WO2013035799A1 - ペリオスチンの特定領域に結合する抗体及びこれを用いたペリオスチンの測定方法 - Google Patents

ペリオスチンの特定領域に結合する抗体及びこれを用いたペリオスチンの測定方法 Download PDF

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出原　賢治
昭一郎 太田
和彦 有馬
裕士 白石
鈴木　章一
星野　友昭
東　義則
純也 小野
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株式会社シノテスト
国立大学法人佐賀大学
学校法人久留米大学
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    • G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6893—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids related to diseases not provided for elsewhere
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    • G01N2800/00—Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/12—Pulmonary diseases

Definitions

  • the present invention relates to an antibody that binds to a specific region of periostin (also referred to as osteoblast-specific factor 2 or OSF2) that can be a marker for allergic diseases and other diseases, a method for measuring periostin contained in a sample using this antibody, and a measuring reagent And a method for improving accuracy, and a method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia.
  • periostin also referred to as osteoblast-specific factor 2 or OSF2
  • the present invention is useful in the field of life science such as clinical examination, clinical pathology, immunology and medicine, and in the field of chemistry such as analytical chemistry.
  • Periostin is an extracellular matrix protein, and is composed of an EMI region, an R1 region, an R2 region, an R3 region, an R4 region, and a C-terminal region in this order from the N-terminal side to the C-terminal side. Idemitsu found that the measurement of the expression level of the periostin gene was useful as a test method for allergic diseases, and completed the invention of the test method for allergic diseases (Patent Document 1 and Non-Patent Documents). 1). In addition, Izuhara has found that measurement of the expression level of the periostin gene is also useful as a test method for idiopathic interstitial pneumonia (see Patent Document 2).
  • a polyclonal antibody, a monoclonal antibody against OSF2 (periostin), a diagnostic method using these antibodies, etc. are disclosed (see Patent Document 3), and a novel osteoblast-specific transcription factor named Osf2 / Cbfa1
  • An immunoassay method using an anti-OSF2 (periostin) antibody is disclosed (see Patent Document 4), a purified antibody that specifically binds to human periostin, and breast cancer bone using this antibody
  • a diagnostic assay method for examining metastasis and the like is disclosed (see Patent Document 5), and an antibody against periostin having anti-cell adhesion activity and a method for quantifying periostin using this antibody are disclosed (see Patent Document 6). .
  • an object of the present invention is to provide a measurement method and a measurement reagent with improved accuracy in measurement using an antigen-antibody reaction of periostin contained in a sample, and to improve measurement accuracy. It is to provide a method and a method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia with improved accuracy.
  • the inventors of the present invention have studied the measurement of periostin contained in a sample, and as a result, have found that the above problem can be solved by detecting a specific region of periostin, and have completed the present invention.
  • this invention consists of the following invention.
  • the antibody according to (1) above which is an antibody that binds to a degradation product of periostin.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 16, and the amino acid sequence of the light chain variable region comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 18
  • the antibody according to 4 comprises (6) Hybridoma SS16A strain with an accession number of NITE BP-1281, Hybridoma SS18A strain with an accession number of NITE BP-1282, Hybridoma SS19C strain with an accession number of NITE BP-1283, and an accession number of NITE BP-1068 Any one selected from the group consisting of a hybridoma SS19D strain, a hybridoma SS20A strain whose accession number is NITE BP-1284, a hybridoma SS25A strain whose accession number is NITE BP-1285, and a hybridoma SS27A strain whose accession number is NITE BP-1286 A monoclonal antibody produced by the hybridoma.
  • a method for measuring periostin contained in a sample which comprises detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin.
  • periostin is a periostin degradation product.
  • 10 The method according to any one of (7) to (9) above, wherein periostin is not a multimer.
  • periostin In measuring the amount or concentration of periostin contained in a sample, at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin is detected. How to improve the accuracy of (16) The method according to (15) above, wherein the antibody according to any one of (1) to (6) above is used. (17) The method according to (15) or (16) above, wherein periostin is a periostin degradation product. (18) The method according to any one of (15) to (17) above, wherein periostin is not a multimer. (19) A method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, comprising the following steps.
  • an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof of the present invention (hereinafter, also referred to as “anti-periostin specific region antibody”).
  • This antibody is an antibody that can be used to detect at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin.
  • This antibody is an antibody that can bind to a degradation product of periostin.
  • the antibody that does not bind to a periostin multimer is at least selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof. It is an antibody that has the specificity that it can bind to one region and does not bind to a periostin multimer. This antibody is an antibody that can bind to a degradation product of periostin and does not bind to a multimer of periostin.
  • the method for measuring periostin, the reagent for measuring periostin, the method for improving the accuracy of measuring periostin, and the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia in the measurement of periostin contained in a sample By detecting at least one region selected from the group consisting of region, R1 region, R2 region and R3 region, the sensitivity of the measurement [positive rate in affected group in the measurement (true positive rate)], or Specificity [negative rate in the unaffected group in the measurement (true negative rate; ie, 1-false positive rate)] and the like can be improved, and the accuracy of the measurement can be improved.
  • the periostin measurement method, the periostin measurement reagent, the periostin measurement accuracy improvement method, and the pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia testing method of the present invention can obtain accurate periostin measurement values.
  • Anti-periostin specific region antibody The antibody in the present invention is an antibody (anti-periostin specific region antibody) that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof.
  • the anti-periostin specific region antibody of the present invention can improve the accuracy of measurement by using it for the measurement utilizing the antigen-antibody reaction of periostin contained in a sample.
  • the anti-periostin specific region antibody is an antibody that can bind to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product. There is no particular limitation.
  • anti-periostin specific region antibody for example, a monoclonal antibody, a polyclonal antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof,
  • examples include antisera, antibody fragments (such as Fab and F (ab ′) 2 ), and single chain antibodies (scFv).
  • This anti-periostin specific region antibody is an antibody (such as a chimeric antibody, a humanized antibody, or a fully humanized antibody) that has been changed to an amino acid sequence of an animal species different from the animal that immunizes the immunogen by genetic recombination technology or the like. There may be.
  • the anti-periostin specific region antibody is preferably a monoclonal antibody.
  • two or more anti-periostin specific region antibodies may be used.
  • the anti-periostin specific region antibody of the present invention is an antibody that binds to a degradation product of periostin (also referred to as “periostin degradation product”).
  • periostin degradation product means a polypeptide in which the C-terminal region having at least the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 14 is deleted from periostin having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2.
  • the periostin degradation product of the present invention lacks at least the C-terminal region having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 14 from periostin having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, and SEQ ID NO: 12
  • the periostin degradation product of the present invention lacks at least the C-terminal region having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 14 from periostin having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, and SEQ ID NO: 12
  • a polypeptide lacking all of the R4 region having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 and a portion of the R3 region having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 are also included.
  • the periostin degradation product of the present invention is a polypeptide that the present inventors have found for the first time.
  • the presence of the periostin degradation product can be clearly confirmed, for example, by detecting a polypeptide contained in a sample derived from a living body by an immunological technique using the antibody of the present invention (FIGS. 5 and 9). , FIG. 26 etc.).
  • Examples of periostin degradation products include, but are not limited to, those having a molecular weight of about 40,000 Da (about 40 kDa).
  • the periostin degradation product is preferably included in a sample derived from a living body.
  • the anti-periostin specific region antibody of the present invention binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof, and is a dimer or trimer of periostin. It is preferably an antibody that does not bind to a multimer of periostin, tetramer, or higher. That is, the anti-periostin specific region antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or its degradation product in the present invention and does not bind to a periostin multimer. Is preferable because the degree of improvement in measurement accuracy is higher.
  • immunogen for producing the anti-periostin specific region antibody in the present invention will be described below.
  • the immunogen for producing the anti-periostin specific region antibody in the present invention all or part of periostin can be used. That is, all or part of periostin such as periostin derived from human or the like or periostin obtained by gene recombination can be used.
  • the immunogen for producing this anti-periostin specific region antibody is preferably all or part of the EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region of periostin.
  • the immunogen for producing an anti-periostin specific region antibody that does not bind to the periostin multimer is all or part of the periostin EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region. Is preferred.
  • the anti-periostin specific region antibody in the present invention can be obtained.
  • the immunogen for producing this anti-periostin specific region antibody is 1 to several (usually 1 to 8, preferably 1 to 6) amino acids in the whole or part of the amino acid sequence of periostin. It may be a peptide or protein containing an amino acid sequence obtained by performing deletion, substitution, insertion, addition or modification of residues.
  • the minimum unit of the amino acid sequence of the immunogen of the anti-periostin specific region antibody in the present invention is 1 in all or part of the amino acid sequence of periostin, or all or part of the amino acid sequence of these amino acid sequences.
  • the tripeptide consisting of an amino acid sequence consisting of these three consecutive amino acid residues, or the addition of another amino acid or peptide to this, etc. can be identified as anti-periostin in the present invention. It can be considered as the smallest unit of region antibody immunogen.
  • the method for obtaining a peptide or protein containing all or part of the amino acid sequence of periostin is not particularly limited, and any method may be used, for example, obtaining by a known method. Can do.
  • periostin As a method for obtaining periostin, the following method (“G. Takayama et al., J. Allergy Clin. Immunol., 118, No. 1, pages 713 to 723, issued in 2006”) and the like can be mentioned.
  • periostin base sequence of polynucleotide: Accession Number D13666 of nucleic acid database GenBank (SEQ ID NO: 1); amino acid sequence: Accession Number BAA02837 (SEQ ID NO: 2) of nucleic acid database GenBank)
  • Periostin protein is expressed in S2 cells, which are insect cells, and then purified.
  • a transformant of S2 cells is prepared as follows.
  • a cDNA encoding the above-mentioned part of periostin is inserted into the pMT / Bip / V5-HisA plasmid (Invitrogen, Carlsbad, Calif., USA), and this is designated as pMT / Bip / periostin-V5-HisA.
  • PAcHygro Invitrogen, Carlsbad, Calif., USA
  • a transformant is selected with hygromycin to obtain a stable transformant.
  • periostin in which V5 epitope / His tag is bound is expressed at the carboxy terminus.
  • S2 recombinant periostin protein Purification of the S2 recombinant periostin protein is performed as follows. The expression of S2 recombinant periostin protein is induced by adding copper sulfate to the medium of periostin gene stable transformant S2 cells. As a result, the S2 recombinant periostin protein is expressed and secreted into the culture supernatant. The culture supernatant is dialyzed against phosphate buffered saline (PBS) and then mixed with nickel resin (Ni-NTA Agarose, Qiagen, Hilden, Germany) to bind S2 recombinant periostin protein to the resin.
  • PBS phosphate buffered saline
  • the resin is washed to remove impurities, and the S2 recombinant periostin protein is eluted with an imidazole-containing buffer.
  • the eluted S2 recombinant periostin protein is dialyzed against PBS or the like to obtain purified periostin protein.
  • Periostin can also be obtained by the following method. That is, periostin cDNA is incorporated into a GEX-KG vector (“KL. Guan et al., Anal. Biochem., 192, 262-267, published in 1991”) and transfected into E. coli BL21. This is cultured in an LB medium containing ampicillin, and periostin to which glutathione S-transferase (GST) has been added is purified from the cells by glutathione sepharose 4B (GE Healthcare, Little Chalfont, UK). To this, GST is cleaved with thrombin, and periostin without GST is obtained. This can be quantified by the Bradford method to obtain periostin whose amount (concentration) has been clarified.
  • GST glutathione S-transferase
  • periostin can also be obtained by the method described in “I. Takayama et al., J. Biochem., 146, 5, 713-723, 2009”.
  • amino acid sequence of periostin is represented by SEQ ID NO: 2
  • nucleotide sequence of the polynucleotide encoding the amino acid sequence is represented by SEQ ID NO: 1.
  • EMI region of periostin is described in, for example, “I. Kii et al., J. Biol. Chem., 285, No. 3, pages 2028-2039, 2010” or “T. Maruhashi et al., J. Biol. Chem., 285, No. 17, 13294-13303, published in 2010 ”and the like.
  • the amino acid sequence of the periostin EMI region is represented by SEQ ID NO: 4, and the nucleotide sequence of the polynucleotide encoding the amino acid sequence is represented by SEQ ID NO: 3.
  • the R1 region, R2 region or R3 region of periostin is obtained by the method described in “I. Takayama et al., J. Biochem, Vol. 146, No. 5, pages 713 to 723, published in 2009”, etc. be able to.
  • the amino acid sequences of the R1 region, R2 region, and R3 region of periostin are represented by SEQ ID NOs: 6, 8, and 10, respectively.
  • the nucleotide sequences of the polynucleotides that encode the amino acid sequences are represented by SEQ ID NOs: 5, 7, and 9, respectively.
  • amino acid sequences of the R4 region and C-terminal region of periostin are represented by SEQ ID NOs: 12 and 14, respectively, and the nucleotide sequences of the polynucleotides encoding the amino acid sequences are represented by SEQ ID NOs: 11 and 13, respectively.
  • the immunogen can be synthesized by a peptide synthesis method such as a liquid phase method and a solid phase method, and an automatic peptide synthesizer may also be used.
  • Chemistry IV Tokyo Kagaku Doujin, 1975, Izumiya et al.“ Peptide Synthesis Fundamentals and Experiments ”, Maruzen, 1985, edited by the Japanese Biochemical Society,“ Sequel Biochemistry Laboratory 2 Under Protein Chemistry ”, Tokyo Kagaku Doujin, 1987 It can be synthesized according to the method described in the year etc., and it is also easy to produce a mutant in which the amino acid sequence is deleted, substituted, inserted or added.
  • modifications such as introduction of unnatural amino acids, chemical modification of each amino acid residue, or cyclization of the interior of the molecule by introduction of cysteine residues to stabilize the structure may be performed.
  • the immunogen may be prepared from DNA or RNA having a corresponding nucleobase sequence by using genetic engineering technology, edited by the Japanese Biochemical Society, “Second Life Chemistry Experiment Course 1 Gene Research Method I”, Tokyo Chemical. Doujin, 1986, Japan Biochemical Society, “Sequential Biochemistry Experiment Course 1 Gene Research Method II”, Tokyo Chemical Doujin, 1986, Japan Biochemical Society, “Sequence Biochemistry Experiment Course 1 Gene Research Method III”, Tokyo Chemistry Doujin, What is necessary is just to prepare with reference to 1987 grade
  • the immunogen when the immunogen is a low-molecular substance, it is common to immunize an animal or the like with a carrier (carrier) bound to the immunogen, but a peptide having 5 amino acids is used as an immunogen. Since there is also a report (Kiyama et al., “Abstract 3 of the 112th Annual Meeting of the Japanese Pharmaceutical Society”, page 122, published in 1992) that a specific antibody was produced, it is not essential to use a carrier.
  • the carriers include mussel hemocyanin (KLH), bovine serum albumin (BSA), chicken serum albumin, poly-L-lysine, polyalanyl lysine, Known carriers such as dipalmityl lysine, tetanus toxoid or polysaccharide can be used.
  • the immunogen and carrier binding methods include glutaraldehyde method, 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide method, maleimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimide ester method, bisdiazotized benzidine method or N-succimidyl- Known coupling methods such as the 3- (2-pyridyldithio) propionic acid method can be used.
  • suck to carriers such as a nitrocellulose particle
  • anti-periostin specific region antibody which is polyclonal antibody
  • the anti-periostin specific region antibody which is a polyclonal antibody can be prepared by the following operation.
  • the immunogen described above can be used as an immunogen for production of the anti-periostin specific region antibody which is this polyclonal antibody.
  • the immunogen or the conjugate of the immunogen and a carrier can be used for mammals (mouse, guinea pig, hamster, rabbit, rat, sheep, goat, cow, horse, donkey, camel, etc.) or birds ( Immunize chicken, duck or ostrich).
  • a gene related to periostin production in the body is inactivated or deleted, that is, related to periostin production. More preferred are animals in which the gene has been knocked out.
  • periostin produced in the animal's body binds to the anti-periostin specific region antibody produced in the body by immunization with an immunogen such as periostin, so that the antibody activity of the anti-periostin specific region antibody is increased.
  • an immunogen such as periostin
  • mice in which a gene involved in periostin production is inactivated or deleted include, for example, knockout mice for periostin (“H. Rios et al., Molecular and Cellular Biology, Vol. 25, No. 24, 11131-11144, 2005”. Year issue ").
  • the immunization amount of the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier is determined by the immunogen, the carrier, the type of the immunized animal, the immunization injection site, and the like.
  • 0.1 ⁇ g to 5 mg of the immunogen or a combination of the immunogen and a carrier is injected once per animal.
  • the immunogen or the combined immunogen and carrier is preferably added and mixed with an adjuvant for immunization injection.
  • an adjuvant known ones such as Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant, aluminum hydroxide adjuvant, chemical synthesis adjuvant or pertussis adjuvant can be used. Immunization may be performed at a site such as subcutaneous, intravenous, intraperitoneal or back.
  • booster injections of the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier are given at sites such as subcutaneous, intravenous, intraperitoneal or back at intervals of 1 to 2 weeks.
  • the number of booster injections is generally 2 to 6 times.
  • the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier is preferably boosted by adding an adjuvant and mixing.
  • the antibody titer in the serum of the immunized animal is repeatedly measured by ELISA or the like. When the antibody titer reaches a plateau, whole blood is collected, and the serum is separated to obtain an antiserum containing the antibody.
  • the antiserum is subjected to antibody purification by a salting-out method using ammonium sulfate, sodium sulfate or the like, ion exchange chromatography, gel filtration method or affinity chromatography, or a combination of these methods to obtain a polyclonal antibody.
  • the polyclonal antibody obtained here is a polyclonal antibody that can bind to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product (polyclonal antibody).
  • the anti-periostin specific region antibody which is a polyclonal antibody is brought into the solid phase via a ligand such as this column (protein or peptide containing the periostin EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region amino acid sequence). Combined and collected.
  • a ligand such as this column (protein or peptide containing the periostin EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region amino acid sequence).
  • a polyclonal antibody that does not bind to any of the periostin EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region is a ligand such as this column (periostin EMI region, R1 region, R2 region, or R3 region amino acid sequence).
  • This column and the like are passed through without being bound to the protein and / or peptide containing.
  • Anti-periostin specific region antibody which is a polyclonal antibody bound to ligand (protein or peptide containing amino acid sequence of periostin EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region) such as salt concentration or pH
  • the anti-periostin specific region antibody which is a polyclonal antibody can be obtained by separating the ligand from the ligand by collecting and collecting the ligand.
  • the obtained anti-periostin specific region antibody, which is a polyclonal antibody is an antibody that can bind to a degradation product of periostin.
  • EMI region when “all or part of the EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region of periostin” is used as an immunogen, it binds to any of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin. No treatment for separating polyclonal antibodies is required.
  • a polyclonal antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof and does not bind to a periostin multimer polyclonal antibody, Anti-periostin specific region antibody that does not bind to multimers of periostin
  • the anti-periostin specific region antibody that is a polyclonal antibody obtained here is a polyclonal antibody, an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and a polyclonal antibody, a periostin multimer.
  • Anti-periostin specific region antibody ".
  • the anti-periostin specific region antibody which is the obtained polyclonal antibody, is passed through and contacted with an affinity chromatography column or the like in which a periostin multimer is immobilized on a solid phase as a ligand.
  • an anti-periostin specific region antibody that binds to a periostin multimer that is a polyclonal antibody binds to a solid phase via a ligand (periostin multimer) such as this column.
  • a polyclonal anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer passes through this column without binding to a ligand (periostin multimer) such as this column.
  • a ligand periostin multimer
  • an anti-periostin specific region antibody that is a polyclonal antibody and does not bind to a periostin multimer can be obtained.
  • an anti-periostin specific region antibody that binds to a periostin multimer that is a polyclonal antibody can be removed.
  • an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer that is a polyclonal antibody can be obtained from the residue.
  • the obtained “anti-periostin specific region antibody that is a polyclonal antibody that does not bind to a periostin multimer” is an antibody that can bind to a degradation product of periostin and does not bind to a periostin multimer.
  • a carrier is added to the obtained polyclonal antibody solution to remove aggregates generated, or the carrier is immobilized on an insolubilized solid phase and removed by affinity chromatography. Can do.
  • Anti-periostin specific region antibody which is a monoclonal antibody Monoclonal antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product,
  • the anti-periostin specific region antibody which is a monoclonal antibody can be prepared by the following operation.
  • This monoclonal antibody can be used to produce antibodies such as hybridomas by the cell fusion method of Keller et al. (G. Koehler et al., Nature, Vol. 256, pages 495-497, issued in 1975) or tumorigenic cells by viruses such as Epstan-Barr virus. It can be obtained by cells.
  • preparation of a monoclonal antibody by a cell fusion method can be performed by the following operation.
  • the immunogen or the combined immunogen and carrier is used for mammals (mouse, hamster, rat, rabbit, etc., for example, inbred mouse BALB / c) or birds (chicken, etc.) Immunize).
  • a gene related to periostin production in the body is inactivated or deleted, that is, related to periostin production. More preferred are animals in which the gene has been knocked out.
  • periostin produced in the animal's body binds to the anti-periostin specific region antibody produced in the body by immunization with an immunogen such as periostin, so that the antibody activity of the anti-periostin specific region antibody is increased.
  • an immunogen such as periostin
  • mice in which the gene involved in periostin production is inactivated or deleted include, for example, knockout mice for periostin (“H. Rios et al., Mol. Cell. Biol., 25, 24, 11131-11144). , 2005 ”)).
  • the immunity of the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier is appropriately determined according to the type of immunized animal, the site of immunization, etc.
  • 0.1 ⁇ g to 5 mg of the immunogen or a combination of the immunogen and a carrier is immunized at a time.
  • the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier is preferably immunized by adding an adjuvant and mixing.
  • adjuvants such as Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant, aluminum hydroxide adjuvant, chemical synthesis adjuvant, and pertussis adjuvant can be used as the adjuvant. Immunization may be carried out at sites such as subcutaneous, intravenous, intraperitoneal, footpad or back.
  • booster injections of the immunogen or the conjugate of the immunogen and the carrier are given to sites such as subcutaneous, intravenous, intraperitoneal, footpad or back at intervals of 1 to 2 weeks. .
  • the number of booster injections is generally 2 to 6 times.
  • the immunogen or the combined immunogen and carrier is preferably boosted by adding an adjuvant and mixing.
  • the antibody titer in the serum of the immunized animal is repeatedly measured by ELISA, etc.
  • the immunogen or the combined immunogen and carrier A solution dissolved in physiological saline (0.9% sodium chloride aqueous solution) is injected intravenously or intraperitoneally to obtain final immunization.
  • Cell fusion can be performed using a fusion promoter such as polyethylene glycol (PEG) of various molecular weights, liposomes or Sendai virus (HVJ), or by electrofusion.
  • a fusion promoter such as polyethylene glycol (PEG) of various molecular weights, liposomes or Sendai virus (HVJ)
  • PEG polyethylene glycol
  • HVJ Sendai virus
  • fusion of cells having antibody-producing ability and myeloma cells by using a selection medium (HAT medium) containing hypoxanthine, aminopterin, and thymidine Only cells (hybridomas) can be selectively cultured and propagated.
  • the hybridoma culture supernatant thus obtained is used as the periostin EMI region, R1 region, R2 of human or other animal (preferably derived from human when used for measurement of human periostin).
  • the “EMI region, R1 region, R2 region of periostin or its degradation product” By measuring by immunoassay such as ELISA or Western blotting using a protein or peptide comprising the region and / or the R3 region, the “EMI region, R1 region, R2 region of periostin or its degradation product”
  • the production cell line of the anti-periostin specific region antibody which is a monoclonal antibody in the present invention can be isolated and obtained.
  • the monoclonal antibody-producing cell line can be cultured in an appropriate medium, and the antiperiostin specific region antibody that is a monoclonal antibody in the present invention can be obtained from the culture supernatant.
  • a low-concentration serum medium or the like may be used, and in this case, it is preferable in terms of easy purification of the antibody, and a medium such as DMEM medium, RPMI 1640 medium, or ASF medium 103 can be used.
  • this monoclonal antibody-producing cell line is a monoclonal antibody according to the present invention, which is injected into the abdominal cavity of a mammal that is compatible therewith and previously stimulated with pristane, etc. Anti-periostin specific region antibodies can also be obtained.
  • the anti-periostin specific region antibody which is a monoclonal antibody thus obtained, can be obtained by methods such as salting-out using ammonium sulfate, sodium sulfate, ion exchange chromatography, gel filtration, affinity chromatography, or the like.
  • region antibody which is a purified monoclonal antibody can be obtained by combining these methods.
  • region antibody which is the obtained monoclonal antibody is an antibody which can be couple
  • the culture supernatant of the obtained hybridoma is treated with a protein or peptide comprising the EMI region, R1 region, R2 region and / or R3 region of human or other animal periostin.
  • the hybridoma producing the anti-periostin specific region antibody which is a monoclonal antibody can be selected by using an immunoassay method such as ELISA or Western blotting, etc.
  • EMI region By measuring by an immunoassay such as ELISA or Western blot using a multimer, “at least selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product” Can bind to one region and not to periostin multimers Monoclonal antibodies can be selected hybridomas producing "(which is a monoclonal antibody, an anti-periostin specific region antibody that does not bind to multimers of periostin).
  • the obtained “antiperiostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer that is a monoclonal antibody” is an antibody that can bind to a degradation product of periostin and does not bind to a periostin multimer.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody includes the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 16, and the amino acid sequence of the light chain variable region is represented by SEQ ID NO: 18.
  • the monoclonal antibody of the present invention includes, for example, a hybridoma SS16A strain having a deposit number of NITE BP-1281, a hybridoma SS18A strain having a deposit number of NITE BP-1282, and a deposit number of NITE BP-1283.
  • hybridoma SS19C strain with the accession number NITE BP-1068, the hybridoma SS20A strain with the accession number NITE BP-1284, the hybridoma SS25A strain with the accession number NITE BP-1285, and the accession number NITE BP Examples include, but are not limited to, monoclonal antibodies produced by any hybridoma selected from the group consisting of the hybridoma SS27A strain -1286.
  • Method for measuring periostin is a method for measuring periostin contained in a sample, and detects at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin. It is a feature.
  • Periostin is composed of an EMI region, an R1 region, an R2 region, an R3 region, an R4 region, and a C-terminal region in that order from the N-terminal side to the C-terminal side.
  • the EMI region, the R1 region The method for measuring periostin of the present invention is characterized by detecting at least one region selected from the group consisting of R2 region and R3 region.
  • the measurement method of the present invention may be a method for measuring a periostin degradation product contained in a sample. More specifically, the method for measuring a periostin degradation product contained in a sample, comprising detecting at least one region selected from the group consisting of an EMI region, an R1 region, an R2 region, and an R3 region of a periostin degradation product. It may be.
  • the measurement method of the present invention may be a method for measuring periostin that is not a multimer.
  • the method for measuring periostin that is not a multimer means a method that does not detect (or measure) periostin that is a multimer.
  • the measurement method of the present invention is a method for measuring periostin or a periostin degradation product contained in a sample, and is from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or periostin degradation product. It may be a method for measuring periostin or a periostin degradation product contained in a sample, wherein at least one region selected is detected and a periostin multimer is not detected (or measured).
  • the method for measuring periostin of the present invention is a method for measuring periostin by detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin in the measurement of periostin contained in a sample. This is a measurement method that can improve accuracy.
  • detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin means that the EMI region, R1 region, R2 region of periostin And finding the presence of at least one region selected from the group consisting of the R3 region or finding its abundance.
  • this “detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin” will be described in detail: antigen and antibody, sugar and lectin, nucleotide When measuring periostin contained in a sample using a reaction between a chain and a substance having specific affinity such as a ligand and a receptor, EMI region, R1 region, R2 region of periostin And a substance capable of specifically binding to at least one region selected from the group consisting of R3 region (specific binding substance), etc., from the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin
  • the specific binding substance can bind to at least one region selected from the group consisting of Therefore periostin EMI region R1 region, for at least one region selected from the group consisting of R2 region and R3 regions can be found by finding the presence or the abundance. That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R
  • the specific binding substance is an antibody
  • an antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof (anti-periostin specific
  • anti-periostin specific The presence of, or the abundance of, at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin. . That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region can be detected.
  • the method for measuring periostin of the present invention may detect any one of the EMI region, R1 region, R2 region or R3 region of periostin, or may be the EMI region, R1 region, R2 region of periostin or Two or more members in the R3 region may be detected.
  • the method for measuring periostin according to the present invention is a method for measuring periostin contained in a sample by using an antigen-antibody reaction, which comprises an EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof. It is preferable to use an antibody that binds to at least one region selected from the group (anti-periostin specific region antibody).
  • Anti-periostin specific region antibody the antibody described in the above section “[1] Anti-periostin specific region antibody”, for example, the following antibodies can be used.
  • an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof (ii) an antibody that binds to a degradation product of periostin, (iii) an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof, and that does not bind to a periostin multimer;
  • an antibody that binds to a degradation product of periostin and does not bind to a periostin multimer (v) a monoclonal antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of
  • periostin specific region antibodies In the method for measuring periostin of the present invention, for example, when two molecules of antibody are reacted with one molecule of periostin by antigen-antibody reaction, all of these antibodies need to be anti-periostin specific region antibodies.
  • an enzyme-labeled antibody and a solid-phased antibody both the enzyme-labeled antibody and solid-phased antibody to be bound to periostin contained in the sample are anti-periostin specific region antibodies. There must be.
  • an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer is used in a measurement method for measuring periostin contained in a sample using an antigen-antibody reaction.
  • the degree of improvement in accuracy is further high, in the method for measuring periostin of the present invention, for example, when two molecules of an antibody are reacted with one molecule of periostin, one antibody does not bind to a periostin multimer.
  • the other antibody does not necessarily need to be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • an enzyme-labeled antibody or a solid-phased antibody that binds to periostin contained in a sample does not bind to a periostin multimer.
  • the other antibody does not necessarily need to be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • the above-mentioned anti-periostin specific region antibody is not limited to one type, and a plurality of types may be used simultaneously.
  • the method for measuring periostin of the present invention can improve the accuracy of the measurement, and is suitable for measurement for examining the presence or absence of a disease or its degree (such as a medical condition).
  • the method for measuring periostin of the present invention is more suitable for measurement for examining whether or not cancer or lung disease is present or its degree (such as a medical condition).
  • the method for measuring periostin of the present invention is more suitable for measurement for examination of the presence or absence of bile duct cell carcinoma, pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, or its degree (such as a disease state).
  • the method for measuring periostin of the present invention is more suitable for measurement for examining the presence or absence of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • the method for measuring periostin of the present invention is particularly suitable for measurement for examining the presence or absence of interstitial pneumonia or its extent (such as a medical condition).
  • the method for measuring periostin of the present invention is a measurement method for measuring periostin contained in a sample using an antigen-antibody reaction, and preferably uses an anti-periostin specific region antibody.
  • an anti-periostin specific region antibody the measurement principle is not particularly limited, and the desired effect is achieved.
  • Examples of the measurement method for measuring periostin contained in this sample using an antigen-antibody reaction include enzyme immunoassay (ELISA, EIA), fluorescence immunoassay (FIA), radioimmunoassay (RIA), luminescence.
  • Immunoassay (LIA) enzyme antibody method, fluorescent antibody method, immunochromatography method, immunoturbidimetric method, latex turbidimetric method, latex agglutination reaction measurement method, erythrocyte agglutination reaction method, particle agglutination reaction method, JP-A-9-229936 And a target substance (test substance) having a surface coated with a specific binding substance to the target substance (test substance) described in Japanese Patent Application Laid-Open No. 10-13819 and the like.
  • any method such as a sandwich method, a competitive method, or a homogeneous method (homogeneous method) can be applied to the measurement in the method for measuring periostin of the present invention.
  • the measurement in the method for measuring periostin of the present invention may be performed by a method, or may be performed using an apparatus such as an analyzer.
  • Samples in the present invention include periostin such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, ascites or amniotic fluid, or extracts of organs, tissues, or cells such as blood vessels or liver. If it is a sample such as a biological sample that may be removed, it will be the target.
  • periostin such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, ascites or amniotic fluid, or extracts of organs, tissues, or cells such as blood vessels or liver. If it is a sample such as a biological sample that may be removed, it will be the target.
  • the sample used for measurement is preferably a liquid
  • pretreatment such as extraction or solubilization may be performed according to a known method to obtain a liquid sample.
  • the sample may be subjected to concentration treatment as necessary.
  • the sample may be diluted by adding a diluent before the measurement.
  • a dilution treatment may be performed by adding a diluent to the sample.
  • a dilution treatment may be performed by adding a diluent to the sample.
  • Various aqueous solvents can be used as the diluent.
  • an aqueous solvent such as water, physiological saline, or various buffers such as tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer], phosphate buffer, or phosphate buffered saline can be used.
  • Tris buffer tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer
  • phosphate buffer phosphate buffered saline
  • the pH of this buffer is preferably in the range of pH 5 to pH 10.
  • the whole blood sample is mixed with a hypotonic solution such as water or an aqueous solvent containing a surfactant, and a treatment for rupturing red blood cells is performed. It is preferable for performing the measurement without hindrance.
  • the substance to be measured is periostin.
  • This periostin includes periostin monomer, periostin dimer, trimer, tetramer or higher periostin multimer, or periostin degradation product (for example, periostin degradation product having a molecular weight of about 40 KDa) ) And the like, but all of them are substances to be measured in the present invention.
  • periostin which is a measuring object substance in this invention
  • the monomer of said periostin or the decomposition product of periostin is suitable. That is, in other words, periostin other than a periostin multimer (also referred to as “periostin that is not a multimer” in the present specification) is suitable as the measurement target substance.
  • periostin which is a measurement target substance in the present invention
  • the above-described degradation product of periostin is particularly suitable. That is, in other words, periostin other than a periostin monomer and a periostin multimer is particularly suitable as the measurement target substance.
  • Immunological measurement method using labeled antibody Immunoassay using labeled antibody such as enzyme immunoassay, fluorescent immunoassay, radioimmunoassay, or luminescent immunoassay is performed in the method for measuring periostin of the present invention.
  • the measurement method that is, the measurement method using an antigen-antibody reaction using a labeled antibody
  • the sandwich method or the competition method
  • the periostin contained in the sample can be obtained by the sandwich method.
  • Both the immobilized antibody and the labeled antibody to be bound to the antibody need to be anti-periostin specific region antibodies.
  • the enzyme-labeled antibody or the immobilized antibody when either the enzyme-labeled antibody or the immobilized antibody is an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, the other antibody is not necessarily periostin. It is not necessary to be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to any multimer, and any anti-periostin specific region antibody may be used.
  • a solid support in the form of a microcapsule, a bead, a microplate (microtiter plate), a test tube, a stick, or a test piece made of a material such as cellulose, sepharose, glass, metal, ceramics, or a magnetic material can be used.
  • the antibody such as the anti-periostin specific region antibody and the solid phase carrier are adsorbed and bound by a known method such as a physical adsorption method, a chemical binding method or a combination thereof, and the antibody is immobilized on the solid phase carrier. can do.
  • an anti-periostin specific region in which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody and a solid phase carrier are mixed and contacted in a solution such as a buffer solution or dissolved in a buffer solution or the like according to a known method It can be carried out by bringing an antibody such as an antibody into contact with a solid phase carrier.
  • a solution such as a buffer solution or dissolved in a buffer solution or the like
  • an antibody such as an antibody into contact with a solid phase carrier.
  • the Japanese Society of Clinical Pathology “Special Issue on Extraordinary Clinical Pathology No. 53 Immunoassay for Clinical Examinations—Technology and Applications”, Clinical Pathology Publications, 1983; Japan Biochemical Society In accordance with known methods described in ed.
  • an antibody such as an anti-periostin specific region antibody and a solid phase carrier are mixed with glutaraldehyde, carbodiimide, imidoester, maleimide This is carried out by mixing and contacting with a bivalent cross-linking reagent, and reacting with an amino group, a carboxyl group, a thiol group, an aldehyde group, a hydroxyl group or the like of an antibody such as an anti-periostin specific region antibody and a solid phase carrier. Can do.
  • the surface or inner wall surface of the solid phase carrier to which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized is used.
  • a known method such as bovine serum albumin (BSA), human serum albumin (HSA), casein, gelatin, ovalbumin or a salt thereof, a surfactant, skim milk powder or the like.
  • the solid phase carrier may be subjected to blocking treatment (masking treatment).
  • peroxidase POD
  • alkaline phosphatase ALP
  • ⁇ -galactosidase urease
  • catalase glucose oxidase
  • lactate dehydrogenase or amylase can be used in the case of enzyme immunoassay.
  • fluorescence immunoassay fluorescein isothiocyanate, tetramethylrhodamine isothiocyanate, substituted rhodamine isothiocyanate, dichlorotriazine isothiocyanate, or the like can be used.
  • a radioimmunoassay tritium, iodine 125, iodine 131, or the like can be used.
  • a luminescence immunoassay method NADH-FMNH 2 -luciferase system, luminol-hydrogen peroxide-POD system, acridinium ester system or dioxetane compound system can be used.
  • the operation method of the measurement is a known method or the like (Japan Clinical Pathology Society, “Special Issue on Extraordinary Clinical Pathology No. 53, Immunoassay for Clinical Examination -Technology and Applications”, published by Clinical Pathology, 1983; edited by Yuji Ishikawa et al. “Enzyme Immunoassay”, 3rd edition, Medical School, published in 1987; edited by Kitagawa Tsuneki et al., “Protein Nucleic Acid Enzyme Separate Volume No.31, Enzyme Immunoassay”, Kyoritsu Shuppan, published in 1987).
  • an enzyme labeled with an antibody is reacted with a substrate under the optimum conditions, and the amount of the enzyme reaction product is measured by an optical method or the like.
  • the fluorescence immunoassay the fluorescence intensity by the fluorescent substance label is measured
  • the radioimmunoassay the radiation dose by the radioactive substance label is measured.
  • the luminescence immunoassay the amount of luminescence by the luminescence reaction system is measured.
  • Immunological measurement method by agglutination method The measurement in the measurement method of periostin of the present invention is performed by immunocomplex aggregation such as immunoturbidimetry, latex turbidimetry, latex agglutination method, erythrocyte agglutination method or particle agglutination method.
  • immunocomplex aggregation such as immunoturbidimetry, latex turbidimetry, latex agglutination method, erythrocyte agglutination method or particle agglutination method.
  • the anti-periostin specific region antibody may be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a multimer of periostin, and is preferable because accuracy is improved.
  • a phosphate buffer a glycine buffer, a tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer], a Good buffer, or the like
  • Tris buffer a tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer
  • a reaction accelerator such as polyethylene glycol or a nonspecific reaction inhibitor may be included.
  • the solid phase carrier may be polystyrene, styrene-styrene sulfonate copolymer, acrylonitrile-butadiene-styrene copolymer, chloride.
  • Vinyl-acrylic acid ester copolymer vinyl acetate-acrylic acid copolymer, polyacrolein, styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-glycidyl (meth) acrylic acid copolymer, styrene-butadiene copolymer, methacrylic acid Particles made of materials such as polymers, acrylic acid polymers, latex, gelatin, liposomes, microcapsules, erythrocytes, silica, alumina, carbon black, metal compounds, metals, ceramics, and magnetic materials can be used.
  • a method for immobilizing an antibody such as an anti-periostin specific region antibody on a solid phase carrier a known method such as a physical adsorption method, a chemical binding method, or a combination thereof can be used.
  • an anti-periostin specific region in which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody and a solid phase carrier are mixed and contacted in a solution such as a buffer solution or dissolved in a buffer solution or the like according to a known method It can be carried out by bringing an antibody such as an antibody into contact with a solid phase carrier.
  • antibodies such as anti-periostin specific region antibody and solid phase carrier are glutaraldehyde, carbodiimide, imide ester or maleimide This is carried out by mixing and contacting with a bivalent cross-linking reagent, and reacting with an amino group, a carboxyl group, a thiol group, an aldehyde group, a hydroxyl group or the like of an antibody such as an anti-periostin specific region antibody and a solid phase carrier. Can do.
  • the surface or inner wall surface of the solid phase carrier to which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized is used.
  • a known method such as bovine serum albumin (BSA), human serum albumin (HSA), protein such as casein, gelatin, ovalbumin or a salt thereof, a surfactant or nonfat dry milk, etc.
  • the solid phase carrier may be subjected to blocking treatment (masking treatment).
  • the particle size of the latex particles used as the solid phase carrier is not particularly limited, but the latex particles are bonded via the measurement target substance (periostin) and aggregates are formed.
  • the latex particles preferably have an average particle size of 0.04 to 1 ⁇ m.
  • the concentration of latex particles on which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized includes the concentration of periostin in the sample, an antibody such as an anti-periostin specific region antibody, etc. Since the optimum concentration differs depending on various conditions such as the distribution density on the surface of the latex particles, the particle size of the latex particles, and the mixing ratio of the sample and the measuring reagent, it cannot be generally stated.
  • concentration of latex particles on which “antibody such as anti-periostin specific region antibody” is immobilized is generally 0.005 to 1% (w / v) in the reaction mixture.
  • the measurement reagent contains “latex particles on which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized” having such a concentration in the reaction mixture.
  • the particle size of the particles used as the solid phase carrier is not particularly limited, but the average particle The diameter is preferably in the range of 0.01 to 100 ⁇ m, and more preferably in the range of 0.5 to 10 ⁇ m.
  • the specific gravity of these particles is preferably in the range of 1 to 10, and more preferably in the range of 1 to 2.
  • a container used for the measurement when an indirect agglutination reaction method such as a latex agglutination reaction method an erythrocyte agglutination reaction method or a particle agglutination reaction method is used as a measurement principle, for example, glass, polystyrene, polyvinyl chloride, polymethacrylate, etc.
  • a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like for example, glass, polystyrene, polyvinyl chloride, polymethacrylate, etc.
  • a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like.
  • the bottom surface of the solution storage portion (such as a well of a microplate) of these containers preferably has a shape having an inclination from the center to the periphery of the bottom, such as U-type, V-type, or
  • the measuring operation can be performed by a known method.
  • the sample and an antibody such as an anti-periostin specific region antibody, or the sample and “immobilized on a solid phase carrier” are used.
  • the transmitted light and scattered light are measured by the endpoint method or the rate method.
  • the sample is reacted with “an antibody such as an anti-periostin specific region antibody immobilized on a solid phase carrier” to determine the state of aggregation. Measure visually.
  • a measurement reagent containing “a solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized” or a measurement reagent containing “a solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized” and an “aqueous solvent” Prepare and prepare the measurement reagent to be contained.
  • a measurement reagent containing “a solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized” and a sample are mixed, whereby a “solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized” is obtained.
  • a sample are mixed, whereby a “solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized” is obtained.
  • the measurement of the generated complex aggregate should be performed by measuring the absorbance of the reaction mixture, such as transmitted light or scattered light, in the measurement reaction in which the complex aggregate is present by the endpoint method or the rate method. To implement.
  • the measured value such as absorbance obtained by measuring the sample was compared with the measured value such as absorbance obtained by measuring the standard substance (sample with known periostin concentration), and was included in the sample.
  • concentration (quantitative value) of periostin is calculated.
  • the measurement of absorbance such as transmitted light or scattered light may be performed by measuring transmitted light or scattered light, and may be one-wavelength measurement or two-wavelength measurement (two It may be a difference or ratio depending on the wavelength.
  • the measurement wavelength is generally selected from 340 nm to 1,000 nm.
  • the measurement of periostin in the present invention may be performed by a method, or may be performed using an apparatus such as a measuring apparatus.
  • the measuring device may be a general-purpose automatic analyzer or a dedicated measuring device (dedicated machine).
  • the measurement of periostin in the present invention may be performed by a one-step method (one-reagent method) or a method performed by a plurality of operation steps such as a two-step method (two-reagent method).
