JP2002502250A

JP2002502250A - Ｏｓｆ２／ｃｂｆａ１組成物および使用の方法

Info

Publication number: JP2002502250A
Application number: JP50089299A
Authority: JP
Inventors: デューシー，パトリシア; カーセンティ，ジェラルド
Original assignee: ボード・オヴ・リージェンツ，ザ・ユニヴァーシティ・オヴ・テキサス・システム
Priority date: 1997-05-29
Filing date: 1998-05-29
Publication date: 2002-01-22
Also published as: WO1998054322A1; AU744087B2; CA2291698A1; EP1017807A1; US6518063B1; AU7699798A

Abstract

(57)【要約】 Osf2/Cbfa1と命名される新規造骨細胞特異的転写因子を含む方法と組成物とを開示する。また、ヒト細胞系統から誘導される該ポリペプチドをコードする核酸部分と、種々の診断的応用および治療的応用におけるこれらのポリヌクレオチドの用途とについても開示する。造骨細胞分化阻止剤である化合物を同定するための方法と組成物とキットと装置と、試料中のOsf2/Cbfa1ポリヌクレオチドおよびポリペプチドを同定するための方法と組成物とキットと装置とをも提供する。また、Osf2プロモーターを含む核酸組成物と、異種および同種遺伝子転写並びにタンパク質産生における該プロモーターの用途とについても開示する。

Description

【発明の詳細な説明】ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１組成物および使用の方法１．０発明の背景本出願は、１９９７年５月２９日に提出された米国特許仮出願番号第６０／０４８，４３０号の継続出願であった１９９８年３月２４日に提出された米国特許仮出願番号第６０／０８０，１８９号の継続出願であり、その各々の全ての内容は、特に、その全体がここに引用することにより組込まれる。米国政府は、国立衛生研究所から交付番号ＤＥ１１２９０号およびＡＲ４１０５９号によって本発明に権利を有する。１．１発明の分野本発明は、一般に、分子生物学、および特に骨格形成（ｓｋｅｌｅｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）の分野に関連する。さらに詳細には、特定の実施形態は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１と称される新規骨芽細胞特異的転写因子をコードする遺伝子を含む核酸セグメントに関する。特定の実施形態では、本発明は、骨芽細胞分化を調節し、そして骨組織の形成、成長、修復および再生を刺激するこれらのポリヌクレオチドおよびポリペプチド組成物の使用に関する。生物学的サンプルからＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１関連遺伝子およびポリペプチドを同定する方法、およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたはポリヌクレオチドと相互作用する化合物、および生物中の骨細胞形成を改変または阻害する化合物を同定する方法およびキットも提供される。１．２関連技術の説明１．２．１骨発達骨修復に関与する調節因子は、全身性ホルモン、サイトカイン、成長因子、および成長および分化を調節する他の分子を含むことが知られている。様々な骨誘導剤は、精製され、そしてポリペプチド成長因子様分子として示された。これらの刺激因子は、骨形態形成または形態形成タンパク質（ＢＭＰ）と称され、そして骨形成の骨誘導タンパク質または骨形成のタンパク質（ＯＰ）とも称される。数種のＢＭＰ（またはＯＰ）コーディング遺伝子を、ここでクローン化して特徴づけた。これらは、共通名称のＢＭＰ−１からＢＭＰ−８と称された。ＢＭＰの用語は、広範に使用されるが、個々の個体のＢＭＰについてのＯＰ等価語句がある場合と確認できる(Ａｌｐｅｒ、１９９４年)。同様に、ＯＰおよびＢＭＰをコードする別の遺伝子は、すでに同定されつつある。ＢＭＰ−１は、さらに一般化された形態形成である（Ｓｈｉｍｅｌｌら、１９９１年）が、ＢＭＰ２−８は、一般に、骨形成であると考えられる。ＢＭＰ−３は、オステオゲニンとも称され(Ｌｕｙｔｅｎら、１９８９年)、そしてＢＭＰ− ７は、ＯＰ−１とも称される(Ｏｚｋａｙｎａｋら、１９９０年)。ＢＭＰは、形質転換成長因子−β（ＴＧＦ−β）スーパーファミリーに関連されるか、またはその一部であり、そしてＴＧＦ−β１およびＴＧＦ−β２の両方とも、骨形成機能を調節する(Ｓｅｉｔｚら、１９９２年)。数種のＢＭＰ（またはＯＰ）ヌクレオチド配列およびポリペプチドは、米国特許第４，７９５，８０４号、第４，８７７，８６４号、第４，９６８，５９０号、および第５，１０８，７５３号で記述され、特に、米国特許第５，１０８，９２２号に開示されるＢＭＰ−１、米国特許第５，１６６，０５８号および第５，０１３，６４９号に開示されるＢＭＰ −２Ａ(最近ＢＭＰ−２と称される)、米国特許第５，０１３，６４９号に開示されるＢＭＰ−２Ｂ(最近ＢＭＰ−４と称される)、米国特許第５，１１６，７３８号中のＢＭＰ−３、米国特許第５，１０６，７４８号中のＢＭＰ−５、米国特許第５，１８７，０７６号中のＢＭＰ−６、米国特許第５，１０８，７５３号および第５，１４１，９０５号中のＢＭＰ−７、および米国特許第５，０１１，６９１号中のＯＰ−１、ＣＯＰ−５およびＣＯＰ−７が挙げられる(その各々は、特に、その全体がここに引用することにより組込まれる)。新たな骨形成を刺激する許容性を示すことが報告された他の成長因子またはホルモンとしては、酸性繊維芽成長因子(Ｊｉｎｇｕｓｈｉら、１９９０年)、エストロゲン(Ｂｏｄｅｎら、１９８９年)、マクロファージコロニー刺激因子(Ｈｏｒｏｗｉｔｚら、１９８９年)、および甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）のようなカルシウム調節剤（ＲａｉｓｚおよびＫｒｅａｍ、１９８３年）が挙げられる。骨格発達は、多段階プロセスである。それは、骨格要素のパターン化、顆粒形成および骨形成系列への間葉細胞の委託（ｃｏｍｍｉｔｍｅｎｔ）を含み、さらに３つの特殊化細胞型：軟骨中の顆粒細胞、骨中の骨芽細胞および破骨細胞への前駆体細胞の最終分化も含まれる。成長因子または転写因子をコードする多くの遺伝子が、骨格要素のパターン化を制御するマウスにおける遺伝研究を通して示された (Ｌｕｏら、１９９６年ａ、１９９６年ｂ)。遺伝子分析は、これらの遺伝子での突然変異が、骨格特異的細胞型の分化に深刻な影響を及ぼすことはないことも示し、それにより骨格でのパターン化および細胞分化が、様々の遺伝経路を通して達成されるが示唆される。この仮説と一致して、ＰＴＨｒＰおよびｃ−ｆｏｓのような遺伝子が、骨格パターン化に影響を及ぼすことなく、それぞれ顆粒細胞および破骨細胞分化を制御することが示された(Ｋａｒａｐｌｉｓら、１９９４年、Ｗａｎｇら、１９９２年、Ｊｏｈｎｓｏｎら、１９９２年)。しかし、骨形成、そして特に骨芽細胞分化を制御するのに特に要因である分子決定基についてはほとんど知られていない。ＯＳＥ２に結合する骨芽細胞核活性ポリペプチドであるＯｓｆ２の分析は、それが免疫学的にＣｂｆａ転写因子に関連することを示す(Ｇｅｏｆｆｒｏｙら、１９９５年、Ｍｅｒｒｉｍａｎら、１９９５年)。Ｃｂｆａタンパク質は、神経形成および性分化に必要とされるドロソフィア対規則遺伝子産物である子牛（ルント）のマウス相同物である(ＧｅｒｇｅｎおよびＷｉｅｓｃｈａｕｓ、１９８５年、Ｋａｎｉａら、１９９０年)。子牛およびＣｂｆａタンパク質は、それらのＤＮＡ結合ドメイン、子牛ドメインと称される１２８アミノ酸長のモチーフに高度の相同性を示す(Ｋａｇｏｓｈｉｍａら、１９９３年)。マウスゲノムは、十分に特徴付けられた発現パターンを有する莫大なイソ形態をコードする３種の公知子牛相同物を含む(Ｏｇａｗａら、１９９３年ａ、Ｂａｅら、１９９２年、Ｗｉｊｍｅｎｇａら、１９９５年、Ｓｉｍｅｏｎｅら、１９９５年)。記述されるＣｂｆａ転写物の内、骨のみでまたは骨で優性に発現されるものはないことが示され、それによりいまだ未知のＣｂｆａファミリーの構成要素が、オステオカルシンの骨芽細胞特異的発現を制御することが示唆される。これは、このような新規構成要素または構成要素群の研究を試した。１．２．２転写因子すべての生物学上のプロセスの制御は、ＤＮＡ調節要素との、そして互いに相互作用する様々の正のそして負の作用因子の間の平衡から生じる。これらのタンパク質因子は、タンパク質の発現を調節する重要な役割を果たし、そしてそのため、正常なそして病理学上のプロセスの両方に重要である。これらのタンパク質因子を理解すること、そしてそれらがどのように遺伝子発現を調節するかは、疾患発生および進行を制御する剤の開発のための戦略に対する鍵である。遺伝子特異的転写因子は、以下の理由のため、これらのそして他のヒトの疾患に指示される新規治療法の将来有望なクラスの標的を提供する。第１に、転写因子は、実質的な多様性を提供する。３００以上の遺伝子特異的転写因子が記述され、そしてヒトゲノムは、３０００と同じくらい多くをコードする可能性がある。それで、それらは、細胞表面受容体としてたくさん標的源を提供する。第２に、転写因子は、実質的な特異性を提供する。個々のそして全ての因子は、標的に対して特徴的な分子表面を提供する。第３に、転写因子は、ヒトの疾患に関与することが知られる。例えば、多くの腫瘍は、特定の癌遺伝子の活性化に関連している。第３の公知プロト癌遺伝子および全ての抗癌遺伝子の内の四分の三は、転写因子である。転写因子は、遺伝子の一部すなわち遺伝子調節領域と配列特異的相互作用をする能力がある。相互作用は、転写因子が直接接触するときに指示配列特異的結合であるか、転写因子が核酸結合タンパク質によって核酸に繋ぎとめられる場合には、他の補助タンパク質によって指向されるか、または促進される間接的配列特異的結合である可能性がある。さらに、ある種の転写因子は、誘導または相乗作用の結合を示す。広範な転写因子−核酸複合体は、有用な標的を提供する。遺伝子および／または転写因子は、宿主から、または感染性または寄生性生物から誘導されうる。例として、宿主は、免疫細胞の活性に関与した転写因子のＤＮＡ結合を調節することによって（例えば、炎症または過敏症を制御することによって）免疫調節することができる。または生体の細菌性または他の微生物性疾患の進行は、生体または他の微生物遺伝子転写に関与した宿主、生体または他の微生物転写因子のＤＮＡ結合を中断させることによって阻害することができる。１．３先行技術での差異中でも、先行技術に欠けているものは、骨芽細胞特異的転写因子活性を保有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド組成物である。さらに、骨格形成に関与した遺伝子の転写を調節する方法、そして特に骨芽細胞特異的遺伝子の発現に関与したものに欠けている。２．０発明の概要本発明は、最初に、骨芽細胞系列による分化を調節する骨芽細胞特異的転写因子を提供することによって、先行技術によるこれらのそしてその他の制限を克服する。本発明は、骨格形成で関連した遺伝子の転写を調節する先の制限を克服する方法を提供する。第１の実施形態では、本発明は、ここに開示されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドである、同定された第１の骨芽細胞特異的転写因子をコードするＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子を含む新規ポリヌクレオチド組成物を提供する。さらに、骨形成に関与するものを含めた特定の遺伝子の調節および発現に、この遺伝子およびその調節配列（そのプロモーターおよびエンハンサー要素を含めた）を使用する方法も提供される。本発明は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１と反応性のある抗体、様々の関連の免疫学的方法、組成物およびデバイスをも提供する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ由来の核酸配列の制御下で位置決めされた異種遺伝子の調節で、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド組成物を使用する本発明の方法も提供する。例示の実施形態では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞の分化について必要とされる間葉細胞中での遺伝子の発現を調節することが示され、そしてＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドは、骨芽細胞特異的転写因子活性を保有することが示された。第２の実施形態では、本発明は、遺伝子、そして特に骨芽細胞特異的遺伝子を特異的に転写する方法を提供する。その方法は、一般に、細胞に、目的の遺伝子を特異的に転写するのに有効な多量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物を提供することに関与する。このような遺伝子は、相同なまたは異種の遺伝子であってよく、そして哺乳類源を含む、様々の源から誘導される遺伝子を含むことができる。例示の実施形態では、本発明は、限定されないが、オステオカルシン、α１および α２、Ｉ型コラーゲン、オステオポンチン、および骨のシアロタンパク質のようなポリペプチドを含めた開示された転写因子活性ポリペプチドによって制御しうる様々の骨芽細胞特異的遺伝子の発生を示した。例示の実施形態では、発明者らは、限定されないが、Ｒｏｓ２５、Ｃ３Ｈ１０Ｔ４２、Ｃ２Ｃ１２、ＮＩＨ３Ｔ３、Ｆ９、ＭＣ３Ｔ３Ｅ１、一次繊維芽細胞、筋芽細胞、顆粒細胞、脂肪細胞および骨髄基質細胞を含めた本発明の方法に適切なセルラインおよび細胞型を同定した。第３の実施形態では、本発明は、細胞内の骨芽細胞特異的遺伝子の発現を促進する方法を提供する。これらの方法は、一般に、細胞に、その細胞中の骨芽細胞特異的遺伝子の発現を促進するのに有効な多量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物を供給することに関連する。本発明の第４の実施形態は、細胞中の選択遺伝子の発現を促進する方法に関する。その方法は、一般に、細胞に、ＯＳＥ２要素の転写制御下で位置決めされる１つまたはそれ以上の目的の遺伝子を含む発現システムを供給すること、およびさらに、細胞に遺伝子の発現を促進するのに有効な多量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物に供給することに関与する。本発明の第５の実施形態は、少なくとも１種のＯＳＥ２要素を含む核酸セグメントを検出する方法に関する。この方法は、一般に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物（群）を、ＯＳＥ２要素に結合すること、そしてそのように結合した複合体を検出することを可能にするのに有効な条件下、そして時間で、少なくとも１種のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物を有する１種またはそれ以上のＯＳＥ２要素を含むことが予測される核酸セグメントの集団と接触することに関する。本発明の第６の実施形態は、ＯＳＥ２要素を同定する方法に関する。この方法は、一般に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物をＯＳＥ２組成に結合させ、そして結合複合体を検出するのに有効な条件下でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物を有するＯＳＥ２要素を含むことが予測されるサンプルを接触させることに関与する。本発明は、骨芽細胞の分化を誘導する方法をも提供する。この方法は、骨芽細胞の祖先細胞に、祖先細胞の分化を誘導するのに有効な多量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物を供給することを含む。例示細胞としては、細胞としては、Ｒｏｓ２５、Ｃ３Ｈ１０Ｔ４２、Ｃ２Ｃ１２、ＮＩＨ３Ｔ３、Ｆ９、ＭＣ３Ｔ３Ｅ１、一次繊維芽細胞、筋芽細胞、顆粒細胞、脂肪細胞および骨髄基質細胞が挙げられる。また別の実施形態では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドに、そして特に哺乳類のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドに免疫学的に結合する抗体を産生させる方法が提供される。この方法は、一般に、動物に、免疫学的に有効な量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド組成物を投与することを包含する。このような方法の１つで、動物へのアジュバントの同時投与は、動物での免疫応答、および特定のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１誘導ポリペプチド、ペプチドまたはエピトープに特異的な抗体の形成を産生させるときに特に有用であると予測される。本発明は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたはポリヌクレオチドの活性を調節、改変または調整する化合物を同定する方法も提供する。この方法は、一般に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドを、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの活性を調整する能力が測定されると思われる少なくとも１つの化合物またはシグナルに発現する細胞を露出させること、そしてその後それによりＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１活性の調整の結果である変化についてその細胞を観察することを特徴とする。そのようなアッセイは、特に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の作動剤、拮抗剤および／またはアロステリックモジュレーターの同定に有用であることが予測される。例えば、組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−産生細胞は、１つまたはそれ以上の試験化合物と接触させることができ、そしてその後それの調整効果は、試験化合物の存在および不在下でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１指向性応答を比較すること、または試験細胞または対照細胞（すなわち、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を発現しない細胞）のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１指向性応答を化合物の存在に関連づけることによって評価することができる。ここで使用される場合、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性を調整する化合物またはシグナルは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性が、化合物またはシグナル（上記化合物またはシグナルの不在に比較したとき）の存在下で異なるような方法でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性を改変する化合物と称される。本発明の別の態様は、ポリヌクレオチドとのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの結合を阻害または減少させる化合物（例えば、合成ペプチド、ペプチド類似体、ペプチド模倣体、小型分子インヒビター等）をスクリーニングする方法を提供する。プロモーター特異的転写因子であるので、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、例えばＤＮＡに結合する因子の能力に影響を及ぼす化学的完全性の手段によって、治療的介在のための重要な標的である。したがって、発明者らは、このような化学的完全性についてスクリーニングすることは、例えば細胞基材のアッセイの手段、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１機能についてのｉｎｖｉｔｒｏアッセイおよび／または合理的薬の設計によって行うことができることを予測する。スクリーンについての細胞基材アッセイは、例えば、レポータータンパク質すなわち容易に分析可能なタンパク質の発現が、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１に依るセルラインを構築することによって設計することができる。このようなアッセイは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を直接的に拮抗する化合物、またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性について必要とされる他の細胞機能を阻害する化合物の検出を可能にする。さらに別の実施形態では、本発明は、単離Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーター要素を提供する。好ましくは、プロモーター要素は、配列番号７２から由来する少なくとも１７の核酸の近接の核酸を含む。このような場合、本発明の実施で有用であることが予測されるプロモーター要素としては、配列番号７２から得られる少なくとも１８、少なくとも１９、少なくとも２０、少なくとも２１、少なくとも２２、少なくとも２３、少なくとも２４、少なくとも２５、そして少なくとも２６の近接核酸を含む要素のものが挙げられる。さらに、配列番号７２から得られる少なくとも２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、または４０またはそれ以上の近接ヌクレオチドを含む配列要素も、本発明の実施に有用であり、そして１つまたはそれ以上のこれらのプロモーター要素配列に操作可能に連結した遺伝子の発現を促進する上で有用であると予測される。このプロモーター要素は、遺伝子の細胞特異的発現を制御するのに関与しうるエンハンサー、インデューサーおよび／またはサイレンサー要素を含む可能性がある。例示の実施形態では、操作可能に連結した遺伝子は、発現かこのような遺伝子からポリペプチド産物を産生することが望まれるあらゆる遺伝子でありうる。その遺伝子は、元来のものまたは突然変異した遺伝子であってよく、そして相同または異種であるかいずれかであってよい。特定の実施形態では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターから得られる異種遺伝子配列の発現は、それ自身のプロモーターの制御下で遺伝子の発現が、有効でないが、または不可能であるかいずれかである細胞で有用であることが予測される。例示の実施形態では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーター要素は、配列番号７２から得られる少なくとも約１７またはそれ以上のヌクレオチドの近接核酸配列と約６０％から約６５％まで、約７０％まで、約７５％まで、約８０％まで、約８５％まで、約９０％まで、約９５％まで、そして約９６％、約９７％、約９８％、約９９％またはそれ以上を含めたそれまでの配列同一性を示す核酸配列を包含しうる。もちろん、配列番号７２から得られる近接核酸配列に対する同一性率は、付与される同定の含有率に限定る必要はないが、しかし、配列番号７２から得られる少なくとも約１７またはそれ以上のヌクレオチドの接近核酸配列と約８６％、８７％、８８％、および８９％の同一性率、または約９１％９２％または９３％または９４％等を示す同一性のような、約６０％から約９９％同一性との間の全ての整数を含むことも意図される。実際、特定の配列が、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーター要素を含むＤＮＡ配列に操作可能に連結された核酸セグメントの転写を促進する能力を保持する限り、全てのそのような配列は、本発明の範囲内に入ることが予測される。