WO2015041218A1 - 新規抗体精製方法及びそれから得られる抗体（Ｎｏｖｅｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ Ａｎｔｉｂｏｄｙ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｔｈｅｒｅｆｒｏｍ）、並びに陽イオン交換基を用いた新規抗体精製法及びそれから得られる抗体（Ｎｏｖｅｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ ｕｓｉｎｇ Ｃａｔｉｏｎ Ｅｘｃｈａｎｇｅｒ ａｎｄ Ａｎｔｉｂｏｄｙ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｔｈｅｒｅｆｒｏｍ） - Google Patents

Abstract

　本発明（第一態様）は、抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いて連結または混合カラムとし、一体として抗体または抗体由来物質の吸着および溶出を行うことを特徴とする抗体または抗体由来物質の精製方法であり、本発明（第二態様）は、ｐＫａが４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する陽イオン交換基を有する担体の使用方法である。

Description

新規抗体精製方法及びそれから得られる抗体（Ｎｏｖｅｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｍｅｔｈｏｄ　ａｎｄ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｔｈｅｒｅｆｒｏｍ）、並びに陽イオン交換基を用いた新規抗体精製法及びそれから得られる抗体（Ｎｏｖｅｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｍｅｔｈｏｄ　ｕｓｉｎｇ　Ｃａｔｉｏｎ　Ｅｘｃｈａｎｇｅｒ　ａｎｄ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｔｈｅｒｅｆｒｏｍ）

　本発明（第一態様）は、標的分子（例えば抗体または抗体由来物質。以下、これらをまとめて抗体等と称する場合がある）を特異的に精製するためのアフィニティリガンドを有する担体、および、陽イオン交換基を有する担体を一体として使用して抗体等を精製する方法であって、アフィニティクロマトグラフィー精製と陽イオン交換クロマトグラフィー精製を１クロマトグラフィーステップで実施する新規抗体精製方法およびそれから得られる抗体に関する。

　また、本発明（第二態様）は、陽イオン交換基（以下、陽イオン交換基を有する担体、陽イオン交換担体ともいう）を用いた抗体等（抗体または抗体由来物質）の新規精製法であって、通常カルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体の使用ｐＨとして選択されないｐＨ４．０以下での抗体等の精製方法及びそれから得られる抗体にも関する。

　抗体を主薬とする抗体医薬品の主成分であるモノクローナル抗体は、主に哺乳類培養細胞等を用いて組換え蛋白質として培養液中に発現し、数段のクロマトグラフィーや膜工程により高純度に精製された後に製剤化される。抗体医薬品には、免疫グロブリンＧおよびその類縁物質であり、一般的に抗体と称される分子の他、免疫グロブリン分子の定常領域であるＦｃ領域と他の機能性蛋白質またはペプチドを融合してなるＦｃ融合蛋白質（Ｆｃ含有分子）が含まれる。更には、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ、および、ｄｉａｂｏｄｙ等の低分子化抗体が含まれる。また、これら抗体医薬品には、微生物を宿主とし、その培養上清に分泌発現されるもの、菌体内または菌体外壁と菌体細胞膜の間に蓄積発現され、精製され、製剤化されるものも含まれる。

　この培養、精製、製剤化の工程で形成または残留する凝集体（２量体以上の多量体）が副作用の主要原因となるため、その低減が抗体医薬品生産の重要課題となっている。ここで単量体とは、たとえば抗体の場合、定常領域であるＦｃ領域と可変領域からなる重鎖（Ｈ鎖）２分子と、可変領域からなる軽鎖（Ｌ鎖）２分子からなる４量体構造の抗体を１分子単位として定義される。この単位分子の多量体が凝集体とされ、抗体医薬品の副作用の主要因とされている。

　凝集体の生成抑制やその除去は、培養、精製、製剤化の工程で、複雑な管理手法や添加剤の使用により制御する試みがなされてきた。特に精製工程では、凝集体の生成を抑制する他にその除去が重要である。よって、精製工程では、簡便で効率的な凝集体除去技術の開発が求められてきている。

　抗体医薬品の精製工程は、特定の単位操作の組み合わせによる精製手法のパターン化（プラットフォーム化）が進み、その初期精製工程（回収工程）では、リガンドとしてプロテインＡが水不溶性担体に固定化された、抗体アフィニティ分離マトリックス（プロテインＡ担体）が広く利用されている。中性条件下で抗体をプロテインＡ担体に吸着させ、酸性条件下で抗体を溶出させる手法が一般的に用いられているが、一般的には、３ステップのクロマト精製により高純度化され、プロテインＡクロマトグラフィー工程の後段でイオン交換クロマトグラフィーや疎水性相互作用クロマトグラフィー等の組み合わせにより、凝集体等の不純物が除去されている（非特許文献１、非特許文献２、非特許文献３、特許文献５）。

　アフィニティリガンドは、特定の分子に特異的に結合する機能を有しており、該リガンドを水不溶性担体に固定化してなるアフィニティ分離マトリックス（アフィニティクロマトグラフィー担体、アフィニティ担体ともいう）は、生体成分や組換え体を含む微生物および哺乳類培養細胞から、有用物質の効率的な分離精製に利用されている。実際に産業的に利用されている抗体アフィニティリガンドとして、例えばプロテインＡやプロテインＧ、プロテインＬ等の微生物由来または、それらを組換え発現させて得られる機能的改変体（類縁物質）からなるペプチド性または蛋白質性リガンドや、ラクダ一本鎖抗体や抗体のＦｃレセプター等の組換え蛋白質性リガンド、およびチアゾール誘導体等の化学合成性リガンドが挙げられ、抗体医薬品等の精製に使用されている。抗体医薬品は、化学薬品に対しより低い毒性で、より高い特異性を示すことから、理想的な医薬品としてその需要が高まってきている。

　アフィニティ担体による分離精製においては、抗体の凝集体や、宿主由来不純物、抗体の分解物等（以下、凝集体等）の除去が課題となる。

　例えば、アフィニティ担体の一例として、プロテインＡクロマトグラフィー工程では、通常、酸性溶出が行われるが、抗体毎に溶出ｐＨが異なりプロセス設計に時間を要していたため、また、溶出ｐＨが低い程、凝集体が形成されるリスクが高まるために、ｐＨ３前後の低いｐＨ溶出が必要な抗体もｐＨ３．５～４付近で溶出できるようにプロテインＡリガンドにタンパク質工学的に改変を加える試みが行われている（特許文献１）。

　また、プロテインＡクロマトグラフィー工程後に凝集体含量が多い場合は、後段の不純物除去工程において、目的の単量体（モノマー）の収率低下に繋がることから、プロテインＡクロマトグラフィー工程での凝集体形成を抑えようとする試みの他、更に、当該クロマトグラフィー工程での凝集体を除去する試みがなされている。

　また、プロテインＡクロマトグラフィー工程の使用中で、凝集体等の不純物を低減する試みがなされてきた。すなわち、溶出時のｐＨやイオン強度の最適化、さらには溶出ピークの前半部分と後半部分を分画する等の方法が提案されている。具体的には、プロテインＡ担体の特性として多量体化した抗体分子が、多量体化していない抗体分子よりも高い確率でプロテインＡリガンドと接触するため、解離定数が僅かに低くなることや、疎水性の微妙な調節に基づく分離機構を利用した方法である（特許文献２、特許文献３、特許文献４）。しかし、これらの方法は厳密な制御が困難である上に分離能が低く一般的な分離手法としては用いられておらず、後段の工程で不純物除去を行う必要があった。

　プロテインＡクロマトグラフィーに代表されるアフィニティクロマトグラフィーは、酸性ｐＨで溶出が実施されるが、後段のイオン交換クロマトグラフィーや疎水性相互作用クロマトグラフィー等は、通常ｐＨ５以上のｐＨで処理されるため、ｐＨやイオン強度調整が必要であった。

　一方で、通常、陽イオン交換担体は、そのリガンドのｐＫａよりも高いｐＨで使用される。また、陽イオン交換担体で精製される標的タンパク質に対し、タンパク質の等電点（ｐＩ）よりも低いｐＨでの吸脱着が行われる。例えば、ｐＩが８の抗体の精製には、ｐＫａが２付近のスルホン基やｐＫａが３～５付近のカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体が、ｐＨ５～６の緩衝液を用いて吸脱着され精製される。緩衝液のｐＨは、リガンドのｐＫａと標的タンパク質のｐＩの間に設定されるが、使用ｐＨがｐＩよりも低い程、タンパク質のプラス電荷が大きくなり、溶出イオン強度を高く設定する必要があり、回収率が低くなる傾向がある。溶出液のイオン強度が高い場合は、後段のプロセス構築においてイオン強度を低減しなければならない等の制限があった。また、使用ｐＨが陽イオン交換リガンドのｐＫａに近い、または、低い場合には、リガンドのマイナス電荷がプロトン化され、結合容量が低下するとされ、通常、選択されてこなかった。よって、陽イオン交換担体を用いた抗体の精製には、ｐＫａ２～５の陽イオン交換担体に対してｐＨ５～６の緩衝液が用いられてきた。

　アフィニティクロマトグラフィー工程後に陰イオン交換クロマトグラフィー工程や疎水的相互作用クロマトグラフィー工程が用いられる場合（特許文献８）、陽イオン交換クロマトグラフィー工程後に陰イオン交換クロマトグラフィー工程を行う場合（特許文献７）もしくは陽イオン交換クロマトグラフィー工程で複数の標的物質を回収する場合（特許文献６）も同様に、ｐＨやイオン強度調整が必要であった。

　上記のように抗体等をアフィニティクロマトグラフィー精製し、後段のプロセスで高度精製するには、酸性ｐＨ溶出液のｐＨやイオン強度調整が必要となり、連続する初期クロマトの効率化には限界があった。加えて、アフィニティクロマトグラフィー精製の方法を採用しないイオン交換クロマトグラフィー工程と疎水性電荷誘導クロマトグラフィー工程を行う場合でも、それぞれの工程を独立して行う必要があり、連続して抗体等を精製することはできず、効率化を図るには限界があった（特許文献９）。

　また、抗体アフィニティ分離マトリックスは、抗体に高い特異性を示し高純度化が可能であるが、使用方法を厳密に設定しても単量体（モノマー）と凝集体等の分離能が低いため、凝集体等の除去工程としては限界があった。

特許第４３９１８３０号公報 ＷＯ２００８／０８５９８８ 特表２０１０－５０７５８３号公報 ＷＯ２０１０／０１９４９３ ＷＯ２０１０／１４１０３９ 特開平０５－２０２０９８号公報 特開平０６－２２８２００号公報 特表２０１０－５１０９６３号公報 特表２００８－５３５９１３号公報