  • Second reagent Buffer solution containing “latex particles immobilized with anti-periostin specific region antibody”
  • a certain amount of a sample such as serum and a certain amount of the first reagent are mixed and allowed to stand at a certain temperature for a certain time.
  • the temperature at the time of standing is preferably a constant temperature within a range of room temperature (1 ° C. to 30 ° C.) or low temperature (30 ° C. to 40 ° C.). (For example, 37 ° C.)
  • the temperature at the time of standing is preferably a constant temperature within a range of room temperature (1 ° C. to 30 ° C.) or low temperature (30 ° C. to 40 ° C.). (For example, 37 ° C.)
  • the standing time is preferably a fixed time of 1 minute or more and 10 minutes or less, and more preferably a fixed time of 3 minutes or more and 5 minutes or less.
  • the antigen-antibody reaction between the anti-periostin specific region antibody immobilized on the latex particles and the periostin contained in the sample is performed by adding and mixing the second reagent to the mixed solution of the sample and the first reagent.
  • the reaction mixture is irradiated with light, and a decrease in transmitted light intensity at an appropriate wavelength, which is a signal generated by complex aggregates of latex particles generated (absorbance) Or the increase in scattered light intensity, the amount of the complex aggregate produced, that is, the amount of periostin contained in the sample is determined.
  • aqueous solvents can be used as the solvent.
  • the aqueous solvent include purified water, physiological saline, various buffer solutions such as tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer], phosphate buffer, or phosphate buffered saline.
  • Tris buffer tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer
  • phosphate buffer or phosphate buffered saline.
  • the pH of the buffer solution may be appropriately selected and used as appropriate. Although there is no particular limitation, it is general to select and use a pH within the range of pH 3 to pH 12.
  • an antibody such as the above-mentioned anti-periostin specific region antibody, a solid phase carrier on which an antibody such as the above anti-periostin specific region antibody is immobilized, and / or the above anti-periostin specific region
  • a labeling substance such as an enzyme, proteins such as bovine serum albumin (BSA), human serum albumin (HSA), casein or salts thereof; various salts; Non-specific reaction inhibitor; sugar; skim milk powder; various animal sera such as normal rabbit serum; various preservatives such as sodium azide or antibiotics; activator; reaction accelerator; sensitivity increasing substance such as polyethylene glycol; 1 type of various surfactants such as nonionic surfactants, amphoteric surfactants or anionic surfactants Or two or more may be used as appropriate.
  • the concentration when these are used for measurement is not particularly limited, but is preferably 0.001 to 10% (W).
  • surfactant examples include sorbitan fatty acid ester, glycerin fatty acid ester, decaglycerin fatty acid ester, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, polyoxyethylene glycerin fatty acid ester, polyethylene glycol fatty acid ester, polyoxyethylene alkyl ether, Nonionic surfactants such as polyoxyethylene phytosterol, phytostanol, polyoxyethylene polyoxypropylene alkyl ether, polyoxyethylene alkylphenyl ether, polyoxyethylene castor oil, hydrogenated castor oil or polyoxyethylene lanolin; betaine acetate, etc. Amphoteric surfactants; or polyoxyethylene alkyl ether sulfate or polyoxyethylene alkyl ether vinegar Anionic surfactants such as salts, and the like.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is a measurement reagent for periostin or its degradation product contained in a sample, and is at least selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin One area is detected.
  • Periostin is composed of an EMI region, an R1 region, an R2 region, an R3 region, an R4 region, and a C-terminal region in that order from the N-terminal side to the C-terminal side.
  • the EMI region, the R1 region The measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is characterized by detecting at least one region selected from the group consisting of the R2 region and the R3 region.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is specific to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product.
  • the specific binding substance means a substance that specifically binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof. Examples of such substances include lectins, substances that specifically bind to nucleotide chains (for example, aptamers), antibodies or fragments thereof, receptors, and other polypeptides or oligopeptides that specifically bind to each region.
  • the specific binding substance is an antibody
  • examples of such an antibody include the antibodies (i) to (ix) described in the above section “[2]. Method for measuring periostin 1. General remarks”. However, it is not limited to these.
  • examples of such a peptide include peptides obtained from a peptide phage display library.
  • the measurement reagent of the present invention may be a measurement reagent for a periostin degradation product contained in a sample. More specifically, measurement of a periostin degradation product contained in a sample containing a substance that specifically binds to at least one region selected from the group consisting of the EMI region, the R1 region, the R2 region, and the R3 region of the periostin degradation product. It may be a reagent.
  • the measurement reagent of the present invention may be a periostin measurement reagent that is not a multimer.
  • the measurement reagent for periostin that is not a multimer means a reagent that does not detect (or measure) periostin that is a multimer.
  • the measurement reagent of the present invention is a measurement reagent for periostin or a periostin degradation product contained in a sample, and is from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or periostin degradation product.
  • It may be a reagent for measuring periostin or a periostin degradation product contained in a sample, which contains a substance that specifically binds to at least one selected region and does not bind to a periostin multimer.
  • the description of the substance that specifically binds to each region (specific binding substance) is as described above.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention comprises at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin in the measurement of periostin or its degradation product contained in a sample. By detecting, it is a measuring reagent that can improve the accuracy of periostin measurement.
  • detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin means EMI region of periostin, R1 For at least one region selected from the group consisting of the region, the R2 region and the R3 region, this means finding its presence or finding its abundance.
  • this “detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin” will be described in detail: antigen and antibody, sugar and lectin, nucleotide When measuring periostin contained in a sample or a degradation product thereof using a reaction between a chain and a substance having specific affinity such as a ligand and a receptor, an EMI region of periostin, R1 By using a specific binding substance capable of specifically binding to at least one region selected from the group consisting of the region, R2 region and R3 region, etc., such as EMI region, R1 region, R2 of periostin or its degradation product Finding the presence of at least one region selected from the group consisting of region and R3 region; It may find its abundance. That is, at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or its degradation product can be detected.
  • the specific binding substance is an antibody
  • an antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof (anti-periostin specific
  • the presence of, or the abundance of, at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product Can be found. That is, at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or its degradation product can be detected.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention may be one that detects any one of the EMI region, R1 region, R2 region or R3 region of periostin or its degradation product, or periostin.
  • the EMI region, R1 region, R2 region, or R3 region of the degradation product may be detected.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product is a measurement reagent for measuring periostin or its degradation product contained in a sample using an antigen-antibody reaction, and the EMI region, R1 region of periostin or its degradation product It preferably contains an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of the R2 region and the R3 region (anti-periostin specific region antibody).
  • anti-periostin specific region antibody examples include, but are not limited to, the antibodies (i) to (ix) described in the above section “[2]. Method for measuring periostin 1. General remarks”.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention when measuring periostin contained in a sample using this measurement reagent, for example, when reacting two molecules of antibody with one molecule of periostin, these antibodies Any of the antibodies must be anti-periostin specific region antibodies.
  • the measurement of periostin is performed by an ELISA sandwich method using an enzyme-labeled antibody and a solid-phased antibody, both the enzyme-labeled antibody and the solid-phased antibody to be bound to periostin contained in the sample are used. This anti-periostin specific region antibody is required.
  • an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer is contained in a measurement reagent that measures periostin contained in a sample using an antigen-antibody reaction.
  • a measurement reagent that measures periostin contained in a sample using an antigen-antibody reaction for example, when reacting two molecules of antibody with one molecule of periostin as an antigen-antibody reaction, when one antibody is an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, the other antibody does not necessarily need to be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer. I just need it.
  • periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer
  • the other antibody need not necessarily be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • the anti-periostin specific region antibody may contain not only one type but also a plurality of types.
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention can improve the accuracy of the measurement, and is suitable for measurement for examining the presence or absence of a disease or its degree (such as a medical condition). is there.
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention is more suitable for measurement for examining whether or not cancer or lung disease is present or its degree (such as a medical condition).
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention is more suitable for measurement for examination of the presence or absence of cholangiocellular carcinoma, pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, or its degree (such as disease state). .
  • measuring reagent of periostin or its degradation product of this invention is still more suitable in the measurement for the test
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention is particularly suitable for measurement for examining the presence or absence of interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • Sample The sample in the present invention is as described in “3. Sample” in “[2]. Periostin Measuring Method”.
  • Substance to be measured The substance to be measured in the present invention is as described in “4. Substance to be measured” in “[2]. Method for measuring periostin”.
  • the measuring reagent for periostin or its degradation product of the present invention is a measuring reagent for measuring periostin or its degradation product contained in a sample using an antigen-antibody reaction, and is anti-periostin specific Those containing a region antibody are preferred, but any one containing this anti-periostin specific region antibody is not particularly limited to the measurement principle of the periostin measurement, and exhibits the desired effect.
  • the measurement principle of the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is, for example, enzyme immunoassay (ELISA, EIA), fluorescence immunoassay (FIA), radioimmunoassay (RIA), luminescence immunoassay ( LIA), enzyme antibody method, fluorescent antibody method, immunochromatography method, immunoturbidimetric method, latex turbidimetric method, latex agglutination reaction measurement method, erythrocyte agglutination reaction method, particle agglutination reaction method, JP-A-9-229936 and special A specific binding substance to a measurement target substance (test substance) described in, for example, Kaihei 10-132919 is fixed, and a carrier having a surface coated with the substance, and a specific binding substance to the measurement target substance (test substance) A measurement method using particles to which a binding substance is immobilized, or an ELSA method (Enzyme-linked Ligand shown by Dahlbeack et al. orbent Assay) (Thr
  • any method such as a sandwich method, a competitive method, or a homogeneous method (homogeneous method) can be applied to the measurement of the periostin or its degradation product of the present invention with a measuring reagent.
  • the measurement with the measuring reagent of periostin of this invention or its decomposition product may be performed by a method, or may be performed using an apparatus such as an analyzer.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention may be composed of one measurement reagent.
  • the anti-periostin specific region antibody is contained in the one measurement reagent.
  • the measurement reagent of periostin or its degradation product of the present invention may be composed of two or more measurement reagents.
  • the anti-periostin specific region antibody may be contained in one measurement reagent of two or more measurement reagents, or may be contained in two or more measurement reagents. Also good.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is composed of two measurement reagents, a first reagent and a second reagent
  • the anti-periostin specific region antibody is contained only in the first reagent. It may be contained only in the second reagent, or may be contained in both the first reagent and the second reagent.
  • aqueous solvents can be used as a solvent for the measurement reagent of periostin or a decomposition product thereof according to the present invention.
  • aqueous solvent examples include water, physiological saline and the like, or tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer], phosphate buffer, or phosphate buffered saline. And various buffer solutions.
  • an appropriate pH may be selected and used as appropriate. Although there is no particular limitation, it is general to select and use a pH within the range of pH 5 to pH 10.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention includes proteins such as bovine serum albumin (BSA), human serum albumin (HSA), casein or a salt thereof;
  • proteins such as bovine serum albumin (BSA), human serum albumin (HSA), casein or a salt thereof;
  • Various metal ions such as calcium salts, various salts such as calcium salts, various saccharides, skim milk powder, various animal sera such as normal rabbit serum, various preservatives such as sodium azide or antibiotics, activator, reaction accelerator, polyethylene glycol Sensitive substances such as non-specific reaction-suppressing substances; or one or more of various surfactants such as nonionic surfactants, amphoteric surfactants or anionic surfactants You may make it contain suitably.
  • the concentration when these are contained in the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is not particularly limited, but is preferably 0.001 to 10% (W / V), particularly 0.01 to 5% (W / V) is preferable.
  • surfactant examples include sorbitan fatty acid ester, glycerin fatty acid ester, decaglycerin fatty acid ester, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, polyoxyethylene glycerin fatty acid ester, polyethylene glycol fatty acid ester, polyoxyethylene alkyl ether, Nonionic surfactants such as polyoxyethylene phytosterol, phytostanol, polyoxyethylene polyoxypropylene alkyl ether, polyoxyethylene alkylphenyl ether, polyoxyethylene castor oil, hydrogenated castor oil or polyoxyethylene lanolin; betaine acetate, etc. Amphoteric surfactants; or polyoxyethylene alkyl ether sulfate or polyoxyethylene alkyl ether Anionic surfactants such as salts, and the like.
  • the measuring reagent of periostin of this invention or its degradation product can be sold by itself, or can be used for the measurement of periostin or its degradation product contained in a sample.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention can be sold in combination with other reagents or used for measurement of periostin or its degradation product contained in a sample.
  • Examples of the other reagent include a buffer solution, a sample diluent, a reagent diluent, a reagent containing a labeling substance, a reagent containing a substance that generates a signal such as color development, or calibration (calibration). And reagents containing these substances.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention may be a measurement reagent for periostin including a first reagent containing an aqueous solvent and a second reagent containing an anti-periostin specific region antibody.
  • the measurement reagent for periostin or its degradation product of the present invention is preferably a measurement reagent kit.
  • Measuring reagent based on immunological measuring method using labeled antibody as measurement principle is enzyme immunoassay, fluorescent immunoassay, radioimmunoassay, luminescence immunoassay, etc.
  • the measurement principle is an immunological measurement method using a labeled antibody of the above, that is, a measurement method using an antigen-antibody reaction using a labeled antibody, the sandwich method or the competitive method can be used.
  • the immobilized antibody and labeled antibody to be bound to periostin contained in the sample are anti-periostin specific region antibodies.
  • the labeled antibody or the immobilized antibody when either the labeled antibody or the immobilized antibody is an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, the other antibody is not necessarily periostin.
  • the antibody is not necessarily an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • the measuring reagent for periostin or its degradation product of the present invention is immunoturbidimetric method, latex turbidimetric method, latex agglutination method, hemagglutination method or particle
  • the production of immune complex aggregates such as the agglutination reaction method is carried out by measuring the transmitted light or scattered light by an optical method or by a visual measurement method, that is, a complex by an antigen-antibody reaction
  • the measurement method (aggregation reaction method) for measuring the formation of the aggregate is used as the measurement principle, the antibody to be bound to periostin contained in the sample needs to be an anti-periostin specific region antibody.
  • the anti-periostin specific region antibody may be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and is preferable because accuracy is improved.
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention is an “anti-periostin specific region antibody” or “a solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized”. contains.
  • the “anti-periostin specific region antibody” or “solid phase carrier on which the anti-periostin specific region antibody is immobilized” It is preferable to make it contain in a reagent.
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof according to the present invention is composed of two or more measurement reagents, “an anti-periostin specific region antibody” or “an anti-periostin specific region antibody immobilized solid phase carrier”
  • the reagent containing neither the “anti-periostin specific region antibody” nor the “solid phase carrier on which the anti-periostin specific region antibody is immobilized” is, for example, a reagent containing the above-mentioned aqueous solvent. It may be.
  • the particle size of the latex particles used as the solid phase carrier is not particularly limited, but the latex particles are bonded and aggregated via the measurement target substance (periostin).
  • the average particle diameter of the latex particles is preferably 0.04 to 1 ⁇ m.
  • the concentration of latex particles on which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized is about the concentration of periostin contained in the sample, the anti-periostin specific region antibody, etc. Since the optimal concentration differs depending on various conditions such as the distribution density of the antibody on the latex particle surface, the particle size of the latex particle, and the mixing ratio of the sample and the measuring reagent, it cannot be generally stated.
  • concentration of latex particles on which “antibody such as anti-periostin specific region antibody” is immobilized is generally 0.005 to 1% (w / v) in the reaction mixture.
  • the measurement reagent contains “latex particles on which an antibody such as an anti-periostin specific region antibody is immobilized” having such a concentration in the reaction mixture.
  • the particle size of the particles used as the solid phase carrier is not particularly limited, but the average particle The diameter is preferably in the range of 0.01 to 100 ⁇ m, and more preferably in the range of 0.5 to 10 ⁇ m.
  • the specific gravity of these particles is preferably in the range of 1 to 10, and more preferably in the range of 1 to 2.
  • a container used for the measurement when an indirect agglutination reaction method such as a latex agglutination reaction method an erythrocyte agglutination reaction method or a particle agglutination reaction method is used as a measurement principle, for example, glass, polystyrene, polyvinyl chloride, polymethacrylate, etc.
  • a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like for example, glass, polystyrene, polyvinyl chloride, polymethacrylate, etc.
  • a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like a test tube, a microplate (microtiter plate), a tray, and the like.
  • the bottom surface of the solution storage portion (such as a well of a microplate) of these containers preferably has a shape having an inclination from the center to the periphery of the bottom, such as U-type, V-type, or
  • the measurement reagent for periostin or a degradation product thereof includes periostin or a second reagent containing a first reagent containing an aqueous solvent and a second reagent containing a solid phase carrier on which an anti-periostin specific region antibody is immobilized. It may be a reagent for measuring degradation products.
  • the solid phase carrier is preferably latex particles.
  • the measurement method for measuring the formation of complex aggregates due to the antigen-antibody reaction is related to the measurement reagent for periostin or its degradation product according to the present invention based on the measurement method for measuring the formation of complex aggregates due to the antigen-antibody reaction.
  • the details of the method are as described in “6. Immunological measurement method by agglutination” in “[2]. Periostin measurement method”.
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is a method for measuring the amount or concentration of periostin contained in a sample. At least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin Is detected.
  • Periostin is composed of an EMI region, an R1 region, an R2 region, an R3 region, an R4 region, and a C-terminal region in that order from the N-terminal side to the C-terminal side.
  • the EMI region, the R1 region The method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is characterized by detecting at least one region selected from the group consisting of the R2 region and the R3 region.
  • the improvement method of the present invention provides at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of the periostin degradation product in the measurement of the amount or concentration of the periostin degradation product contained in the sample. It may be characterized by detecting.
  • the improvement method of the present invention is a method for measuring the amount or concentration of periostin that is not a multimer, and at least selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or periostin degradation product.
  • One region may be detected, and a periostin multimer may not be detected (or measured).
  • This method for improving the accuracy of periostin measurement is a method for measuring the amount or concentration of periostin contained in a sample.
  • At least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin Is a method that can improve the accuracy of periostin measurement.
  • detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin means that the EMI region of periostin, R1 For at least one region selected from the group consisting of the region, the R2 region and the R3 region, this means finding its presence or finding its abundance.
  • this “detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin” will be described in detail: antigen and antibody, sugar and lectin, nucleotide When measuring periostin contained in a sample using a reaction between a chain and a substance having specific affinity such as a ligand and a receptor, EMI region, R1 region, R2 region of periostin And a specific binding substance capable of specifically binding to at least one region selected from the group consisting of R3 regions, etc., from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region This specific binding substance can bind to at least one selected region, and so on.
  • EMI region of Riosuchin, R1 region for at least one region selected from the group consisting of R2 region and R3 regions can be found by finding the presence or the abundance. That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region can be detected.
  • the specific binding substance is an antibody
  • an antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof (anti-periostin specific
  • This anti-periostin specific region antibody can be bound to at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin, and the like.
  • the presence or the abundance of at least one region selected from the group consisting of the EMI region, the R1 region, the R2 region, and the R3 region of periostin can be found. That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region can be detected.
  • one of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin may be detected, or the EMI region of periostin. , R1 region, R2 region or R3 region may be detected.
  • a method for improving the accuracy of the measurement of periostin of the present invention in the measurement using the antigen-antibody reaction of periostin contained in a sample, from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product It is preferable to use an antibody that binds to at least one selected region (anti-periostin specific region antibody).
  • anti-periostin specific region antibody examples include, but are not limited to, the antibodies (i) to (ix) described in the above section “[2]. Method for measuring periostin 1. General remarks”.
  • periostin specific region antibody when measuring periostin contained in a sample, for example, when two molecules of antibody are reacted with one molecule of periostin, all of these antibodies are It must be an anti-periostin specific region antibody.
  • the measurement of periostin is performed by an ELISA sandwich method using an enzyme-labeled antibody and a solid-phased antibody, both the enzyme-labeled antibody and the solid-phased antibody to be bound to periostin contained in the sample are used. This anti-periostin specific region antibody is required.
  • the measurement accuracy is improved.
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention for example, when two molecules of an antibody are reacted with one molecule of periostin, one antibody does not bind to a periostin multimer.
  • the other antibody does not necessarily need to be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer
  • the other antibody need not necessarily be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • the above-mentioned anti-periostin specific region antibody is not limited to one type, and a plurality of types may be used simultaneously.
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention can improve the accuracy of periostin measurement, and is suitable for measurement for examining the presence or absence of a disease or its degree (such as a medical condition). It is.
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is more suitable for measurement for examining whether or not cancer or lung disease is present or its degree (such as a medical condition).
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is more suitable for measurement for examining the presence or absence of bile duct cell carcinoma, pulmonary fibrosis, or interstitial pneumonia, or its degree (such as a disease state). .
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is even more suitable for measurement for examination of the presence or absence of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention is particularly suitable for measurement for examining the presence or absence of interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • Sample The sample in the present invention is as described in “3. Sample” in “[2]. Periostin Measuring Method”.
  • Substance to be measured The substance to be measured in the present invention is as described in “4. Substance to be measured” in “[2]. Method for measuring periostin”.
  • an anti-periostin specific region antibody is preferably used.
  • the measurement principle is not particularly limited, and the desired effect is achieved.
  • periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention, for example, enzyme immunoassay (ELISA, EIA), fluorescence immunoassay (FIA), radioimmunoassay (RIA), luminescence immunity Measurement method (LIA), enzyme antibody method, fluorescent antibody method, immunochromatography method, immunoturbidimetric method, latex turbidimetric method, latex agglutination measurement method, erythrocyte agglutination method, particle agglutination method, JP-A-9-229936 A carrier having a surface coated with a specific binding substance to a measurement target substance (test substance) described in Japanese Patent Laid-Open No.
  • test substance a measurement target substance (test substance)
  • test substance a measurement target substance (test substance)
  • ELSA method Enzyme-li shown by Dahlbeack et al. ked Ligandsorbent Assay) (Thromb.Haemost, 79, pp. 767-772 pp., 1998 issue;. mention may be made of WO 98/23963 pamphlet), and the like.
  • the periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention can employ any method such as a sandwich method, a competitive method, or a homogeneous method (homogeneous method).
  • the periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention may be performed by a technique, or may be performed using an apparatus such as an analyzer.
  • the periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention may be one using only one measurement reagent (one reagent method or one step method).
  • the anti-periostin specific region antibody is contained in the one measurement reagent.
  • the periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention may be one using two or more measurement reagents (multi-reagent method or multi-step method).
  • the anti-periostin specific region antibody may be contained in one measurement reagent of two or more measurement reagents, or may be contained in two or more measurement reagents. Also good.
  • the anti-periostin specific region antibody is used only in the first reagent. It may be contained, may be contained only in the second reagent, or may be contained in both the first reagent and the second reagent.
  • the above-mentioned various aqueous solvents can be used as the solvent used for periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention.
  • periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention for details of the measurement method using an antigen-antibody reaction using a labeled antibody, refer to “5. Periostin measurement method” in “5. As described in “Immunological assay method using labeled antibody”.
  • periostin measurement in the method for improving the accuracy of periostin measurement of the present invention, the details of “other components at the time of measurement” are described in “7. Other at the time of measurement” in “[2]. Method for measuring periostin”. As described in “Components of”.
  • the pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia testing method of the present invention includes the following steps. a) a step of measuring the amount or concentration of periostin in a sample derived from a subject, wherein at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin is detected. And b) a step of comparing the amount or concentration of periostin in a sample derived from a subject and the amount or concentration of periostin in a sample derived from a living body not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia
  • Periostin is composed of an EMI region, an R1 region, an R2 region, an R3 region, an R4 region, and a C-terminal region in that order from the N-terminal side to the C-terminal side.
  • the method for examining pneumonia includes the step of detecting at least one region selected from the group consisting of the EMI region, the R1 region, the R2 region, and the R3 region in measuring periostin contained in the sample.
  • the amount or concentration of periostin in a sample derived from a subject and a living body not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia Comparing the amount or concentration of periostin in the derived sample.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of the present invention in the measurement of periostin contained in a sample, at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin is obtained. By detecting it, it is a test method that can improve the sensitivity or specificity of the measurement and improve the accuracy of the measurement. As a result, the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia according to the present invention can obtain an accurate measurement value of periostin, improve discrimination from healthy subjects and patients with other diseases, and misdiagnose. This is an inspection method that can prevent this.
  • inspection method of this invention may include the process of measuring the periostin degradation product in the sample derived from a subject. More specifically, the inspection method of the present invention may include the following steps. a) a step of measuring the amount or concentration of a periostin degradation product in a sample derived from a subject, wherein at least one region selected from the group consisting of an EMI region, an R1 region, an R2 region, and an R3 region of the periostin degradation product; Step b) comprising detecting the amount or concentration of a periostin degradation product in a sample derived from a subject and the amount of a periostin degradation product in a sample derived from a living body not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia Or the step of comparing the concentration
  • the test method of the present invention may include detecting (or measuring) periostin that is not a multimer. More specifically, the inspection method of the present invention may include the following steps. a) a step of measuring the amount or concentration of periostin or periostin degradation product in a sample derived from a subject, at least selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or periostin degradation product Step b) detecting one region and not detecting periostin multimers b) suffering from either the amount or concentration of periostin or a periostin degradation product in a sample derived from a subject and pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia Comparing the amount or concentration of periostin or a periostin degradation product in a non-biological sample
  • detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin means that EMI of periostin For at least one region selected from the group consisting of a region, R1 region, R2 region and R3 region, it means finding its presence or finding its abundance.
  • this “detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin” will be described in detail: antigen and antibody, sugar and lectin, nucleotide When measuring periostin contained in a sample using a reaction between a chain and a substance having specific affinity such as a ligand and a receptor, EMI region, R1 region, R2 region of periostin And a specific binding substance capable of specifically binding to at least one region selected from the group consisting of R3 regions, etc., from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region This specific binding substance can bind to at least one selected region, and so on.
  • EMI region of Riosuchin, R1 region for at least one region selected from the group consisting of R2 region and R3 regions can be found by finding the presence or the abundance. That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region can be detected.
  • the specific binding substance is an antibody
  • an antibody capable of binding to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof (anti-periostin specific
  • This anti-periostin specific region antibody can be bound to at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin, and the like.
  • the presence or the abundance of at least one region selected from the group consisting of the EMI region, the R1 region, the R2 region, and the R3 region of periostin can be found. That is, at least one region selected from the group consisting of periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region can be detected.
  • either one of EMI region, R1 region, R2 region or R3 region of periostin may be detected, or periostin.
  • Two or more of the EMI region, the R1 region, the R2 region, or the R3 region may be detected.
  • a method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia in the measurement using the antigen-antibody reaction of periostin contained in a sample, from the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product It is preferable to use an antibody that binds to at least one region selected from the group (anti-periostin specific region antibody).
  • anti-periostin specific region antibody examples include, but are not limited to, the antibodies (i) to (ix) described in the above section “[2]. Method for measuring periostin 1. General remarks”.
  • periostin contained in a sample for example, when two molecules of antibody are reacted with one molecule of periostin as an antigen-antibody reaction, Both need to be anti-periostin specific region antibodies.
  • periostin specific region antibody is required.
  • the measurement accuracy is improved.
  • one antibody is a periostin multimer.
  • the other antibody need not necessarily be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer
  • the other antibody need not necessarily be an anti-periostin specific region antibody that does not bind to a periostin multimer, and may be an anti-periostin specific region antibody.
  • the above-mentioned anti-periostin specific region antibody is not limited to one type, and a plurality of types may be used simultaneously.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia is suitable for examining the presence or absence of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia according to the present invention is particularly suitable for examining the presence or absence of pulmonary fibrosis or its degree (such as a medical condition).
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia according to the present invention is particularly suitable for examining the presence or absence of interstitial pneumonia or its degree (such as a medical condition).
  • Sample The sample in the present invention is as described in “3. Sample” in “[2]. Periostin Measuring Method”.
  • Substance to be measured The substance to be measured in the present invention is as described in “4. Substance to be measured” in “[2]. Method for measuring periostin”.
  • pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia by measuring periostin contained in a sample using antigen-antibody reaction is used.
  • the test method is preferably one using an anti-periostin specific region antibody, but if it uses this anti-periostin specific region antibody, it is not particularly limited to its measurement principle, and the desired effect can be obtained. It is what you play.
  • Examples of the measurement principle of periostin measurement in the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia according to the present invention include enzyme immunoassay (ELISA, EIA), fluorescence immunoassay (FIA), and radioimmunoassay (RIA).
  • Luminescence immunoassay (LIA) enzyme immunoassay
  • enzyme antibody method fluorescent antibody method
  • immunochromatography method immunoturbidimetric method
  • latex turbidimetric method latex turbidimetric method
  • latex agglutination measurement method erythrocyte agglutination method
  • particle agglutination method JP-A-9 2-293636 and Japanese Patent Application Laid-Open No.
  • a specific binding substance to the measurement target substance (test substance) is fixed and covered with the carrier, and the measurement target substance (test target)
  • inspection method of the pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of this invention can apply any methods, such as a sandwich method, a competition method, or a homogeneous system method (homogeneous system method).
  • the periostin measurement in the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of the present invention may be performed by a method or using an apparatus such as an analyzer.
  • the periostin measurement in the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of the present invention may be one using only one measurement reagent (one reagent method or one step method).
  • the anti-periostin specific region antibody is contained in the one measurement reagent.
  • the periostin measurement in the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of the present invention may be one using two or more measurement reagents (multi-reagent method or multi-step method).
  • the anti-periostin specific region antibody may be contained in one measurement reagent of two or more measurement reagents, or may be contained in two or more measurement reagents. Also good.
  • the anti-periostin specific region antibody is the first antibody. It may be contained only in the reagent, may be contained only in the second reagent, or may be contained in both the first reagent and the second reagent.
  • the solvent used for periostin measurement in the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia of the present invention the above-mentioned various aqueous solvents can be used.
  • periostin comprised of the EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin is used. Measured by detecting at least one region selected from the group, and the amount or concentration of periostin in the sample derived from the subject, and from a living body not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia The amount or concentration of periostin in each sample is compared.
  • measurement is performed by detecting at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin.
  • Periostin EMI region, R1 region, R2 region and R3 region for samples derived from living organisms not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia
  • the details of detecting at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin in measuring periostin contained in the sample are as described above.
  • the amount or concentration of periostin in the sample derived from the subject is compared with the amount or concentration of periostin in a sample derived from a living body not suffering from either pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia.
  • the amount or concentration of periostin in the sample derived from the subject is higher than the amount or concentration of periostin in the sample derived from a living body not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, This indicates that the subject is likely to have pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia.
  • an increase in the amount or concentration of periostin in the sample derived from the subject indicates that there is a high possibility that the subject's pathology of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia is hated.
  • the amount or concentration of periostin in a sample derived from a subject is compared with the amount or concentration of periostin in a sample derived from a living body (control sample) not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia. If it is high, for example, about 20% or more, about 30% or more, about 40% or more, about 50% or more, about 60% or more, about 70% or more, about 80% or more, about 90% or more, about 95% or more, Or when it is about 100% or more high, it can be judged that there is a high possibility of having pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia.
  • the difference from the concentration is a critical value for detection or diagnosis of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, and may be set as follows, for example.
  • the amount or concentration of periostin in a sample derived from two or more patients with pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia is measured, and the average value (A) is obtained.
  • the number of target patients is 2 or more, for example, 5 or more, 10 or more, 50 or more, or 100 or more.
  • the amount or concentration of periostin in two or more control samples is measured, and the average value (B) is obtained.
  • the number of examples of the target control sample is 2 or more, for example, 5 or more, 10 or more, 50 or more, or 100 or more.
  • [(A ⁇ B) / B] ⁇ 100 (%) is calculated from the obtained average values A and B, and the average amount or concentration of periostin in a biological sample derived from a patient with pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia Determine what percentage the value is higher compared to the average amount or concentration of periostin in the control sample.
  • the value thus determined is set as the difference (critical value) between (i) the amount or concentration of periostin in the subject-derived sample and (ii) the amount or concentration of periostin in the control sample.
  • the measurement value of the amount or concentration of periostin in the sample is incorporated into the average values (A) and (B), and the number of patient cases and It is preferable to increase the number of subjects such as healthy subjects (healthy subjects, those who are not affected by pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, etc.). By increasing the number of cases, the accuracy of detection or diagnosis of pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia can be increased.
  • the average value (B) of the amount or concentration of periostin in the obtained control sample may be “(ii) the amount or concentration of periostin in the control sample”.
  • the subject when the measured amount or concentration of periostin in a sample derived from a subject is equal to or higher than a predetermined protein amount, the subject suffers from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia. It may be determined that there is a high possibility of being. Then, the “predetermined protein amount” for determining that there is a high possibility of suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia can be obtained, for example, as follows. First, the amount or concentration of periostin in a sample derived from two or more patients with pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia is measured. At this time, the number of target patients is 2 or more, for example, 5 or more, 10 or more, 50 or more, or 100 or more.
  • the amount or concentration of periostin in two or more control samples is also measured.
  • the number of examples of the target control sample is 2 or more, for example, 5 or more, 10 or more, 50 or more, or 100 or more.
  • the optimum threshold (cut-off value) is obtained by statistical processing.
  • statistical processing For example, analysis using a Receiver-Operating-Characteristics (ROC) curve can be mentioned.
  • periostin Periostin (nucleotide sequence: nucleotide sequence of nucleic acid database GenBank Accession Number D13666, amino acid sequence: nucleic acid database GenBank Accession Number BABA02837 amino acid sequence) V5 / His-tagged recombinant periostin protein in insect cells It was expressed in some S2 cells and purified.
  • S2 cell transformants were prepared as follows. A cDNA encoding the above-mentioned part of periostin was inserted into pMT / Bip / V5-HisA plasmid (Invitrogen, Carlsbad, Calif., USA), and this was designated as pMT / Bip / periostin-V5-HisA.
  • pAcHygro (Invitrogen, Carlsbad, Calif., USA), which is a plasmid expressing the pMT / Bip / peristin-V5-HisA and hygromycin resistance gene, was co-introduced into S2 cells by a known method and transformed.
  • S2 recombinant periostin protein which 6 histidine couple
  • the culture supernatant was then added to phosphate buffered saline (PBS) [137 mM sodium chloride, 2.68 mM potassium chloride, 1.47 mM potassium dihydrogen phosphate, and 8.04 mM disodium hydrogen phosphate.
  • PBS phosphate buffered saline
  • Ni-NTA Agarose, Qiagen, Hilden, Germany nickel resin
  • periostin was obtained by eluting the S2 recombinant periostin protein with an imidazole-containing buffer.
  • the DNA sequence of the prepared plasmid was confirmed, and it was confirmed that the incorporated sequence was as intended.
  • partial periostin consisting of R1 region, R2 region and R3 region of periostin Known literature (I. Takayama et al., J. Biochem., 146, 5, 713-723, published in 2009, etc.)
  • partial periostin consisting of R1 region, R2 region and R3 region of periostin having 6 histidine residues bound to the C-terminus was prepared and obtained.
  • partial periostin (R1, R2, R3 region) The DNA sequence of the prepared plasmid was confirmed, and it was confirmed that the incorporated sequence was as intended.
  • periostin partial periostin
  • partial periostin partial periostin
  • partial periostin partial periostin
  • partial periostin partial periostin
  • partial periostin partial periostin
  • partial periostin R1 * R2 * R3 area
  • partial periostin R4 area
  • partial periostin EMI area
  • partial periostin C-terminal region
  • Periostin, partial periostin (R1 ⁇ R2 region), partial periostin (R2 region), partial periostin (R1 ⁇ R2 ⁇ R3 region), and partial periostin (C-terminal region) prepared in Reference Example 1 were mixed with SDS-polyacrylamide. Confirmed by gel electrophoresis.
  • SDS-1.5M Tris solution 18.2 g of tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] and 0.4 g of sodium dodecyl sulfate [SDS] were added to pure water, mixed, and adjusted to pH 8.8 with hydrochloric acid. After that, an SDS-1.5M Tris solution [0.4% SDS-1.5M Tris-HCl buffer] was prepared as 100 mL.
  • SDS-0.5M Tris solution 6.1 g of tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] and 0.4 g of sodium dodecyl sulfate [SDS] were added to pure water, mixed, and adjusted to pH 6.8 with hydrochloric acid. After that, an SDS-0.5M Tris solution [0.4% SDS-0.5M Tris-HCl buffer] was prepared as 100 mL.
  • Electrophoresis tank buffer 1.5 g of tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris], 0.5 g of sodium dodecyl sulfate [SDS], and 7.2 g of glycine were added to pure water, mixed, and then 500 mL.
  • a tank buffer [0.1% SDS-192 mM glycine-25 mM Tris buffer] was prepared.
  • SYPRO Ruby staining solution SYPRO Ruby protein gel stain of Molecular Probes (Eugene, Oregon, USA) was used as the SYPRO Ruby staining solution.
  • SYPRO Ruby decoloring solution 10 mL of methanol and 7 mL of acetic acid were mixed with 83 mL of pure water to prepare a SYPRO Ruby decoloring solution.
  • a separation gel solution having an acrylamide concentration of 13.5% was prepared using the reagent and pure water prepared in (1), (2), (4) and (5) of 1 above. After this separated gel solution was poured into the assembled glass plate, pure water was overlaid thereon, and the gelation reaction was allowed to proceed for 30 minutes.
  • a concentrated gel solution having an acrylamide concentration of 1.3% was prepared using the reagent and pure water prepared in (1), (3), (4), and (5) of 1 above. Pure water was discarded from the glass plate of (1), and a small amount of this concentrated gel solution was injected and washed, and then the concentrated gel solution was injected. And sample comb was inserted here and gelatinization reaction was performed for 30 minutes.
  • FIG. 2 shows the gel photographed in (3) above.
  • periostin (lane denoted as “(a)”) and “partial periostin (R1 ⁇ R2) prepared in (1) to (4) and (7) of Reference Example 1 described above.
  • (Region) ”(lane labeled“ (b) ”),“ partial periostin (R2 region) ”(lane labeled“ (c) ”),“ partial periostin (R1, R2, R3 region) ”(“ ( d) ”) and“ partial periostin (C-terminal region) ”(lane indicated as“ (e) ”) each have a band at the corresponding molecular weight.
  • Electrophoresis tank buffer Preparation was carried out as described in (1) of (1) above to prepare an electrophoretic tank buffer (0.1% SDS-192 mM glycine-25 mM Tris buffer).
  • sample treatment solution was prepared as described in (1) of (1) to prepare a sample treatment solution [4% SDS-12% 2-mercaptoethanol-20% glycerin-100 mM Tris buffer solution]. .
  • A Partial periostin (EMI region)
  • B Partial periostin (R4 region)
  • C Periostin
  • d Partial periostin ( ⁇ 17 ⁇ 18 ⁇ 21)
  • E Molecular weight markers [Precision Plus Protein All Blue Standards markers; marker molecular weights 10 KDa, 15 KDa, 20 KDa, 25 KDa, 37 KDa, 50 KDa, 75 KDa, 100 KDa, 150 KDa, and 250 KDa;
  • Electrophoresis Using the reagent prepared in 1 above, each of the 2 samples was subjected to electrophoresis by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis according to the following operation, and each of periostin, partial periostin and the like was analyzed for its molecular weight. A gel placed according to was obtained.
  • a 9 cm ⁇ 9 cm polyvinyl difluoride membrane (BIO-RAD Laboratories, Hercules, Calif., USA) was layered on the gel, and 48 mM tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris], 39 mM glycine, Using a transfer buffer composed of 0.0375% (W / V) sodium dodecyl sulfate (SDS) and 20% (V / V) methanol, transfer was performed at a current of 200 mA for 2 hours, and the periostin or the partial periostin was added. The gel was transferred to the polyvinyl difluoride film.
  • Tris hydroxymethyl aminomethane
  • a blocking solution [50 mM Tris containing 0.5% casein, 100 mM sodium chloride, and 0.1% sodium azide (permural transfer of periostin or partial periostin) Blocking was performed by immersing in 20 mL of hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer] (pH 8.0)] at 25 ° C. for 2 hours.
  • Titer Max Gold (Funakoshi Co., Tokyo, Japan) as a chemical synthesis adjuvant was mixed with 1 volume of the periostin solution prepared in (1) of Reference Example 1 at a ratio of 1 volume.
  • cell fusion was performed as follows.
  • the mixed lymph node cells and myeloma cells (Sp2 / O cells) were centrifuged to remove the supernatant, suspended in 1 mL of polyethylene glycol (PEG 1500, Roche, Switzerland) at room temperature for 1 minute, and then at 37 ° C. Stir for 1 minute.
  • 1 mL of serum-free medium was added over 1 minute, and then 10 mL of serum-free medium was added over 1 minute.
  • the cells were washed several times, suspended in a medium containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine, dispensed into a 96-well microtiter plate, and cultured at 37 ° C. in the presence of 5% CO 2 .
  • fusion cell line As a method for selecting the grown monoclonal antibody-producing cell line (fusion cell line), 7 to 14 days after cell fusion, the above-described periostin used as an immunogen was solid-phased, and the fusion cell culture supernatant was used as a primary antibody. The ELISA method was used.
  • this ELISA method was performed as follows. 1 ⁇ g / mL of the above periostin was dispensed into a 96-well microtiter plate and allowed to immobilize for several hours. After washing this solid phase solution, the fusion cell culture supernatant was added to each well and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • the fused cell culture supernatant was washed, and a peroxidase-labeled goat anti-rat IgG antibody (GE Healthcare, Little Charlotte, UK) was added as a secondary antibody and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • a peroxidase-labeled goat anti-rat IgG antibody GE Healthcare, Little Charlotte, UK
  • ABTS peroxidase substrate KPL, Gaithersburg, MD, USA
  • IgG was purified from the selected monoclonal antibody-producing cell line as follows. This monoclonal antibody-producing cell line was cultured at 37 ° C. in a CO 2 incubator using GIT medium (Nippon Pharmaceutical Co., Ltd., Tokyo, Japan).
  • the IgG in the supernatant was bound to a protein G column (GE Healthcare, Little Charlotte, UK).
  • the bound IgG was eluted with 50 mM aqueous citric acid solution (pH 2.6).
  • Tris buffer 1M tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer] was added to 4 volumes of the eluate, and rat anti-periostin monoclonal antibody was obtained from the aforementioned monoclonal antibody-producing cell line as purified IgG.
  • anti-periostin monoclonal antibody a rat anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)”) was obtained from the SS16A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 2 Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-second time
  • the procedure described in Example 1 (1) to (4) was followed, and anti-periostin monoclonal antibody was prepared again. (Second time)
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”) was obtained from the SS17B monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 3 Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-third time
  • anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”) was obtained from the SS18A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 4 Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-fourth time
  • Example 2 Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-fourth time
  • anti-periostin monoclonal antibody was prepared according to the following procedure. (4th)
  • Titer Max Gold (Funakoshi Co., Tokyo, Japan) as a chemical synthesis adjuvant was mixed with 1 volume of the periostin solution prepared in (1) of Reference Example 1 at a ratio of 1 volume.
  • spleen cells of immunized mice and myeloma cells are mixed in a ratio of 1: 1 to 10: 1, and polyethylene glycol is mixed by a general method. (PEG 1500, Roche, Switzerland) was added for cell fusion, and the grown hybridoma colonies were selected.
  • cell fusion was performed as follows.
  • the mixed lymph node cells and myeloma cells (Sp2 / O cells) were centrifuged to remove the supernatant, suspended in 1 mL of polyethylene glycol (PEG 1500, Roche, Switzerland) at room temperature for 1 minute, and then at 37 ° C. Stir for 1 minute.
  • 1 mL of serum-free medium was added over 1 minute, and then 10 mL of serum-free medium was added over 1 minute.
  • the cells were washed several times, suspended in a medium containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine, dispensed into a 96-well microtiter plate, and cultured at 37 ° C. in the presence of 5% CO 2 .