発明者らは、このようなＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターポリヌクレオチドによって転写的に制御されるべきか（または促進されるべき）特定の核酸セグメントは、相同な遺伝子、異種遺伝子、リボザイム、タンパク質核酸およびアンチセンス構築物から構成される群から選択される１つまたはそれ以上のポリヌクレオチドを包含できることを予測する。本発明の別の実施形態は、配列番号１または配列番号７２から得られる少なくとも約１７またはそれ以上のヌクレオチドの近接ヌクレオチド配列に相同性であるアンチセンス核酸セグメントである。消極的に望まれるか、または特定の細胞中の特定の遺伝子または核酸セグメントの発現を「下方調節する」場合、発明者らは、このようなアンチセンス構築物の作成が、細胞中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性を改変するのに有用であることを予測する。代わりに、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーター配列（配列番号７２）から得られる近接のヌクレオチド配列に相同なアンチセンス構築物である場合は、このような構築物は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターの下流に置かれ、そして操作可能に連結されたいずれかの異種遺伝子の活性を調節するのに使用することもできる。アンチセンス構築物は、当業界で十分に既知であり、そしてそれらの最も簡潔な語句で、転写または翻訳を減少させるか、または小さくするか、さもなければコードしたポリペプチドのネット生成に損傷を加えるアンチセンスｍＲＮＡの使用に関連する。このようなアンチセンス構築物の作成および使用は、以下に詳細に記述される。本発明の別の実施形態は、配列番号７２から選択される近接ヌクレオチド配列を含むプロモーターを利用するリボザイムの作成に関する。リボザイム配列に操作可能に連結される異種のプロモーターを用いてリボザイムを作成する手段は、当業界で十分に知られてもおり、そして以下に詳細に記述される。本発明の重要な態様では、１つまたはそれ以上の異種遺伝子に操作可能に廉潔されるか、またはそれに関して操作可能に位置決めされた１つまたはそれ以上のＯｓｆ２プロモーターを含むＤＮＡ構築物が提供される。有用であると予測される例示の異種遺伝子としては、限定されないが、ＧＦＰ、ＧＵＳ、ｌａｃ、ｌｕｘ、β−ラクタマーゼ、ｘｙｌＥ、α−アミラーゼ、チロシナーゼ遺伝子、およびエオクリンのようなレポーター遺伝子；Ｒｂ、ｐ５３、細胞サイクル依存性キナーゼ、ＣＤＫキナーゼまたはサイクリン遺伝子のような細胞サイクル制御遺伝子が挙げられる。本発明の別の態様は、細胞中の異種核酸セグメントを発現する方法を提供する。その方法は、一般に、少なくとも１つのＯｓｆ２プロモーターに操作可能に連結した異種核酸セグメントを含むベクターで上記細胞を形質転換すること、およびプロモーターから異種核酸セグメントを発現するのに効果的な条件下で細胞を培養することに関与する。好ましくは、Ｏｓｆ２プロモーターは、プロモーターに操作可能に連結される異種ポリヌクレオチドの転写を促進する能力を保持する配列番号７２から得られる少なくとも約１７の近接ヌクレオチドの実質的に近接の核酸配列を含む。最も好ましいのは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターの転写活性を保持し、そしてこのような異種遺伝子の発現を促進する能力のある配列番号７２の最も小さな近接の領域である。好ましくは、細胞は、ヒト、サル、ハムスター、ヤギ、ネコ、イヌ、ブタ、ウマ、ルピナス、またはマウスから得られるもののような動物細胞である。もちろん、特定の実施形態では、特に組換えベクターおよび同等物の作成で、Ｅ．ｃｏｌｉまたはＳ．ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ細胞を含めたサルモネラのような細菌細胞、または酵母に使用するための本発明の構築物を作成することが望みうる。別の実施形態では、本発明は、細胞の特徴を変える方法を提供する。特徴としては、限定されないが、分化状態、形質転換状態、色、蛍光、抗生物質耐性、代謝活性またはＲＮＡ発現プロフィルが挙げられる。例示の実施形態では、本発明は、配列番号７２由来のＯｓｆ２プロモーター配列、またはそのセグメントの発現を制御するような配向性で異種の核酸セグメントに操作可能に連結されたＯｓｆ２プロモーターの転写活性を保持する実質的に等価な配列を含む組換えベクターに関する。組換えベクターは、プラスミド、コスミド、ＹＡＣ、ＢＡＣ、または生体のベクターでありうる。生体のベクターとしては、限定されないが、バクテリオファージベクター、ラウスの肉腫ウイルスベクター、ｐ２１ウイルスベクター、アデノ関連ウイルスベクター、およびアデノイウルスベクターが挙げられる。アデノウイルスベクターは、複製コンビーテントの欠如した複製でありうる。特定の実施形態では、組換えベクターは、医療的に許容しうる溶液に分散されうる。２．１細胞分化に関与した組成物を同定する方法本発明のポリヌクレオチドおよびタンパク質は、骨芽細胞、顆粒細胞および繊維芽細胞経路での細胞分化を制御する分子を同定するのに使用しうる。これは、細胞培養研究で、そしてトランスジェニックマウスでの転位症の発現(すなわち、正常に発現されない場合の遺伝子の発現)によって達成することができる。さらに、その遺伝子は、Ｏｓｆ２と相互作用するか、またはＯｓｆ２発現または機能を調節するタンパク質についてスクリーニング（酵母の２つのハイブリッドシステム、タンパク質−タンパク質相互作用を用いて、または免疫アッセイによって）するのに使用することもできる。本発明の核酸組成物は、ＤＮＡトランスフェクション研究によって骨芽細胞系列の細胞で、そしてトランスジェニックマウス系列の世代でのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現を制御する調節配列を同定するのにも使用できる。新規タンパク質に対して産生される抗体は、タンパク質が、骨芽細胞中で発現される他の遺伝子に結合するかどうかを決定するＤＮＡ結合アッセイを行うのに使用することができる。２．２ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１核酸組成物本発明は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする核酸配列を提供する。ここで使用される場合、「Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子」は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする核酸配列を意味する。好ましいＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子としては、哺乳類Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子、そして特にヒト由来のものが挙げられる。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子をコードする好ましい核酸配列は、配列番号１のヌクレオチド配列、または実質的に同一な変異体、融合タンパク質、またはその抗原的に活性なペプチドフラグメントである。さらに、提供されるのは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの選択的に分断された変異体をコードする核酸配列(配列番号７０)、およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターを含む核酸配列（配列番号７２）である。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする遺伝子は、種から種まで、そして１つの種の範囲内で株から株でさえ、またはセルラインからセルラインまでの核酸配列で変化することが予測されるが、しかし核酸配列中の変異が、温和から厳密なハイブリッド形成条件下での種々の種、セルライン、および株のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする配列の間のハイブリッド形成を阻まないことが予測される。様々の株由来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする遺伝子が、核酸配列で変化する可能性があるが、しかしその変異は、温和から緊縮のハイブリッド形成条件下で種々の種、セルラインおよび株由来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする配列の間のハイブリッド形成を拒まないことも予測される。ここに使用される場合、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの変異体は、温和から緊縮なハイブリッド形成条件下で配列番号１または配列番号７０の核酸配列にハイブリッド形成し、ＳａＯＳと称されるヒトの骨芽細胞セルラインから、そして他のヒト骨肉腫セルラインから単離されたＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする核酸配列によって、全体で、または部分的にコードされたあらゆるポリペプチドを意味する。当業者は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの変異体が、配列番号１または配列番号７０で開示される１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列を用いて増幅されうる核酸配列によってコードされるタンパク質のものを含むことを理解する。関連の実施形態では、本発明は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドおよびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする核酸セグメントの株変異体、特に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードするＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子をも含む。ここで請求されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドのアミノ酸配列は、配列番号２（生来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１）および配列番号７１（Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の分断変異体）に開示される。本発明の態様は、ここで記述される診断方法およびキットを用いたこのようなタンパク質およびペプチド変異体の同定に関する。特に、ウエスタンブロットまたは関連の分析での核酸ハイブリッド形成プローブとしてＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子配列および／または抗−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１抗体を利用する方法は、このような変異体を同定するのに有用である。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの強力な変異体の同一性は、セクション５に記述されるとおり転写アッセイによって確認することもできる。ここに使用される場合、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドは、骨芽分化を調整する能力を有する哺乳類種から由来する単離タンパク質（またはエピトープ、変異体またはその活性フラグメント）を意味する。好ましくは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドは、配列番号１または配列番号７０の配列を有する核酸配列、または配列番号１または配列番号７０の配列にハイブリッド形成する配列によってコードされる。選択的に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドは、配列番号２または配列番号７１由来の近接のアミノ酸配列を含むか、またはそのタンパク質が、配列番号２または配列番号７１の全アミノ酸配列を含むポリペプチドとして定義することができる。本発明では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド組成物は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドに対して産生される抗体と免疫学的に反応性のある１つまたはそれ以上のポリペプチド、特に配列番号１または配列番号７０で開示されるアミノ酸を有するタンパク質、または配列番号１または配列番号７０に開示されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列によってコードされるタンパク質を含むと、あるいは活性フラグメントと、またはその変異体とも理解される。同様に、本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド組成物は、配列番号１または配列番号７０に含まれる１つまたはそれ以上の近接Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列によってコードされる１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドと免疫学的に反応性のある抗体を励起する能力のある１つまたはそれ以上のポリペプチドを含むと、あるいは活性フラグメントと、またはその変異体と、または温和から高度の緊縮までの条件下で１つまたはそれ以上のこれらの配列をハイブリッド形成する１つまたはそれ以上の核酸配列と理解される。特に好ましいタンパク質としては、配列番号２または配列番号７１に開示されるアミノ酸配列が挙げられる。ここに使用される場合、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの活性フラグメントとしては、従来の技術、例えば突然変異形成によって、または付加、欠失または置換によって修飾されるが、活性フラグメントが、ここに記述されるとおり生来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドと同じ構造および機能を実質的に示すＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの全体または部分が挙げられる。本発明の他の態様は、１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド、特に哺乳類由来の、そして好ましくはヒト源のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする単離ＤＮＡセグメントおよび組換えベクターに、そして１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子産物を発現するＤＮＡ技術を適用することを通して組換え宿主細胞を作成および使用することに関する。このように、本発明は、配列番号２または配列番号７１由来の近接の配列によって説明されるとおり、基本的にアミノ酸を含めたＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする単離遺伝子を含むＤＮＡセグメントに関する。これらのＤＮＡセグメントは、それぞれ、配列番号１または配列番号７０由来の近接の配列によって説明されるとおり、基本的にＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列を含めたものによって現される。配列番号２または配列番号７１のアミノ酸配列によって説明されるとおり基本的に近接のアミノ酸配列を有する精製Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドを含めた組成物も、本発明に含まれる。新規Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドに関しては、本発明は、実質上あらゆる源から単離することができ、総ゲノムＤＮＡを含まず、そして骨芽細胞特異的転写因子活性を示す１つまたはそれ以上のタンパク質をコードするＤＮＡセグメントに関する。１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１様種をコードするＤＮＡセグメントが、タンパク質、ポリペプチド、サブユニット、機能性ドメイン、抗原性エピトープ、結合ドメイン、および／または同等物をコードすることもできる。ここで使用される場合、語句「ＤＮＡセグメント」は、特定の種の総ゲノムＤＮＡを含まず単離されたＤＮＡ分子に該当する。したがって、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードするＤＮＡセグメントは、さらに、ＤＮＡセグメントが得られる種の総ゲノムＤＮＡから単離、または含まず精製される１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コーディング配列を含むＤＮＡセグメントに該当する。語句「ＤＮＡセグメント」の範囲内で含まれるのは、ＤＮＡセグメントおよびこのようなセグメントの小型フラグメント、およびさらに、例えばプラスミド、コスミド、ファージミド、ファージ、ウイルスおよび同等物を含めた組換えベクターである。同様に、単離または精製Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子を含むＤＮＡセグメントは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コーディング配列、そしてある種の態様では、他の自然に発生する遺伝子から実質的に単離される調節配列、またはタンパク質コーディング配列を含めたＤＮＡセグメントに該当する。好ましくは、配列は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードし、そしてさらに好ましくは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子、特に、ＳａＯＳと称されるものを含めたヒトセルラインから単離されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子のような哺乳類セルラインから単離されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子を含む。これに関して、語句「遺伝子」は、機能性タンパク質、ポリペプチドまたはペプチドコーディングユニットに該当する特異性について使用される。当業者によって十分に理解されるとおり、この機能性の語句は、ゲノム配列、超ゲノムおよびプラスミドコード配列、並びにタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドを発現するか、または発現するのに適合している可能性がある小型遺伝子操作遺伝子セグメントが挙げられる。このようなセグメントは、自然に単離されるか、手動によって合成的に修飾することができる。「他のコーディング配列から実質的に単離された」は、この場合には、目的の遺伝子、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする遺伝子が、ＤＮＡセグメントのコーディング領域の相当の部分を形成すること、そしてＤＮＡセグメントは、大型染色体フラグメントまたは他の機能性遺伝子またはポリペプチドコーディング領域を含めた、大部分の自然に発生するコーディングＤＮＡを含まないことを意味する。もちろん、これは、起源的に単離されたとおりのＤＮＡセグメントに該当し、そして手動でセグメントに後に付加された遺伝子またはコーディング領域を排除しない。特定の実施形態では、本発明は、単離ＤＮＡセグメント、および配列番号２または配列番号７１に規定されるとおり基本的にアミノ酸配列を含むＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド種をコードするＤＮＡ配列、または生物学的に機能性のあるその等価物を組込む組換えベクターに関する。他の特定の実施形態では、配列番号１または配列番号７０によって規定されるとおり基本的に配列を含むＤＮＡ配列を組込む単離ＤＮＡセグメントおよび組換えベクター、またはその株変異体に関する。語句「配列番号１または配列番号７０に基本的に説明されるとおりの配列」は、配列が、配列番号１または配列番号７０に列記される実質的にＤＮＡ配列の一部に対応し、そして配列番号１または配列番号７０の核酸配列に一致しないか、または生物学的機能の等価である比較的少数のヌクレオチドを有することを意味する。このようなヌクレオチド配列は、それらが、開示されたものと同じアミノ酸配列を基本的にコードする場合、ここに開示されるものとして基本的に考えられもするか、またはそれらが、ここに開示されるものに生物学的機能の等価なアミノ酸をコードする。特に、好ましいヌクレオチド配列は、配列番号２または配列番号７１のアミノ酸をコードするものであるか、またはそれの生物学的機能等価物である。同様に、語句「配列番号７０で基本的に説明されるとおりの配列」は、配列が、配列番号７０中に列記されたＤＮＡ配列の部分に実質的に対応すること、そして配列番号の核酸配列に一致しないか、または生物学的に機能性の等価物である比較的少数のヌクレオチドを有することを意味する。このようなヌクレオチド配列は、それらが、開示されるのと同じアミノ酸を基本的にコードする場合、またはそれらが、ここに開示されるとおりのものに等価な生物学的アミノ酸をコードする場合、ここに基本的に、開示されるとおりのものとも考えられる。特に、好ましいヌクレオチド配列は、配列番号７１のアミノ酸配列をコードするものであるか、その生物学的に機能性の等価物である。語句「生物学的に機能性の等価物」は、当業界で十分に理解され、そしてさらに、詳細に規定される(例えば、例示の実施形態参照)。したがって、ここに開示されるアミノ酸と同一であるか、または機能的に等価である、約７０％と約８０％の間、またはさらに好ましくは約８１％と約９０％の間、またはいっそう好ましくは約９１％と約９９％の間のアミノ酸を有する配列は、「配列番号２に基本的に説明されるとおり」または「配列番号７１に基本的に説明されるとおり」である配列である。ある種の他の実施形態では、本発明は、配列番号１に基本的に説明されるとおりのそれらの配列の範囲内に、核酸配列を含む単離ＤＮＡセグメントおよび組換えベクターに関する。語句「配列番号１に基本的に説明されるとおりの」は、上述と同じ意味で使用され、そして核酸配列が、配列番号の一部に実質的に対応し、そして配列番号１のヌクレオチド配列に同一性がないか、または機能的に等価である比較的少数のヌクレオチド残基を有することを意味する。また、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド様活性を示すタンパク質をコードするＤＮＡセグメントは、最も好ましい。アミノ酸および核酸配列が、追加のＮ−またはＣ−末端アミノ酸または５’または３’配列のような別の残基を包含し、そして配列が、タンパク質発現が考えられるところで生物学的タンパク質活性を維持することを含めて、上記説明される条件に適合する限り、依然として、ここに開示される配列の内の１つで基本的に説明されるとおりであることも理解される。末端配列の追加は、特に、例えば、コーディング領域の５’または３’部分のいずれかに挟む種々の非コーディング配列を含む可能性のあるか、または種々の上流または顆粒調節または構造遺伝子を含む可能性のある核酸配列に適用する。それは、制限されるか、または生物学上の活性がないが、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１活性の自然発生の「優性陰性」レギュレーターとして作用する可能性のあるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子の分断変異体をも含む。自然には、本発明は、配列番号１、配列番号７０または配列番号７２に説明される配列に相補的、または基本的に相補的であるＤＮＡセグメントをも包含する。「相補的」である核酸配列は、標準ワトソン−クリック相補性規則による塩基対の能力のあるものである。