Ｈｏｂｅｒ　Ｓ．他　著、「Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．Ｂ」、２００７年、８４８巻、４０－４７頁 Ｌｏｗ　Ｄ．他　著、「Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．Ｂ」、２００７年、８４８巻、４８－６３頁 Ｒｏｑｕｅ　Ａ．Ｃ．Ａ．他　著、「Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．Ａ」、２００７年、１１６０巻、４４－５５頁

　本発明（第一態様）の目的は、抗体またはＦｃ含有分子もしくはＦａｂ、ｓｃＦｖ等の低分子化抗体等の抗体由来物質の精製工程の第一クロマトグラフィー工程において、アフィニティ精製の主要目的である抗体自体の高純度化と共に、モノマーの選択的分離特性を向上させ、凝集体等の除去に関し後段の不純物除去工程への負荷を低減または省略できる新規抗体精製手法を提供することにある。

　本発明（第二態様）の目的は、抗体等の精製において、アフィニティクロマトグラフィー精製を回収クロマトグラフィー工程として、後段のプロセスで高度に精製する際に必要とされてきた、酸性ｐＨ溶出液のｐＨやイオン強度調整を必要としない効率化された抗体精製法を提供することにある。

　本発明者は、上記課題に鑑み鋭意検討を行った結果、抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体と陽イオン交換基を有する担体の両方を同一カラム内または連結カラム内に充填し、両クロマトグラフィーを同時的に実施することで、特異的な吸着能と優れた凝集体等の除去能を併せ持つ新規分離手法を見出し、本発明（第一態様）を完成させるに至った。

　また、本発明者は、上記課題に鑑み鋭意検討を行った結果、抗体アフィニティ担体を溶出する酸性ｐＨで陽イオン交換担体への抗体等の吸脱着を行い、抗体の凝集体等の不純物が低減された画分を得る陽イオン交換担体の新規分離手法を見出し、本発明（第二態様）を完成させるに至った。

　すなわち、本発明（第一態様）の要旨は、以下の通りである：
［１］　抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いて連結または混合カラムとし、一体として抗体または抗体由来物質の吸着および溶出を行うことを特徴とする抗体または抗体由来物質の精製方法。
［２］　前記抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いた抗体または抗体由来物質の精製方法であり、
　前記担体１を充填したカラムの下流側に前記担体２を充填したカラムを直結した一体型カラムまたは前記担体１と担体２の両方の混合物が充填された混合型カラムに、抗体または抗体由来物質含有液を通液して抗体または抗体由来物質をカラムに負荷し、
　ついで溶出液を通液することで負荷した抗体または抗体由来物質を溶出させることを特徴とする抗体または抗体由来物質の精製方法。
［３］　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のグラジエントで行う［１］または［２］に記載の精製方法。
［４］　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のステップワイズで行う［１］または［２］に記載の精製方法。
［５］　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する［２］～［４］のいずれかに記載の精製方法。
［６］　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液と同じまたはより高いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液し、次いで平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する［２］～［４］のいずれかに記載の精製方法。
［７］　前記アフィニティリガンドを有する担体１がプロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬまたはそれらの類縁物質をリガンドとする担体である［１］～［６］のいずれかに記載の精製方法。
［８］　前記アフィニティリガンドを有する担体１がプロテインＡまたはそれらの類縁物質をリガンドとする担体である［１］～［７］のいずれかに記載の精製方法。
［９］　前記抗体または抗体由来物質が、免疫グロブリンＧ、免疫グロブリンＧ誘導体、または、Ｆｃ含有分子である［１］～［８］のいずれかに記載の精製方法。
［１０］　前記抗体または抗体由来物質が、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙ、または抗原結合部位含有分子である［１］～［９］のいずれかに記載の精製方法。
［１１］　前記陽イオン交換基を有する担体２が、カルボキシル基をリガンドとする担体である［１］～［１０］のいずれかに記載の精製方法。
［１２］　前記カルボキシル基が酸性アミノ酸に由来する［１１］に記載の精製方法。
［１３］　前記抗体または抗体由来物質の溶出ｐＨが５．０未満である［１］～［１２］のいずれかに記載の精製方法。
［１４］　前記担体１のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上１００ｍｇ／ｍＬ以下である［１］～［１３］のいずれかに記載の精製方法。
［１５］　前記担体２のイオン交換容量が０．００１ｍｍｏｌ／ｍＬ以上０．５ｍｍｏｌ／ｍＬ以下である［１］～［１４］のいずれかに記載の精製方法。
［１６］　前記担体１の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下であり、前記担体２の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下である［１］～［１５］のいずれかに記載の精製方法。
［１７］　ｐＫａが４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する［１］～［１６］のいずれかに記載の精製方法。
［１８］　前記カルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上２００ｍｇ／ｍＬ以下である［１］～［１７］のいずれかに記載の精製方法。
［１９］　前記陽イオン交換基を有する担体２を充填したカラムの前にアフィニティリガンドを有する担体１を充填したカラムを連結して一体型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体または抗体由来物質含有溶液を前記一体型カラムに負荷した後に、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する［２］～［１８］のいずれかに記載の精製方法。
［２０］　前記一体型カラムを構成する担体１と担体２の割合が、体積基準で、１／２０以上２０／１以下である［２］～［１９］のいずれかに記載の精製方法。
［２１］　前記陽イオン交換基を有する担体２をアフィニティリガンドを有する担体１と共に混合状態で有する混合型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体又は抗体由来物質含有溶液を負荷してｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する［２］～［１８］のいずれかに記載の精製方法。
［２２］　前記混合型カラムを構成する担体１と担体２の割合が、体積基準で、１／２０以上２０／１以下である［２］～［１８］、［２１］のいずれかに記載の精製方法。
［２３］　吸着条件下における担体１のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣに対する、担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが、１／１０倍以上１０倍以下である［１］～［２２］のいずれかに記載の精製方法。
［２４］　［１］～［２３］のいずれかに記載の精製方法で精製された抗体または抗体由来物質。

　本発明（第二態様）の要旨は、以下の通りである：
[１]　ｐＫａが４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する陽イオン交換基を有する担体の使用方法。
[２]　前記カルボキシル基含有リガンドが酸性アミノ酸に由来する[１]に記載の使用方法。
[３]　前記カルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上２００ｍｇ／ｍＬ以下である[１]または[２]に記載の使用方法。
[４]　前記陽イオン交換基を有する担体２のイオン交換容量が０．００１ｍｍｏｌ／ｍＬ以上０．５ｍｍｏｌ／ｍＬ以下である[１]～[３]のいずれかに記載の使用方法。
[５]　前記陽イオン交換基を有する担体２の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下である[１]～[４]のいずれかに記載の使用方法。
[６]　前記陽イオン交換基を有する担体２を充填したカラムの前にアフィニティリガンドを有する担体１を充填したカラムを連結して一体型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体または抗体由来物質含有溶液を前記一体型カラムに負荷した後に、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する[１]～[５]のいずれかに記載の使用方法。
[７]　前記陽イオン交換基を有する担体２をアフィニティリガンドを有する担体１と共に混合状態で有する混合型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体又は抗体由来物質含有溶液を負荷してｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する[１]～[５]のいずれかに記載の使用方法。
[８]　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低イオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する[６]または[７]に記載の使用方法。
[９]　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液と同じまたはより高いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液し、次いで平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低イオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する[６]または[７]に記載の使用方法。
[１０]　前記抗体または抗体由来物質が免疫グロブリンＧ、免疫グロブリンＧ誘導体、Ｆｃ含有分子、またはＦａｂ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙもしくは抗原結合部位含有分子である[１]～[９]のいずれかに記載の使用方法。
[１１]　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のグラジエントで行う[１]～[１０]のいずれかに記載の使用方法。
[１２]　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のステップワイズで行う[１]～[１０]のいずれかに記載の使用方法。
[１３]　[１]～[１２]のいずれかに記載の使用方法で精製された抗体または抗体由来物質。

　本発明（第一態様）によれば、抗体またはＦｃ含有分子もしくはＦａｂ、ｓｃＦｖ等の低分子化抗体等の抗体由来物質の精製工程の第一工程であるアフィニティクロマトグラフィー工程において、アフィニティ精製の主要目的である抗体自体の高純度化と共に、モノマーの選択的分離特性を向上させ、後段の不純物除去工程に対する負荷を軽減することができる。

　本発明（第二態様）によれば、抗体等の精製工程の第一工程であるアフィニティクロマトグラフィー工程後に、その溶出液をそのまま陽イオン交換クロマトグラフィーで処理可能であり、また、アフィニティ担体の酸性溶出ｐＨと同一のｐＨで陽イオン交換担体への抗体等の吸脱着が可能であることから、アフィニティクロマトグラフィー精製と陽イオン交換クロマトグラフィー精製を一体処理可能で効率的なプロセス構築が可能である。また、本発明（第二態様）によれば、精製後のモノマー抗体が高い含量（純度）で得られる。なお、以下の図面の簡単な説明において、第一態様では図１～１０、１２～１６、第二態様では、図１～１６が参照される。

図１は、プロテインＡアフィニティクロマトグラフィー工程、ウイルス不活性化工程、及び陽イオン交換クロマトグラフィー工程をこの順で行う従来のフローを示す図である。 図２は、本発明の一例を示すフロー図であり、プロテインＡアフィニティクロマトグラフィー工程及び陽イオン交換クロマトグラフィー工程を同時に行なった後、ウイルス不活性化工程を行うフローを示す図である。 図３は、ｐＨ３．７、ｐＨ４．２、ｐＨ４．７における各陽イオン交換基を有する担体の１０％漏出ＤＢＣを示す図である。 図４は、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ａ）を充填したカラムを用いた場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積比率（％）、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図５は、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｂ）を充填したカラムを用いた場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積比率（％）、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図６は、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｃ）を充填したカラムを用いた場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積比率（％）、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図７は、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｄ）を充填したカラムを用いた場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積比率（％）、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図８は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムを用い、抗体負荷量が１０ｍｇである場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図９は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムを用い、抗体負荷量が３０ｍｇである場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１０は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムを用い、抗体負荷量が４０ｍｇである場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１１は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムの直下に、陽イオン交換基を有する担体（ＳＰ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ、陽イオン交換担体Ａ）を充填したカラムを連結した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１２は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムの直下に、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ａ）を充填したカラムを連結した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１３は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムの直下に、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｂ）を充填したカラムを連結した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１４は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムの直下に、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｃ）を充填したカラムを連結した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１５は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）を充填したカラムの直下に、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｄ）を充填したカラムを連結した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。 図１６は、プロテインＡアフィニティリガンドを有する担体（プロテインＡ担体）と、陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体Ｄ）とを同一カラムに混合した場合のモノマー抗体（白抜き）及び凝集体抗体（斜線）の溶出を示す図である（横軸は溶出体積（ｍＬ）、左縦軸はピーク面積値、右縦軸はイオン強度（ｍＭ）を示す）。