  • fusion cell line As a method for selecting the grown monoclonal antibody-producing cell line (fusion cell line), 7 to 14 days after cell fusion, the above-described periostin used as an immunogen was solid-phased, and the fusion cell culture supernatant was used as a primary antibody. The ELISA method was used.
  • this ELISA method was performed as follows. 1 ⁇ g / mL of the above periostin was dispensed into a 96-well microtiter plate and allowed to immobilize for several hours.
  • the fusion cell culture supernatant was added to each well and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • the fused cell culture supernatant was washed, and a peroxidase-labeled sheep anti-mouse IgG antibody (GE Healthcare, Little Charlotte, UK) was added as a secondary antibody and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • a peroxidase-labeled sheep anti-mouse IgG antibody GE Healthcare, Little Charlotte, UK
  • ABTS peroxidase substrate KPL, Gaithersburg, MD, USA
  • SS19A, SS19B, SS19C, and SS19D Four clones were established from the grown fused cell lines, and named SS19A, SS19B, SS19C, and SS19D, respectively.
  • IgG was purified from the selected monoclonal antibody-producing cell line as follows. This monoclonal antibody-producing cell line was cultured at 37 ° C. in a CO 2 incubator using GIT medium (Nippon Pharmaceutical Co., Ltd., Tokyo, Japan). After culturing, the IgG in the supernatant was bound to a protein G column (GE Healthcare, Little Charlotte, UK). The bound IgG was eluted with 50 mM aqueous citric acid solution (pH 2.6).
  • mice anti-periostin monoclonal antibody was obtained as purified IgG from the above monoclonal antibody-producing cell line.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19A)”) was obtained from the SS19A monoclonal antibody-producing cell line, and a mouse anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS19A)”).
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS19B) from the SS19C monoclonal antibody-producing cell line, mouse anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as“ anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) ”), and SS19D strain monoclonal antibody-producing cell
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19D) could be obtained from each strain.
  • amino acid sequence of the heavy chain variable region of the anti-periostin monoclonal antibody is represented by SEQ ID NO: 16
  • nucleotide sequence of the polynucleotide encoding this amino acid sequence is represented by SEQ ID NO: 15.
  • amino acid sequence of the light chain variable region of the antibody is represented by SEQ ID NO: 18, and the base sequence of the polynucleotide encoding this amino acid sequence is represented by SEQ ID NO: 17.
  • the antibody of the present invention comprises the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 16, and the amino acid sequence of the light chain variable region comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 18.
  • Monoclonal antibodies are included.
  • Example 5 (Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-5th time) At a different time from Example 1, Example 2, Example 3 and Example 4, the procedure described in Example 4 (1) to (4) was followed to prepare an anti-periostin monoclonal antibody. went. (5th)
  • anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)”) could be obtained from the SS20A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 6 (Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-sixth time)
  • the anti-periostin monoclonal antibody was prepared as described in (1) to (4) of Example 1 at a different time from Example 1, Example 2, Example 3, Example 4 and Example 5.
  • Antibody preparation was performed. (6th)
  • anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)”) was obtained from the SS21A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 7 (Confirmation of recognition site of anti-periostin monoclonal antibody) For each of the anti-periostin monoclonal antibodies obtained in Example 1, Example 2, Example 3, Example 4, Example 5 and Example 6, it was confirmed which region of periostin was recognized.
  • periostin or partial periostin prepared in (1) to (7) of Reference Example 1 was adjusted to a concentration of 5 ⁇ g / mL with phosphate buffered saline. 50 ⁇ L of each of the prepared solutions or phosphate buffered saline as a control was injected into each well of a 96-well microtiter plate (Thermo Fisher Scientific Inc., Illinois, USA) and allowed to stand at 5 ° C. for 18 hours. The periostin or partial periostin was immobilized on the well of the microtiter plate.
  • A "Periostin”
  • B "Partial periostin (R1 / R2 region)”
  • C “Partial periostin (R2 region)”
  • D “Partial periostin (R1, R2, R3 region)”
  • E “Partial periostin (R4 region)”
  • F “Partial periostin (EMI region)”
  • G “Partial periostin (C-terminal region)”
  • the POD-labeled anti-IgG antibody is injected into a well of a microtiter plate.
  • This POD-labeled anti-IgG antibody is referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”, “ In the case of “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” or “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)”, the POD-labeled anti-rat IgG antibody was injected into the well of the microtiter plate.
  • this POD-labeled anti-IgG antibody is an “anti-periostin monoclonal antibody (SS19A)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)”, or
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) the POD-labeled anti-mouse IgG antibody was injected into the well of the microtiter plate.
  • the absorbance difference was 0.2 or more, it was determined that the anti-periostin monoclonal antibody recognized either the periostin or partial periostin region immobilized on the well of the microtiter plate. .
  • the antiperiostin monoclonal antibody was measured by reacting with the periostin or partial periostin.
  • the absorbance difference was 0.2 or more, that is, the anti-periostin monoclonal antibody was “ ⁇ ” was shown for combinations when it was determined that they were bound to periostin or partial periostin.
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)” binds only to “periostin” and “partial periostin (R1, R2, R3 region)” of the above-mentioned periostin and partial periostin, Any of “partial periostin (R1 / R2 region)”, “partial periostin (R2 region)”, “partial periostin (R4 region)”, “partial periostin (EMI region)” and “partial periostin (C-terminal region)” You can see that they are not connected. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)” recognizes the R3 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS17B) binds only to “periostin” and “partial periostin (R4 region)” among the above-mentioned periostin and partial periostin, (R1 • R2 region) ”,“ partial periostin (R2 region) ”,“ partial periostin (R1 • R2 • R3 region) ”,“ partial periostin (EMI region) ”and“ partial periostin (C-terminal region) ” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” recognizes the R4 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” is the “periostin”, “partial periostin (R1 and R2 region)” and “partial periostin (R1) among the above-mentioned periostin and partial periostin. R2 and R3 regions) ”only, and any of“ partial periostin (R2 region) ”,“ partial periostin (R4 region) ”,“ partial periostin (EMI region) ”and“ partial periostin (C-terminal region) ” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” recognizes the R1 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19A) binds only to “periostin” and “partial periostin (R4 region)” among the above-mentioned periostin and partial periostin, (R1 • R2 region) ”,“ partial periostin (R2 region) ”,“ partial periostin (R1 • R2 • R3 region) ”,“ partial periostin (EMI region) ”and“ partial periostin (C-terminal region) ” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19A)” recognizes the R4 region of periostin as an antigen recognition portion (epitope).
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19B) binds only to “periostin” and “partial periostin (C-terminal region)” among the above-mentioned periostin and partial periostin, “Periostin (R1 • R2 region)”, “Partial periostin (R2 region)”, “Partial periostin (R1 • R2 • R3 region)”, “Partial periostin (R4 region)” and “Partial periostin (EMI region)” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)” recognizes the C-terminal region of periostin as an antigen recognition portion (epitope).
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” is the “periostin”, “partial periostin (R1 and R2 region)”, “partial periostin (R2) among the above-mentioned periostin and partial periostin. "Region)” and “partial periostin (R1, R2, R3 region)” only, any of “partial periostin (R4 region)", “partial periostin (EMI region)” and “partial periostin (C-terminal region)” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” recognizes the R2 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” binds only to “periostin” and “partial periostin (R1, R2, R3 region)” of the above-described periostin and partial periostin.
  • “Partial periostin (R1 / R2 region)”, “partial periostin (R2 region)”, “partial periostin (R4 region)”, “partial periostin (EMI region)” and “partial periostin (C-terminal region)” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” recognizes the R3 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) binds only to “periostin” and “partial periostin (EMI region)” among the above-mentioned periostin and partial periostin.
  • R1 • R2 region “ partial periostin (R2 region) ”,“ partial periostin (R1 • R2 • R3 region) ”,“ partial periostin (R4 region) ”and“ partial periostin (C-terminal region) ” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)” recognizes the EMI region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)” binds only to “periostin” and “partial periostin (C-terminal region)” among the above-mentioned periostin and partial periostin. “Periostin (R1 • R2 region)”, “Partial periostin (R2 region)”, “Partial periostin (R1 • R2 • R3 region)”, “Partial periostin (R4 region)” and “Partial periostin (EMI region)” It can be seen that they are not combined. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)” recognizes the C-terminal region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • Example 8 (Confirmation of reactivity of anti-periostin monoclonal antibody) For each of the anti-periostin monoclonal antibodies obtained in Example 1, Example 2, Example 3, Example 4, Example 5, and Example 6, reaction with periostin monomer, multimer, and degradation product, respectively. The sex was confirmed.
  • Anti-periostin monoclonal antibodies other than those derived from the SS19B strain “Anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)”, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS19A)” , “Anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)”, “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)”
  • the reactivity with each of the multimer and the decomposed product was confirmed as follows.
  • Immunoprecipitation treatment (1) 5 ⁇ g of the anti-periostin monoclonal antibodies (a) to (h) below obtained in Example 1, Example 2, Example 3, Example 4, Example 5, and Example 6 were used. Each one was individually placed in a 1.5 mL capacity tube.
  • this tube was rotated at 5 ° C. for 1 hour, and each of the anti-periostin monoclonal antibodies was bound to the Protein G Sepharose.
  • this tube was rotated at 5 ° C. for 2 hours to block the surface of Protein G Sepharose to which the anti-periostin monoclonal antibody was not bound.
  • Protein G Sepharose-conjugated anti-periostin monoclonal antibody was included in the “mixture of periostin monomer, multimer and degradation product”. Each of periostin monomer, multimer and degradation product was contacted.
  • the “anti-periostin monoclonal antibody” bound to Protein G Sepharose binds to any one or more of periostin monomer, multimer or degradation product recognized by this antibody (the antibody).
  • the tube (4) was centrifuged. After removing the supernatant, by washing Protein G Sepharose in the tube with phosphate buffered saline, free periostin that did not bind to the “anti-periostin monoclonal antibody” bound to Protein G Sepharose. Monomers, multimers and degradation products (ie, periostin monomers, multimers or degradation products that were not recognized and bound by this “anti-periostin monoclonal antibody”) were all removed.
  • molecular weight markers [Precision Plus Protein All Blue Standards markers; marker molecular weights 10 KDa, 15 KDa, 20 KDa, 25 KDa, 37 KDa, 50 KDa, 75 KDa, 100 KDa, 150 KDa, and 250 KDa; BIO-RAc Labor State, California; It was.
  • a protein G Sepharose “an anti-periostin monoclonal antibody” — “a periostin monomer, multimer or degradation product recognized and bound by the anti-periostin monoclonal antibody” in each of the above samples ” are mixed with a sample treatment solution to produce "Protein G Sepharose”, “anti-periostin monoclonal antibody”, and “periostin monomer, multimer or degradation product that is recognized and bound by the anti-periostin monoclonal antibody” Are dissociated respectively.
  • the supernatant and the molecular weight marker injected into this gel are the following molecular weight markers (i) to (ix), and each ““ anti-periostin monoclonal antibody ”and “Supernatant containing periostin monomer, multimer or degradation product recognized and bound by the anti-periostin monoclonal antibody” was sequentially injected.
  • the rightmost lane of this gel was used as a negative control lane in which no sample was injected.
  • the periostin monomer, multimer or degradation product recognized and bound by this antibody (the antibody) is positioned in the gel according to its molecular weight. A gel was obtained.
  • a 9 cm ⁇ 9 cm polyvinyl difluoride membrane (BIO-RAD Laboratories, Hercules, Calif., USA) was layered on the gel, and 48 mM tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris], 39 mM glycine, Using a transfer buffer consisting of 0.0375% (W / V) sodium dodecyl sulfate (SDS) and 20% (V / V) methanol, transfer was carried out at a current of 200 mA for 2 hours, and positioned in the gel according to its molecular weight.
  • the proteins such as “periostin monomer, multimer or degradation product recognized and bound by the anti-periostin monoclonal antibody” were transferred from the gel to the polyvinyl difluoride membrane.
  • this polyvinyl difluoride membrane was washed by shaking in 20 mL of a cleaning solution (phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20) for 10 minutes. This operation was performed three times.
  • a cleaning solution phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) obtained in Example 4 was subjected to biotin labeling using Sulfo-NHS-LC-Biotin (Thermo Fisher Scientific Inc., Illinois, USA; product code number: 21335).
  • Sulfo-NHS-LC-Biotin Thermo Fisher Scientific Inc., Illinois, USA; product code number: 21335.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) labeled with biotin.
  • This “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” is capable of recognizing and binding periostin monomers, multimers and degradation products, as will be described later.
  • the polyvinyl difluoride membrane subjected to the washing treatment of (3) was immersed in this liquid mixture of biotin-labeled antibody at room temperature overnight for reaction.
  • each of the above-mentioned “monomers, multimers or degradation products of periostin that is recognized and bound by the anti-periostin monoclonal antibody” transferred to the polyvinyl difluoride film, and the biotin-labeled “anti-periostin monoclonal antibody” (SS17B) ”and biotin-labeled“ anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) ”were reacted.
  • peroxidase-labeled streptavidin (Stereospecific Detection Technologies, Germany) was added to a labeled antibody diluent (50 mM tris (hydroxymethyl) amino containing 0.5% casein and 100 mM sodium chloride).
  • the polyvinyl difluoride film of (5) above was immersed in a POD-labeled streptavidin solution diluted 15000 times with methane buffer [Tris buffer] (pH 8.0)] for 90 minutes at room temperature to react. .
  • the molecular weight marker lane (denoted as “MM”), the periostin lane recognized by and bound to the “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)” (denoted as “16A”), the “anti-periostin” Periostin lane (designated “17B”) recognized and bound by “monoclonal antibody (SS17B)”, periostin lane (designated “18A”) recognized and bound by “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”, “anti-periostin Periostin lane (represented as “19A”) recognized and bound by “monoclonal antibody (SS19A)”, periostin lane (represented as “19C”) recognized and bound by “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)”, “anti-periostin Monoclonal antibody (SS19 ) ”And recognized periostin lane (denoted“ 19D ”),“ periostin monoclonal antibody monoclonal antibody (SS19
  • the thick band located between the 150 KDa and 250 KDa molecular weight markers represents the periostin multimer (presumed to be a periostin trimer from its molecular weight) and is near the 75 KDa molecular weight marker.
  • the thick band seen from the high molecular weight side represents the monomer of periostin by its molecular weight
  • the thick band near the 37 KDa molecular weight marker represents the degradation product of periostin by its molecular weight.
  • Anti-periostin monoclonal antibody derived from SS19B strain With respect to “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)”, the reactivity with each of periostin monomer, multimer and degradation product was confirmed as follows.
  • molecular weight markers [Precision Plus Protein All Blue Standards markers; marker molecular weights 10 KDa, 15 KDa, 20 KDa, 25 KDa, 37 KDa, 50 KDa, 75 KDa, 100 KDa, 150 KDa, and 250 KDa; BIO-RAc Labor State, California; Used as.
  • the monomer, multimer or degradation product of periostin was positioned in the gel according to its molecular weight, and this gel was obtained.
  • the periostin monomer, multimer and degradation product located in the gel according to the molecular weight are transferred to the polyvinyl difluoride film from the gel obtained in (1) above, and this
  • the transferred anti-periostin monomer, multimer and degradation product were brought into contact with the above-mentioned “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)” labeled with biotin, reacted, and the presence or absence of binding between them was confirmed.
  • the molecular weight marker lane (indicated as “MM”) and then the periostin lane (indicated as “19B”) recognized and bound by the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)” in order from the left lane.
  • MM molecular weight marker
  • periostin lane (indicated as “19B”) recognized and bound by the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19B)” in order from the left lane.
  • SS19B anti-periostin monoclonal antibody
  • the thicker band on the higher molecular side of the molecular weight marker of 150 KDa represents a multimer of periostin than its molecular weight
  • the thicker band on the higher molecular side of the molecular weight marker of 75 KDa represents a monomer of periostin from its molecular weight.
  • Example 3 Summary For each anti-periostin monoclonal antibody obtained in Example 1, Example 2, Example 3, Example 4, Example 5 and Example 6, periostin monomers, multimers and degradation products A summary of the reactivity with each is shown in FIG.
  • periostin monomers, multimers or degradation products that are recognized and bound are indicated by “ ⁇ ”.
  • anti-periostin monoclonal antibody can recognize and bind to a degradation product of periostin.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS16A) ⁇ “Anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” ⁇ “Anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” ⁇ “Anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” ⁇ “Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)”
  • the SS19D strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2chome, Kisarazu-shi, Chiba, Japan 5). No. 8) is deposited as “Accession Number: NITE P-1068” on February 22, 2011.
  • SS19D strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)”
  • SS19D anti-periostin monoclonal antibody
  • the SS16A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (Kazusa-Kamazu 2chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5). No. 8) is deposited on March 16, 2012 as “Reception Number: NITE AP-1281”.
  • SS16A anti-periostin monoclonal antibody
  • the monoclonal antibody-producing cell line SS16A the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu-shi, Chiba, Japan) No. 8) was applied for transfer from domestic deposit to international deposit on July 19, 2012, and transferred to international deposit. [Transfer date: July 19, 2012] (Accession number: NITE BP-1281)
  • the SS18A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of this “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5). No. 8) is deposited as “Receipt Number: NITE AP-1282” on March 16, 2012.
  • the SS19C strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of this “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (Kazusa-Kamazu 2chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5). No. 8) is deposited on March 16, 2012 as “Reception Number: NITE AP-1283”.
  • the SS20A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5 No. 8) is deposited on March 16, 2012 as “Reception number: NITE AP-1284”.
  • the SS20A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) No. 8) was applied for transfer from domestic deposit to international deposit on July 19, 2012, and transferred to international deposit. [Transfer date: July 19, 2012] (Accession number: NITE BP-1284)
  • Example 9 (Confirmation of periostin in human serum) Periostin in human serum was confirmed by performing immunoprecipitation, electrophoresis and Western blotting.
  • Immunoprecipitation treatment (1) In a 1.5 mL tube, 100 ⁇ L of NHS-activated Sepharose (GE Healthcare, Little Chalfont, UK) was placed in a bed volume, and the supernatant was removed by centrifugation.
  • NHS-activated Sepharose GE Healthcare, Little Chalfont, UK
  • this tube was kept warm at 25 ° C. for 1 hour with stirring, and the above-mentioned “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” was bound to the above-mentioned NHS-activated Sepharose.
  • SS19C anti-periostin monoclonal antibody
  • the centrifugation operation was performed on the tube (7) (each having a serum amount of 25 ⁇ L, 50 ⁇ L, or 100 ⁇ L of a healthy person).
  • the NHS-activated Sepharose in the tube was washed three times with a washing solution [10 mM Tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] -150 mM sodium chloride-0.05% Tween 20 (pH 8.0)] All free periostin (monomer, multimer or degradation product) that did not bind to “an anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) bound to NHS-activated Sepharose” was removed.
  • SS19C anti-periostin monoclonal antibody
  • the anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) bound to NHS-activated Sepharose and “monomers, multimers or degradation products of periostin contained in the sample (serum of healthy subjects)” Of “NHS-activated Sepharose”-"Anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)"-"Periostin monomer, multimer or degradation product contained in sample (serum of healthy subject)” A conjugate ” was prepared.
  • (A) Acrylamide solution The acrylamide solution was prepared as described in 1 of (1) of Reference Example 2 to prepare an acrylamide solution [30% acrylamide storage solution].
  • Electrophoresis buffer solution Prepared as described in (1) of (6) of Reference Example 2, and the electrophoretic buffer solution [0.1% SDS-192 mM glycine-25 mM Tris buffer] Prepared.
  • molecular weight markers [Precision Plus Protein All Blue Standards markers; marker molecular weights 10 KDa, 15 KDa, 20 KDa, 25 KDa, 37 KDa, 50 KDa, 75 KDa, 100 KDa, 150 KDa, and 250 KDa; Samples were prepared as follows.
  • a separation gel solution having an acrylamide concentration of 7.5% was prepared using the reagent and pure water prepared in (a), (b), (d) and (e) of (1). After this separated gel solution was poured into the assembled glass plate, pure water was overlaid thereon, and the gelation reaction was allowed to proceed for 30 minutes.
  • the periostin (monomer, multimer or degradation product) contained in the sample is positioned according to its molecular weight. This gel was obtained.
  • the sample processing solution (h) in (1) is used in the absence of a reducing agent.
  • the sample of the molecular weight marker was not injected into the comb hole of the gel, but only the supernatant was injected into the comb hole of the gel.
  • the periostin (monomer, multimer or degradation product) contained in the sample (serum of healthy person) in the case where the reducing agent is not present in (c) was positioned according to its molecular weight and this gel was obtained.
  • Blocking was performed by immersing in 50 mL of Tris-buffered physiological saline [10 mM Tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] -150 mM sodium chloride (pH 8.0)] containing skim milk and 0.05% Tween 20 for 1 hour at room temperature. It was.
  • Each polyvinyl difluoride membrane subjected to the washing treatment (3) was immersed in this antibody solution at 4 ° C. overnight to be reacted.
  • periostin monomer, multimer or degradation product contained in the sample (serum of healthy subject) transferred to the polyvinyl difluoride film and the “anti-periostin in the antibody solution” Monoclonal antibody (SS19C) ” was reacted.
  • Prestin monomers, multimers, or degradation products contained in the sample (serum of healthy subjects) based on the presence or absence of light emission on these polyvinyl difluoride films and their emission position (molecular weight) It was confirmed.
  • the pattern on the left shows a polyvinyl difluoride film in the presence of a reducing agent using a sample processing solution (containing a reducing agent) during the electrophoresis treatment
  • the pattern on the right shows the electrophoresis treatment described above.
  • membrane when a reducing agent does not exist is sometimes shown using a sample processing liquid (it does not contain a reducing agent).
  • the lane when the amount of serum of a healthy person added to the tube in (1) above (7) is 100 ⁇ L (indicated as “100 ⁇ L”), the above (7 )
  • the lane when the amount of serum of a healthy person added to the tube in (1) above is 25 ⁇ L
  • a thick band seen from the vicinity of the 150 KDa molecular weight marker to the high molecular weight side represents a periostin multimer (presumed to be a periostin dimer from the molecular weight), and a molecular weight of 75 KDa.
  • the thick band near the marker represents the monomer of periostin by its molecular weight
  • the thick band near the 37 KDa molecular weight marker represents the degradation product of periostin by its molecular weight.
  • the lane indicated as “100 ⁇ L”) when the amount of the serum of the healthy person added to the tube in the above (7) is 100 ⁇ L, the above (7) )
  • the lane when the amount of serum of a healthy person added to the tube in (1) above is 25 ⁇ L ( Lane expressed as “25 ⁇ L”) and the standard sample (mixture of periostin monomer, multimer, and degradation product) in (2) in (2) above (referred to as “standard sample”) ).
  • the thick band seen from the vicinity of the 250 KDa molecular weight marker to the high molecular weight side represents a periostin multimer (presumed to be a periostin trimer from its molecular weight), and has a 75 KDa
  • the thick band near the molecular weight marker represents the monomer of periostin by its molecular weight
  • the thick band near the molecular weight marker of 37 KDa represents the degradation product of periostin by its molecular weight.
  • the periostin (monomer, multimer, or degradation product) contained in the serum of these pulmonary fibrosis sufferers or healthy subjects was treated as follows: ““ The anti-periostin bound to NHS-activated Sepharose ” Monoclonal antibody (SS19C) "and” conjugate of periostin monomer, multimer or degradation product contained in sample (serum of pulmonary fibrosis sufferer or healthy person) ", ie ““ NHS-activated Sepharose ”—“ Anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) ”—“ periostin monomer, multimer or degradation product contained in the sample (the serum of a pulmonary fibrosis-affected or healthy person) ” Each of the conjugates was prepared.
  • molecular weight markers [Precision Plus Protein All Blue Standards markers; marker molecular weights 10 KDa, 15 KDa, 20 KDa, 25 KDa, 37 KDa, 50 KDa, 75 KDa, 100 KDa, 150 KDa, and 250 KDa; Samples were prepared as follows.
  • the electrophoresis was performed as described in (1) -2 (3) (a) to (g) except for the following items (a) and (b).
  • Periostin monomer, multimer or degradation product contained in the sample (serum of pulmonary fibrosis sufferer or healthy person) in the presence of a reducing agent using (containing a reducing agent) has its molecular weight
  • the gel was obtained by positioning according to
  • a lane when a molecular weight marker is used as a sample (denoted as “MM”), a lane when a healthy person's serum is used as a sample (“healthy person”) Lane), lane when the serum of the first patient with pulmonary fibrosis is used as a sample (indicated as “1” with pulmonary fibrosis), lane when the serum of the second patient with pulmonary fibrosis is used as a sample (Indicated as “2” with pulmonary fibrosis), a lane (labeled as “3 with pulmonary fibrosis”) when using the serum of a third person with pulmonary fibrosis, and a standard sample (one periostin)
  • the thick band near the 150 KDa molecular weight marker represents a periostin multimer (presumed to be a periostin dimer from its molecular weight), and the thick band near the 75 KDa molecular weight marker is The molecular weight represents a monomer of periostin, and the thick band near the 37 KDa molecular weight marker represents the degradation product of periostin by its molecular weight.
  • each band in the sample of the pulmonary fibrosis patient is the value of the sample of the pulmonary fibrosis patient when the emission intensity of the corresponding band of the healthy sample is 1.0. It represents the relative value (relative ratio) of the emission intensity of each band.
  • the relative value (relative ratio) in the serum samples of three patients with pulmonary fibrosis is 2.1 to 4.0 in the band of the degradation product, and the serum samples of pulmonary fibrosis patients
  • the amount of the degradation product of periostin is more than twice that of the serum sample of a healthy subject, and it can be seen that the amount of the degradation product of periostin is significantly higher in those suffering from pulmonary fibrosis than in the healthy subject.
  • Example 10 (Measurement of periostin in human serum-1) Periostin in human serum was measured, and the effects of the antibody of the present invention, measurement method, measurement reagent, accuracy improvement method and pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia testing method were confirmed.
  • periostin concentration was measured and determined as follows by an enzyme immunoassay (ELISA method) using an anti-periostin monoclonal antibody.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS18A) obtained in Example 3 (an antibody that recognizes and binds to the R1 region of periostin; recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products)
  • Antibody) phosphate buffered saline (PBS) [137 mM sodium chloride, 2.68 mM potassium chloride, 1.47 mM potassium dihydrogen phosphate, and 8.04 mM disodium hydrogen phosphate. (PH 7.4)] was diluted to 2 ⁇ g / mL, and 100 ⁇ L was injected into each well of a 96-well microtiter plate (Thermo Fisher Scientific Inc., Illinois, USA), then 18 ° C. at 25 ° C. Let stand for a while, "Anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” was immobilized on each well of the microtiter plate.
  • washing solution-2 phosphate buffered saline (PBS) containing 0.05% Tween 20.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” obtained in Example 2 (an antibody that recognizes and binds to the R4 region of periostin; although it can recognize and bind to the periostin monomer and multimer, periostin
  • the POD-labeled anti-periostin monoclonal antibody labeled with peroxidase (POD) bound to an antibody that cannot recognize and bind to the degradation product of (4) is diluted to 50 ng / mL with the sample diluent of (4) above. 100 ⁇ L of the solution was injected into each well of the microtiter plate of (5) and allowed to stand at 25 ° C. for 90 minutes for reaction.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS17B) labeled with POD was bound to periostin bound to the above-mentioned solid-phased “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”.
  • POD substrate solution [containing 0.8 mM 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMBZ), 2.5 mM hydrogen peroxide, and 30 mM disodium hydrogen phosphate
  • TMBZ 5,5′-tetramethylbenzidine
  • disodium hydrogen phosphate 30 mM disodium hydrogen phosphate
  • periostin in human serum was measured as follows. 1. Samples [1] (1) to (3) of human serum were used as samples.
  • periostin in human serum was measured as follows. 1. Samples [1] (1) to (3) of human serum were used as samples.
  • periostin concentration was measured and determined as follows by an enzyme immunoassay (ELISA method) using an anti-periostin monoclonal antibody.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) obtained in Example 5 (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; recognizes and binds to any monomer, multimer, and degradation product of periostin) Antibody) phosphate buffered saline (PBS) [137 mM sodium chloride, 2.68 mM potassium chloride, 1.47 mM potassium dihydrogen phosphate, and 8.04 mM disodium hydrogen phosphate. (PH 7.4)] was diluted to 2 ⁇ g / mL, and 100 ⁇ L was injected into each well of a 96-well microtiter plate (Thermo Fisher Scientific Inc., Illinois, USA), then 18 ° C. at 25 ° C. Allowed to stand for "anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) Was immobilized on each well of the microtiter plate.
  • PBS phosphate buffered saline
  • washing solution-2 phosphate buffered saline (PBS) containing 0.05% Tween 20.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” obtained in Example 4 an antibody that recognizes and binds to the R3 region of periostin; although it can recognize and bind to the periostin monomer and degradation product, periostin
  • the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody labeled with biotin bound to the antibody capable of recognizing and binding the multimers of the above is diluted to 50 ng / mL with the sample diluent of (4) above, and 100 ⁇ L thereof is diluted.
  • the solution was poured into each well of the microtiter plate of (5) and allowed to stand at 25 ° C. for 90 minutes to carry out the reaction.
  • biotin-labeled “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” was bound to periostin bound to the solid-phased “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)”.
  • peroxidase (POD) -labeled streptavidin (Stereospecific Detection Technologies, Germany) is diluted with a diluent (50 mM Tris (hydroxyl) containing 0.5% casein and 100 mM sodium chloride.
  • Methyl) aminomethane buffer [Tris buffer] (pH 8.0)] was diluted 15,000 times, and 100 ⁇ L thereof was injected into each well of the microtiter plate of (7), and the mixture was incubated at 25 ° C. for 60 minutes. The reaction was allowed to stand.
  • POD substrate solution [containing 0.8 mM 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMBZ), 2.5 mM hydrogen peroxide, and 30 mM disodium hydrogen phosphate 100 ⁇ L of 20 mM citrate buffer solution (pH 3.9)] was injected into each well of the microtiter plate of (8) above, and allowed to stand at 25 ° C. for 10 minutes to cause the reaction to develop color.
  • TMBZ 5,5′-tetramethylbenzidine
  • disodium hydrogen phosphate 100 ⁇ L of 20 mM citrate buffer solution (pH 3.9)
  • the horizontal axis represents the distinction of the measured sample, and the vertical axis represents the measured value (ng / mL) of the periostin concentration in the sample.
  • Each “ ⁇ ” plotted in this figure represents a measured value of the concentration of periostin contained in each sample.
  • the cut-off values were 82 ng / mL for “measurement by the prior art”, 136 ng / mL for “measurement by the present invention-A”, and “measurement by the present invention”.
  • -B was set to 14 ng / mL.
  • the line drawn parallel to the horizontal axis represents the cutoff value.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS18A) that recognizes and binds to the R1 region of periostin is used as a solid-phase antibody
  • anti-periostin monoclonal antibody that recognizes and binds to the R4 region of periostin The anti-periostin monoclonal antibody (SS18A) that recognizes and binds the R1 region of periostin to the measurement result of “measurement by the prior art” in [1] using “SS17B)” as a labeled antibody.
  • EMI region of periostin R1 region
  • R2 region and R3 region of periostin or a degradation product thereof EMI region of periostin, R1 region
  • the sensitivity of the measurement can be improved and the accuracy of the measurement can be improved It was confirmed that.
  • the sensitivity of the measurement can be improved and the accuracy of the measurement can be improved. It was confirmed that.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia improves the sensitivity or specificity of the measurement, improves the accuracy of the measurement, and provides an accurate periostin measurement value. It can be obtained and can improve the discrimination between a person suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia and a person suffering from a healthy person or another disease, and prevent misdiagnosis. It was confirmed.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS17B) that recognizes and binds to the R1 region of periostin is used as a solid phase antibody
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS17B) recognizes and binds to the R4 region of periostin.
  • the anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) that recognizes and binds to the EMI region of periostin is used as a solid-phase antibody.
  • an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof and does not bind to a periostin multimer is used.
  • the sensitivity of the measurement can be greatly improved, and It was confirmed that the specificity of the measurement can be improved and the accuracy of the measurement can be improved.
  • periostin according to the present invention which can bind to a degradation product of periostin and does not bind to a multimer of periostin, the sensitivity of the measurement can be greatly improved, It was also confirmed that the specificity of the measurement can be improved and the accuracy of the measurement can be improved.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia which uses an antibody that can bind to a degradation product of periostin and does not bind to a multimer of periostin, Significantly improve specificity, improve measurement accuracy, and obtain accurate periostin measurement values, including those suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia, healthy subjects, and others It was confirmed that it was possible to further improve the discrimination from those suffering from this disease and prevent misdiagnosis.
  • Example 11 (ROC analysis of measurement results of periostin in human serum) Periostin in human serum was measured, and a ROC curve (receiver operating characteristic curve) as a result of the measurement was prepared and analyzed.
  • Negative samples Serum of healthy subjects (66 cases in total) was used as a negative sample.
  • periostin concentration was measured and determined as follows by an enzyme immunoassay (ELISA method) using an anti-periostin monoclonal antibody.
  • biotin-labeled “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” was bound to periostin bound to the solid-phased “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”.
  • POD substrate solution [containing 0.8 mM 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMBZ), 2.5 mM hydrogen peroxide, and 30 mM disodium hydrogen phosphate 100 ⁇ L of 20 mM citrate buffer (pH 3.9)] was injected into each well of the microtiter plate of (h) and allowed to stand at 25 ° C. for 10 minutes to cause the reaction to develop color.
  • TMBZ 5,5′-tetramethylbenzidine
  • disodium hydrogen phosphate 100 ⁇ L of 20 mM citrate buffer (pH 3.9)
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” (periostin) obtained in Example 4 above.
  • the ROC curve was created by subtracting the measurement result in “Measurement by conventional technology-b” in (4) from the measurement result in “Measurement by the present invention-b” in (3).
  • the measurement result of (3) above which can measure the monomer and degradation product of periostin
  • the measurement result of (4) above which can measure only the monomer of periostin
  • the measurement result of (4) above which can measure only the monomer of periostin
  • Results (1) As described above, the measurement of the concentration of periostin contained in each of a positive sample composed of sera of patients suffering from pulmonary fibrosis and interstitial pneumonia (derived from collagen disease) and a negative sample composed of sera of healthy individuals FIG. 11 shows all the ROC curves created from the results.
  • each ROC curve in this figure represents the value of “1-specificity” in this measurement, and the vertical axis represents “sensitivity” in this measurement.
  • the value of this AUC represents the area under the ROC curve (Area Under the Curve), and the larger this AUC value, the more the measurement is performed.
  • the sensitivity and specificity are high, that is, the measurement accuracy is high, which is preferable in the measurement.
  • the ROC curve in “Measurement by conventional technology-b” in 2 (4) above that is, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” that recognizes and binds the R3 region of periostin as a solid-phased antibody is used.
  • the anti-periostin monoclonal antibody (SS17B) which recognizes and binds to the R4 region of periostin as a labeled antibody, detects the R3 and R4 regions of periostin, and only periostin monomer
  • the calculated AUC value was 0.681.
  • a region other than “periostin EMI region, R1 region, R2 region or R3 region” is detected, that is, R4 region and / or C-terminal region of periostin is detected, and a periostin degradation product is detected.
  • AUC 0.850
  • ROC curve of “measurement according to the present invention—a” in the above (2) is used (that is, the degradation product of periostin can be measured).
  • UC 0.856
  • ROC curve (AUC 0.972) of “Measurement according to the present invention—b” in 2 (3) above, and “Measurement according to the present invention—c” of 2 (5) above.
  • an antibody that binds to a periostin degradation product and does not bind to a periostin multimer that is, although a periostin degradation product can be measured, a periostin multimer cannot be measured
  • the increase in the AUC value is remarkable, and it can be seen that the sensitivity and specificity of the measurement, that is, the accuracy of the measurement is greatly improved.
  • the periostin measurement method, the periostin measurement reagent, and the periostin measurement accuracy improvement method of the present invention improve the measurement sensitivity or specificity, and improve the measurement accuracy. It was confirmed that it was possible.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia improves the sensitivity or specificity of the measurement, improves the accuracy of the measurement, and provides an accurate periostin measurement value. It can be obtained and can improve the discrimination between a person suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia and a person suffering from a healthy person or another disease, and prevent misdiagnosis. It was confirmed.
  • Example 12 (Measurement of periostin in human serum-2) Periostin in human serum was measured, and the effects of the antibody of the present invention, measurement method, measurement reagent, and accuracy improvement method were confirmed.
  • Negative samples (54 cases in total) Serum of healthy subjects (a total of 54 cases) was used as a negative sample.
  • periostin concentration was measured and determined as follows by an enzyme immunoassay (ELISA method) using an anti-periostin monoclonal antibody.
  • biotin-labeled “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” was bound to periostin bound to the solid-phased “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”.
  • POD substrate solution [containing 0.8 mM 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMBZ), 2.5 mM hydrogen peroxide, and 30 mM disodium hydrogen phosphate 100 mM of 20 mM citrate buffer (pH 3.9)] was injected into each well of the microtiter plate of (h) and allowed to stand at 25 ° C. for 10 minutes to cause the reaction to develop color.
  • TMBZ 5,5′-tetramethylbenzidine
  • disodium hydrogen phosphate 100 mM of 20 mM citrate buffer (pH 3.9) was injected into each well of the microtiter plate of (h) and allowed to stand at 25 ° C. for 10 minutes to cause the reaction to develop color.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” (periostin) obtained in Example 4 above.
  • Anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) was obtained in Example 4 instead of “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”.
  • Anti-periostin mono Ronal antibody (SS19A) (an antibody that recognizes and binds to the R4 region of periostin; an antibody that can recognize and bind to the periostin monomer and multimer, but cannot recognize and bind to a periostin degradation product) Except for the two cases described above, the measurement and treatment were performed as described in (a) to (m) of (1) above, and the concentration of periostin contained in each sample was determined.
  • Anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) above was obtained in Example 6 instead of “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”.
  • Anti-periostin mono Ronal antibody (SS21A) (an antibody that recognizes and binds to the C-terminal region of periostin; an antibody that can recognize and bind to the periostin monomer and multimer, but cannot recognize and bind to a periostin degradation product)
  • the measurement and treatment were performed as described in (a) to (m) of (1) above, and the concentration of periostin contained in each sample was determined.
  • anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) was obtained in Example 5 in place of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”.
  • Anti-periostin mono except for two other things, it is referred to as “Ronal antibody (SS20A)” (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomer, multimer and degradation product). Measurement and treatment were performed as described in (1) (a) to (m), and the concentration of periostin contained in each sample was determined.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS16A) (an antibody that recognizes and binds to the R3 region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” (periostin) obtained in Example 3 above.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS19C) (an antibody that recognizes and binds to the R2 region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)” (periostin) obtained in Example 4 above.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)” (periostin) obtained in Example 4 above.
  • Measurement and treatment were performed as described in m), and the concentration of periostin contained in each sample was determined.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) (an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of periostin monomers, multimers, and degradation products), and (1
  • the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) is replaced with “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” and “anti-periostin monoclonal antibody (SS21A)” (periostin) obtained in Example 6 above.
  • FIG. 12 schematically shows which region of periostin is recognized in each of these measurements.
  • the EMI region of periostin is denoted as “EMI”
  • the R1 region is denoted as “R1”
  • the R2 region is denoted as “R2”
  • the R3 region is denoted as “R3”
  • the R4 region is denoted as R4 region.
  • R4 and the C-terminal region as “C-ter”.
  • the region where the lower “Y” mark is bound indicates the region of periostin that is recognized and bound (ie, detected) by the immobilized antibody used in the measurement
  • the region where the upper “Y” mark is bonded indicates the region of periostin recognized and bound (ie, detected) by the labeled antibody used in the measurement.
  • the region surrounded by the bold line indicates the region recognized and bound (ie, detected) by the immobilized antibody and the labeled antibody, and the region sandwiched between these regions.
  • the horizontal axis represents the distinction of the sample in which the measurement was performed, and the vertical axis represents the measured value (ng / mL) of the periostin concentration in the sample.
  • Each “ ⁇ ” plotted in this figure represents the value of the periostin concentration contained in each sample.
  • the cutoff value was set to a concentration at which the specificity exceeds 98% and the sensitivity is the highest.
  • the line drawn parallel to the horizontal axis represents the level of the average value (ng / mL) of the measured value of periostin concentration contained in each sample.
  • the immobilized antibody and labeled antibody used in the measurements of (2) to (13) above, the periostin region detected by the immobilized antibody, and the labeled antibody are detected.
  • Periostin region whether the periostin that can be measured by the measurement is a monomer, multimer or degradation product, sensitivity of measurement, specificity of measurement, positive sample against the average value of negative sample
  • the ratio of the average value of the measured values (“average value of the measured value of the positive sample” ⁇ “average value of the measured value of the negative sample”; that is, the degree of increase in the measured value of the positive sample relative to the measured value of the negative sample), “AUC value of the created ROC curve” is shown in FIG.
  • EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof EMI region, R1 region, R2 region of periostin And R3 region is not detected, that is, when the degradation product of periostin cannot be measured [(1), (4), (5), (6), (9), (12) above In the case of measurement of (13) and (13)], “sensitivity of measurement” is 7.7% to 61.5% (average value: 35.7%), and “specificity of measurement” is 98.1.
  • EMI region of periostin R1 region
  • R2 region that is, when a degradation product of periostin can be measured [(2), (3), (7), (2) above 8), (10), and (11) in the measurement]
  • the “sensitivity of measurement” is 73.1% to 96.2% (average value: 80.8%).
  • “Degree” is 98.1%, “the ratio of the average value of the positive sample to the average value of the negative sample” (“the average value of the positive sample” ⁇ “the value of the negative sample Mean value; ie, measured value of negative sample The degree of increase in the measured value of the positive sample is 1.8 times to 7.7 times (average value: 4.8 times), and the “ROC curve AUC value” is 0.912 to 0.994 (average) Value: 0.943).
  • an antibody other than “an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof” Compared to the case of use, “sensitivity of measurement”, “ratio of average value of positive sample value to average value of negative sample value” (“average value of positive sample value” ⁇ “negative sample value” Both the “average value of the measured values”; that is, the degree of increase in the measured value of the positive sample relative to the measured value of the negative sample) and the “AUC value of the ROC curve” are both increased and improved. Ri, it is understood that accuracy of the measurement is improved.
  • an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region, and R3 region of periostin or a degradation product thereof and does not bind to a periostin multimer When at least one region selected from the group consisting of the EMI region, R1 region, R2 region and R3 region is detected, the periostin degradation product can be measured, and the periostin multimer is not measured [the above-mentioned In the case of the measurement of (3), (7) and (10) of 2], the “measurement sensitivity” is 73.1% to 96.2% (average value: 83.4%).
  • the “specificity of the measurement” is 98.1%, and “the ratio of the average value of the positive sample to the average value of the negative sample” (“the average value of the positive sample” / “the negative sample”) Flatness of measured value Value ”; that is, the degree of increase in the measured value of the positive sample relative to the measured value of the negative sample) is 5.8 times to 7.7 times (average value: 7.1 times), and“ the AUC value of the ROC curve ” was 0.914 to 0.994 (average value: 0.950).
  • the method for measuring periostin, the reagent for measuring periostin, and the method for improving the accuracy of periostin measurement according to the present invention improve the sensitivity of measurement in measuring periostin contained in a sample, thereby improving the accuracy of measurement. It was confirmed that it can be improved.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia improves the sensitivity or specificity of the measurement, improves the accuracy of the measurement, and provides an accurate measured value of periostin. It can be obtained and can improve the discrimination between a person suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia and a person suffering from a healthy person or another disease, and prevent misdiagnosis. It was confirmed.
  • Example 13 (Measurement of periostin in a sample) Periostin was measured for a sample whose periostin concentration was known, and a standard curve (calibration curve) was prepared.
  • Sample diluent not containing periostin 50 mM tris (hydroxymethyl) aminomethane buffer [Tris buffer] containing 0.5% casein, 100 mM sodium chloride, and 0.1% sodium azide (PH 8.0)] was used as a sample (standard sample) in which the periostin concentration in the following (1) was 0 ng / mL.