ここに使用される場合、語句「相補的配列」は、上で説明されるのと同じヌクレオチド比較によって評価することができるとおり、またはここに記述されるもののような比較的緊縮な条件の下で配列番号１、配列番号７０または配列番号７２の核酸セグメントにハイブリッド形成する能力があるものであると定義されるとおり、実質的に相補的である核酸配列である。そのコーディング配列の長さを考慮しないで、本発明の核酸セグメントは、それらの全長が、相当変化しうるように、プロモーター、ポリアデニル化シグナル、追加の制限酵素部位、多重クローニング部位、他のコーディングセグメント、および同等物のようなＤＮＡ配列と組合せることができる。したがって、ほとんどあらゆる長さの核酸フラグメントが、意図される組換えＤＮＡプロトコールでの作成および使用の容易さによって好ましくは制限されるべき全長で使用できることが予測される。例えば、約１４ヌクレオチドのような配列番号１、配列番号７０または配列番号７２に同一であるかまたは相補的である短い近接の伸縮を含み、長さ約１０，０００または約５，０００までの塩基対である核酸フラグメントを、作成することができ、そしてそれと共に約３，０００のセグメントが、特定の場合に好まれる。長さ約２，０００、約１，０００、約５００、約２００、約１００および約５０塩基対（全ての中間長を含めて）の全長を有するＤＮＡセグメントは、有用であるとの予測される。これらの内容で「中間長」は、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０等；２１、２２、２３等；３０、３１、３２等；５０、５１、５２、５３等；１００、１０１、１０２、１０３等；１５０、１５１、１５２、１５３等；のような、２００−５００；５００−１，０００；１，０００−２，０００；２，０００ −３，０００；３，０００−５，０００；５，０００−１０，０００範囲を通しての全ての整数を含め、約１２，００１、１２，００２、１３，００１、１３，００２および同等物の配列まで、そして含めて、定義範囲の間のあらゆる長さを意味することが容易に理解される。本発明が、配列番号１、配列番号７０、または配列番号７２で開示される特定の核酸配列に、または配列番号２または配列番号７１に開示されるアミノ酸配列に限定されないことも理解される。したがって、組換えベクターおよび単離ＤＮＡセグメントは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コーディング領域それら自身、塩基性コーディング領域での選択改変または修飾を担持するコーディング領域を様々に含むことができるか、またはそれらは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドコーディング領域をそれにもかかわらず含む大型ポリペプチドをコードすることができるか、または変異体アミノ酸配列を有する生物学的に機能の等価なポリペプチドをコードすることができる。本発明のＤＮＡセグメントは、生物学的に機能の等価なＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドおよびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１誘導ペプチド、特に哺乳類、そして特にヒトから単離されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドのものを包含する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード化核酸配列に相同である哺乳類種から単離されるＤＮＡセグメントは、特に、ここに開示される方法で使用されることが好まれる。このような配列は、核酸配列およびそこでコードされるタンパク質の範囲内で自然に生じることが知られるコドン縮重および機能的等価性の結果として生じうる。選択的に、機能的に等価なポリペプチドは、タンパク質構造での変化が、操作され、交換されるべきアミノ酸の特性を考慮することに基づいて、組換えＤＮＡ技術の使用を介して作成することができる。ヒトによって設定される変化は、例えば、分子レベルでの活性を試験するためにタンパク質の抗原性に、または試験変異体に改善を導入するために、部位特異的突然変異技術の使用を通して導入することができる。望まれる場合、例えば、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コーディング領域が、精製または免疫検出目的（例えば、それぞれ、アフィニティークロマトグラフィーおよび酵素標識コーディング領域によって精製できるタンパク質）のためのような、所望の機能を有する他のポリペプチドを有する同じ発現単位内に配列される場合、融合タンパク質およびペプチドを作成することもできる。組換えベクターは、本発明の別の態様を形成する。特に、有用なベクターは、全長タンパク質または小型ペプチドをコードするかいずれかであるＤＮＡセグメントのコーディング部分が、プロモーターまたはエンハンサーの制御下で位置づけられるベクターのものであると予測される。例えば、組換えクローニングおよび／またはＰＣＲ^TM技術を用い、ここに開示される組成物と関連して、コーディングセグメントの上流に配置される５’非コーディング配列を単離することによって得ることができる場合、プロモーター（またはエンハンサー）は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド遺伝子（配列番号７２）に自然に関連しているプロモーターまたはエンハンサーの形態である可能性がある。エンハンサーは、組換えクローニングおよび／またはＰＣＲ^TM技術を用い、ここに開示される組成物と関連して、コーディング配列の上流に配置される５’非コーディング配置を単離することによって、コーディング配列の上流に配置される３’非コーディング配置を単離することによって、または１つまたはそれ以上のエンハンサー領域を含む遺伝子内に配置される１つまたはそれ以上のイントロン性配列を単離することによって、得ることができる。他の実施形態では、ある種の利点は、組換え、または異種プロモーターの制御下でコーディングＤＮＡセグメントを位置づけることによって得ることが予測される。ここに使用される場合、組換えまたは異種プロモーターは、自然環境下でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子と正常に関連しないプロモーターに該当することが意図される。このようなプロモーターは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１プロモーターそれら自身、または他の遺伝子に正常に関連したプロモーター、および特に他の転写因子遺伝子、またはあらゆる細菌、生体、真核生物、または哺乳類細胞から単離されるプロモーターを含むことができる。自然には、細胞型、生物で、または発現について選択される動物でさえＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コードＤＮＡセグメントの発現を効果的に向けるプロモーターを使用することが重要である。タンパク質発現についてのプロモーターおよび細胞型組合せを使用することは、一般に、分子生物学の分野で習熟者に既知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９年）を参照する。使用されるプロモーターは、構築的であるか、または誘導的であってよく、そして組換えポリペプチドの大規模生成での利点であるように、導入されるＤＮＡセグメントの高いレベルの発現を指示するのに適切な条件下で使用することができる。本発明の原核生物の核酸セグメントの発現は、当業者に既知の方法を用いて行うことができ、そしてｔａｃ、ａｒｃ、ｔｒｐ、ｌａｃ、ｌａｃＵＶ５またはＴ７である場合のもののように、発現ベクターおよびプロモーター配列を含むようである。組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの発現は、真核生物で望まれる場合、多数の発現系は、当業者に入手可能であり、そして公知である。高いレベルの発現で使用することが予測される例示の真核生物のプロモーターシステムは、ＰｈａｒｍａｃｉａＬＫＢＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから入手可能なピキア（Ｐｉｃｈｉａ）の発現ベクター系である。１つまたはそれ以上の組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドを作成する発現実施形態との関連で、長いＤＮＡセグメントが、最もしばしば使用されることが予測され、したがって、それで、全Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたは１つまたはそれ以上の機能性ドメイン、エピトープ、リガンド結合ドメイン、サブユニット等をコードするＤＮＡセグメントが最も好まれる。しかし、抗−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１抗体を発生するのに使用される可能性があるとき、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドまたはエピトープ性コア領域の発現を指示する短いＤＮＡセグメントを使用することも、本発明の範囲内に入る。長さ約１５から約１００アミノ酸から、またはさらに好ましくは、長さ約１５から約５０アミノ酸からペプチド抗原をコードするＤＮＡセグメントは、特に有用であると予測される。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子およびそれから誘導されたＤＮＡセグメントは、動物中の体細胞発現と関連して、またはトランスジェニック動物の作成に使用することができる。また、このような実施形態では、全長または活性Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの発現を指示する組換えベクターを使用することは、特に予測される。動物中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１移入遺伝子の発現は、特に、抗−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１抗体の生成および骨芽細胞分化の調節または調整に有用であることが予測される。２．３ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１遺伝子セグメントについてのプローブおよびプライマーＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の発現を指示する上でのそれらの使用に加えて、ここで開示される核酸配列は、様々な他の用途をも有する。例えば、それらは、核酸ハイブリッド形成の実施形態でプローブまたはプライマーとして利用性をも有する。このように、配列番号１、配列番号７０、または配列番号７２の１４ヌクレオチド長の近接の配列と同じか、または相補的である配列を有する少なくとも１４のヌクレオチド長の近接の配列から構成される配列領域を含む核酸セグメントが、特に有用性を示す。長い近接の同一性または相補的配列、例えば約２０、３０、４０、５０、１００、２００、５００、１０００（全ての中間長を含めて）および全長までの配列は、特定の実施形態で使用されるものでもある。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード化配列に特異的にハイブリッド形成するこのような核酸プローブの能力は、それらが、付与サンプルでの相補的配列の存在を検出する上で使用されるものにすることを可能にする。しかし、他の遺伝的構築を作成する上で使用するための変異体種のプライマー、またはプライマーの作成について配列情報を使用することを含めた、他の使用法が予見される。配列番号１、配列番号７０、または配列番号７２に同一であるか、または相同な１０−１４、１５−２０、３０、５０、または１００−２００ヌクレオチドまたはそれ以上さえの近接のヌクレオチド収縮から構成される配列領域を有する核酸分子は、特に、例えばサザンおよびノーザンブロッティングで使用するためのハイブリッド形成プローブとして予測される。これは、多様な細胞型で、そして様々の細菌細胞で、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたは調節遺伝子産物を分析させることを可能にする。フラグメントの総寸法、並びに、相補的伸縮の寸法は、特定の核酸セグメントの意図される用途または使用に結局依存する。小型フラグメントは、一般に、近接の相補的領域の長さか、約１４と約１００ヌクレオチドの間のように変化しうる場合、ハイブリッド形成実施形態で使用することが分かったが、大型の近接の相補的伸縮は、検出することを望む長い相補的配列によって、使用することができる。長さ約１４−２５ヌクレオチドのハイブリッド形成プローブを使用することは、安定および選択性の両方である二重鎖分子の形成を可能にする。長さ１４塩基より大きな伸縮を越える近接の相補的配列を有する分子は、ハイブリッドの安定性および選択性を増大させるために、そしてそれにより得られる特異的ハイブリッド分子の品質を改善するためではあるが、一般に、好ましい。一般に、１５から２５の近接のヌクレオチド、または所望の場合それ以上でさえの遺伝子相補的収縮を有する核酸分子を設計することを好むという者がいる。ハイブリッド形成プローブは、ここに開示される配列のうちのいずれかのあらゆる部分から選択することができる。必要とされる全ては、配列番号１、配列番号７０または配列番号７２に説明される配列を、またはプローブまたはプライマーとして利用することを望む約１４−２５ヌクレオチドから全長の配列まで、そしてそれを含む配列のいすれかの連続部分に対する配列を検討することである。プローブおよびプライマー配列の選択は、総配列の末端に向かってからプライマーを使用したい唯一の例の方法によってのような、種々の因子によって制御することができる。配列番号１、配列番号７０または配列番号７２の範囲内から隣接の配列を含めた核酸セグメントを選択および作成する方法は、核酸フラグメントを作成するときに選択的に記述することができる。もちろん、フラグメントは、例えば、機械的剪断によって、または制限酵素消化によって他の技術によって得ることもできる。小型核酸セグメントまたはフラグメントは、自動オリゴヌクレオチド合成装置を用いて一般に行われるとおり、例えば、フラグメントを化学的手段によって直接的に合成することによって容易に作成することができる。さらに、フラグメントは、米国特許第４，６８３，２０２号（資料によってここに組込まれる）のＰＣＲ^TM技術のような核酸再生技術の使用により、選択配列を、組換え産物のための組換えベクターに導入することによって、そして分子生物学の技術の習熟者に一般に知られる他の組換えＤＮＡ技術によって得ることができる。したがって、本発明のヌクレオチド配列は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子または遺伝子フラグメントのいずれかの相補的伸縮を有する二重鎖分子を選択的に形成する能力のために使用することができる。予想される方法によって、標的配列に向かうプローブの選択性の程度を変化させることを達成するために、可変のハイブリッド形成の条件を使用することを望む者がいる。高い選択性を必要とする使用法について、一般に、相対的に緊縮な条件を使用して、ハイブリッドを形成したいという者がいるが、例えば、約５０℃から約７０℃の温度で、約０．０２Ｍから約０．１５Ｍ塩の塩濃度の場合のように、低塩および／または高温条件を選択する。このような選択条件は、あらゆる場合、プローブとテンプレート、または標的株との間のミスマッチにほとんど耐えられず、そして関連Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子を単離するのに特に適している。もちろん、ある種の使用については、例えば、基本的なテンプレートにハイブリッド形成された変異体プライマー株を用いて、変異体を作成したい場合、または関連種、機能的等価性、または同等物から１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード配列を単離することを求める場合、より低い緊縮（減少された緊縮性）ハイブリッド形成条件は、一般に、異種二重鎖の形成をさせるために必要とされる。これらの環境では、約２０℃から約５５℃の範囲にある温度で、約０．１５Ｍから約０．９Ｍ塩のもののような塩条件を使用することを望むこともできる。それにより、交差ハイブリッド形成種は、ハイブリッド形成を制御するのに関して陽性にハイブリッド形成シグナルと容易に同定することができる。あらゆる場合に、増大した温度と同じ手段でハイブリッド二重鎖を不安定化させる役割を果たす、増加量のホルムアミドを添加することによって、条件を、さらに緊縮にさせることができることは一般に評価される。したがって、ハイブリッド形成条件は、容易に操作され、そしてそれにより、一般に、所望の結果による選択の方法である。２．４ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１およびＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１誘導ポリヌクレオチドを比較および宿主細胞発現をするベクターＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸セグメントを発現する組換えクローンは、相当の量で精製ペプチド抗原並びに突然変異体または変異体タンパク質種を作成するのに使用しうる。選択抗原およびその変異体は、骨芽細胞分化を調節、調整、改変、変化、増加、および／または減少させる上で相当な利用性を示すことが提案される。例えば、このような抗原に対するこれらの抗原、またはペプチド変異体、または抗体は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１抗体を検出するために、または骨芽細胞分化を調節するワクチンまたは免疫療法として免疫アッセイに使用することができる。さらに、ＤＮＡ突然変異形成のような技術の使用によって、本発明は、修飾または簡便化タンパク質構造を示すいわゆる「第二世代」分子の十分な作成を可能にする。第二世代タンパク質は、一般に、特定の抗原性／免疫原性エピトープコア配列のような全長の抗原と１つまたはそれ以上の特性を共有する。エピトープ配列は、ペプチドの知識から作成されるか、またはＤＮＡ配列情報をコードする比較的短い分子で提供しうる。このような変異体分子は、タンパク質構造の選択免疫原性／抗原性領域から誘導されるのみならず、さらに、または選択的に、自然の配列に関して類似性または差異さえの基本のものに選択される１つまたはそれ以上の機能的に等価なアミノ酸を含む可能性がある。Ｏｓｆ２プライマーは、本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸セグメントを発現するのに使用することができる。これは、これらのタンパク質の発現に、外来遺伝子と同じ組織特異性および他の活性を示させる。同様に、１つまたはそれ以上の異種遺伝子は、本発明のＯｓｆ２プライマーに操作的に連結させて、外来Ｏｓｆ２遺伝子のものに類似する手段で１つまたはそれ以上の異種遺伝子の発現させることができる。本発明の特定の態様は、組換えペプチドのクローニングおよび発現のためのプラスミドベクター、そして元来の、または部位特異的突然変異Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープのいずれかを組込む特定のペプチドの使用に関する。組換えベクターの世代、宿主細胞の形質転換、および組換えタンパク質の発現は、当業者に既知である。原核細胞宿主は、本発明のペプチド組成物の発現として好ましい。原核細胞宿主のある種の例は、Ｅ．ｃｏｌｉ株ＪＭ１０１、ＸＬＩ−Ｂｌｕｅ^TM 、ＲＲ１、ＬＥ３９２、Ｂ、χ¹⁷⁷⁶(ＡＴＣＣ３１５３７)、およびＷ３１１０（Ｆ^-、λ^-、原栄養性、ＡＴＣＣ２７３３２５）である。サルモネラ・チフィムリウム(Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ)およびセラチア・マルセセンス（Ｓｅｒｒａｔｉａｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ）のようなエンテロバクテリアセア（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ）種、そして種々のシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）種のような他のグラム陰性宿主は、ここに開示される遺伝的構築の組換え発現で利用性を示すことも可能である。選択的に、エス．アウレウス(Ｓ．ａｕｒｅｕｓ)、エス．ピオゲネス(Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ)、エス．デイスガラクチアエ(Ｓ．ｄｙｓｇａｌａｃｔｉａｅ) 、エス．エピデルミディス(Ｓ．ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ)、エス．ズーエピデミカス(Ｓ．ｚｏｏｅｐｉｄｅｍｉｃｕｓ)、エス．キシローザス(Ｓ．ｘｙｌｏｓｕｓ)、およびエス．ホミヌス（Ｓ．ｈｏｍｉｎｕｓ）のようなグラム陽性球菌、およびバシルス・サブチリス(Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓ)、ビー．セレウス(Ｂ．ｃｅｒｅｕｓ)、ビー．スリンジェンシス(Ｂ．ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ)、およびビー．メガテリウム（Ｂ．ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）のようなバシルスは、これらの構築物の発現および元来のまたはそれからの組換えペプチドの単離に使用することもできる。一般に、レプリコンを含むプラスミドベクター、および宿主細胞に適合する種から誘導される対照配列は、これらの宿主に連結して使用される。ベクターは、通常、複製部位、並びに形質転換細胞中の表現型セクションを提供する能力のあるマーキング配列を担持する。例えば、Ｅ．ｃｏｌｉは、一般に、ｐＢＲ３２２のようなベクター、またはその誘導体のいずれかを用いて形質転換することができる(Ｂｏｌｉｖａｒら、１９７７年)。ｐＢＲ３２２は、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性のための遺伝子を含み、したがって形質転換細胞を同定するのに容易な手段を提供する。ｐＢＲ３２２、その誘導体、または他の微生物プラスミドまたはバクテリオファージは、外来タンパク質の発現のための微生物によって使用することができるプロモーターを含むか、または含むように修飾させることもできる。さらに、宿主微生物に適合性のあるレプリコンおよび対照配列を含むファージベクターは、これらの宿主に連結して形質転換ベクターとして使用することができる。例えば、λＧＥＭ^TMのようなバクテリオファージは、Ｅ．ｃｏｌｉＬＥ３９２のような感受性宿主細胞を形質転換させるの使用できる組換えベクターを作成するのに利用できる。組換えＤＮＡ構築で最も一般に使用されるプロモーターのものとしては、β− ラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）およびラクトースプロモーター系（Ｃｈａｎｇら、１９７８年；Ｔｔａｋｕｒａら、１９７７年；Ｇｏｅｄｄｅｌら、１９７９年）またはトリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター系（Ｇｏｅｄｄｅｌら、１９８０年）が挙げられる。組換えおよび元来の微生物プロモーターの使用は、当業者に既知であり、そして詳細は、それらのヌクレオチド配列に関し、そして特定の方法論は、当業者が本発明の組成物を産生する目的のための特定の組換えベクターおよび発現系を構築することを可能にする。好ましい実施形態に加えて、酵母培養のような原核生物、真核生物の微生物での発現は、ここに開示される方法との連結で使用することもできる。多数の他の種が、このような真核生物の発現系に使用することができるが、サッカロミセス・セレビシアエ(Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｓｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ)、または一般のパン製造用酵母は、真核生物の中で最も一般に使用される。