　本発明（第一態様）の抗体等（抗体または抗体由来物質）の新規精製方法は、抗体等に対するアフィニティリガンドを有する担体と陽イオン交換基を有する担体を連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着および溶出を行うことを特徴としている（本発明（第一態様）において、連結カラム、混合カラムは、それぞれ一体型カラム、混合型カラムと称する場合があり、「吸着」とは、「負荷」のことをいう場合がある。）。
　例えば、本発明（第一態様）の精製方法は、前記抗体等に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いた抗体等の精製方法であり、前記担体１を充填したカラムの下流側に前記担体２を充填したカラムを直結した一体型カラムまたは前記担体１と担体２の両方の混合物が充填された混合型カラムに、抗体等含有液を通液して抗体等をカラムに負荷し、ついで溶出液を通液することで負荷した抗体等を溶出させることを特徴とするものである。なお、本発明（第一態様）において、アフィニティリガンドを有する担体１は、好ましくは陽イオン交換基を含まず、陽イオン交換基を有する担体２は、好ましくはアフィニティリガンドを含まない。

　本発明（第二態様）は、アフィニティ担体から標的分子（抗体等）の溶出を行う酸性溶出ｐＨで陽イオン交換担体からの抗体等の分離を行うこと、または、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着、および溶出を行うことを特徴としている（本発明において、連結カラム、混合カラムは、それぞれ一体型カラム、混合型カラムと称する場合があり、「吸着」とは、「負荷」のことをいう場合がある。）。すなわち、本発明（第二態様）の陽イオン交換基を有する担体の使用方法は、ｐＫａ４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出することを特徴とする。なお、本発明（第二態様）において、アフィニティリガンドを有する担体１は、好ましくは陽イオン交換基を含まず、陽イオン交換基を有する担体２は、好ましくはアフィニティリガンドを含まない。これら第二態様の特徴は、第一態様で使用されてもよく、第一態様の構成要件とされてもよい。

　本発明（第一態様、第二態様）は、抗体アフィニティクロマトグラフィー精製と陽イオン交換クロマトグラフィー精製を一体としたカラムを操作することで実施することが出来る。すなわち、２クロマトグラフィー工程（図１参照、従来型のフロー）を１クロマトグラフィー工程（図２参照、本発明（第一態様、第二態様）の精製フロー）で実施できることから、工数を省略でき、各工程で必要とされた溶液を使用することなく、生産効率を高めることが出来る。しかも、抗体モノマーの高い含量（高い純度）を実現することも出来る。

　以下に、本発明（第一態様、第二態様）における陽イオン交換担体および抗体アフィニティ担体と陽イオン交換担体の１クロマトグラフィー化について詳細に説明する。

アフィニティリガンドを有する担体（アフィニティ担体）
　本発明（第一態様、第二態様）における、「アフィニティリガンドを有する担体」（以下、アフィニティリガンドを有する担体１、アフィニティ担体またはアフィニティ担体１と称する場合がある）とは、抗原と抗体の結合に代表される、特異的な分子間の親和力に基づいて、ある分子の集合から標的（目的）の分子を選択的に捕集（結合）する物質がリガンドとして水不溶性担体に固定化されたものを示す。

　本発明（第一態様、第二態様）に用いることができるアフィニティリガンドは、標的分子として抗体等に特異的に結合しうる特徴を有していれば特に限定されないが、ペプチド性リガンド、蛋白質性リガンド、または、化学合成性リガンド（合成化合物）が好ましい。標的分子に対する特異性の視点からペプチド性または蛋白質性リガンドが更に好ましく、その内、抗体等に対するアフィニティリガンドがプロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬ、プロテインＨ、プロテインＤ、プロテインＡｒｐ、プロテインＦｃγＲ、抗体結合性合成ペプチドリガンド及びそれら類縁物質であることが特に好ましい。第一及び第二態様において、特に第一態様において、前記アフィニティリガンドとしては、プロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬまたはそれら類縁物質がより好ましく、プロテインＡまたはそれらの類縁物質が最も好ましい。
　第一態様、第二態様において、前記アフィニティリガンドは、標的分子結合ドメイン（単量体ペプチドまたは蛋白質、単ドメイン）を有していれば特に制限されないが、２個以上のドメインが連結された多量体ペプチドまたは蛋白質（複ドメイン）が好ましく、２～１０個がより好ましく、２～８個、更に２～６個のドメインが連結された多量体蛋白質であることが好ましい。これらの多量体蛋白質は、単一の標的分子結合ドメインの連結体であるホモダイマー、ホモトリマー等のホモポリマーであっても良いし、標的分子が同一であれば、複数種類の標的分子結合ドメインの連結体であるヘテロダイマー、ヘテロトリマー等のヘテロポリマーであってもよい。

　本発明（第一態様、第二態様）の前記アフィニティリガンドの標的分子結合ドメインを連結する方法としては、多量体蛋白質の３次元立体構造を不安定化しない方法が好ましく、たとえば、ドメイン配列の末端アミノ酸を介する連結方法、ドメイン配列のアミノ酸残基を介さず連結する方法、または、１または複数のドメイン配列以外のアミノ酸残基で連結する方法が挙げられ、これらの方法に限定されるものではない。

　本発明（第一態様、第二態様）の前記アフィニティリガンドとしては、多量体蛋白質を１つの構成成分として、機能の異なる他の蛋白質と融合させた融合蛋白質を好ましく用いることができる。融合蛋白質としては、アルブミンやＧＳＴ（グルタチオンＳ－トランスフェラーゼ）が融合した蛋白質やＤＮＡアプタマー等の核酸、抗生物質などの薬物、ＰＥＧ（ポリエチレングリコール）などの高分子が融合されている蛋白質等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

　第一態様において、アフィニティ担体１のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣは、通常１ｍｇ／ｍＬ以上１００ｍｇ／ｍＬ以下であることが好ましく、より好ましくは１０ｍｇ／ｍＬ以上、さらに好ましくは１５ｍｇ／ｍＬ以上、さらにより好ましくは２０ｍｇ／ｍＬ以上、特に好ましくは３０ｍｇ／ｍＬ以上である。
　斯かる１０％ＤＢＣは、例えば以下の式により求めることができる。
　ＤＢＣ_１０％＝（Ｖ_１０％－Ｖ_ｄ）Ｃ_０／Ｖ_ｃ（式中、Ｖ_１０％は、ＩｇＧが１０％漏出した時の溶液体積、Ｖ_ｄは配管内体積（例えば、インジェクションからカラム入り口までの配管内体積およびカラム出口から検出器までの配管内体積を含む）、Ｃ_０は負荷液の抗体濃度（ｍｇ／ｍＬ）、Ｖ_ｃはカラム体積）。ＤＢＣ_１０％を測定する場合、所定の流速、すなわち、所定の滞留時間（例えば１分～１０分、好適には３～６分）で行うことが好適である。

　第一態様、第二態様において、前記アフィニティ担体の体積平均粒径は、例えば１μｍ以上１０００μｍ以下であり、５μｍ以上５００μｍ以下であることが好ましく、１０μｍ以上２００μｍ以下であることがより好ましく、１５０μｍ以下がさらに好ましく、１２０μｍ以下がさらにより好ましく、１００μｍ以下が特に好ましい。

陽イオン交換基を有する担体（陽イオン交換担体）
　本発明（第一態様、第二態様）における、「陽イオン交換基を有する担体」（以下、陽イオン交換基を有する担体２、陽イオン交換担体または陽イオン交換担体２と称する場合がある）は、アフィニティリガンドから標的分子である抗体等が溶出（脱離）する条件下で陽イオン交換基として機能し標的分子を捕捉できると共に、ナトリウムイオン、カリウムイオン等のカウンターイオンにより、該標的分子の単量体（モノマー）、凝集体の順序でイオン強度依存的に溶出（脱離）出来る陽イオン交換基が水不溶性担体上に固定化されているものであれば良い。アフィニティリガンドからの標的分子の溶出ｐＨである酸性ｐＨ域において、８０％以上の回収率で標的分子を回収するため、陽イオン交換基として、弱酸性基であるカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換基（カルボキシル基含有リガンド）の利用が好ましい。また、前記カルボキシル基含有リガンドは、酸性アミノ酸に由来することが可能で、より好ましくはグルタミン酸に由来するものである。通常、アフィニティ担体からの溶出にはｐＨ４．０以下の酸性ｐＨが用いられることから、当該ｐＨで高い回収率を得るには、本発明（第一態様、第二態様）の陽イオン交換リガンドであるカルボキシル基含有リガンドのｐＫａは４．０以上である。前記カルボキシル基含有リガンドのｐＫａは、好ましくは４．０５以上６．５以下、より好ましくは４．１０以上６．４５以下である。ｐＫａが低いと、抗体収率が低下する虞がある。
　第一態様において、その好ましい態様では、陽イオン交換基が、カルボキシル基、スルホン基等であることが推奨される。中でも、カルボキシル基が好ましく、ｐＫａが４．０以上のカルボキシル基がより好ましい。また、前記カルボキシル基は、酸性アミノ酸に由来することが可能で、より好ましくはグルタミン酸に由来するものである。さらに、アフィニティリガンドからの標的分子の溶出ｐＨ域において、局所的な酸性環境の形成を避けることが好ましく、弱酸性基であることが好ましい。たとえば、プロテインＡをアフィニティリガンドとする担体を用いる場合は、陽イオン交換基としてカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換基の利用が好ましい。

　第一態様において、前記陽イオン交換基のｐＫａは、３．５以上６．５以下であることが好適であり、より好ましくは４．０以上６．０以下、さらに好ましくは４．１以上５．５以下である。ｐＫａが低いと、抗体収率が低下する虞がある。

　本発明（第一態様、第二態様）において、陽イオン交換基を有する担体とアフィニティ担体を連結型カラムまたは混合型カラムに使用する場合、陽イオン交換基のｐＫａと溶出ｐＨは、陽イオン交換基ｐＫａ≧溶出ｐＨの関係を満たすことが好ましく、より好ましくは陽イオン交換基ｐＫａ＞溶出ｐＨの関係を満たす。
　従来では、陽イオン交換基を有する担体を単独で使用する際、陽イオン交換基ｐＫａ＜溶出ｐＨの条件で行われていたところ、陽イオン交換基を有する担体とアフィニティ担体を併用する為の好適な条件を本発明で見出したものである。前記関係を満足する限り、溶出時に標的タンパク質（抗体等）の電荷がプラス側に大きく帯電するのに対して、陽イオン交換基のリガンドがマイナスからプラス側への転化が比較的抑えられる為、プラスの電荷をさらに帯びた凝集抗体等を回収することができ、抗体モノマーが精製されやすくなると考えられる。

　第一態様、第二態様において、前記陽イオン交換担体の体積平均粒径は、例えば１μｍ以上１０００μｍ以下であり、５μｍ以上５００μｍ以下であることが好ましく、１０μｍ以上２００μｍ以下であることがより好ましく、さらに好ましくは１５０μｍ以下、さらにより好ましくは１２０μｍ以下、特に好ましくは１００μｍ以下である。

