオシアネート）、6-FAM（6-Carboxyfluorescein）、TET、VIC、HEX、NED、PET、ROX、Cy5、Cy3、Texas Red、JOE、TAMRA、等）、ビオチン、ジゴキシゲニン（DIG）、等）で標識し、Ｌ２標識標的核酸Ｎとする。例えば、標的核酸がPCR等により増幅された核酸に由来する場合には、常法に従って、該PCR等による遺伝子増幅の過程で増幅産物に標識Ｌ２を付することにより、Ｌ２標識標的核酸Ｎを得ることができる。
　・標的核酸Ｎ中の領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２にそれぞれハイブリダイズするマスクオリゴヌクレオチド、即ち、オリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方を設計、調製し、オリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも一方、または両方を、Ｌ２標識標的核酸Ｎにハイブリダイズさせる。
　・同じく、Ｌ２標識標的核酸Ｎに、アンカーＡを有するオリゴヌクレオチドオリゴヌクレオチドＲ２'をハイブリダイズさせる。
　・上記のハイブリダイゼーションを同時または任意の順序で行うことにより、Ｌ２標識核酸に１つ以上のマスクオリゴヌクレオチドおよびアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'がハイブリダイズすることにより核酸ハイブリッドが形成される。
　・一方、容積を有する固体支持体（例えば、チューブ、バイアル、プレート、ビーカー、１つ以上のウェル（well）を有するマイクロプレート、等）の表面に該アンカーＡに結合し得る物質であるアクセプターＡ'（例えば、該アンカーＡがビオチンの場合には、アビジンまたはストレプトアビジン）を固定化する。
　・前述した標的核酸Ｎを含む試料と各オリゴヌクレオチドの混合物をマイクロプレートのウェルに加え、前記のハイブリダイゼーションを通じて生成された該核酸ハイブリッドが、該アンカーＡと、支持体上に固定化されているアクセプターＡ'との結合を介して捕捉される。
　・次に、該反応溶液中に、標識Ｌ２を検出可能な物質（例えば、標識Ｌ２に結合する酵素等で標識された抗体）を加え、標識Ｌ２への該物質の結合により発する色やシグナルを検出することにより、該色やシグナルの程度を指標に、標的核酸Ｎの有無、量を測定する。
　ここで、例えば、標識Ｌ２がFITCである場合には、該物質としては、酵素（例えば、西洋わさびペルオキシダーゼ（HRP））で標識された抗FITC抗体を用いることができる。
種々の細菌のゲノムDNAのPCR産物のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる検出
１．PCR用鋳型DNAの調製
　PCR用の鋳型DNAは、ISOPLANT（NIPPON GENE）を用いてゲノムDNAとして調製した。
　即ち、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、「SA」と略記する；菌株ATCC12600）、表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、「SE」と略記する；菌株ATCC14990）、緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、「PA」と略記する；菌株JCM5962）、腸球菌（Enterococcus faecalis、「EF」と略記する；菌株JCM5803）、大腸菌（Escherichia coli、「EC」と略記する；菌株JCM1649）、Enterobacter cloacae（「ET」と略記する；菌株JCM1232）、および肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、「KP」と略記する；菌株JCM 1662）のそれぞれを3 mLのLB液体培地（ベクトンデッキンソン）で一晩培養して得た被検菌液1 mLを6,000 × gで5分間遠心後、沈渣を300 μLのExtraction Bufferで懸濁した後、150 μLのLysis Bufferを加えて混和後、50℃で15分間反応させた。
　次に各反応液に150 μLのSodium Acetate（pH 5.2）を加えて混和後、氷上で15分間静置し、12,000 × g、4℃、15分間遠心し、上清を回収した。各上清に2.5 倍量の100％ Ethanolを加えて混合した後、12,000 × g、4℃、15分間遠心し、沈渣を70％ Ethanolで洗浄した後、風乾させた。風乾した沈渣にTE buffer [10 mM Tris-HCl（pH 8.0）、1mM Ethylenediamine tetraacetic acid（EDTA）] 100 μL加えて溶解した後、RNase Aを1 μL（終濃度 10 μg/mL）加えて37℃、30分間反応させ、100 μLのTE buffer飽和phenolを加えて混和し、12,000 × g、15分間遠心した後、上清を回収した。10 μLの3 M sodium sacetate buffer（pH 6.0）と2.5 倍量の100% Ethanolを加えて混合した後、12,000 × g、10分間遠心した後、上清を捨て、100 μLの氷冷70％ Ethanolを加えて再度12,000 × g、10分間遠心した。沈渣を風乾した後、50 μLのTE bufferに溶解し、鋳型DNAとした。
２．PCRによる核酸増幅
　PCRにはTAKARA社のPrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用いた。まず、PrimeSTAR HS DNA Polymerase（2.5 U/μL）0.2 μL 、５× PrimeSTAR Buffer（Mg2+ plus）4 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）1.6 μL、鋳型 DNA 1 μL、およびそれぞれの細菌由来の鋳型ゲノムDNAに特異的な一対のオリゴヌクレオチドプライマー（10 pmol/μL）各0.4μLを滅菌水で20 μLにメスアップした。
　SA用のPCRプライマーとして以下に示すSA1F及びSA1Rを使用した。
　　・SA1F：5'- GGATTCAATGTCACATGAGCGTGATAAAAT -3' ［配列番号１］
　　・SA1R：5'- AAAGCTCAAGGATATGCGATTACTGAAGCAG -3' ［配列番号２］
　SE用のPCRプライマーとして以下に示すSE1F及びSE1Rを使用した。
　　・SE1F：5'- TCAGAGGTCATGGAAAATCTTCACGAAC -3' ［配列番号３］
　　・SE1R：5'- ATTGCCTCAGATTTATTAAAGCCTGCTAATTCTTC -3' ［配列番号４］
　PA用のPCRプライマーとして以下に示すPA1F及びPA1Rを使用した。
　　・PA1F：5'- AAGATCGGCGTATTCATCGGCGTC -3' ［配列番号５］
　　・PA1R：5'- CCCAGGTCCTGATAGACCAGTTGATACCC -3' ［配列番号６］
　EF用のPCRプライマーとして以下に示すEF1F及びEF1Rを使用した。
　　・EF1F：5'- GAAGACAACGATTTATGTTTACGCTTTGGCA -3' ［配列番号７］
　　・EF1R：5'- AATTCGGCGTATCAGCCATTTTCATTT -3' ［配列番号８］
　EC用のPCRプライマーとして以下に示すEC1F及びEC1Rを使用した。
　　・EC1F：5'- GTCAGGTAAGGCTAATTTCATTACCAGCAAAGG -3' ［配列番号９］（配列番号４１のオリゴヌクレオチドEFA1と同一配列）
　　・EC1R：5'- CGGTCAGCCATAGGGTAAATGACCAC -3' ［配列番号１０］
　ET用のPCRプライマーとして以下に示すET1F及びET1Rを使用した。
　　・ET1F：5'- GTTTCTGGCACGGCGTCAGC -3' ［配列番号１１］
　　・ET1R：5'- TGTGTGTCTAATCAGTTCCGCAGGG -3' ［配列番号１２］
　KP用のPCRプライマーとして以下に示すKP1F及びKP1Rを使用した。
　　・KP1F：5'- CAGCCATCAGGTTGAGCATCATTAATCTT -3' ［配列番号１３］
　　・KP1R：5'- CAGCCGGAGAAATAGAGAAATCTTATGAATCAT -3' ［配列番号１４］
　PCRはVeriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で3分間保持した後、98℃で10秒間、68℃で1分間の反応を40サイクル繰り返し、68℃で5分間保持の条件で反応させた。
３．PCR産物のアガロースゲル電気泳動による判定
　増幅したPCR産物は、ミューピッド（アドバンス）を用いたアガロースゲル電気泳動により、2％アガロース（Agarose I、AMRESCO）、1× TAE バッファー[40 mM Tris-HCl （pH 8.0）、40 mM Acetic acid、1.0 mM EDTA] を用いて分離した。電気泳動後は、1 μg/mL エチジウムブロマイド溶液で染色し、染色後のDNAは、ゲルドキュメンテーション解析システムChemiDoc XRS（Bio-Rad Laboratories, Inc.）を用いて、紫外線下（260 nm）で撮影した。
４．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　核酸クロマトグラフィーによるEC由来核酸の検出において用いる金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを以下のように調製した。
　合成し、ビオチン化した、ビオチン化オリゴヌクレオチド（ビオチン- CGGTCAACGAGATGTGGTCT - 3'） ［配列番号１５］を秤量し、1mM EDTAを加え、0.1M MOPS（3-Morpholinopropanesulfonic acid）緩衝液（pH7.8）を用いて希釈し、0.15nmolのビオチン化オリゴヌクレオチド溶液を調製した。
　ビオチン化オリゴヌクレオチド溶液に、ストレプトアビジン結合金コロイド粒子（BBI社製）を等量加え、良く撹拌した後、37℃、1時間インキュベートした。次に溶液に、終濃度0.1％になるようビオチン溶液を加えて、更に37℃、15分インキュベートした。得られた混合溶液を15,000 × g、5分間遠心した後、上清を捨て、１ｍM EDTA、0.5％BSA加20mM Tris-HCl(8.0) 5mlを加えて、再度15,000 × g、5分間遠心を行い、上清を除去し、１ｍM EDTA、0.5％BSA加20mM Tris-HCl(8.0) を加えて撹拌した。この溶液をEC由来核酸の検出に用いられる金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの溶液とした。
　以下、上記と同様の方法で、各種細菌（SA、SE、PA、EF、ET、KP）由来の核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出において用いる金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを調製した。
　上記キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・SA核酸検出用(SAB)：5'- GGCTCATCTTCTAGTGGTGC - 3' ［配列番号１６］
　・SE核酸検出用(SEB)：5'- GGCCAAAAGTGAAGACATTG - 3' ［配列番号１７］
　・PA核酸検出用(PAB)：5'- CCATCTTTTCCAGGCGATGC - 3' ［配列番号１８］
　・EF核酸検出用(EFB)：5'- ACAAATGGGGCTGGAGGTTC - 3' ［配列番号１９］
　・ET核酸検出用(ETB)：5' - CAACCCTCAGGACACCACTT - 3'［配列番号２０］
　・KP核酸検出用(KPB)：5' - CAACTCGGGATCGGCAAACA - 3' ［配列番号２１］
５．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　核酸クロマトグラフィーによるEC由来核酸の検出において用いるメンブレンに固定化するBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを以下のように調製した。Sigma社製の牛血清アルブミン（BSA）150 mgを5 mM EDTAを加えた0.1 M リン酸緩衝液（pH6.7）2 mlに溶解した。
　次にThermo Scientific社製のSATA （N-succinimidyl-S -acetylthioacetate）をBSAの4倍モルになるよう調製し、37℃、90分インキュベートした。その後、混合液に終濃度0.5 Mになるようヒドロキシアミン溶液を加えて、更に37℃、60分インキュベートする。これらの混合液に2 M リン酸緩衝液を加えて、ｐH6.0に調製しマレイミド化BSA溶液とした。
　合成したオリゴヌクレオチド（5'-CGACAGTACGCAGCCACGAT - 3'） ［配列番号２２］を秤量し、5mM EDTAを加えた0.1Mリン酸緩衝液（pH6.0）を用いて希釈し、650 nmol/mlのオリゴヌクレオチド溶液を調製した。ドージン化学社製EMCS（N-[6-Maleimidocaproyloxy]succinimide）をオリゴヌクレオチドの50倍モルとなるように調製し、オリゴヌクレオチド溶液と混合し、37℃で30分インキュベートした。その後、常法に従い、エタノール沈殿を行った。
　沈殿に5 mM EDTA加 0.1 Mリン酸緩衝液（pH6.0）を加えて溶解し、等量のマレイミド化BSA溶液を加え、37℃、60分インキュベートした。その後、N-エチルマレイミドを終濃度0.1％になるように添加した。マレイミド化BSAとオリゴヌクレオチドの混合物の全量を、Bio Sepra社製ACA44充填カラム（内径：1.5cm x 60 cm）を用いて、5mM EDTAを加えた0.1Mリン酸緩衝液（pH6.0）緩衝液で溶出させ、精製した。
　以下、上記と同様の方法で、各種細菌（SA、SE、PA、EF、ET、KP）由来の核酸の核酸クロマトグラフィーによる検出においてメンブレンに固定されるBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを調製した。
　BSAと結合させるディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・SA核酸検出用(SAA)：5'- GCCGTGCTCAATACAGCTCC - 3' ［配列番号２３］
　・SE核酸検出用(SEA)：5'- GGACATGATATGGGGGGCAT - 3' ［配列番号２４］
　・PA核酸検出用(PAA)：5'- CGAGACGGCCCCAGACCTAT - 3' ［配列番号２５］
　・EF核酸検出用(EFA)：5'- AAGCAGGCTATCGGATTCTC - 3' ［配列番号２６］
　・ET核酸検出用(ETA)：5'- GTGGCTGACCTTAATGAACC - 3' ［配列番号２７］
　・KP核酸検出用(KPA)：5'- ATCACTGGCTGGCAAGGCAC - 3' ［配列番号２８］
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　BioDot社製XYXZ300塗布機を用いて、Advanced Microdevice社製ニトロセルロースメンブレン上に、BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを、1.1μg/テスト（１テストは1mmx5mm幅のラインを意味する）になるように塗布し、室温で一晩乾燥することによりディテクションオリゴヌクレオチドを、BSAを介してメンブレン上のテストラインに固定化した。