サッカロミセスでの発現については、プラスミドＹＲｐ７が、例えば、一般に使用される(Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら、１９７９年；Ｋｉｎｇｓｍａｎら、１９７９年；ＴｓｃｈｕｍｐｅｒおよびＣａｒｂｏｎ、１９８０年)。このプラスミドは、すでに、ＡＴＣＣ４４０７６またはＰＥＰ４−１（Ｊｏｎｅｓ、１９７７年）のようなトリプトファン中で成長する能力を欠く酵母の突然変異体株のための選択マーカーを提供するｔｒｐＬ遺伝子を含む。その後、酵母宿主細胞ゲノムの特徴としてｔｒｐＬ病巣の存在は、トリプトファンの不在下での成長によって形質転換を検出するのに有効な環境を提供する。酵母ベクターでの適切な起動配列は、エノラーゼ、グリセルアルデヒド−３− ホスフェートデヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルベートデカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−ホスフェートイソメラーゼ、３ −ホスホグリセレートムターゼ、ピルベートキナーゼ、トリオセホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼのような３ −ホスホグリセレートキナーゼ（Ｈｉｔｚｅｍａｎら、１９８０年）または他の解糖酵素（Ｈｅｓｓら、１９６８年；Ｈｏｌｌａｎｄら、１９７８年）用のプロモーターを含む。適切な発現プラスミドを構築するときに、これらの遺伝子に関連した終止配列を、ｍＲＮＡおよび終止のポリデニル化を提供するために発現されることが望まれる配列の発現ベクター３Ｎにも連結させる。成長条件によって制御される転写の別の利点を示す他のプロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチトクロムＣ、酸性ホスファターゼ、窒素代謝に関連した分解性酵素、および前述のグリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、およびマルトースおよびガラクトース活用の要因である酵素のためのプロモーター領域である。酵母適合性プロモーターを含む任意のプラスミドベクター、複製の起点、および終止配列が、適切である。微生物に加えて、多細胞生物から誘導される細胞の培養物も、開示の方法の通常の実施で宿主として使用することができる。原理では、任意のこのような細胞培養物は、脊椎動物または無脊椎動物のいずれでも作用しうる。しかし、関心は、脊椎動物の細胞で最大であり、そして培養物（組織培養物）中の脊椎動物細胞の伝播は、近年通常の手段になってきた。このような有用な宿主セルラインの例は、ＶＥＲＯおよびＨｅＬａ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）セルライン、およびＷ１３８、ＢＨＫ、ＣＯＳ−７、２９３およびＭＤＣＫセルラインである。このような細胞用の発現ベクターは、通常には、（必要であれば）複製の起点、任意の必要なリボソーム結合部位、ＲＮＡスプライス部位、ポリアデニル化部位および転写ターミネーター配列を伴った、発現されるべき遺伝子の正面に配置されるプロモーターを含む。哺乳類細胞で使用するために、発現ベクターについての対照機能は、ウイルス材料によってしばしば提供される。例えば、共通に使用されるプロモーターは、ポリオマー、アデノウイルス２および最も頻繁にはシミアンウイルス４０（ＳＶ４０）から誘導される。ＳＶ４０ウイルスの初期および後期プロモーターは、両方とも、複製のＳＶ４０ウイルス起点（Ｆｉｅｒｓら、１９７８年）をも含むフラグメントとしてウイルスから容易に得られるので特に有用である。小型または大型ＳＶ４０フラグメントは、複製のウイルス起点に配置されるＨｉｎｄＩＩ部位からＢｇｌＩ部位に向かって伸長するおよそ２５０ｂｐ配列を含む場合に使用することができる。さらに、そのような対照配列が、宿主細胞系に適合性のある場合、所望の遺伝子配列と正常に関連したプロモーターまたは対照配列を利用することも可能であり、しばしば望みうる。複製の起点は、ＳＶ４０または他のウイルス（例えば、ポリオマー、アデノ、ＶＳＶ、ＢＰＶ）源から誘導されるような外来起源を含むベクターの構築によって提供されるか、または宿主細胞染色体複製機構によって提供することができる。ベクターが、宿主細胞染色体に組込まれる場合、後者がしばしば十分である。本発明の特定の態様は、組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチド、これらのペプチドをコードする核酸セグメント組換えベクターおよびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のＤＮＡセグメントを含む形質転換宿主細胞を利用する新規方法を提供する。当業者で既知のとおり、多くのこのようなベクターおよび宿主細胞は、容易に入手可能であり、哺乳類細胞中の発現に適切なベクターの１つの特定の詳細な実施例は、引用することによりここに組込まれる米国特許第５，１６８，０５０号で開示されるものである。しかし、使用されるコーディングセグメントは、目的のポリペプチド（例えば、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のエピトープ配列）をコードし、そして細胞中で有害な影響を示す任意のコーディングまたは調節配列を含まない限り、高度に精製されたベクターが使用されることは必要とされない。したがって、有用な核酸配列は、コーディング領域の５’または３’部分のいずれかに挟む追加の非コーディング配列のような追加の残基を含みうること、または種々の調節配列を含みうることも理解される。適切なエピトープーコード核酸分子を同定した後、最近当業界で知られる多くのベクターのいずれか１つに挿入することができ、その結果、宿主細胞に組込まれるときに、目的のポリペプチドエピトープの発現および産生を指示する。組換え発現ベクターで、ＤＮＡセグメントのコーディング部分は、プロモーターの制御下で位置決めされる。プロモーターは、ここに開示される組成物と結合して、例えば、組換えクローニングおよび／またはＰＣＲ^TM技術を用いて、コーディングセグメントの上流に配置された５’非コーディング配列を単離することによって得ることができるように、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸セグメントと自然に関連しているプロモーターの形態であってよい。米国特許第４，６８３，１９５号および第４，６８３，２０２号のＰＣＲ^TM技術を用いた核酸の直接増幅は、特に、このような方法論に有用であると予測される。特定の実施形態では、組換えまたは異種プロモーターの制御下でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−コードＤＮＡセグメントを位置決めすることによって特別の利点を得ることが予測される。ここに使用される場合、組換えまたは異種プロモーターは、その自然の環境ではＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子セグメントと正常には関連しないプロモーターに該当することが意図される。このようなプロモーターとしては、他の転写因子コード遺伝子に正常に関連するもの、および／またはあらゆる他の細菌、ウイルス、真核生物または哺乳類細胞から単離されるプロモーターを挙げることができる。自然には、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープコード核酸セグメントを包含するベクターを含む特定の細胞中のＤＮＡセグメントの発現を効果的に指示するプロモーターを使用することが重要である。タンパク質発現を達成する組換えプロモーターの使用は、一般に、分子生物学の分野の技術者に公知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、（１９８９年）を参照する。使用されるプロモーターは、構築的であり、誘導性である可能性があり、そして導入ＤＮＡセグメントの高度で調節された発現を指示する適切な条件下で使用することができる。真核生物の発現については、好ましいプロモーターとしては、ＣＭＶプロモーター、ＲＳＶＬＴＲプロモーター、β−アクチンプロモーター、インスリンプロモーター、ＳＶ４０プロモーター単独のようなもの、またはＳＶ４０プロモーター単独またはＳＶ４０エンハンサーのような１つまたはそれ以上のエンハンサーと組合せたＳＶ４０プロモーターが挙げられる。本発明の核酸セグメントの原核生物の発現は、当業者に既知の方法を用いて行うことができ、そして発現ベクター、およびｔａｃ、ａｒａ、ｔｒｐ、ｌａｃ、ｌａｃＵＶ５またはＴ７プロモーターのようなプロモーター配列を含むようである。２．５治療用組成物本発明の別の態様としては、単離および精製Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチド、これらのエピトープペプチド、このようなペプチド、ポリヌクレオチドのような部位特異的突然変異形成核酸セグメントから誘導されるの合成修飾、および／またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドおよびポリペプチドに特異的な抗体を含む新規組成物が挙げられる。もちろん、１つまたは１つ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸セグメントが、本発明の方法および組成物に使用しうることが理解される。したがって、核酸送出方法は、１つまたはそれ以上の転写因子をコードする１種、２種、３種、またはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸セグメントの投与を伴う。使用されうる最大数の核酸セグメントは、多量の核酸セグメント構築物を同時に作成することに関与する成果、または有害な細胞毒性影響を引出す可能性さえあるような実施上の重要性によってのみ限定される。核酸セグメントの特定の組合せは、２つまたはそれ以上の固有の核酸セグメントであってよいか、またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１をコードする１つの遺伝子由来の核酸セグメントを、別の核酸セグメントおよび／または別のペプチドまたは、細胞骨格タンパク質、コファクター標的タンパク質、シャペロン、またはビタミン、ホルモンまたは成長因子遺伝子のような他の生分子のようなタンパク質と組合せるようなものであってよい。このような組成物は、さらにいっそう、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸セグメントのポリペプチド産物と相互作用する能力のある１つまたはそれ以上の細胞表面レセプターまたは骨特異的標的タンパク質の一部または全部をコードする１つまたはそれ以上の核酸セグメントまたは遺伝子を包含しうる。複数の核酸セグメントを用いて、それらを、１つまたはそれ以上のプロモーターの制御下で単一の遺伝子構築物に組合せてよいか、またはそれらは、同じかまたは異なる型の別々の構築物として作成してもよい。したがって、様々の核酸セグメントおよび遺伝子構築物のほどんど終わりのない組合せを使用することができる。核酸セグメントの特定の組合せは、このような核酸セグメントの翻訳から誘導されるペプチドに対する免疫応答の骨芽細胞分化および／または刺激を阻害する上で相乗作用の効果に達するように、またはさもなければそれらの使用が、その効果を生じるように設計することができる。このような組合せのいずれかまたは全ては、本発明の範囲内に入ることが意図される。実際、多くの相乗作用の効果は、科学的文献で記述され、その結果、通常の当業界の技術者は、核酸セグメントの相乗作用の組合せ、または核酸セグメント−ペプチドの組合せのように同定することが容易にできる。所望の場合、特定のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ユリアのペプチドをコードする核酸セグメントまたは遺伝子は、例えば、タンパク質またはポリペプチドまたは種々の医薬上の活性剤のような別の剤と組合せて投与することができることも理解される。組成物が、全てまたは一部のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドをコードする核酸セグメントを含む限り、結局、さらに含んでも、追加の剤が、標的細胞または宿主組織と接触して顕著な有害な影響を引起こさないことを示してもよい他の成分になにも制限はない。したがって、核酸は、特定の例で必要とされるとおり、種々の他の剤と一緒に送出されうる。経口、非経口、および／または静脈投与および処方で、ここに記述される特定の組成物を用いるための適切な用量および治療計画の開発であるとおり、医薬上許容しうる賦形剤および担体溶液の形成は、当業者に既知である。２．６Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１医薬組成物を製造する方法ここに開示されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１医薬組成物を、製造し、そして特定の用途によって、様々の処方および方法で送出することができる。例えば、経口投与の場合には、開示の組成物は、不活性希釈剤を、または吸収でき食べられる担体を配合してよいか、またはそれらは、硬質−または軟質−殻ゼラチンカプセルに包含されていてよいか、またはそれらは、錠剤に包含されていてよいか、またはそれらは、食事の食品に直接的に組込むこともできる。経口治療投与については、活性化合物は、賦形剤に組込み、そして摂取性錠剤、バッカル錠、トローチ、カプセル、エリキシル剤、懸濁剤、シロップ、ウエファーおよび同等物の形態で使用される。このような組成物および標品は、少なくとも０．１％の活性化合物を含む。もちろん、組成物および標品の含有率は、変化してよく、好都合には、その単位の重量の約２から約６０％の間である。そのような治療上有用な組成物中の活性化合物の量は、適切な１日用量が得られるようのものである。錠剤、トローチ、丸剤、カプセルおよび同等物も、以下のものを含有しうる：バインダー、ガムとして、トラガカン、アカシア、コーンスターチ、またはゼラチン；リン酸ジカルシウムのような賦形剤；コーンスターチ、ジャガイモ澱粉、アルギニン酸および同等物のような崩壊剤；ステアリン酸マグネシウムのような滑剤；およびしょ糖、ラクトースまたはサッカイリンのような甘味剤を添加してもよく、またはペパーミント、ウインターグリーンの油、またはサクランボ風味のような風味剤。用量形態がカプセルである場合、それは、上記型の材料に加えて、液体担体を含んでいてよい。種々の他の材料は、コーディング剤として存在してよいか、または別に用量単位の物理形態を修飾することもできる。例えば、錠剤、丸剤、またはカプセル剤は、セラック、糖または両方で被覆することができる。エリキシル剤のシロップは、活性化合物、甘味剤としてしょ糖、そして保存剤としてメチルおよびプロピルパラベン、サクランボまたはオレンジ風味のような染料および風味剤を含んでよい。もちろん、任意の用量単位形態を製造するのに使用される任意の材料は、使用される量で製薬学上純粋であり、そして実質的に非毒性であるべきである。さらに、活性化合物は、除放性標品および処方に組込むことができる。同様に、経口投与については、本発明の組成物は、賦形剤を組込むことができ、そして非摂取性口腔清浄剤、および歯磨き剤の形態で使用できる。口腔清浄剤は、ホウ酸ナトリウム溶液（ドーベルの溶液）のような適当な溶媒中で必要とされる量で活性成分を組込んで製造することができる。選択的に、活性成分は、ホウ酸ナトリウム、グリセリンおよび重炭酸カリウムを含む防腐洗浄剤に組込むこともできる。ゲル、ペースト、粉末およびスラリーを含め歯磨き剤では分散させるか、または治療的に有効な量で、水、バインダー、研磨剤、風味剤、発泡剤、および湿潤剤を含むペースト状歯磨き剤に添加する。選択的には、特定の実施形態では、非経口に、静脈に、筋内に、または腹膜内にさえのいずれかで、ここに開示されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１医薬組成物を投与することが望ましい。遊離塩基または薬学上許容しうる塩として活性成分の溶液は、ヒドロキシプロプルセルロースのような界面活性剤と適切に混合した水で製造してよい。分散液は、グリセロール、液状ポリエチレングリコールおよびそれらの混合液および油中物で製造してもよい。保存および使用の通常の条件下で、これらの標品は、微生物の成長を防止する保存剤を含む。注射用途に適切な医薬形態としては、滅菌水溶液または分散液および滅菌注射溶液または分散液の即座の標品としての滅菌粉末が挙げられる。全ての場合に、その形態は、滅菌でなければならず、そして容易な注入性が存在する範囲まで流体でなければならない。それは、製造および保存の条件下で安定でなければならず、そして細菌および真菌のような微生物の混入作用に対して保護されていなければならない。担体は、例えば水、エタノール、ポリオール(例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液状プリエチレングリコール、および同等物)、その適切な混合液、および／または植物油を含む溶媒または分散媒体でありうる。適当な流動性は、例えば、レシチンのようなコーティングを使用することによって、分散液の場合には要求される粒子サイズの維持によって、そして界面活性剤の使用によって保持されうる。微生物の作用の防止は、種々の抗細菌および抗真菌剤、例えばパラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、チメロザール、および同等物によって果たすことができる。多くの場合に等張剤、例えば糖または塩化ナトリウムを含むことが好ましい。注射組成物の延長した吸収は、吸収を遅れさせる剤、例えばモノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンの組成物中での使用により果たすことができる。水溶液中の非経口投与については、例えば、溶液は、必要な場合適切に緩衝され、そして液体希釈剤は、最初に、十分な生理食塩水またはグルコースで等張にさせた。これらの特定の水溶液は、静脈、筋内、皮下および腹膜内投与に特に適切である。この関連で、使用できる滅菌水性媒体は、本発明の開示の点で当業者に知られる。例えば、１回の用量は、１ｍｌの等張なＮａＣｌ溶液中に溶解させ、そして１０００ｍｌの大量皮下注射液に添加するか、または注入の約束の部位で注射する(例えば、「レミントンの薬科学」、１５版、１０３５−１０３８頁および１５７０−１５８０頁参照)。用量中のある種の変法は、治療されるべき対照の症状によって必然的に起こる。投与に責任のある人は、任意の事象で、個々の対象についての適切な用量を決定する。さらに、ヒトの投与については、標品は、生物学的標準のＦＤＡ事務局によって要求されるとおり、滅菌性、発熱性、全般的安全性および純粋性の基準に適合すべきである。滅菌注射溶液は、上で列挙される様々の他の成分と共に適切な溶媒中の必要量で活性化合物を組込むこと、必要であれば、続いて濾過滅菌を行うことによって製造される。一般に、種々の滅菌活性成分を、塩基性分散媒体および、上に列記されるものから必要とされる他の成分を含む滅菌伝播体に組込むことによって分散液を製造する。滅菌性注射溶液の製造のための滅菌粉末の場合には、製造の好ましい方法は、活性成分と先に滅菌濾過したその溶液から得た追加の所望の成分との粉末を生じる真空乾燥および凍結乾燥技術である。ここに開示される組成物は、中性または塩の形態で配合してよい。医薬上許容しうる塩は、酸性付加塩（タンパク質の遊離アミノ基で形成された）を含み、そしてそれは、例えば、塩酸またはリン酸のような無機酸、または酢酸、シュウ酸、酒石酸、マンデル酸および同等物のような有機酸と形成される。遊離カルボキシル基と形成される塩は、例えば、水酸化ナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウムまたは第二鉄のような無機塩基、およびイソプロピルアミン、トリメチルアミン、ヒスチジン、プロカインおよび同等物のような有機塩基から誘導することもできる。処方で、溶液は、用量処方に適合性のある手段で、治療上効果的なそのような量で投与される。処方は、注射溶液、薬徐放性カプセルおよび同等物のような種々の用量形態で容易に投与される。ここで使用される場合、「担体」としては、任意のそして全ての溶媒、分散媒体、伝播体、コーティング、希釈剤、抗細菌および抗真菌剤等張および吸収遅延剤、緩衝液、担体溶液、懸濁液、コロイドおよび同等物が挙げられる。医薬上活性な物質のためのこのような媒体および剤の使用は、当業界で既知である。従来の媒体または剤が、活性成分と不適合である範囲外では、治療組成物中でのその使用が予測される。追加の活性成分も、組成物に組込むことができる。語句「医薬上許容しうる」は、ヒトに投与した場合、アレルギー性または類似の都合の悪い反応を生じない分子実体および組成物に該当する。活性成分としてタンパク質を含有する水性組成物の製造は、当業界でよく理解されている。一般に、このような組成物は、注射可能に、水溶液または懸濁液のいずれかとして製造される。注射前に液中の溶液または懸濁液に適切な固形形態も、製造することができる。製品は、乳液化させることもできる。２．７治療用、診断用および免疫学のキット本発明は、医薬上許容しうる賦形剤、担体、希釈剤、アジュバント、および、追加のペプチド、抗原、細胞膜標品のような他の成分、または特定のワクチンの処方で使用できるとおりの弱毒化全細胞組成物と共に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチド抗原組成物をも包含する。ここに記述されるペプチド抗原を用いて、本発明は、免疫応答を生じさせる方法も提供し、その方法は、一般に、動物に、免疫学上有効な量のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチド組成物を含む医薬上許容しうる組成物を投与することを特徴とする。好ましい動物としては、哺乳類、そして特にヒトが挙げられる。他の好ましい動物としては、ネズミ、ウシ、ウマ、ブタ、イヌ、およびネコが挙げられる。組成物は、自然または組換え体源から得られる、部分的にまたは相当に精製されたＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドエピトープを含んでよく、そのポリペプチドは、自然に得ることができるか、このようなエピトープをコードするＤＮＡセグメントを発現する組換え宿主細胞からｉｎｖｉｔｒｏで、化学的、合成、または選択的のいずれかで製造できる。長さ約３０と約１００アミノ酸の間のもののような反応性エピトープを含む類似のペプチドが、しばしば好ましい。抗原性ポリペプチドは、所望の場合、他のペプチドまたは核酸組成物のような他の剤と組合せることもできる。「免疫学的に有効な量」によって、受容動物での免疫応答を発生する能力のあるペプチド組成物の量が意味される。これは、抗体応答（Ｂ細胞応答）の発生、および／または細胞毒性免疫応答（Ｔ細胞応答）の刺激の両方を含む。このような免疫応答の発生は、診断の実施形態で使用するためには、有用な生物試薬、例えばＣＴＬの発生、およびさらに特に、反応性抗体の発生の両方で利用能を示し、そして種々の治療的実施形態で利用能をも示す。動物中で免疫応答を発生するための本発明で予測される別の手段は、動物、またはヒト対象に、ペプチドエピトープをコードする免疫学的に有効な量の核酸組成物、またはこのような核酸組成物を含み、そして発現する免疫学的に有効な量の弱毒化生体生物を含む医薬上許容しうる組成物を投与することを含む。「免疫学的に有効な量」は、Ｂ細胞および／またはＴ細胞応答を刺激する能力のある量のものである。本発明の免疫処方は、ワクチン化、治療について、またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１および関連のタンパク質に特異的な抗体の発生について意図されるかどうかである。これらのタンパク質およびペプチドの抗原性機能等価物も、本発明の範囲内に入る。「抗原的に機能等価物」ポリペプチドは、開示されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドから誘導される１つまたはそれ以上のエピトープと免疫学的に交差反応性であるエピトープを組込むものである。抗原的に機能性等価物またはエピトープ配列を、最初に設計するか、または推定し、その後試験できるか、または交差反応性について簡便に直接試験できる。免疫系統立て、ワクチンに使用するのに適切な、または単に抗原として、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープの同定または設計、および／またはそれらの機能性等価物は、比較的簡単なものである。