　第一態様、第二態様において、前記陽イオン交換担体のイオン交換容量は、０．００１ｍｍｏｌ／ｍＬ以上０．５ｍｍｏｌ／ｍＬ以下であることが好ましい。

　第一態様、第二態様において、前記カルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体（前記陽イオン交換担体２）のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣは、１ｍｇ／ｍＬ以上２００ｍｇ／ｍＬ以下であることが好ましく、より好ましくは１０ｍｇ／ｍＬ以上、さらに好ましくは１５ｍｇ／ｍＬ以上、さらにより好ましくは２０ｍｇ／ｍＬ以上、特に好ましくは３０ｍｇ／ｍＬ以上である。なお、斯かる１０％ＤＢＣは、例えば以下の式により求めることができる。
　ＤＢＣ_１０％＝（Ｖ_１０％－Ｖ_ｄ）Ｃ_０／Ｖ_ｃ（式中、Ｖ_１０％は、ＩｇＧが１０％漏出した時の溶液体積、Ｖ_ｄは配管内体積（例えば、インジェクションからカラム入り口までの配管内体積およびカラム出口から検出器までの配管内体積を含む）、Ｃ_０は負荷液の抗体濃度（ｍｇ／ｍＬ）、Ｖ_ｃはカラム体積）。ＤＢＣ_１０％を測定する場合、所定の流速、すなわち、所定の滞留時間（例えば１分～１０分、好適には３～６分）、所定ｐＨ(例えば３～５、特に４)で行うことが好適である。

水不溶性担体（担体）
　本発明（第一態様、第二態様）に用いることのできる「水不溶性担体」は、水に不溶な基材であって、抗体アフィニティリガンドと陽イオン交換基を固定化できれば特に制限されないが、例えば、ガラスビーズ、シリカゲルなどの無機担体、架橋ポリビニルアルコール、架橋ポリアクリレート、架橋ポリアクリルアミド、架橋ポリスチレンなどの合成高分子や、結晶性セルロース、架橋セルロース、架橋アガロース、架橋デキストランなどの多糖類からなる有機担体、さらにはこれらの組み合わせによって得られる有機－有機、有機－無機などの複合担体などが挙げられる。市販品としては、多孔質セルロースゲルであるＧＣＬ２０００、アリルデキストランとメチレンビスアクリルアミドを共有結合で架橋したＳｅｐｈａｃｒｙｌ　Ｓ－１０００、アクリレート系の担体であるＴＯＹＯＰＥＡＲＬ、アガロース系の架橋担体であるＳｅｐｈａｒｏｓｅ　ＣＬ４Ｂ、Ｒａｐｉｄ　Ｒｕｎ　Ａｇａｒｏｓｅ　Ｂｅａｄｓ、および、セルロース系の架橋担体であるＣｅｌｌｕｆｉｎｅなどを例示することができる。

　また、本発明（第一態様、第二態様）に用いる水不溶性担体は、単位時間当たりの処理容量の観点から、表面積が大きいことが望ましく、適当な大きさの細孔を多数有する多孔質であることが好ましい。担体の形態としては、ビーズ状、モノリス状、繊維状、膜状（中空糸を含む）などいずれも可能であり、任意の形態を選ぶことができる。水不溶性担体上に配置された抗体アフィニティリガンドと陽イオン交換基が協奏的に機能するために、その物理的距離が近接し、一定の滞留時間が得られることが当該分離マトリックスの機能を効果的に発揮できることから、多孔質ビーズが好ましい。陽イオン交換基を抗体アフィニティリガンドが固定化された担体に固定化する場合、多糖類からなる、または、単糖もしくは多糖類で修飾された担体は、抗体アフィニティリガンド導入の容易さの点で好ましい。具体的には、アガロースやセルロース担体が好ましいが、特にこれに制限されるものではない。

　第一態様において、アフィニティリガンドを水不溶性担体、分離マトリックスに固定化する方法としては、一般的な方法を用いることができる。例えば、抗体アフィニティリガンドのアミノ基が担体上に導入されたホルミル基を介して担体に結合してもよく、抗体アフィニティリガンドのアミノ基が担体上の活性化されたカルボキシル基を介して担体に結合してもよい。
　また、これらの水不溶性担体は、抗体アフィニティリガンド導入の前にリガンドが担体に共有結合できるように活性化されるが、市販の活性化担体を用いても良いし、自ら活性化を行っても良い。

　第一態様において、活性化により水不溶性担体に導入される官能基としては、アフィニティリガンドと共有結合を形成することができる官能基であれば、特に限定されないが、例えばエポキシ基（エピクロルヒドリン）、臭化シアン、Ｎ，Ｎ－ジスクシンイミジル炭酸塩（ＤＳＣ）などで活性化されるヒドロキシ基、アルデヒド基または活性化カルボン酸基（例えば、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）エステル、カルボニルジイミダゾール（ＣＤＩ）活性化エステル）などの反応性官能基（「活性化基」）等を挙げることができる（Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ　Ｇ．Ｔ．他　著、「Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ　Ａｆｆｉｎｉｔｙ　Ｌｉｇａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，　Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ」、１９９２年、米国特許第５，８７４，１６５号、米国特許第３，９３２，５５７号、米国特許第４，７７２，６５３号、米国特許第４，２１０，７２３号、米国特許第５，２５０，６１２３号、欧州特許公開第１３５２９５７号、ＷＯ２００４／０７４４７１）。これらの中には、アフィニティリガンドが担体に直接共有結合するものと、直鎖、分岐鎖、または環状のリンカーまたはスペーサーが用いられるものが含まれる。なお、抗体アフィニティリガンドが導入された担体を活性化する場合は、抗体アフィニティリガンドと直接反応しない活性化手法が好ましい。

　第一態様において、アフィニティリガンドの内、蛋白質性リガンドを担体に固定化する方法は、蛋白質の官能基の一部と担体の官能基の一部を反応させる方法を用いることができるが、その反応に利用できる蛋白質側の主な官能基（活性基）は、Ｎ末端アミノ酸およびリジン（Ｌｙｓ）側鎖のアミノ基、または、システイン（Ｃｙｓ）側鎖のチオール基、または、Ｃ末端アミノ酸およびグルタミン酸（Ｇｌｕ）側鎖およびアスパラギン酸（Ａｓｐ）側鎖のカルボキシル基等があげられるがこれらに限定されるものではない。

　第一態様において、また、リガンドの配向性を制御し蛋白質性抗体アフィニティリガンドを水不溶性担体に固定化する方法として、Ｃ末端にシステインを有するプロテインＡを利用する方法が提案されている（米国特許第６，３９９，７５０号、Ｌｊｕｎｇｑｕｉｓｔ　Ｃ．他　著、「Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．」、１９８９年、１８６巻、５５７－５６１頁）。
　リンカーを利用する固定化技術としては、担体とリガンドの距離を確保し、立体障害を排除して高性能化を図る方法の他、リンカーまたはスペーサーの中に官能基（例えば、帯電アミン）を付与、形成させる方法等が挙げられる。抗体アフィニティリガンドの固定化時にリンカーまたはスペーサー部分にリガンドを効果的に集積し、固定化収率の向上による分離性能の向上が検討されてきている。たとえば、リンカーアームの一部としてＮＨＳ活性化されたカルボン酸で誘導体化されたアガロース担体への蛋白質性リガンドの固定化技術が挙げられる（米国特許第５，２６０，３７３号、特開２０１０－１３３７３３、特開２０１０－１３３７３４）。
　また、リンカーやスペーサーとは別に担体に会合性基を利用し、抗体アフィニティリガンドを担体に集積した後に、会合性基と抗体アフィニティリガンドの間に共有結合を形成させずに、水不溶性担体上に抗体アフィニティリガンドを個別に固定化する方法も提案されている（特開２０１１－２５６１７６）。

　第一態様、第二態様において、陽イオン交換基を水不溶性担体に固定化または導入する手法として、通常、陽イオン交換基の作製に用いられる手法が利用できる。たとえば、糖骨格にカルボキシメチル基を導入する手法として、アルカリ条件下でモノクロル酢酸を反応させる方法や、硫酸基を導入する方法として、アルカリ条件下で硫酸を反応させる方法があるが、これらに限定されるものではない。水不溶性担体にアミノ基と反応する活性基を導入した後に、アミノ酸のアミノ基を介しアミノ酸を固定化することによりカルボキシル基を導入することも出来る。また、水不溶性担体上に存在または導入されたジオール基に対し過ヨウ素酸ナトリウムを反応させて担体を活性化しアルデヒド基を導入し、アミノ基と陽イオン交換基を同一分子内に持つ分子を添加し、イミン形成後に還元処理することにより、担体上のアルデヒド基とアミノ基を還元的アミノ化法により共有結合させ陽イオン交換基を導入することが出来る陽イオン交換基は、直接、水不溶性担体に固定化されていても良いし、スペーサー、リンカー等を介して固定化されていても良い。また、アフィニティ担体から標的分子が溶出（脱離）する酸性ｐＨ条件下で陽イオン交換基として機能できれば、陽イオン交換基、スペーサーやリンカーが他の機能を有する官能基を含んでいても良く、それらの分子形状も特に制限されない。アミノ酸のカルボキシル基を導入する方法は、リガンドが脱離した場合の毒性の観点からも、抗体精製用分離マトリックスの材料として好ましい。

　本発明（第一態様、第二態様）は、アフィニティ担体から標的分子の溶出を行う酸性溶出ｐＨで陽イオン交換担体からの抗体等の分離を行うこと、または、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を用いて連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着、および溶出を行うことを特徴としている。
　抗体医薬品の精製プラットホームプロセスに利用される第一クロマトグラフィーと第二クロマトグラフィーの代表例として、例えばプロテインＡクロマトグラフィーと陽イオンクロマトグラフィーの組み合わせが用いられる。

　第一態様、第二態様において、第一クロマトグラフィーのプロテインＡクロマトグラフィーは、単量体と凝集体の分離能が低く、分離の安定性にも乏しいことから、通常、標的分子である抗体またはＦｃ含有分子の変性や凝集を最小限に抑えつつ高い回収率が得られる溶出条件が選定され、凝集体等の除去は後段プロセスが担う。

　第一態様、第二態様において、第二クロマトグラフィーとして陽イオン交換クロマトグラフィーが選定される場合は、一般的に吸脱着モードで凝集体や他の夾雑物の除去が行われるが、プロテインＡリガンドを有する担体（以下、プロテインＡ担体ともいう）からの溶出液を陽イオン交換クロマトグラフィーの吸着に適したｐＨおよびイオン強度に調整することが必要である。よって、プロテインＡクロマトグラフィー工程の条件設定後に、陽イオン交換クロマトグラフィー工程の条件を設定する必要があり、また、多種の制限因子がある一方で効率的な凝集体等の分離が可能とは言い切れない。