  • Standard sample-1 (periostin concentration: 0 ng / mL) (2) Standard sample-2 (periostin concentration: 0.125 ng / mL) (3) Standard sample-3 (periostin concentration: 0.25 ng / mL) (4) Standard sample-4 (periostin concentration: 0.5 ng / mL) (5) Standard sample-5 (periostin concentration: 1.0 ng / mL) (6) Standard sample-6 (periostin concentration: 2.0 ng / mL)
  • Measurement using conventional technology -7 (1) Measurement by conventional technology-1 (2) Measurement by the present invention-1 (3) Measurement-2 according to the present invention (4) Measurement by conventional technology-2 (5) Measurement by conventional technology-3 (6) Measurement by conventional technology-4 (7) Measurement according to the present invention-3 (8) Measurement according to the present invention-4 (9) Measurement by conventional technology-5 (10) Measurement by the present invention-5 (11) Measurement according to the present invention-6 (12) Measurement by conventional technology-6 (13) Measurement using conventional technology -7
  • the horizontal axis represents the periostin concentration (ng / mL) in the sample
  • the vertical axis represents the absorbance ( ⁇ OD) at 450 nm of each sample obtained by measurement.
  • each standard curve (calibration curve) prepared in this example is the periostin concentration in the sample. It can be seen that the obtained absorbance increases as the value increases, and has quantitativeness.
  • the method for measuring periostin and the reagent for measuring periostin of the present invention can accurately measure periostin in a sample.
  • Example 14 (Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-seventh time) At a different time from Example 1, Example 2, Example 3, Example 4, Example 5, and Example 6, the operations were performed as described in (1) to (4) of Example 1. An anti-periostin monoclonal antibody was prepared. (7th)
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)”) was obtained from the SS25A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 15 Preparation of anti-periostin monoclonal antibody-8th time
  • Example 2 Example 3, Example 4, Example 5, Example 6, and Example 14.
  • an anti-periostin monoclonal antibody was prepared.
  • anti-periostin monoclonal antibody (hereinafter referred to as “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)”) was obtained from the SS27A monoclonal antibody-producing cell line.
  • Example 16 (Confirmation of recognition site of anti-periostin monoclonal antibody)
  • Each of the anti-periostin monoclonal antibodies obtained in Example 14 and Example 15 was operated as described in 1 (1) to (8) of Example 7, and these anti-periostin monoclonal antibodies were converted to periostin. We confirmed which area of the worm was recognized.
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)” obtained in Example 14 is the “periostin”, “partial periostin (R1 and R2 region)”, “part” of the above-described periostin and partial periostin. It binds only to “periostin (R2 region)” and “partial periostin (R1, R2, R3 region)”, and “partial periostin (R4 region)”, “partial periostin (EMI region)” and “partial periostin (C-terminal region)”. It was confirmed that they were not bound to any of the above. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)” recognizes the R2 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • the “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)” obtained in Example 15 is the “periostin”, “partial periostin (R1 and R2 region)” of the above periostin and partial periostin and It binds only to “partial periostin (R1, R2, R3 region)”, “partial periostin (R2 region)”, “partial periostin (R4 region)”, “partial periostin (EMI region)” and “partial periostin (C-terminal). It was confirmed that it was not bound to any of the “regions” ”. From this, it was confirmed that the “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)” recognizes the R1 region of periostin as an antigen recognition part (epitope).
  • Example 17 (Confirmation of reactivity of anti-periostin monoclonal antibody) About each of the anti- periostin monoclonal antibody acquired in the said Example 14 and Example 15, the reactivity with the monomer of a periostin, a multimer, and each degradation product was confirmed.
  • the molecular weight marker lane (indicated as “MM”), the periostin lane recognized by and bound to the “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” (indicated as “18A”), and the “anti-periostin in order from the left lane.
  • the thick band located between the 150 KDa and 250 KDa molecular weight markers represents the periostin multimer (presumed to be a periostin trimer from its molecular weight) and is near the 75 KDa molecular weight marker.
  • the thick band seen from the high molecular weight side represents the monomer of periostin by its molecular weight
  • the thick band near the 37 KDa molecular weight marker represents the degradation product of periostin by its molecular weight.
  • the SS25A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of this “anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (Kazusa-Kamashita 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5 No. 8) is deposited on March 16, 2012 as “Reception Number: NITE AP-1285”.
  • the SS27A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan 5 No. 8) is deposited on March 16, 2012 as “Reception Number: NITE AP-1286”.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)” showed color development at any position showing a multimer, a monomer and a degradation product of periostin. It was confirmed that both the multimer, the monomer and the degradation product were recognized and bound.
  • anti-periostin monoclonal antibody shows color development at positions showing periostin multimers and monomers, but no color development at positions showing periostin degradation products. More periostin multimers and monomers were recognized and bound, but periostin degradation products were not recognized and confirmed not to bind.
  • Anti-periostin monoclonal antibody shows color development at the position showing the periostin monomer and degradation product, but no color development at the position showing the periostin multimer. More periostin monomers and degradation products were recognized and bound, but periostin multimers were not recognized and were confirmed not to bind.
  • Example 18 (Measurement of periostin in human serum and ROC analysis of measurement results) Periostin in human serum was measured to confirm the effect of the present invention, and a ROC curve (receiver operating characteristic curve) as a measurement result was prepared and analyzed.
  • Negative samples 64 cases in total Serum from healthy subjects (64 cases in total) was used as a negative sample.
  • periostin concentration was measured and determined as follows by an enzyme immunoassay (ELISA method) using an anti-periostin monoclonal antibody.
  • anti-periostin monoclonal antibody obtained in Example 4 above instead of “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)” instead of the anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) (SS19D) (An antibody that recognizes and binds to the R3 region of periostin; an antibody that can recognize and bind to a periostin monomer and degradation product, but cannot recognize and bind to a periostin multimer) Except for the above, the measurement and treatment were carried out as described in 2 (1) (a) to (n) of Example 11, the concentration of periostin contained in each sample was determined, and the ROC curve was obtained. Created.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)” obtained in Example 14 an antibody that recognizes and binds to the R2 region of periostin; although it can recognize and bind to a periostin monomer and a degradation product
  • an anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) above instead of “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”, “5” obtained in Example 5
  • peripheral antibody (SS20A) an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of the monomer, multimer and degradation product of periostin
  • Measurement and processing were performed as described in (1) (a) to (n) of Example 11-2 (1), the concentration of periostin contained in each sample was determined, and an ROC curve was prepared.
  • Anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)” obtained in Example 15 an antibody that recognizes and binds to the R1 region of periostin; although it can recognize and bind to the periostin monomer and degradation product
  • an anti-periostin monoclonal antibody of the biotin-labeled anti-periostin monoclonal antibody in (f) of (1) above instead of “anti-periostin monoclonal antibody (SS17B)”, “5” obtained in Example 5
  • peripheral antibody (SS20A) an antibody that recognizes and binds to the EMI region of periostin; an antibody that recognizes and binds to any of the monomer, multimer and degradation product of periostin
  • Measurement and processing were performed as described in (1) (a) to (n) of Example 11-2 (1), the concentration of periostin contained in each sample was determined, and an ROC curve was prepared.
  • each ROC curve in this figure represents the value of “1-specificity” in this measurement, and the vertical axis represents “sensitivity” in this measurement.
  • the value of this AUC represents the area under the ROC curve (Area Under the Curve), and the larger this AUC value, the more the measurement is performed.
  • the sensitivity and specificity are high, that is, the measurement accuracy is high, which is preferable in the measurement.
  • the ROC curve in “Measurement according to the present invention— (i)” of ⁇ 2> above that is, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)” that recognizes and binds to the EMI region of periostin as a solid-phased antibody. , which detects and binds to the R3 region of periostin as a labeled antibody, detects the EMI region and R3 region of periostin, and is a monomer of periostin
  • the calculated AUC value was 0.984.
  • anti-periostin monoclonal antibody (SS20A) that recognizes and binds to the EMI region of periostin as a labeled antibody, and detects the R2 region and EMI region of periostin, and a monomer of periostin
  • the calculated AUC value was 0.957.
  • the ROC curve in “Measurement according to the present invention— (iii)” in ⁇ 4> of 2 above that is, “Anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)” that recognizes and binds the R1 region of periostin as a solid-phased antibody.
  • SS27A Anti-periostin monoclonal antibody
  • the calculated AUC value was 0.993.
  • a region other than “periostin EMI region, R1 region, R2 region or R3 region” is detected, that is, R4 region and / or C-terminal region of periostin is detected, and a degradation product of periostin is obtained.
  • the periostin measurement method, the periostin measurement reagent, and the periostin measurement accuracy improvement method of the present invention improve the measurement sensitivity or specificity, and improve the measurement accuracy. It was confirmed that it was possible.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia improves the sensitivity or specificity of the measurement, improves the accuracy of the measurement, and provides an accurate periostin measurement value. It can be obtained and can improve the discrimination between a person suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia and a person suffering from a healthy person or another disease, and prevent misdiagnosis. It was confirmed.
  • Measurement ⁇ 1> Measurement by Prior Art Measurement and treatment were performed as described in ⁇ 1> of ⁇ 1> above, and the concentration of periostin contained in each sample was determined.
  • the “specificity of measurement” is 98.4%, “the ratio of the average value of the measurement value of the positive sample to the average value of the measurement value of the negative sample” (“average value of the measurement value of the positive sample” ⁇ “negative”
  • the “average value of the measured values of the sample”; that is, the degree of increase in the measured value of the positive sample relative to the measured value of the negative sample) was 2.8 times, and the “AUC value of the ROC curve” was 0.872.
  • an antibody that binds to at least one region selected from the group consisting of EMI region, R1 region, R2 region and R3 region of periostin or its degradation product and does not bind to a multimer of periostin is used.
  • the “sensitivity of measurement” is 71.8% to 92.3% (average value: 81.2%) Yes
  • the “specificity of measurement” is 98.4%
  • the ratio of the average value of the positive sample to the average value of the negative sample (“the average value of the positive sample” ⁇ “ Negative sample measurement Mean value of the positive sample relative to the negative sample value) is 3.6 times to 16.1 times (mean value: 8.6 times). The value was 0.957 to 0.993 (average value: 0.978).
  • the periostin measurement method, the periostin measurement reagent, and the periostin measurement accuracy improvement method of the present invention improve the measurement sensitivity and the like in the measurement of periostin contained in a sample, thereby improving the measurement accuracy. It was confirmed from the above that it was possible.
  • the method for examining pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia can improve the measurement sensitivity or specificity, improve the measurement accuracy, and obtain an accurate measurement value of periostin. It is possible to improve the discrimination between those suffering from pulmonary fibrosis or interstitial pneumonia and those suffering from healthy subjects and other diseases, and prevent misdiagnosis. It was confirmed from that.
  • the SS19D strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19D)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu, Chiba, Japan).
  • NITE P-1068 As “Accession number: NITE P-1068” on February 22, 2011.
  • the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (2-5 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) No. 8) applied for transfer from domestic deposit to international deposit on February 7, 2012, and was transferred to international deposit.
  • NITE BP-1068 accession in the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology
  • the SS16A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS16A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1281” dated March 16, 2012. Regarding the anti-periostin monoclonal antibody (SS16A), the monoclonal antibody-producing cell line SS16A, the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu-shi, Chiba, Japan) No. 8) was applied for transfer from domestic deposit to international deposit on July 19, 2012, and transferred to international deposit. [Transfer date: July 19, 2012] (Accession number: NITE BP-1281)
  • the SS18A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS18A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1282” dated March 16, 2012.
  • the SS19C strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS19C)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu, Chiba, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1283” dated March 16, 2012.
  • the SS20A strain a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS20A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu, Chiba, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1284” dated March 16, 2012. Regarding the anti-periostin monoclonal antibody (SS20A), the SS20A strain, which is a monoclonal antibody-producing cell line, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation Technology (Kazusa-Kamazu 2-chome, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) No. 8) was applied for transfer from domestic deposit to international deposit on July 19, 2012, and transferred to international deposit. [Transfer date: July 19, 2012] (Accession number: NITE BP-1284)
  • the SS25A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS25A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1285” dated March 16, 2012.
  • the SS27A strain which is a monoclonal antibody-producing cell line of the “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)”, is the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-8-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu, Chiba, Japan). ) As “Receipt Number: NITE AP-1286” on March 16, 2012. Regarding the SS27A strain, which is a monoclonal antibody-producing cell line of this “anti-periostin monoclonal antibody (SS27A)”, the Patent Microorganism Depositary Center of the National Institute for Product Evaluation and Technology (2-5 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) No. 8) was applied for transfer from domestic deposit to international deposit on July 19, 2012, and transferred to international deposit. [Transfer date: July 19, 2012] (Accession number: NITE BP-1286)

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Abstract

　本発明は、試料に含まれるペリオスチンの測定における、正確性が改善された測定方法及び測定試薬、並びに測定の正確性の改善方法、並びに正確性が改善された肺線維症又は間質性肺炎の検査方法を提供する。　本発明の抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合するものである。　また、本発明のペリオスチンの測定方法及び測定試薬、並びにペリオスチン測定の正確性の改善方法は、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とするものである。　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、ａ）　被験者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを含む工程、及びｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する工程、を含むものである。

Description

ペリオスチンの特定領域に結合する抗体及びこれを用いたペリオスチンの測定方法
　本発明は、アレルギー疾患や他の疾患のマーカーとなりうるペリオスチン（骨芽細胞特異因子２又はＯＳＦ２とも呼ばれる）の特定領域に結合する抗体、この抗体を用いる試料に含まれるペリオスチンの測定方法、測定試薬及び正確性の改善方法、並びに肺線維症又は間質性肺炎の検査方法に関するものである。
　本発明は、臨床検査、臨床病理学、免疫学及び医学などの生命科学分野、並びに分析化学などの化学分野等において有用なものである。
　ペリオスチンは、細胞外マトリックスタンパク質であり、そのＮ末端側よりＣ末端側にかけて順に、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域、Ｒ３領域、Ｒ４領域及びＣ末端領域よりなるものであるが、本発明者の一人である出原は、このペリオスチン遺伝子の発現レベルの測定がアレルギー性疾患の検査方法として有用であることを見出して、アレルギー疾患の検査方法の発明を完成させた（特許文献１及び非特許文献１参照。）。
　また、出原は、このペリオスチン遺伝子の発現レベルの測定が特発性間質性肺炎の検査方法としても有用であることを見出した（特許文献２参照。）。
　なお、他に、ＯＳＦ２（ペリオスチン）に対するポリクローナル抗体、モノクローナル抗体及びこれらの抗体を用いる診断方法等が開示され（特許文献３参照。）、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１と命名される新規造骨細胞特異的転写因子を測定するのに抗ＯＳＦ２（ペリオスチン）抗体を用いた免疫測定法が開示され（特許文献４参照。）、ヒトペリオスチンに対して特異的に結合する精製抗体及びこの抗体を用いる乳癌の骨への転移等を調べる診断アッセイ法等が開示され（特許文献５参照。）、そして、抗細胞接着活性を有するペリオスチンに対する抗体及びこの抗体を用いるペリオスチンの定量方法等が開示されている（特許文献６参照。）。
　しかしながら、このように種々の疾患の検査に有用なペリオスチンの測定においては、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別のため、測定の感度及び特異度等の正確性の改善が望まれていた。
国際公開第０２／０５２００６号パンフレット 国際公開第０９／１４８１８４号パンフレット 特開平５－２６８９８２号公報 特表２００２－５０２２５０号公報 特表２００５－５０００５９号公報 国際公開第０７／０７７９３４号パンフレット
Ｇ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ　Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１１８巻，９８～１０４頁，２００６年発行
　前述した、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定においては、その正確性は十分なものではなかった。
　このため、試料に含まれるペリオスチンの測定値を疾患の検査に利用しようとする場合、この疾患の診断を誤らせる可能性があった。
　従って、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定においては、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別のため、更なる正確性の改善が望まれていた。
　これに対して、本発明の課題は、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応等を利用した測定における、正確性が改善された測定方法及び測定試薬を提供すること、並びに測定の正確性の改善方法、並びに正確性が改善された肺線維症又は間質性肺炎の検査方法を提供することである。
　本発明者らは、試料に含まれるペリオスチンの測定について検討を重ねたところ、ペリオスチンの特定の領域を検出することにより、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は、以下の発明よりなる。
（１）ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体。
（２）ペリオスチンの分解物に結合する抗体である、上記（１）に記載の抗体。
（３）ペリオスチンの多量体に結合しない抗体である、上記（１）又は（２）に記載の抗体。
（４）抗体がモノクローナル抗体である、上記（１）～（３）のいずれかに記載の抗体。
（５）抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号１６で表されるアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号１８で表されるアミノ酸配列を含むものである、上記（４）に記載の抗体。
（６）受託番号がNITE BP-1281であるハイブリドーマSS16A株、受託番号がNITE BP-1282であるハイブリドーマSS18A株、受託番号がNITE BP-1283であるハイブリドーマSS19C株、受託番号がNITE BP-1068であるハイブリドーマSS19D株、受託番号がNITE BP-1284であるハイブリドーマSS20A株、受託番号がNITE BP-1285であるハイブリドーマSS25A株及び受託番号がNITE BP-1286であるハイブリドーマSS27A株からなる群から選ばれるいずれかのハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体。
（７）試料に含まれるペリオスチンの測定方法であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とする、前記方法。
（８）上記（１）～（６）のいずれかに記載の抗体を使用することを特徴とする、上記（７）に記載の方法。
（９）ペリオスチンがペリオスチン分解物である、上記（７）又は（８）に記載の方法。
（１０）ペリオスチンが多量体ではない、上記（７）～（９）のいずれかに記載の方法。
（１１）ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合する物質を含む、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定試薬。
（１２）前記物質が上記（１）～（６）のいずれかに記載の抗体である、上記（１１）に記載の試薬。
（１３）ペリオスチンがペリオスチン分解物である、上記（１１）又は（１２）に記載の試薬。
（１４）ペリオスチンが多量体ではない、上記（１１）～（１３）のいずれかに記載の試薬。
（１５）試料に含まれるペリオスチンの量又は濃度の測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とする、ペリオスチン測定の正確性の改善方法。
（１６）上記（１）～（６）のいずれかに記載の抗体を使用することを特徴とする、上記（１５）に記載の方法。
（１７）ペリオスチンがペリオスチン分解物である、上記（１５）又は（１６）に記載の方法。
（１８）ペリオスチンが多量体ではない、上記（１５）～（１７）のいずれかに記載の方法。
（１９）次の工程を含む、肺線維症又は間質性肺炎の検査方法。
ａ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを含む工程
ｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する工程
（２０）上記（１）～（６）のいずれかに記載の抗体を使用することを特徴とする、上記（１９）に記載の方法。
（２１）ペリオスチンがペリオスチン分解物である、上記（１９）又は（２０）に記載の方法。
（２２）ペリオスチンが多量体ではない、上記（１９）～（２１）のいずれかに記載の方法。
　本発明のペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（以下、「抗ペリオスチン特定領域抗体」ということがある。）は、ペリオスチンの又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるという特異性を有する抗体である。
　そして、この抗体は、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することに使用することができる抗体である。
　また、この抗体は、ペリオスチンの分解物に結合することができる抗体である。
　なお、本発明の抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）のうち、ペリオスチンの多量体に結合しない抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができ、かつペリオスチンの多量体には結合しないという特異性を有する抗体である。
　そして、この抗体は、ペリオスチンの分解物に結合することができ、かつペリオスチンの多量体には結合しない抗体である。
　更に、本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、ペリオスチン測定の正確性の改善方法、及び肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより、その測定の感度〔その測定における罹患者群での陽性率（真の陽性率）〕、又は特異度〔その測定における非罹患者群での陰性率（真の陰性率；すなわち、１－偽陽性率）〕等を向上させ、測定の正確性を改善することができるものである。
　これにより、本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、ペリオスチン測定の正確性の改善方法、及び肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、正確なペリオスチンの測定値を得ることができ、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものである。
調製し、取得したペリオスチン及び部分ペリオスチンを模式的に示した図である。 調製した、ペリオスチン、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）、及び部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）をＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法で確認した結果（ゲル）を示した写真である。 調製した、部分ペリオスチン（Ｒ４領域）、及び部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）をＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法及びウエスタンブロッティング法で確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体がペリオスチンのどの領域を認識しているかの確認結果を示した図である。 取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ株由来以外）のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物との反応性を確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ株由来）のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物との反応性を確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物との反応性を確認した結果をまとめた図である。 健常者の血清中のペリオスチンを免疫沈降、電気泳動及びウエスタンブロッティングの処理により確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 肺線維症罹患者の血清中のペリオスチンを免疫沈降、電気泳動及びウエスタンブロッティングの処理により確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果のＲＯＣ曲線を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定に用いた固相化抗体及び標識抗体がペリオスチンのどの領域を認識しているか等を模式的に示した図である。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果をまとめた図である。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 試料中のペリオスチン測定の検量線を示したグラフである。 取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ株由来、ＳＳ１９Ａ株由来、ＳＳ１９Ｄ株由来、ＳＳ２５Ａ株由来及びＳＳ２７Ａ株由来）のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物との反応性を確認した結果（ポリビニルジフルオライド膜）を示した写真である。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果のＲＯＣ曲線を示したグラフである。 ヒト血清中のペリオスチンの測定結果をまとめた図である。
　以下、本発明を詳細に説明する。以下の実施の形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明をこの実施の形態のみに限定する趣旨ではない。本発明は、その要旨を逸脱しない限り、様々な形態で実施をすることができる。
　本明細書において引用された全ての刊行物、例えば先行技術文献、公開公報、特許公報その他の特許文献は、参照として本明細書に組み込まれる。また、本明細書は、本願の優先権主張の基礎となる2011年9月6日に出願された日本国特許出願（特願2011-194323号）及び2012年3月29日に出願された日本国特許出願（特願2012-077774号）の明細書、特許請求の範囲及び図面に記載の内容を包含する。
〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体
１．抗体
　本発明における抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）である。
　すなわち、本発明の抗ペリオスチン特定領域抗体は、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定に使用することにより、測定の正確性を改善することができるものである。
　なお、本発明において、抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができる抗体であれば特に限定はない。
　この抗ペリオスチン特定領域抗体としては、例えば、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、抗血清、抗体の断片〔Ｆａｂ及びＦ(ａｂ’)２など〕、又は一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）等を挙げることができる。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体は、遺伝子組み換え技術等により免疫原を免疫する動物とは異なる動物種のアミノ酸配列に変化させた抗体（キメラ抗体、ヒト化抗体、又は完全ヒト化抗体等）であってもよい。
　そして、抗ペリオスチン特定領域抗体としては、モノクローナル抗体であることが好ましい。
　また、本発明においては、２種以上の、抗ペリオスチン特定領域抗体を用いてもよい。
　本発明の抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチンの分解物（「ペリオスチン分解物」とも称する）に結合する抗体である。
　本発明において、ペリオスチン分解物とは、配列番号２で表されるアミノ酸配列を有するペリオスチンから、少なくとも配列番号１４で表されるアミノ酸配列を有するC末端領域が欠損したポリペプチドを意味する。
　また、本発明のペリオスチン分解物には、例えば、配列番号２で表されるアミノ酸配列を有するペリオスチンから、少なくとも配列番号１４で表されるアミノ酸配列を有するC末端領域が欠損し、かつ配列番号１２で表されるアミノ酸配列を有するＲ４領域の全部又は一部が欠損したポリペプチドが含まれる。
　また、本発明のペリオスチン分解物には、例えば、配列番号２で表されるアミノ酸配列を有するペリオスチンから、少なくとも配列番号１４で表されるアミノ酸配列を有するC末端領域が欠損し、かつ配列番号１２で表されるアミノ酸配列を有するＲ４領域の全部が欠損し、かつ配列番号１０で表されるアミノ酸配列を有するＲ３領域の一部が欠損したポリペプチドも含まれる。
　本発明のペリオスチン分解物は、本発明者らが初めて見出したポリペプチドである。ペリオスチン分解物は、例えば、生体由来の試料に含まれるポリペプチドを本発明の抗体を用いて免疫学的手法により検出することにより、その存在を明確に確認することができる（図５、図９、図２６等）。
　ペリオスチン分解物としては、例えば、その分子量が約４万Ｄａ（約４０ｋＤａ）のものなどを挙げることができるが、これに限定されない。また、ペリオスチン分解物は、生体由来の試料に含まれるものが好ましい。
　本発明の抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの２量体、３量体、４量体又はそれ以上のペリオスチンの多量体に結合しない抗体であることが好ましい。
　すなわち、本発明における、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体は、測定の正確性の改善度が更に高いため好ましい。
２．免疫原
　本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体を産生させるための免疫原について、以下説明を行う。
　本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体を産生させるための免疫原として、ペリオスチンの全部又は一部を用いることができる。
　すなわち、ヒト等由来のペリオスチン、又は遺伝子組み換え操作により得たペリオスチン等のペリオスチンの全部又は一部を用いることができる。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体を産生させるための免疫原としては、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域の全部又は一部であることが好ましい。
　また、前記のペリオスチンの多量体には結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体を産生させるための免疫原としては、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域の全部又は一部であることが好ましい。
　前記のペリオスチンの全部又は一部を免疫原とすることにより、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体を取得することができる。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体を産生させるための免疫原は、ペリオスチンのアミノ酸配列の全部又は一部のアミノ酸配列に１ないし数個（通常１～８個、好ましくは１～６個）のアミノ酸残基の欠失、置換、挿入、付加、又は修飾を施すことにより得られるアミノ酸配列を含むペプチド又はタンパク質等であってもよい。
　また、抗体は、３個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を認識できるとの報告（Ｆ．Ｈｕｄｅｃｚら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１４７巻，２０１～２１０頁，１９９２年発行）がある。
　よって、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体の免疫原のアミノ酸配列の最小単位としては、ペリオスチンのアミノ酸配列の全部若しくは一部のアミノ酸配列、又はこれらのアミノ酸配列の全部若しくは一部のアミノ酸配列に１ないし数個（通常１～８個、好ましくは１～６個）のアミノ酸残基の欠失、置換、挿入、付加若しくは修飾を施すことにより得られるアミノ酸配列の内、連続する３つのアミノ酸残基よりなるアミノ酸配列を考えることができるので、これらの連続する３つのアミノ酸残基よりなるアミノ酸配列からなるトリペプチド、又はこれに他のアミノ酸若しくはペプチドが付加したもの等を、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体の免疫原の最小単位として考えることができる。
　前記の免疫原としての、ペリオスチンのアミノ酸配列の全部若しくは一部のアミノ酸配列を含むペプチド又はタンパク質等、又はペリオスチンのアミノ酸配列の全部若しくは一部のアミノ酸配列に１ないし数個（通常１～８個、好ましくは１～６個）のアミノ酸残基の欠失、置換、挿入、付加若しくは修飾を施すことにより得られるアミノ酸配列を含むペプチド又はタンパク質等は、ヒト等の体液、細胞、組織もしくは臓器等より、公知の方法等により抽出、精製等して、取得することができる。
　なお、本発明において、ペリオスチンのアミノ酸配列の全部若しくは一部のアミノ酸配列を含むペプチド又はタンパク質を取得する方法としては特に限定はなく、如何なる方法によるものでもよく、例えば、公知の方法により取得することができる。
　例えば、ペリオスチンを取得する方法として、次の方法（“Ｇ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ　Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１１８巻，１号，７１３～７２３頁，２００６年発行”）等を挙げることができる。
（ａ）　まず、ペリオスチン（ポリヌクレオチドの塩基配列：核酸データベースＧｅｎＢａｎｋのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ　ＮｕｍｂｅｒＤ１３６６６（配列番号１）；アミノ酸配列：核酸データベースＧｅｎＢａｎｋのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ　ＮｕｍｂｅｒＢＡＡ０２８３７（配列番号２））にＶ５／Ｈｉｓタグを付加させたリコンビナントペリオスチンタンパク質を昆虫細胞であるＳ２細胞において発現させた上で精製する。
（ｂ）　すなわち、具体的には、Ｓ２細胞の形質転換体は次のように調製する。
　ｐＭＴ／Ｂｉｐ／Ｖ５－ＨｉｓＡプラスミド（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）にペリオスチンの上記部分をコードするｃＤＮＡを挿入して、これをｐＭＴ／Ｂｉｐ／ｐｅｒｉｏｓｔｉｎ－Ｖ５－ＨｉｓＡとする。
　Ｓ２細胞にｐＭＴ／Ｂｉｐ／ｐｅｒｉｏｓｔｉｎ－Ｖ５－ＨｉｓＡ及びハイグロマイシン耐性遺伝子を発現するプラスミドであるｐＡｃＨｙｇｒｏ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）を公知の方法で共導入し、形質転換させる。
　ハイグロマイシンにより形質転換体を選択し、安定形質転換体を得る。
　そして、Ｓ２細胞の形質転換体では、カルボキシ末端にＶ５エピトープ／Ｈｉｓタグの結合したペリオスチンを発現させる。
（ｃ）　Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質の精製は次のように行う。
　ペリオスチン遺伝子安定形質転換体Ｓ２細胞の培地に硫酸銅を加えることにより、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質の発現を誘導する。
　これにより、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質は培養上清中に発現分泌される。
　この培養上清をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に透析した後、ニッケルレジン（Ｎｉ－ＮＴＡ　Ａｇａｒｏｓｅ、Ｑｉａｇｅｎ社、ドイツ国Ｈｉｌｄｅｎ）と混合して、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質をレジンに結合させる。
　レジンを洗浄して夾雑物を取り除き、イミダゾール含有緩衝液にてＳ２リコンビナントペリオスチンタンパク質を溶出させる。
　溶出されたＳ２リコンビナントペリオスチンタンパク質をＰＢＳ等に透析し、精製されたペリオスチンタンパク質を取得する。
　また、ペリオスチンは、次の方法によっても取得することができる。
　すなわち、ペリオスチンのｃＤＮＡを、ＧＥＸ－ＫＧベクター（“ＫＬ．Ｇｕａｎら，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１９２巻，２６２～２６７頁，１９９１年発行”）に組み込んで、大腸菌ＢＬ２１にトランスフェクションする。
　これをアンピシリン入りＬＢ培地にて培養し、菌体よりグルタチオンセファロース４Ｂ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）により、グルタチオンＳトランスフェラーゼ（ＧＳＴ）を付加したペリオスチンを精製する。
　これにトロンビンにてＧＳＴを切断し、ＧＳＴを付加しないペリオスチンを取得する。
　これをブラッドフォード法にて定量して、その量（濃度）が明確となったペリオスチンを取得することができる。
　更に、ペリオスチンは、例えば、“Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行”などに記載された方法等によっても取得することができる。ペリオスチンのアミノ酸配列は、前記の通り配列番号２で表し、当該アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列は配列番号１で表す。
　なお、ペリオスチンのＥＭＩ領域は、例えば、“Ｉ．Ｋｉｉら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８５巻，３号，２０２８～２０３９頁，２０１０年発行”、又は“Ｔ．Ｍａｒｕｈａｓｈｉら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８５巻，１７号，１３２９４～１３３０３頁，２０１０年発行”などに記載された方法等により取得することができる。ペリオスチンのＥＭＩ領域のアミノ酸配列は配列番号４で表し、当該アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列は配列番号３で表す。
　また、ペリオスチンのＲ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域はそれぞれ、“Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行”などに記載された方法等により取得することができる。ペリオスチンのＲ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のアミノ酸配列はそれぞれ、配列番号６、８及び１０で表し、当該アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列はそれぞれ、配列番号５、７及び９で表す。また、ペリオスチンのＲ４領域及びＣ末端領域のアミノ酸配列はそれぞれ、配列番号１２及び１４で表し、当該アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列はそれぞれ、配列番号１１及び１３で表す。
　なお、前記の免疫原は、液相法及び固相法等のペプチド合成の方法により合成することができ、更にペプチド自動合成装置を用いてもよく、日本生化学会編「生化学実験講座１　タンパク質の化学ＩＶ」，東京化学同人，１９７５年、泉屋ら「ペプチド合成の基礎と実験」，丸善，１９８５年、日本生化学会編「続生化学実験講座２　タンパク質の化学　下」，東京化学同人，１９８７年等に記載された方法に従い合成することができ、前記のアミノ酸配列に、欠失、置換、挿入又は付加を施した変異体を作製することも容易である。
　また、非天然型アミノ酸の導入、各アミノ酸残基の化学修飾やシステイン残基を導入することにより分子内を環化させて構造を安定化させる等の修飾を施してもよい。
　更に、前記の免疫原は、対応する核酸塩基配列を持つＤＮＡ又はＲＮＡより遺伝子工学技術を用いて調製してもよく、日本生化学会編「続生化学実験講座１ 遺伝子研究法Ｉ」，東京化学同人，１９８６年、日本生化学会編「続生化学実験講座１ 遺伝子研究法ＩＩ」，東京化学同人，１９８６年、日本生化学会編「続生化学実験講座１ 遺伝子研究法ＩＩＩ」，東京化学同人，１９８７年等を参照して調製すればよい。
　ところで、免疫原が低分子物質の場合には、免疫原に担体（キャリア）を結合させたものを動物等に免疫するのが一般的ではあるが、アミノ酸数５のペプチドを免疫原としてこれに対する特異抗体を産生させたとの報告（木山ら，「日本薬学会第１１２回年会講演要旨集３」，１２２頁，１９９２年発行）もあるので、担体を使用することは必須ではない。
　なお、抗体を産生させる際に担体（キャリア）を使用する場合の担体としては、スカシガイのヘモシアニン（ＫＬＨ）、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ニワトリ血清アルブミン、ポリ－Ｌ－リシン、ポリアラニルリシン、ジパルミチルリシン、破傷風トキソイド又は多糖類等の担体として公知なものを用いることができる。
　免疫原と担体の結合法は、グルタルアルデヒド法、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド法、マレイミドベンゾイル－Ｎ－ヒドロキシサクシニミドエステル法、ビスジアゾ化ベンジジン法又はＮ－サクシミジル－３－（２－ピリジルジチオ）プロピオン酸法等の公知の結合法を用いることができる。
　また、ニトロセルロース粒子、ポリビニルピロリドン又はリポソーム等の担体に免疫原を吸着させたものを免疫原とすることもできる。
３．ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体の調製方法
　ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるポリクローナル抗体、すなわち、ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、以下の操作により調製することができる。
　このポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体の産生用の免疫原としては、前記の免疫原を用いることができる。
　前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体（キャリア）の結合物を、哺乳動物（マウス、モルモット、ハムスター、ウサギ、ラット、ヒツジ、ヤギ、ウシ、ウマ、ロバ、若しくはラクダなど）又は鳥類（ニワトリ、アヒル、若しくはダチョウなど）等に免疫する。
　なお、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を免疫する免疫動物としては、その体内でのペリオスチンの生産に関わる遺伝子を不活性化又は欠損させた、すなわちペリオスチンの生産に関わる遺伝子をノックアウトした動物がより好ましい。
　その理由は、その動物の体内で生産されたペリオスチンが、ペリオスチンなどの免疫原等の免疫により体内に産生した抗ペリオスチン特定領域抗体と結合してしまうことにより、抗ペリオスチン特定領域抗体の抗体活性が低下してしまう可能性が、前記のノックアウト動物においては低いからである。
　また、前記のノックアウト動物においては、その動物の体内でペリオスチンが生産されないため、免疫されたペリオスチンを異物と認識し易く、よって抗体の産生が高くなるためである。
　このペリオスチンの生産に関わる遺伝子を不活性化又は欠損させた動物としては、例えば、ペリオスチンについてのノックアウトマウス（“Ｈ．Ｒｉｏｓら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ａｎｄ　Ｃｅｌｌｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，２５巻，２４号，１１１３１～１１１４４頁，２００５年発行”）等を挙げることができる。
　ところで、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物の免疫量は、免疫原、担体、免疫動物の種類、免疫注射部位等により決められるものであるが、マウスの場合には一匹当り一回につき０．１μｇ～５ｍｇの前記免疫原、又は前記免疫原と担体の結合物を免疫注射するのが好ましい。
　なお、この前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物は、アジュバントと添加混合して免疫注射することが好ましい。
　アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、水酸化アルミニウムアジュバント、化学合成アジュバント又は百日咳菌アジュバント等の公知のものを用いることができる。
　免疫注射は、皮下、静脈内、腹腔内又は背部等の部位に行えばよい。
　初回免疫後、１～２週間間隔で皮下、静脈内、腹腔内又は背部等の部位に、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を追加免疫注射する。
　この追加免疫注射の回数としては、２～６回が一般的である。
　この場合も、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物は、アジュバントを添加混合して追加免疫注射することが好ましい。
　初回免疫の後、免疫動物の血清中の抗体価の測定をＥＬＩＳＡ法等により繰り返し行い、抗体価がプラトーに達したら全採血を行い、血清を分離して抗体を含む抗血清を得る。
　この抗血清を、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム等による塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過法又はアフィニティークロマトグラフィー等の方法、あるいはこれらの方法を組み合わせて抗体の精製を行い、ポリクローナル抗体を得る。
　なお、ここで得られたポリクローナル抗体は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるポリクローナル抗体（ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体）と、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のいずれにも結合しないポリクローナル抗体を含むものである。
　よって、例えば、分離のため、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域のアミノ酸配列を含むタンパク質又はペプチドをリガンドとして固相に固定化したアフィニティークロマトグラフィーのカラム等に、得られたポリクローナル抗体を通し、接触させる。
　これにより、ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、このカラム等のリガンド（ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域のアミノ酸配列を含むタンパク質又はペプチド）を介して固相に結合し、捕集される。
　これに対して、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のいずれにも結合しないポリクローナル抗体は、このカラム等のリガンド（ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のアミノ酸配列を含むタンパク質及び／又はペプチド）に結合することなく、このカラム等を素通りする。
　このカラム等のリガンド（ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域のアミノ酸配列を含むタンパク質又はペプチド）に結合した、ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を、塩濃度又はｐＨ等を変化させることによりリガンドから分離させ、これを捕集することにより、ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を取得することができる。
　得られたポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチンの分解物に結合することができる抗体である。
　なお、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域の全部又は一部」を免疫原として用いる場合は、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のいずれにも結合しないポリクローナル抗体を分離する処理は必要としない。
　また、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しないポリクローナル抗体（ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体）」の取得であるが、例えば、まず前記の通りにして、ポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を得る。
　なお、ここで得られたポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」と、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合する抗ペリオスチン特定領域抗体」とを含むものである。
　次に、分離のため、ペリオスチンの多量体をリガンドとして固相に固定化したアフィニティークロマトグラフィーのカラム等に、得られたポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を通し、接触させる。
　これにより、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合する抗ペリオスチン特定領域抗体」は、このカラム等のリガンド（ペリオスチンの多量体）を介して固相に結合する。
　これに対して、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」は、このカラム等のリガンド（ペリオスチンの多量体）に結合することなく、このカラム等を素通りするので、これを捕集することにより、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」を取得することができる。
　或いは、分離のため、ペリオスチンの多量体をリガンドとして固定化した固相担体等に、得られたポリクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を接触させ、その後、この固相担体を分離することにより、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合する抗ペリオスチン特定領域抗体」を除去することができる。そして、これにより、残存物より、「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」を取得することができる。
　なお、得られた「ポリクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」は、ペリオスチンの分解物に結合することができ、かつペリオスチンの多量体には結合しない抗体である。
　ところで、免疫原と担体の結合物を用いて動物等に免疫した場合には、得られたポリクローナル抗体中に、この担体に対する抗体が存在するので、このような担体に対する抗体の除去処理を行うことが好ましい。
　この除去処理方法としては、担体を、得られたポリクローナル抗体の溶液中に添加して生成した凝集物を取り除くか、担体を不溶化固相に固定化してアフィニティークロマトグラフィーにより除去する方法等を用いることができる。
４．モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体の調製方法
　ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるモノクローナル抗体、すなわち、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、以下の操作により調製することができる。
　このモノクローナル抗体は、ケラーらの細胞融合法（Ｇ．Ｋｏｅｈｌｅｒら，Ｎａｔｕｒｅ，２５６巻，４９５～４９７頁，１９７５年発行）によるハイブリドーマ、又はエプスタン－バーウイルス等のウイルスによる腫瘍化細胞等の抗体産生細胞により得ることができる。
　更に、抗体遺伝子のｃＤＮＡライブラリーから、マカフェティーらのファージディスプレイ法（Ｍ．ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙら，Ｎａｔｕｒｅ，３４８巻，５５２～５５４頁，１９９０年発行）を用いてモノクローナル抗体を作製することも可能である。
　なお、例えば、細胞融合法によるモノクローナル抗体の調製は、下記の操作により行うことができる。
（１）　まず、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を、哺乳動物（マウス、ハムスター、ラット、又はラビットなど、例えば近交系マウスのＢＡＬＢ／ｃ）又は鳥類（ニワトリなど）等に免疫する。