　次に2％BSAを加えた0.1Mリン酸緩衝液(pH6.0)に、ディテクションオリゴヌクレオチドを固定化したメンブレンを4℃、1晩浸漬させブロッキングを行った。その後、メンブレンを室温で十分に乾燥させた。ディテクションオリゴヌクレオチドが固定化された乾燥済のメンブレンに、Advanced Microdevice社製サンプルパッド、吸水パッドおよび日本ポール社製コンジュゲートパッドを貼り合わせた。貼り合わせたシートをBioDot社ギロチンカッターを用いて5mm幅に切断し、核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップとした（図５－１）。
　前記において細菌ごとに調製したBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを用いて細菌ごとにテストストリップを調製した。
７．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・SA核酸検出用(SAA1)：5'- CAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTTCTAAT -3' ［配列番号２９］
　・SA核酸検出用(SAA2)：5'- ACTTGTAGAGACACCCGTTAATACT -3' ［配列番号３０］
　・SA核酸検出用(SAB1)：5'- TAAAGCGTCGCTTAGAAATAATC -3' ［配列番号３１］
　・SA核酸検出用(SAB2)：5'- TAAATCTTCAAGTATTCGTGTAGATG -3' ［配列番号３２］
　・SE核酸検出用(SEA1)：5'- TAAATATCGATTCTGCACATATTTTA -3' ［配列番号３３］
　・SE核酸検出用(SEA2)：5'- CATTGCGAGTGAATTTACTG -3' ［配列番号３４］
　・SE核酸検出用(SEB1)：5'- GTGATTACATTGACAATTGTTTC -3' ［配列番号３５］
　・SE核酸検出用(SEB2)：5'- CAAATGGTTTCAACAAATTAATG -3' ［配列番号３６］
　・PA核酸検出用(PAA1)：5'- AGCCTAGTCCAGCGGG -3' ［配列番号３７］
　・PA核酸検出用(PAA2)：5'- TTGTCATTACGGGGCGT -3' ［配列番号３８］
　・PA核酸検出用(PAB1)：5'- GACCTCAGGCCGTTAACAT -3' ［配列番号３９］
　・PA核酸検出用(PAB2)：5'- CGTGCATCGGGCTGTG -3' ［配列番号４０］
　・EF核酸検出用(EFA1)：5'- GAAGACAACGATTTATGTTTACGCTTTGGCA -3' ［配列番号４１］（配列番号９のオリゴヌクレオチドEC1Fと同一配列）
　・EF核酸検出用(EFA2)：5'- TATACGCCTTTTGAAACGGT -3' ［配列番号４２］
　・EF核酸検出用(EFB1)：5'- AATCAATGGGGAAATTTTTTA -3' ［配列番号４３］
　・EF核酸検出用(EFB2)：5'- TTTTAATGAGTCAAAGATTAGCGG -3' ［配列番号４４］
　・EC核酸検出用(ECC1)：5'- TAACAGTAAGCTGGTCATGG -3' ［配列番号４５］
　・EC核酸検出用(ECC2)：5'- CAGTACAACACGACGATTTATG -3' ［配列番号４６］
　・EC核酸検出用(ECD1)：5'- GATCGCTATCGAGGGGTATT -3' ［配列番号４７］
　・EC核酸検出用(ECD2)：5'- TTATGAGTGCTAAACAAGCTAAA -3' ［配列番号４８］
　・ET核酸検出用(ETA1)：5'- GGTCAACACCCCACAGGA -3' ［配列番号４９］
　・ET核酸検出用(ETA2)：5'- AAATCATTCAAAAGAATGCTGAAC -3' ［配列番号５０］
　・ET核酸検出用(ETB1)：5'- TGGCGGTATGGATGGG -3' ［配列番号５１］
　・ET核酸検出用(ETB2)：5'- TGCTGCATACGCTCTCTGA -3' ［配列番号５２］
　・KP核酸検出用(KPA1)：5'- CGCGGCCCTTTTTT -3' ［配列番号５３］
　・KP核酸検出用(KPA2)：5'- ATATTGCCATTGTTTATTTTTC -3' ［配列番号５４］
　・KP核酸検出用(KPB1)：5'- CTATTTTTAGCAGCTTGTTCAA -3' ［配列番号５５］
　・KP核酸検出用(KPB2)：5'- CTCATTTACCAGGAATAATCTTAC -3' ［配列番号５６］
８．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で細菌ごとに調製したテストストリップを用いた（図５－１）。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で調製した各細菌に由来するゲノム核酸のPCR産物の溶液10 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（28.6％ Formamide、1.43×SSC、0.143％ BSA、1.43 mM EDTA、0.143％ Dextran Sulfate）を49 μL加え、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に、前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを10 μL添加し、全量をメンブレン（テストストリップ）のサンプルパッド（図５－１）に滴下した。
　なお、対照試験として、マスクオリゴヌクレオチドを用いずに、同様に核酸クロマトグラフィーを行った。
９．結果
　各細菌のそれぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を図６に示す。
　この結果、PCRにより、それぞれの細菌について、目的とするゲノムDNAが増幅されたことが示された。
　各細菌のPCRによる増幅したゲノムDNAの核酸クロマトグラフィーの結果を図７に示す。
　この結果、マスクオリゴヌクレオチドを用いることで、発色感度が顕著に上昇した。
細菌のゲノムDNAの制限酵素処理断片のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる検出
１．細菌ゲノムDNAの調製
　大腸菌（Escherichia coli、以下「EC」と略記する；菌株JCM1649）及びEnterobacter cloacae（以下「ET」と略記する；菌株JCM1232）を5 mLのBHI液体培地（ベクトンデッキンソン）で一晩培養した。被検菌液を1,870 × g（Allegra 6KR Centrifuge、ベクトンデッキンソン）で10分間遠心して上清を捨てた後、TE バッファー［10 mM Tris-HCl（pH 8.0）、1mM Ethylenediamine tetraacetic acid（EDTA）]で洗浄し、再度1,870 × gで10分間遠心し、上清を捨て、900 μLのTE バッファーで懸濁した。次に懸濁液に5 mg/mL リゾチーム（生化学工業）を300 μL加えて37℃で30分、その後10 mg/mL Protease K（ロシュ・ダイアグノスティックス）150 μLを加えて37℃で30分処理し、さらに10 ％ SDS 150 μLを添加した。
　その液に等量のTE飽和フェノールを加えて混和した後、1,870 × gで10分間遠心して上清を回収し、上記操作を再度繰り返して上清液を回収した。次に回収した上清液に4 mLの冷エタノールを添加して混和しゲノムDNAを析出させ、白金耳によりゲノムDNAを巻き取り回収した後、冷70％エタノールで洗浄し、風乾した後500 μLのTEに溶解した。次に溶液に、0.5 mg/mL RNase A（ロシュ・ダイアグノスティックス）を20 μL加えて37℃で2時間、その後10 mg/mL Protease K（ロシュ・ダイアグノスティックス）20 μLを加えて55℃で1時間処理した。
　その液に等量のTE飽和フェノール／クロロホルム液を加えて混和した後、1,870 × gで10分間遠心して上清を回収し、上記操作をさらに2回繰り返して上清液を得た。その後、得られた上清液に1 mLのエーテルを加えて混和した後1,870 × gで10分間遠心して上清を捨て、再度同じ操作を繰り返した後、風乾によりエーテルを気化させ、2 mLの冷エタノールを添加して混和してゲノムDNAを析出させ、白金耳によりゲノムDNAを巻き取り回収した後、冷70％エタノールで洗浄し、風乾した後200 μLのTEに溶解して細菌ゲノムDNA溶液を得た。
２．細菌ゲノムDANの制限酵素による処理
　制限酵素はBgl II （タカラバイオ）を用いた。前記で得た150 μgの細菌ゲノム、およびH バッファー250 μL、Bgl II （10 U/μL）100 μLを滅菌水で2.5 mLにメスアップし、37℃で16時間反応させた。次いで、反応液に、5 mLの冷エタノールを添加して混和し、20,000 × gで10分間遠心してDNAを沈殿させ、上清を捨てた後に冷70％エタノールで洗浄し、風乾した後50 μLのTEに溶解して制限酵素処理された細菌ゲノムDNAの断片を得た。
３．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　5'末端チオール化オリゴヌクレオチドを滅菌蒸留水で200 μMとなるように溶解し、その200 μLに、0.08 M DTT（dithiothreitol）を200 μL添加して室温で16時間放置した。その後、滅菌蒸留水にて溶媒置換を行った。10 μMの5'末端チオール化オリゴヌクレオチド200 μLを金コロイド粒子溶液（ワインレッドケミカル社、或いはBritish BioCell International社）200 μLと混合し、50℃で22時間放置した。次に200 μMのdATPを200 μL添加して6時間放置した後、最終濃度が0.1 M NaCl、10 mM リン酸緩衝液（pH 7.0）とし、更に12時間放置した。その後、5,000 × g、15分間遠心した後、同緩衝液で洗浄し再分散させ、核酸クロマトグラフィーで使用する金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを得た。必要に応じ、0.1% PEG（polyethylene glycol；分子量20,000）を含む同緩衝液を用いた。
　なお、上記キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・ET核酸検出用(ETB2-2)：5'- GTGCCGCTCACCACACCATT -3' ［配列番号５７］
４．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例1と同様の方法で調製した。
　ディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・ET核酸検出用(ETA2-2)：5'- TCACGACGACGAACGTACGC -3' ［配列番号５８］
５．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　BioDot社製XYXZ300塗布機を用いて、Advanced Microdevice社製ニトロセルロースメンブレン上に、BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを、1.1μg/テスト（１テストは1mmx5mm幅のラインを意味する）になるように塗布し、室温で一晩乾燥することによりディテクションオリゴヌクレオチドを、BSAを介してメンブレン上のテストラインに固定化した。
　次に2％BSAを加えた0.1Mリン酸緩衝液(pH6.0)に、ディテクションオリゴヌクレオチドを固定化したメンブレンを4℃、1晩浸漬させブロッキングを行った。その後、メンブレンを室温で十分に乾燥させた。ディテクションオリゴヌクレオチドが固定化された乾燥済のメンブレンに、Advanced Microdevice社製サンプルパッド、吸水パッドおよび日本ポール社製コンジュゲートパッドを貼り合わせた。貼り合わせたシートをBioDot社ギロチンカッターを用いて5mm幅に切断し、核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップとした（図１）。
６．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノムDNA核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・ET核酸検出用(ETA3)：5'- ACCAGTGGGGAGATCACG -3' ［配列番号５９］
　・ET核酸検出用(ETA4)：5'- GATAAACTCGTTACCGGTCA -3' ［配列番号６０］
　・ET核酸検出用(ETB3)：5'- AGAACAGCCTGCAGGAGA -3' ［配列番号６１］
　・ET核酸検出用(ETB4)：5'- AACTACGTATGGCTGAGCC -3' ［配列番号６２］
７．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で調製したテストストリップを用いた（図５－１）。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で制限酵素処理により調製した細菌（ET、EC）のゲノムDNA断片の溶液10 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（28.6％ Formamide、1.43×SSC、0.143％ BSA、1.43 mM EDTA、0.143％ Dextran Sulfate）を49 μL加え、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に、前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを10 μL添加し、全量をメンブレン（テストストリップ）のサンプルパッド（図５－１）に滴下した。
　なお、対照試験として、マスクオリゴヌクレオチドを用いずに、同様に核酸クロマトグラフィーを行った。
８．結果
　制限酵素処理した細菌のゲノムDNA断片の核酸クロマトグラフィーの結果を図８に示す。
　この結果、検出すべき核酸が、細菌のゲノムDNA（PCR産物ではない）であっても、マスク用オリゴヌクレオチドを用いることで標的核酸が高感度で検出された。
細菌ゲノムDNAのマルチプレックスPCRによるPCR産物のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる標的核酸の特異的な検出
１．マルチプレックスPCR用の鋳型ゲノムDNAの調製
　血液寒天培地上で、Campylobacter jejuni (菌株ATCC700819)、Campylobacter jejuni (菌株81-176)、Campylobacter coli (菌株ATCC33559）、Campylobacter coli (菌株ATCC43478）、Campylobacter fetus (菌株ATCC27374）、Campylobacter fetus (菌株ATCC19438）、Campylobacter hyointestinalis (菌株ATCC35217）、Campylobacter lari (菌株ATCC43675)およびCampylobacter upsaliensis (菌株ATCC43956株）を37℃、3日間、微好気条件下で培養した。得られた各菌株のコロニーをTEに懸濁し、ボイル法を用いて鋳型ゲノムDNAを調製した。すなわち、懸濁液を沸騰水浴中で10分間煮沸し、氷水上で急冷した後、12,000 × g、10分間遠心した後、上清を分取し、鋳型ゲノムDNAを得た。