　一方、本発明（第一態様、第二態様）の方法を用いる場合、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を用いて連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着、および溶出を行うことで、２工程のクロマトグラフィー操作を１工程に短縮可能で、使用する緩衝液の種類および使用量、更に、作業時間の短縮が期待できる。

　また、本発明（第一態様、第二態様）の新規抗体精製法は、アフィニティリガンドからの標的分子が溶出される狭いｐＨ域で、イオン強度等の設定により単量体含量の高い溶出画分を得ることが可能である。特にモノクローナル抗体の精製においては、当該溶出ｐＨは標的分子の等電点から大きく離れているため、抗体毎に溶出イオン強度の幅に大きな差異がなく、狭い範囲で各種標的分子の使用条件の設定が可能であることが期待できる。更に、アフィニティリガンドとして、改変プロテインＡリガンドを用いる場合、溶出ｐＨ域を更に狭く設定可能であるほか、アルカリＣＩＰ（ｃｌｅａｎｉｎｇ　ｉｎ　ｐｌａｃｅ；定置洗浄）の使用により、効果的な洗浄も可能であるため、安定的なプロセス構築の観点からは改変プロテインＡの利用が好ましい。

　第一態様、第二態様において、アフィニティ担体を用いずに他のクロマトグラフィー担体を連結または混合カラムとして用いた場合、たとえば、イオン交換担体と疎水クロマトグラフィー担体を連結または混合して用いる場合、たとえ標的分子がモノクローナル抗体であっても、疎水性および等電点の相違等により標的分子毎に使用条件の設定が異なる他、特異性も低く、回収工程としてプラットフォーム化は困難と考えられる。

　第一態様、第二態様において、アフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムは、吸着時に抗体アフィニティリガンドにより、高い特異性を発揮できるほか、アフィニティリガンドの溶出条件範囲内でイオン強度の設定により容易にその使用条件が設定可能である点で、アフィニティ担体１を使用しない他の担体の組み合わせよりも優れている。

　一旦プロテインＡクロマトグラフィーカラムに吸着・溶出させた抗体を陽イオン交換クロマトグラフィーカラムに全量完全に捕捉した後に、ｐＨ５．０－９．０の緩衝液で溶出することにより、プロテインＡクロマトグラフィーと陽イオン交換クロマトグラフィーの間のホールディングタンクをなくす手法が開示されているが、陽イオン交換担体からの溶出ｐＨとして、アフィニティ担体からの溶出ｐＨよりも高いｐＨを用いることで、本発明（第二態様）と区別される。また、本発明（第一態様、第二態様）は、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を連結または混合カラムとし一体のカラムとして使用可能であり、単一の溶出操作で溶出を行う過程で標的物質を分画出来る点、および、その溶出ｐＨが５．０未満や４．０以下であり、アフィニティ担体の溶出ｐＨのまま陽イオン交換担体の溶出を行う点で、本質的に異なる技術領域である（ＷＯ２０１１／０１７５１４）。

　より具体的には、本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムの使用方法に関し、中性付近で抗体等の標的分子を吸着させる場合、陽イオン交換基のカウンターイオンを一定濃度以上添加して使用することが好ましく、当該条件では陽イオン交換基機能は作用せず、また、作用しても更に高いイオン強度の洗浄でその陽イオン交換基に由来する非特異的な吸着物は洗浄除去できる。一方、イオン強度はアフィニティリガンドの吸着を阻害せず、高い特異性をもって目的物質を吸着できるほか、高イオン強度の洗浄液の使用により、基材、リンカー、スペーサー、リガンドおよび標的分子に非特異的に吸着する分子を効果的に洗浄除去しうる。

　通常、組換えモノクローナル抗体を発現させた培養上清は、ヒトなどの体液に近いイオン強度を有することから直接本発明（第一態様、第二態様）の連結または混合カラムに供しても高い特異性を維持できる他、より高いイオン強度の洗浄液により夾雑物を更に低減できる。アフィニティ担体から標的分子を含む組成物を溶出させる前に、イオン交換基の機能が発揮できるようにイオン強度の低い緩衝液の通液後に、アフィニティリガンドからの低ｐＨ溶出と連動して陽イオン交換基のイオン強度依存的溶出を行うことが好ましい。

　本発明（第一態様、第二態様）において、アフィニティ担体を充填したカラムＡと陽イオン交換担体を充填したカラムＢを連結する場合、前記カラムＡの直下に前記カラムＢを連結することが好適であり、連結部分は途中に分岐弁を設けず直管でつながっているものが好ましいが、流路として直結可能である限り、途中に分岐弁を挿入してもよい。

　本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムは、アフィニティ担体と陽イオン交換担体の比率によってその機能が調節可能である。アフィニティ担体の中性条件下での標的物質の結合容量がアフィニティ担体からの酸性溶出ｐＨにおける陽イオン交換担体の結合容量よりも大きい場合は、酸性溶出時に低イオン強度でも標的物質がカラムから溶出される傾向があり、アフィニティ担体の結合容量が陽イオン交換担体の結合容量と同程度または低い場合には、低イオン強度ではアフィニティ担体から溶出された抗体が陽イオン交換担体に完全に移行するため、より高い回収率を得るには溶出イオン強度を高めに設定する必要がある。何れの場合も、イオン強度および／またはｐＨの調節により回収率および、そのモノマー比率の制御が可能である。

　第一態様、第二態様において、アフィニティ担体の結合容量（例えば１０％ＤＢＣ）と陽イオン交換担体の結合容量（例えば１０％ＤＢＣ）の比率に特に制限を設けないが、吸着条件下におけるアフィニティ担体のＩｇＧに対する滞留時間６分での結合容量に対する、陽イオン交換担体のＩｇＧに対する滞留時間６分での結合容量が、１０倍以下であることが好ましく、５倍以下であることがより好ましい。また、下限は、１／１０倍以上であることが好ましく、１／５倍以上であることがより好ましい。前記結合容量の比率は、例えばアフィニティ担体、陽イオン交換担体それぞれの１０％ＤＢＣ値から得られる比率であってもよい。

　第一態様、第二態様において、前記一体型カラムまたは前記混合型カラムを構成するアフィニティ担体と陽イオン交換担体の割合（アフィニティ担体／陽イオン交換担体）は、体積基準で、１／２０以上２０／１以下であることが好ましく、より好ましくは１／５以上５／１以下である。

　本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムにより精製される標的分子は、抗体等（免疫グロブリンＧおよびその類縁物質）であり、一般的に抗体と称される分子の他、免疫グロブリン分子の定常領域であるＦｃ領域と他の機能性蛋白質またはペプチドを融合してなるＦｃ融合蛋白質（Ｆｃ含有分子）、および低分子化抗体が含まれ、抗体医薬品の原料として利用される。具体的に、抗体等は、免疫グロブリンＧ、免疫グロブリンＧ誘導体、Ｆｃ含有分子、更には、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ、及びｄｉａｂｏｄｙ等の低分子化抗体を含むことが好ましい。

　以下に、本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムを一体として抗体等の吸着、および溶出を行う使用方法の詳細な説明を、標的分子が免疫グロブリンＧの場合について例示するが、本発明（第一態様、第二態様）はこれに限定されるものではない。

　本発明（第一態様、第二態様）における好適な使用方法は、例えば、（１）前記陽イオン交換担体を充填したカラムの前にアフィニティ担体を充填したカラムを連結して一体型カラムを作製し、中性ｐＨ条件（例えばｐＨ６以上９以下）で抗体等含有溶液を前記一体型カラムに負荷した後に、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体等を溶出する方法、（２）前記陽イオン交換担体をアフィニティ担体と共に混合状態で有する混合型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体等含有溶液を負荷してｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体等を溶出する方法等である。

　第一態様、第二態様において、アフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムを用いた標的分子（抗体）の精製は、大きく、吸着工程、洗浄工程、イオン強度調節工程、溶出工程の４工程で構成されるほか、その後の再生工程および／またはＣＩＰ工程、再平衡化工程などの再利用の為の工程を含んでいてもよい。

　第一態様、第二態様において、吸着工程では、一般的なアフィニティーカラムクロマトグラフィー精製方法を用いることができる。すなわち、その一例において、抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）を含む蛋白質溶液のｐＨが中性付近となるように調整した後、該溶液を本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換基（陽イオン交換担体）の連結または混合カラムに通液し、アフィニティ担体が充填されたカラムまたはアフィニティ担体に抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）を特異的に吸着させる。たとえば、プロテインＡ担体をアフィニティ担体とする場合、その負荷ｐＨは６以上が好ましく、６．３以上９以下がより好ましく、６．５以上８．５以下がさらに好ましい。哺乳類培養細胞により生産される免疫グロブリンＧの精製において、特にイオン強度の調整を必要としないほか、あらかじめイオン強度を上げて更に非特異吸着を抑制することも出来る。吸着工程において、所定濃度の抗体または抗体由来物質含有溶液を担体に吸着させるが、抗体または抗体由来物質含有溶液の溶媒として、例えばＰＢＳ（約１０ｍＭ　リン酸、約１５０ｍＭ　ＮａＣｌ等）を使用してもよい。また、吸着工程の前に、平衡化工程を行ってもよいが、平衡化溶液の溶媒として、例えばＰＢＳ（約１０ｍＭ　リン酸、約１５０ｍＭ　ＮａＣｌ等）を使用してもよい。

　第一態様、第二態様において、洗浄工程では、アフィニティリガンドが機能する条件範囲の緩衝液を適量通過させ、カラム内部を洗浄する。すなわち、ｐＨの好ましい範囲は前記負荷時と同じ範囲（中性付近のｐＨ）であってもよく、例えば６以上が好ましい。この時点では標的分子である抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）はアフィニティ担体に吸着されている。この時、中性付近のｐＨでイオン強度や組成物の最適化により、不純物を効果的に除去できる場合がある。負荷、洗浄時において、陽イオン交換担体が機能しない条件が好ましく、すなわち、中性付近のｐＨにすると共に一定以上の高イオン強度の洗浄液の利用が好ましく、この過程で両分離マトリックスおよび／または、免疫グロブリンＧを介して非特異的にカラムに残留する不純物を洗浄することが出来る。