例えば、親水性の基礎に基づいてアミノ酸配列からエピトープを同定および製造する上でＨｏｐｐの方法（米国特許第４，５５４，１０１号で開示されるとおり、それは引用することによりここに特に取込まれる）を使用するものかいる。いくつかの他の文献で記述されるこれらの方法、およびそれに基づくソフトウエアープログラムは、エピトープコア配列を同定するのに使用することもできる。例えば、ＣｈｏｕおよびＦａｓｍａｎ(１９７４年ａ、ｂ；１９７８年ａ、ｂ；１９７９年)；ＪａｍｅｓｏｎおよびＷｏｌｆ(１９８８年)；Ｗｏｌｆら、(１９８８年)；およびＫｙｔｅおよびＤｏｏｌｉｔｔｌｅ（１９８２年）は全て、この対象をいくつかの科学的刊行物で述べる。その後、これらの「エピトープコア配列」のアミノ酸配列は、ペプチド合成または組換え技術の使用のいずれかを通して、ペプチドに容易に組込むことができる。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の修飾エピトープを組込む短い抗原性ペプチド、例えば長さ約２５から約５０まで、または約１５から約２５までのアミノ酸さえを使用することは、特定の環境で、例えばワクチンの製造で、または免疫学的検出アッセイで利点を提供することが提案される。例示の利点としては、製造および精製の容易さ、製品の比較的低コストおよび改善された再生性、および有利な生物分布が挙げられる。さらに別の実施形態では、本発明は、免疫検出法および関連キットに関する。本発明のポリペプチドを、それとともに反応性を有する抗体を検出するのに使用できるか、または代替的には本発明によって製造される抗体は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドを検出するのに使用することができることが予測される。キットのいずれかの型は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１組成物の免疫検出で使用することができる。キットは、適切には、抗原または抗体精製で使用することもできる。一般に、好ましい免疫検出方法は、最初に、患者から得た生物学的サンプルのような、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的抗体を含むことが予測されるサンプルを得ること、そして免疫複合体（一次免疫複合体）の形成をさせるのに効果的な条件下でそのサンプルを最初のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドと接触させることを含む。その後、形成される任意の一次免疫複合体の存在を検出する。免疫複合体（一次免疫複合体）の形成をさせるのに効果的な条件下で、選択サンプルを、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のポリペプチドと接触させることは、一般に、ポリペプチド組成物をサンプルに簡便に添加することである。その後、添加抗原に、サンプル内に存在する任意の抗体と、すなわち結合させる免疫複合体を形成させるのに十分な時間、混合液を培養する。この時点の後、組織区分、ＥＬＩＳＡプレート、ドットブロットまたはウエスタンブロットのようなサンプル組成物は、一般に、洗浄して、あらゆる非特異的結合抗原種を除去し、それによってそれらに検出されるべき免疫複合体内の種に特異的に結合させる。免疫複合体形成の検出は、当業界で既知であり、そして習熟者に公知で、そして例えば、引用することによりここに組込まれるＮａｋａｍｕｒａら（１９８７年）のような種々の刊行物で記述される膨大なアプローチの使用を通して達成されうる。一次免疫複合体の検出は、一般に、適切であるアルカリ性ホスファターゼ、ウレアーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼおよびグルコースオキシダーゼのような酵素タグと共に、放射活性、蛍光、生物学的または酵素的標識のような標識またはマーカーの検出に基づいている。使用される特定の抗原は、それ自身、その後、この標識を簡便に検出する、検出可能な標識に結合され、それにより、組成物中に存在する結合抗原の量を測定させうる。選択的に、一次免疫複合体は、検出可能な標識に結合され、そして第一のポリペプチドと結合親和性を示す第二の結合リガンドの手段によって検出することができる。第二の結合リガンドは、それ自身、しばしば、それにより「第二の抗体」と称しうる抗体である。一次免疫複合体は、二次免疫複合体の形成をさせるのに効果的な条件下、そして十分な時間、標識された二次結合リガンドまたは抗体と接触される。その後、二次免疫複合体を、一般に、洗浄して、あらゆる非特異的結合標識二次抗体を除去し、そしてその後、残りの結合を検出する。診断目的として、結局、目的の抗体のいずれかを含有することが予測されるあらゆるサンプルを使用することができることが提案される。例示のサンプルとしては、血液または血清サンプル、気管支肺胞体液、耳の綿棒、痰サンプル、中耳液のような、患者から得られる医療サンプルが挙げられ、またはおそらく尿サンプルさえ使用できる。これは、骨髄炎、中耳炎、肺炎、菌血症および分娩後の敗血症の診断を可能にする。さらに、このような実施形態は、ハイブリドーマおよび同等物の選択で、抗体サンプルを滴定するときのように非医療サンプルに用途を示す可能性があることが予測される。選択的に、医療サンプルは、獣医学源由来であってよく、そしてウマ、ヒツジ、およびヤギのような家畜を含んでもよい。ネコ、イヌ、およびウマ源から得たサンプルは、ここに記述された方法にしたがって使用することもできる。関連実施形態では、本発明は、サンプル中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のエピトープ特異的抗体の存在を検出するのに使用できるキットの製造を意図する。一般的に言って、本発明によるキットは、免疫検出試薬と一緒に適切なポリペプチド、およびそのポリペプチドおよび試薬を含む手段を包含する。免疫検出試薬は、一般に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドと関連した、または第二の結合リガンドと関連した標識を含む。例示のリガンドは、第一のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたは抗体に対して検出される二次抗体、または関連標識を有するビオチンまたはアビジン（またはストレプトアビジン）リガンドを含みえた。ヒト抗体についての結合親和性を示す抗体に結合した検出可能な標識は、例えば、第一の試薬が、ヒトサンプルから得られる反応性抗体に結合するのに使用されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドであるプロトコール用として予測される。もちろん、上で特記されるとおり、多くの例示の標識は、当業界で知られており、そしてそのような標識の全ては、本発明に関連して使用できる。キットは、十分に接合された形態で、中間の形態で、またはキットの使用者によって接合されるべき分離部分としてのいずれかで、抗原および抗体標識接合体を含みうる。容器手段は、一般に、少なくとも１つのバイアル、試験管、フラスコ、ボトル、シリンジまたは抗原を載せることができ、そして好ましくは適切に分配させる他の容器手段を含む。第二の結合リガンドが供給される場合、キットは、一般に第二のバイアルまたはこのリガンドまたは抗体を載せることができる他の容器をも含む。本発明のキットは、一般に、例えば、所望のバイアルがそれに保持される注射または射出成形プラスチック容器のような、市販の閉鎖拘束でバイアルを含む手段をも包含する。２．８ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１抗体組成物別の態様では、本発明は、本発明のポリペプチドと免疫反応性のある抗体を意図する。上に主張されるとおり、本発明によるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドについての使用の内の１つは、抗体を発生することである。本明細書を通しての抗体に対する言及は、全ポリクローナルおよびモノクローナル抗体、そして単独に、または他の部分と接合してその部分を含む。抗体部分は、ＦａｂおよびＦ（ａｂ）₂ フラグメントおよび一本鎖抗体を含む。抗体は、適切な実験動物でｉｎｖｉｖｏで、または組換えＤＮＡ技術を用いてｉｎｖｉｔｒｏで作成できる。抗体は、ポリクローナルまたはモノクローナル抗体でありうる。好ましい実施形態では、抗体は、ポリクローナル抗体である。抗体を製造および特徴づけする手段は、当業界で既知である(例えば、ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、１９８８年参照) 。簡便には、ポリクローナル抗体は、動物を、本発明のポリペプチドを含む免疫原で免疫化し、そして抗血清をその免疫化動物から収集することによって製造される。広範な動物種が、抗血清を産生するのに使用できる。一般に、抗−抗血清の産生に使用される動物は、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、またはモルモットである。ウサギの比較的多量の血液のため、ウサギは、ポリクローナル抗体を産生させるのに好ましい選択である。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドおよび／またはエピトープに特異的なポリクローナルおよびモノクローナルの両方の抗体は、一般に当業者に知れれるとおり、従来の免疫技術を用いて製造できる。抗原性Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープを含む組成物は、ウサギまたはマウスのような、１つまたはそれ以上の実験動物を免疫するのに使用でき、そしてそれは、その後、進行させて、エピトープ含有Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドに対する特異的抗体を産生させる。ポリクローナル抗血清を得て、その後単に、動物を飼育し、そして血清サンプルを全血から作成することによって、抗体産生のための時間を可能にする。ポリクローナル抗体の産生に使用される免疫原組成物の量は、免疫化に使用される動物と同様に、免疫原の特性によって変化する。様々の経路は、免疫原（皮下、筋内、皮内、静脈、および腹膜内に）を投与するのに使用できる。ポリクローナル抗体の産生は、免疫に続く様々の時点で、免疫化動物の血液を採取することによって監視することができる。第二のブースター注射も付与しうる。攻撃するおよび滴定するプロセスは、適切な滴定が達成されるまで繰返される。所望のレベルの免疫原性が得られる場合、免疫化動物を出血させ、そして血清を単離および保存することができ、および／またはその動物をｍＡｂｓ（以下）を産生させるのに使用できる。本発明に提供される重要な特性の内の１つは、その中に抗体の特異性に関して比較的同一であるポリクローナル血清である。一般に、ポリクローナル抗血清は、種々の異なる「クローン」、すなわち異なる系列のＢ細胞から誘導される。対照的に、モノクローナル抗体は、共通のＢ細胞祖先、したがってそれらの「モノ」クローナル性を有する抗体産生細胞から由来すると定義される。ペプチドは、抗原として使用されて、ポリクローナル血清を生じる場合、全抗原が使用される場合より血清のクローナル特性で相当に低い多様性を予期する。不幸にも、エピトープの不完全フラグメントが現される場合、ペプチドは、多重（およびおそらく非元来）の形状を非常によく推定することができる。結果として、短いペプチドでさえ、比較的複数の特異性を有するポリクローナル抗血清、および不運にも、元来の分子と反応しないか、またはほとんど反応しない抗血清を産生できる。本発明によるポリクローナル抗血清は、無傷の全エピトープを含むことが推定されるペプチドに対して産生される。したがって、これらのエピトープは、免疫学的意味でいっそう安定であること、およびしたがってこのペプチドに応答する強力なＢ細胞クローンの量は、相当に小さく、そしてそれで生じる血清の同一性は、より高いことが分かる。種々の実施形態では、本発明は、クローン性、すなわち同じ分子決定基と反応するクローンの含有率が、少なくとも８０％であるポリクローナル抗血清を提供する。高いクローン性、９０％、９５％またはそれ以上が予測される。モノクローナル抗体を得るために、さらに最初に、実験動物、しばしば好ましくはマウスを、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドまたはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドまたはエピトープ含有組成物で免疫する。抗体産生を可能にするのに十分な時間の後、その後、動物から脾臓またはリンパ球の集団を得る。その後、脾臓またはリンパ球細胞を、ヒトまたはマウス骨髄腫株のようなセルラインと融合させて、抗体分泌ハイブリドーマを産生することができる。これらのハイブリドーマは、その後所望のペプチドに抗体の産生についてスクリーニングできる個々のクローンを得るために使用してもよい。免疫化に続いて、形質細胞腫細胞との標準融合プロトコールを用いて、脾臓細胞を、取り出し、そして融合させて、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のエピトープに対するモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマを産生させる。選択した抗原に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、免疫沈降法、ＥＬＩＳＡおよびウエスタンブロット法のような標準技術を用いて同定される。その後、ハイブリドーマクローンは、液体培地で培養でき、そしてその培養上清を、精製してＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のエピトープ特異的モノクローナル抗体を提供することができる。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のエピトープに特異的な抗体を利用できる他の手段と同様に、本発明のモノクローナル抗体は、免疫沈降法、ＥＬＩＳＡおよびウエスタンブロット法のような標準免疫化学的手段を用いて有用な使用法を見出すことが提案される。さらに、特定のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドに特異的であるモノクローナル抗体は、他の有用な使用法に利用できることが提案されている。例えば、免疫吸光プロトコールでのそれらの用途は、生来のまたは組換えペプチド種またはそれの合成または天然の変異体を精製する上で有用でありうる。一般に、これらのペプチドに対するポリ−およびモノクローナル抗体の両方は、様々の実施形態で使用されえた。例えば、それらは、抗体クローニングプロトコールで使用して、ここに開示されるペプチドまたは関連のタンパク質をコードするｃＤＮＡまたは遺伝子を得ることができる。それは、細胞中または動物中でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１誘導のペプチドの効果を分析する阻害研究で使用することもできる。抗−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープ抗体は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１種々の細胞事象の分配を分析して、例えば、異なる生理学的条件下でＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドの細胞または組織特異的分配を測定する免疫局在化研究で有用でもある。このような抗体の特に有用な使用は、例えば、抗体アフィニティーカラムを用いて、生来のまたは組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドを精製する際である。全てのこのような免疫学上の技術の操作は、本発明の開示の点で当業者に既知である。２．９抗体生成法およびその配合抗体を製造および特徴づけする手段は、当業者に既知である(例えば、ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、１９８８年参照；引用することによりここに組込まれる )。モノクローナル抗体（ｍＡｂ）を生成する方法は、一般に、ポリクローナル抗体を生成するもののような同じラインと一緒に始まる。簡便に、ポリクローナル抗体は、本発明による免疫原性組成物で動物を免疫すること、そして免疫動物から抗血清を収集することによって製造する。広範な動物種は、抗血清の生成のために使用することができる。一般に、抗−抗血清の産生に使用される動物は、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、モルモットまたはヤギである。ウサギの比較的多量の血液のため、ポリクローナル抗体の産生のための好ましい選択である。当業界で既知であるとおり、付与組成物は、その免疫原性で変化できる。したがって、ペプチドまたはポリペプチド免疫原を担体と結合させることによって達成することができる場合、宿主免疫系を追加刺激することがしばしば必要である。例示の好ましい担体は、鍵穴リンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）およびウシの血清アルブミン（ＢＳＡ）である。卵アルブミン、マウス血清アルブミンまたはウサギ血清アルブミンのような他のアルブミンも、担体として使用できる。ポリペプチドを担体タンパク質と接合させる手段は、当業界で既知であり、そしてグルタルデヒド、ｍ−マレイミドベンコイル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、カルボジイミドおよびビスジアゾ化ベンジジンが含まれる。当業界で既知であるとおり、特定の免疫原組成物の免疫原性は、アジュバントとして知られる、免疫応答の非特異的刺激剤を使用することによって増強されうる。例示のそして好ましいアジュバントとしては、完全フロイントアジュバント (死滅マイコバクテリウム・ツバキュロシス（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）を含む免疫応答の非特異的刺激剤)、不完全フロンイトアジュバントおよび水酸化アルミニウムアジュバントが挙げられる。ポリクローナル抗体の産生で使用される免疫原組成物の量は、免疫原および免疫化に使用される動物の特性によって変化する。経路の多様性は、免疫原（皮下、筋内、皮内、静脈内、および腹膜内で）を投与するために使用できる。ポリクローナル抗体の産生は、免疫化に続く様々な時点で、免疫動物の血液を採取することによって監視できる。第二の追加刺激注射を付与することもできる。追加刺激および滴定のプロセスは、適切な力価に達するまで反復される。所望のレベルの免疫原性が得られる場合、免疫化動物を、放血させて、単離されそして保存された血清、および／または動物は、ｍＡｂを生成するのに使用できる。ｍＡｂは、引用することによりここに組込まれる米国特許第４，１９６，２６５号で例示されるもののようなよく知られる技術の使用を通して容易に作成できる。一般に、この技術は、適切な動物を選択免疫原組成物、例えば精製または部分的に精製したタンパク質、ポリペプチドまたはペプチドで免疫することに関与する。免疫組成物は、抗体産生細胞を刺激するのに有効な手段で投与する。マウスまたはラットのようなげっ歯類は、好ましい動物であるが、しかし、ウサギ、ヤギ、カエルの細胞の使用も可能である。ラットの使用は、ある種の利点を提供する（Ｇｏｄｉｎｇ、１９８６年）が、マウスか好ましく、それにＢＡＬＢ／ｃマウスは、これが、最も日常に使用され、そして一般に安定な融合の率が高いことをを示す場合、最も好ましい。免疫化に続いて、Ｂ−リンパ球（Ｂ−細胞）に特異的な抗体を産生する能力を有する体細胞は、ｍＡｂ産生プロトコールで使用するために選択される。これらの細胞は、生検脾臓、扁桃またはリンパ節から、または末梢血サンプルから得てもよい。脾臓細胞は、分離形質芽球段階にある抗体産生細胞の豊富な源であるので、そして末梢血細胞は、末梢血が、容易に利用可能なので脾臓細胞および末梢血細胞が好ましい。しばしば、動物のパネルを、免疫させ、そして高抗体力価を示す動物の脾臓を、取り出し、そして脾臓リンパ球を、シリンジで脾臓を均質化することによって得た。一般に、免疫化マウスから得た脾臓は、およそ５×１０⁷ から約２×１０⁸のリンパ球細胞を含む。その後、免疫化動物から得た抗体産生Ｂリンパ球細胞を、不死の骨髄腫細胞の細胞一般に、免疫された動物としての同じ種のうちの１つと融合させる。ハイブリドーマ産生融合手段を使用するのに適した骨髄腫セルラインは、好ましくは、非抗体産生で、高度の融合効率を示し、そして所望の融合細胞（ハイブリドーマ）のみの成長を指示するある種の選択培地で成長する能力をなくさせる酵素欠損性を示す。当業者（Ｇｏｄｉｎｇ、１９８６年；Ｃａｍｐｂｅｌｌ、１９８４年）に知られるとおり、多数の骨髄腫細胞の内のいずれか１つを使用できる。例えば、免疫動物がマウスである場合、Ｐ３−Ｘ６３／Ａｇ８、Ｘ６３−Ａｇ８．６５３、ＮＳ１／１．Ａｇ４１、Ｓｐ２１０−Ａｇ１４、ＦＯ、ＮＳＯ／Ｕ、ＭＰＣ−１１、ＭＰＣ１１−Ｘ４５−ＧＴＧ１．７およびＳ１９４／５ＸＸ０Ｂｕｌを使用することができる；ラットについては、Ｒ２１０．ＲＣＹ３、Ｙ３−Ａｇ１．２．３、ＩＲ９８３Ｆおよび４Ｂ２１０を使用することができ；そしてＵ−２６６、ＧＭ１５００−ＧＲＧ２、ＬＩＣＲ−ＬＯＮ−ＨＭｙ２およびＵＣ７２９−６は、ヒト細胞融合と関連して有用である全てである。１つの好ましいネズミ骨髄腫細胞は、ＮＳ−１骨髄腫セルライン（Ｐ３−ＮＳ −１−Ａｇ４−１とも称される）であり、それは、セルライン貯蔵所番号ＧＭ３５７３によってＮＩＧＭＳヒト遺伝的突然変異細胞貯蔵所から容易に入手しうる。使用できる別のマウス骨髄腫セルラインは、８−アザグアニン耐性マウスネズミ骨髄腫ＳＰ２／０非プロデューサーセルラインである。その比が、それぞれ、細胞膜の融合を促進する剤または剤類（化学的または電気的）の存在下で約２０：１から約１：１までに変化しうるが、抗体産生脾臓またはリンパ節細胞および骨髄腫細胞のハイブリッドを生成する方法は、通常、体細胞を骨髄腫細胞と、２：１比で混合することを特徴とする。センダイウイルスを用いた融合方法は、記述され(ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ、１９７５年；１９７６年)、そして３７％（容量／容量）ＰＥＧのようなポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いたものは、Ｇｅｆｔｅｒら（１９７７年）による。電気的に誘導される融合方法の使用も、適切である(Ｇｏｄｉｎｇ、１９８６年) 。融合手段は、通常、約１×１０^-6から約１×１０^-8の低頻度で、生存できるハイブリッドを生成する。しかし、生存しうる融合ハイブリッドを、選択培地で培養することによって、親の未融合細胞（特に、正常に、無限に分割を続ける未融合骨髄腫細胞）から分化させる場合、これは、問題を保有しない。選択培地は、一般に、組織培養培地中のヌクレオチドのデノボ合成を遮断する剤を含むものである。例示のそして好ましい剤は、アミノプテリン、メトトレキセート、およびアザセリンである。アミノプテリンおよびメトトレキセートは、プリンおよびピリミジンの両方のデノボ合成を遮断し、一方では、アザセリンが、プリン合成のみを遮断する。アミノプテリンまたはメトトレキセートを使用する場合、培地に、ヌクレオチドの源としてヒポキサンチンおよびチミジンを供給する(ＨＡＴ培地)。アザセリンを使用する場合、培地に、ヒポキサンチンを供給する。好ましい選択培地は、ＨＡＴである。ヌクレオチドサルベージ経路を操作する能力のある唯一の細胞は、ＨＡＴ培地で生存することができる。骨髄腫細胞サルベージ経路の主要な酵素、例えばヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＰＲＴ）で欠陥があり、それらは生存できない。Ｂ細胞は、この経路を操作できるが、しかし、それらは、培地中で限定された寿命を示し、そして一般に、約２週以内に死亡する。したがって、選択培地で生存できる唯一の細胞は、骨髄腫およびＢ細胞から形成されるハイブリッドのものである。この培養は、特異的ハイブリドーマが選択されるハイブリドーマの集団を提供する。一般に、ハイブリドーマの選択は、マイクロタイタープレート中の単一クローン希釈によって細胞を培養し、続いて所望の反応性について個々のクローン上清（約２から３週間後）を試験することによって行われる。