　なお、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を免疫する免疫動物としては、その体内でのペリオスチンの生産に関わる遺伝子を不活性化又は欠損させた、すなわちペリオスチンの生産に関わる遺伝子をノックアウトした動物がより好ましい。
　その理由は、その動物の体内で生産されたペリオスチンが、ペリオスチンなどの免疫原等の免疫により体内に産生した抗ペリオスチン特定領域抗体と結合してしまうことにより、抗ペリオスチン特定領域抗体の抗体活性が低下してしまう可能性が、前記のノックアウト動物においては低いからである。
　また、前記のノックアウト動物においては、その動物の体内でペリオスチンが生産されないため、免疫されたペリオスチンを異物と認識し易く、よって抗体の産生が高くなるためである。
　このペリオスチンの生産に関わる遺伝子を不活性化又は欠損させた動物としては、例えば、ペリオスチンについてのノックアウトマウス（“Ｈ．Ｒｉｏｓら，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，２５巻，２４号，１１１３１～１１１４４頁，２００５年発行”）等を挙げることができる。
　ところで、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物の免疫量は、免疫動物の種類、免疫注射部位等により適宜決められるものであるが、例えば、マウスの場合には一匹当り一回につき０．１μｇ～５ｍｇの前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を免疫注射するのが好ましい。
　なお、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物は、アジュバントを添加混合して免疫注射することが好ましい。
　アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント、フロイント不完全アジュバント、水酸化アルミニウムアジュバント、化学合成アジュバント又は百日咳菌アジュバント等の公知なものを用いることができる。
　免疫注射は、皮下、静脈内、腹腔内、足蹠又は背部等の部位に行えばよい。
（２）　初回免疫後、１～２週間間隔で皮下、静脈内、腹腔内、足蹠又は背部等の部位に、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を追加免疫注射する。
　この追加免疫注射の回数としては２～６回が一般的である。
　この場合も前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物は、アジュバントを添加混合して追加免疫注射することが好ましい。
（３）　初回免疫の後、免疫動物の血清中の抗体価の測定をＥＬＩＳＡ法等により繰り返し行い、抗体価がプラトーに達したら、前記の免疫原、又は前記の免疫原と担体の結合物を生理食塩水（０．９％塩化ナトリウム水溶液）に溶解したものを静脈内又は腹腔内に注射し、最終免疫とする。
（４）　この最終免疫の３～５日後に、免疫動物の脾細胞、リンパ節細胞又は末梢リンパ球等の抗体産生能を有する細胞を取得する。
（５）　この免疫動物より得られた抗体産生能を有する細胞と哺乳動物等（マウス、ヌードマウス、ラットなど）の骨髄腫細胞（ミエローマ細胞）とを細胞融合させるのであるが、ミエローマ細胞としてはヒポキサンチン・グアニン・ホスホリボシル・トランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴ）又はチミジンキナーゼ（ＴＫ）等の酵素を欠損した細胞株のものが好ましく、例えば、ＢＡＬＢ／ｃマウス由来のＨＧＰＲＴ欠損細胞株である、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８株（ＡＴＣＣ　ＴＩＢ９）、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８－Ｕ１株（癌研究リサーチソースバンク（ＪＣＲＢ）９０８５）、Ｐ３－ＮＳ１－１－Ａｇ４－１株（ＪＣＲＢ　０００９）、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８・６５３株（ＪＣＲＢ　００２８）又はＳＰ２／Ｏ－Ａｇ－１４株（ＪＣＲＢ　００２９）等を用いることができる。
　細胞融合は、各種分子量のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、リポソームもしくはセンダイウイルス（ＨＶＪ）等の融合促進剤を用いて行うか、又は電気融合法により行うことができる。
　ミエローマ細胞がＨＧＰＲＴ欠損株又はＴＫ欠損株のものである場合には、ヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジンを含む選別用培地（ＨＡＴ培地）を用いることにより、抗体産生能を有する細胞とミエローマ細胞の融合細胞（ハイブリドーマ）のみを選択的に培養し、増殖させることができる。
（６）　このようにして得られたハイブリドーマの培養上清を、ヒト又は他の動物（ヒトのペリオスチンの測定に用いる場合にはヒト由来のものが好ましい）のペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域よりなるタンパク質又はペプチド等を用いてＥＬＩＳＡ法やウエスタンブロット法などの免疫学的測定法等により測定することにより、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができるモノクローナル抗体（モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体）」を産生するハイブリドーマを選択することができる。
（７）　このハイブリドーマ選択方法と限界希釈法等の公知のクローニングの方法を組み合わせて行うことにより、本発明における、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体の産生細胞株を単離して得ることができる。
（８）　このモノクローナル抗体産生細胞株を適当な培地で培養して、その培養上清から本発明における、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を得ることができるが、培地としては無血清培地又は低濃度血清培地等を用いてもよく、この場合は抗体の精製が容易となる点で好ましく、ＤＭＥＭ培地、ＲＰＭＩ１６４０培地又はＡＳＦ培地１０３等の培地を用いることができる。
　また、このモノクローナル抗体産生細胞株を、これに適合性がありプリスタン等であらかじめ刺激した哺乳動物の腹腔内に注入し、一定期間の後、腹腔にたまった腹水より本発明における、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を得ることもできる。
（９）　このようにして得られた、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどによる塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過法又はアフィニティークロマトグラフィーなどの方法、あるいはこれらの方法を組み合わせること等により、精製された、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を得ることができる。
　なお、得られたモノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチンの分解物に結合することができる抗体である。
（１０）なお、前記（６）の通り、得られたハイブリドーマの培養上清を、ヒト又は他の動物のペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及び／又はＲ３領域よりなるタンパク質又はペプチド等を用いてＥＬＩＳＡ法やウエスタンブロット法などの免疫学的測定法等により測定することにより、モノクローナル抗体である抗ペリオスチン特定領域抗体を産生するハイブリドーマを選択することができるが、これに加え更に、ペリオスチンの多量体を用いてＥＬＩＳＡ法やウエスタンブロット法などの免疫学的測定法等により測定することにより、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができ、かつペリオスチンの多量体に結合しないモノクローナル抗体（モノクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体）」を産生するハイブリドーマを選択することができる。
（１１）　この「モノクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」を産生するハイブリドーマより、前記（７）～（９）のようにして、「モノクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」を得ることができる。
　なお、得られた「モノクローナル抗体である、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体」は、ペリオスチンの分解物に結合することができ、かつペリオスチンの多量体には結合しない抗体である。
　本発明におけるモノクローナル抗体としては、例えば、抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１６で表されるアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１８で表されるアミノ酸配列を含む、モノクローナル抗体が挙げられる。
　また、別の態様において、本発明におけるモノクローナル抗体としては、例えば、受託番号がNITE BP-1281であるハイブリドーマSS16A株、受託番号がNITE BP-1282であるハイブリドーマSS18A株、受託番号がNITE BP-1283であるハイブリドーマSS19C株、受託番号がNITE BP-1068であるハイブリドーマSS19D株、受託番号がNITE BP-1284であるハイブリドーマSS20A株、受託番号がNITE BP-1285であるハイブリドーマSS25A株及び受託番号がNITE BP-1286であるハイブリドーマSS27A株からなる群から選ばれるいずれかのハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
〔２〕．ペリオスチンの測定方法
１．総論
　本発明のペリオスチンの測定方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定方法であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とするものである。
　ペリオスチンは、そのＮ末端側よりＣ末端側にかけて順に、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域、Ｒ３領域、Ｒ４領域及びＣ末端領域より構成されるものであるが、これらの内、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを、本発明のペリオスチンの測定方法は特徴とするものである。
　また、本発明の測定方法は、試料に含まれるペリオスチン分解物の測定方法であってもよい。より具体的には、ペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とする、試料に含まれるペリオスチン分解物の測定方法であってもよい。
　また別の態様において、本発明の測定方法は、多量体ではないペリオスチンの測定方法であってもよい。本発明において、多量体ではないペリオスチンの測定方法とは、多量体であるペリオスチンを検出（又は測定）しない方法を意味する。より具体的には、本発明の測定方法は、試料に含まれるペリオスチン又はペリオスチン分解物の測定方法であって、ペリオスチン又はペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、かつペリオスチンの多量体は検出（又は測定）しないことを特徴とする、試料に含まれるペリオスチン又はペリオスチン分解物の測定方法であってもよい。
　本発明のペリオスチンの測定方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより、ペリオスチン測定の正確性を改善することができる測定方法である。
　本発明のペリオスチンの測定方法において、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」とは、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことをいう。
　そして、この「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」ことについて、より具体的に説明すると、抗原と抗体、糖とレクチン、ヌクレオチド鎖とそれに特異的な物質、リガンドとレセプター等の特異的な親和性を有する物質間の反応を利用して試料中に含まれるペリオスチンを測定する場合に、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合することができる物質（特異的結合物質）を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域にこの特異的結合物質が結合すること等ができ、そしてこれによってペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　例えば、この特異的結合物質が抗体の場合、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができる抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　本発明のペリオスチンの測定方法は、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のいずれか一つを検出するものであってもよいし、或いはペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域の二つ以上のものを検出するものであってもよい。
　本発明のペリオスチンの測定方法としては、試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定する測定方法であって、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用するものであることが好ましい。
　この抗ペリオスチン特定領域抗体としては、上記「〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体」の項に記載された抗体、例えば、以下の抗体を使用することができる。
(i) ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体、
(ii) ペリオスチンの分解物に結合する抗体、
(iii) ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体であって、ペリオスチンの多量体に結合しない抗体、
(iv) ペリオスチンの分解物に結合し、ペリオスチンの多量体に結合しない抗体、
(v) ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合するモノクローナル抗体、
(vi) ペリオスチンの分解物に結合するモノクローナル抗体、
(vii) ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合するモノクローナル抗体であって、ペリオスチンの多量体に結合しない前記抗体、
(viii) 抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１６で表されるアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１８で表されるアミノ酸配列を含む、モノクローナル抗体、
(ix) 受託番号がNITE BP-1281であるハイブリドーマSS16A株、受託番号がNITE BP-1282であるハイブリドーマSS18A株、受託番号がNITE BP-1283であるハイブリドーマSS19C株、受託番号がNITE BP-1068であるハイブリドーマSS19D株、受託番号がNITE BP-1284であるハイブリドーマSS20A株、受託番号がNITE BP-1285であるハイブリドーマSS25A株及び受託番号がNITE BP-1286であるハイブリドーマSS27A株からなる群から選ばれるいずれかのハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体。
　また、本発明のペリオスチンの測定方法において、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、これらの抗体のいずれもが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　例えば、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法においては、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体及び固相化抗体のいずれもが、この抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　ところで、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体のうち、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体を、試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定する測定方法に使用すると、測定の正確性の改善度が更に高いために好ましいが、本発明のペリオスチンの測定方法において、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、一方の抗体がペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であるときは、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　例えば、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法においては、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　ところで、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、１種類のものだけではなく、複数種類のものを同時に使用してもよい。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体の詳細については、前記の「〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体」の項に記載した通りである。
　なお、本発明のペリオスチンの測定方法は、測定の正確性を改善することができるものであり、疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において好適である。
　また、本発明のペリオスチンの測定方法は、癌又は肺疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より好適である。
　そして、本発明のペリオスチンの測定方法は、胆管細胞癌、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチンの測定方法は、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチンの測定方法は、間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、特に好適である。
２．抗原抗体反応を利用した測定方法
　本発明のペリオスチンの測定方法としては、試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定する測定方法であって、抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものが好ましいが、この抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものであれば、特にその測定原理に限定されるものではなく、所期の効果を奏するものである。
　この試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定する測定方法としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、発光免疫測定法（ＬＩＡ）、酵素抗体法、蛍光抗体法、イムノクロマトグラフィー法、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応測定法、赤血球凝集反応法、粒子凝集反応法、特開平９－２２９９３６号公報及び特開平１０－１３２８１９号公報などに記載された測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定され、これで被覆された面を有する担体、及び測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定された粒子を用いる測定法、又はＤａｈｌｂｅａｃｋらが示したＥＬＳＡ法（Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ　Ｌｉｇａｎｄｓｏｒｂｅｎｔ　Ａｓｓａｙ）（Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．，７９巻，７６７～７７２頁，１９９８年発行；国際公開第９８／２３９６３号パンフレット）等を挙げることができる。
　そして、本発明のペリオスチンの測定方法における測定には、サンドイッチ法、競合法又は均一系法（ホモジニアス系法）等のいずれの手法をも、適用することができる。
　また、本発明のペリオスチンの測定方法における測定は、用手法により行ってもよく、又は分析装置等の装置を用いて行ってもよい。
３．試料
　本発明における試料としては、血液、血清、血漿、尿、精液、髄液、唾液、腹水若しくは羊水などの体液；あるいは血管若しくは肝臓などの臓器、組織又は細胞などの抽出液等、ペリオスチンが含まれる可能性のある生体試料等の試料であれば対象となる。
　なお、測定に用いる試料の形態は、液体であることが好ましいので、もし試料が液体でない場合には、抽出処理又は可溶化処理等の前処理を既知の方法に従って行い、液体試料としてもよい。
　また、必要に応じて、試料は濃縮処理を行ってもよい。
　また、試料は、その測定の前に、希釈液を添加することにより希釈処理を行ってもよい。
　例えば、試料を抗ペリオスチン特定領域抗体と接触させ、結合させる前に、試料に希釈液を添加することにより希釈処理を行ってもよい。
　この希釈液として、各種水系溶媒を用いることができる。
　例えば、水、生理食塩水又はトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液〔Ｔｒｉｓ緩衝液〕、リン酸緩衝液若しくはリン酸緩衝生理食塩水などの各種緩衝液等の水系溶媒を用いることができる。
　なお、この緩衝液のｐＨについては、ｐＨ５～ｐＨ１０の範囲にあることが好ましい。
　また、試料が血液（全血）である場合、この全血試料を、水又は界面活性剤を含有する水系溶媒等の低張液と混合し、赤血球を破裂させる処理を行うことが、その後の測定を支障なく行う上で、好ましい。
４．測定対象物質
　本発明において、測定対象物質はペリオスチンである。
　このペリオスチンには、ペリオスチンの一量体、ペリオスチンの二量体、三量体、四量体又はそれ以上のペリオスチンの多量体、又はペリオスチンの分解物（例えば、分子量約４０ＫＤａのペリオスチンの分解物など）等が含まれるが、いずれも本発明における測定対象物質となるものである。
　なお、本発明における測定対象物質であるペリオスチンとしては、前記のペリオスチンの一量体又はペリオスチンの分解物が好適である。
　すなわち、言い換えると、ペリオスチンの多量体以外のペリオスチン（本明細書において「多量体ではないペリオスチン」とも称する。）が測定対象物質として好適である。
　また、本発明における測定対象物質であるペリオスチンとして、前記のペリオスチンの分解物が特に好適である。
　すなわち、言い換えると、ペリオスチンの一量体及びペリオスチンの多量体以外のペリオスチンが測定対象物質として特に好適である。
５．標識抗体を用いた免疫学的測定方法
　本発明のペリオスチンの測定方法における測定を、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法又は発光免疫測定法等の標識抗体を用いた免疫学的測定方法、すなわち標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法により実施する場合には、サンドイッチ法又は競合法等により行うことができるが、サンドイッチ法により実施する時には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる固相化抗体及び標識抗体のいずれの抗体もが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　また、前記の通りサンドイッチ法により測定を行う際に、酵素標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合には、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　この標識抗体を用いた免疫学的測定方法において用いる固相担体としては、ポリスチレン、ポリカーボネート、ポリビニルトルエン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ナイロン、ポリメタクリレート、ポリアクリルアミド、ラテックス、リポソーム、ゼラチン、アガロース、セルロース、セファロース、ガラス、金属、セラミックス又は磁性体等の材質よりなるマイクロカプセル、ビーズ、マイクロプレート（マイクロタイタープレート）、試験管、スティック又は試験片等の形状の固相担体を用いることができる。
　なお、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体とを物理的吸着法、化学的結合法又はこれらの併用等の公知の方法により吸着、結合させて抗体を固相担体に固定化することができる。
　物理的吸着法による場合は、公知の方法に従い、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体を緩衝液などの溶液中で混合し接触させたり、又は緩衝液などに溶解した抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体を接触させたりすること等により行うことができる。
　また、化学的結合法により行う場合は、日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号　臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；日本生化学会編「新生化学実験講座１　タンパク質ＩＶ」，東京化学同人，１９９１年発行等に記載の公知の方法に従い、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体をグルタルアルデヒド、カルボジイミド、イミドエステル又はマレイミド等の二価性の架橋試薬と混合、接触させ、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体のそれぞれのアミノ基、カルボキシル基、チオール基、アルデヒド基又は水酸基等と反応させること等により行うことができる。
　また、更に非特異的反応や固相担体の自然凝集等を抑制するために処理を行う必要があれば、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させた固相担体の表面又は内壁面に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、カゼイン、ゼラチン、卵白アルブミンもしくはその塩などのタンパク質、界面活性剤又は脱脂粉乳等を接触させ被覆させること等の公知の方法により処理して、固相担体のブロッキング処理（マスキング処理）を行ってもよい。
　標識物質としては、酵素免疫測定法の場合には、パーオキシダーゼ（ＰＯＤ）、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）、β－ガラクトシダーゼ、ウレアーゼ、カタラーゼ、グルコースオキシダーゼ、乳酸脱水素酵素又はアミラーゼ等を用いることができる。
　また、蛍光免疫測定法の場合には、フルオレセインイソチオシアネート、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、置換ローダミンイソチオシアネート又はジクロロトリアジンイソチオシアネート等を用いることができる。
　そして、放射免疫測定法の場合には、トリチウム、ヨウ素１２５又はヨウ素１３１等を用いることができる。
　また、発光免疫測定法においては、ＮＡＤＨ－ＦＭＮＨ２－ルシフェラーゼ系、ルミノール－過酸化水素－ＰＯＤ系、アクリジニウムエステル系又はジオキセタン化合物系等を用いることができる。
　抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と酵素等の標識物質との結合法は、日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号　臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；日本生化学会編「新生化学実験講座１　タンパク質ＩＶ」，東京化学同人，１９９１年発行等に記載の公知の方法に従い、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と標識物質をグルタルアルデヒド、カルボジイミド、イミドエステル又はマレイミド等の二価性の架橋試薬と混合、接触させ、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と標識物質のそれぞれのアミノ基、カルボキシル基、チオール基、アルデヒド基又は水酸基等と反応させることにより結合を行うことができる。
　測定の操作法は公知の方法等（日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号　臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；石川榮治ら編「酵素免疫測定法」，第３版，医学書院，１９８７年発行；北川常廣ら編「蛋白質核酸酵素別冊Ｎｏ．３１　酵素免疫測定法」，共立出版，１９８７年発行）により行うことができる。
　例えば、固相化抗体と試料を反応させ、同時に標識抗体を反応させるか、又は洗浄の後に標識抗体を反応させることにより、「固相担体＝固相化抗体＝ペリオスチン＝標識抗体」の複合体を形成させる。
　そして、未結合の標識抗体を洗浄分離して、「固相化抗体＝ペリオスチン」を介して固相担体に結合した標識抗体の量又は未結合の標識抗体の量より試料に含まれていたペリオスチンの量（濃度）のみを測定することができる。
　具体的には、酵素免疫測定法の場合は、例えば抗体に標識した酵素に、その至適条件下で基質を反応させ、その酵素反応生成物の量を光学的方法等により測定する。
　また、蛍光免疫測定法の場合には蛍光物質標識による蛍光強度等を、放射免疫測定法の場合には放射性物質標識による放射線量等を測定する。
　そして、発光免疫測定法の場合は発光反応系による発光量等を測定する。
６．凝集反応法による免疫学的測定方法
　本発明のペリオスチンの測定方法における測定を、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の免疫複合体凝集物の生成を、その透過光や散乱光を光学的方法により測るか、又は目視的に測る測定方法により実施する場合には、すなわち、抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法（凝集反応法）により実施する場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる抗体が抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　なお、前記の凝集反応法により測定を行う場合、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であってよく、正確性の改善度が高いので好ましい。
　また、前記の凝集反応法により測定を行う場合、溶媒として、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液〔Ｔｒｉｓ緩衝液〕又はグッド緩衝液等を用いることができ、更にポリエチレングリコール等の反応促進剤や非特異的反応抑制剤を含ませてもよい。
　抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固相担体に固定化させて用いる場合には、固相担体としては、ポリスチレン、スチレン－スチレンスルホン酸塩共重合体、アクリロニトリル－ブタジエン－スチレン共重合体、塩化ビニル－アクリル酸エステル共重合体、酢酸ビニル－アクリル酸共重合体、ポリアクロレイン、スチレン－メタクリル酸共重合体、スチレン－グリシジル（メタ）アクリル酸共重合体、スチレン－ブタジエン共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体、ラテックス、ゼラチン、リポソーム、マイクロカプセル、赤血球、シリカ、アルミナ、カーボンブラック、金属化合物、金属、セラミックス又は磁性体等の材質よりなる粒子を使用することができる。
　抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固相担体に固定化させる方法としては、物理的吸着法、化学的結合法又はこれらの併用等の公知の方法により行うことができる。
　物理的吸着法による場合は、公知の方法に従い、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体を緩衝液等の溶液中で混合し接触させたり、又は緩衝液等に溶解した抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体を接触させたりすること等により行うことができる。
　また、化学的結合法により行う場合は、日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号　臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；日本生化学会編「新生化学実験講座１　タンパク質ＩＶ」，東京化学同人，１９９１年発行等に記載の公知の方法に従い、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体をグルタルアルデヒド、カルボジイミド、イミドエステル又はマレイミド等の二価性の架橋試薬と混合、接触させ、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と固相担体のそれぞれのアミノ基、カルボキシル基、チオール基、アルデヒド基又は水酸基等と反応させること等により行うことができる。
　また、更に非特異的反応や固相担体の自然凝集等を抑制するために処理を行う必要があれば、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させた固相担体の表面又は内壁面に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、カゼイン、ゼラチン、卵白アルブミン若しくはその塩などのタンパク質、界面活性剤又は脱脂粉乳等を接触させ被覆させること等の公知の方法により処理して、固相担体のブロッキング処理（マスキング処理）を行ってもよい。
　なお、ラテックス比濁法を測定原理とする場合、固相担体として用いるラテックス粒子の粒径については、特に制限はないものの、ラテックス粒子が測定対象物質（ペリオスチン）を介して結合し、凝集塊を生成する程度、及びこの生成した凝集塊の測定の容易さ等の理由より、ラテックス粒子の粒径は、その平均粒径が、０．０４～１μｍであることが好ましい。
　また、ラテックス比濁法を測定原理とする場合、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させたラテックス粒子を含ませる濃度については、試料中のペリオスチンの濃度、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体のラテックス粒子表面上での分布密度、ラテックス粒子の粒径、試料と測定試薬の混合比率等の各種条件により最適な濃度は異なるので一概にいうことはできない。
　しかし、通常は、試料と測定試薬が混合され、ラテックス粒子に固定化された「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」と試料に含まれていた「ペリオスチン」との抗原抗体反応が行われる測定反応時に、「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」を固定化させたラテックス粒子の濃度が、反応混合液中において０．００５～１％（ｗ／ｖ）となるようにするのが一般的であり、この場合、反応混合液中においてこのような濃度になるような濃度の「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させたラテックス粒子」を測定試薬に含ませる。
　また、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の間接凝集反応法を測定原理とする場合、固相担体として用いる粒子の粒径については、特に制限はないものの、その平均粒子径が０．０１～１００μｍの範囲内にあることが好ましく、０．５～１０μｍの範囲内にあることがより好ましい。そして、これらの粒子の比重は、１～１０の範囲内にあることが好ましく、１～２の範囲内にあることがより好ましい。
　なお、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の間接凝集反応法を測定原理とする場合の測定に使用する容器としては、例えば、ガラス、ポリスチレン、ポリ塩化ビニル又はポリメタクリレートなどからなる、試験管、マイクロプレート（マイクロタイタープレート）又はトレイ等を挙げることができる。
　これらの容器の溶液収容部分（マイクロプレートのウェル等）の底面は、Ｕ型、Ｖ型又はＵＶ型等の底面中央から周辺にかけて傾斜を持つ形状であることが好ましい。
　測定の操作法は公知の方法等により行うことができるが、例えば、光学的方法により測定する場合には、試料と抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体、又は試料と「固相担体に固定化させた抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」を反応させ、エンドポイント法又はレート法により、透過光や散乱光を測定する。
　また、目視的に測定する場合には、プレートやマイクロプレート等の前記容器中で、試料と「固相担体に固定化させた抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」を反応させ、凝集の状態を目視的に測定する。
　なお、この目視的に測定する代わりにマイクロプレートリーダー等の機器を用いて測定を行ってもよい。
　測定の操作法の例を以下挙げる。
　例えば、まず、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」を含有する測定試薬、又は「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」を含有する測定試薬及び「水系溶媒」を含有する測定試薬等を調製し、準備する。
　次に、例えば、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」を含有する測定試薬と、試料とを混合し、これにより、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」と試料とを接触させる。
　これにより、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」の「抗ペリオスチン特定領域抗体」と、試料に含まれていた「ペリオスチン」との、抗原抗体反応を行わせる。
　そして、これより生成した、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」（抗ペリオスチン特定領域抗体＝固相担体＝抗ペリオスチン特定領域抗体）と「ペリオスチン」との複合体凝集物（…〔ペリオスチン〕－〔抗ペリオスチン特定領域抗体＝固相担体＝抗ペリオスチン特定領域抗体〕－〔ペリオスチン〕－〔抗ペリオスチン特定領域抗体＝固相担体＝抗ペリオスチン特定領域抗体〕－〔ペリオスチン〕…）を測定する。
　この生成した複合体凝集物の測定は、この複合体凝集物が存在する測定反応時の反応混合液の透過光又は散乱光などの吸光度等の測定を、エンドポイント法又はレート法等により行うことにより、実施する。
　そして、試料を測定して得た吸光度等の測定値を、標準物質（ペリオスチンの濃度が既知の試料）を測定して得た吸光度等の測定値と比較して、試料中に含まれていたペリオスチンの濃度（定量値）を算出する。
　なお、透過光又は散乱光などの吸光度等の測定は、透過光を測定しても、又は散乱光を測定してもよく、そして、１波長測定であっても、又は２波長測定（２つの波長による差又は比）であってもよい。
　なお、測定波長は、３４０ｎｍから１，０００ｎｍの中から選ばれるのが一般的である。
　なお、本発明におけるペリオスチンの測定は、用手法により行ってもよいし、又は測定装置等の装置を用いて行ってもよい。
　測定装置は、汎用自動分析装置であっても、専用の測定装置（専用機）であってもよい。
　また、本発明におけるペリオスチンの測定は、１ステップ法（１試薬法）により行ってもよいし、又は２ステップ法（２試薬法）等の複数の操作ステップにより行う方法によって実施してもよい。
　なお、以下、ラテックス比濁法を測定原理とする方法によりペリオスチンの測定を行う場合を例にとって、より具体的に説明を行う。
（１）　まず、ペリオスチンの測定試薬として、以下のものを調製し、準備する。
第１試薬：
　緩衝液（水系溶媒）
第２試薬：
　「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化したラテックス粒子」を含有する緩衝液
（２）　血清等の試料の一定量と前記の第１試薬の一定量を混合し、一定温度下で一定時間静置する。
　なお、試料と第１試薬の混合比率（量比）は、適宜選択すればよい。
　また、前記の静置時の温度は、室温（１℃～３０℃）又は微温（３０℃～４０℃）の範囲内の一定温度であることが好ましい。（例えば、３７℃等）
（３）　一定時間後、前記の試料と第１試薬との混合液に、前記の第２試薬の一定量を添加、混合し、反応混合液として、一定温度下で一定時間静置する。
　これにより、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化したラテックス粒子」と試料とを接触させる。
　なお、第２試薬の添加量は、適宜選択すればよい。
　また、前記の静置時の温度は、室温（１℃～３０℃）又は微温（３０℃～４０℃）の範囲内の一定温度であることが好ましい。（例えば、３７℃等）
　そして、前記の静置の時間は、１分以上、かつ１０分以下の一定時間であることが好ましく、３分以上、かつ５分以下の一定時間であることがより好ましい。
　試料と第１試薬との混合液への第２試薬の添加、混合により、ラテックス粒子に固定化した抗ペリオスチン特定領域抗体と、試料に含まれていたペリオスチンとの抗原抗体反応を行わせる。
　そして、この抗原抗体反応により、「…〔ペリオスチン〕－〔抗ペリオスチン特定領域抗体＝ラテックス粒子＝抗ペリオスチン特定領域抗体〕－〔ペリオスチン〕－〔抗ペリオスチン特定領域抗体＝ラテックス粒子＝抗ペリオスチン特定領域抗体〕－〔ペリオスチン〕…」等の架橋が形成され、ペリオスチンを介した、「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化したラテックス粒子」同士の複合体凝集物が生成する。
（４）　そして、分析装置又は分光光度計等において、反応混合液に光を照射して、生成したラテックス粒子同士の複合体凝集物により生じるシグナルである適当な波長の透過光強度の減少（吸光度の増加）又は散乱光強度の増加を測定することにより、生成した前記複合体凝集物の量、すなわち、試料に含まれていたペリオスチンの量を求める。
（５）　そして、「試料の測定を行って得た測定値〔透過光強度の減少（吸光度の増加）又は散乱光強度の増加の値〕」と、「標準液又は標準血清等の標準物質〔濃度既知のペリオスチンを含む試料〕の測定を行って得た測定値〔透過光強度の減少（吸光度の増加）又は散乱光強度の増加の値〕」とを比較することにより、測定を行った試料に含まれるペリオスチンの量（濃度）の算出を行う。
７．測定時の他の成分
　本発明のペリオスチンの測定方法においては、溶媒として、各種の水系溶媒を用いることができる。
　この水系溶媒としては、例えば、精製水、生理食塩水、又は、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液〔Ｔｒｉｓ緩衝液〕、リン酸緩衝液若しくはリン酸緩衝生理食塩水などの各種緩衝液等を挙げることができる。
　この緩衝液のｐＨについては、適宜適当なｐＨを選択して用いればよく、特に制限はないものの、通常は、ｐＨ３～ｐＨ１２の範囲内のｐＨを選択して用いることが一般的である。
　また、本発明のペリオスチンの測定方法においては、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化した固相担体、及び／又は前記の抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体と酵素などの標識物質を結合させた標識抗体等の試薬成分の他に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、カゼイン若しくはその塩などのタンパク質；各種塩類；各種糖類；脱脂粉乳；正常ウサギ血清などの各種動物血清；アジ化ナトリウムもしくは抗生物質などの各種防腐剤；活性化物質；反応促進物質；ポリエチレングリコールなどの感度増加物質；非特異的反応抑制物質；又は、非イオン性界面活性剤、両性界面活性剤若しくは陰イオン性界面活性剤などの各種界面活性剤等の１種又は２種以上を適宜用いてもよい。
　そして、これらを測定に用いる際の濃度は特に限定されるものではないが、０．００１～１０％（Ｗ／Ｖ）が好ましく、特に０．０１～５％（Ｗ／Ｖ）が好ましい。
　なお、前記の界面活性剤としては、例えば、ソルビタン脂肪酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル、デカグリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル、ポリエチレングリコール脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンフィトステロール、フィトスタノール、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンヒマシ油、硬化ヒマシ油若しくはポリオキシエチレンラノリンなどの非イオン性界面活性剤；酢酸ベタインなどの両性界面活性剤；又は、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩若しくはポリオキシエチレンアルキルエーテル酢酸塩などの陰イオン性界面活性剤等を挙げることができる。
〔３〕．ペリオスチン又はその分解物の測定試薬
１．総論
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定試薬であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とするものである。
　ペリオスチンは、そのＮ末端側よりＣ末端側にかけて順に、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域、Ｒ３領域、Ｒ４領域及びＣ末端領域より構成されるものであるが、これらの内、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は特徴とするものである。
　また、別の態様において、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合する物質（特異的結合物質）を含む。本発明において、特異的結合物質は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合する物質を意味し、そのような物質としては、レクチン、ヌクレオチド鎖に特異的に結合する物質（例えばアプタマー）、抗体又はその断片、レセプター、その他各領域に特異的に結合するポリペプチド又はオリゴペプチドなどが挙げられる。特異的結合物質が抗体である場合、そのような抗体としては、例えば、上記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法　１．総論」の項に記載された(i)～(iｘ)の抗体が挙げられるが、これらに限定されない。また、特異的結合物質がポリペプチド又はオリゴペプチドである場合、そのようなペプチドとしては、例えば、ペプチドファージディスプレイライブラリーから取得したペプチドが挙げられる。
　また、本発明の測定試薬は、試料に含まれるペリオスチン分解物の測定試薬であってもよい。より具体的には、ペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合する物質を含む、試料に含まれるペリオスチン分解物の測定試薬であってもよい。
　また別の態様において、本発明の測定試薬は、多量体ではないペリオスチンの測定試薬であってもよい。本発明において、多量体ではないペリオスチンの測定試薬とは、多量体であるペリオスチンを検出（又は測定）しない試薬を意味する。より具体的には、本発明の測定試薬は、試料に含まれるペリオスチン又はペリオスチン分解物の測定試薬であって、ペリオスチン又はペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合し、かつペリオスチンの多量体には結合しない物質を含む、試料に含まれるペリオスチン又はペリオスチン分解物の測定試薬であってもよい。
　各領域に特異的に結合する物質（特異的結合物質）の説明については上記の通りである。
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより、ペリオスチン測定の正確性を改善することができる測定試薬である。
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬において、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」とは、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことをいう。
　そして、この「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」ことについて、より具体的に説明すると、抗原と抗体、糖とレクチン、ヌクレオチド鎖とそれに特異的な物質、リガンドとレセプター等の特異的な親和性を有する物質間の反応を利用して試料中に含まれるペリオスチン又はその分解物を測定する場合に、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合することができる特異的結合物質を使用すること等により、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　例えば、この特異的結合物質が抗体の場合、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができる抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用すること等により、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　ところで、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のいずれか一つを検出するものであってもよいし、或いはペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域の二つ以上のものを検出するものであってもよい。
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬としては、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物を抗原抗体反応を利用して測定する測定試薬であって、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を含有するものであることが好ましい。
　この抗ペリオスチン特定領域抗体としては、例えば、上記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法　１．総論」の項に記載された(i)～(ix)の抗体が挙げられるが、これらに限定されない。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬において、この測定試薬を用いて試料に含まれるペリオスチンを測定するのに、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、これらの抗体のいずれもが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体及び固相化抗体のいずれもが、この抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　ところで、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体のうち、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体を、試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定する測定試薬に含有させると、測定の正確性の改善度が更に高いために好ましいが、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬を用いたペリオスチンの測定において、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、一方の抗体がペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であるときは、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　ところで、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、１種類のものだけではなく、複数種類のものを含有させてもよい。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体の詳細については、前記の「〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体」の項に記載した通りである。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、測定の正確性を改善することができるものであり、疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において好適である。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、癌又は肺疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より好適である。
　そして、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、胆管細胞癌、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、特に好適である。
２．試料
　本発明における試料については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「３．試料」に記載した通りである。
３．測定対象物質
　本発明における測定対象物質については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「４．測定対象物質」に記載した通りである。
４．抗原抗体反応を利用した測定試薬
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬としては、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物を抗原抗体反応を利用して測定する測定試薬であって、抗ペリオスチン特定領域抗体を含有するものが好ましいが、この抗ペリオスチン特定領域抗体を含有するものであれば、特にそのペリオスチン測定の測定原理に限定されるものではなく、所期の効果を奏するものである。
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬の測定原理としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、発光免疫測定法（ＬＩＡ）、酵素抗体法、蛍光抗体法、イムノクロマトグラフィー法、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応測定法、赤血球凝集反応法、粒子凝集反応法、特開平９－２２９９３６号公報及び特開平１０－１３２８１９号公報などに記載された測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定され、これで被覆された面を有する担体、及び測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定された粒子を用いる測定法、又はＤａｈｌｂｅａｃｋらが示したＥＬＳＡ法（Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ　Ｌｉｇａｎｄｓｏｒｂｅｎｔ　Ａｓｓａｙ）（Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．，７９巻，７６７～７７２頁，１９９８年発行；国際公開第９８／２３９６３号パンフレット）等を挙げることができる。
　そして、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬による測定は、サンドイッチ法、競合法又は均一系法（ホモジニアス系法）等のいずれの手法をも、適用することができる。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬による測定は、用手法により行ってもよいし、又は分析装置等の装置を用いて行ってもよい。
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、一つの測定試薬よりなるものであってよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、その一つの測定試薬に含有される。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、二つ以上の測定試薬より構成されるものであってよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、二つ以上の測定試薬の内の一つの測定試薬に含有されるものであってもよく、また、二つ以上の測定試薬に含有されるものであってもよい。
　例えば、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬が、第１試薬及び第２試薬の二つの測定試薬より構成されるものである場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、第１試薬にのみ含有させてもよく、また、第２試薬にのみ含有させてもよく、更には、第１試薬と第２試薬の両方に含有させてもよい。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬の溶媒としては、各種の水系溶媒を用いることができる。
　この水系溶媒としては、例えば、水、若しくは生理食塩水等を挙げることができ、又は、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液〔Ｔｒｉｓ緩衝液〕、リン酸緩衝液、若しくはリン酸緩衝生理食塩水などの各種緩衝液等を挙げることができる。
　この緩衝液のｐＨについては、適宜適当なｐＨを選択して用いればよく、特に制限はないものの、通常は、ｐＨ５～ｐＨ１０の範囲内のｐＨを選択して用いることが一般的である。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬には、抗ペリオスチン特定領域抗体等の他に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、カゼイン若しくはその塩などのタンパク質；カルシウムイオンなどの各種金属イオン；カルシウム塩などの各種塩類；各種糖類；脱脂粉乳；正常ウサギ血清などの各種動物血清；アジ化ナトリウム若しくは抗生物質などの各種防腐剤；活性化物質；反応促進物質；ポリエチレングリコールなどの感度増加物質；非特異的反応抑制物質；又は、非イオン性界面活性剤、両イオン性界面活性剤若しくは陰イオン性界面活性剤などの各種界面活性剤等の１種又は２種以上を適宜含有させてもよい。
　なお、これらを本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬に含有させる際の濃度は特に限定されるものではないが、０．００１～１０％（Ｗ／Ｖ）が好ましく、特に０．０１～５％（Ｗ／Ｖ）が好ましい。
　そして、前記の界面活性剤としては、例えば、ソルビタン脂肪酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル、デカグリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル、ポリエチレングリコール脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンフィトステロール、フィトスタノール、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、ポリオキシエチレンヒマシ油、硬化ヒマシ油若しくはポリオキシエチレンラノリンなどの非イオン性界面活性剤；酢酸ベタインなどの両性界面活性剤；又は、ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩若しくはポリオキシエチレンアルキルエーテル酢酸塩などの陰イオン性界面活性剤等を挙げることができる。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、そのもの単独にて、販売し、又は試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定に使用することができる。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、他の試薬と組み合わせて、販売し、又は試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定に使用することもできる。
　前記の他の試薬としては、例えば、緩衝液、試料希釈液、試薬希釈液、標識物質を含有する試薬、発色などのシグナルを生成する物質を含有する試薬、又は校正（キャリブレーション）を行うための物質を含有する試薬等を挙げることができる。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、水系溶媒を含有する第１試薬と、抗ペリオスチン特定領域抗体を含有する第２試薬とを含む、ペリオスチンの測定試薬であってもよい。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、測定試薬キットであることが好ましい。
５．標識抗体を用いた免疫学的測定方法を測定原理とする測定試薬
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬が、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法又は発光免疫測定法等の標識抗体を用いた免疫学的測定方法、すなわち標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法を測定原理とする場合には、サンドイッチ法又は競合法等により行うことができるが、サンドイッチ法により実施する時には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる固相化抗体及び標識抗体のいずれの抗体もが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　また、前記の通りサンドイッチ法により測定を行う際に、標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合には、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　なお、標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法を測定原理とする本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬に関し、その標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「５．標識抗体を用いた免疫学的測定方法」に記載した通りである。
６．凝集反応法による免疫学的測定方法を測定原理とする測定試薬
　本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬が、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の免疫複合体凝集物の生成を、その透過光や散乱光を光学的方法により測るか、又は目視的に測る測定方法により実施する場合には、すなわち、抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法（凝集反応法）を測定原理とする場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる抗体が抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　なお、前記の凝集反応法を測定原理とする場合、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であってよく、正確性の改善度が高いので好ましい。
　また、前記の凝集反応法を測定原理とする場合、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、「抗ペリオスチン特定領域抗体」又は「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」を含有する。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬が二つの測定試薬より構成される場合、「抗ペリオスチン特定領域抗体」又は「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」は、第２試薬に含有させることが好ましい。
　そして、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬が二つ以上の測定試薬より構成されるものである場合、「抗ペリオスチン特定領域抗体」又は「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」を含有する試薬以外の試薬、すなわち、「抗ペリオスチン特定領域抗体」も「抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体」も含有しない試薬は、例えば前記の水系溶媒を含有する試薬等であってよい。
　なお、例えば、ラテックス比濁法を測定原理とする場合、固相担体として用いるラテックス粒子の粒径については、特に制限はないものの、ラテックス粒子が測定対象物質（ペリオスチン）を介して結合し、凝集塊を生成する程度、及びこの生成した凝集塊の測定の容易さ等の理由より、ラテックス粒子の粒径は、その平均粒径が、０．０４～１μｍであることが好ましい。
　また、ラテックス比濁法を測定原理とする場合、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させたラテックス粒子を含ませる濃度については、試料に含まれるペリオスチンの濃度、抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体のラテックス粒子表面上での分布密度、ラテックス粒子の粒径、試料と測定試薬の混合比率等の各種条件により最適な濃度は異なるので一概にいうことはできない。
　しかし、通常は、試料と測定試薬が混合され、ラテックス粒子に固定化された「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」と試料に含まれていた「ペリオスチン」との抗原抗体反応が行われる測定反応時に、「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体」を固定化させたラテックス粒子の濃度が、反応混合液中において０．００５～１％（ｗ／ｖ）となるようにするのが一般的であり、この場合、反応混合液中においてこのような濃度になるような濃度の「抗ペリオスチン特定領域抗体等の抗体を固定化させたラテックス粒子」を測定試薬に含ませる。
　また、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の間接凝集反応法を測定原理とする場合、固相担体として用いる粒子の粒径については、特に制限はないものの、その平均粒子径が０．０１～１００μｍの範囲内にあることが好ましく、０．５～１０μｍの範囲内にあることがより好ましい。そして、これらの粒子の比重は、１～１０の範囲内にあることが好ましく、１～２の範囲内にあることがより好ましい。
　なお、ラテックス凝集反応法、赤血球凝集反応法又は粒子凝集反応法等の間接凝集反応法を測定原理とする場合の測定に使用する容器としては、例えば、ガラス、ポリスチレン、ポリ塩化ビニル又はポリメタクリレートなどからなる、試験管、マイクロプレート（マイクロタイタープレート）又はトレイ等を挙げることができる。
　これらの容器の溶液収容部分（マイクロプレートのウェル等）の底面は、Ｕ型、Ｖ型又はＵＶ型等の底面中央から周辺にかけて傾斜を持つ形状であることが好ましい。
　また、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬は、水系溶媒を含有する第１試薬と、抗ペリオスチン特定領域抗体を固定化した固相担体を含有する第２試薬とを含む、ペリオスチン又はその分解物の測定試薬であってもよい。
　なお、本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬においては、固相担体がラテックス粒子であることが好ましい。
　なお、抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法を測定原理とする本発明のペリオスチン又はその分解物の測定試薬に関し、その抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「６．凝集反応法による免疫学的測定方法」に記載した通りである。
〔４〕ペリオスチン測定の正確性の改善方法
１．総論
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、試料に含まれるペリオスチンの量又は濃度の測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とするものである。
　ペリオスチンは、そのＮ末端側よりＣ末端側にかけて順に、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域、Ｒ３領域、Ｒ４領域及びＣ末端領域より構成されるものであるが、これらの内、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は特徴とするものである。
　また、本発明の改善方法は、試料に含まれるペリオスチン分解物の量又は濃度の測定において、ペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とするものであってもよい。
　また別の態様において、本発明の改善方法は、多量体ではないペリオスチンの量又は濃度の測定において、ペリオスチン又はペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、かつペリオスチンの多量体は検出（又は測定）しないことを特徴とするものであってもよい。
　この本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、試料に含まれるペリオスチンの量又は濃度の測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより、ペリオスチン測定の正確性を改善することができる方法である。
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法において、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」とは、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことをいう。
　そして、この「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」ことについて、より具体的に説明すると、抗原と抗体、糖とレクチン、ヌクレオチド鎖とそれに特異的な物質、リガンドとレセプター等の特異的な親和性を有する物質間の反応を利用して試料中に含まれるペリオスチンを測定する場合に、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合することができる特異的結合物質を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域にこの特異的結合物質が結合すること等ができ、そしてこれによってペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　例えば、この特異的結合物質が抗体の場合、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができる抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域にこの抗ペリオスチン特定領域抗体が結合すること等ができ、そしてこれによってペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　ところで、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法においては、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のいずれか一つを検出するものであってもよいし、或いはペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域の二つ以上のものを検出するものであってもよい。
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法としては、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定において、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用するものであることが好ましい。
　この抗ペリオスチン特定領域抗体としては、例えば、上記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法　１．総論」の項に記載された(i)～(ix)の抗体が挙げられるが、これらに限定されない。
　また、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法において、試料に含まれるペリオスチンを測定するのに、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、これらの抗体のいずれもが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体及び固相化抗体のいずれもが、この抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　ところで、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体のうち、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体を、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定に使用すると、測定の正確性の改善度が更に高いために好ましいが、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法において、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、一方の抗体がペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であるときは、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　ところで、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、１種類のものだけではなく、複数種類のものを同時に使用してもよい。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体の詳細については、前記の「〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体」の項に記載した通りである。
　なお、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、ペリオスチン測定の正確性を改善することができるものであり、疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において好適である。
　また、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、癌又は肺疾患の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より好適である。
　そして、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、胆管細胞癌、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、より更に好適である。
　そして、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法は、間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査のための測定において、特に好適である。
２．試料
　本発明における試料については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「３．試料」に記載した通りである。
３．測定対象物質
　本発明における測定対象物質については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「４．測定対象物質」に記載した通りである。