　第一態様、第二態様において、抗体等含有溶液を負荷して下記の溶出を開始する前に、洗浄工程を行うが、洗浄工程の回数は、例えば少なくとも１回以上、好ましくは２回以上である。洗浄工程の好適例は、例えば以下の例を挙げることができるが、以下の例に限定されるものではない。
　（１）前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液（第２の洗浄液）を通液することが好ましく、（２）前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液と同じまたはより高いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液（第１の洗浄液）を通液し、次いで平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液（第２の洗浄液）を通液することも好ましい。上記（１）および（２）の方法は、通常のプロテインＡクロマトグラフィーで使用される洗浄方法を、一体型カラムまたは混合型カラムにも適用するものであり、プロテインＡ担体に非特異的に吸着した不純物を洗い流すことができ、陽イオン交換担体に吸着した不純物をも洗い流すことができる。また、上記（１）は、例えば精製純度の高い抗体に対して行われることが好適であり、上記（２）は、例えば培養上清に対して行われることが好適である。上記（１）および（２）で使用される第２の洗浄液は、例えば１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ　ｐＨ７等の溶液であり、上記（２）で使用される第１の洗浄液は、例えば１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ　１Ｍ　ＮａＣｌ　ｐＨ７、１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ　ｐＨ７等の溶液である。なお、上記（１）および（２）の前に、平衡化溶液と同じイオン強度およびｐＨの溶液（例えば、ＰＢＳ）で前洗浄してもよい。

　第一態様、第二態様において、イオン強度調節工程では、中性付近でイオン強度が低い緩衝液にカラムを置換し、溶出時の陽イオン交換担体によるイオン強度依存的溶出機能の発現に備える。イオン強度は、溶出液のイオン強度よりも低いことが、より好ましい。

　第一態様、第二態様において、溶出工程では、酸性ｐＨ、イオン強度の組み合わせにより、アフィニティ担体からの溶出時に陽イオン交換分離モードを機能させ、単量体含量の高い画分を低イオン強度溶出画分に回収することが出来る。溶出液のｐＨはアフィニティ担体からの抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）の溶出ｐＨが適用できる。当該ｐＨは、アフィニティ担体と抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）の種類により決定される分離条件を中心に決定されることから、特段の条件設定を必要としないが、凝集体等の生成抑制の観点から、アフィニティ担体からの溶出が可能な範囲でより高いｐＨが好ましい。第一態様、第二態様において、抗体等の溶出ｐＨは、４．０以下であり、好ましくは３．９５以下、より好ましくは３．９以下、さらに好ましくは３．８以下である。なお溶出ｐＨは、例えば、３．０以上、好ましくは３．２以上、より好ましくは３．５以上としてもよい。

　第一態様の別の態様において、抗体等の溶出ｐＨは、５．０未満であることが好ましく、より好ましくは４．５以下、さらに好ましくは４．０以下である。なお溶出ｐＨは、例えば、３．０以上、好ましくは３．２以上、より好ましくは３．５以上としてもよい。

　第一態様、第二態様において、アフィニティ担体がプロテインＡ担体の場合は、溶出液ｐＨは例えばｐＨは５．０未満２以上、４．０以下２以上の間に設定される。ただし、標的分子の酸変性を避ける目的から、ｐＨ３．０以上がより好ましく、ｐＨ３．５以上が特に好ましい。溶出液ｐＨの上限値は上記と同様であることが好ましい。

　第一態様、第二態様において、アルカリ耐性型の改変型プロテインＡ担体を使用する場合は、一般的にその溶出ｐＨは３．５～４．０の間を中心に設定されるが、これに限定されるものではない。また、溶出イオン強度は、アフィニティ担体と陽イオン交換担体の比率に依存するほか、単位体積当たりの抗体等（例えば、免疫グロブリンＧ）の負荷量にも依存するが、グラジエント実験やステップワイズ溶出実験により最適化ポイントを容易に設定しうる。

　本発明（第二態様）の陽イオン交換担体の溶出条件または本発明（第一態様）の溶出条件は、塩濃度グラジエント溶出でもステップワイズ溶出でも適用可能であるが、操作の単純化のためには、ステップワイズ溶出による抗体の回収と高モノマー含量化を達成できる条件設定が好ましいが、グラジエント溶出は条件設定がより容易である。
　第一態様、第二態様において、例えば、抗体等の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のグラジエントで行ってもよく、抗体等の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のステップワイズで行ってもよい。なお、洗浄工程のイオン強度と酸性溶出ｐＨの組み合わせでも凝集体等がカラムに残留し溶出画分に混入しない場合は、イオン強度調節工程を省略することが出来る。

　第一態様、第二態様において、溶出を開始する際、溶出液のｐＨを一定にして、溶出液のイオン強度が連続的または段階的に増大するようにすることが好適である。溶出液は、通常使用されるものであればよく、例えば酢酸、クエン酸等である。溶出液のｐＨは、３以上４．０以下が好ましく、より好ましくは３．１以上３．９５以下、さらに好ましくは３．２以上３．９０以下である。特に第一態様において、溶出液のｐＨは、３以上５以下が好ましく、より好ましくは３．１～４．５、さらに好ましくは３．２～４．０である。第一態様、第二態様において、イオン強度は、０．１ｍＭ以上２０００ｍＭ以下が好ましく、より好ましくは０．５ｍＭ以上１０００ｍＭ以下、さらに好ましくは１ｍＭ以上５００ｍＭ以下の範囲で連続的にまたは段階的に増大させる。

　本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムを用いて精製された抗体等（例えば免疫グロブリンＧ）は、単一の分離モードに基づく抗体アフィニティ分離マトリックスよりも高いモノマー選択性を示し、その溶出液中のモノマー含量が高い。

　単一分離モードに基づくアフィニティ担体を用いた場合にも、溶出ｐＨおよびイオン強度等の最適化により、モノマー含量を幾分高めることは可能であるが、その効果が低く、効果発現にはより大きな回収率の低下を伴う。本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムを用いることにより、特異性の高いアフィニティ精製と、主に陽イオン交換クロマトグラフィーにより達成しうるモノマー含量の向上を、単一のクロマト操作で効率的に達成可能であることから、後段プロセスへの負荷の低減が可能となり、プロセス全体の収率向上と単量体含量の向上に貢献できる。すなわち、本発明（第一態様、第二態様）のアフィニティ担体と陽イオン交換担体の連結または混合カラムとして用いる新規抗体精製法により、抗体医薬品の製造プロセスの生産性向上と高純度化に寄与できる。

　本願は、２０１３年９月１７日に出願された日本国特許出願第２０１３－１９２３７８号及び２０１３年９月１７日に出願された日本国特許出願第２０１３－１９２３７９号に基づく優先権の利益を主張するものである。２０１３年９月１７日に出願された日本国特許出願第２０１３－１９２３７８号及び２０１３年９月１７日に出願された日本国特許出願第２０１３－１９２３７９号の明細書の全内容が、本願に参考のため援用される。

　以下に実施例に基づいて本発明（第一態様、第二態様）をより詳細に説明するが、本発明（第一態様、第二態様）はこれらの実施例に限定されるものではない。

（陽イオン交換担体の調製例）
カルボキシル基導入担体の調製（調製例１）
　４％アガロースビーズとして冷水に置換したＬｏｗ　ｄｅｎｓｉｔｙ　Ｇｌｙｏｘａｌ　４　Ｒａｐｉｄ　Ｒｕｎ（ＡＢＴ社）を湿潤体積として４ｍＬを反応容器にとり、冷やした１Ｍグルタミン酸（ｐＨ６）で５回洗浄し、回収後にスラリーの液量を７ｍＬとした。クロマトチャンバー内で２時間転倒攪拌した後に、１Ｍのジメチルアミンボラン水溶液を０．５ｍＬ追加投入し、クロマトチャンバー内で１時間３０分攪拌した。更に、一晩室温で転倒攪拌した。遠心して担体を沈降させた後に液面が６ｍＬになるように上清を除去した中に、２０ｍｇの水素化ホウ素ナトリウムを直接加え、室温で更に２時間転倒攪拌した。水、０．１Ｍクエン酸、０．１Ｍ水酸化ナトリウム、および０．５ＭのＮａＣｌを添加したＰＢＳで十分に洗浄し、グルタミン酸のアミノ基を介し還元的アミノ化法でアルデヒド基にカルボキシル基を導入したアガロース担体を得た。本陽イオン交換担体をＧｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨとした。

（陽イオン交換担体（カルボキシル基含有リガンド）のｐＫａおよびイオン交換容量の測定）
　カルボキシル基導入陽イオン交換担体として、ＣＭ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア；陽イオン交換担体Ａ）、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ　ＣＭ－６５０Ｍ（東ソー；陽イオン交換担体Ｂ）、ＦＲＡＣＴＯＧＥＬ　ＣＯＯ（Ｍ）（メルク；陽イオン交換担体Ｃ）、Ｇｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨ（調製例１；陽イオン交換担体Ｄ）を１Ｍ　ＫＣｌ（ｐＨ２）で置換し、０．１Ｍ　ＮａＯＨで滴定してｐＫａとイオン交換容量を求めた。結果を表１に示した。

（陽イオン交換担体の酸性ｐＨでの結合容量の測定）
　カルボキシル基導入陽イオン交換担体として、ＣＭ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア）、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ　ＣＭ－６５０Ｍ（東ソー）、Ｆｒａｃｔｏｇｅｌ　ＣＯＯ（Ｍ）（メルク）、Ｇｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨ（調製例１）をＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、０．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、以下のクロマトグラフィー条件にて結合容量を測定した。負荷液のｐＨを３．７、４．２、または、４．７として、それぞれの結合容量を１０％漏出の動的結合容量（１０％ＤＢＣ）として測定した。

陽イオン交換担体の１０％　ＤＢＣ測定に用いたクロマトグラフィー条件
カラム：ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ、２．４ｍＬ容（Ｏｍｎｉｆｉｔ社製）
流速：０．４ｍＬ／分（滞留時間：６分）
ポリクローナル抗体（ＩｇＧ）：ガンマグロブリン・ニチヤク（日本製薬）
負荷液：０．５ｍｇ－ＩｇＧ／ｍＬ(５ｍＭクエン酸：ｐＨ３．７、４．２、または、４．７)
平衡化液：５ｍＭクエン酸（ｐＨ３．７、４．２、または、４．７）
溶出液：５０ｍＭクエン酸、０．５Ｍ塩化ナトリウム（ｐＨ３．７）
ＣＩＰ液：０．１Ｍ水酸化ナトリウム、１Ｍ塩化ナトリウム
中和・再平衡化液：５ｍＭクエン酸（ｐＨ３．７、４．２、または、４．７）

　各担体の結合容量（１０％ＤＢＣ）を図３に示した。その結果、カルボキシル基をリガンドとする各種陽イオン交換担体の結合容量に大きな差異は確認されなかった。また、表１のイオン交換容量と結合容量の間には、相関は確認されなかった。ｐＫａが低い程、結合容量のｐＨ依存性が大きい傾向にあった。

（モノマー含量の測定）
　各クロマトグラフィー溶出液をゲルろ過に供し、凝集体とモノマーを分画し、そのエリア値の比較からモノマー含量を求めた。以下にゲルろ過条件を示した。

ゲルろ過クロマトグラフィー条件
カラム：Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００　１０／３００　ＧＬ （ＩＤ　１ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　３０ｃｍ）（ＧＥヘルスケア）
流速：０．５ｍＬ／分
検出波長：２１４ｎｍ
負荷液：１００μＬ／Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ（吸光度値が１を超えない範囲に希釈）
溶離液：ＰＢＳ（ｐＨ７．４）