　また、E. coli (菌株C600)を、BHI液体培地（ベクトンデッキンソン）で一晩培養した後、TEにて10倍希釈し、得られた希釈液からボイル法を用いて同様にして鋳型ゲノムDNAを調製した。
２．マルチプレックスPCRによる核酸増幅
　PCRにはTAKARA社のEx Taq DNA Polymeraseを用いた。まず、Ex Taq DNA Polymerase（2.5 U/μL）0.2 μL 、10× Ex Taq Buffer 4 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）3.2 μL、鋳型ゲノムDNA 1 μL、ならびに以下に示す３菌種（Campylobacter jejuni、Campylobacter coli、およびCampylobacter fetus）のそれぞれの鋳型ゲノムDNA中のcdtC遺伝子に特異的な一対のオリゴヌクレオチドプライマー（10 pmol/μL、各2 μL、合計12 μL）を、滅菌水で40 μLにメスアップし、マルチプレックスPCRを行った。PCRは、Veriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、反応系を94℃で3分間保持した後、94℃で30秒間、55℃で30秒間、72℃で30秒間の反応を30サイクル繰り返し、72℃で3分間保持の条件で反応させた。
　Campylobacter jejuni用のPCRプライマーとして以下に示すCjcdtCU1及びCjcdtCR2を使用した。
　　・CjcdtCU1：5'- TTTAGCCTTTGCAACTCCTA-3' ［配列番号６３］
　　・CjcdtCR2：5'- AAGGGGTAGCAGCTGTTAA -3' ［配列番号６４］
　Campylobacter coli用のプライマーとして以下に示すCccdtCU1及びCccdtCR1を使用した。
　　・CccdtCU1：5'- TAGGGATATGCACGCAAAAG -3' ［配列番号６５］
　　・CccdtCR1：5'- GCTTAATACAGTTACGATAG -3' ［配列番号６６］
　Campylobacter fetus用のプライマーとして以下に示すCfcdtCU2及びCfcdtCR1を使用した。
　　・CfcdtCU2：5'- AAGCATAAGTTTTGCAAACG -3' ［配列番号６７］
　　・CfcdtCR1：5'- GTTTGGATTTTCAAATGTTCC -3' ［配列番号６８］
４．PCR産物のアガロースゲル電気泳動による判定
　マルチプレックスPCRにより増幅したPCR産物は、ミューピッド（アドバンス）を用いたアガロースゲル電気泳動により、2％アガロース（Agarose I、AMRESCO）、1× TAE バッファー［40 mM Tris-HCl （pH 8.0）、40 mM Acetic acid、1.0 mM EDTA］を用いて分離した。電気泳動後は、1 μg/mL エチジウムブロマイド溶液で染色し、染色後のDNAは、ゲルドキュメンテーション解析システムChemiDoc XRS（Bio-Rad Laboratories, Inc.）を用いて、紫外線下（260 nm）で撮影した。
５．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　核酸クロマトグラフィーによる各細菌ゲノムDNAの検出において用いる金コロイド粒子標識オリゴヌクレオチドを、実施例２と同様の方法で調製した。
　各細菌の検出用のキャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・Cj核酸検出用(Cj-SH): 5'- CCTTGCACCCTAGATCCTAT-3' ［配列番号６９］
　・Cc核酸検出用(Cc-SH): 5'- TCCTGACTCTAGTATCGCCA -3' ［配列番号７０］
　・Cf核酸検出用(Cf-SH): 5'- TCAGATCGCTCCTAGCGGAT -3' ［配列番号７１］
６．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　100 nmolの5'末端アミノ化オリゴヌクレオチドを含む0.1 M MOPS（3-Morpholinopropanesulfonic acid）緩衝液400 μLに、3.5 mg/50 μLのEMCS（N-[6-Maleimidocaproyloxy] succinimide）を添加し、37℃で30分間反応させた。反応後、エタノール沈殿法により精製し、5 mM EDTA（ethylenediaminetetraacetic acid）、0.1 mM リン酸緩衝液（pH 6.0）に溶解した。マレイミド基が導入されたオリゴヌクレオチドの量を260 nmにおける吸光度より求めた。
　Sulfhydryl Addition Kit（Thermo scientific）を用いて、BSA（Bovine Serum Albumin）にSATA（N-succinimidyl-S-acetylthioacetate）を導入した。即ち、2 mgのBSAを溶解した1 mLのPBS（Phosphate buffered saline）に、17.3 mMのSATA溶液を16 μL添加し、室温で30分間反応させた。次に5 mgのHydroxylamine・HClを溶解させたConjugation Buffer Stock（10 X）100 μLを添加し、室温で2時間反応させた。その後、Maleimide Conjugation Bufferに溶媒交換した。回収した溶出液の280 nmにおける吸光度からSH基導入BSAの量を求め、次の反応に用いた。
　上記で調製したマレイミド基導入オリゴヌクレオチドとSH基導入BSAを混合し、37℃で1時間反応させ、BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを調製した。反応後、Amicon Ultra 30K（ミリポア）を用いて、BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを濃縮し、Quick Start Bradford 1 X Dye Reagent（Bio-Rad）を用いて量を測定した。
　各細菌の検出用のディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・Cj核酸検出用(Cj-NH): 5'- AGCGCCTTTAGGGATACCTC -3' ［配列番号７２］
　・Cc核酸検出用(Cc-NH): 5'- TAAGCCCTAGGGGCGATGAT -3' ［配列番号７３］
　・Cf核酸検出用(Cf-NH): 5'- ACGCAATGCAAACACCGGAA -3' ［配列番号７４］
６．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノムDNA核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・Cj核酸検出用(Cjf1): 5'- GCTTAGAAACGGGAATTTTTTTA -3' ［配列番号７５］
　・Cj核酸検出用(Cjf2): 5'- AAAAGATCCTATTGATCAAAATTGG -3' ［配列番号７６］
　・Cj核酸検出用(Cjg1): 5'- AAAACGCTTTGGAATAGCC-3' ［配列番号７７］
　・Cj核酸検出用(Cjg2): 5'- TTTTTTTGCTGAAGTAAATGAAC-3' ［配列番号７８］
　・Cc核酸検出用(Ccf1): 5'- GCCTTTTGGCTATGTTCAGTTTA -3' ［配列番号７９］
　・Cc核酸検出用(Ccf2): 5'- ATATGCCTAGCTGTTTTAAGTGAA -3' ［配列番号８０］
　・Cc核酸検出用(Ccg1): 5'- CAATCAATGCATGAGCACTTT -3' ［配列番号８１］
　・Cc核酸検出用(Ccg2): 5'- TAGAAAATCGCTTTGGTTTAGG -3' ［配列番号８２］
　・Cf核酸検出用(Cff1): 5'- CATAACCGACGCTTTTCAAAT -3' ［配列番号８３］
　・Cf核酸検出用(Cff2): 5'- TTCCTATAAATATAAAGCGATTTTCAG -3' ［配列番号８４］
　・Cf核酸検出用(Cfg1): 5'- CCGACGTAAAAATGTGCCT -3' ［配列番号８５］
　・Cf核酸検出用(Cfg2): 5'- TTTTAGCACTAAAAAACTGCAAG -3' ［配列番号８６］
７．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　吸収パッドとしてCellulose Fiber Sample Pad（ミリポア）を装着したニトロセルロースメンブレンであるHi Flow Plus 180 Membrane Card（ミリポア）を約5 mm幅に切断した。ニトロセルロース上の一部（テストライン）に前記で調製した1 mg/mLのBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを1 μLスポットして風乾し、ディテクションオリゴヌクレオチドをBSAを介して固定化し、細菌ごとの核酸クロマトグラフィー用のメンブレン（テストストリップ）を作製した（図５－１）。
８．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で調製した各細菌用のメンブレン（テストストリップ）を用いた。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で調製した各細菌に由来するゲノム核酸のマルチプレックスPCRによるPCR産物の溶液10 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（28.6％ Formamide、1.43×SSC、0.143％ BSA、1.43 mM EDTA、0.143％ Dextran Sulfate）を49 μL加え、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に、前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを10 μL添加し、全量をメンブレン（テストストリップ）のサンプルパッド（図５－１）に滴下した。
９．結果
　C. jejuni、C. coliおよびC. fetusのcdtC遺伝子を鋳型としてマルチプレックスPCRによるPCR産物のアガロースゲル電気泳動による検出の結果を図９に示す。
　この結果、マルチプレックスPCRにより、３菌種のそれぞれについて、目的とするcdtC遺伝子が増幅されたことが示された。
　一方、近縁種である他のカンピロバクター属菌および大腸菌では増幅バンドは検出されなかった。
　各細菌それぞれについてのPCR産物を、前記で作製したC. jejuni用の核酸クロマトグラフィー、C. coli用の核酸クロマトグラフィーおよびC. fetus用の核酸クロマトグラフィーに供しところ、それぞれのPCR産物が鮮明に検出された（図１０）。
　核酸クロマトグラフィーにおけるマスクオリゴヌクレオチドの効果
１．PCR用鋳型DNAの調製
　ECに対するPCR用の鋳型DNAは、実施例１と同様の方法で調製した。
２．PCRによる核酸増幅
　PCRにはTAKARA社のTakara LA Taqを用いた。まず、Takara LA Taq（5 U/μL）0.2 μL 、10× LA PCR BufferII（Mg2+ free）2 μL、25 mM MgCl2 2 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）1.6 μL、鋳型 DNA 1 μL、および一対のオリゴヌクレオチドプライマー（10 pmol/μL）各0.4μLを滅菌水で20 μLにメスアップした。
　EC用のPCRプライマーとして以下に示すEC2F及びEC2Rを使用した。
　　・EC2F：5'- CGCATTTTTATTAATGCTTTCG -3' [配列番号８７]
　　・EC2R：5'- GGGCTGGCAGAGAGAGTG -3' [配列番号８８]
　PCRはVeriti 96 well Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で3分間保持した後、94℃で30秒間、60℃で1分間、72℃で1分間の反応を40サイクル繰り返し、72℃で5分間保持の条件で反応させた。
３．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例１と同様の方法で調製した。
　キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・EC核酸検出用(ECB2)：5'- TCGTGGGAACACAACCAGTC - 3' [配列番号８９]
４．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例１と同様の方法で調製した。
　ディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・EC核酸検出用(ECA2)：5'- GCCTGATAAACTTCCGCCTC - 3' [配列番号９０]
５．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌由来PCR産物上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチド（ECC3、ECC4）を調製した。
　また、対照試験用に、前記で調製したEC遺伝子増幅用の一対のオリゴヌクレオチドプライマー（EC2FおよびEC2R）を用いたPCRにより増幅されるPCR産物の核酸配列には含まれない核酸配列を有する２つのコントロールオリゴヌクレオチド（CT7、CT8）を調製した。
　調製したディテクションオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・ECC3：5'- CAACCAGTTGATGATGGATC -3' [配列番号９１]
　　・ECC4：5'- GCCACTCTCTCTGCCAGC -3' [配列番号９２]
　　・CT7：5'- CGTGAAGATTTTCCATGACC -3' [配列番号９３]
　　・CT8：5'- CATAAACCCGAGGAATAACG -3' [配列番号９４]
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　　実施例１と同様の方法で調製した。
７．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で細菌ごとに調製したテストストリップを用いた（図５－１）。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で調製した各細菌に由来するゲノム核酸のPCR産物の溶液10 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（20％ Formamide、1×SSC、0.1％ BSA、1 mM EDTA）を90 μL加え、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に、前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを10 μL添加し、全量をメンブレン（テストストリップ）のサンプルパッド（図５－１）に滴下した。
　なお、対照試験として、マスクオリゴヌクレオチドを用いない核酸クロマトグラフィーを行った。
８．結果
　各マスクオリゴヌクレオチドを組み合わせて添加した際の核酸クロマトグラフィーの結果を図１１に示す。
　マスクオリゴヌクレオチド２種（ECC3＋ECC4）或いは１種（ECC4）のみの添加で核酸クロマトグラフィーの発色感度が高まった。
核酸クロマトグラフィーにおける至適マスクオリゴヌクレオチドの検討
１．PCR用鋳型DNAの調製