４．抗原抗体反応を利用した測定
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法としては、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定において、抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものが好ましいが、この抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものであれば、特にその測定原理に限定されるものではなく、所期の効果を奏するものである。
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定の測定原理としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、発光免疫測定法（ＬＩＡ）、酵素抗体法、蛍光抗体法、イムノクロマトグラフィー法、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応測定法、赤血球凝集反応法、粒子凝集反応法、特開平９－２２９９３６号公報及び特開平１０－１３２８１９号公報などに記載された測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定され、これで被覆された面を有する担体、及び測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定された粒子を用いる測定法、又はＤａｈｌｂｅａｃｋらが示したＥＬＳＡ法（Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ　Ｌｉｇａｎｄｓｏｒｂｅｎｔ　Ａｓｓａｙ）（Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．，７９巻，７６７～７７２頁，１９９８年発行；国際公開第９８／２３９６３号パンフレット）等を挙げることができる。
　そして、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定は、サンドイッチ法、競合法又は均一系法（ホモジニアス系法）等のいずれの手法をも、適用することができる。
　また、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定は、用手法により行ってもよいし、又は分析装置等の装置を用いて行ってもよい。
　本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定は、一つの測定試薬のみを使用するもの（１試薬法、又は１ステップ法）であってよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、その一つの測定試薬に含有される。
　また、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定は、二つ以上の測定試薬を使用するもの（多試薬法、又は多ステップ法）であってもよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、二つ以上の測定試薬の内の一つの測定試薬に含有されるものであってもよく、また、二つ以上の測定試薬に含有されるものであってもよい。
　例えば、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定が、第１試薬及び第２試薬の二つの測定試薬を使用するものである場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、第１試薬にのみ含有させてもよく、また、第２試薬にのみ含有させてもよく、更には、第１試薬と第２試薬の両方に含有させてもよい。
　なお、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定に使用する溶媒としては、前記の各種の水系溶媒を用いることができる。
　なお、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定に関し、標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「５．標識抗体を用いた免疫学的測定方法」に記載した通りである。
　また、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定に関し、抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「６．凝集反応法による免疫学的測定方法」に記載した通りである。
　そして、本発明のペリオスチン測定の正確性の改善方法におけるペリオスチン測定に関し、「測定時の他の成分」の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「７．測定時の他の成分」に記載した通りである。
〔５〕．肺線維症又は間質性肺炎の検査方法
１．総論
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、次の工程を含むものである。
ａ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを含む工程
ｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する工程
　ペリオスチンは、そのＮ末端側よりＣ末端側にかけて順に、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域、Ｒ３領域、Ｒ４領域及びＣ末端領域より構成されるものであるが、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法においては、試料に含まれるペリオスチンを測定するに当たり、これらの内、ＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する工程を含む。
　更に、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法においては、被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する工程を含む。
　この本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより、その測定の感度、又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善することができる検査方法である。
　これにより、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、正確なペリオスチンの測定値を得ることができ、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができる検査方法である。
　また、本発明の検査方法は、被検者由来の試料におけるペリオスチン分解物を測定する工程を含むものであってもよい。より具体的には、本発明の検査方法は次の工程を含むものであってもよい。
ａ）　被検者由来の試料におけるペリオスチン分解物の量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを含む工程
ｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチン分解物の量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチン分解物の量又は濃度とを比較する工程
　また別の態様において、本発明の検査方法は、多量体ではないペリオスチンを検出（又は測定）することを含むものであってもよい。より具体的には、本発明の検査方法は次の工程を含むものであってもよい。
ａ）　被検者由来の試料におけるペリオスチン又はペリオスチン分解物の量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチン又はペリオスチン分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、かつペリオスチンの多量体を検出しない工程
ｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチン又はペリオスチン分解物の量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチン又はペリオスチン分解物の量又は濃度とを比較する工程
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法において、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」とは、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことをいう。
　そして、この「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する」ことについて、より具体的に説明すると、抗原と抗体、糖とレクチン、ヌクレオチド鎖とそれに特異的な物質、リガンドとレセプター等の特異的な親和性を有する物質間の反応を利用して試料中に含まれるペリオスチンを測定する場合に、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合することができる特異的結合物質を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域にこの特異的結合物質が結合すること等ができ、そしてこれによってペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　例えば、この特異的結合物質が抗体の場合、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合することができる抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用すること等により、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域にこの抗ペリオスチン特定領域抗体が結合すること等ができ、そしてこれによってペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域について、その存在を見出すこと、又はその存在量を見出すことができる。すなわち、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することができる。
　ところで、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法においては、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のいずれか一つを検出するものであってもよいし、或いはペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域の二つ以上のものを検出するものであってもよい。
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法としては、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定において、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体（抗ペリオスチン特定領域抗体）を使用するものであることが好ましい。
　この抗ペリオスチン特定領域抗体としては、例えば、上記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法　１．総論」の項に記載された(i)～(ix)の抗体が挙げられるが、これらに限定されない。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法において、試料に含まれるペリオスチンを測定するのに、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、これらの抗体のいずれもが抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体及び固相化抗体のいずれもが、この抗ペリオスチン特定領域抗体である必要がある。
　ところで、本発明における抗ペリオスチン特定領域抗体のうち、ペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体を、試料に含まれるペリオスチンの抗原抗体反応を利用した測定に使用すると、測定の正確性の改善度が更に高いために好ましいが、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法において、例えば、ペリオスチン一分子に二分子の抗体を抗原抗体反応させる場合、一方の抗体がペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体であるときは、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　例えば、このペリオスチンの測定が、酵素標識抗体と固相化抗体を用いるＥＬＩＳＡ法のサンドイッチ法による場合には、試料に含まれていたペリオスチンに結合させる酵素標識抗体又は固相化抗体のいずれかがペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である場合、他方の抗体は必ずしもペリオスチンの多量体に結合しない抗ペリオスチン特定領域抗体である必要は無く、抗ペリオスチン特定領域抗体であればよい。
　ところで、前記の抗ペリオスチン特定領域抗体は、１種類のものだけではなく、複数種類のものを同時に使用してもよい。
　なお、この抗ペリオスチン特定領域抗体の詳細については、前記の「〔１〕抗ペリオスチン特定領域抗体」の項に記載した通りである。
　なお、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、肺線維症又は間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査において好適である。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、肺線維症の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査において、特に好適である。
　そして、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、間質性肺炎の罹患の有無又はその程度（病状等）の検査において、特に好適である。
２．試料
　本発明における試料については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「３．試料」に記載した通りである。
３．測定対象物質
　本発明における測定対象物質については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「４．測定対象物質」に記載した通りである。
４．抗原抗体反応を利用した測定
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法としては、試料に含まれるペリオスチンを抗原抗体反応を利用して測定することによる肺線維症又は間質性肺炎の検査方法であって、抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものが好ましいが、この抗ペリオスチン特定領域抗体を使用するものであれば、特にその測定原理に限定されるものではなく、所期の効果を奏するものである。
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定の測定原理としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、発光免疫測定法（ＬＩＡ）、酵素抗体法、蛍光抗体法、イムノクロマトグラフィー法、免疫比濁法、ラテックス比濁法、ラテックス凝集反応測定法、赤血球凝集反応法、粒子凝集反応法、特開平９－２２９９３６号公報及び特開平１０－１３２８１９号公報などに記載された測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定され、これで被覆された面を有する担体、及び測定対象物質（被検物質）に対する特異的結合物質が固定された粒子を用いる測定法、又はＤａｈｌｂｅａｃｋらが示したＥＬＳＡ法（Ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ　Ｌｉｇａｎｄｓｏｒｂｅｎｔ　Ａｓｓａｙ）（Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．，７９巻，７６７～７７２頁，１９９８年発行；国際公開第９８／２３９６３号パンフレット）等を挙げることができる。
　そして、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定は、サンドイッチ法、競合法又は均一系法（ホモジニアス系法）等のいずれの手法をも、適用することができる。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定は、用手法により行ってもよいし、又は分析装置等の装置を用いて行ってもよい。
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定は、一つの測定試薬のみを使用するもの（１試薬法、又は１ステップ法）であってよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、その一つの測定試薬に含有される。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定は、二つ以上の測定試薬を使用するもの（多試薬法、又は多ステップ法）であってもよい。
　この場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、二つ以上の測定試薬の内の一つの測定試薬に含有されるものであってもよく、また、二つ以上の測定試薬に含有されるものであってもよい。
　例えば、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定が、第１試薬及び第２試薬の二つの測定試薬を使用するものである場合、抗ペリオスチン特定領域抗体は、第１試薬にのみ含有させてもよく、また、第２試薬にのみ含有させてもよく、更には、第１試薬と第２試薬の両方に含有させてもよい。
　なお、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定に使用する溶媒としては、前記の各種の水系溶媒を用いることができる。
　なお、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定に関し、標識抗体を用いる抗原抗体反応を利用した測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「５．標識抗体を用いた免疫学的測定方法」に記載した通りである。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定に関し、抗原抗体反応による複合体の凝集物の生成を測る測定方法の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「６．凝集反応法による免疫学的測定方法」に記載した通りである。
　そして、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法におけるペリオスチン測定に関し、「測定時の他の成分」の詳細については、前記「〔２〕．ペリオスチンの測定方法」の「７．測定時の他の成分」に記載した通りである。
５．ペリオスチンの量又は濃度の比較
　本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法においては、試料に含まれるペリオスチンを、前記の通り、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより測定し、そして、被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する。
　すなわち、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法においては、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより測定を行った被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料について、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することにより測定を行ったペリオスチンの量又は濃度とを、比較する。
　なお、試料に含まれるペリオスチンを測定するに当たり、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することの詳細については、前記の通りである。
　前記の被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較することであるが、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度に比べて、当該被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度が高い場合には、当該被検者が肺線維症又は間質性肺炎に罹患している可能性が高いことを示している。
　また、被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度の上昇は、当該被検者の肺線維症又は間質性肺炎の病状が憎悪している可能性が高いことを示している。
　例えば、被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度が、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料（対照試料）におけるペリオスチンの量又は濃度と比較して高い場合、例えば、約20％以上、約30％以上、約40％以上、約50％以上、約60％以上、約70％以上、約80％以上、約90％以上、約95％以上、または約100％以上高い場合に肺線維症又は間質性肺炎に罹患している可能性が高いと判断できる。
　ここで、（i）被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と（ii）肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料（対照試料）におけるペリオスチンの量又は濃度との差は、肺線維症又は間質性肺炎の検出または診断の臨界値となるものであり、例えば次のように設定しても良い。
　先ず、2例以上の肺線維症又は間質性肺炎患者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定し、その平均値（A）を求める。このとき、対象となる患者の例数は2例以上であり、例えば、5例以上、10例以上、50例以上、または100例以上である。一方、2例以上の対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定し、その平均値（B）を求める。このとき、対象となる対照試料の例数は2例以上であり、例えば、5例以上、10例以上、50例以上、または100例以上である。そして、求めた平均値AおよびBから［（A－B）／B］×100（％）を計算して、肺線維症又は間質性肺炎患者由来の生体試料におけるペリオスチンの量又は濃度の平均値が対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度の平均値と比較して何％高いかを求める。このようにして求めた値を、（i）被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と（ii）対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度との差（臨界値）として設定する。すなわち、（i）の場合のペリオスチンの量又は濃度が、（ii）の場合のペリオスチンの量又は濃度と比較して求めた差以上に高い場合（例えば、統計的に有意に高い場合）に、肺線維症又は間質性肺炎に罹患している可能性が高いと判断できる。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法では、試料におけるペリオスチンの量又は濃度の測定値を平均値（A）および（B）に組み入れて、対象となる患者の例数および対象となる健常者等（健常者、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない者など）の例数を増やすのが好ましい。例数を増やすことにより、肺線維症又は間質性肺炎の検出または診断の精度を高めることができる。また、求めた対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度の平均値（B）を、「（ii）対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度」としても良い。
　本発明の別のいくつかの態様によれば、測定した被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度が、所定タンパク質量以上であるときに、肺線維症又は間質性肺炎に罹患している可能性が高いと判断するようにしてもよい。
　そして、肺線維症又は間質性肺炎に罹患している可能性が高いと判断するための「所定タンパク質量」は、例えば、次のように求めることができる。先ず、2例以上の肺線維症又は間質性肺炎患者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定する。このとき、対象となる患者の例数は2例以上であり、例えば、5例以上、10例以上、50例以上、または100例以上である。一方、2例以上の対照試料におけるペリオスチンの量又は濃度も測定する。このとき、対象となる対照試料の例数は2例以上であり、例えば、5例以上、10例以上、50例以上、または100例以上である。そして、肺線維症又は間質性肺炎患者由来の試料群と対照試料群の両方を含む全体から、肺線維症又は間質性肺炎患者由来の試料群を抽出しうる、ペリオスチンの量又は濃度の至適閾値（cut－off値）を、統計処理により求める。統計処理としては、
例えば、Receiver－Operating－Characteristics（ROC）曲線を用いた解析等が挙げられる。
　以下、本発明を実施例等により具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例等により限定されるものではない。
〔参考例１〕（ペリオスチン及び部分ペリオスチンの調製）
　抗体のエピトープの特定等のため、次のペリオスチン及び部分ペリオスチン（ペリオスチンの部分よりなるもの）を調製した。
（１）ペリオスチンの調製
　ペリオスチン（ヌクレオチド配列：核酸データベースＧｅｎＢａｎｋのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ　ＮｕｍｂｅｒＤ１３６６６のヌクレオチド配列、アミノ酸配列：核酸データベースＧｅｎＢａｎｋのＡｃｃｅｓｓｉｏｎ　ＮｕｍｂｅｒＢＡＡ０２８３７のアミノ酸配列）にＶ５／Ｈｉｓタグを付加させたリコンビナントペリオスチンタンパク質を昆虫細胞であるＳ２細胞において発現させた上で精製した。
　具体的には、Ｓ２細胞の形質転換体は次のように調製した。
　ｐＭＴ／Ｂｉｐ／Ｖ５－ＨｉｓＡプラスミド（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）にペリオスチンの上記部分をコードするｃＤＮＡを挿入して、これをｐＭＴ／Ｂｉｐ／ｐｅｒｉｏｓｔｉｎ－Ｖ５－ＨｉｓＡとした。
　次に、Ｓ２細胞にこのｐＭＴ／Ｂｉｐ／ｐｅｒｉｏｓｔｉｎ－Ｖ５－ＨｉｓＡ及びハイグロマイシン耐性遺伝子を発現するプラスミドであるｐＡｃＨｙｇｒｏ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、米国カリフォルニア州Ｃａｒｌｓｂａｄ）を公知の方法で共導入し、形質転換した。
　次に、ハイグロマイシンにより形質転換体を選択し、安定形質転換体を得た。
　そして、Ｓ２細胞の形質転換体では、カルボキシ末端にＶ５／Ｈｉｓタグの結合したペリオスチンを発現させた。
　そして、このＣ末端に６個のヒスチジンが結合したＳ２リコンビナントペリオスチンタンパク質の精製は次のように行った。
　まず、ペリオスチン遺伝子安定形質転換体Ｓ２細胞の培地に硫酸銅を加えることにより、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質の発現を誘導した。
　これにより、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質は培養上清中に発現分泌された。
　次に、この培養上清をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〔１３７ｍＭの塩化ナトリウム、２．６８ｍＭの塩化カリウム、１．４７ｍＭのリン酸二水素カリウム、及び８．０４ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する水溶液（ｐＨ７．４）〕に透析した後、ニッケルレジン（Ｎｉ－ＮＴＡ　Ａｇａｒｏｓｅ、Ｑｉａｇｅｎ社、ドイツ国Ｈｉｌｄｅｎ）と混合して、Ｓ２リコンビナントペリオスチンタンパク質をレジンに結合させた。
　次に、レジンを洗浄して夾雑物を取り除き、イミダゾール含有緩衝液にてＳ２リコンビナントペリオスチンタンパク質を溶出することにより、ペリオスチンを取得した。
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（２）ペリオスチンのＲ１領域及びＲ２領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＲ１領域及びＲ２領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（３）ペリオスチンのＲ２領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＲ２領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（４）ペリオスチンのＲ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＲ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（５）ペリオスチンのＲ４領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＲ４領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（６）ペリオスチンのＥＭＩ領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＥＭＩ領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
（７）ペリオスチンのＣ末端領域よりなる部分ペリオスチンの調製
　公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、Ｃ末端に６個のヒスチジン残基が結合した、ペリオスチンのＣ末端領域よりなる部分ペリオスチンを、調製し、取得した。（以下、これを「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」という）
　なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。
　なお、前記のペリオスチン、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）、部分ペリオスチン（Ｒ４領域）、部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）、及び部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）を図１に模式的に示した。
〔参考例２〕（調製したペリオスチン及び部分ペリオスチンの確認）
Ｉ．ペリオスチン、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）、及び部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）の確認
　前記参考例１で調製したペリオスチン、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ２領域）、部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）、及び部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）を、ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法で確認した。
１．試薬
　次の（１）～（１１）の試薬をそれぞれ調製した。
（１）アクリルアミド溶液
　アクリルアミド２９．２ｇ及びＮ，Ｎ’－メチレンビスアクリルアミド０．８ｇを純水に添加、混合した後１００ｍＬとして、アクリルアミド溶液〔３０％アクリルアミド保存液〕を調製した。
（２）ＳＤＳ－１．５Ｍトリス溶液
　トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕１８．２ｇ及びドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．４ｇを純水に添加、混合し、塩酸でｐＨ８．８に調整した後１００ｍＬとして、ＳＤＳ－１．５Ｍトリス溶液〔０．４％ＳＤＳ－１．５Ｍトリス塩酸緩衝液〕を調製した。
（３）ＳＤＳ－０．５Ｍトリス溶液
　トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕６．１ｇ及びドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．４ｇを純水に添加、混合し、塩酸でｐＨ６．８に調整した後１００ｍＬとして、ＳＤＳ－０．５Ｍトリス溶液〔０．４％ＳＤＳ－０．５Ｍトリス塩酸緩衝液〕を調製した。
（４）過硫酸アンモニウム溶液
　過硫酸アンモニウム１００ｍｇを純水に添加、混合した後１ｍＬとして、過硫酸アンモニウム溶液〔１０％過硫酸アンモニウム水溶液〕を調製した。
（５）ＴＥＭＥＤ溶液
　Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルエチレンジアミン（ナカライテスク社、日本国京都府）を使用した。
（６）泳動槽用緩衝液
　トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕１．５ｇ、ドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．５ｇ、及びグリシン７．２ｇを純水に添加、混合した後５００ｍＬとして、泳動槽用緩衝液〔０．１％ＳＤＳ－１９２ｍＭグリシン－２５ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（７）ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ固定液
　メタノール１０ｍＬ、及び酢酸７ｍＬを、純水８３ｍＬと混合して、ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ固定液を調製した。
（８）ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ染色液
　ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ染色液は、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｐｒｏｂｅｓ社（Ｅｕｇｅｎｅ、オレゴン州、米国）のＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｇｅｌ　ｓｔａｉｎを使用した。
（９）ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ脱色液
　メタノール１０ｍＬ、及び酢酸７ｍＬを、純水８３ｍＬと混合して、ＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ脱色液を調製した。
（１０）試料処理液
　ドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．４ｇ、２－メルカプトエタノール１．２ｍＬ、１Ｍのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕－塩酸緩衝液（ｐＨ６．８）の１ｍＬ、及びグリセリン２ｍＬを純水に添加、混合した後１０ｍＬとして、試料処理液〔４％ＳＤＳ－１２％２－メルカプトエタノール－２０％グリセリン－１００ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
２．試料
　前記参考例１の（１）～（４）及び（７）で調製した、次のペリオスチン及び部分ペリオスチンをそれぞれ試料とした。また、次の分子量マーカーも試料とした。
（ａ）ペリオスチン
（ｂ）部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）
（ｃ）部分ペリオスチン（Ｒ２領域）
（ｄ）部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）
（ｅ）部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）
（ｆ）分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕
３．電気泳動
　前記１で調製した試薬を使用し、前記２の試料のそれぞれについて、次の操作によりＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行った。
（１）前記１の（１）、（２）、（４）、（５）で調製した試薬及び純水を用いて、アクリルアミド濃度が１３．５％の分離ゲル溶液を調製した。
　この分離ゲル溶液を、組み立てたガラスプレートに注入した後、純水を上に重層し、そしてゲル化反応を３０分間行わせた。
（２）前記１の（１）、（３）、（４）、（５）で調製した試薬及び純水を用いて、アクリルアミド濃度が１．３％の濃縮ゲル溶液を調製した。
　前記（１）のガラスプレートより純水を捨て、ここにこの濃縮ゲル溶液を少量注入し洗浄した後、濃縮ゲル溶液を注入した。そして、ここにサンプルコウムを挿入し、そしてゲル化反応を３０分間行わせた。
（３）　前記２の（ａ）～（ｅ）の試料のそれぞれについて、前記１の（１０）の試料処理液と１：１の量比で混合し、１００℃で１０分間処理した。
（４）　下部泳動槽に前記１の（６）の泳動槽用緩衝液を入れた。次に、前記（２）のゲルよりサンプルコウムを抜き洗浄した後、泳動槽にセットした。そして次に、上部泳動槽に前記１の（６）の泳動槽用緩衝液を入れた。
（５）　前記（３）の処理を行った各試料の２０μＬ及び前記２の（ｆ）の分子量マーカーの試料５μＬのそれぞれについて、前記（４）のゲルのコウム穴に注入した。
　なお、このゲルに注入した前記（３）の処理を行った試料及び前記２の（ｆ）の分子量マーカーの試料であるが、レーン（ａ）に前記の「ペリオスチン」を、その右側のレーン（ｂ）に前記の「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」を、その右側のレーン（ｃ）に前記の「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」を、その右側のレーン（ｄ）に前記の「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」を、その右側のレーン（ｅ）に前記の「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」を、そしてレーン（ａ）の左側のレーンに前記の「分子量マーカー」を注入した。
（６）　次に、３０ｍＡの電流で６０分間泳動を行った。
（７）　前記（６）の泳動を終了した後、ゲルをガラスプレートより出し、前記１の（７）のＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ固定液に浸漬し、３０分間ゆっくり振とうして固定を行った。
（８）　前記（７）で固定を行ったゲルを、前記１の（８）のＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ染色液に浸漬し、３時間ゆっくり振とうして染色を行った。
（９）　前記（８）で染色を行ったゲルを、前記１の（９）のＳＹＰＲＯ　Ｒｕｂｙ脱色液に浸漬し、３０分間ゆっくり振とうして、脱色を行った。
（１０）　前記（９）で脱色したゲルを撮影した。
４．結果
　前記３の（１０）で撮影したゲルを図２に示した。
　このゲルの電気泳動像において、前記参考例１の（１）～（４）及び（７）で調製した、「ペリオスチン」（「（ａ）」と表記したレーン）、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」（「（ｂ）」と表記したレーン）、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」（「（ｃ）」と表記したレーン）、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」（「（ｄ）」と表記したレーン）及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」（「（ｅ）」と表記したレーン）のそれぞれが、相当する分子量の位置にバンドを存在させていることが分かる。（矢印で示したバンド。）
　すなわち、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」をそれぞれ調製できていることが確認できた。
ＩＩ．部分ペリオスチン（Ｒ４領域）、及び部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）の確認
　前記参考例１で調製した部分ペリオスチン（Ｒ４領域）、及び部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）を、ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法及びウエスタンブロッティング法で確認した。
〔１〕ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法
１．試薬
　次の（１）～（４）の試薬をそれぞれ調製した。
（１）ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル
　Ｆｕｎａｋｏｓｈｉ　Ｅａｓｙ－Ｇｅｌ（ＩＩＩ）　プリキャスト・ゲル（１５％）（フナコシ社、日本国東京都）を使用した。
（２）泳動槽用緩衝液
　前記Ｉの１の（６）の記載の通りに調製を行い、泳動槽用緩衝液〔０．１％ＳＤＳ－１９２ｍＭグリシン－２５ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（３）試料処理液
　前記Ｉの１の（１０）の記載の通りに調製を行い、試料処理液〔４％ＳＤＳ－１２％２－メルカプトエタノール－２０％グリセリン－１００ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
２．試料
　前記参考例１の（１）、（５）及び（６）で調製した、次のペリオスチン及び部分ペリオスチンをそれぞれ試料とした。
　また、公知の文献（Ｉ．Ｔａｋａｙａｍａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１４６巻，５号，７１３～７２３頁，２００９年発行等）の記載に従い、ペリオスチンのＣ末端領域のエクソン１７、エクソン１８及びエクソン２１を欠くペリオスチンであって、そのＣ末端に６個のヒスチジン残基が結合したペリオスチン（部分ペリオスチン）を、調製し（以下、これを「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」という）、これも試料とした。〔なお、作成したプラスミドのＤＮＡの配列を確認し、組み込まれた配列が目的通りのものであることを確認した。〕
　更に、次の分子量マーカーも試料とした。
（ａ）部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）
（ｂ）部分ペリオスチン（Ｒ４領域）
（ｃ）ペリオスチン
（ｄ）部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）
（ｅ）分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕
３．電気泳動
　前記１で調製した試薬を使用し、前記２の試料のそれぞれについて、次の操作によりＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行って、ペリオスチン及び部分ペリオスチン等の各々をその分子量に従って位置させたゲルを取得した。
（１）　前記２の（ａ）～（ｄ）の試料のそれぞれについて、前記１の（３）の試料処理液と１：１の量比で混合した後、１００℃で１０分間、煮沸処理を行った。
（２）　下部泳動槽に前記１の（２）の泳動槽用緩衝液を入れた。次に、前記１の（１）のＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲルを泳動槽にセットした。そして次に、上部泳動槽に前記１の（２）の泳動槽用緩衝液を入れた。
（３）　前記（１）の処理を行った各試料の２０μＬ及び前記２の（ｅ）の分子量マーカーの試料の５μＬそれぞれについて、前記（２）のゲルのコウム穴に注入した。
　なお、このゲルに注入した前記（１）の処理を行った試料及び前記２の（ｅ）の分子量マーカーの試料であるが、レーン（ａ）に前記の「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」を、その右側のレーン（ｂ）に前記の「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」を、その右側のレーン（ｃ）に前記の「ペリオスチン」を、その右側のレーン（ｄ）に前記の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」を、そしてレーン（ａ）の左側のレーン（ｅ）に前記の「分子量マーカー」を注入した。
（４）　次に、３０ｍＡの電流で６０分間泳動を行った。
（５）　前記（４）の泳動を終了した後、ゲルをガラスプレートより取り出した。
〔２〕ウエスタンブロッティング法
１．ウエスタンブロッティング
（１）　前記〔１〕の３で取得したゲルの転写を、トランスブロットＳＤセル（ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国）を用いて、その使用説明書に従い、セミドライ方式で行った。
　まず、前記〔１〕の３で取得したゲルを転写用装置上に置いた。
　次に、このゲルの上に、９ｃｍ×９ｃｍのポリビニルジフルオライド膜（ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国）を重ね、４８ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕、３９ｍＭグリシン、０．０３７５％（Ｗ／Ｖ）ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）及び２０％（Ｖ／Ｖ）メタノールよりなる転写用緩衝液を用いて、電流２００ｍＡで２時間転写を行い、前記のペリオスチン又は部分ペリオスチンを前記ゲルより前記ポリビニルジフルオライド膜に転写した。
（２）　ペリオスチン又は部分ペリオスチンの転写を行った前記ポリビニルジフルオライド膜をブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕の２０ｍＬに２５℃で２時間浸漬して、ブロッキングを行った。
（３）　次に、これを洗浄液〔０．０５％ツイーン２０（Ｔｗｅｅｎ２０）を含むリン酸緩衝生理食塩水〕の２０ｍＬ中で１０分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（４）　前記のペリオスチン又は部分ペリオスチンのヒスチジン－タグに対するラット由来の抗体を２０ｍＬのリン酸緩衝生理食塩水に１００μｇ溶解し、この溶液に前記（３）の操作を行ったポリビニルジフルオライド膜を室温で１８時間浸漬して反応させた。
（５）　前記（４）の操作を行ったポリビニルジフルオライド膜を、２０ｍＬの洗浄液中で１０分間振とう洗浄を行った。これを３回行った。
（６）　次に、パーオキシダーゼ標識抗ラットＩｇＧ抗体（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）を、ＰＢＳで２０００倍希釈をして、２０ｍＬの溶液を調製し、これに前記（５）のポリビニルジフルオライド膜を室温で１時間浸漬して反応させた。
（７）　このポリビニルジフルオライド膜を、２０ｍＬの洗浄液中で１０分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（８）　ＥＣＬ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｒｅａｇｅｎｔｓ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）の２ｍＬに、前記（７）のそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を室温で１分間浸漬して発光させた。
（９）　前記（８）で発光させたポリビニルジフルオライド膜を撮影した。
２．結果
　前記１の（９）で撮影したポリビニルジフルオライド膜を図３に示した。
　このポリビニルジフルオライド膜のウエスタンブロッティング像において、前記参考例１の（１）、（５）及び（６）で調製した、「ペリオスチン」（「（ｃ）」と表記したレーン）、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」（「（ａ）」と表記したレーン）及び「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」（「（ｂ）」と表記したレーン）、並びに前記〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」（「（ｄ）」と表記したレーン）のそれぞれが、相当する分子量の位置にバンドを存在させていることが分かる。（矢印で示したバンド。）
　すなわち、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」及び「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」をそれぞれ調製できていることが確認できた。
〔実施例１〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－１回目）
　以下の手順により、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（１回目）
（１）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチン溶液１容量に対して、化学合成アジュバントとしてのＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄ（フナコシ社、日本国東京都）を１容量の割合で混合した。
（２）　次に、雌ラットの足蹠に免疫原として、１０～５０μｇの前記のペリオスチン溶液とＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄとの混合物を皮下注射し、１０日～２週間後、再度ラットの足蹠に免疫原として、１０～５０μｇの前記のペリオスチン溶液とＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄとの混合物を皮下注射した。
　なお、ここで、ラットは、Ｗｉｓｔａｒラット〔雌、６～８週齢〕（日本チャールズリバー社、日本国神奈川県横浜市）を用いた。
（３）　最終免疫より３～４日後に、免疫したラットの膝窩、鼠径、腸骨リンパ節内の細胞と、ミエローマ細胞（Ｓｐ２／Ｏ細胞）を１対１から１０対１の割合で混合し、一般的な方法でポリエチレングリコール（ＰＥＧ１５００、Ｒｏｃｈｅ社、スイス国）を加えて細胞融合させ、生育したハイブリドーマコロニーを選別した。
　具体的には、細胞融合は次のように行った。
　混合した前記リンパ節細胞とミエローマ細胞（Ｓｐ２／Ｏ細胞）を遠心して上清を除き、室温でポリエチレングリコール（ＰＥＧ１５００、Ｒｏｃｈｅ社、スイス国）１ｍＬに１分間かけて懸濁した後、３７℃で１分間撹拌した。
　血清不含培地１ｍＬを１分間かけて加え、その後、血清不含培地１０ｍＬを１分間かけて加えた。
　細胞を数回洗浄した後、ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン含有培地に懸濁して９６穴マイクロタイタープレートに分注して、３７℃において５％ＣＯ２存在下で培養した。
　生育したモノクローナル抗体産生細胞株（融合細胞株）の選別の方法としては、細胞融合から７～１４日後、免疫原に使用した前記のペリオスチンを固相化し、融合細胞培養上清を一次抗体としたＥＬＩＳＡ法の系にて行った。
　このＥＬＩＳＡ法は具体的には、次のように行った。
　１μｇ／ｍＬの前記のペリオスチンを９６穴マイクロタイタープレートに分注し、数時間固相化させた。
　この固相化溶液を洗浄した後、融合細胞培養上清を各ウェルに加え、１時間室温にて静置した。
　融合細胞培養上清を洗浄して、二次抗体としてペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ラットＩｇＧ抗体（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）を加え１時間室温に静置した。
　この二次抗体を洗浄後、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質（ＫＰＬ社、メリーランド州Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、米国）を加えて発色させ、４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ１６Ａ株と命名した。
（４）　この選別したモノクローナル抗体産生細胞株からＩｇＧを次のように精製した。
　このモノクローナル抗体産生細胞株を、ＧＩＴ培地（日本製薬社、日本国東京都）を用いてＣＯ２インキュベータ内３７℃で培養した。
　培養後、上清中のＩｇＧをプロテインＧカラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）に結合させた。
　結合させたＩｇＧを、５０ｍＭクエン酸水溶液（ｐＨ２．６）で溶出した。
　溶出液４容量に対して、１Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液〔Ｔｒｉｓ緩衝液〕１容量を添加し、精製ＩｇＧとして、ラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体を前記のモノクローナル抗体産生細胞株より取得した。
　すなわち、ＳＳ１６Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例２〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－２回目）
　前記実施例１とは別の時に、前記実施例１の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、再度、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（２回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ１７Ｂ株と命名した。
　そして、ＳＳ１７Ｂ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」という）を得ることができた。
〔実施例３〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－３回目）
　前記実施例１及び実施例２とは別の時に、前記実施例１の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、三たび、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（３回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ１８Ａ株と命名した。
　そして、ＳＳ１８Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例４〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－４回目）
　前記実施例１、実施例２及び実施例３とは別の時に、以下の手順により、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（４回目）
（１）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチン溶液１容量に対して、化学合成アジュバントとしてのＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄ（フナコシ社、日本国東京都）を１容量の割合で混合した。
（２）　次に、マウスの腹腔内に免疫原として、１０～５０μｇの前記のペリオスチン溶液とＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄとの混合物を注射し、１０日～２週間後、再度マウスの腹腔内に免疫原として、１０～５０μｇの前記のペリオスチン溶液とＴｉｔｅｒ　Ｍａｘ　Ｇｏｌｄとの混合物を注射した。
　なお、ここで、マウスは、Ｒｉｏｓらの文献（Ｈ．Ｒｉｏｓら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ａｎｄ　Ｃｅｌｌｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，２５巻，２４号，１１１３１～１１１４４頁，２００５年発行）の記載に従って得たペリオスチンノックアウトマウス（ＢＡＬＢ／ｃ）を用いた。
（３）　最終免疫より３～４日後に、免疫したマウスの脾臓の細胞と、ミエローマ細胞（Ｓｐ２／Ｏ細胞）を１対１から１０対１の割合で混合し、一般的な方法でポリエチレングリコール（ＰＥＧ１５００、Ｒｏｃｈｅ社、スイス国）を加えて細胞融合させ、生育したハイブリドーマコロニーを選別した。
　具体的には、細胞融合は次のように行った。
　混合した前記リンパ節細胞とミエローマ細胞（Ｓｐ２／Ｏ細胞）を遠心して上清を除き、室温でポリエチレングリコール（ＰＥＧ１５００、Ｒｏｃｈｅ社、スイス国）１ｍＬに１分間かけて懸濁した後、３７℃で１分間撹拌した。
　血清不含培地１ｍＬを１分間かけて加え、その後、血清不含培地１０ｍＬを１分間かけて加えた。
　細胞を数回洗浄した後、ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン含有培地に懸濁して９６穴マイクロタイタープレートに分注して、３７℃において５％ＣＯ２存在下で培養した。
　生育したモノクローナル抗体産生細胞株（融合細胞株）の選別の方法としては、細胞融合から７～１４日後、免疫原に使用した前記のペリオスチンを固相化し、融合細胞培養上清を一次抗体としたＥＬＩＳＡ法の系にて行った。
　このＥＬＩＳＡ法は具体的には、次のように行った。
　１μｇ／ｍＬの前記のペリオスチンを９６穴マイクロタイタープレートに分注し、数時間固相化させた。
　この固相化溶液を洗浄した後、融合細胞培養上清を各ウェルに加え、１時間室温にて静置した。
　融合細胞培養上清を洗浄して、二次抗体としてペルオキシダーゼ標識ヒツジ抗マウスＩｇＧ抗体（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）を加え１時間室温に静置した。
　この二次抗体を洗浄後、ＡＢＴＳペルオキシダーゼ基質（ＫＰＬ社、メリーランド州Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、米国）を加えて発色させ、４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　生育した融合細胞株の中から４つのクローンを確立し、それぞれＳＳ１９Ａ株、ＳＳ１９Ｂ株、ＳＳ１９Ｃ株、そしてＳＳ１９Ｄ株と命名した。
（４）　この選別したモノクローナル抗体産生細胞株からＩｇＧを次のように精製した。
　このモノクローナル抗体産生細胞株を、ＧＩＴ培地（日本製薬社、日本国東京都）を用いてＣＯ２インキュベータ内３７℃で培養した。
　培養後、上清中のＩｇＧをプロテインＧカラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）に結合させた。
　結合させたＩｇＧを、５０ｍＭクエン酸水溶液（ｐＨ２．６）で溶出した。
　溶出液４容量に対して、１Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕緩衝液１容量を添加し、精製ＩｇＧとして、マウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体を前記のモノクローナル抗体産生細胞株より取得した。
　そして、ＳＳ１９Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からマウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」という）を、ＳＳ１９Ｂ株のモノクローナル抗体産生細胞株からマウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」という）を、ＳＳ１９Ｃ株のモノクローナル抗体産生細胞株からマウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」という）を、更にＳＳ１９Ｄ株のモノクローナル抗体産生細胞株からマウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」という）をそれぞれ得ることができた。
　これらの抗体の代表例として、抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）の重鎖可変領域のアミノ酸配列を配列番号１６で表し、このアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列を配列番号１５で表す。また、当該抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列を、配列番号１８で表し、このアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドの塩基配列を配列番号１７で表す。
　すなわち、本発明の抗体には、抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１６で表されるアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号１８で表されるアミノ酸配列を含む、モノクローナル抗体が含まれる。
〔実施例５〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－５回目）
　前記実施例１、実施例２、実施例３及び実施例４とは別の時に、前記実施例４の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（５回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ２０Ａ株と命名した。
　そして、ＳＳ２０Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からマウス抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例６〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－６回目）
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４及び実施例５とは別の時に、前記実施例１の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（６回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ２１Ａ株と命名した。
　そして、ＳＳ２１Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例７〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の認識部位の確認）
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６において取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体のそれぞれについて、ペリオスチンのどの領域を認識しているかの確認を行った。
１．測定
（１）　前記参考例１の（１）～（７）で調製したペリオスチン又は部分ペリオスチン〔下記の（ａ）～（ｇ）〕のそれぞれをリン酸緩衝生理食塩水により５μｇ／ｍＬの濃度となるように調製したもの、又は対照としてのリン酸緩衝生理食塩水を、各々９６穴マイクロタイタープレート（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国）のウェルに５０μＬ注入し、５℃で１８時間静置し、前記のペリオスチン又は部分ペリオスチンを前記マイクロタイタープレートのウェルに固相化した。
　（ａ）　「ペリオスチン」
　（ｂ）　「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」
　（ｃ）　「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」
　（ｄ）　「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」
　（ｅ）　「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」
　（ｆ）　「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」
　（ｇ）　「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」
（２）　次に、前記（１）のマイクロタイタープレートの各ウェルを洗浄液〔０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有するトリス緩衝液（ＴＢＳ）〕で３回洗浄した。
（３）　次に、前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６で取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体〔下記の（ｉ）～（ｉｘ）〕のそれぞれを、前記（２）で洗浄を行ったマイクロタイタープレートのウェルに５０μＬ注入し、２５℃で１時間静置し、前記マイクロタイタープレートのウェルに固相化されたペリオスチン又は部分ペリオスチンのそれぞれと、前記の各抗ペリオスチンモノクローナル抗体とをそれぞれ反応させた。
　（ｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」
　（ｉｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」
　（ｉｉｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」
　（ｉｖ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」
　（ｖ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」
　（ｖｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」
　（ｖｉｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」
　（ｖｉｉｉ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」
　（ｉｘ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」
（４）　次に、前記（３）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液で３回洗浄した。
（５）　次に、前記（４）で洗浄を行ったマイクロタイタープレートの各ウェルに、リン酸緩衝生理食塩水によって２０００倍希釈したＰＯＤ標識抗ラットＩｇＧ抗体（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）又はＰＯＤ標識抗マウスＩｇＧ抗体（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）を５０μＬ注入し、２５℃で１時間静置し、反応を行わせた。
　なお、このＰＯＤ標識抗ＩｇＧ抗体をマイクロタイタープレートのウェルに注入することであるが、このＰＯＤ標識抗ＩｇＧ抗体が「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」、又は「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」である場合には、前記のマイクロタイタープレートのウェルには前記ＰＯＤ標識抗ラットＩｇＧ抗体を注入した。
　また、このＰＯＤ標識抗ＩｇＧ抗体が「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」、又は「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」である場合には、前記のマイクロタイタープレートのウェルには前記ＰＯＤ標識抗マウスＩｇＧ抗体を注入した。
（６）　次に、前記（５）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液で３回洗浄した。
（７）　次に、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ　Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎ　Ａ（ＫＰＬ社、米国）とＰｅｒｏｘｉｄａｓｅ　Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎ　Ｂ（ＫＰＬ社、米国）とを１：１で混合して調製した発色基質液の５０μＬを、前記（６）で洗浄を行ったマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて１０分間静置し、反応を行わせ、発色させた。
（８）　次に、前記（７）のマイクロタイタープレートの各ウェルについて、分光光度計を用いて４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。
　この吸光度の測定結果より、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体において、マイクロタイタープレートに固相化したそれぞれのペリオスチン又は部分ペリオスチン毎に、得られた吸光度の測定値と対照のウェル（ペリオスチン又は部分ペリオスチンに代えてリン酸緩衝生理食塩水を注入したウェル）の吸光度の測定値との吸光度差が０．２以上の場合に、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体がマイクロタイタープレートのウェルに固相化されたペリオスチン又は部分ペリオスチンに結合していると判断した。
　すなわち、前記の吸光度差が０．２以上の場合に、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体がマイクロタイタープレートのウェルに固相化されたペリオスチン又は部分ペリオスチンのいずれかの領域を認識していると判断した。
２．結果
（１）　前記１における測定の結果を図４に示した。
　この図において、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体と、前記のペリオスチン又は部分ペリオスチンとを反応させて測定した結果、前記の吸光度差が０．２以上の場合、すなわち、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体が前記のペリオスチン又は部分ペリオスチンに結合していると判断できた場合の組合せについては、「○」を示した。
　また、この測定結果に基づき、前記の各抗ペリオスチンモノクローナル抗体が、ペリオスチンのどの領域を認識しているかを判断した結果をこの図の右端の欄に示した。
（２）　この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」は、ペリオスチンのＲ３領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（３）　また、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」は、ペリオスチンのＲ４領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（４）　そして、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」は、ペリオスチンのＲ１領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（５）　更に、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」は、ペリオスチンのＲ４領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（６）　また、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」及び「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」は、ペリオスチンのＣ末端領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（７）　そして、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」は、ペリオスチンのＲ２領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（８）　更に、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」は、ペリオスチンのＲ３領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（９）　また、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」は、ペリオスチンのＥＭＩ領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
（１０）　そして、この測定結果より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」及び「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」のいずれにも結合していないことが分かる。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」は、ペリオスチンのＣ末端領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
〔実施例８〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の反応性の確認）
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６において取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の各々について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性を確認した。
〔１〕ＳＳ１９Ｂ株由来以外の抗ペリオスチンモノクローナル抗体
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」及び「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」の各々について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性を以下の通り確かめた。
１．免疫沈降処理
（１）　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６において取得した下の（ａ）～（ｈ）の抗ペリオスチンモノクローナル抗体の５μｇを、１種類ずつ個別に１．５ｍＬ容量のチューブに入れた。
　（ａ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」
　（ｂ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」
　（ｃ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」
　（ｄ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」
　（ｅ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」
　（ｆ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」
　（ｇ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」
　（ｈ）　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」
（２）　次に、前記（１）のチューブのそれぞれに、２０μＬのＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）及び１ｍＬのリン酸緩衝生理食塩水を加えた。
　この後、このチューブを、５℃で１時間回転させ、前記の各抗ペリオスチンモノクローナル抗体を前記のＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合させた。
（３）　次に、前記（２）のチューブについて遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、このチューブの中の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体が結合したＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」の２０μＬに、１ｍＬのブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を加えた。
　この後、このチューブを、５℃で２時間回転させ、抗ペリオスチンモノクローナル抗体が結合していないＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅの表面をブロッキングした。