アッセイは、ラジオイムノアッセイ、酵素的免疫アッセイ、細胞毒性アッセイ、プラークアッセイ、ドット免疫結合アッセイ、および同等物のような、感受性のある簡便でそして迅速なものである。その後、選択ハイブリドーマは、個々の抗体産生セルラインに連続して希釈およびクローン化させ、その後、そのクローンを、無限に増殖させてｍＡｂを提供することができる。セルラインを、２つの基本的経路でのｍＡｂ産生のために利用できる。ハイブリドーマのサンプルは、元の融合のための体細胞および骨髄腫細胞を提供するのに使用された型の体組織適合性動物に（しばしば腹膜腹腔に）注射できる。注射した動物は、融合細胞ハイブリッドによって産生された特異的モノクローナル抗体を分泌する腫瘍を発達させる。その後、血清または腹水症体液のような動物の体液を叩いて、高濃度でのｍＡｂを提供する。ｍＡｂが、高濃度で容易に得ることかできる培養培地に自然に分泌される場合、個々のセルラインは、ｉｎｖｉｔｒｏで培養することもできる。所望の場合、いずれかの手段によって産生されるｍＡｂを、濾過、遠心分離およびＨＰＬＣまたはアフィニティークロマトグラフィーのような種々のクロマトグラフィー法を用いて、さらに精製することができる。２．１０エピトープコア配列本発明は、全細胞および他のポリペプチドを含まないＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド組成物に向けられもし、それは、本発明の１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的抗体と免疫学的に交差反応性のあるエピトープを取込む精製Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドを含む。ここで使用される場合、語句「１つまたはそれ以上のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的抗体と免疫学的に交差反応性のあるエピトープ（類）を組込む」は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド内に配置されるエピトープに類似の一次、二次または三次構造を含むペプチドまたはタンパク質抗原に該当することを意図する。類似性のレベルは、一般に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドに対して向けられるモノクローナルまたはポリクローナル抗体のそのような程度までであり、交差反応性ペプチドまたはタンパク質抗原に結合、と反応、またはそうでなければ認識することもある。種々の免疫アッセイ法は、例えば、ウエスタンブロット、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡおよび同等物のようなこのような抗体と接合させるのに使用でき、その全ては、当業者に知られている。ワクチンに使用するのに適切なＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープおよび／またはそれらの機能的等価物の同定は、比較的簡単なものである。例えば、引用することによりここに組込まれる米国特許第４，５５４，１０１号で教示されるＨｏｐｐの方法を使用することかでき、それは、親水性の理論によってアミノ酸配列からエピトープを同定することおよび作成することを教示する。いくつかの他の文献に記述される方法、それに基づいたソフトウエアープログラムも、エピトープコア配列を同定するのに使用できる(例えば、ＪａｍｅｓｏｎおよびＷｏｌｆ、１９８８年；Ｗｏｌｆら、１９８８年；米国特許第４，５５４，１０１号参照 )。その後、これらの「エピトープコア配列」のアミノ酸配列を、ペプチド合成または組換え技術の使用のいずれかを通して、ペプチドに容易に組込むことができる。本発明によって使用するための好ましいペプチドは、一般に、長さ約５から約２５のアミノ酸、そしてさらに好ましくは長さ約８から約２０のアミノ酸の桁数にある。短い抗原性ペプチド配列が、例えば、ワクチンの製造で、または免疫学的検出アッセイで特定の環境での利点を提供することが提案される。例示の利点としては、製造および精製の容易さ、比較的低コストおよび改善された製造の生産性、および有益な生物分布が挙げられる。本発明の特定の利点は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１関連配列に指示された「普遍性」エピトープペプチドになる修飾および／または伸長エピトープ／免疫原性コア配列を含む合成ペプチドの製造を通して認識できることが提案される。これらの領域が、最も動物中のＴ細胞またはＢ細胞刺激を促進しそうであるものを表すことが提案され、そしてそれにより、そのような動物での特異的抗原産生を引き出す。ここに使用されるとおりエピトープコア配列は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープ特異的抗体上の抗原結合部位に、そしてしたがって結合する「相補性」であるアミノ酸の比較的短い伸縮である。さらに、または選択的に、エピトープコア配列は、本発明のペプチド組成物に対して指示される抗体と交差反応性である抗体を引出すものである。本開示中の内容で、語句「相補性」は、お互いに向かう吸引力を示すアミノ酸またはペプチドに該当することが理解される。したがって、本発明の特定のエピトープコア配列は、所望のタンパク質抗原の結合を、対応のタンパク質依存性抗血清に競合させるか、またはおそらく置換する能力の点で操作的に定義することができる。一般に、少なくとも、同定したコア配列または配列を担持するのに十分な長さである限り、ポリペプチド抗原のサイズは、特にきわめて重大であると思われない。本開示によって予測される最小の有用なコア配列は、一般に、長さ約５アミノ酸の桁にあり、そして８または２５の桁にある配列は、より好ましい。したがって、このサイズは、一般に、本発明によって製造される最小のペプチド抗原に対応する。しかし、抗原のサイズは、塩基性エピトープコア配列を含む限り、所望の場合大きい。エピトープコア配列の同定は、例えば、引用することによりここに組込まれる米国特許第４，５５４，１０１号に記述されるとおり、当業者に既知であり、それは、親水性に基づいてアミノ酸配列からエピトープの同定および製造を教示する。さらに、多数のコンピュータープログラムは、タンパク質の抗原性部分（例えば、ＪａｍｅｓｏｎおよびＷｏｌｆ、１９８８年；Ｗｏｌｆら、１９８８年参照）を推定するのに使用するのが利用しうる。コンピューターペプチド配列分析プログラム（例えば、ＤＮＡＳｔａｒ^TMソフトウエアー、ＤＮＡＳｔａｒ，Ｉｎｃ.、ウイスコンシン州、マディソン）も、本開示によって合成エピトープおよびエピトープ類似体を設計する上で有用でありうる。本発明によって提供されるペプチドは、骨芽細胞分化、特に転写因子Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１によって生じたものの調節または調整のためのワクチンまたは免疫試薬として使用するための理想の標的である。これに関して、特定の利点は、エピトープ性／免疫原性コア配列を含む合成Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドの製造を通して認識できる。これらのエピトープ性コア配列は、ポリペプチドの親水性および／または流動性領域、またはＴ細胞モチーフを含むものとして同定することができる。このような領域は、最もＢ細胞またはＴ細胞刺激を促進し、そしてそれにより特異的抗体産生を引起こしそうなものを表わすことは、当業界で公知である。ポリペプチドが、開示ペプチドの１つまたはそれ以上のエピトープと免疫学的に交差反応性であるか、または生物学的機能性の等価であることを確認することは、簡単なことである。これは、例えば単一明示エピトープ性配列の特異的アッセイを用い、または例えば、ランダムに生成された合成ペプチドまたはタンパク質フラグメントのプールのより一般的スクリーンを用いて、容易に測定できる。スクリーニングアッセイは等価な抗原または交差反応性抗体のいずれかを同定するのに使用できる。あらゆる事象で、原理は、すなわち、抗体と抗原との間の結合部位についての競合に基づいて同じである。使用される可能性のある適切な競合アッセイは、免疫組織化学的アッセイ、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡＮウエスタンまたはドットブロッティングおよび同等物に基づいたプロトコールを含む。競合アッセイの内のいずれかで、結合成分の内の１つ、一般に、未標識のままである、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチド、または公知抗体のような一般に公知の要素を、検出可能な標識および試験構成要素で標識し、対応の反応性抗体または抗原に結合した標識の量を減少させるそれらの能力について試験する。例示の実施形態として、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１および任意の試験抗原の間の競合研究を行うために、第一に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を、例えば、ビオチンまたは酵素的、放射活性、または蛍光原性標識のような検出可能な標識で標識して、連続同定を可能にする。その後、標識抗原を、他の試験抗原とインキュベートして、種々の比（例えば、１：１、１：１０および１：１００）で試験され、そして混合後、混合物を、公知抗体に加える。好ましくは、公知抗体は、ＥＬＩＳＡプレートに付着させることによって固定化する。抗体に結合する混合物の能力は、特異的に結合した標識の存在を検出することによって測定される。その後、この値は、強力に競合する（試験）抗原は、インキュベートに含まれた対照値に比較する。そのアッセイは、ハイブリッド形成に基づいて免疫学的アッセイの範囲のいずれか１つであってよく、そして反応性抗原は、それらの標識を検出する手段によって、例えばビオチン化抗原の場合には、ストレプトアビジンを用いて、または酵素的標識と繋げた色素原性基質を用いることによって、または放射活性または蛍光標識を簡便に検出することによって、検出される。あらゆる試験抗原の不在下で、標識抗原、例えばＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドの反応性は、対照の高い値である。競合が起こり、そして結合を減少させる場合、対照の低い値は、標識抗原を過剰の未標識抗原とインキュベートすることによって得るられる。試験抗原の存在下で標識抗原活性における目立った減少は、「交差反応性」である、すなわち、同じ抗体のための結合親和性を示す試験抗原を示す。本出願の意味では「目立った減少」は、結合での生産性（すなわち、集合的に観察される）減少として定義できる。ここに開示されるペプチジル化合物に加えて、発明者らは、他の立体的に類似の化合物を、ペプチド構造の重要な部分を模倣するように配合することも予測する。ペプチド模倣体と称しうるこのような化合物は、本発明のペプチドとして同じ手段で使用でき、さらに、機能的等価物でもある。構造的に機能性の等価物の生成は、当業者に公知のモデル化および化学的設計の技術によって達成できる。このような立体的に類似の構築物全ては、本発明の範囲内に入ることが分かる。エピトープ配列、またはそれらの配列中に抗原性エピトープを含むペプチドの合成は、固相方法（例えば、アプライド・バイオシステムのモデル４３０Ａペプチド合成装置のような市販で入手可能なペプチド合成装置の使用を通して）従来の合成技術を使用することによって容易に達成される。その後、この手段で合成されるペプチド抗原は、予備測定量で適量にし、そして水性溶液で、またはさらに好ましくは、使用を保留する粉末または凍結乾燥状態でのような従来の手段で保存する。一般に、ペプチドの比較的安定性のために、それは、所望であれば、明らかに長い期間、例えば、６ヶ月またはそれ以上まで水性溶液で容易に、抗原活性の容易に判断しうる分解または損失なしに、実質的にあらゆる水溶液で保存することができる。しかし、延長した水溶液保存が予測される場合、一般に、約７．０から約７．５までのｐＨを維持するトリスまたはリン酸緩衝液のような緩衝液を含む剤を包含することが望ましい。さらに、アジ化ナトリウムまたはメルチオレートのような微生物の成長を阻害する剤を含むことが望みうる。水性状態での延長した保存については、溶液を４℃で、またはさらに好ましくは凍結させて保存することが望みうる。もちろん、ペプチドを、凍結乾燥または粉末状態で保存する場合、それらは、使用前に、実質的に無制限に、例えば、予備測定量の水（好ましくは、滅菌した）または緩衝液と再水和することができる計量したアリコート量で保存できる。２．１１Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列を用いた方法および使用記述されるとおり、特定の態様では、本開示によって提供されるＤＮＡ配列情報は、発明者らが、骨芽細胞特異的転写因子と同定したＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子の部分をコードする核酸配列に特異的ハイブリット形成する能力を有する比較的短いＤＮＡ（またはＲＮＡ）配列の製造を可能にする。これらの態様では、適切な長さの核酸プローブは、使用される特定のＤＮＡセグメントの自然の配列の重要性によって製造される。このようなＤＮＡセグメントは、生来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のものであってよいか、または代替的に、部位特異的突然が行われて、ここに開示される新規ペプチドのいずれかを生成するＤＮＡ配列であってよい。対応のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１核酸配列に特異的にハイブリッド形成するこのような核酸プローブの能力は、様々の実施形態でのそれらを特に有用なものにさせる。しかし、タンパク質産物の発現、突然変異体種プライマーの製造のための配列情報の使用、または他の遺伝的構築物を製造する上で使用するためのプライマーを含めた他の用途が子見される。このようなプライマーは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１に関連した転写因子からエピトープコード核酸セグメントの単離および同定のための診断用組成物として使用することもできる。本発明による特定の利点を提供するために、約３０から約５０までまたはそれ以上のヌクレオチドの配列は、有用であることが予見されるが、ハイブリッド形成研究またはアッセイに使用される好ましい核酸配列は、少なくとも約１４または１５から約２０まで、またはそれ以上のヌクレオチド伸縮の配列を有するか、またはそれに相同な配列を含む。少なくとも長さ１４−１５または２０のヌクレオチドのサイズは、フラグメントが、安定で、そして選択的な両方である二重鎖分子を形成する十分な長さのものであることを確認する助けになる。そのハイブリッドの安定性および選択性を増すためではあるが、長さ１４−１５または２０塩基より大きな収縮を越える相補的配列を有する分子が、一般に好ましく、そしてそれにより得られた特定のハイブリッド分子の量および程度を改善する。したがって、一般に、１４−１５から２０−２５ヌクレオチドまたはより長い約３０、または約５０、または約１００またはさらに所望の場合、約２００のヌクレオチドもののＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子相補的伸縮を示す核酸分子を設計するのを好む者がいる。このようなフラグメントは、化学的手段により、米国特許第４，６８３，２０２号のＰＣＲ^TM技術のような核酸再生技術の使用により、または組換え産物のために選択配列を組換えベクターに導入することにより、例えば、フラグメントを直接合成することによって容易に製造することができる。発明者らは、さらに、このようなＤＮＡセグメントが、ここに説明されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のペプチドの過剰発現で有用性を示すことを予測し、そして生来のそして部位特異的突然変異誘発ＤＮＡセグメントを含む組換えベクターの製造は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子由来の特定のエピトープ領域を包含する。本発明は、医療サンプル中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的ＲＮＡまたはＤＮＡを検出するための診断用ハイブリッド形成アッセイの基礎として特定の有用性を見出す。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１コード核酸の存在について分析できる例示の医療サンプルは、中耳体液、痰、気管支肺胞液および同等物が挙げられる。このようなサンプルは、ヒト、ネズミ、ウマ、ウシ、ネコ、ブタまたはイヌ起源のものである。多様なハイブリッド形成技術およびシステムは、引用することによりここに組込まれる米国特許第４，３５８，５３５号に記述されるもののような診断用アッセイを含めた本発明のハイブリッド形成態様と関連して使用できることが知られている。家畜動物のような経済的重要性のある動物を含めて非ヒト哺乳類源から誘導されるサンプルは、医療試験片の基礎をも提供しうる。したがって、本発明のヌクレオチド配列は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープをコードする核酸セグメントの相補的伸縮を有する二重鎖分子を選択的に形成するそれらの能力にとって重要である。予見される用途によって、標的配列に対するプライマーの可変の程度の選択性に達成するハイブリッド形成の可変の条件を使用することを望む。高度の選択性を必要とする用途については、一般に、比較的緊縮な条件を使用して、ハイブリッドを形成することを望む。これらの条件は、特に選択的であり、そしてあらゆる場合に、プライマーとテンプレートまたは標的株との間のミスマッチにほとんど耐えられない。もちろん、ある種の用途では、例えば、基本的なテンプレートにハイブリッド形成された突然変異プライマー株を使用する突然変異体を製造することを望む場合、より低い緊縮ハイブリッド形成条件は、異種二重鎖の形成をさせるために求められる。これらの環境では、低いかまたは減少した緊縮ハイブリッド形成条件を使用することを望みうる。任意の場合に、ホルムアミドの量を増加させて添加することによって、条件を、より緊縮にさせることができることが一般に評価され、そしてそれは、上昇した温度で、同じ方法でハイブリッド二重鎖を不安定化させるのに役立つ。したがって、ハイブリッド形成条件は、容易に操作でき、そしてそれにより、一般に所望の結果による選択の方法である。特定の実施形態では、核酸プライマーを使用して、突然変異Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１コードクローンを含むクローンバンクから変異体を単離することを望む者もいる。特定の実施形態では、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子の変異体を含む固形培地で生育する突然変異体クローンコロニーは、コロニーブロットアッセイに使用されるもののようなハイブリッド形成条件および方法を用いて、複写フィルターで同定して、特定のコロニーに含まれる配列変異体を含むプローブと核酸配列変異体との間のハイブリッド形成をのみ得ることができた。この手段では、これらの遺伝子の短い変異体配列を含む小型のハイブリッド形成プローブは、全遺伝子の配列変異体を含む固形培地で生育するそれらのクローンを同定するのに利用できる。その後、これらのコロニーを、育成させて、所望の量の変異体核酸配列または対応の抗原を得ることができる。医療用診断の実施形態では、本発明の核酸配列は、ハイブリッド形成を測定するために標識のような適切な手段と組合せて使用される。アビジン／ビオチンのような検出可能なシグナルを付与する能力のある、放射活性、酵素的または他のリガンドを含めた広範で多様な適切の指標手段が、当業界で知られている。好ましい診断用実施形態では、放射活性または他の環境的に望まれない試薬の代わりに、ウレアーゼ、アルカリ性ホスファターゼまたはペルオキシダーゼのような酵素タグを使用することを望む者がいる。酵素タグの場合には、比色指標基質が、ひとの目で可視的に、または分光光度計で手段を使用して、病原体核酸含有サンプルとの特定のハイブリッド形成を同定することができることが知られている。一般に、ここに記述されるハイブリッド形成プローブは、液体ハイブリッド形成での試薬として、および固相を用いる実施形態としての両方で有用である。固相に関連する実施形態では、しん出液、体液(例えば、中耳流出液、気管支肺胞洗浄液)、または組織させのような予測される医療サンプルから得た試験ＤＮＡ（またはＲＮＡ）は、選択されたマトリックスまたは表面に吸収またはそうでなければ付着させる。その後、この固定された一本鎖核酸を、所望の条件下で選択プローブとの特異的ハイブリッド形成にかける。選択条件は、必要とされる特定の条件に基づいた特定の環境（例えば、Ｇ＋Ｃ含有率、標的核酸の型、核酸の源、ハイブリッド形成プローブのサイズなどによって）に依存する。非特異的に結合したプローブ分子を除去するためにハイブリッド形成表面の洗浄に続いて、標識の手段によって、特異的ハイブリッド形成を検出または定量さえする。３．０図面の詳細な説明以下の図面は、本発明の明細書の部分を形成し、そしてさらに、本発明の特定の態様を例示することが意図される。本発明は、ここに現される特定の実施形態の詳細な説明と組合せてこれらの図面の１つまたはそれ以上に参照してよりよく理解されうる。図１Ａ。骨芽細胞中のＣｂｆａ関連ｍＲＮＡの検出、マウスのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのクローニングおよび発現。マウスの一次骨芽細胞(レーン１)、脾臓（レーン２）および胸腺（レーン３および４）から単離されたポリ（Ａ）⁺ＲＮＡを、プローブとして、ラントのドメインをコードするＣｂｆａ１ｃＤＮＡのフラグメントを用いて、ノーザンブロットによって分析した。等価量の無傷のｍＲＮＡを、β−アクチンプローブにハイブリッド形成することによって示されるとおり、レーン３に稼動させた。レーン４は、レーン３の２０倍長い露出を現す。図１Ｂ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１のアミノ酸配列。開始コドンは、ボールド体で示され、ラントのドメインは下線を付けられる。図１Ｃ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのｉｎｖｉｔｒｏ転写／翻訳。翻訳産物を、１０％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルに溶解させた。図１Ｄ。成体マウスの組織中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の発現。総ＲＮＡ（レーン当たり１５μｇ）を、成体マウス組織から単離し、そしてＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的プローブを用いて、ノーザンブロットによって分析した。ブロットを、１８ＳｒＤＮＡｃＤＮＡプローブで再度釣り上げて、ＲＮＡ負荷および移転効率を計量した。図２Ａ。ＯＳＥ２へのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の結合およびＯＧ２プロモーター活性の活性化。ＤＮＡ結合を、ＥＭＳＡによって分析した。ＤＮＡ−タンパク質複合体を、５％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドケル上で遊離ＤＮＡから溶解させ、そしてオートラジオフラフィーによって可視化させた。Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を、³²Ｐ標識野生型（レーン１）または突然変異ＯＳＥ２（レーン２−８）オリゴヌクレオチドとインキュベートした。突然変異ＯＳＥ２オリゴヌクレオチド内での突然変異は、表１に現される。アスタリスクは、連続ＤＮＡ共遺伝子導入（コトランスフェクション）研究に使用される突然変異を示す(図２Ｃ−図２Ｆ)。図２Ｂ。抗−Ｃｂｆａ抗血消によるＯＳＥ２に結合するＨｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の除去。