　SA、SE及びEFに対するPCR用の鋳型DNAは、実施例１と同様の方法で調製した。
２．PCRによる核酸増幅
　SA、SE及びEFに対するPCR産物は、実施例１と同様の方法で調製した。
３．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例２と同様の方法で調製した。
　キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAB)：5'- GGCTCATCTTCTAGTGGTGC - 3' [配列番号１６]
　　・SE核酸検出用(SEB)：5'- GGCCAAAAGTGAAGACATTG - 3' [配列番号１７]
　　・EF核酸検出用(EFB)：5'- ACAAATGGGGCTGGAGGTTC - 3' [配列番号１９]
４．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例３と同様の方法で調製した。
　ディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAA)：5'- GCCGTGCTCAATACAGCTCC - 3' [配列番号２３]
　　・SE核酸検出用(SEA)：5'- GGACATGATATGGGGGGCAT - 3' [配列番号２４]
　　・EF核酸検出用(EFA)：5'- AAGCAGGCTATCGGATTCTC - 3' [配列番号２６]
５．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌由来PCR産物上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAB1)：5'- TAAAGCGTCGCTTAGAAATAATC -3' [配列番号３１]
　　・SA核酸検出用(SAB2)：5'- TAAATCTTCAAGTATTCGTGTAGATG -3' [配列番号３２]
　　・SE核酸検出用(SEB1)：5'- GTGATTACATTGACAATTGTTTC -3' [配列番号３５]
　　・SE核酸検出用(SEB2)：5'- CAAATGGTTTCAACAAATTAATG -3' [配列番号３６]
　　・EF核酸検出用(EFB1)：5'- AATCAATGGGGAAATTTTTTA -3' [配列番号４３]
　　・EF核酸検出用(EFB2)：5'- TTTTAATGAGTCAAAGATTAGCGG -3' [配列番号４４]
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌由来PCR産物上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したディテクションオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAA1)：5'- CAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTTCTAAT -3' [配列番号２９]
　　・SA核酸検出用(SAA2)：5'- ACTTGTAGAGACACCCGTTAATACT -3' [配列番号３０]
　　・SE核酸検出用(SEA1)：5'- TAAATATCGATTCTGCACATATTTTA -3' [配列番号３３]
　　・SE核酸検出用(SEA2)：5'- CATTGCGAGTGAATTTACTG -3' [配列番号３４]
　　・EF核酸検出用(EFA1)：5'- GAAGACAACGATTTATGTTTACGCTTTGGCA -3' [配列番号４１]
　　・EF核酸検出用(EFA2)：5'- TATACGCCTTTTGAAACGGT -3' [配列番号４２]
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
実施例３と同様の方法で調製した。
７．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　実施例３と同様の方法で調製した。
８．結果
　各細菌のPCRによる増幅したゲノムDNAの核酸クロマトグラフィーの結果を図１２に示す。
　この結果、キャプチャーオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチド、ディテクションオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチドのどちらがより効果的かはPCR産物の配列に依存するものの、どの細菌においても双方のマスクオリゴヌクレオチド添加により最も発色感度が高まった。
核酸クロマトグラフィーにおける至適マスクオリゴヌクレオチドの検討
（本願発明の核酸クロマトグラフィーによる標的核酸の定量の検討、ならびにマスクオリゴヌクレオチドの条件検討）
１．PCR用鋳型DNAの調製
　SA用の鋳型DNAは、実施例１と同様の方法で調製した。
２．PCRによる核酸増幅
　SAに対するPCR産物は、実施例１と同様の方法で調製した。
３．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例２と同様の方法で調製した。
　キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAB)：5'- GGCTCATCTTCTAGTGGTGC - 3' [配列番号１６]
４．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例１と同様の方法で調製した。
　ディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAA)：5'- GCCGTGCTCAATACAGCTCC - 3' [配列番号２３]
５．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌由来PCR産物上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする以下に示す三対のマスクオリゴヌクレオチドを調製した。
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドに1塩基のギャップもなく隣接したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAB1：5'- TAAAGCGTCGCTTAGAAATAATC -3' [配列番号３１]
　　・SAB2：5'- TAAATCTTCAAGTATTCGTGTAGATG -3' [配列番号３２]
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドから５mer離れたマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAB3：5'- CTAAAGCGTCGCTTAGAAA -3' [配列番号９５]
　　・SAB4：5'- CTTCAAGTATTCGTGTAGATGC -3' [配列番号９６]
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドから10 mer離れたマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAB5：5'- CGCTAAAGCGTCGCTT -3' [配列番号９７]
　　・SAB6：5'- AGTATTCGTGTAGATGCAT -3' [配列番号９８]
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌由来PCR産物上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする三対のマスクオリゴヌクレオチドを細菌ごとに調製した。
　調製したディテクションオリゴヌクレオチドに1塩基のギャップもなく隣接したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAA1：5'- CAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTTCTAAT -3' [配列番号２９]
　　・SAA2：5'- ACTTGTAGAGACACCCGTTAATACT -3' [配列番号３０]
　調製したディテクションオリゴヌクレオチドから５mer離れたマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAA3：5'- AAACAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTT -3' [配列番号９９]
　　・SAA4：5'- TAGAGACACCCGTTAATACTAAATG -3' [配列番号１００]
　調製したディテクションオリゴヌクレオチドから10 mer離れたマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SAA5：5'- TCTTCTAAAACAGTAATATAATAGTCTTTATCTAC -3' [配列番号１０１]
　　・SAA6：5'- ACACCCGTTAATACTAAATGATT -3' [配列番号１０２]
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　実施例１と同様の方法で調製した。
７．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　実施例１と同様の方法で調製した。
　検出にはイムノクロマトリーダ（C10066-10、浜松ホトニクス）を用いて発色強度を測定した。隣接したマスクオリゴヌクレオチドを添加した状態で、X軸にPCR産物濃度、Y軸に発色強度を指標として検量線を作成した。また、発色強度の比較のために、一定濃度のPCR産物を用いて５mer或いは10 mer離れたマスクオリゴヌクレオチドを添加した群、及び対照試験として、マスクオリゴヌクレオチドを用いない核酸クロマトグラフィーでの発色強度を測定し、上記検量線から隣接したマスクオリゴヌクレオチド添加時のPCR産物量に換算した。対照試験での発色強度に相当するPCR産物量を1倍とし、各マスクオリゴヌクレオチド添加時の発色強度に相当するPCR産物量から発色感度を算出した。
８．結果
　隣接したマスクオリゴヌクレオチド添加時の検量線を図１３に示す。
　図に示すように、濃度依存的に発色強度が増し、定量可能であることが示唆された。
　また、各マスクオリゴヌクレオチド添加時の発色強度の比較検討を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表に示すように、隣接したマスクオリゴヌクレオチドが最も発色強度が高かったものの、キャプチャー及びディテクションオリゴヌクレオチドから５mer離れたマスクオリゴヌクレオチド添加でも同等の発色強度が得られた。キャプチャー及びディテクションオリゴヌクレオチドから10 mer離れたマスクオリゴヌクレオチド添加では、隣接したマスクオリゴヌクレオチド添加時の発色強度よりは低下したものの、マスクオリゴヌクレオチド無添加時よりは発色強度が高かった。
核酸クロマトグラフィーにおける至適マスクオリゴヌクレオチドの検討
（マスクオリゴヌクレオチドの標的核酸への接触のタイミングの検討）
１．PCR用鋳型DNAの調製
　SA及びSE用の鋳型DNAは、実施例１と同様の方法で調製した。
２．PCRによる核酸増幅
　SA及びSEに対するPCR産物は、実施例１と同様の方法で調製した。
３．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例２と同様の方法で調製した。
　キャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAB)：5'- GGCTCATCTTCTAGTGGTGC - 3' [配列番号１６]
　　・SE核酸検出用(SEB)：5'- GGCCAAAAGTGAAGACATTG - 3'［配列番号１７］
４．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例3と同様の方法で調製した。
　ディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　　・SA核酸検出用(SAA)：5'- GCCGTGCTCAATACAGCTCC - 3' [配列番号２３]
　　・SE核酸検出用(SEA)：5'- GGACATGATATGGGGGGCAT - 3'［配列番号２４］
５．コンジュゲートパッドの調製
　5.0％ショ糖を含む2 mMリン酸緩衝液（pH7.2）を用いてマスクオリゴヌクレオチドを4μMとなるように希釈した。その溶液を、10 mm×150 mmのサイズに裁断したグラスファイバー（ミリポア）に塗布した後、乾燥したものをコンジュゲートパッドとした。また対照として、マスクオリゴヌクレオチドを含まない5.0％ショ糖を含む2 mMリン酸緩衝液（pH7.2）を塗布、乾燥したコンジュゲートパッドを調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・SA核酸検出用(SAA1)：5'- CAGTAATATAATAGTCTTTATCTACACTTTCTAAT -3' ［配列番号２９］
　・SA核酸検出用(SAA2)：5'- ACTTGTAGAGACACCCGTTAATACT -3' ［配列番号３０］
　・SA核酸検出用(SAB1)：5'- TAAAGCGTCGCTTAGAAATAATC -3' ［配列番号３１］
　・SA核酸検出用(SAB2)：5'- TAAATCTTCAAGTATTCGTGTAGATG -3' ［配列番号３２］
　・SE核酸検出用(SEA1)：5'- TAAATATCGATTCTGCACATATTTTA -3' ［配列番号３３］
　・SE核酸検出用(SEA2)：5'- CATTGCGAGTGAATTTACTG -3' ［配列番号３４］
　・SE核酸検出用(SEB1)：5'- GTGATTACATTGACAATTGTTTC -3' ［配列番号３５］
　・SE核酸検出用(SEB2)：5'- CAAATGGTTTCAACAAATTAATG -3' ［配列番号３６］
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　吸収パッドとしてCellulose Fiber Sample Pad（ミリポア）を装着したニトロセルロースメンブレンであるHi Flow Plus 180 Membrane Card（ミリポア）に、前記で調製したコンジュゲートパッド及びCellulose Fiber Sample Pad（ミリポア）を貼り合わせ、約5 mm幅に切断した。これに、前記で調製した1 mg/mLのBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドを1 μLスポットして風乾し、ディテクションオリゴヌクレオチドをBSAを介して固定化し、核酸クロマトグラフィー用のメンブレン（テストストリップ）を作製した。
７．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　前記で調製したPCR産物或いはTEの溶液10 μLに、4 μMのマスク用オリゴヌクレオチド或いはTEを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（28.6％ Formamide、1.43×SSC、0.143％ BSA、1.43 mM EDTA）を49 μL加え、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に、前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを10 μL添加し、全量をメンブレン（テストストリップ）のサンプルパッドに滴下した。
８．結果