（４）　次に、前記（３）のチューブについて遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、このチューブの中の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体が結合したＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」の２０μＬに、前記のブロッキング液により１００ｎｇ／ｍＬとなるように希釈した前記参考例２のＩＩの〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」の１ｍＬを加えた。
　なお、この「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」は、別途確認した結果、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物をそれぞれ含むことが分かっている。（以下、この「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」を、「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」ということがある。）
　この後、このチューブを、５℃で１８時間回転させ、「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した抗ペリオスチンモノクローナル抗体」に、前記の「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のそれぞれを接触させた。
　ここで、このＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」は、この抗体（当該抗体）が認識するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物のいずれか一つ以上と結合する。
（５）　次に、前記（４）のチューブについて遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、リン酸緩衝生理食塩水によりチューブの中のＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅを洗浄することにより、Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合している「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」に結合しなかった遊離のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物（すなわち、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」が認識せず結合しなかったペリオスチンの一量体、多量体又は分解物）を全て除去した。
　以上の操作により、「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した前記抗ペリオスチンモノクローナル抗体と、この抗体（当該抗体）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物との結合物」、すなわち『「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」－「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』をそれぞれ調製した。
２．ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法
（１）試薬
　次の（ａ）～（ｃ）の試薬をそれぞれ調製した。
（ａ）ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル
　Ｆｕｎａｋｏｓｈｉ　Ｅａｓｙ－Ｇｅｌ（ＩＩＩ）　プリキャスト・ゲル（１０％）（フナコシ社、日本国東京都）を使用した。
（ｂ）泳動槽用緩衝液
　前記参考例２のＩの１の（６）の記載の通りに調製を行い、泳動槽用緩衝液〔０．１％ＳＤＳ－１９２ｍＭグリシン－２５ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（ｃ）試料処理液
　ドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．１ｇ、２－メルカプトエタノール０．１ｍＬ、１Ｍのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕－塩酸緩衝液（ｐＨ６．８）の０．５ｍＬ、及びグリセリン２ｍＬを純水に添加、混合した後１０ｍＬとして、試料処理液〔１％ＳＤＳ－１％２－メルカプトエタノール－２０％グリセリン－５０ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（２）試料
　前記１の（５）の処理を行った後の各々のチューブの中の、『「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」－「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』を、それぞれ試料とした。
　また、分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕も試料とした。
（３）電気泳動
　前記（１）で調製した試薬を使用し、前記（２）の試料のそれぞれについて、次の操作によりＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行った。
（ａ）　前記（２）の各々のチューブの中の『「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」－「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』の試料のそれぞれについて、この各試料の２０μＬに前記（１）の（ｃ）の試料処理液の１３μＬを加え、混合した後、１００℃で５分間、煮沸処理を行った。
　なお、前記の各々の試料中の『「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」－「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』は、ここで試料処理液と混合されることにより、「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」、そして「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」にそれぞれ解離する。
　すなわち、この添加された試料処理液との混合により、「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」と、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」と、「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」は、それぞれ遊離状態のものとなった。
（ｂ）　下部泳動槽に前記（１）の（ｂ）の泳動槽用緩衝液を入れた。次に、前記（１）の（ａ）のＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲルを泳動槽にセットした。そして次に、上部泳動槽に前記（１）の（ｂ）の泳動槽用緩衝液を入れた。
（ｃ）　前記（ａ）の処理を行った試料それぞれについて、遠心分離処理を行った後、その上清１０μＬを前記（ｂ）のゲルのコウム穴に注入した。（遠心分離処理後、その上清を取得することにより、「Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」が除去される。そして、この上清中には、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」が含まれる。）
　また、前記（２）の分子量マーカーの試料の５μＬを前記（ｂ）のゲルのコウム穴に注入した。
　なお、このゲルに注入した前記の上清及び分子量マーカーであるが、向かって左側のレーンより、次の（ｉ）～（ｉｘ）の分子量マーカー、及び各々の『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』を順に注入した。
　（ｉ）　分子量マーカー
　（ｉｉ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｉｉｉ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｉｖ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｖ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｖｉ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｖｉｉ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｖｉｉｉ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　（ｉｘ）　『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」、及び「当該抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」を含む上清』
　また、このゲルの右端のレーンを、試料を注入しない陰性対照のレーンとした。
（ｄ）　次に、２０ｍＡの電流で９０分間泳動を行った。
（ｅ）　前記（ｄ）の泳動を終了した後、ゲルをガラスプレートより取り出した。
　以上の操作により、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体毎に、この抗体（当該抗体）が認識し結合したペリオスチンの一量体、多量体又は分解物を、その分子量に従ってゲル中に位置させ、このゲルを取得した。
３．ウエスタンブロッティング法
（１）　前記２の（３）の（ｅ）で取得したゲルの転写を、トランスブロットＳＤセル（ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国）を用いて、その使用説明書に従い、セミドライ方式で行った。
　まず、前記２の（３）の（ｅ）で取得したゲルを転写用装置上に置いた。
　次に、このゲルの上に、９ｃｍ×９ｃｍのポリビニルジフルオライド膜（ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国）を重ね、４８ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕、３９ｍＭグリシン、０．０３７５％（Ｗ／Ｖ）ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）及び２０％（Ｖ／Ｖ）メタノールよりなる転写用緩衝液を用いて、電流２００ｍＡで２時間転写を行い、その分子量に従ってゲル中に位置している前記の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」等のタンパク質を前記ゲルより前記ポリビニルジフルオライド膜に転写した。
（２）　この各々の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」等のタンパク質の転写を行ったポリビニルジフルオライド膜を、ブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕の２０ｍＬに２５℃で２時間浸漬して、ブロッキングを行った。
（３）　次に、このポリビニルジフルオライド膜を洗浄液（０．０５％ツイーン２０（Ｔｗｅｅｎ２０）を含むリン酸緩衝生理食塩水）の２０ｍＬ中で１０分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（４）　実施例２で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」について、Ｓｕｌｆｏ－ＮＨＳ－ＬＣ－Ｂｉｏｔｉｎ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国；商品コード番号：２１３３５）を用いてビオチン標識処理を行い、ビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を得た。（この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」は、後述するように、ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものである。）
　また、実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」について、Ｓｕｌｆｏ－ＮＨＳ－ＬＣ－Ｂｉｏｔｉｎ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国；商品コード番号：２１３３５）を用いてビオチン標識処理を行い、ビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を得た。（この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」は、後述するように、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物を認識し結合することができるものである。）
　標識抗体希釈液（アジ化ナトリウム含有）〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕によりそれぞれ５μｇ／ｍＬとなるように、前記のビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」とビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を希釈し、これらのビオチン標識抗体の混合液を調製した。
　このビオチン標識抗体の混合液に前記（３）の洗浄処理を行ったポリビニルジフルオライド膜を室温で一晩浸漬して反応させた。
　これにより、ポリビニルジフルオライド膜に転写された、前記の各々の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合するペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」と、前記のビオチン標識「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」及びビオチン標識「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」とを反応させた。
（５）　前記（４）の操作を行ったポリビニルジフルオライド膜を、２０ｍＬの前記洗浄液中で５分間振とう洗浄を行った。これを３回行った。
（６）　次に、パーオキシダーゼ標識ストレプトアビジン（Ｓｔｅｒｅｏｓｐｅｃｉｆｉｃ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、ドイツ国）を、標識抗体希釈液〔０．５％のカゼイン、及び１００ｍＭの塩化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕により１５０００倍に希釈し調製したＰＯＤ標識ストレプトアビジン溶液に、前記（５）のポリビニルジフルオライド膜を室温で９０分間浸漬して反応させた。
（７）　前記（６）の操作を行ったポリビニルジフルオライド膜を、２０ｍＬの前記洗浄液中で５分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（８）　０．０２５％の３，３’－ジアミノベンジジン四塩酸塩及び０．０１％過酸化水素を含むリン酸緩衝生理食塩水の２０ｍＬに、前記（７）のポリビニルジフルオライド膜を室温で１５分間浸漬して発色させた。
　これにより、このポリビニルジフルオライド膜において、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合したペリオスチンの一量体、多量体又は分解物の分子量に応じた位置に、発色を生じさせた。
（９）　前記（８）で発色させたポリビニルジフルオライド膜を撮影した。
　このポリビニルジフルオライド膜上の発色の有無及びその発色した位置（分子量）より、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のそれぞれとの反応性を確認した。
４．結果
（１）　前記３の（９）で撮影したポリビニルジフルオライド膜を図５に示した。
　この図において、左側のレーンより順に、分子量マーカーのレーン（「ＭＭ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１６Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１７Ｂ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１８Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ｃ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ｄ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「２０Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「２１Ａ」と表記）、及び陰性対照のレーン（「（－）」と表記）を表す。
　また、この図において、１５０ＫＤａと２５０ＫＤａの分子量マーカーの間に位置する太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体（その分子量からペリオスチンの三量体と推測される）を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーの近辺から高分子量側にかけて見られる太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表し、そして３７ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの分解物を表す。
（２）　そして、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を示す位置のいずれにおいても発色が認められるので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」はペリオスチンの多量体、一量体及び分解物のいずれをも認識し結合することが確かめられた。
（３）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体及び一量体を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの分解物を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」はペリオスチンの多量体及び一量体を認識し結合するが、ペリオスチンの分解物は認識せず、結合しないことが確かめられた。
（４）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を示す位置のいずれにおいても発色が認められるので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」はペリオスチンの多量体、一量体及び分解物のいずれをも認識し結合することが確かめられた。
（５）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体及び一量体を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの分解物を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」はペリオスチンの多量体及び一量体を認識し結合するが、ペリオスチンの分解物は認識せず、結合しないことが確かめられた。
（６）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を示す位置のいずれにおいても発色が認められるので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」はペリオスチンの多量体、一量体及び分解物のいずれをも認識し結合することが確かめられた。
（７）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの一量体及び分解物を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの多量体を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」はペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合するが、ペリオスチンの多量体は認識せず、結合しないことが確かめられた。
（８）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を示す位置のいずれにおいても発色が認められるので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」はペリオスチンの多量体、一量体及び分解物のいずれをも認識し結合することが確かめられた。
（９）　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの多量体及び一量体を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの分解物を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」はペリオスチンの多量体及び一量体を認識し結合するが、ペリオスチンの分解物は認識せず、結合しないことが確かめられた。
（１０）　そして、この図の右端のレーンの陰性対照においては、何も発色が認められないことより、非特異的な結合及び発色が生じていないことが確かめられた。
〔２〕ＳＳ１９Ｂ株由来の抗ペリオスチンモノクローナル抗体
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性を以下の通り確かめた。
１．ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法
（１）試薬
　次の（ａ）～（ｃ）の試薬をそれぞれ調製した。
（ａ）ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル
　Ｆｕｎａｋｏｓｈｉ　Ｅａｓｙ－Ｇｅｌ（ＩＩＩ）　プリキャスト・ゲル（１０％）（フナコシ社、日本国東京都）を使用した。
（ｂ）泳動槽用緩衝液
　前記参考例２のＩの１の（６）の記載の通りに調製を行い、泳動槽用緩衝液〔０．１％ＳＤＳ－１９２ｍＭグリシン－２５ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（ｃ）試料処理液
　前記〔１〕の２の（１）の（ｃ）の記載の通りに調製を行い、試料処理液〔１％ＳＤＳ－１％２－メルカプトエタノール－２０％グリセリン－５０ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（２）試料
　前記参考例２のＩＩの〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」、すなわち「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」の５０ｎｇを標準試料として用いた。
　前記の通り、この「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」（「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」）は、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物をそれぞれ含むことが分かっている。
　また、分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕も試料として用いた。
（３）電気泳動
　前記（１）で調製した試薬を使用し、前記（２）の試料のそれぞれについて、次の操作によりＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行った。
（ａ）　前記（２）の「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」の試料について、この試料の２０μＬに前記（１）の（ｃ）の試料処理液の１３μＬを加え、混合した後、１００℃で５分間、煮沸処理を行った。
（ｂ）　下部泳動槽に前記（１）の（ｂ）の泳動槽用緩衝液を入れた。次に、前記（１）の（ａ）のＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲルを泳動槽にセットした。そして次に、上部泳動槽に前記（１）の（ｂ）の泳動槽用緩衝液を入れた。
（ｃ）　前記（ａ）の処理を行った試料について、遠心分離処理を行った後、その上清１０μＬを前記（ｂ）のゲルのコウム穴に注入した。
　また、前記（２）の分子量マーカーの試料の５μＬを前記（ｂ）のゲルのコウム穴に注入した。
　なお、このゲルに注入した前記の上清及び分子量マーカーであるが、向かって左側のレーンより、次の（ｉ）～（ｉｉ）の分子量マーカー、及び『「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物」を含む上清』を順に注入した。
　（ｉ）　分子量マーカー
　（ｉｉ）　『「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物」を含む上清』
（ｄ）　次に、２０ｍＡの電流で９０分間泳動を行った。
（ｅ）　前記（ｄ）の泳動を終了した後、ゲルをガラスプレートより取り出した。
　以上の操作により、ペリオスチンの一量体、多量体又は分解物を、その分子量に従ってゲル中に位置させ、このゲルを取得した。
２．ウエスタンブロッティング法
（１）　実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」をＳｕｌｆｏ－ＮＨＳ－ＬＣ－Ｂｉｏｔｉｎ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国；商品コード番号：２１３３５）を用いてビオチン標識処理を行い、得られたビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」を前記の標識抗体希釈液（アジ化ナトリウム含有）により５μｇ／ｍＬとなるように希釈し、ビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」の溶解液を調製した。
（２）　前記〔１〕の３の（４）におけるビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」とビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」との混合液に代えて、前記（１）のビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」の溶解液を使用すること以外は、前記〔１〕の３の（１）～（９）の記載の通りに操作を行った。
　これにより、その分子量に従ってゲル中に位置しているペリオスチンの一量体、多量体及び分解物を、前記１の（３）で取得したゲルよりこのポリビニルジフルオライド膜に転写し、そして、この転写したペリオスチンの一量体、多量体及び分解物に前記のビオチンで標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」を接触させ、反応させ、これらの間の結合の有無を確かめた。
　そして、このウエスタンブロッティング法により、発色させたポリビニルジフルオライド膜を取得した。
　このポリビニルジフルオライド膜上の発色の有無及びその発色した位置（分子量）より、前記の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」のペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性を確認した。
３．結果
（１）　前記２で得たポリビニルジフルオライド膜を図６に示した。
　この図において、左側のレーンより順に、分子量マーカーのレーン（「ＭＭ」と表記）、そして次に「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ｂ」と表記）を表す。
　また、この図において、１５０ＫＤａの分子量マーカーのより高分子側の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーのより高分子側の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表す。
（２）　そして、この図では、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」を反応させたペリオスチン（一量体、多量体及び分解物）のレーンにおいては、ペリオスチンの多量体及び一量体を示す位置においてはそれぞれ発色が認められる。
　しかし、前記のペリオスチンの一量体を表すバンドよりも低分子量側には発色（バンド）は認められない。すなわち、ペリオスチンの分解物を示す位置においては発色は認められない。
　よって、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」はペリオスチンの多量体及び一量体を認識し結合するが、ペリオスチンの分解物は認識せず、結合しないことが確かめられた。
〔３〕まとめ
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６において取得した各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性をまとめたものを図７に示す。
　この図で、前記の各抗ペリオスチンモノクローナル抗体において、ペリオスチンの一量体、多量体又は分解物の内、認識し結合するものについては、「○」で示した。
　この図より、各抗ペリオスチンモノクローナル抗体はいずれも、ペリオスチンの一量体を認識し、結合することができることが分かる。
　また、この図より、次の抗ペリオスチンモノクローナル抗体は、ペリオスチンの分解物を認識できず、結合することができないことが分かる。
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」
　そして、この図より、次の抗ペリオスチンモノクローナル抗体は、ペリオスチンの分解物を認識し、結合することができることが分かる。
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」
　更に、この図より、次の抗ペリオスチンモノクローナル抗体は、ペリオスチンの分解物を認識し、結合することができ、かつ、ペリオスチンの多量体を認識できず、結合することができないことが分かる。
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」
　なお、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｄ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受託番号：ＮＩＴＥ　Ｐ－１０６８」として２０１１年２月２２日付けにて寄託されている。〔なお、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｄ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年２月７日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年２月９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１０６８）〕
　また、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１６Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８１」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１６Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８１）
　そして、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１８Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８２」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１８Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８２）
　また、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｃ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８３」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｃ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８３）
　そして、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２０Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８４」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２０Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８４）
〔実施例９〕（ヒト血清中のペリオスチンの確認）
　ヒト血清中のペリオスチンを、免疫沈降、電気泳動及びウエスタンブロッティングの処理を行うことによって確認した。
〔１〕健常者の血清
　健常者の血清のペリオスチンについて、以下の通り確かめた。
１．免疫沈降処理　
（１）　１．５ｍＬ容量のチューブに、ベッド容量で１００μＬのＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）を入れ、遠心分離操作を行い上清を除去した。
（２）　前記（１）のチューブに１ｍＭの塩酸を加え、ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅを懸濁し、直後に遠心分離操作を行い上清を除去した。
（３）　０．１Ｍ炭酸ナトリウム－０．５Ｍ塩化ナトリウム溶液（ｐＨ８．３）を溶媒とする前記実施例４において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）の８５μｇ（タンパク質量として）を、前記（２）のチューブに入れた。
　この後、このチューブを、攪拌しながら２５℃で１時間保温し、前記の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を前記のＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合させた。
（４）　次に、前記（３）のチューブについて遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、このチューブの中の前記「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」が結合したＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに、１ｍＬのブロッキング液〔０．５Ｍ　２－アミノエタノール－０．５Ｍ塩化ナトリウム（ｐＨ８．３）〕を加えた。
　この後、これらのチューブを、２５℃で１時間放置し、前記の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」が結合していないＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅの表面をブロッキングした。
（５）　次に、前記（４）のチューブについて遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、このチューブに１ｍＬの２０％エタノールを入れて、４℃に１８時間保存した。
（６）　その後、新しい１．５ｍＬ容量のチューブを用意し、ベッド容量で１０μＬの前記（５）の『「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（８．５μｇ）が結合したＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ』を個別にそれぞれのチューブに加えた。
（７）これらのチューブに、一人の健常者の血清の２５μＬ、５０μＬ又は１００μＬを個別を加えた。
　この後、これらのチューブを、５℃で１８時間回転させ、『ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」』に、前記の健常者の血清に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）を接触させた。
（８）　次に、前記（７）のチューブ（健常者の血清量が２５μＬ、５０μＬ又は１００μＬのものの各々）について遠心分離操作を行った。
　上清を除いた後、洗浄液〔１０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン［Ｔｒｉｓ］－１５０ｍＭ塩化ナトリウム－０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ｐＨ８．０）〕によりチューブ中のＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅを３回洗浄し、『ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」』に結合しなかった遊離のペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）を全て除去した。
　以上の操作により、『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した前記抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」と「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」との結合物』、すなわち『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』を調製した。
２．ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法
（１）試薬
　次の（ａ）～（ｈ）の試薬をそれぞれ調製した。
（ａ）アクリルアミド溶液
　前記参考例２のＩの１の（１）の記載の通りに調製を行い、アクリルアミド溶液〔３０％アクリルアミド保存液〕を調製した。
（ｂ）ＳＤＳ－１．５Ｍトリス溶液
　前記参考例２のＩの１の（２）の記載の通りに調製を行い、ＳＤＳ－１．５Ｍトリス溶液〔０．４％ＳＤＳ－１．５Ｍトリス塩酸緩衝液〕を調製した。
（ｃ）ＳＤＳ－０．５Ｍトリス溶液
　前記参考例２のＩの１の（３）の記載の通りに調製を行い、ＳＤＳ－０．５Ｍトリス溶液〔０．４％ＳＤＳ－０．５Ｍトリス塩酸緩衝液〕を調製した。
（ｄ）過硫酸アンモニウム溶液
　前記参考例２のＩの１の（４）の記載の通りに調製を行い、過硫酸アンモニウム溶液〔１０％過硫酸アンモニウム水溶液〕を調製した。
（ｅ）ＴＥＭＥＤ溶液
　前記参考例２のＩの１の（５）の記載の通り、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルエチレンジアミン（ナカライテスク社、日本国京都府）を使用した。
（ｆ）泳動槽用緩衝液
　前記参考例２のＩの１の（６）の記載の通りに調製を行い、泳動槽用緩衝液〔０．１％ＳＤＳ－１９２ｍＭグリシン－２５ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（ｇ）試料処理液（還元剤含有）
　ドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．４ｇ、２－メルカプトエタノール（還元剤）１．２ｍＬ、１Ｍのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕－塩酸緩衝液（ｐＨ６．８）の１ｍＬ、及びグリセリン２ｍＬを純水に添加、混合した後１０ｍＬとして、試料処理液（還元剤含有）〔４％ＳＤＳ－１２％２－メルカプトエタノール－２０％グリセリン－１００ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（ｈ）試料処理液（還元剤不含有）
　ドデシル硫酸ナトリウム〔ＳＤＳ〕０．４ｇ、１Ｍのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕－塩酸緩衝液（ｐＨ６．８）の１ｍＬ、及びグリセリン２ｍＬを純水に添加、混合した後１０ｍＬとして、試料処理液（還元剤不含有）〔１％ＳＤＳ－２０％グリセリン－１００ｍＭトリス緩衝液〕を調製した。
（２）試料
　前記１の（８）の処理を行った後のそれぞれのチューブ（健常者の血清量が２５μＬ、５０μＬ又は１００μＬのものの各々）の中の『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』を次の通りそれぞれ試料とした。
　また、前記参考例２のＩＩの〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」、すなわち「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」の８００ｎｇを次の通り標準試料として用いた。
　前記の通り、この「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」（「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」）は、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物をそれぞれ含むことが分かっている。
　更に、分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕も次の通り試料とした。
（ａ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』　（健常者の血清量：１００μＬ）
（ｂ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』　（健常者の血清量：５０μＬ）
（ｃ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』　（健常者の血清量：２５μＬ）
（ｄ）　標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）
（ｅ）　分子量マーカー〔マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ〕
（３）電気泳動
　前記（１）で調製した試薬を使用し、前記（２）の試料のそれぞれについて、次の操作によりＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行った。
（ａ）　前記（１）の（ａ）、（ｂ）、（ｄ）及び（ｅ）で調製した試薬及び純水を用いて、アクリルアミド濃度が７．５％の分離ゲル溶液を調製した。
　この分離ゲル溶液を、組み立てたガラスプレートに注入した後、純水を上に重層し、そしてゲル化反応を３０分間行わせた。
（ｂ）　前記（１）の（ａ）、（ｃ）、（ｄ）及び（ｅ）で調製した試薬及び純水を用いて、アクリルアミド濃度が１．３％の濃縮ゲル溶液を調製した。
　前記（ａ）のガラスプレートより純水を捨て、ここにこの濃縮ゲル溶液を少量注入し洗浄した後、濃縮ゲル溶液を注入した。そして、ここにサンプルコウムを挿入し、そしてゲル化反応を３０分間行わせた。
（ｃ）　前記（２）の（ａ）～（ｄ）の試料のそれぞれについて、この各試料の１０μＬに前記（１）の（ｇ）の試料処理液（還元剤含有）の２０μＬを加え、混合した後、還元剤存在下で１００℃で１０分間、煮沸処理を行った。
　なお、前記（２）の（ａ）～（ｃ）の各々の試料中の『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』は、ここで試料処理液（還元剤含有）と混合されることにより、「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」、そして「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」にそれぞれ解離する。
　すなわち、この添加された試料処理液との混合により、「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」と、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」と、「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」は、それぞれ遊離状態のものとなった。
（ｄ）　下部泳動槽に前記（１）の（ｆ）の泳動槽用緩衝液を入れた。次に、前記（ｂ）のゲルよりサンプルコウムを抜き洗浄した後、泳動槽にセットした。そして次に、上部泳動槽に前記（１）の（ｆ）の泳動槽用緩衝液を入れた。
（ｅ）　前記（ｃ）の処理を行った試料それぞれについて、遠心分離処理を行った後、その上清２０μＬを前記（ｄ）のゲルのコウム穴に注入した。
　また、前記（２）の（ｅ）の分子量マーカーの試料の５μＬを前記（ｄ）のゲルのコウム穴に注入した。
　なお、このゲルに注入した前記の上清及び分子量マーカーであるが、向かって左側のレーンより、次の（ｉ）～（ｖ）の各「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）の上清、及び分子量マーカーを順に注入した。
　（ｉ）　「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」（健常者の血清量：１００μＬ）の上清
　（ｉｉ）　「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」（健常者の血清量：５０μＬ）の上清
　（ｉｉｉ）　「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」（健常者の血清量：２５μＬ）の上清
　（ｉｖ）　標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）の上清
　（ｖ）　分子量マーカー
（ｆ）　次に、３０ｍＡの電流で６０分間泳動を行った。
（ｇ）　前記（ｆ）の泳動を終了した後、ゲルをガラスプレートより取り出した。
　以上の操作により、前記（ｃ）において還元剤を存在させた場合について、前記の試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）をその分子量に従って位置させ、このゲルを取得した。
（ｈ）　また、前記（ｃ）において、試料処理液（還元剤含有）に代えて前記（１）の（ｈ）の試料処理液（還元剤不含有）を用いて還元剤非存在下で処理を行うこと、そして、前記（ｅ）において分子量マーカーの試料をゲルのコウム穴に注入することは行わず前記の上清のみをゲルのコウム穴に注入したこと以外は、前記（ａ）～（ｇ）の記載の通りに操作を行い、前記（ｃ）において還元剤を存在させない場合について、前記の試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）をその分子量に従って位置させ、このゲルを取得した。
３．ウエスタンブロッティング法
（１）　前記２の（３）の（ｇ）及び（ｈ）でそれぞれ取得したゲルについて、その転写をＭｉｎｉ　Ｐｒｏｔｅａｎ　ＩＩ　Ｃｅｌｌキット（ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国）を用いて、その使用説明書に従い、ウェット方式で行った。
　まず、前記２の（３）の（ｇ）及び（ｈ）でそれぞれで取得したゲルを転写用装置上に置いた。
　次に、これらのゲルの上に、６ｃｍ×９ｃｍのポリビニルジフルオライド膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、マサチューセッツ州、米国）をそれぞれ重ね、２５ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン〔Ｔｒｉｓ〕、３９ｍＭグリシン、０．０３７５％（Ｗ／Ｖ）ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）及び２０％（Ｖ／Ｖ）メタノールよりなる転写用緩衝液を用いて、電流６５ｍＡで２時間転写を行い、試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）等のゲル上のタンパク質を前記のゲルより前記ポリビニルジフルオライド膜に転写した。
（２）　試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）等のこのゲル上のタンパク質の転写を行ったポリビニルジフルオライド膜のそれぞれを、４％スキムミルク及び０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むトリス緩衝生理食塩水〔１０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン［Ｔｒｉｓ］－１５０ｍＭ塩化ナトリウム（ｐＨ８．０）〕の５０ｍＬに室温で１時間浸漬して、ブロッキングを行った。
（３）　次に、これを洗浄液（０．０５％ツイーン２０（Ｔｗｅｅｎ２０）を含むリン酸緩衝生理食塩水）の２０ｍＬ中で１０分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（４）　４％スキムミルク及び０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むトリス緩衝生理食塩水〔１０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン［Ｔｒｉｓ］－１５０ｍＭ塩化ナトリウム（ｐＨ８．０）〕により１μｇ／ｍＬとなるように、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）を希釈し、この抗体の溶解液を調製した。
　この抗体の溶解液に前記（３）の洗浄処理を行ったそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を４℃で一晩浸漬して反応させた。
　これにより、ポリビニルジフルオライド膜に転写された、前記の試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）と、前記の抗体溶液中の「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」とを反応させた。
（５）　前記（４）の操作を行ったそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を、５０ｍＬの前記洗浄液中で１０分間振とう洗浄を行った。これを３回行った。
（６）　次に、パーオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体溶液を、ＴｒｕｅＢｌｏｔ　ＵＬＴＲＡ（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社、Ｓａｎ　Ｄｉｅｇｏ、カリフォルニア州、米国）を、４％スキムミルクを含むトリス緩衝生理食塩水〔１０ｍＭトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン［Ｔｒｉｓ］－１５０ｍＭ塩化ナトリウム（ｐＨ８．０）〕により３０００倍に希釈することにより調製した。
　そして、このパーオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体溶液に、前記（４）のそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を室温で４５分間浸漬して反応させた。
（７）　これらのポリビニルジフルオライド膜を、５０ｍＬの前記洗浄液中で５分間振とう洗浄を行った。この操作を３回行った。
（８）　ＥＣＬ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｒｅａｇｅｎｔｓ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、Ｌｉｔｔｌｅ　Ｃｈａｌｆｏｎｔ、英国）の２ｍＬに、前記（７）のそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を室温で１分間浸漬して発光させた。
　これにより、前記のペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）の分子量に応じた位置に、発光を生じさせた。
（９）　前記（８）で発光させたそれぞれのポリビニルジフルオライド膜を撮影した。
　これらのポリビニルジフルオライド膜上の発光の有無及びその発光した位置（分子量）より、前記の試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）の存在を確認した。
４．結果
（１）　前記３の（９）で得たそれぞれのポリビニルジフルオライド膜の写真を図８に示した。
　この図において、左側のパターンは前記の電気泳動処理時に試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤を存在させた場合のポリビニルジフルオライド膜を示し、右側のパターンは前記の電気泳動処理時に試料処理液（還元剤不含有）を用いて還元剤を存在させない場合のポリビニルジフルオライド膜を示す。
　なお、この左側のパターンにおいて、左側のレーンより順に、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が１００μＬの場合のレーン（「１００μＬ」と表記）、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が５０μＬの場合のレーン（「５０μＬ」と表記）、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が２５μＬの場合のレーン（「２５μＬ」と表記）、前記２の（２）の（ｄ）の標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）を試料とした場合のレーン（「標準試料」と表記）、及び前記２の（２）の（ｅ）の分子量マーカーを試料とした場合のレーン（「ＭＭ」と表記）を表す。
　そして、この左側のパターンにおいて、１５０ＫＤａの分子量マーカーの近辺から高分子量側にかけて見られる太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体（その分子量からペリオスチン二量体と推測される）を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表し、そして３７ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの分解物を表す。
　また、この右側のパターンにおいて、左側のレーンより順に、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が１００μＬの場合のレーン（「１００μＬ」と表記）、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が５０μＬの場合のレーン（「５０μＬ」と表記）、前記１の（７）においてチューブに加えた健常者の血清の量が２５μＬの場合のレーン（「２５μＬ」と表記）、及び前記２の（２）の（ｄ）の標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）を試料とした場合のレーン（「標準試料」と表記）を表す。
　そして、この右側のパターンにおいて、２５０ＫＤａの分子量マーカーの近辺から高分子量側にかけて見られる太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体（その分子量からペリオスチンの三量体と推測される）を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表し、そして３７ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの分解物を表す。
（２）　この図の左側のパターンより、健常者の血清について、電気泳動処理時に試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤を存在させた場合には、いずれの血清量においても、ペリオスチンの多量体の位置及び分解物の位置の両方において発光は見られず、ペリオスチンの一量体の位置においてのみ発光が見られることが分かる。
（３）　また、この図の右側のパターンより、健常者の血清について、電気泳動処理時に試料処理液（還元剤不含有）を用いて還元剤を存在させない場合には、いずれの血清量においても、ペリオスチンの一量体の位置及び分解物の位置の両方において発光は見られず、ペリオスチンの多量体の位置においてのみ発光が見られることが分かる。
〔２〕肺線維症罹患者の血清
　肺線維症罹患者の血清のペリオスチンについて、以下の通り確かめた。
１．免疫沈降処理
　前記〔１〕の１の（７）における「一人の健常者の血清の２５μＬ、５０μＬ又は１００μＬを個別にそれぞれのチューブに加えた」ことを、「三人の肺線維症罹患者それぞれの血清及び一人の健常者の血清の１ｍＬを個々にそれぞれのチューブ（１．５ｍＬ容量）に加えた」ことに代えること以外は、前記〔１〕の１の（１）～（８）の記載の通りに操作を行い、これらの肺線維症罹患者又は健常者の血清に含まれているペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）に関し、『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに結合した前記抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」と「試料（肺線維症罹患者又は健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」との結合物』、すなわち『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（肺線維症罹患者又は健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』をそれぞれ調製した。
２．ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法
（１）試薬
　前記〔１〕の２の（１）における（ａ）～（ｈ）の記載の通りに各試薬をそれぞれ調製した。
（２）試料
　前記１において調製した『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（肺線維症罹患者又は健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』を次の通りそれぞれ試料とした。
　また、前記参考例２のＩＩの〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」、すなわち「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」の８００ｎｇを次の通り標準試料として用いた。
　前記の通り、この「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」（「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」）は、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物をそれぞれ含むことが分かっている。
　更に、分子量マーカー〔Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ　Ｐｌｕｓ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｌｌ　Ｂｌｕｅ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓマーカー；マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ；ＢＩＯ－ＲＡＤ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、カリフォルニア州、米国〕も次の通り試料とした。
（ａ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』
（ｂ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（一人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』
（ｃ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（二人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』
（ｄ）　『「ＮＨＳ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ」－「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」－「試料（三人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の結合物』
（ｅ）　標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）
（ｆ）　分子量マーカー〔マーカー分子量　１０ＫＤａ、１５ＫＤａ、２０ＫＤａ、２５ＫＤａ、３７ＫＤａ、５０ＫＤａ、７５ＫＤａ、１００ＫＤａ、１５０ＫＤａ及び２５０ＫＤａ〕
（３）電気泳動
　前記（１）で調製した試薬を使用し、前記（２）の試料のそれぞれについて、ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法での電気泳動を行った。
　なお、この電気泳動は、次の（ａ）及び（ｂ）の事項以外は前記〔１〕の２の（３）の（ａ）～（ｇ）の記載の通りに操作を行い、試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤を存在させた場合について、試料（肺線維症罹患者又は健常者の血清）に含まれていたペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）をその分子量に従って位置させ、このゲルを取得した。
（ａ）　前記〔１〕の２の（３）の（ａ）における「アクリルアミド濃度が７．５％の分離ゲル溶液を調製」に代えて、「アクリルアミド濃度が９％の分離ゲル溶液を調製」としたこと。
（ｂ）　前記〔１〕の２の（３）の（ｅ）において（ｉ）～（ｉｉｉ）の各「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、（ｉｖ）の標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）の上清、並びに（ｖ）の分子量マーカーの順に、向かって左側のレーンよりゲルのコウム穴に注入したことに代えて、分子量マーカー、「試料（健常者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、「試料（一人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、「試料（二人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、「試料（三人目の肺線維症罹患者の血清）に含まれていたペリオスチンの一量体、多量体又は分解物」の上清、並びに標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）の上清の順に、向かって左側のレーンよりゲルのコウム穴に注入したこと。
３．ウエスタンブロッティング法
　前記〔１〕の３の（１）～（９）の記載の通りに操作を行い、前記２でＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法により電気泳動を行い取得したゲルについて、ポリビニルジフルオライド膜に転写を行い、ペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）の分子量に応じた位置に発光を生じさせ、このポリビニルジフルオライド膜上の発光の有無及びその発光した位置（分子量）より、前記の肺線維症罹患者及び健常者の血清に含まれるペリオスチン（一量体、多量体又は分解物）の存在を確認した。
４．結果
（１）　前記３で得たポリビニルジフルオライド膜を図９に示した。
　この図において、左側のレーンより順に、前記１における試料として、分子量マーカーを試料とした場合のレーン（「ＭＭ」と表記）、健常者の血清を試料とした場合のレーン（「健常者」と表記）、一人目の肺線維症罹患者の血清を試料とした場合のレーン（「肺線維症罹患者　１」と表記）、二人目の肺線維症罹患者の血清を試料とした場合のレーン（「肺線維症罹患者　２」と表記）、三人目の肺線維症罹患者の血清を試料とした場合のレーン（「肺線維症罹患者　３」と表記）、並びに標準試料（ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物）を試料とした場合のレーン（「標準試料」と表記）を表す。
　そして、この図において、１５０ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体（その分子量からペリオスチンの二量体と推測される）を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表し、そして３７ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの分解物を表す。
　なお、この図において肺線維症罹患者の試料における各バンドの下に示した数値は、健常者の試料の対応するバンドの発光強度を１．０とした場合の肺線維症罹患者の試料の各バンドの発光強度の相対値（相対比率）を表す。
（２）　この図より、健常者の血清試料について、電気泳動処理時に試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤を存在させた場合、ペリオスチンの一量体の位置において発光が見られること、ペリオスチンの分解物の位置において僅かな発光が見られること、及びペリオスチンの多量体の位置においては発光が見られないことが分かる。
（３）　また、この図より、肺線維症罹患者の血清試料について、電気泳動処理時に試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤を存在させた場合、三人の肺線維症罹患者の血清試料のいずれにおいても、ペリオスチンの一量体及び分解物の位置において発光が見られること、及びペリオスチンの多量体の位置においては発光が見られないことが分かる。
（４）　そして、この図に示した健常者の試料におけるバンドの発光強度を１．０とした場合の三人の肺線維症罹患者の試料の対応する各バンドの発光強度の相対値（相対比率）であるが、一量体の位置のバンドにおいては１．０～１．５であり、肺線維症罹患者の血清試料におけるペリオスチンの一量体の量は健常者と同様であるか、又は僅かに多い範囲に留まるものであることが分かる。
　また、三人の肺線維症罹患者の血清試料における前記の相対値（相対比率）は、分解物の位置のバンドにおいては２．１～４．０であり、肺線維症罹患者の血清試料におけるペリオスチンの分解物の量は健常者の血清試料の２倍以上であり、肺線維症罹患者は健常者に比べてペリオスチンの分解物の量が顕著に多いことが分かる。
　これらのことより、試料処理液（還元剤含有）を用いて還元剤存在下で電気泳動を行なった場合、前記の一連の処理により得られた各バンドのパターンにおいて、ペリオスチンの一量体及び多量体については健常者と肺線維症罹患者はほぼ同じあるが、ペリオスチンの分解物については健常者と肺線維症罹患者との間には顕著な差異があり、健常者に比較して肺線維症罹患者ではペリオスチンの分解物の量が明らかに多いことが確かめられた。
　すなわち、以上の結果より、ペリオスチンの一量体及び／又は多量体を測定しても、肺線維症罹患者を健常者と分けて判別することはできないが、ペリオスチンの分解物を測定することにより、肺線維症罹患者を、健常者とは分けて判別することができることが確かめられた。
〔実施例１０〕（ヒト血清中のペリオスチンの測定－１）
　ヒト血清中のペリオスチンの測定を行い、本発明の抗体、測定方法、測定試薬、正確性の改善方法及び肺線維症又は間質性肺炎の検査方法の効果を確かめた。
〔１〕従来技術による測定
　従来の技術により、ヒト血清中のペリオスチンの測定を以下の通り行なった。
１．試料
　次の（１）～（３）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
（１）肺線維症罹患者（計３７例）の血清
（２）間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清
（３）健常者（計６６例）の血清
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により、以下の通り測定し、求めた。
（１）　前記実施例３で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」（ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）を、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〔１３７ｍＭの塩化ナトリウム、２．６８ｍＭの塩化カリウム、１．４７ｍＭのリン酸二水素カリウム、及び８．０４ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する水溶液（ｐＨ７．４）〕により２μｇ／ｍＬとなるように希釈し、これを９６穴マイクロタイタープレート（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国）の各ウェルに１００μＬずつ注入した後、２５℃で１８時間静置し、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」をこのマイクロタイタープレートの各ウェルに固相化した。
（２）　次に、前記（１）のマイクロタイタープレートの各ウェル中の液を除いた後、ブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を各ウェルに２５０μＬ注入し、４℃で１８時間静置した。
（３）　次に、前記（２）のマイクロタイタープレートの各ウェルを洗浄液－２〔０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有するリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〕で３回洗浄した。
（４）　次に、前記１の（１）～（３）の各試料それぞれについて、試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で２００倍に希釈した後、その１００μＬを前記（３）のマイクロタイタープレートのウェルに注入し、２５℃にて１８時間静置し、反応を行わせた。
　これにより、試料に含まれるペリオスチンを、前記のウェルに固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合させた。
（５）　次に、前記（４）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（６）　前記実施例２で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」（ペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）にパーオキシダーゼ（ＰＯＤ）を結合させ標識したＰＯＤ標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、前記（４）の試料希釈液で５０ｎｇ／ｍＬとなるように希釈し、その１００μＬを前記（５）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて９０分間静置し、反応を行わせた。
　これにより、前記の固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合しているペリオスチンに、ＰＯＤを標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を結合させた。
（７）　次に、前記（６）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（８）　次に、ＰＯＤの基質液〔０．８ｍＭの３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）、２．５ｍＭの過酸化水素、及び３０ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する２０ｍＭのクエン酸緩衝液〕の１００μＬを前記（７）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて１０分間静置し、反応を行わせ、発色させた。
（９）　その後、前記（８）のマイクロタイタープレートの各ウェルに０．７Ｎの硫酸を注入し、この反応を停止させた。
（１０）　次に、分光光度計を用いて、前記（９）のマイクロタイタープレートの各ウェルについて、４５０ｎｍにおける吸光度の測定を行った。
（１１）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチンを前記（４）の試料希釈液で希釈して、ペリオスチンの希釈系列を作成し、これらを標準試料とした。
　次に、これらの標準試料のそれぞれについて、前記（１）～（１０）の記載の通りに測定を行い、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）における「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）を作成した。
（１２）　前記（１０）において測定したマイクロタイタープレートの各ウェルの吸光度を、前記（１１）で作成した「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）に当てはめ、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
〔２〕本発明による測定－Ａ
　本発明により、ヒト血清中のペリオスチンの測定を以下の通り行なった。
１．試料
　前記〔１〕の１の（１）～（３）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
２．測定
　前記〔１〕の２の（６）におけるＰＯＤ標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とする以外は、前記〔１〕の２の（１）～（１２）の記載の通りに測定を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
〔３〕本発明による測定－Ｂ
　本発明により、ヒト血清中のペリオスチンの測定を以下の通り行なった。
１．試料
　前記〔１〕の１の（１）～（３）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により、以下の通り測定し、求めた。
（１）　前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）を、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〔１３７ｍＭの塩化ナトリウム、２．６８ｍＭの塩化カリウム、１．４７ｍＭのリン酸二水素カリウム、及び８．０４ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する水溶液（ｐＨ７．４）〕により２μｇ／ｍＬとなるように希釈し、これを９６穴マイクロタイタープレート（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国）の各ウェルに１００μＬずつ注入した後、２５℃で１８時間静置し、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」をこのマイクロタイタープレートの各ウェルに固相化した。
（２）　次に、前記（１）のマイクロタイタープレートの各ウェル中の液を除いた後、ブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を各ウェルに２５０μＬ注入し、４℃で１８時間静置した。
（３）　次に、前記（２）のマイクロタイタープレートの各ウェルを洗浄液－２〔０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有するリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〕で３回洗浄した。
（４）　次に、前記１の各試料それぞれについて、試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で２００倍に希釈した後、その１００μＬを前記（３）のマイクロタイタープレートのウェルに注入し、２５℃にて１８時間静置し、反応を行わせた。
　これにより、試料に含まれるペリオスチンを、前記のウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体に結合させた。
（５）　次に、前記（４）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（６）　前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）にビオチンを結合させ標識したビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、前記（４）の試料希釈液で５０ｎｇ／ｍＬとなるように希釈し、その１００μＬを前記（５）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて９０分間静置し、反応を行わせた。
　これにより、前記の固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」に結合しているペリオスチンに、ビオチンを標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を結合させた。
（７）　次に、前記（６）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（８）　次に、パーオキシダーゼ（ＰＯＤ）を標識したストレプトアビジン（Ｓｔｅｒｅｏｓｐｅｃｉｆｉｃ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、ドイツ国）を、希釈液〔０．５％のカゼイン、及び１００ｍＭの塩化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で１５，０００倍希釈した後、その１００μＬを前記（７）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて６０分間静置し、反応を行わせた。
（９）　次に、ＰＯＤの基質液〔０．８ｍＭの３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）、２．５ｍＭの過酸化水素、及び３０ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する２０ｍＭのクエン酸緩衝液（ｐＨ３．９）〕の１００μＬを前記（８）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて１０分間静置し、反応を行わせ、発色させた。