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１に存在するペプチド配列に対する予備免疫血清（レーン２）または抗血清（レーン３）は、例示どおり、結合反応に含まれる図２Ｃ．Ｆ９催奇性癌腫細胞中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の転写活性。図２Ｄ.Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２線維芽細胞中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の転写活性。図２Ｅ。．Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２細胞中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１による１４７− ｂｐＯＧ２プロモーターの活性化。細胞を、レポータープラスミドとしてルシフェラーゼ融合構築物、エフェクタープラスミドとしてｐＣＭＶ（白抜き棒線）またはｐＣＭＶ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１（黒塗り棒線）、そしてトランスフェクション効率の内部対照としてｐＳＶβ−ｇａｌプラスミドと共遺伝子導入させた。データは、ｐＣＭＶエフェクタープラスミドと共に得られた活性に比例した活性の倍数として現される。値は、４つの独立のトランスフェクション研究から得られるβ−ガラクトシダーゼに対するルシフェラーゼの平均を現わし、そして誤差障害は、平均の標準偏差を表す。図３。マウス発生の間のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現。活性中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現のＲＴ−ＰＲＣ^TM分析。９．５から１７．５日齢の胚から得られるアリコート量のＲＴ−ＰＲＣ^TM産物を、電気泳動させ、そしてＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１特異的プローブとハイブリッド形成させた。Ｈｐｒｔエキソン２の増幅を、各反応の内部対照として使用した。ｄｐｃ＝交尾後の日数。抗血清を用いて、区分ｉｎｓｉｔｕハイブリッド形成を行った。³⁵Ｓ−標識Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１、 α１（ＩＩ）コラーゲンおよびＭｇｐリボプローブ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現を、１２．５ｄｐｃマウス胚で測定した。発生中の頭蓋、助骨、椎骨、前足および後足の間葉凝縮は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を発現した一方、ミカエルの軟骨の顆粒細胞は、発現しなかった。α（ＩＩ）コラーゲン発現は、１２．５ｄｐｃ胚のミカエルの軟骨の分化した顆粒細胞中で測定した。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現も、１４．５ｄｐｃマウス胚の発生中の頭蓋で評価した。突起Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、上顎骨と鼻骨の原基に存在し、前頭骨に伸び、そして蝶型基底骨および後頭骨基底突起骨の骨化中心に印を付けた。αａ（ＩＩ）コラーゲンを、高度に発現させる場合に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１転写物も、適切な肋骨に存在したが、顆粒肋骨の顆粒細胞にはなかった。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｍＲＮＡを、試験された各々の骨で検出したが、他の組織からは不在であった。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１も、椎骨の骨化中心で発現されたが、皮膚の周囲の顆粒細胞または線維芽細胞ではなかった。図４Ａ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現の調節は、骨芽細胞培養である。総ＲＮＡ（レーン当たり１５μｇ）を、様々な時点で、分化のレギュレーターで、または伝播体で処理した培養細胞から単離して、そしてノーザンブロットによって分析した。同等量の無傷のＲＮＡを、１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡプローブへのハイブリッド形成によって示されるとおり各レーンに負荷した。アスコルビン酸（５０μｇ／ｍｌ）の存在下で培養されたＭＣ３Ｔ３−Ｅ１骨形成細胞の分化。図４Ｂ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現の調節は、骨芽細胞培養である。総ＲＮＡ（レーン当たり１５μｇ）を、様々な時点で、分化のレギュレーターで、または伝播体で処理した培養細胞から単離して、そしてノーザンブロットによって分析した。同等量の無傷のＲＮＡを、１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡプローブへのハイブリッド形成によって示されるとおり各レーンに負荷した。ＢＭＰ７（２００ｎｇ／ｍｌ）の存在下で培養されたＣ３Ｈ１０Ｔ１／２骨芽細胞の分化。オステオカルシン転写物前のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１転写物の出現に注目すること。図４Ｂ。１，２５（ＯＨ）₂Ｄ₃によるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現の調節。ＲＮＡをノーザン分析のための作成する前に、１，２５（ＯＨ）₂Ｄ₃１０^-8Ｍの存在または不在下でマウスの一次骨芽細胞を培養した。図５Ａ。ｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞中で発現される数種の遺伝子の発現に結合しそして調節する。ＤＮＡ結合研究。ＯＧ１、α１（Ｉ）コラーゲン、Ｂｓｐ、およびオステオポンチン（ＯＰＮ）のプロモーターに存在するＯＳＥ２要素に対応する標識二重鎖オリゴヌクレオチド（表２参照）は、ＥＭＳＡに使用した。タンパク質の源として骨芽細胞核抽出物を用いてＤＮＡ結合を行った。プロモーターは、以下のとおりであった：レーン１−３：ＯＧ１のＯＳＥ２；レーン４−６：α１（Ｉ）コラーゲンのＯＳＥ１；レーン７−９：ＢｓｐのＯＳＥ２；レーン１０−１２：オステオポンチンのＯＳＥ２。図５Ｂ。ＮＡ結合研究。ＯＧ１、α１（Ｉ）コラーゲン、Ｂｓｐ、およびオステオポンチン（ＯＰＮ）のプロモーターに存在するＯＳＥ２要素に対応する標識二重鎖オリゴヌクレオチド（表２参照）は、ＥＭＳＡに使用した。ＤＮＡ結合は、Ｈｉｓ−Ｏｓｔ２／Ｃｂｆａ１と共に行った。プロモーターは、以下のとおりであった：レーン１：ＯＧ２のＯＳＥ２；レーン２：ＯＧ１のＯＳＥ２；レーン３：α１（Ｉ）コラーゲンのＯＳＥ２；レーン４：ＢｓｐのＯＳＥ２；レーン５：オステオポンチンのＯＳＥ２。図５Ｃ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１によってＯＳＥ２配列を含むオステオポンチンプロモーターフラグメントの活性化。Ｆ９細胞を、ＯＳＥ２要素を含むｐ９１０ −Ｏｐｎ−ｌｕｃと、またはｐＣＭＶまたはｐＣＭＶ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１と一緒に、ＯＳＥ２要素を含まないｐ１０６−Ｏｐｎ−ｌｕｃと、共遺伝子導入した。図５Ｄ。骨芽細胞特異的遺伝子発現でのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１抗血清オリゴヌクレオチドの効果。ラットＲＯＳ１７／２．８骨芽細胞に、抗血清（ＡＳ）または対照撹乱（ＣＳ）オリゴヌクレオチドを遺伝子導入させた。ＲＮＡを、４０時間後に作成し、そしてα１（Ｉ）コラーケン、オステオカルシンおよびオステオポンチンの発現について分析した。ブロットは、１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡプローブで再度釣り上げて、ＲＮＡ稼動および移入効率について計測した。図６Ａ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、非骨芽細胞セルラインでの骨芽細胞特異的遺伝子の発現を誘導できる。ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１頭蓋冠細胞から得た総ＲＮＡ（１５μｇ）を、ｐＣＭＶまたはｐＣＭＶ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１に遷移トランスフェクションした４０時間後に収集した。α１（Ｉ）コラーケン、Ｂｓｐ、オステオカルシンおよびオステオポンチン転写物のプローブも用いて、ノーザンブロット分析を行った。同等量の無傷のＲＮＡを、１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡプローブへのハイブリッド形成によって示されるとおり各レーンに負荷した。図６Ｂ。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、非骨芽細胞セルラインでの骨芽細胞特異的遺伝子の発現を誘導できる。Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２線維芽細胞から得た総ＲＮＡ( １５μｇ)を、ｐＣＭＶまたはｐＣＭＶ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１で遷移トランスフェクッションした４０時間後に収集した。α１（Ｉ）コラーゲン、Ｂｓｐ、オステオカルシン、およびオステオポンチン転写物用のプローブを用いてノーザンブロット分析を行った。等価量の無傷のＲＮＡを１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡプローブへのハイブリッド形成によって示されるとおり各レーンに負荷した。図７Ａ。２つのヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１転写物（ｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ａおよびｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｂ）の代表的図式。開放読取りフレームは、ボックスとして表され、樹立した３’および５’未翻訳配列は線で示される。ｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｂ転写物中の６６ｂｐのフレーム内欠失は、連続線で表される。λ−ｆｉｘＩＩヒトゲノムライブラリーのサザンおよびノーザン分析およびスクリーニングに使用されたｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ａｃＤＮＡから誘導されるプローブは、ｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｂ以降に示される。Ｑ、グルタミン伸縮( ２３残基)；Ａ）アラニン伸縮(１７残基)；ＲＵＮＴ、ラントのドメイン；ＰＳＴ、プロリン／セリン／トレオニン豊富領域。図７Ｂ。ヒト（上側の配列）およびマウス（下側の配列）のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドの椎定アミノ酸配列の比較。配列を、アミノ酸配列同一性を最適化するように配列した。マウスのアミノ酸配列中のダッシュは、マッチした残基を表す。ダッシュとして示されるヒト配列でのギャップは、対のアミノ酸の同一性を最大限に導入する。図７Ｃ−１および図７Ｃ−２。ヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ａｃＤＮＡのヌクレオチドおよび椎定アミノ酸配列。ヌクレオチドおよびアミノ酸配列の番号付けは、左に示され、ヌクレオチドの番号付けは、＋１での翻訳開始部位に関連し、アミノ酸の番号付けは、イタリック体で表される。翻訳開始および終止コドンは、ボールド体で示される。ラントのドメインは、ボックスで囲まれ、そして分断配列に代替する２２アミノ酸は、下線を付した。図８Ａ。レポータープラスミドおよび発現ベクターの代表例。レポータープラスミドｐ６ＯＳＥ２−ｌｕｃは、−３４／＋１３ｍＯＧ２プロモーター−ルシフェラーゼ融合遺伝子の上流でクローン化された野生型ＯＳＥ２オリゴヌクレオチドの６つのコピーを含む。発現ベクターは、正の方向でＣＭＶプロモーターの下流でクローン化されたＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ａおよびｂのｃＤＮＡを含む。図８Ｂ。Ｆ９マウスの催奇性癌腫細胞を、５μｇの表示された発現ベクターの存在下で５μｇのレポータープラスミドと遷移的に遺伝子導入した。値は、１で設定されたｐ６ＯＳＥ２−ｌｕｃの基本的活性に関連して発現された。データは、３つの独立のトランスフェクション研究から得た結果を表す。図９５’未翻訳領域（ＵＴＲ）の特徴づけ。ヒトの骨およびＳａＯＳ−２骨肉腫細胞でのヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１発現のＲＴ−ＰＣＲ^TM分析を、５’プライマーとしてヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｃＤＮＡの５’未翻訳領域(ＵＴＲ)（レーン２，３および４）に、または最初に記述されたマウスＣｂｆａ１ｃＤＮＡの５’ＵＴＲ（レーン５、６および７）に配置されたオリゴヌクレオチドおよびラントのドメインの５’末端に配置された３’プライマーを用いて行った。マーカー１ｋｂラダー(レーン１)、対照プラスミドｈＯＳＦ２(レーン２)、骨ＲＮＡ( レーン３)、ＳａＯＳ−２ＲＮＡ(レーン４)、最初に記述されたマウスＣｂｆａ１ｃＤＮＡを含む対照プラスミドｐＢＳ３１２(レーン５)、骨ＲＮＡ(レーン６)、ＳａＯＳ−２ＲＮＡ(レーン７)。図１０。ヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１発現のノーザンブロット分析。ＳａＯＳ− ２ＲＮＡ(レーン１)、モルト４(レーン２)、形質転換線維芽細胞(レーン３)、形質転換顆粒細胞(レーン４)、肺(レーン５)、腎臓(レーン６)、子宮（レーン７）および脾臓（レーン８）から得た総ＲＮＡ（１５μｇ／レーン）を、³²Ｐ標識ヒトＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｃＤＮＡとハイブリッド形成させた。ＲＮＡの完全性を確認するために１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡハイブリッド形成を行った。図１１Ａ。ヒトゲノムＤＮＡのサザンブロット分析。ヒトゲノムＤＮＡ（１０ μｇ／レーン）を、ＢａｍＨＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ＳｐｅＩ、ＸｂａＩおよびＥｃｏＲＩ（レーン１から５）で消化させ、そしてプローブとしてｈＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ｃＤＮＡとハイブリッド形成させた。図１１Ｂ。λファージおよびＰＡＣクローンに基づいたヒトＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子の物理的地図。エキソン（１から９に番号付けられた）を、イントロンを示す結合線と共に開放ボックスで例示する。ゲノム構造上のレーンは、λフアージおよびＲＮＡから得たＰＡＣクローンを表わす。図１２Ａ。ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１遺伝子のエキソン８の周囲の選択的スプライシング事象の証拠。ＳａＯＳ−２骨肉腫細胞ｍＲＮＡのＲＴ−ＰＣＲ^TMおよび２つの別々に分断された転写物の同定。ＲＴ−ＰＣＲ^TM増幅のためのプライマーとして使用されるオリゴヌクレオチドは、エキソン７および９に配置した。レーン１、マーカー１ｋｂラダー；レーン２、ＳａＯＳ−２ＲＮＡから得たＲＴ−ＰＣＲ^TM産物。図１２Ｂ。ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１ａおよびｂ転写物を発生するエキソン８の周囲の選択的分断事象の代表的図式。エキソンは、ブラックボックスとして示されるエキソン８以外は開放ボックスによって表わされる。スプライシング事象は、結合線によって表わされる。ＰＣＲ^TM増幅に使用されるプライマーは、矢印で示される。図１３Ａおよび図１３Ｂ。Ｏｓｆ２およびＯｂｆａ１のアミノ酸配列の配列。ハイフンは、配列の配列を最大限に挿入されるギャップを示す。同一の残基は、コロンによって示され、そして類似のものは、ドットによって示される。Ｏｓｆ２に特徴的であるＮ末端１９アミノ酸（ＡＤ１）およびＱＡドメイン（ＡＤ２）は、二重下線を付される。ラントのドメインに下線を付し、そしてＡＤ３のＣ末端２７アミノ酸は、ボールド体で示され、下線を付した。Ｏｓｆ２配列は、Ｄｕｃｙら（１９９７年）から得、そしてＣｂｆａ２配列は、Ｂａｅら（１９９３年）から得た。図１４Ａ。Ｏｓｆ２中のＭｙｃ関連ＮＬＳ配列の同定。ラント関連タンパク質のＮＬＳ配列と、ｃ−Ｍｙｃのものとの比較。塩基性残基は、ボールド体で示され、そして示されたタンパク質の少なくとも３つで同一である残基は、下線を付した。図１４Ｂ。Ｏｓｆ２中のＭｙｃ関連ＮＬＳ配列の同定。野生型Ｏｓｆ２およびＯｓｆ２ΔＮＬＳ発現構築物の代表的図式。図１４Ｃ。Ｏｓｆ２中のＭｙｃ関連ＮＬＳ配列の同定。ＣＯＳ７細胞中のｐ６ＯＳＥ２−ｌｕｃレポーターで行われる遷移トランスフェクションアッセイでの、野生型Ｏｓｆ２および塩基性−アミノ酸収縮（ＮＬＳ）を欠くＯｓｆ２ΔＮＬＳの転写活性。βｇａｌ活性に正常化した、ルシフェラーゼ活性の折畳み誘導が示される。値は、９つの独立のトランスフェクション研究の平均を表わす。誤差障害は、平均の標準偏差を表わす。図１４Ｄ。Ｏｓｆ２中のＭｙｃ関連ＮＬＳ配列の同定。野生型Ｏｓｆ２またはＯｓｆ２ΔＮＬＳ発現構築物とトランスフェクションしたＣＯＳ７細胞の免疫ブロット分析。細胞質および核分画を、遺伝子導入した細胞から製造し、そしてウサギのポリクローナル抗−Ｏｓｆ２抗体を用いて免疫ブロット分析にかけた。分子サイズマーカー（キロダルトンで）は、左に示される。図１５Ａ。Ｏｓｆ２中での同定およびトランス活性化ドメイン。Ｏｓｆ２ｃＤＮＡのｉｎｖｉｔｒｏ転写および翻訳。Ｏｓｆ２Ｍｅｔ¹およびＯｓｆ２Ｍｅｔ⁶⁹構築物を、転写し、そしてｉｎｖｉｔｒｏで翻訳し、そして³⁵Ｓ標識タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析にかけ、続いてオートラジオグラフィーにかけた。図１５Ｂ。Ｏｓｆ２中でのトランス活性化ドメインの同定。Ｏｓｆ２欠失突然変異体の転写活性。Ｏｓｆ２の欠失を、ｐＣＭＶ５発現ベクターにクローン化させ、そしてここに記述されるとおりｐ６ＯＳＥ２−ｌｕｃレポーターで遺伝子導入を行った。左に示される数は、欠失されたアミノ酸を示す。右に示される値は、９つの独立のトランスフェクション研究の平均±標準偏差である。図１６Ａ。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の活性化および発現ドメインの同定。ＰＳＴドメイン欠失構築物の転写活性。ＤＮＡコトランスフェクション研究を、レポーター構築物としてｐＧＡＬ４ＳＶｌｕｃを用いてＣＯＳ７細胞で行った。細胞抽出液中のルシフェラーゼ活性を、材料および方法で記述のとおり分析した。示される値は、三重に行われた４つの独立のトランスフェクション研究の平均である。図１６Ｂ。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の活性化および発現ドメインの同定。遺伝子導入された細胞から得た抽出液の免疫ブロット分析。遺伝子導入された細胞中のＧＡＬ４−融合タンパク質の発現を、抗−ＧＡＬ４ＤＢＤ抗体を用いて、免疫ブロット分析によって確認した。分子サイズマーカー（キロダルトンで）は、左に示される。図１６Ｃ。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の活性化および発現ドメインの同定。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の様々の機能性ドメインの代表的図式。図１６Ｄ。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の活性化および発現ドメインの同定。ＶＷＲＰＹモチーフの機能を測定するのに使用されるＧＡＬ４−ＶＰ１６構築物の代表的図式。図１６Ｅ。Ｏｓｆ２のＰＳＴ領域中の活性化および発現ドメインの同定。パネルＤで示されるＧＡＬ４−ＶＰ１６構築物で遺伝子導入されたＣＯＳ７細胞から得た抽出液中のルシフェラーゼ活性の折畳み誘導。値は、９つの独立のトランスフェクション研究の平均を表わす。図１７。Ｏｓｆ２およびＯｓｆ２ΔＣ１２のトランス活性化能力におけるＴＬＥ２の影響。Ｏｓｆ２またはＯｓｆ２ΔＣ１２、およびｐ６ＯＳＥ２ｌｕｃレポーターを用いて、ＴＬＥ２発現構築物ｐｃＤＮＡ３−ＴＬＥ２の存在または不在下で、ＣＯＳ７細胞でＤＮＡトランスフェクション研究を行った。値は、ルシフェラーゼ活性の折畳み誘導を示し、そして９つの独立のトランスフェクション研究の平均である。図１８Ａ。ＱＡドメインは、ＣｂｆβとのＯｓｆ２の異種ダイマー化を防止する。Ｃｂｆβの存在または不在下で、標識二重鎖ＯＳＥ２オリゴヌクレオチド、および等価量のヒスチジン−タグ付け野生型および突然変異タンパク質で行ったＥＭＳＡ。非特異的バンド（ＮＳ）は矢印によって示される。矢印の頭は、レーン４および１０に見られる超移行複合体を示す。図１８Ｂ。ＱＡドメインは、ＣｂｆβとのＯｓｆ２の異種ダイマー化を防止する。インビドロ結合アッセイ。グルタチオン−アガロースビーズに固定されたＧＳＴタンパク質およびＧＳＴ−Ｃｂｆβ融合タンパク質を、ｉｎｖｉｔｒｏ翻訳した³⁵Ｓ標識Ｏｓｆ２（レーン２および３）またはＣｂｆａ２（レーン５および６）とインキュベートした。その後、結合タンパク質を、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルで分析し、続いてオートラジオグラフィーを行った。³⁵Ｓ標識Ｏｓｆ２（レーン２および３）およびＣｂｆａ２（レーン５および６）の流入量が示される。図１８Ｃ。ＱＡドメインは、ＣｂｆβとのＯｓｆ２の異種ダイマー化を防止する。Ｏｓｆ２およびＣｂｆ２キメラ構築物の代表的図式。図１９。Ｏｓｆ２の種々の機能性ドメインの代表的図式。様々の活性ドメインまたは抑制ドメインの配置、およびＣｂｆβとのＯｓｆ２の異種ダイマー化を防止することが考えられるＱＡドメンを含むＮ末端領域が示される。図２０Ａ。ΔＯｓｆ２によるオステオカルシンプロモーター−ルシフェラーゼキメラ遺伝子のＯｓｆ２誘導の阻害。図２０Ｂ。移入遺伝子発現が骨でのみあったことの指標。Ｈｐｒｔ遺伝子の発現を検出することによって、ＲＮＡ完全性を確認した。図２１Ａ。野生型およびトランスジェニック動物でのＯｓｆ２を含む骨芽細胞特異的遺伝子の発現の比較。示されるとおり、発現は、２週および４週で測定した。図２１Ｂ。骨芽細胞核抽出物および野生型（α１（Ｉ）ｗｔ）ＯＳＥ２要素または２−ｂｐの突然変異（α１（Ｉ）ｍ）を含むＯＳＥ２要素を含むオリゴヌクレオチドを用いた電気泳動移動度シフト分析(ＥＭＳＡ)。図２１Ｃ。マルチマーまたは野生型ＯＳＥ２α１（Ｉ）および突然変異させたＯＳＥ２α１（Ｉ）部位のマルチマーを含むレポーター構築物を含む細胞中のＯｓｆ２誘導発現の比較。４．０例示実施形態の説明４．１骨再モデル化脊椎動物は、安定に骨を再生する。骨の再生は、骨の再吸収、続いて骨芽細胞による骨の形成を含む。骨の再吸収および形成での欠損は、数種の骨形成のヒトの疾患および障害、例えば、骨粗鬆症、骨硬化症、骨形成不全症、および骨の修復の不全の発生に関連する。語句骨粗鬆症は、骨の再吸収が、骨形成を越えて、骨の質量の低下、および骨折にいたる異種群の障害に該当する。臨床的には、骨粗鬆症は、Ｉ型およびＩＩ型に分類される。Ｉ型骨粗鬆症は、中年の女性で優先して起こり、そして閉経期にエストロケンの損失と最も頻繁に関連している一方で、骨粗鬆症ＩＩ型は、高齢者に関連する。。骨形成の不全症（ＯＩ）は、骨および軟質接合組織脆弱性によって特徴づけられる遺伝性接合組織疾患の１つの群に該当する(ＢｙｅｒｓおよびＳｔｅｉｎｅｒ、１９９２年；Ｐｒｏｃｋｏｐ、１９９０年)。