　図１４に示すように、標的PCR産物と金コロイド標識プローブをアプライし、コンジュゲートパッドでマスクオリゴを反応させたケースにおいても、マスクオリゴの効果が発揮され、強い発色が見られた。
ハイブリイゼーション-ELISAによる、オリゴヌクレオチドプローブの標的核酸へのハイブリダイゼーションのマスクオリゴヌクレオチドによる促進効果の検討
１．PCR用鋳型DNAの調製
　QIAamp DNA Blood Midi Kit（QIAGEN）を用いて、ヒト血液から、ヒトβ-globin遺伝子を含むゲノムDNAを調製した。
　また、ボイル法を用いて、大腸菌（Escherichia coli、以下EC）から鋳型ゲノムDNAを調製した。
　即ち、大腸菌（Escherichia coli、以下「EC」と略記；　菌株JCM1649）を3 mLのLB液体培地（ベクトンデッキンソン）で一晩培養した後、被検菌液50 μLをTE バッファー ［10 mM Tris-HCl（pH 8.0）、1mM Ethylenediamine tetraacetic acid（EDTA）］ 450 μLに加え、10分間100℃処理した。100℃処理後、12,000 × g（MX-160、TOMY）、10分間遠心し上清を回収し、鋳型DNAとして得た。
２．PCRによる核酸増幅
　まず、ヒトβ-globin遺伝子に対するPCRにおいて、Takara Taq（5 U/μL）0.25 μL 、10×PCR Buffer（Mg2+ plus）5 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）4 μL、鋳型 DNA 1 μL、および以下に示すヒトβ-globin遺伝子増幅用の一対のオリゴヌクレオチドプライマー（GM1FおよびGM1R；それぞれ10 pmol/μL）各5 μLを滅菌水で50 μLにメスアップした。
　なお、プライマーGM1Rは、5'末端をフルオレセインイソチオシアネート（FITC）で標識されている。
　・GM1F：5'- GGTTGGCCAATCTACTCCCAGG -3' ［配列番号１０３］
　・GM1R：5'- FITC-TGGTCTCCTTAAACCTGTCTTG -3' ［配列番号１０４］
　PCRはVeriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で3分間保持した後、94℃で30秒間、55℃で1分間、72℃で1分間の反応を35サイクル繰り返し、72℃で5分間保持の条件で反応させた。
　次に、ECのゲノムDNAに対するPCRにおいて、Takara LA Taq（5 U/μL）0.5 μL 、10× LA PCR Buffer II（Mg2+ free）5 μL、25 mM MgCl2溶液 5 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）4 μL、鋳型 DNA 1 μL、および以下に示すECのゲノムDNA増幅用の一対のオリゴヌクレオチドプライマー（EC2RおよびEC2F；それぞれ10 pmol/μL）各5 μLを滅菌水で50 μLにメスアップした。
　なお、プライマーEC2Fは、5'末端をフルオレセインイソチオシアネート（FITC）で標識されている。
　・EC2F：5'- FITC-GTCAGGTAAGGCTAATTTCATTACCAGCAAAGG-3' ［配列番号１０５］
　・EC2R：5'- CGGTCAGCCATAGGGTAAATGACCAC-3' ［配列番号１０６］
　PCRはVeriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で3分間保持した後、98℃で10秒間、68℃で1分30秒間の反応を40サイクル繰り返し、68℃で5分間保持の条件で反応させた。
３．PCR産物のアガロースゲル電気泳動による判定
　増幅したPCR産物はQIAquick PCR Purification Kit（QIAGEN）を用いて精製した後、ミューピッド（アドバンス）を用いたアガロースゲル電気泳動により、2％アガロース（Agarose I、AMRESCO）、1× TAE バッファーを用いて分離した。
　電気泳動後は、1 μg/mL エチジウムブロマイド溶液で染色し、染色後のDNAは、ゲルドキュメンテーション解析システムChemiDoc XRS（Bio-Rad Laboratories, Inc.）を用いて、紫外線下（260 nm）で撮影した。
４．ハイブリダイゼーション-ELISAに用いるマイクロプレートの作製
　ヒトβ-globin遺伝子の核酸にハイブリダイズするビオチンで標識されたキャプチャーオリゴヌクレオチド（GMA）を調製した。
　・GMA：5'-Biotin- ATGGTGCACCTGACTCCTGA -3' ［配列番号１０７］
　図４－８に模式的に示すように、該ビオチン標識キャプチャーオリゴヌクレオチド（GMA）を、ストレプトアビジンでコートされたマイクロプレート（NUNC IMMOBILIZER STREPTAVIDIN F96、NUNC）に加え、プレートに固相化した。
５．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチド（GMA）がハイブリダイズするヒトβ-globin遺伝子の核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチド（GMA1、GMA2）を調製した。
　また、対照試験用に、前記で調製したヒトβ-globin遺伝子増幅用の一対のオリゴヌクレオチドプライマー（GM1FおよびGM1R）を用いたPCRにより増幅されるPCR産物の核酸配列には含まれない核酸配列を有する２つのコントロールオリゴヌクレオチド（CT5、CT6）を調製した。
　・GMA1：5'- AGCAACCTCAAACAGACACC-3' ［配列番号１０８］
　・GMA2：5'- GGAGAAGTCTGCCGTTACTG-3' ［配列番号１０９］
　・CT5：5'- GGTCAGCCATAGGGTAAATGAC-3' ［配列番号１１０］
　・CT6：5'- TTATGATGTCAGAGGTCATGG-3' ［配列番号１１１］
６．ハイブリダイゼーション-ELISAによる核酸の検出
　まずTEバッファーまたはQIAquick PCR Purification Kit により精製したPCR産物2.5 μL（0.4 μM）に、5 μMの一対のマスクオリゴヌクレオチドまたは5 μMのコントロールオリゴヌクレオチドをそれぞれ1 μL、または対照として、TEバッファー2 μLを添加し、10 μL の125 mM NaOHを加え5分間変性させた。
　次に50 mMリン酸バッファー（pH 7.0）を100 μL加えて混和した後、全量をマイクロプレートに添加し、37℃で1時間反応させた。次に37℃に温めた300 μLの2 x SSCT（300 mM NaCl、30 mM クエン酸ナトリウム、0.05％ Tween20）による洗浄を3回繰り返し、PBST（0.05％ Tween20含PBS）で50,000倍希釈したHRP標識抗FITC抗体（ロックランド）を100 μL添加し、室温で30分間反応させた。反応後、300 μLのPBSTによる洗浄を3回繰り返し、100 μLのTMB溶液（KPL）を添加して室温で10分間の反応後、100 μLの1 Mリン酸で反応を停止させ、プレートリーダー680XR（Bio-Rad）を用いて450 nmの吸光度を測定した。
７．結果
　それぞれのPCR産物のアガロースゲル電気泳動での検出の結果を図１５に示す。
　ヒトβ-globin遺伝子増幅用のプライマーを用いたPCRでは目的とする262 bpのPCR産物が検出された。また、ECゲノムDNAの増幅用のプライマーを用いたPCRでは目的とする309 bpのPCR産物が検出された。
　それぞれのPCR産物のハイブリダイゼーション-ELISAによる検出の結果を以下の表３に示す。
　マスクオリゴヌクレオチドを用いない場合のヒトβ-globin遺伝子のPCR産物の吸光度は、0.473±0.036であったのに対し、PCR産物の変性時にマスクオリゴヌクレオチドを添加しておくことで、吸光度は約1.5倍の0.739±0.037に上昇した。
　また、マスクオリゴヌクレオチドのみでのアッセイ、およびヒトβ-globin遺伝子のPCR産物の代わりにE. coli由来のゲノムDNAのPCR産物にマスクオリゴヌクレオチドを加えて行ったアッセイでは、吸光度はいずれも低い値を示した。
　さらに、ヒトβ-globin遺伝子のPCR産物の核酸配列には含まれない核酸配列を有するコントロールオリゴヌクレオチド（CT5、CT6）を添加したアッセイにおける吸光度は、マスクオリゴヌクレオチドを加えないで行ったアッセイにおける吸光度と同様に低い値を示した。
　この結果、マスクオリゴヌクレオチドを用いることで、ハイブリダイゼーション-ELISAにおける標的核酸の検出感度が増大することが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
各種の細菌のrRNA遺伝子の16Sサブユニットを標的としたPCR産物のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる検出
１．PCR用鋳型DNAの調製
　各種の細菌のPCR用の鋳型DNAは、菌の沈渣を作製し、実施例1と同様の方法で調製した。また、陰性対照試験として、各種の真菌についても同様にて、PCR用の鋳型DNAを調製した。
　使用した菌株を培養方法ごとに以下に記す。
（１）BHI液体培地で通常大気下、37℃で培養
　Staphylococcus aureus（菌株ATCC 12600）；
　Staphylococcus epidermidis（菌株ATCC 14990）；
　Pseudomonas aeruginosa（菌株ATCC 10145）；
　Enterococcus faecalis（菌株ATCC 19433）；
　Escherichia coli（菌株ATCC 11775）；
　Enterobacter cloacae（菌株JCM 1232）；
　Klebsiella pneumoniae（菌株JCM 1662）；
　Burkholderia cepacia（菌株JCM 5507）；
　Stenotrophomonas maltophilia（菌株JCM 1975）；
　Acinetobacter baumannii（菌株ATCC 17978）；
　Pseudomonas fluorescens（菌株JCM 5963）；
　Pseudomonas putida（菌株JCM 6157）；
　Pseudomonas stutzeri（菌株JCM 5965）；
　Citrobacter freundii（菌株JCM 1657）；
　Citrobacter koseri（菌株JCM 1659）；
　Edwardsiella tarda（菌株JCM 1656）；
　Enterobacter aerogenes（菌株JCM 1235）；
　Enterobacter amnigenus（菌株JCM 1237）；
　Hafnia alvei（菌株JCM 1666）；
　Klebsiella oxytoca（菌株JCM 1665）；
　Kluyvera intermedia（菌株JCM 1238）；
　Morganella morganii（菌株JCM 1672）；
　Pantoea agglomerans（菌株JCM 1236）；
　Proteus mirabilis（菌株JCM 1669）；
　Proteus vulgaris（菌株JCM 20339）；
　Providencia rettgeri（菌株JCM 1675）；
　Serratia liquefaciens（菌株JCM 1245）；
　Serratia marcescens（菌株ATCC 274）；
　Staphylococcus haemolyticus（菌株JCM 2416）；
　Staphylococcus hominis（菌株ATCC 27844）；
　Staphylococcus saprophyticus（菌株JCM 2427）；
　Enterococcus avium（菌株JCM 8722）；
　Enterococcus durans（菌株IFO 13131）；
　Enterococcus faecium（菌株JCM 5804）；
　Corynebacterium diphtheriae（菌株JCM 1310）；および
　Micrococcus luteus（菌株JCM 1464）
（２）BHI液体培地で通常大気下、30℃で培養
　Sphingobacterium multivorum（菌株IFO 14947）；
　Brevundimonas diminuta（菌株IFO 14213）；
　Achromobacter xylosoxidans（菌株IFO 15126）；
　Alcaligenes faecalis（菌株JCM 20522）；
　Chromobacterium violaceum（菌株IFO 12614）；
　Acinetobacter calcoaceticus（菌株JCM 6842）；
　Vibrio vulnificus（菌株JCM 3725）；
　Aeromonas hydrophila（菌株JCM 1027）；
　Aeromonas sobria（菌株JCM 2139）；
　Salmonella enterica（菌株IFO 3313）；
　Bacillus cereus（菌株IFO 15305）；および
　Bacillus subtilis（菌株JCM 1465）
（３）BHI寒天培地で嫌気下、37℃で培養
　Bacteroides fragilis（菌株JCM 11019）；
　Bacteroides thetaiotaomicron（菌株JCM 5827）；
　Bacteroides vulgatus（菌株JCM 5826）；
　Porphyromonas asaccharolytica（菌株JCM 6326）；
　Porphyromonas gingivalis（菌株JCM 8525）；
　Prevotella intermedia（菌株JCM 12248）；
　Fusobacterium necrophorum subsp funduliforme（菌株JCM 3724）；
　Lactobacillus acidophilus（菌株JCM 1132）；
　Lactobacillus fermentum（菌株JCM 1173）；
　Clostridium difficile（菌株JCM 1296）；
　Clostridium perfringens（菌株JCM 1290）；
　Peptoniphilus asaccharolyticus（菌株JCM 1765）；
　Eggerthella lenta（菌株JCM 9979）；および
　Propionibacterium acnes（菌株JCM 6425）
（４）血液寒天培地で5％ CO2下、37℃で培養
　Capnocytophaga canimorsus（菌株ATCC 35979）；
　Streptococcus agalactiae（菌株JCM 5671）；
　Streptococcus pneumoniae（菌株ATCC 33400）；
　Streptococcus pyogenes（菌株JCM 5674）；および
　Streptococcus sanguinis（菌株JCM 5708）

（５）チョコレート寒天培地で5％ CO2下、37℃で培養
　Neisseria lactamica（菌株ATCC 23970）；
　Neisseria meningitidis（菌株ATCC 13077）；および
　Haemophilus influenzae（菌株ATCC 33391）
（６）BCYE寒天培地で5％ CO2下、37℃で培養
　Legionella pneumophila（菌株JCM 7571）

（７）血液寒天培地で微好気下、37℃で培養
　Campylobacter jejuni（菌株ATCC700819）

（８）血液寒天培地で通常大気下、37℃で培養
　Corynebacterium jeikeium（菌株JCM 9384）

（９）BHI寒天培地で5％ CO2下、37℃で培養
　Gardnerella vaginalis（菌株JCM 11026）