（１０）　その後、前記（９）のマイクロタイタープレートの各ウェルに０．７Ｎの硫酸を注入し、この反応を停止させた。
（１１）　次に、分光光度計を用いて、前記（１０）のマイクロタイタープレートの各ウェルについて、４５０ｎｍにおける吸光度の測定を行った。
（１２）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチンを前記（４）の試料希釈液で希釈して、ペリオスチンの希釈系列を作成し、これらを標準試料とした。
　次に、これらの標準試料のそれぞれについて、前記（１）～（１１）の記載の通りに測定を行い、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）における「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）を作成した。
（１３）　前記（１１）において測定したマイクロタイタープレートの各ウェルの吸光度を、前記（１２）で作成した「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）に当てはめ、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
〔４〕結果
（１）　前記の〔１〕における「従来技術による測定」の測定結果、〔２〕における「本発明による測定－Ａ」の測定結果、及び〔３〕における「本発明による測定－Ｂ」の測定結果を、それぞれ図１０に示した。
（２）　この図において、横軸は測定を行なった試料の区別を表し、縦軸は試料中のペリオスチン濃度の測定値（ｎｇ／ｍＬ）を表す。
　そして、この図においてプロットされた各々の「○」は、それぞれの試料に含まれていたペリオスチンの濃度の測定値を表す。
　なお、これらの測定における感度及び特異度の算出において、カットオフ値は、「従来技術による測定」においては８２ｎｇ／ｍＬ、「本発明による測定－Ａ」においては１３６ｎｇ／ｍＬ、「本発明による測定－Ｂ」においては１４ｎｇ／ｍＬに設定した。
　また、この図において、横軸に平行して引かれた線は、カットオフ値を表す。
（３）　前記〔１〕における「従来技術による測定」において、肺線維症罹患者（計３７例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ６２．２％であった。そして、間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ４５．０％であった。更に、測定の特異度を算出したところ９５．５％であった。
（４）　また、前記〔２〕における「本発明による測定－Ａ」において、肺線維症罹患者（計３７例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ７０．３％であった。そして、間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ６２．５％であった。更に、測定の特異度を算出したところ９５．５％であった。
（５）　また、前記〔３〕における「本発明による測定－Ｂ」において、肺線維症罹患者（計３７例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ７８．４％であった。そして、間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清試料についての測定の感度を算出したところ７２．５％であった。更に、測定の特異度を算出したところ９８．５％であった。
（６）　以上のことより、ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、そしてペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いた、前記〔１〕における「従来技術による測定」での測定結果に対して、ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、そしてペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を標識抗体として用いた、前記〔２〕における「本発明による測定－Ａ」での測定結果では、肺線維症罹患者（計３７例）の血清試料についての測定の感度は８．１ポイント向上し、また間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清試料についての測定の感度は１７．５ポイント向上していることが分かる。
　すなわち、これらのことより、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する、本発明によるペリオスチンの測定においては、測定の感度を向上させることができ、そして測定の正確性を改善することができるものであることが確かめられた。
　また、これらのことより、ペリオスチンの分解物に結合する抗体を使用する、本発明によるペリオスチンの測定においては、測定の感度を向上させることができ、そして測定の正確性を改善することができるものであることが確かめられた。
　また、これらのことより、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが確かめられた。
（７）　また、ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、そしてペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いた、前記〔１〕における「従来技術による測定」での測定結果に対して、ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、そしてペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を標識抗体として用いた、前記〔３〕における「本発明による測定－Ｂ」での測定結果では、肺線維症罹患者（計３７例）の血清試料についての測定の感度は１６．２ポイント向上し、間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清試料についての測定の感度は２７．５ポイント向上し、また測定の特異度は３．０ポイント向上していることが分かる。
　すなわち、これらのことより、ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する、本発明によるペリオスチンの測定においては、測定の感度を大幅に向上させることができ、また測定の特異度を向上させることができ、そして測定の正確性を改善することができるものであることが確かめられた。
　また、これらのことより、ペリオスチンの分解物に結合でき、かつペリオスチンの多量体には結合しない抗体を使用する、本発明によるペリオスチンの測定においては、測定の感度を大幅に向上させることができ、また測定の特異度を向上させることができ、そして測定の正確性を改善することができるものであることが確かめられた。
　また、これらのことより、ペリオスチンの分解物に結合でき、かつペリオスチンの多量体には結合しない抗体を使用する、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を大幅に向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を更に向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが確かめられた。
〔実施例１１〕（ヒト血清中のペリオスチンの測定結果のＲＯＣ解析）
　ヒト血清中のペリオスチンの測定を行い、その測定結果のＲＯＣ曲線（受信者動作特性曲線；Ｒｅｃｅｉｖｅｒ　Ｏｐｅｒａｔｉｎｇ　Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ　Ｃｕｒｖｅ）を作成し、解析を行なった。
１．試料
　次の（１）及び（２）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
（１）陽性試料（計７７例）
　肺線維症罹患者（計３７例）の血清、及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計４０例）の血清を、陽性試料として用いた。
（２）陰性試料（計６６例）
　健常者（計６６例）の血清を、陰性試料として用いた。
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により、以下の通り測定し、求めた。
（１）従来技術による測定－ａ
（ａ）　前記実施例３で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」（ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）を、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〔１３７ｍＭの塩化ナトリウム、２．６８ｍＭの塩化カリウム、１．４７ｍＭのリン酸二水素カリウム、及び８．０４ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する水溶液（ｐＨ７．４）〕により２μｇ／ｍＬとなるように希釈し、これを９６穴マイクロタイタープレート（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国）の各ウェルに１００μＬずつ注入した後、２５℃で１８時間静置し、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」をこのマイクロタイタープレートの各ウェルに固相化した。
（ｂ）　次に、前記（ａ）のマイクロタイタープレートの各ウェルの中の液を除いた後、ブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を各ウェルに２５０μＬ注入し、４℃で１８時間静置した。
（ｃ）　次に、前記（ｂ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを洗浄液－２〔０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有するリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〕で３回洗浄した。
（ｄ）　次に、前記１の（１）及び（２）の各試料それぞれについて、試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で２００倍に希釈した後、その１００μＬを前記（ｃ）のマイクロタイタープレートのウェルに注入し、２５℃にて１８時間静置し、反応を行わせた。
　これにより、試料に含まれるペリオスチンを、前記のウェルに固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合させた。
（ｅ）　次に、前記（ｄ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（ｆ）　前記実施例２で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」（ペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）にビオチンを結合させ標識したビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、前記（ｄ）の試料希釈液で５０ｎｇ／ｍＬとなるように希釈し、その１００μＬを前記（ｅ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて９０分間静置し、反応を行わせた。
　これにより、前記の固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合しているペリオスチンに、ビオチンを標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を結合させた。
（ｇ）　次に、前記（ｆ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（ｈ）　次に、パーオキシダーゼ（ＰＯＤ）を標識したストレプトアビジン（Ｓｔｅｒｅｏｓｐｅｃｉｆｉｃ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、ドイツ国）を、希釈液〔０．５％のカゼイン、及び１００ｍＭの塩化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で１５，０００倍希釈した後、その１００μＬを前記（ｇ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて６０分間静置し、反応を行わせた。
（ｉ）　次に、ＰＯＤの基質液〔０．８ｍＭの３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）、２．５ｍＭの過酸化水素、及び３０ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する２０ｍＭのクエン酸緩衝液（ｐＨ３．９）〕の１００μＬを前記（ｈ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて１０分間静置し、反応を行わせ、発色させた。
（ｊ）　その後、前記（ｉ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに０．７Ｎの硫酸を注入し、この反応を停止させた。
（ｋ）　次に、分光光度計を用いて、前記（ｊ）のマイクロタイタープレートの各ウェルについて、４５０ｎｍにおける吸光度の測定を行った。
（ｌ）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチンを前記（ｄ）の試料希釈液で希釈して、ペリオスチンの希釈系列を作成し、これらを標準試料とした。
　次に、これらの標準試料のそれぞれについて、前記（ａ）～（ｋ）の記載の通りに測定を行い、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）における「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）を作成した。
（ｍ）　前記（ｋ）において測定したマイクロタイタープレートの各ウェルの吸光度を、前記（ｌ）で作成した「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）に当てはめ、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
（ｎ）　ＲＯＣ曲線の作成
　前記１の（１）の陽性試料及び前記１の（２）の陰性試料それぞれについての前記（ｍ）におけるペリオスチン濃度の測定値より、ＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　また、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
（２）本発明による測定－ａ
　前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　また、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を測定することができるものである。
（３）本発明による測定－ｂ
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　また、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
（４）従来技術による測定－ｂ
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　また、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体のみを測定することができるものである。
（５）本発明による測定－ｃ
　ペリオスチンの分解物のみを測定することができる測定系のＲＯＣ曲線を計算により求め、作成した。
　具体的には、前記（３）の「本発明による測定－ｂ」における測定結果より、前記（４）の「従来技術による測定－ｂ」における測定結果を差引いて、ＲＯＣ曲線を作成した。〔すなわち、前記（３）の測定結果（ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるもの）より、前記（４）の測定結果（ペリオスチンの一量体のみを測定することができるもの）を差し引いて、ペリオスチンの分解物のみを測定することができる測定系のＲＯＣ曲線を作成した。〕
３．結果
（１）　前記の通り、肺線維症罹患者及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者の血清からなる陽性試料、及び健常者の血清からなる陰性試料それぞれに含まれるペリオスチンの濃度の測定結果等より作成したＲＯＣ曲線の全てを図１１に示した。
　なお、この図の各ＲＯＣ曲線の横軸はこの測定における「１－特異度」の値を表し、縦軸はこの測定における「感度」を表す。
　また、この図の各ＲＯＣ曲線に「ＡＵＣ」として記載した値であるが、このＡＵＣの値はＲＯＣ曲線下の面積（Ａｒｅａ　Ｕｎｄｅｒ　ｔｈｅ　Ｃｕｒｖｅ）を表し、このＡＵＣの値が大きい程、その測定の感度、特異度は高いものであり、すなわち測定の正確性が高いものであり、測定において好ましいものである。
　以下、これらの各ＲＯＣ曲線について記載する。
（２）　前記２の（１）の「従来技術による測定－ａ」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を使用し、ペリオスチンのＲ１領域及びＲ４領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．８５０であった。
（３）　また、前記２の（２）の「本発明による測定－ａ」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を使用し、ペリオスチンのＲ１領域及びＲ２領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．８５６であった。
（４）　また、前記２の（３）の「本発明による測定－ｂ」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域及びＲ３領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．９７２であった。
（５）　また、前記２の（４）の「従来技術による測定－ｂ」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を使用し、ペリオスチンのＲ３領域及びＲ４領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの一量体のみを測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．６８１であった。
（６）　また、前記２の（５）の「本発明による測定－ｃ」におけるＲＯＣ曲線、すなわち前記２の（３）の「本発明による測定－ｂ」における測定結果より、前記２の（４）の「従来技術による測定－ｂ」における測定結果を差引いて作成した、ペリオスチンの分解物のみを測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．９９８であった。
（７）　以上のことより、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域」以外の領域を検出し、すなわちペリオスチンのＲ４領域及び／又はＣ末端領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができない前記２の（４）の「従来技術による測定－ｂ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．６８１）及び前記２の（１）の「従来技術による測定－ａ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．８５０）に比較して、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出するものである、すなわちペリオスチンの分解物に結合する抗体を使用する（つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができる）ものである前記２の（２）の「本発明による測定－ａ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．８５６）、前記２の（３）の「本発明による測定－ｂ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９７２）、及び前記２の（５）の「本発明による測定－ｃ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９９８）はいずれもＡＵＣの値が増加しており、測定の感度、特異度、つまり測定の正確性が改善していることが分かる。
　特に、ペリオスチンの分解物に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体を使用する（つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができるものの、ペリオスチンの多量体は測定することができない）前記２の（３）の「本発明による測定－ｂ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９７２）、及び前記２の（５）の「本発明による測定－ｃ」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９９８）においては、いずれもＡＵＣの値の増加が顕著であり、測定の感度、特異度、つまり測定の正確性が大幅に改善していることが分かる。
　すなわち、これらのことより、本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、及びペリオスチン測定の正確性の改善方法は、測定の感度、又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善することができることが確かめられた。
　また、これらのことより、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが確かめられた。
〔実施例１２〕（ヒト血清中のペリオスチンの測定－２）
　ヒト血清中のペリオスチンの測定を行い、本発明の抗体、測定方法、測定試薬、及び正確性の改善方法の効果を確かめた。
１．試料
　次の（１）及び（２）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
（１）陽性試料（計２６例）
　肺線維症罹患者（計１６例）の血清、及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計１０例）の血清を、陽性試料として用いた。
（２）陰性試料（計５４例）
　健常者（計５４例）の血清を、陰性試料として用いた。
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により、以下の通り測定し、求めた。
（１）従来技術による測定－１
（ａ）　前記実施例３で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」（ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）を、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〔１３７ｍＭの塩化ナトリウム、２．６８ｍＭの塩化カリウム、１．４７ｍＭのリン酸二水素カリウム、及び８．０４ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する水溶液（ｐＨ７．４）〕により２μｇ／ｍＬとなるように希釈し、これを９６穴マイクロタイタープレート（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｉｎｃ社、イリノイ州、米国）の各ウェルに１００μＬずつ注入した後、２５℃で１８時間静置し、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」をこのマイクロタイタープレートの各ウェルに固相化した。
（ｂ）　次に、前記（ａ）のマイクロタイタープレートの各ウェル中の液を除いた後、ブロッキング液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を各ウェルに２５０μＬ注入し、４℃で１８時間静置した。
（ｃ）　次に、前記（ｂ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを洗浄液－２〔０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有するリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）〕で３回洗浄した。
（ｄ）　次に、前記１の（１）及び（２）の各試料それぞれについて、試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で２００倍に希釈した後、その１００μＬを前記（ｃ）のマイクロタイタープレートのウェルに注入し、２５℃にて１８時間静置し、反応を行わせた。
　これにより、試料に含まれるペリオスチンを、前記のウェルに固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合させた。
（ｅ）　次に、前記（ｄ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（ｆ）　前記実施例２で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」（ペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）にビオチンを結合させ標識したビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、前記（ｄ）の試料希釈液で５０ｎｇ／ｍＬとなるように希釈し、その１００μＬを前記（ｅ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて９０分間静置し、反応を行わせた。
　これにより、前記の固相化した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に結合しているペリオスチンに、ビオチンを標識した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を結合させた。
（ｇ）　次に、前記（ｆ）のマイクロタイタープレートの各ウェルを前記の洗浄液－２で５回洗浄した。
（ｈ）　次に、パーオキシダーゼ（ＰＯＤ）を標識したストレプトアビジン（Ｓｔｅｒｅｏｓｐｅｃｉｆｉｃ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、ドイツ国）を、希釈液〔０．５％のカゼイン、及び１００ｍＭの塩化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で１５，０００倍希釈した後、その１００μＬを前記（ｇ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて６０分間静置し、反応を行わせた。
（ｉ）　次に、ＰＯＤの基質液〔０．８ｍＭの３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）、２．５ｍＭの過酸化水素、及び３０ｍＭのリン酸水素二ナトリウムを含有する２０ｍＭのクエン酸緩衝液（ｐＨ３．９）〕の１００μＬを前記（ｈ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに注入し、２５℃にて１０分間静置し、反応を行わせ、発色させた。
（ｊ）　その後、前記（ｉ）のマイクロタイタープレートの各ウェルに０．７Ｎの硫酸を注入し、この反応を停止させた。
（ｋ）　次に、分光光度計を用いて、前記（ｊ）のマイクロタイタープレートの各ウェルについて、４５０ｎｍにおける吸光度の測定を行った。
（ｌ）　前記参考例１の（１）で調製したペリオスチンを前記（ｄ）の試料希釈液で希釈して、ペリオスチンの希釈系列を作成し、これらを標準試料とした。
　次に、これらの標準試料のそれぞれについて、前記（ａ）～（ｋ）の記載の通りに測定を行い、前記の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）における「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）を作成した。
（ｍ）　前記（ｋ）において測定したマイクロタイタープレートの各ウェルの吸光度を、前記（ｌ）で作成した「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）に当てはめ、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
（２）本発明による測定－１
　前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を測定することができるものである。
（３）本発明による測定－２
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
（４）従来技術による測定－２
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体のみを測定することができるものである。
（５）従来技術による測定－３
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」（ペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体のみを測定することができるものである。
（６）従来技術による測定－４
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例６で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」（ペリオスチンのＣ末端領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体のみを測定することができるものである。
（７）本発明による測定－３
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
（８）本発明による測定－４
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例１で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例３で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」（ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を測定することができるものである。
（９）従来技術による測定－５
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」（ペリオスチンのＣ末端領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｂ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
（１０）本発明による測定－５
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
（１１）本発明による測定－６
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を測定することができるものである。
（１２）従来技術による測定－６
　前記（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例６で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」（ペリオスチンのＣ末端領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
（１３）従来技術による測定－７
　前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例６で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」（ペリオスチンのＣ末端領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び多量体を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの分解物を認識し結合することはできない抗体）とすること以外は、前記（１）の（ａ）～（ｍ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２１Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
（１４）　前記の（１）～（１３）の各々におけるペリオスチンの測定において、用いた固相化抗体、及び標識抗体がそれぞれペリオスチンのどの領域を認識し、結合するか（すなわち、ペリオスチンのどの領域を検出するか）を、更にこれらの各々の測定においてペリオスチンのどの領域が認識されているかを、図１２に模式的に表した。
　この模式図において、ペリオスチンのＥＭＩ領域を「ＥＭＩ」と表記し、Ｒ１領域を「Ｒ１」と表記し、Ｒ２領域を「Ｒ２」と表記し、Ｒ３領域を「Ｒ３」と表記し、Ｒ４領域を「Ｒ４」と表記し、そしてＣ末端領域を「Ｃ-ｔｅｒ」と表記した。
　また、この模式図において、下側の「Ｙ」のマークが結合している領域は、その測定に用いた固相化抗体が認識し、結合する（すなわち、検出する）ペリオスチンの領域を示し、そして上側の「Ｙ」のマークが結合している領域は、その測定に用いた標識抗体が認識し、結合する（すなわち、検出する）ペリオスチンの領域を示す。
　また、この模式図において、太線で囲った領域は、固相化抗体及び標識抗体のそれぞれが認識し、結合した（すなわち、検出した）領域及びこれらの領域に挟まれる領域を示す。
３．結果
（１）　前記２の（１）～（３）における測定結果を図１３に、前記２の（４）～（６）における測定結果を図１４に、前記２の（７）～（９）における測定結果を図１５に、前記２の（１０）～（１２）における測定結果を図１６に、そして前記２の（１３）における測定結果を図１７に示した。
　これらの図において、横軸は測定を行なった試料の区別を表し、縦軸は試料中のペリオスチン濃度の測定値（ｎｇ／ｍＬ）を表す。
　そして、この図においてプロットされた各々の「○」は、それぞれの試料に含まれていたペリオスチンの濃度の値を表す。
　また、この図の下方に、それぞれの試料に含まれていたペリオスチンの濃度の測定値の平均値（ｎｇ／ｍＬ）を示した。
　なお、これらの測定における感度及び特異度の算出において、カットオフ値は特異度が９８％を上回りかつ感度が一番高くなる濃度に設定した。
　また、この図において、横軸に平行して引かれた線は、それぞれの試料に含まれていたペリオスチンの濃度の測定値の平均値（ｎｇ／ｍＬ）のレベルを表す。
（２）　また、前記２の（１）～（１３）の各々の測定における、使用した固相化抗体及び標識抗体、前記固相化抗体により検出されるペリオスチンの領域、前記標識抗体により検出されるペリオスチンの領域、当該測定により測定することができるペリオスチンが一量体、多量体又は分解物のいずれであるか、測定の感度、測定の特異度、陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）、並びに「作成したＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」を、図１８に示した。
（３）　この図１３、図１４、図１５、図１６、図１７及び図１８より、以下のことが分かる。
　「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」以外の抗体を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のいずれも検出しない場合、つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができない場合〔前記２の（１）、（４）、（５）、（６）、（９）、（１２）、及び（１３）の測定の場合〕には、「測定の感度」は７．７％～６１．５％（平均値：３５．７％）であり、「測定の特異度」は９８．１％であり、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）は１．３倍～２．１倍（平均値：１．７倍）であり、「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」は０．４９３～０．９０２（平均値：０．７３８）であった。
　これに対して、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する場合、つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができる場合〔前記２の（２）、（３）、（７）、（８）、（１０）、及び（１１）の測定の場合〕には、「測定の感度」は７３．１％～９６．２％（平均値：８０．８％）であり、「測定の特異度」は９８．１％であり、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）は１．８倍～７．７倍（平均値：４．８倍）であり、「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」は０．９１２～０．９９４（平均値：０．９４３）であった。
　すなわち、この「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域のいずれかに結合する抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出する場合には、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」以外の抗体を使用する場合に比べて、「測定の感度」、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）及び「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」のいずれもが増加、向上しており、測定の正確性が改善されていることが分かる。
　更に、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができ、かつペリオスチンの多量体を測定しないものである場合〔前記２の（３）、（７）、及び（１０）の測定の場合〕には、「測定の感度」は７３．１％～９６．２％（平均値：８３．４％）であり、「測定の特異度」は９８．１％であり、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）は５．８倍～７．７倍（平均値：７．１倍）であり、「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」は０．９１４～０．９９４（平均値：０．９５０）であった。
　すなわち、この「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができ、かつペリオスチンの多量体を測定しないものである場合には、前記の「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」を使用する場合に比べて、「測定の感度」、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）及び「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」のいずれもが更に増加、向上しており、測定の正確性が更に改善されていることが分かる。
　以上のことより、本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、及びペリオスチン測定の正確性の改善方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定において、測定の感度等を向上させ、測定の正確性を改善することができるものであることが確かめられた。
　また、以上のことより、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが確かめられた。
〔実施例１３〕（試料中のペリオスチンの測定）
　ペリオスチン濃度が分かっている試料についてペリオスチンの測定を行い、標準曲線（検量線）を作成した。
１．試料
　前記参考例２のＩＩの〔１〕の２の「部分ペリオスチン（Δ１７・１８・２１）」（すなわち、「ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物の混合物」であって、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物をそれぞれ含むことが分かっている。）を、試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕で希釈して、次の（２）～（６）のペリオスチン濃度が分かっている標準試料をそれぞれ調製し、試料とした。
　また、ペリオスチンを含有しない試料希釈液〔０．５％のカゼイン、１００ｍＭの塩化ナトリウム、及び０．１％のアジ化ナトリウムを含有する５０ｍＭのトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液［Ｔｒｉｓ緩衝液］（ｐＨ８．０）〕を、次の（１）のペリオスチン濃度が０ｎｇ／ｍＬの試料（標準試料）とした。
（１）標準試料－１　（ペリオスチン濃度：０ｎｇ／ｍＬ）
（２）標準試料－２　（ペリオスチン濃度：０．１２５ｎｇ／ｍＬ）
（３）標準試料－３　（ペリオスチン濃度：０．２５ｎｇ／ｍＬ）
（４）標準試料－４　（ペリオスチン濃度：０．５ｎｇ／ｍＬ）
（５）標準試料－５　（ペリオスチン濃度：１．０ｎｇ／ｍＬ）
（６）標準試料－６　（ペリオスチン濃度：２．０ｎｇ／ｍＬ）
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により測定し、求めた。
　なお、この測定は、次の（ａ）及び（ｂ）の事項以外は前記実施例１２の２の（１）～（１３）の記載の通りに操作を行い、下の「（１）従来技術による測定－１」～「（１３）従来技術による測定－７」のそれぞれの測定における「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線、すなわち検量線を作成した。
（ａ）　前記実施例１２の２の（１）の（ｄ）における試料として、前記実施例１２の１の（１）及び（２）の試料に代えて、前記１の（１）～（６）の標準試料をそれぞれ用いること
（ｂ）　前記実施例１２の２の（１）の（ｌ）及び（ｍ）における操作に代えて、前記実施例１２の２の（１）の（ｋ）において測定した各標準試料の吸光度より「ペリオスチン濃度－吸光度」の標準曲線（検量線）を作成したこと
（１）従来技術による測定－１
（２）本発明による測定－１
（３）本発明による測定－２
（４）従来技術による測定－２
（５）従来技術による測定－３
（６）従来技術による測定－４
（７）本発明による測定－３
（８）本発明による測定－４
（９）従来技術による測定－５
（１０）本発明による測定－５
（１１）本発明による測定－６
（１２）従来技術による測定－６
（１３）従来技術による測定－７
３．結果
（１）　前記２における測定結果を図１９、図２０、図２１、図２２、図２３、図２４及び図２５に分けて示した。
　これらの図において、横軸は試料中のペリオスチン濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表し、縦軸は測定により得た各試料の４５０ｎｍにおける吸光度（ΔＯＤ）を表す。
（２）　これらの図１９、図２０、図２１、図２２、図２３、図２４及び図２５より、本実施例において作成した各々の標準曲線（検量線）はいずれも、試料中のペリオスチン濃度の増加に伴って、得られる吸光度が増加しており、定量性を有することが分かる。
　このことより、本発明のペリオスチンの測定方法、及びペリオスチンの測定試薬は、試料中のペリオスチンを正確に測定することができるものであることが確かめられた。
〔実施例１４〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－７回目）
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５及び実施例６とは別の時に、前記実施例１の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（７回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ２５Ａ株と命名した。
　そして、ＳＳ２５Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例１５〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製－８回目）
　前記実施例１、実施例２、実施例３、実施例４、実施例５、実施例６及び実施例１４とは別の時に、前記実施例１の（１）～（４）の記載の通りに操作を行い、抗ペリオスチンモノクローナル抗体の調製を行った。（８回目）
　その結果、生育した融合細胞株の中から一つのクローンを確立し、ＳＳ２７Ａ株と命名した。
　そして、ＳＳ２７Ａ株のモノクローナル抗体産生細胞株からラット抗ペリオスチンモノクローナル抗体（以下、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」という）を得ることができた。
〔実施例１６〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の認識部位の確認）
　前記実施例１４及び実施例１５において取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体のそれぞれについて、前記実施例７の１の（１）～（８）の記載の通りに操作を行い、これらの抗ペリオスチンモノクローナル抗体がペリオスチンのどの領域を認識しているかの確認を行った。
　この測定の結果より、前記実施例１４において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが確かめられた。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」は、ペリオスチンのＲ２領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
　また、この測定の結果より、前記実施例１５において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」は、前記のペリオスチン及び部分ペリオスチンの内、「ペリオスチン」、「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｒ１・Ｒ２・Ｒ３領域）」のみに結合し、「部分ペリオスチン（Ｒ２領域）」、「部分ペリオスチン（Ｒ４領域）」、「部分ペリオスチン（ＥＭＩ領域）」及び「部分ペリオスチン（Ｃ末端領域）」のいずれにも結合していないことが確かめられた。
　このことより、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」は、ペリオスチンのＲ１領域を抗原認識部（エピトープ）として認識していることが確かめられた。
〔実施例１７〕（抗ペリオスチンモノクローナル抗体の反応性の確認）
　前記実施例１４及び実施例１５において取得した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の各々について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物それぞれとの反応性を確認した。
１．測定
（１）　前記実施例１４において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」、及び前記実施例１５において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」のそれぞれについて、前記実施例８の〔１〕の１～３の記載の通りに、免疫沈降処理、ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法、及びウエスタンブロッティング法の各々の操作を行った。
　なお、前記実施例３において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」、前記実施例４において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」、及び前記実施例４において取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」についても、対照として、前記の各操作を行った。
　また、前記のＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法、及びウエスタンブロッティング法の操作において、陰性対照のレーンは設けなかった。
（２）　これらの操作により、ポリビニルジフルオライド膜に、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体が認識し結合したペリオスチンの一量体、多量体又は分解物の分子量に応じた位置に、発色を生じさせた。
　そして、この発色させたポリビニルジフルオライド膜を撮影した。
　このポリビニルジフルオライド膜上の発色の有無及びその発色した位置（分子量）より、前記の各々の抗ペリオスチンモノクローナル抗体について、ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のそれぞれとの反応性を確認した。
２．結果
（１）　前記１の（２）において撮影したポリビニルジフルオライド膜を図２６に示した。
　この図において、左側のレーンより順に、分子量マーカーのレーン（「ＭＭ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１８Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ａ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「１９Ｄ」と表記）、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「２５Ａ」と表記）、及び「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーン（「２７Ａ」と表記）を表す。
　また、この図において、１５０ＫＤａと２５０ＫＤａの分子量マーカーの間に位置する太いバンドはその分子量よりペリオスチンの多量体（その分子量からペリオスチンの三量体と推測される）を表し、７５ＫＤａの分子量マーカーの近辺から高分子量側にかけて見られる太いバンドはその分子量よりペリオスチンの一量体を表し、そして３７ＫＤａの分子量マーカーの近辺の太いバンドはその分子量よりペリオスチンの分解物を表す。
（２）　そして、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの一量体及び分解物を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの多量体を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」はペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合するが、ペリオスチンの多量体は認識せず、結合しないことが確かめられた。
　また、この図より、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」が認識し結合したペリオスチンのレーンにおいては、ペリオスチンの一量体及び分解物を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの多量体を示す位置においては発色が認められないので、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」はペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合するが、ペリオスチンの多量体は認識せず、結合しないことが確かめられた。
　すなわち、この結果より、次の抗ペリオスチンモノクローナル抗体は、ペリオスチンの分解物を認識し、結合することができ、かつ、ペリオスチンの多量体を認識できず、結合することができないことが分かる。
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」
　・　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」
　なお、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２５Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８５」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２５Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８５）
　また、この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２７Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８６」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２７Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８６）
（３）　なお、この結果において、対照とした「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」は、ペリオスチンの多量体、一量体及び分解物を示す位置のいずれにおいても発色が認められ、このことよりペリオスチンの多量体、一量体及び分解物のいずれをも認識し結合することが確かめられた。
　また、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」は、ペリオスチンの多量体及び一量体を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの分解物を示す位置においては発色が認められないので、このことよりペリオスチンの多量体及び一量体を認識し結合するが、ペリオスチンの分解物は認識せず、結合しないことが確かめられた。
　そして、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」は、ペリオスチンの一量体及び分解物を示す位置においては発色が認められるが、ペリオスチンの多量体を示す位置においては発色が認められないので、このことよりペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合するが、ペリオスチンの多量体は認識せず、結合しないことが確かめられた。
　これらの「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ａ）」、及び「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」の結果は、前記実施例８における結果と同一であり、この実施例１７における操作及び結果が正確なものであることが、このことからも確かめられた。
〔実施例１８〕（ヒト血清中のペリオスチンの測定及び測定結果のＲＯＣ解析）
　ヒト血清中のペリオスチンの測定を行い、本発明の効果を確かめ、そして、測定結果のＲＯＣ曲線（受信者動作特性曲線；Ｒｅｃｅｉｖｅｒ　Ｏｐｅｒａｔｉｎｇ　Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ　Ｃｕｒｖｅ）を作成し、解析を行なった。
〔１〕ＲＯＣ解析
１．試料
　次の（１）及び（２）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
（１）陽性試料（計３９例）
　肺線維症罹患者（計２０例）の血清、及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計１９例）の血清を、陽性試料として用いた。
（２）陰性試料（計６４例）
　健常者（計６４例）の血清を、陰性試料として用いた。
２．測定
　各試料に含まれるペリオスチンの濃度を、抗ペリオスチンモノクローナル抗体を使用した酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）により、以下の通り測定し、求めた。
＜１＞従来技術による測定
　前記実施例１１の２の（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができるものである。
＜２＞本発明による測定－（ｉ）
　前記実施例１１の２の（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」（ペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすることの二つのこと以外は、前記実施例１１の２の（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び図７より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
＜３＞本発明による測定－（ｉｉ）
　前記実施例１１の２の（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例１４で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」（ペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすることの二つのこと以外は、前記実施例１１の２の（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び前記の実施例１６における検討結果より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
＜４＞本発明による測定－（ｉｉｉ）
　前記実施例１１の２の（１）の（ａ）におけるマイクロタイタープレートのウェルに固相化した抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」に代えて、前記実施例１５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」（ペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体及び分解物を認識し結合することができるものの、ペリオスチンの多量体を認識し結合することはできない抗体）とすること、及び前記（１）の（ｆ）におけるビオチン標識抗ペリオスチンモノクローナル抗体の抗ペリオスチンモノクローナル抗体を、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」に代えて、前記実施例５で取得した「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」（ペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する抗体；ペリオスチンの一量体、多量体及び分解物のいずれについても認識し結合する抗体）とすることの二つのこと以外は、前記実施例１１の２の（１）の（ａ）～（ｎ）の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求め、そしてＲＯＣ曲線を作成した。
　なお、このＲＯＣ曲線の作成において、分布の仮定はノンパラメトリックとし、信頼水準は９５％に設定した。
　なお、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」を固相化抗体として用い、「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を標識抗体として用いる本測定においては、前記の実施例８における検討結果及び前記の実施例１６における検討結果より分かるように、ペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができるものである。
３．結果
（１）　前記の通り、肺線維症罹患者及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者の血清からなる陽性試料、及び健常者の血清からなる陰性試料それぞれに含まれるペリオスチンの濃度の測定結果等より作成したＲＯＣ曲線の全てを図２７に示した。
　なお、この図の各ＲＯＣ曲線の横軸はこの測定における「１－特異度」の値を表し、縦軸はこの測定における「感度」を表す。
　また、この図の各ＲＯＣ曲線に「ＡＵＣ」として記載した値であるが、このＡＵＣの値はＲＯＣ曲線下の面積（Ａｒｅａ　Ｕｎｄｅｒ　ｔｈｅ　Ｃｕｒｖｅ）を表し、このＡＵＣの値が大きい程、その測定の感度、特異度は高いものであり、すなわち測定の正確性が高いものであり、測定において好ましいものである。
　以下、これらの各ＲＯＣ曲線について記載する。
（２）　前記２の＜１＞の「従来技術による測定」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ４領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１７Ｂ）」を使用し、ペリオスチンのＲ１領域及びＲ４領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの多量体及び一量体を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．８７２であった。
（３）　また、前記２の＜２＞の「本発明による測定－（ｉ）」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＲ３領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域及びＲ３領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．９８４であった。
（４）　また、前記２の＜３＞の「本発明による測定－（ｉｉ）」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ２領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を使用し、ペリオスチンのＲ２領域及びＥＭＩ領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．９５７であった。
（５）　また、前記２の＜４＞の「本発明による測定－（ｉｉｉ）」におけるＲＯＣ曲線、すなわち固相化抗体としてペリオスチンのＲ１領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」を使用し、標識抗体としてペリオスチンのＥＭＩ領域を認識し結合する「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」を使用し、ペリオスチンのＲ１領域及びＥＭＩ領域を検出するものであって、そしてペリオスチンの一量体及び分解物を測定することができる測定系におけるＲＯＣ曲線において、算出したＡＵＣの値は０．９９３であった。
（６）　以上のことより、「ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域又はＲ３領域」以外の領域を検出し、すなわちペリオスチンのＲ４領域及び／又はＣ末端領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができない前記２の＜１＞の「従来技術による測定」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．８７２）に比較して、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出するものであり、すなわちペリオスチンの分解物に結合するものであって、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体を使用する（つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができるものの、ペリオスチンの多量体は測定することができない）前記２の＜２＞の「本発明による測定－（ｉ）」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９８４）、前記２の＜３＞の「本発明による測定－（ｉｉ）」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９５７）、及び前記２の＜４＞の「本発明による測定－（ｉｉｉ）」のＲＯＣ曲線（ＡＵＣ＝０．９９３）においては、いずれもＡＵＣの値の増加が顕著であり、測定の感度、特異度、つまり測定の正確性が大幅に改善していることが分かる。
　すなわち、これらのことより、本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、及びペリオスチン測定の正確性の改善方法は、測定の感度、又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善することができることが確かめられた。
　また、これらのことより、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが確かめられた。
〔２〕本発明の効果（測定の感度等）の確認
１．試料
　次の（１）及び（２）のヒト血清をそれぞれ試料とした。
（１）陽性試料（計３９例）
　前記〔１〕の１の（１）と同じ肺線維症罹患者（計２０例）の血清、及び間質性肺炎〔膠原病由来〕罹患者（計１９例）の血清を、陽性試料として用いた。
（２）陰性試料（計６４例）
　前記〔１〕の１の（２）と同じ健常者（計６４例）の血清を、陰性試料として用いた。
２．測定
＜１＞従来技術による測定
　前記〔１〕の２の＜１＞の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
＜２＞本発明による測定－（ｉ）
　前記〔１〕の２の＜２＞の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
＜３＞本発明による測定－（ｉｉ）
　前記〔１〕の２の＜３＞の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
＜４＞本発明による測定－（ｉｉｉ）
　前記〔１〕の２の＜４＞の記載の通りに測定及び処理を行い、各試料に含まれていたペリオスチンの濃度を求めた。
３．結果
（１）　前記２の＜１＞～＜４＞の各々の測定における、使用した固相化抗体及び標識抗体、前記固相化抗体により検出されるペリオスチンの領域、前記標識抗体により検出されるペリオスチンの領域、当該測定により測定することができるペリオスチンが一量体、多量体又は分解物のいずれであるか、測定の感度、測定の特異度、陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）、並びに「作成したＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」を、図２８に示した。
（２）　この図２８より、以下のことが分かる。
　「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」以外の抗体を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域のいずれも検出しない場合、つまり、ペリオスチンの分解物を測定することができない場合〔前記２の＜１＞の測定の場合〕には、「測定の感度」は４３．６％であり、「測定の特異度」は９８．４％であり、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）は２．８倍であり、「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」は０．８７２であった。
　これに対して、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができ、かつペリオスチンの多量体を測定しないものである場合〔前記２の＜２＞、＜３＞、及び＜４＞の測定の場合〕には、「測定の感度」は７１．８％～９２．３％（平均値：８１．２％）であり、「測定の特異度」は９８．４％であり、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）は３．６倍～１６．１倍（平均値：８．６倍）であり、「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」は０．９５７～０．９９３（平均値：０．９７８）であった。
　すなわち、この「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合し、かつペリオスチンの多量体に結合しない抗体」を使用し、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出し、ペリオスチンの分解物を測定することができ、かつペリオスチンの多量体を測定しないものである場合には、「ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体」以外の抗体を使用する場合に比べて、「測定の感度」、「陰性試料の測定値の平均値に対する陽性試料の測定値の平均値の比率」（「陽性試料の測定値の平均値」÷「陰性試料の測定値の平均値」；すなわち、陰性試料の測定値に対する陽性試料の測定値の上昇度）及び「ＲＯＣ曲線のＡＵＣの値」のいずれもが大幅に増加、向上しており、測定の正確性が改善されていることが分かる。
　本発明のペリオスチンの測定方法、ペリオスチンの測定試薬、及びペリオスチン測定の正確性の改善方法は、試料に含まれるペリオスチンの測定において、測定の感度等を向上させ、測定の正確性を改善することができるものであることが、以上のことからも確かめられた。
　また、本発明の肺線維症又は間質性肺炎の検査方法は、その測定の感度又は特異度等を向上させ、測定の正確性を改善し、正確なペリオスチンの測定値を得ることができるものであって、肺線維症又は間質性肺炎の罹患者と、健常者や他の疾患の罹患者との鑑別を向上させ、診断を誤らせることを防ぐことができるものであることが、以上のことからも確かめられた。
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｄ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受託番号：ＮＩＴＥ　Ｐ－１０６８」として２０１１年２月２２日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｄ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｄ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年２月７日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年２月９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１０６８）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１６Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８１」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１６Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１６Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８１）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１８Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８２」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１８Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１８Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８２）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｃ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８３」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ１９Ｃ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ１９Ｃ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８３）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２０Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８４」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２０Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２０Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８４）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２５Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８５」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２５Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２５Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８５）
　「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２７Ａ株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に、「受領番号：ＮＩＴＥ　ＡＰ－１２８６」として２０１２年３月１６日付けにて寄託されている。この「抗ペリオスチンモノクローナル抗体（ＳＳ２７Ａ）」のモノクローナル抗体産生細胞株であるＳＳ２７Ａ株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構の特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足二丁目５番８号）に対し、２０１２年７月１９日付けにて国内寄託から国際寄託への移管の申請を行い、国際寄託に移管された。［移管日：２０１２年７月１９日］（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－１２８６）

Claims (22)

  1. 　ペリオスチン又はその分解物のＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に結合する抗体。
  2. 　ペリオスチンの分解物に結合する抗体である、請求項１に記載の抗体。
  3. 　ペリオスチンの多量体に結合しない抗体である、請求項１又は２に記載の抗体。
  4. 　抗体がモノクローナル抗体である、請求項１～３のいずれか１項に記載の抗体。
  5. 　抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号１６で表されるアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号１８で表されるアミノ酸配列を含むものである、請求項４に記載の抗体。
  6. 　受託番号がNITE BP-1281であるハイブリドーマSS16A株、受託番号がNITE BP-1282であるハイブリドーマSS18A株、受託番号がNITE BP-1283であるハイブリドーマSS19C株、受託番号がNITE BP-1068であるハイブリドーマSS19D株、受託番号がNITE BP-1284であるハイブリドーマSS20A株、受託番号がNITE BP-1285であるハイブリドーマSS25A株及び受託番号がNITE BP-1286であるハイブリドーマSS27A株からなる群から選ばれるいずれかのハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体。
  7. 　試料に含まれるペリオスチンの測定方法であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とする、前記方法。
  8. 　請求項１～６のいずれか１項に記載の抗体を使用することを特徴とする、請求項７に記載の方法。
  9. 　ペリオスチンがペリオスチン分解物である、請求項７又は８に記載の方法。
  10. 　ペリオスチンが多量体ではない、請求項７～９のいずれか１項に記載の方法。
  11. 　ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域に特異的に結合する物質を含む、試料に含まれるペリオスチン又はその分解物の測定試薬。
  12. 　前記物質が請求項１～６のいずれか１項に記載の抗体である、請求項１１に記載の試薬。
  13. 　ペリオスチンがペリオスチン分解物である、請求項１１又は１２に記載の試薬。
  14. 　ペリオスチンが多量体ではない、請求項１１～１３のいずれか１項に記載の試薬。
  15. 　試料に含まれるペリオスチンの量又は濃度の測定において、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを特徴とする、ペリオスチン測定の正確性の改善方法。
  16. 　請求項１～６のいずれか１項に記載の抗体を使用することを特徴とする、請求項１５に記載の方法。
  17. 　ペリオスチンがペリオスチン分解物である、請求項１５又は１６に記載の方法。
  18. 　ペリオスチンが多量体ではない、請求項１５～１７のいずれか１項に記載の方法。
  19. 　次の工程を含む、肺線維症又は間質性肺炎の検査方法。
    ａ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度を測定する工程であって、ペリオスチンのＥＭＩ領域、Ｒ１領域、Ｒ２領域及びＲ３領域からなる群から選ばれる少なくとも一つの領域を検出することを含む工程
    ｂ）　被検者由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度と、肺線維症又は間質性肺炎のいずれにも罹患していない生体由来の試料におけるペリオスチンの量又は濃度とを比較する工程
  20. 　請求項１～６のいずれか１項に記載の抗体を使用することを特徴とする、請求項１９に記載の方法。
  21. 　ペリオスチンがペリオスチン分解物である、請求項１９又は２０に記載の方法。
  22. 　ペリオスチンが多量体ではない、請求項１９～２１のいずれか１項に記載の方法。
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