（比較例１）
陽イオン交換担体を用いたｐＨ５緩衝液中での抗体の分離
　陽イオン交換担体として、ＣＭ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア）、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ　ＣＭ－６５０Ｍ（東ソー）、Ｆｒａｃｔｏｇｅｌ　ＣＯＯ（Ｍ）（メルク）、Ｇｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨ（調製例１）をＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、０．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、以下のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。溶出フラクションには、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

陽イオン交換クロマトグラフィー条件
カラム：ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ、２．４ｍＬ容（Ｏｍｎｉｆｉｔ社製）
流速：０．４ｍＬ／分（滞留時間：６分）、ただし、ＣＩＰ以降は、０．８ｍＬ／分
ポリクローナル抗体（ＩｇＧ）：ガンマグロブリン・ニチヤク（日本製薬）
負荷液：０．５ｍｇ－ＩｇＧ／ｍＬ（１０ｍＭクエン酸、ｐＨ５）
平衡化（５カラム体積）：１０ｍＭクエン酸、ｐＨ５
負荷（３０ｍｇ）
洗浄（５カラム体積）：１０ｍＭクエン酸、ｐＨ５
溶出グラジエント（４０カラム体積）： Ａ→Ｂリニアグラジエント
Ａ液：１０ｍＭクエン酸、ｐＨ５
Ｂ液：２５０ｍＭクエン酸、ｐＨ５
再生（４カラム体積）：５０ｍＭクエン酸、２５０ｍＭ　塩化ナトリウム、ｐＨ５
ＣＩＰ（４カラム体積）：０．１Ｍ水酸化ナトリウム、１Ｍ塩化ナトリウム
中和・再平衡化（４カラム体積）：１０ｍＭクエン酸、ｐＨ５
フラクション：１カラム体積

　各担体のクロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの全溶出画分中のモノマーおよび凝集体量の総和を１００とし、モノマーおよび凝集体の分離を図４から７に示した。その結果、負荷した抗体は溶出画分に回収され、凝集体のピークトップがモノマーのピークトップより僅かにずれ、緩やかな分離が確認された。

（比較例２）
プロテインＡ担体を用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体として、ＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）をＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、以下のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

プロテインＡクロマトグラフィー条件
カラム：ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ、２．４ｍＬ容（Ｏｍｎｉｆｉｔ社製）
流速：０．４ｍＬ／分（滞留時間：６分）、ただし、ＣＩＰ以降は、０．８ｍＬ／分
ポリクローナル抗体（ＩｇＧ）：ガンマグロブリン・ニチヤク（日本製薬）
負荷液：２．５ｍｇ－ＩｇＧ／ｍＬ（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）
平衡化（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
負荷（１０ｍｇ、３０ｍｇまたは４０ｍｇ）
洗浄（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
洗浄２（４カラム体積）：１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ、ｐＨ７
溶出グラジエント（４０カラム体積）： Ａ→Ｂリニアグラジエント
Ａ液：１ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
Ｂ液：２５０ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
再生（４カラム体積）：５０ｍＭクエン酸、２５０ｍＭ　塩化ナトリウム、ｐＨ３．７
ＣＩＰ（４カラム体積）：０．１Ｍ水酸化ナトリウム、１Ｍ塩化ナトリウム
中和・再平衡化（４カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４

　各クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図８から１０に示した。その結果、負荷した抗体は溶出画分に回収されたが、凝集体のピークトップがモノマーピークと共に初期に溶出し、何れの負荷量でも凝集体の分離は確認できなかった。なお、当該プロテインＡ担体の結合容量（１０％ＤＢＣ）は、約５０．３ｍｇ／ｍＬ程度であった。

（比較例３）
プロテインＡ担体を充填したカラムとスルホプロピル基をリガンドとする陽イオン交換担体（ＳＰ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ）を充填したカラムとを連結した一体型カラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体としてＳＰ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア）をそれぞれＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２本のカラムをプロテインＡ担体を充填したカラム、陽イオン交換担体を充填したカラムの順で連結し、１体のカラムとしてクロマトグラフィー操作を実施した。２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、以下のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

連結カラムクロマトグラフィー条件
カラム：ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ、２．４ｍＬ容（Ｏｍｎｉｆｉｔ社製）の連結体
流速：０．４ｍＬ／分（滞留時間：６分）、ただし、ＣＩＰ以降は、０．８ｍＬ／分
ポリクローナル抗体（ＩｇＧ）：ガンマグロブリン・ニチヤク（日本製薬）
負荷液：２．５ｍｇ－ＩｇＧ／ｍＬ（ＰＢＳ、ｐＨ７．４；１０ｍＭ　リン酸、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ等）
平衡化（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
負荷（４０ｍｇ）
洗浄（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
洗浄２（４カラム体積）：１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ、ｐＨ７
溶出グラジエント（４０カラム体積）： Ａ→Ｂリニアグラジエント
Ａ液：１ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
Ｂ液：２５０ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
再生（４カラム体積）：５０ｍＭクエン酸、２５０ｍＭ　塩化ナトリウム、ｐＨ３．７
ＣＩＰ（４カラム体積）：０．１Ｍ水酸化ナトリウム、１Ｍ塩化ナトリウム
中和・再平衡化（４カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１１に示した。この時、比較例２の４０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、比較例３で再生画分までに回収できたモノマーは２１．０％であり、また、モノマー含量は９４．１％であった。ＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは２２．９％であり、スルホプロピル基をリガンドとする陽イオン交換担体を充填したカラムをプロテインＡ担体を充填したカラムに連結して使用した場合、イオン強度溶出可能なモノマー回収率が悪かった。

（参考例１）
プロテインＡ担体を充填したカラムとｐＫａが４．０未満のカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ａ（ＣＭ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ）を充填したカラムとを連結した一体型カラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体ＡとしてＣＭ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア）をそれぞれＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２本のカラムをプロテインＡ担体を充填したカラム、陽イオン交換担体Ａを充填したカラムの順で連結し、１体のカラムとしてクロマトグラフィー操作を実施した。２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、比較例３のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

連結カラムクロマトグラフィー条件
カラム：ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ、２．４ｍＬ容（Ｏｍｎｉｆｉｔ社製）の連結体
流速：０．４ｍＬ／分（滞留時間：６分）、ただし、ＣＩＰ以降は、０．８ｍＬ／分
ポリクローナル抗体（ＩｇＧ）：ガンマグロブリン・ニチヤク（日本製薬）
負荷液：２．５ｍｇ－ＩｇＧ／ｍＬ（ＰＢＳ、ｐＨ７．４；１０ｍＭ　リン酸、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ等）
平衡化（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
負荷（４０ｍｇ）
洗浄（５カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
洗浄２（４カラム体積）：１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ、ｐＨ７
溶出グラジエント（４０カラム体積）： Ａ→Ｂリニアグラジエント
Ａ液：１ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
Ｂ液：２５０ｍＭクエン酸、ｐＨ３．７
再生（４カラム体積）：５０ｍＭクエン酸、２５０ｍＭ　塩化ナトリウム、ｐＨ３．７
ＣＩＰ（４カラム体積）：０．１Ｍ水酸化ナトリウム、１Ｍ塩化ナトリウム
中和・再平衡化（４カラム体積）：ＰＢＳ、ｐＨ７．４

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１２に示した。この時、比較例２の４０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、参考例１で再生画分までに回収できたモノマーは２１．２％であり、また、モノマー含量は９９．０％であった。ＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは７３．７％であり、モノマー含量は８３．３％であった。ｐＫａが４.０未満のカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ａを充填したカラムをプロテインＡ担体を充填したカラムに連結して使用した場合、イオン強度溶出可能なモノマー回収率が悪かった。

（実施例１）
プロテインＡ担体を充填したカラムとカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ｂ（ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ　ＣＭ－６５０Ｍ）を充填したカラムとを連結した一体型カラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体ＢとしてＴＯＹＯＰＥＡＲＬ　ＣＭ－６５０Ｍ（東ソー）をそれぞれＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２本のカラムをプロテインＡ担体を充填したカラム、陽イオン交換担体Ｂを充填したカラムの順で連結し、１体のカラムとしてクロマトグラフィー操作を実施した。２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、比較例３のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１３に示した。この時、同一負荷量の比較例２の４０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、実施例１で再生画分までに回収できたモノマーは９１．６％であり、また、モノマー含量は９６．７％であった。
　表２の各連結カラムの評価結果について、再生画分までのモノマー回収率、再生画分までの混合液中のモノマー含量、モノマー回収率８０％までの溶出液混合液中のモノマー含量を比較例２と比較して示した。比較例２の再生画分までのＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは９９．９％であり、モノマー含量は９３．５％であった。モノマー回収率が８０％の時点で比較しても、比較例２のモノマー含量が９３．４％であるのに対し、実施例１のモノマー含量は９７．１％であり、モノマー含量が向上した。

（実施例２）
プロテインＡ担体を充填したカラムとカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ｃ（Ｆｒａｃｔｏｇｅｌ　ＣＯＯ（Ｍ））を充填したカラムとを連結した一体型カラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体ＣとしてＦｒａｃｔｏｇｅｌ　ＣＯＯ（Ｍ）（メルク）をそれぞれＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２本のカラムをプロテインＡ担体を充填したカラム、陽イオン交換担体Ｃを充填したカラムの順で連結し、１体のカラムとしてクロマトグラフィー操作を実施した。２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、比較例３のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１４に示した。この時、同一負荷量の比較例２の４０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、実施例２で再生画分までに回収できたモノマーは８６．７％であり、また、モノマー含量は９９．２％であった。
　表２の各連結カラムの評価結果について、再生画分までのモノマー回収率、再生画分までの混合液中のモノマー含量、モノマー回収率８０％までの溶出液混合液中のモノマー含量を比較例２と比較して示した。比較例２の再生画分までのＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは９９．９％であり、モノマー含量は９３．５％であった。モノマー回収率が８０％の時点で比較しても、比較例２のモノマー含量が９３．４％であるのに対し、実施例２のモノマー含量は９９．２％であり、モノマー含量が向上した。

（実施例３）
プロテインＡ担体を充填したカラムとカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ｄ（Ｇｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨ）を充填したカラムとを連結したカラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体ＤとしてＧｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨをそれぞれＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２本のカラムをプロテインＡ担体を充填したカラム、陽イオン交換担体Ｄを充填したカラムの順で連結し、１体のカラムとしてクロマトグラフィー操作を実施した。２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、比較例３のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１５に示した。この時、同一負荷量の比較例２の４０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、実施例３で再生画分までに回収できたモノマーは１０２．０％であり、また、モノマー含量は９６．７％であった。回収率が１００％を超えたのは、ゲルろ過時のインジェクション量の誤差と考えられたが、図１５のモノマーと凝集体の分離挙動から比較例とのモノマー含量の比較には影響しないと判断できた。
　表２の各連結カラムの評価結果について、再生画分までのモノマー回収率、再生画分までの混合液中のモノマー含量、モノマー回収率８０％までの溶出液混合液中のモノマー含量を比較例２と比較して示した。比較例２の再生画分までのＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは９９．９％であり、モノマー含量は９３．５％であった。モノマー回収率が８０％の時点で比較しても、比較例２のモノマー含量が９３．４％であるのに対し、実施例３のモノマー含量は９９．１％であり、モノマー含量が向上した。