（１０）YPD液体培地で通常大気下、30℃で培養（陰性対照試験用の真菌）
　Candida albicans（菌株IFO 1385）；
　Candida glabrata（菌株NBRC 0622）；
　Candida krusei（菌株IFO 1395）；
　Candida parapsilosis（菌株IFO 1396）；
　Candida tropicalis（菌株IFO 1400）；
　Aspergillus fumigatus（菌株TIMM 0063）；および
　Cryptococcus neoformans（菌株TIMM 0354）

（１１）BHI寒天培地で通常大気下、30℃で培養（陰性対照試験用の真菌）
　Trichosporon cutaneum（菌株JCM 1462）
２．PCRによる核酸増幅
　PCRにはTAKARA社のPrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用いた。まず、PrimeSTAR HS DNA Polymerase（2.5 U/μL）0.2 μL 、５× PrimeSTAR Buffer（Mg２＋ plus）4 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）1.6 μL、鋳型 DNA 0.1ng、一対のオリゴヌクレオチドプライマー（10 pmol/μL）各0.4μLを滅菌水で20 μLにメスアップした。
　以下のPCRプライマーを調製、使用した。
　　・16S-10F：5'- GTTTGATCCTGGCTCA -3' ［配列番号１１２］
　　・16S-800R：5'- TACCAGGGTATCTAATCC -3' ［配列番号１１３］
　PCR反応は、「遺伝子解析による微生物の迅速同定法」（日本薬局方参考情報）に準じて実施した。
　PCRは、Veriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で1分間保持した後、94℃で30秒間、55℃で1分間、72℃で1分間の反応を30サイクル繰り返し、72℃で5分間保持の条件で反応させた。
３．PCR産物のアガロースゲル電気泳動による判定
　実施例１と同様の方法で実施した。
４．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例２と同様の方法で実施した。
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・16S rDNA検出用：5'- GCAGCAGTAGGGAATCTTCG-3' ［配列番号１１４］
５．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例３と同様の方法で調製した。
　BSAと結合させるディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・16S rDNA検出用：5'- CACACTGGAACTGAGACACG -3' ［配列番号１１５］
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　実施例３と同様の方法で調製した。
　前記において、BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドをメンブレンに固定化し、5mm幅に切断し、核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップとした（図５－１）。
７．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを調製した。
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする細菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　ディテクションオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチド(M1') 
　・16S rDNA検出用：5'- TGGTCTGAGAGGATGATCAGT -3' ［配列番号１１６］
　ディテクションオリゴヌクレオチド用且つキャプチャーオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチド(M2'および M3')
　・16S rDNA検出用：5'- GTCCAGACTCCTACGGGAG-3' ［配列番号１１７］
　キャプチャーオリゴヌクレオチド用マスクオリゴヌクレオチド(M4')
　・16S rDNA検出用：5'- ACAATGGGCGAAAGCCT -3' ［配列番号１１８］
８．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で細菌ごと、および真菌ごとに調製したテストストリップを用いた。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で調製した各細菌および各真菌に由来するゲノム核酸のPCR産物の溶液1.25 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（24％ Formamide、1×SSC、0.1％ BSA、1 mM EDTA、0.5M グアニジン塩酸塩）を30 μL、TEを加え全量を70μLにし、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを5 μL添加した。この溶液にテストストリップを浸し核酸クロマトグラフィーを行った。
９．結果
　各細菌及び各真菌それぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物を核酸クロマトグラフィーで検出した結果を表４および図１６（表４に示した各種の菌種の一部）に示す。
　この結果、マスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーにより、試験した全ての細菌について、検出すべき標的核酸（rRNA遺伝子の16Sサブユニット）が高感度で検出された。一方、陰性対照試験として実施したいずれの真菌についても、試験結果は陰性であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
各種の真菌ゲノムDNAのPCR産物のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる検出
１．PCR用鋳型DNAの調製
　PCR用の鋳型DNAは、ZR Fungal/Bacterial DNA MiniPrep（ZYMO RESARCH）を用いてゲノムDNAとして調製した。
　即ち、以下の各真菌を、それぞれを3 mLのYPD液体培地（Q-Biogene）で30℃一晩培養して得た被検菌液1 mLを6,000 × gで3分間遠心後、沈渣を500 μLのPBSで懸濁した後、6,000 × gで3分間遠心し沈渣を回収した。

　Candida albicans（「CA」と略記する；菌株NBRC1385）；
　Candida glabrata（「CG」と略記する；菌株NBRC0005）；
　Candida krusei（「CK」と略記する；菌株NBRC0011）；
　Candida parapsilosis（「CP」と略記する；菌株NBRC1396）；
　Candida tropicalis（「CT」と略記する；菌株NBRC1400）；
　Candida guilliermondii（「CGu」と略記する；菌株NBRC0566）；
　Candida kefyr（「CKf」と略記する；菌株NBRC0586）；
　Candida lusitaniae（「CL」と略記する；菌株ATCC66035）；および
　Candida metapsilosis（「CM」と略記する；菌株NBRC0640）
　各試料に、酵素試薬（Zymolyase 20T（SEIKAGAKU）5 mgを含むPBS 1 mL）300 μL加えて溶解した後、37℃で1時間反応させた。
　450 μLのLysis Bufferを加えて混和後、ZR BashingBead Lysis Tubeへ移し、Vortex により5分間混和し、10,000 × g、4℃、1分間遠心した。上清400 μLをZymo Spin IV spin filter に移し、7,000 × gで1分間遠心した。
　ろ液に1200 μL のFungal/Bacterial DNA Binding Buffer を加え混合し、混合液800 μL をZymospin IIC Column に移し、10,000 × gで1分間遠心した。残りの混合液800 μL をZymospin IIC Column に移し、10,000 × gで1分間遠心した。Zymospin IIC Column を 新しいCollection tube に移し、200 μL のDNA Pre wash Bffer を加え10,000 × gで1分間遠心した。500 μL のFungal/Bacterial DNA wash Bffer を加え10,000 × gで1分間遠心した。Zymospin IIC Column を 新しいエッペンチューブに移し、80 μL のDNA Elution Bffer を加え1 分間置き、10,000 × gで30秒間遠心し、ろ液を鋳型DNAとした。
２．PCRによる核酸増幅
　PCRにはTAKARA社のPrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用いた。まず、PrimeSTAR HS DNA Polymerase（2.5 U/μL）0.2 μL 、５× PrimeSTAR Buffer（Mg２＋ plus）4 μL、dNTP Mixture（各2.5 mM）1.6 μL、鋳型 DNA 0.1ng、一対のオリゴヌクレオチドプライマー（10 pmol/μL）各0.4μLを滅菌水で20 μLにメスアップした。
　以下のPCRプライマーを調製、使用した。
　　・ITS1F：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCGT -3' ［配列番号１１９］
　　・ITS1R：5'- CGTTCTTCATCGATG -3' ［配列番号１２０］
　PCR反応は、「遺伝子解析による微生物の迅速同定法」（日本薬局方参考情報）に準じて実施した。
　PCRはVeriti Thermal Cycler（Applied Biosystems）を用い、94℃で1分間保持した後、94℃で30秒間、55℃で1分間、72℃で1分間の反応を30サイクル繰り返し、72℃で5分間保持の条件で反応させた。
３．PCR産物のアガロースゲル電気泳動による判定
　実施例１と同様の方法で実施した。
４．金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドの調製
　実施例２と同様の方法で実施した。
　調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・ITS1検出用：5'- AGGTGAACCTGCGGAAGGAT -3' ［配列番号１２１］
５．BSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドの調製
　実施例１と同様の方法で調製した。
　調製したBSAと結合させるディテクションオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・CA核酸検出用：5'- TTGGCGGTGGGCCCAGCCTG -3' ［配列番号１２２］
　・CG核酸検出用：5'- CACACGACTCGACACTTTCT -3' ［配列番号１２３］
　・CK核酸検出用：5'- CTACACTGCGTGAGCGGAAC -3' ［配列番号１２４］
　・CP核酸検出用：5'- TGGTAGGCCTTCTATATGGG -3' ［配列番号１２５］
　・CT核酸検出用：5'- TCTTTGGTGGCGGGAGCAAT -3' ［配列番号１２６］
６．核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップの調製
　実施例1と同様の方法で調製した。
前記において、真菌ごとに調製したBSA結合ディテクションオリゴヌクレオチドをメンブレンに固定化、5mm幅に切断し、核酸クロマトグラフィーに用いるテストストリップとした（図５－１）。
７．マスクオリゴヌクレオチドの調製
　前記で調製したキャプチャーオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする真菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを真菌ごとに調製した。
　同様に、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがハイブリダイズする真菌ゲノム核酸上の領域を挟んで位置する５'側および３'側のそれぞれの領域にハイブリダイズする一対のマスクオリゴヌクレオチドを真菌ごとに調製した。
　調製したマスクオリゴヌクレオチドの配列は以下のとおりであった。
　・CA核酸検出用：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCG -3'［配列番号１１９］ 
　　（前記のオリゴヌクレオチドITS1Fと同一配列）
　・CA核酸検出用（CAA2）：5'- CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC -3'［配列番号１２７］
　・CA核酸検出用：5'- GTTTTTCTTTGAAACAAACTTGCT -3'［配列番号１２８］
　・CA核酸検出用：5'- CCGCCAGAGGTCTAAACTTAC -3'［配列番号１２９］
　・CG核酸検出用：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCG -3'［配列番号１１９］
　　（前記のオリゴヌクレオチドITS1Fと同一配列）
　・CG核酸検出用：5'- CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC -3'
［配列番号１２７］
　　（前記のオリゴヌクレオチドCAA2と同一配列）
　・CG核酸検出用：5'- TTCCAAAGGAGGTGTTTTAT -3'［配列番号１３０］
　・CG核酸検出用：5'- AATTACTACACACAGTGGAGTTTAC -3'［配列番号１３１］
　・CK核酸検出用：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCG -3' ［配列番号１１９］
　　（前記のオリゴヌクレオチドITS1Fと同一配列）
　・CK核酸検出用：5'- CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC -3'
［配列番号１２７］
　　（前記のオリゴヌクレオチドCAA2と同一配列）
　・CK核酸検出用：5'- GAAAACAACAACACCTAAAATG -3' ［配列番号１３２］
　・CP核酸検出用：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCG -3［配列番号１１９］
　　（前記のオリゴヌクレオチドITS1Fと同一配列）
　・CP核酸検出用：5'- CATTACAGAATGAAAAGTGCTTAAC -3［配列番号１３３］
　・CP核酸検出用：5'- TCTTTTTTTGAAAACTTTGCTT -3'［配列番号１３４］
　・CP核酸検出用：5'- GCCTGCCAGAGATTAAACTC -3'［配列番号１３５］
　・CT核酸検出用：5'- GTAACAAGGT(T/C)TCCG -3［配列番号１１９］
　　（前記のオリゴヌクレオチドITS1Fと同一配列）
　・CT核酸検出用：5'- CATTACTGATTTGCTTAATTGCAC -3'
［配列番号１２７］
　　（前記のオリゴヌクレオチドCAA2と同一配列）
　・CT核酸検出用：5'- CACATGTGTTTTTTATTGAACAAATT　-3' 
［配列番号１３６］
　・CT核酸検出用：5'- CCTACCGCCAGAGGTTATAA -3'［配列番号１３７］
８．核酸クロマトグラフィーによる核酸の検出
　核酸クロマトグラフィーには、前記で真菌ごとに調製したテストストリップを用いた。テストラインには、前記で調製したディテクションオリゴヌクレオチドがBSAを介して固定化されている。
　前記で調製した各真菌に由来するゲノム核酸のPCR産物の溶液1.25 μLに、それぞれ4 μMのマスク用オリゴヌクレオチドを1 μL添加し、核酸クロマトグラフィー用展開バッファー（20％ Formamide、1×SSC、0.1％ BSA、1 mM EDTA、0.5M グアニジン塩酸塩）を30 μL、TEを加え全量を65μLにし、95℃で5分間処理した後4℃で急冷した。その後、溶液に前記で調製した金コロイド粒子標識キャプチャーオリゴヌクレオチドを5 μL添加した。この溶液にテストストリップを浸し核酸クロマトグラフィーを行った。
９．結果
　各真菌それぞれのゲノムDNAを鋳型とするPCR産物のアガロースゲル電気泳動による検出結果を図１７に、また核酸クロマトグラフィーの結果を図１８に示す。
　この結果、全ての真菌について、目的とするゲノムDNAがPCRにより増幅され、そのPCR産物（標的核酸）をマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーにより高感度で特異的に検出できることが示された。
　本発明のマスクオリゴヌクレオチドを用いた核酸クロマトグラフィーによる核酸を検出、定量する方法、並びに該方法に用いるためのデバイスおよびキットは、真核生物、原核生物、ウイルス、細菌および微生物をはじめとする様々な生物に由来する任意の核酸（例えば、天然の核酸、ゲノムDNA、cDNA、RNA、PCR等で増幅された核酸など）を簡便、且つ高感度で検出、定量することができる。
　その結果、本発明の方法、デバイスおよび／またはキットを用いれば、ヒトをはじめとする哺乳動物、宿主生物、植物、食品あるいは飲料等の細菌やウイルスによる感染の有無や程度、ウイルスや細菌による感染あるいは遺伝子の変異が原因と疑われる様々な疾患（感染症、癌、代謝性疾患、遺伝病、等）の原因、並びに遺伝子の多様性による様々な遺伝的特性を、簡便且つ短時間で高い精度を以って特定することが可能となる。

Claims (68)

  1. 　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を、クロマトグラフィーにより検出または定量する方法：
    　（ａ）　領域Ｒ１、それぞれ領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２、領域Ｒ１とは異なる領域Ｒ２、ならびにそれぞれ領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４を含む標的核酸Ｎの１本鎖領域中の、領域Ｍ１、領域Ｍ２、領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ１'、オリゴヌクレオチドＭ２'、オリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（ｂ）　領域Ｒ１への、標識Ｌ１で標識された、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ１'のハイブリダイゼーション；
    　（ｃ）　領域Ｒ２への、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ２'または末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'のハイブリダイゼーション；および
    　（ｄ）前記（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、標識Ｌ１を指標とする検出または定量；ならびに
    　（ｅ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｄ）の事項。
  2. 　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、以下のいずれかを含む、請求項１記載の方法：
    　（i）領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（ii）領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（iii）領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション、ならびに領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つの領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（iv）領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーション；
    　（v）領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;
    　（vi）領域Ｍ１および領域Ｍ３の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ３'のハイブリダイゼーション;
    　（vii）領域Ｍ１および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;
    　（viii）領域Ｍ２および領域Ｍ３の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ２'およびオリゴヌクレオチドＭ３'のハイブリダイゼーション;
    　（ix）領域Ｍ２および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ２'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション;または
    　（x）領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーション、ならびに領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーション。
  3. 　該クロマトグラフィーが、前記（ａ）および（ｂ）、または（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象に基づいて実施される、請求項１または２記載の方法。
  4. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
    　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、請求項３記載の方法：
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'。
  5. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、且つ
    　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、請求項３記載の方法：
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；ならびに
    　（iv）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'。
  6. 　該クロマトグラフィーが、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象に基づいて実施される、請求項１または２記載の方法：
    　（i）前記（ａ）および（ｂ）、または（ａ）乃至（ｃ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
    　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
  7. 該デバイスがさらに、
    　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
    を備える、請求項６記載の方法。
  8. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；および
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、請求項６または７記載の方法。
  9. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  10. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  11. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  12. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；ならびに
    　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、請求項６または７記載の方法。
  13. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；および
    　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  14. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  15. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  16. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'；および
    　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  17. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；および
    　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  18. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  19. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'、該オリゴヌクレオチドＭ２'、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、ならびに
    　（iv）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を適用する、請求項６または７記載の方法。
  20. 　該アンカーＡが、オリゴヌクレオチド、ビオチン、抗体、蛋白質または糖鎖であり、該アクセプターＡ'が、オリゴヌクレオチド、アビジン、ストレプトアビジン、抗体または蛋白質である、請求項１乃至３、５乃至７ならびに１２乃至１９のいずれか一項記載の方法。
  21. 　該アンカーＡが、ビオチンであり、該アクセプターＡ'が、アビジンまたはストレプトアビジンである、請求項２０記載の方法。
  22. 　該アクセプターＡ'が抗体である、請求項２０記載の方法。
  23. 　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、該展開要素が、(i)それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズする該オリゴヌクレオチドＲ２'のそれぞれが固定化された２つ以上の検出ゾーン、または(ii)それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズするそれぞれ異なるアンカーＡをその末端に有するオリゴヌクレオチドＲ２'とそれぞれ結合し得るそれぞれ異なるアクセプターＡ'が固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、請求項３乃至２２のいずれか一項記載の方法。
  24. 　該デバイスがさらに、該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーンを備える、請求項６乃至２３のいずれか一項記載の方法。
  25. 　標識Ｌ１が、金属コロイド粒子、ラテックス粒子、着色リポソームまたは酵素である、請求項１乃至２４のいずれか一項記載の方法。
  26. 　金属コロイド粒子が、金コロイド粒子、白金コロイド粒子、白金-金コロイド粒子、パラジウム粒子、銀コロイド粒子、ロジウムコロイド粒子、ルテニウムコロイド粒子またはイリジウムコロイド粒子である、請求項２５記載の方法。
  27. 　酵素が、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼまたはβガラクトシダーゼである、請求項２５記載の方法。
  28. 　該展開要素または該デバイスが、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、請求項３乃至２７のいずれか一項記載の方法。
  29. 　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を、クロマトグラフィーにより検出または定量する方法：
    　（ａ）　領域Ｒ１、ならびにそれぞれ領域Ｒ１を挟んで位置する領域Ｍ１および領域Ｍ２を含み、標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎの１本鎖領域中の領域Ｍ１および領域Ｍ２の少なくとも１つに対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（ｂ）　領域Ｒ１への、標識Ｌ１で標識された、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ１'のハイブリダイゼーション；および
    　（ｃ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、該標識Ｌ２と該標識Ｌ２に結合する物質との結合を介した捕捉、ならびに該標識Ｌ１を指標とする検出または定量；ならびに
    　（ｄ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｃ）の事項。
  30. 　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、領域Ｍ１および領域Ｍ２の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ１'およびオリゴヌクレオチドＭ２'のハイブリダイゼーションを含む、請求項２９記載の方法。
  31. 　該クロマトグラフィーが、前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象に基づいて実施される、請求項２９または３０記載の方法。
  32. 　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、且つ
    　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、請求項３１記載の方法：
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'。