（実施例４）
プロテインＡ担体とカルボキシル基をリガンドとする陽イオン交換担体Ｄ（Ｇｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨ）とを１つのカラム内に混合充填した混合型カラムを用いた抗体の分離
　プロテインＡ担体としてＭａｂＳｅｌｅｃｔ　ＳｕＲｅ（ＧＥヘルスケア）を、陽イオン交換担体ＤとしてＧｌｙｏｘａｌ－ＣＯＯＨをそれぞれ４：１（体積比）に混合してＯｍｎｉｆｉｔ社製のカラム（ＩＤ　０．６６ｃｍ　ｘ　Ｈｅｉｇｈｔ　７ｃｍ）に充填し、２．５ｍｇ／ｍＬに調製したヒトポリクローナル抗体（ガンマグロブリン・ニチヤク：日本製薬）を負荷液として、比較例２のクロマトグラフィー条件にて分離を行った。抗体負荷量は、１０ｍｇとした。なお、１カラム体積は、１本分の２．４ｍＬとして操作した。溶出液には、最終濃度として５０－１００ｍＭのアルギニンを添加し、ｐＨ５～６としてゲルろ過クロマトグラフィーにてモノマー含量の測定を行った。また、そのエリア値分析から各分画のモノマーおよび凝集体量を求めた。

　クロマトグラフィーの結果として、ＣＩＰ画分までの各分画のモノマーおよび凝集体のエリア値を図１６に示した。この時、同一負荷量の比較例２の１０ｍｇ抗体負荷試験の溶出画分中のモノマー量を１００とした場合、実施例４で再生画分までに回収できたモノマーは１０３．０％であり、また、モノマー含量は９７．３％であった。回収率が１００％を超えたのは、ゲルろ過時のインジェクション量の誤差と考えられたが、図１６のモノマーと凝集体の分離挙動から比較例とのモノマー含量の比較には影響しないと判断できた。
　表３の各連結カラムの評価結果について、再生画分までのモノマー回収率、再生画分までの混合液中のモノマー含量、モノマー回収率８０％までの溶出液混合液中のモノマー含量を比較例２と比較して示した。比較例２の再生画分までのＣＩＰ画分までに回収できたモノマーは９９．９％であり、モノマー含量は９６．５％であった。モノマー回収率が８０％の時点で比較しても、比較例２のモノマー含量が９７．１％であるのに対し、実施例４のモノマー含量は９９．１％であり、モノマー含量が向上した。

　以上、本発明（第一態様）により、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着および溶出を行う抗体等の精製方法において、８０％以上の高い回収率でまたは８０％以上の回収率でなくとも、モノマー（単量体）含量を向上することのできる新規分離モードおよび使用方法が提供され、抗体医薬品の製造プロセスの生産性向上と高純度化に寄与できる。

　加えて、本発明（第二態様）により、ｐＫａが４.０以上の陽イオン交換担体をアフィニティクロマトグラフィー溶出に用いられるｐＨ４．０以下の酸性溶液中でイオン強度依存的溶出を行った場合、抗体回収率として８０％以上で、モノマー含量を向上させることができた。また、本発明（第二態様）によれば、プロテインＡ担体の溶出液を一旦回収する必要はなく、アフィニティ担体に陽イオン交換担体を連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着、および溶出を行うことができる。
　すなわち、本発明（第二態様）の使用方法を用いることで、アフィニティ担体から標的分子の溶出を行う酸性溶出ｐＨで陽イオン交換担体からの抗体等の分離を行うこと、または、アフィニティ担体と陽イオン交換担体を連結または混合カラムとし、一体として抗体等の吸着、および溶出を行うことにより、抗体医薬品の製造プロセスの生産性向上と高純度化に寄与できる。

Claims (37)

1. 　抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いて連結または混合カラムとし、一体として抗体または抗体由来物質の吸着および溶出を行うことを特徴とする抗体または抗体由来物質の精製方法。
2. 　抗体または抗体由来物質に対するアフィニティリガンドを有する担体１と陽イオン交換基を有する担体２を用いた抗体または抗体由来物質の精製方法であり、
   　前記担体１を充填したカラムの下流側に前記担体２を充填したカラムを直結した一体型カラムまたは前記担体１と担体２の両方の混合物が充填された混合型カラムに、抗体または抗体由来物質含有液を通液して抗体または抗体由来物質をカラムに負荷し、
   　ついで溶出液を通液することで負荷した抗体または抗体由来物質を溶出させることを特徴とする抗体または抗体由来物質の精製方法。
3. 　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のグラジエントで行う請求項１または２に記載の精製方法。
4. 　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のステップワイズで行う請求項１または２に記載の精製方法。
5. 　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する請求項２～４のいずれかに記載の精製方法。
6. 　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液と同じまたはより高いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液し、次いで平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する請求項２～４のいずれかに記載の精製方法。
7. 　前記アフィニティリガンドを有する担体１がプロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬまたはそれらの類縁物質をリガンドとする担体である請求項１～６のいずれかに記載の精製方法。
8. 　前記アフィニティリガンドを有する担体１がプロテインＡまたはそれらの類縁物質をリガンドとする担体である請求項１～７のいずれかに記載の精製方法。
9. 　前記抗体または抗体由来物質が、免疫グロブリンＧ、免疫グロブリンＧ誘導体、または、Ｆｃ含有分子である請求項１～８のいずれかに記載の精製方法。
10. 　前記抗体または抗体由来物質が、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙ、または抗原結合部位含有分子である請求項１～９のいずれかに記載の精製方法。
11. 　前記陽イオン交換基を有する担体２が、カルボキシル基をリガンドとする担体である請求項１～１０のいずれかに記載の精製方法。
12. 　前記カルボキシル基が酸性アミノ酸に由来する請求項１１に記載の精製方法。
13. 　前記抗体または抗体由来物質の溶出ｐＨが５．０未満である請求項１～１２のいずれかに記載の精製方法。
14. 　前記担体１のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上１００ｍｇ／ｍＬ以下である請求項１～１３のいずれかに記載の精製方法。
15. 　前記担体２のイオン交換容量が０．００１ｍｍｏｌ／ｍＬ以上０．５ｍｍｏｌ／ｍＬ以下である請求項１～１４のいずれかに記載の精製方法。
16. 　前記担体１の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下であり、前記担体２の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下である請求項１～１５のいずれかに記載の精製方法。
17. 　ｐＫａが４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する請求項１～１６のいずれかに記載の精製方法。
18. 　前記カルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上２００ｍｇ／ｍＬ以下である請求項１～１７のいずれかに記載の精製方法。
19. 　前記陽イオン交換基を有する担体２を充填したカラムの前にアフィニティリガンドを有する担体１を充填したカラムを連結して一体型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体または抗体由来物質含有溶液を前記一体型カラムに負荷した後に、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する請求項２～１８のいずれかに記載の精製方法。
20. 　前記一体型カラムを構成する担体１と担体２の割合が、体積基準で、１／２０以上２０／１以下である請求項２～１９のいずれかに記載の精製方法。
21. 　前記陽イオン交換基を有する担体２をアフィニティリガンドを有する担体１と共に混合状態で有する混合型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体又は抗体由来物質含有溶液を負荷してｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する請求項２～１８のいずれかに記載の精製方法。
22. 　前記混合型カラムを構成する担体１と担体２の割合が、体積基準で、１／２０以上２０／１以下である請求項２～１８、２１のいずれかに記載の精製方法。
23. 　吸着条件下における担体１のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣに対する、担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが、１／１０倍以上１０倍以下である請求項１～２２のいずれかに記載の精製方法。
24. 　請求項１～２３のいずれかに記載の精製方法で精製された抗体または抗体由来物質。
25. 　ｐＫａが４．０以上であるカルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２に抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷した後、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する陽イオン交換基を有する担体の使用方法。
26. 　前記カルボキシル基含有リガンドが酸性アミノ酸に由来する請求項２５に記載の使用方法。
27. 　前記カルボキシル基含有リガンドを有する陽イオン交換基を有する担体２のＩｇＧに対する滞留時間６分での１０％ＤＢＣが１ｍｇ／ｍＬ以上２００ｍｇ／ｍＬ以下である請求項２５または２６に記載の使用方法。
28. 　前記陽イオン交換基を有する担体２のイオン交換容量が０．００１ｍｍｏｌ／ｍＬ以上０．５ｍｍｏｌ／ｍＬ以下である請求項２５～２７のいずれかに記載の使用方法。
29. 　前記陽イオン交換基を有する担体２の体積平均粒径が１μｍ以上１０００μｍ以下である請求項２５～２８のいずれかに記載の使用方法。
30. 　前記陽イオン交換基を有する担体２を充填したカラムの前にアフィニティリガンドを有する担体１を充填したカラムを連結して一体型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体または抗体由来物質含有溶液を前記一体型カラムに負荷した後に、ｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する請求項２５～２９のいずれかに記載の使用方法。
31. 　前記陽イオン交換基を有する担体２をアフィニティリガンドを有する担体１と共に混合状態で有する混合型カラムを作製し、中性ｐＨ条件で抗体又は抗体由来物質含有溶液を負荷してｐＨ４．０以下の酸性バッファーを使用して抗体または抗体由来物質を溶出する請求項２５～２９のいずれかに記載の使用方法。
32. 　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低イオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する請求項３０または３１に記載の使用方法。
33. 　前記一体型カラムまたは混合型カラムを平衡化溶液で平衡化し、前記抗体または抗体由来物質含有溶液を負荷し、この負荷後溶出開始前に平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液と同じまたはより高いイオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液し、次いで平衡化溶液および抗体または抗体由来物質含有溶液よりも低イオン強度の、かつ溶出液よりも高いｐＨの洗浄液を通液する請求項３０または３１に記載の使用方法。
34. 　前記抗体または抗体由来物質が免疫グロブリンＧ、免疫グロブリンＧ誘導体、Ｆｃ含有分子、またはＦａｂ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙもしくは抗原結合部位含有分子である請求項２５～３３のいずれかに記載の使用方法。
35. 　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のグラジエントで行う請求項２５～３４のいずれかに記載の使用方法。
36. 　前記抗体または抗体由来物質の溶出を酸性ｐＨでかつイオン強度のステップワイズで行う請求項２５～３４のいずれかに記載の使用方法。
37. 　請求項２５～３６のいずれかに記載の使用方法で精製された抗体または抗体由来物質。

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