  33. 　該クロマトグラフィーが、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象に基づいて実施される、請求項２９または３０記載の方法：
    　（i）前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
    　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
  34. 該デバイスがさらに、
    　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
    を備える、請求項３３記載の方法。
  35. 　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；および
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、請求項３３または３４記載の方法。
  36. 　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ、
    との混合物を適用する、請求項３３または３４記載の方法。
  37. 　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つが封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    との混合物を適用する、請求項３３または３４記載の方法。
  38. 　該検出ゾーンに、該標識Ｌ２に結合する物質が固定化されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ１'および該オリゴヌクレオチドＭ２'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該標識Ｌ１で標識されたオリゴヌクレオチドＲ１'、
    との混合物を適用する、請求項３３または３４記載の方法。
  39. 　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎがそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されており、該展開要素が、該それぞれの標識Ｌ２に結合する異なる物質がそれぞれ固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、請求項３１乃至３８のいずれか一項記載の方法。
  40. 　以下を含む、試料中に含まれる１種類またはそれぞれ異なる２種類以上の標的核酸を検出または定量する方法：
    　（ａ）　領域Ｒ２、ならびにそれぞれ領域Ｒ２を挟んで位置する領域Ｍ３および領域Ｍ４を含み、標識Ｌ２で標識された標的核酸Ｎの１本鎖領域中の領域Ｍ３および領域Ｍ４の少なくとも１つに対する、それぞれの領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つのハイブリダイゼーション；
    　（ｂ）　領域Ｒ２への、該領域に相補的な塩基配列を含むオリゴヌクレオチドＲ２'または末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'のハイブリダイゼーション；および
    　（ｃ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの、該標識Ｌ２を指標とする検出または定量；ならびに
    　（ｄ）必要に応じ、試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎの検出または定量のための、それぞれの標的核酸Ｎについての、上記の（ａ）乃至（ｃ）の事項。
  41. 　前記（ａ）のハイブリダイゼーションが、領域Ｍ３および領域Ｍ４の両方の領域に対する、それぞれオリゴヌクレオチドＭ３'およびオリゴヌクレオチドＭ４'のハイブリダイゼーションを含む、請求項４０記載の方法。
  42. 　該検出または定量が、
    　（Ａ）　前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素において、該展開要素における毛管現象を利用するクロマトグラフィー；または
    　（Ｂ）　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　　　　　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　　　　　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を、その表面に該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化された容積を有する固体支持体に適用し、該アンカーＡと該アクセプターＡ'との結合を介して捕捉された前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドの検出または定量、により実施される、請求項４０または４１記載の方法。
  43. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
    　該展開要素の一部に、以下の混合物を適用する、請求項４２記載の方法：
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料;および
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ。
  44. 　該検出または定量が、以下を備えるデバイスを用いて、展開要素における毛管現象を利用するクロマトグラフィーにより実施される、請求項４０または４１記載の方法：
    　（i）前記（ａ）および（ｂ）を経て形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；および
    　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン。
  45. 該デバイスがさらに、
    　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン、
    を備える、請求項４４記載の方法。
  46. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  47. 　該検出ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＲ２'が固定化されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
    との混合物を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  48. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、
    　（i）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、該標的核酸Ｎを含む試料を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  49. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'が封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ、
    との混合物を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  50. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンまたは該封入ゾーンに、該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つが封入されており、且つ
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；ならびに
    　（ii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  51. 　該検出ゾーンに、該アンカーＡと結合し得るアクセプターＡ'が固定化されており、
    　該適用ゾーンに、
    　（i）該標的核酸Ｎを含む試料；
    　（ii）該オリゴヌクレオチドＭ３'および該オリゴヌクレオチドＭ４'の少なくとも１つ；ならびに
    　（iii）該末端にアンカーＡを有するオリゴヌクレオチドＲ２'、
    との混合物を適用する、請求項４４または４５記載の方法。
  52. 　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合において、それぞれの標的核酸Ｎが同一の標識Ｌ２で標識されており、該展開要素が、それぞれの標的核酸Ｎにハイブリダイズするそれぞれ異なるアンカーＡをその末端に有するオリゴヌクレオチドＲ２'とそれぞれ結合し得るそれぞれ異なるアクセプターＡ'が固定化された２つ以上の検出ゾーンを備えることを特徴とする、請求項４８乃至５１のいずれか一項記載の方法。
  53. 　試料中に異なる２種類以上の標的核酸Ｎが含まれる場合には、それぞれの標的核酸Ｎがそれぞれ異なる標識Ｌ２で標識されていることを特徴とする、請求項４８乃至５１のいずれか一項記載の方法。
  54. 　該標識Ｌ２が、ビオチン、蛍光色素、ジゴキシゲニン（DIG）、抗体または酵素である、請求項２９乃至５３のいずれか一項記載の方法。
  55. 　該標識Ｌ２がビオチンであり、且つ該標識Ｌ２に結合する物質がアビジン若しくはストレプトアビジンである、請求項５４記載の方法。
  56. 　該標識Ｌ２に結合する物質が、抗体または酵素で標識された抗体である、請求項２９乃至３８のいずれか一項記載の方法。
  57. 　該デバイスがさらに、該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーンを備える、請求項３３乃至３９ならびに４４乃至５６のいずれか一項記載の方法。
  58. 　標識Ｌ１が、金属コロイド粒子、ラテックス粒子、着色リポソームまたは酵素である、請求項２９乃至３９のいずれか一項記載の方法。
  59. 　金属コロイド粒子が、金コロイド粒子、白金コロイド粒子、白金-金コロイド粒子、パラジウム粒子、銀コロイド粒子、ロジウムコロイド粒子、ルテニウムコロイド粒子またはイリジウムコロイド粒子である、請求項５８記載の方法。
  60. 　酵素が、ペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼまたはβガラクトシダーゼである、請求項５８記載の方法。
  61. 　該展開要素または該デバイスが、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、請求項３１乃至３９ならびに４１乃至６０のいずれか一項記載の方法。
  62. 　該標的核酸Ｎの１本鎖領域が、２本鎖の核酸を変性して生成される１本鎖領域である、請求項１乃至６１のいずれか一項記載の方法。
  63. 　該標的核酸Ｎが、DNAまたはRNAである、請求項１乃至６２のいずれか一項記載の方法。
  64. 　該標的核酸Ｎが、真核生物、原核生物、細菌若しくはウイルスのゲノムに由来する核酸、該ゲノムを制限酵素で切断されて生ずるゲノム断片に由来する核酸、または人為的に増幅された核酸である、請求項１乃至６３のいずれか一項記載の方法。
  65. 　細菌のゲノム由来の核酸が、以下のいずれかである、請求項６４記載の方法：
    　１）GenBank Accession No. FR714927で識別される黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus、以下SA）のゲノムDNA中の2653499～2662118番目の領域、2656232～2657658番目の領域または2656470～2656799番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む黄色ブドウ球菌のゲノム核酸；
    　２）GenBank Accession No. AE015929で識別される表皮ブドウ球菌（Staphylococcus epidermidis、以下SE）のゲノムDNA中の384731～393399番目の領域、385337～388504番目の領域または385517～385796番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む表皮ブドウ球菌のゲノム核酸；
    　３）GenBank Accession No. CP004061で識別される緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa、以下PA）のゲノムDNA中の2386558～2391818番目の領域、2386678～2388735番目の領域または2387395～2387664番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む緑膿菌のゲノム核酸；
    　４）GenBank Accession No. HF558530で識別される腸球菌（Enterococcus faecalis、以下EF）のゲノムDNA中の1837695～1841178番目の領域、1838789～1839704番目の領域または1839147～1839386番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む腸球菌のゲノム核酸；
    　５）GenBank Accession No. AP012306で識別される大腸菌（Escherichia coli、以下EC）のゲノムDNA中の1286884～1291840番目の領域、1290625～1291839番目の領域または1291152～1291460番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む大腸菌のゲノム核酸；
    　６）GenBank Accession No. CP001918で識別されるEnterobacter cloacaeのゲノムDNA中の1566239～1568859番目の領域または1566732～1566956番目の領域の一部または全部の核酸配列を含むEnterobacter cloacaeのゲノム核酸；または
    　７）GenBank Accession No. CP003785で識別される肺炎桿菌（Klebsiella pneumoniae、以下KP）のゲノムDNA中の4082686～4083937番目の領域、4082686～4083380番目の領域または4082799～4083096番目の領域の一部または全部の核酸配列を含む肺炎桿菌のゲノム核酸。
  66. 　該展開要素を用いるクロマトグラフィーが、少なくとも１つの変性剤若しくはカオトロピック剤、または少なくとも１つの変性剤若しくはカオトロピック剤および少なくとも１つの無機塩を含むバッファー中で実施される、請求項１乃至６５のいずれか一項記載に方法。
  67. 　以下を備える、請求項２４乃至２８ならびに５７乃至６６のいずれか一項記載の方法に用いるためのデバイス：
    　（i）該形成された核酸ハイブリッドを捕捉し、検出または定量するための少なくとも１つの検出ゾーンを備える展開要素；
    　（ii）該展開要素に接して備えられた少なくとも該標的核酸Ｎを含む試料を適用するための適用ゾーン；
    　（iii）該適用ゾーンおよび該展開要素のいずれにも接して備えられた所望のオリゴヌクレオチドを封入するための封入ゾーン；および
    　（iv）該展開要素と接して備えられた、該検出ゾーンを越えて展開された試料を吸収するための吸収ゾーン。
  68. 　該展開要素が、不透湿性固体材料からなるケース中に配置されている、請求項６７記載のデバイス。
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