オスおよびメスは、同等に影響され、そして全体の発生は、最近５，０００−１４，０００の誕生で１であると計算される。聴力損失、象牙質形成不全症、呼吸不全、重篤な脊柱側湾症、気腫は、ＯＩの１つまたはそれ以上の型に関連する症状の内のほんのいくつかである。骨修復の不全は、例えば、骨の骨折に続く線維性非癒合、移植干渉不全および大きな同種移植片不全のような、臨床的にまれな事例での際立った合併症に関連する。骨の修復を刺激または完全にする方法は、ここに記された個々の疾患の状態に関連して提案されたが、このような疾患の理解を増し、そして骨関連の障害のための治療プロトコールか改善される相当の必要性が残っている。 γ−カルボキシグルタミン酸（Ｇｌａ）残基の存在のため骨Ｇｌａタンパク質と称されるオステオカルシンは、約１０−２０％のＮＣＰを含む、骨の細胞外マトリックスの最も優勢な非コラーゲン性タンパク質（ＮＣＰ）である。種によって４６との間の５０アミノ酸を含み、そしてＣａ²⁺結合機能を示す。それは、ｉｎｖｉｔｒｏでヒドロキシアパタイトに強力に結合する。骨芽細胞および象牙芽細胞によってのみ合成され、そしてビタミンＫ依存性である。カルシウムの存在下で、オステオカルシンは、全Ｇｌａ側鎖が、１つのα−螺旋の同じ面に配置されるα−螺旋形状への遷移を起こさせる。Ｇｌａ残基は、ヒドロキシアパタイト格子中のＣａ²⁺の原子間分離と平行して密接に約５．４Åの間隔で間隔を取る。他の研究では、発明者らは、骨の形成を増加させる上でオステオカルシンの役割を例示した。４．２骨の疾患および障害骨の疾患は、世界中で顕著な健康問題である。例えば、およそ２０−２５百万人のヒトが、部位特異的骨の損失のために骨折の危険が増している。米国での骨粗鬆症を治療する費用は、最近、年に１００億ドルの桁にあると概算されている。人口学の流れ、すなわち米国の人口の年連が徐々に上がっていることは、安全で効果的な処置が見つからない場合、これらの費用が、２０２０年までに２−３倍に増えることを示唆する。ＯＩのための保健費用の正確な計算は利用できない一方で、骨折への極端な傾向（ＯＩ型Ｉ−ＩＶ）および骨折修復に伴う異常な骨の変形（ＯＩ型ＩＩ−ＩＶ）から生じるこの疾患に関連した罹患率および死亡率は、際立っている。現在、骨の疾患を治療するための従来の方法は、「事実の後」であり、そして第一に、骨折修復を増強することによる。不運にも、目立った罹患率および死亡率は、高齢者、特に腰の骨折に罹っている者での長期化した病床休養に関連する。骨折修復を刺激する新たな方法が明らかに必要とされ、したがって、合併症が出てくる前に患者における可動性を保持する場合、骨折修復でなく、骨折防止に焦点を当てる新規方法を開発することが重要である。これは、骨代謝、およびどのようにこの代謝が疾患状態で変えられるかについてのさらに詳細な理解を必要とする。本発明は、この目的および重要な骨関連タンパク質オステオカルシンの機能にさらなる洞察力を達成させる道具を提供する。４．３オステオカルシン骨γ−カルボキシグルタミン酸（Ｇｌａ）タンパク質またはＢＧＰとも呼ばれるオステオカルシンは、骨、象牙質、およびおそらく他の鉱化組織の生体マトリックスに固有の、豊富なＣａ２＋結合タンパク質である。オステオカルシン（ｏｓｔｅｏｃａｌｃｉｎ）の名称（ｏｓｔｅｏ、ギリシャ語で骨；ｃａｌｃ、ラテン語で石灰塩；ｉｎ、タンパク質）は、このタンパク質がＣａ²⁺親和性であり、このタンパク質が骨組織に豊富であることに由来する（種、年令および部位により１−２０％の非コラーゲンタンパク質）。オステオカルシンはヒト体の１０個の最も豊富なタンパク質の１つであり、骨において最も量の多いＧｌａタンパク質である。オステオカルシンは種により４６−５０アミノ酸残基（Ｍ_r＝５，２１０−５，８８９）を含む。オステオカルシンはその通常のＧｌａ残基の含量において際だつが、ヒトタンパク質はわずか２つのＧｌａのみを含有し得る。オステオカルシンのビタミンＫ依存性生合成は骨で起こる。ビタミンＫは、ポリペプチド鎖の特定のグルタミン酸残基の翻訳後酵素的カルボキシル化によるＧｌａの合成において補因子として関与する。オステオカルシンは骨鉱化の開始直後に骨マトリックスにおいて分泌される。オステオカルシンの一次構造は、１３以上の異なる種で決定した。全種のオステオカルシンは広範なアミノ酸配列同一性を共有する。共通の特徴は、１７、２１および２４残基のＧｌａの位置、およびジスルフィドループＣｙｓ−２３−Ｃｙｓ−２９である。ヒドロキシプロリンはほとんどの種で９位にある。オステオカルシンのアミノ末端は、Ｇｌａ残基およびＣａ²⁺結合部位である、強く保存された分子の中心部分とは対照的にかなりの配列多様性を示す。オステオカルシンは特異的カルシウム−結合特性を有する。円二色性および紫外分光法により、オステオカルシンにおいてα−ヘリックス構造の存在を確認し、もし高度にアニオン性のオステオカルシン分子がその全効力の約４０％α−ヘリックスを達成するのであれば、ミリモルレベルのＣａ²⁺または他の特異的カチオンが静電反発を打ち消すのに必要とされることがさらに示された。カルシウムの存在下、オステオカルシンは、全Ｇｌａ側鎖がα−ヘリックスの同面に位置するα−ヘリックス構造への遷移を受ける。遊離溶液中のオステオカルシンは２ないし３モルＣａ²⁺／モルタンパク質に、０．８から３ｍＭの範囲の解離定数で結合する。種々のカチオンが、競合的結合特性を有しこれもα−ヘリックス構造遷移を誘導する。カルシウムイオンはトリ・オステオカルシンにおいて０．７５ｍＭの中間点でこの遷移を誘導する。ヘリックス構造はヒドロキシアパタイトへのオステオカルシンの吸収に重要である。ヒドロキシアパタイトへの金属非含有オステオカルシンの親和性は、５ｍＭＣａ²⁺ の添加により５倍増加する。Ｃａ²⁺の結合部位は、Ｇｌａ残基のカルボキシル基により、並びにオステオカルシンの２つのヘリックスドメインのアスパラギン酸およびグルタミン酸の対抗するカルボキシルによりおそらく形成される。ＧｌａとＣａ²⁺との相互作用では、６−９の配位部位のわずか２つが占有されている。従って、隔離Ｃａ²⁺は他の種類の相互作用に利用できる。Ｇｌａタンパク質のこの鍵となる特徴は、Ｃａ²⁺ （ｍＭ範囲）のその比較的高い解離定数（Ｋ_d）、並びに結漿［Ｃａ²⁺］が存在する場所でのこれらのタンパク質の細胞外作用と相容性である。この特徴により、「ＥＦ−ハンド」型の細胞内Ｃａ²⁺結合タンパク質由来のクラスとしてＧｌａタンパク質が区別され（ここでＧｌａ残基は見られない）、結合Ｃａ²⁺は実質的には完全に配位されており、Ｋ_d値は典型的にはマイクロモルの範囲である。オステオカルシンのＧｌａ残基へのＣａ²⁺結合の相互作用において占めるリガンドの候補は、他のＣａ²⁺結合タンパク質、酸性リン脂質表面、およびカルシウムリン酸鉱物表面、例えばヒドロキシアパタイトを含む。ヒドロキシアパタイトにおけるオステオカルシンの吸収親和性は、骨の鉱物動力学に重要な因子であり得る。ブルシャイト（ＣａＨＰＯ₄・２Ｈ₂Ｏ）のヒドロキシアパタイト［Ｃａ₁₀（ＰＯ₄）₆（ＯＨ）₂］への遷移は、非常に低濃度のオステオカルシンにより阻害される。オステオカルシンはまた、過飽和溶液および結晶種を加えたヒドロキシアパタイト系のヒドロキシアパタイトの沈殿を阻害するが、Ｃａ²⁺−リン脂質−ＰＯ₄−依存性結晶化に全く影響を与えない。タンパタ質は、明記していない表面積の無定形リン酸カルシウムにわずかに結合する。フルオロアパタイト［Ｃａ₁₀（ＰＯ₄）₆Ｆ₂］へのオステオカルシン吸収は、ヒドロキシアパタイトよりも５倍大きい親和定数を示すが、これは骨鉱物代謝におけるフッ化物のいくつかの異なる効果を説明し得る。平均して、骨において各々のヒドロキシアパタイトの微結晶についてわずか約１分子のオステオカルシンが存在するので、微結晶（側面対末端）上の結合部位は鉱物結晶化および／または溶解の動力学に強く影響を与えることができた。オステオカルシンは骨芽細胞の特異的産物であるようである。ヒトオステオカルシン遺伝子は、マウス−ヒト体細胞ハイブリッドの解析により第１染色体に存在する。骨、アルカリホスファターゼに重要な別の遺伝子もまた、ヒト第１染色体上に存在する。ラットオステオカルシン遺伝子は、ラットゲノムＤＮＡライブラリーから単離された。シークエンス解析により、ｍＲＮＡは、４つのエキソンおよび３つのイントロンからなるＤＮＡ断片に存在することが示唆される。ラット遺伝子のイントロンは大きいが、その全体の構造はヒト遺伝子と類似している。ＲＮＡポリメラーゼＩＩにより転写されるほとんどの遺伝子に関連した典型的な配列は、ラット遺伝子の５'−フランキング領域(例えば、ＴＡＴＡ、ＣＡＡＴ、ＡＰ１、およびＡＰ２)に見られる。さらに、共通配列が、サイクリックヌクレオチド−応答性エレメントおよびいくつかのホルモンレセプター部位（エストロゲン、甲状腺ホルモン）について同定された。また、ＡＧに富むクラスター、仮想的ビタミンＤ−応答性エレメントも存在し、転写開始部位からすぐ上流の１，０００ヌクレオチド内に、ラットオステオカルシン遺伝子の１，２５（ＯＨ）₂ Ｄ₃−依存性転写を支持する配列が存在する。マウスオステオカルシン遺伝子もまたクローン化および研究されている。コード配列が高度に相同性であるが、２つの異なる空間的および時間的形式で転写される３つの遺伝子のクラスターが存在する。３つの遺伝子が、ゲノムＤＮＡの２３ｋｂスパン内にクラスター化し、同じ転写配向で配列している。遺伝子は（５ ’から３’）オステオカルシン遺伝子１（ＯＧ１）オステオカルシン遺伝子２（ＯＧ２）、およびオステオカルシン関連遺伝子（ＯＲＧ）と呼ばれる。ＯＧ１およびＯＧ２は、骨および発達後期にのみ発現される。ＯＲＧは腎臓で発現されるが、骨および発達初期では発現されない。ＯＧ２のコード配列は、マウスオステオカルシンｃＤＮＡの刊行された配列と同一である。ヒトおよびラットのオステオカルシン遺伝子のように、ＯＧ２は４つのエキソンおよび５’−非翻訳領域を典型的なＴＡＴＡボックス、ＣＣＡＡＴボックス、およびビタミンＤ応答性エレメントと共に含む。ＯＧ１はＯＧ２と同じエキソン−イントロン構造を有し、そのコード配列はＯＧ２のコード配列と９８％類似している。差異は、エキソン１での６つの置換変異である。ＯＧ１の５ ’−非翻訳領域は、１ｋｂにおよびＯＧ２の５’−非翻訳領域と９３％相同であり、特にＴＡＴＡおよびＣＣＡＡＴボックスおよびビタミンＤ応答エレメントが全て転写開始部位から同じ距離に存在する。ＯＧ１およびＯＧ２の３’−非翻訳領域はは１ｋｂ以上におよび高度に類似している。対照的に、ＯＲＧの構造は数個の差異を有する。この遺伝子は見かけ上ＯＧ１およびＯＧ２と同じエキソン−イントロン構造を有し、そのコード配列はＯＧ２と９６％類似している。仮想エクソン２には２つの置換変異があり、最後のエキソンには７つの置換変異がある（エキソンは成熟タンパク質をコードする）。これらの変異は、ビタミンＫ依存性カルボキシラーゼの認識配列であるグルタミン酸残基に影響を与えず、または停止コドンを作製しない。ＯＲＧと他の２つの遺伝子間の主要な差異は、イニシエーターの上流に位置する４ｋｂのＤＮＡフラグメントであり、他の２つの遺伝子におけるどの配列とも相同性がない。この４ｋｂＤＮＡフラグメントの５’には、１ｋｂにおよびＯＧ１およびＯＧ２の５’−非翻訳領域に９３％相同なＤＮＡ配列がある。ＯＲＧの３’−非翻訳領域は、対応するＯＧ１およびＯＧ２の領域に類似している。ＯＲＧは追加のエキソンを含み、ＯＧ１およびＯＧ２とは異なるプロモーターを使用する。マウスオステオカルシンクラスターの３つの遺伝子は、２つの異なる空間的形式で転写される。ＯＧ１およびＯＧ２は骨においてのみ転写され、これはその実質的に同一な構造と一致する。ＯＲＧは腎臓および肺において転写されるが、骨においては転写されない。マウスオステオカルシンクラスターの３つの遺伝子は２つの異なる時間的発現形式を有する。ＯＲＧの転写は最初にマウス胚において早い１０．５日の妊娠初期で開始される。ＯＧ１およびＯＧ２の転写は、骨形成が始まる１５．５日に開始する。４．４ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１：骨芽細胞分化の転写活性化因子骨芽細胞は骨形成細胞である。骨芽細胞特異的遺伝子発現および分化の分子的基礎は知られていない。オステオカルシンプロモーターにおいてＯＳＥ２と呼ばれる骨芽細胞特異的シス作用エレメントは以前に同定された。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１をコードするＣＤＮＡがクローン化され、そのタンパク質はＯＳＥ２に結合する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、発達中骨格の間葉細胞凝縮において開始され、その後骨芽細胞系統の細胞に厳しく限定され、ＢＭＰ７およびビタミンＤ₃ により調節される。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は骨芽細胞において発現された複数の遺伝子に結合し、その発現を調節する。最後に、非骨芽細胞におけるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の強制発現により、基本的な骨芽細胞特異的遺伝子の発現が誘導される。この研究により、骨芽細胞分化の調節剤として作用することが示された骨芽細胞特異的転写因子の最初の同定が示される。４．５アフィニティクロマトグラフィーアフィニティクロマトグラフィーは、一般的に、リガンドまたは抗体などの物質によるタンパク質の認識に基づく。カラム物質は、活性化ダイなどの結合分子を、例えば不溶性マトリックスなどに共有結合することにより合成し得る。次いで、カラム物質を、溶液から所望の物質を吸収させる。次に、条件を、結合が生じず、基質が溶出される状態へ変化させる。成功したアフィニティクロマトグラフィーの必要条件は、１）マトリックスは目的の分子を特異的に吸収しなければならない、２）他の不純物は吸収されない、３）リガンドはその結合活性を変化させることなく結合していなければならない、４）リガンドはマトリックスに十分に強力に結合していなければならない、および５）分解することなく目的の分子を溶出できなければならない。本発明の好ましい実施形態は、溶液からの抗体の精製におけるアフィニティクロマトグラフィー法であり、ここでマトリックスは、セファロースＣＬ６ＢまたはＣＬ４Ｂに共有結合した、例えばＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドエピトープを含む。このマトリックスは、本発明の抗体に直接結合し、塩、ＧｕＨＣｌ、ｐＨ、または尿素などの適当な勾配を用いた溶出により分離が可能となる。本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１エピトープへの抗体（モノクローナル抗体を含む）を本明細書で記載し、これらのペプチドまたはその免疫学的交差反応変異体を精製する免疫吸着法の使用も含まれる。この目的のために有用な抗体は、一般的に、以下で開示した技術により調製し得るか、またはモノクローナル（例えば、米国特許第４，５１４，４９８号および４，７４０，４６７号参照）および選択した所望のポリペプチドと反応するものの製造で当分野で一般的に公知であることが提唱される。免疫親和性クロマトグラフィー媒体、マトリックスおよびカラムの開発は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来ポリペプチドおよび／または抗体の単離および精製に特に有用であり得る。４．６核酸輸送およびＤＮＡトランスフェクション法ある実施形態において、本明細書で開示した核酸断片を用いて適当な宿主細胞をトランスフェクトすることが考えられる。細胞へのＤＮＡの導入法は当業者によく知られている。発現構築物を培養哺乳動物細胞に転移するいくつかの非−ウイルス法が本発明により考えられる。これらはリン酸カルシウム沈降法(ＧｒａｈａｍおよびＶａｎＤｅｒＥｂ、１９７３；ＣｈｅｎおよびＯｋａｙａｍａ、１９８７；Ｒｉｐｐｅｅｔａｌ．、１９９０)ＤＥＡＥ−デキストラン（Ｇｏｐａｌ、１９８５）、電気穿孔（ＷｏｎｇおよびＮｅｕｍａｎｎ、１９８２；Ｆｒｏｍｍｅｔａｌ．、１９８５；Ｔｕｒ −Ｋａｓｐａｅｔａｌ．、１９８６；Ｐｏｔｔｅｒｅｔａｌ．、１９８４）、直接的マイクロインジェクション（Ｃａｐｅｃｃｈｉ、１９８０；ＨａｒｌａｎｄおよびＷｅｉｎｔｒａｕｂ、１９８５）、ＤＮＡをのせたリポソーム（ＮｉｃｏｌａｕおよびＳｅｎｅ、１９８２；Ｆｒａｌｅｙｅｔａｌ．、１９７９）およびリポフェクタミン−ＤＮＡ複合体、細胞超音波（Ｆｅｃｈｈｅｉｍｅｒｅｔａｌ．、１９８７）、高速マイクロ発射体を用いた遺伝子衝撃（Ｙａｎｇｅｔａｌ．、１９９０）、およびレセプター仲介トランスフェクション（Ｃｕｒｉｅｌｅｔａｌ．、１９９１；Ｗａｇｎｅｒｅｔａｌ．、１９９２；ＷｕおよびＷｕ、１９８７；ＷｕおよびＷｕ、１９８８）を含む。これらの技術をｉｎｖｉｖｏまたはｅｘｖｉｖｏ使用に良好に適合させ得る。さらに、レトロウイルス、バキュロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ワクチンウイルス、ヘルペスウイルス等を含むウイルスベクター（Ｌｕｅｔａｌ．、１９９３；ＥｇｌｉｔｉｓおよびＡｎｄｅｒｓｏｎ、１９８８；Ｅｇｌｉｔｉｓｅｔａｌ．、１９８８）の使用は当分野でよく知られており、本明細書で詳しく記載する。４．７リポソームおよびナノカプセル特定の実施形態において、発明者は特定のペプチドまたは核酸断片の宿主細胞への導入にリポソームおよび／またはナノカプセルの使用を考える。特に、本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドは、ＤＭＳＯと共に溶液中での運搬用に製剤化またはリポソームに封入し得る。かかる製剤は、本明細書で開示した核酸、ペプチドおよび／または抗体の医薬的に許容される製剤の導入に好ましくあり得る。リポソームの形成および使用は、一般的に当業者に公知である（例えば、Ｃｏｕｖｒｅｕｒｅｔａｌ．、１９９７；Ｃｏｕｖｒｅｕｒ、１９８８参照、これは細胞内細菌感染および疾病の標的抗菌療法におけるリポソームおよびナノカプセルの使用を記載する）。最近、血清安定性および循環半減期が亢進したリポソームが開発された（ＧａｂｉｚｏｎおよびＰａｐａｈａｄｊｏｐｏｕｌｏｓ、１９８８；ＡｌｌｅｎおよびＣｈｏｕｎ、１９８７）。リポソームは、Ｔ細胞懸濁液、他の方法によるトランスフェクションに通常耐性である多くの細胞型（肝細胞一次培養物およびＰＣ１２細胞を含む）で良好に使用されてきた（Ｒｅｎｎｅｉｓｅｎｅｔａｌ．、１９９０；Ｍｕｌｌｅｒｅｔａｌ．、１９９０）。さらに、リポソームは、ウイルス基本輸送系に典型的なＤＮＡ長の制限がない。リポソームは、遺伝子、薬物（ＨｅａｔｈおよびＭａｒｔｉｎ、１９８６；Ｈｅａｔｈｅｔａｌ．、１９８６；Ｂａｌａｚｓｏｖｉｔｓｅｔａｌ．、１９８９、放射性治療剤（Ｐｉｋｕｌｅｔａｌ．、１９８７）、酵素（Ｉｍａｉｚｕｍｉｅｔａｌ．１９９０ａ；Ｉｍａｉｚｕｍｉｅｔａｌ．１９９０ｂ）、ウイルス（ＦａｌｌｅｒおよびＢａｌｔｉｍｏｒｅ、１９８４）、転写因子およびアロステリック効果基（ＮｉｃｏｌａｕおよびＧｅｒｓｏｎｄｅ、１９７９）を種々の培養細胞系および動物に効果的に導入するために使用されてきた。さらに、リポソーム仲介薬物輸送の効果を試験するいくつかの成功した臨床試験が考えられる（Ｌｏｐｅｚ−Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎｅｔａｌ．、１９８５ａ；１９８５ｂ；Ｃｏｕｎｅ、１９８８；Ｓｃｕｌｉｅｒｅｔａｌ．、１９８８）。さらに、いくつかの研究により、リポソームの使用は、全身送達後、自己免疫応答、毒性または性腺局在とは関連していないことが示唆される（ＭｏｒｉおよびＦｕｋａｔｓｕ、１９９２）。リポソームは水性媒体に拡散したリン脂質から、および自発的に多重ラメラ同心円二重膜小胞（また多重ラメラ小胞（ＭＬＶ）とも呼ばれる）から形成される。ＭＬＶは一般的に直径か２５ｎｍから４μｍである。ＭＬＶの超音波により、直径の範囲が２００−５００Åでありコアに水溶液を含む、小さな単ラメラ小胞（ＳＵＶ）が形成される。リポソームは、細胞膜に多くの点で似ており、ペプチド組成物の担体として本発明と関連した使用に考えられる。それらは、水および脂質の両方に可溶性な物質を、すなわちそれぞれ水性空間およびそれ自体の二重層に捉えることができるため広く適用できる。薬物を含有するリポソームはリポソーム製剤を選択的に修飾することにより有効成分の部位特異的輸送に使用され得る。Ｃｏｕｖｒｅｕｒｅｔａｌ．（１９７７；１９８８）の教義に加えて、以下の情報を、リポソーム製剤の調製に使用し得る。リン脂質は、脂質と水のモル比により、水中に拡散したリポソーム以外の種々の構造を形成できる。低率におけるリポソームが好ましい構造である。リポソームの物理的特性は、ｐＨ、イオン強度および二価カチオンの存在に依存する。リポソームはイオン性および極性物質に対して低い透過性を示すことができるが、高温では、そ透過性を顕著に変化させる相転移を受ける。相転移は、ゲル状態として知られる緊密に充填され、秩序ある構造からの、液体状態として知られる緩く充填され、より秩序の低い構造への変化を含む。これは特徴的な相転移温度で起こり、結果としてイオン、糖および薬物への透過性が高まる。温度に加えて、タンパク質にさらすこともリポソームの透過性を変化できる。シトクロムｃなどの特定の可溶性タンパク質は、二重膜を変形および貫通し、よって透過性に変化が生じる。コレステロールは、リン脂質をよりしっかりと詰めることによりタンパク質のこの貫通を阻害する。抗生物質および阻害剤に最も有用なリポソーム形成はコレステロールを含むと考えられる。溶質の捕獲能は、異なる型のリポソーム間で変化する。例えば、ＭＬＶは溶質を捉えるのに中程度に効力があるが、ＳＵＶは極めて効果的でない。ＳＵＶは均一性およびサイズ分布再現性の利点を提供するが、サイズおよび捕獲効力間での妥協は、大きい単ラメラ小胞（ＬＵＶ）により提供される。これらはエーテル蒸発により調製され、溶質捕獲はＭＬＶよりも３から４倍の効力がある。リポソームの特徴に加えて、化合物捕獲における重要な決定因子は、化合物それ自体の物理化学的特性である。極性化合物は、水性空間において捕獲され、非極性化合物は小胞の脂質二重層に結合する。極性化合物は透過によりまたは二重層が崩壊した時に放出されるが、非極性化合物は、温度または脂質タンパク質にさらすことにより崩壊することがなければ、二重層に付着したままである。どちらの型も相転移温度で最大の流出速度を示す。リポソームは細胞と４つの異なる機構により相互作用する。マクロファージおよび好中球などの網膜内皮系の食細胞によるエンドサイトーシス、非特異的な弱疎水性または静電力、または細胞表面成分との特異的相互作用による、細胞表面への吸着、リポソームの脂質二重膜の細胞質への挿入による結漿細胞膜との融合、リポソーム含有物の細胞質への同時放出、およびリポソーム含有物とは全く関係なく、リポソーム脂質の細胞または亜細胞膜への移動、またはその逆。どの機構が作用し、１つ以上が同時に作用し得るかを決定することはしばしば困難である。静脈内注入リポソームの結果および性質は、例えばサイズ、流度および表面電荷などの物理的特性に依存する。それらはその組成物により数時間または数日間存続し得、血液中の半減期は数分から数時間の範囲である、ＭＬＶおよびＬＵＶなどの大きいリポソームは、網膜内皮系の食細胞により急速に取り込まれるが、循環系の生理機能はほとんどの部位でかかる大きな種の排泄を抑制する。それらは大きな開口または孔が毛細血管内皮、例えば肝臓または脾臓などのシヌソイドに存在する場所にのみ存在できる。従って、これらの器官は、取り込みの優勢部位である。一方、ＳＵＶは広範な組織分布を示すが、肝臓および脾臓において依然高度に隔離されている。一般的に、このｉｎｖｉｖｏでの行動により、リポソームの有効な標的化はその大きなサイズが接近できる器官および組織にのみ限定される。これらは血液、肝臓、脾臓、骨髄およびリンパ器官を含む。標的化は、一般的に、本発明に関して制限ではない。しかし、特異的標的化を所望であれば、これを達成する方法を利用できる。抗体を使用してリポソーム表面に結合させ、抗体およびその薬物含有物を特定の細胞型表面に存在する特異的抗原性レセプターに指向することができる。炭水化物決定基（細胞−細胞認識、相互作用および癒着に役割を果たす糖タンパク質または糖脂質細胞表面成分）もまた認識部位として使用し得る。なぜならリポソームを特定の細胞型に指向させる効力を有するからである。ほとんど、リポソーム製剤の静脈内注射を使用するが、他の投与経路もまた考えられる。また、本発明は、本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドの医薬的に許容されるナノカプセル製剤を提供する。ナノカプセルは一般的に、安定および再現可能な方法で化合物を取り込むことができる(Ｈｅｎｒｙ−Ｍｉｃｈｅｌｉｎｅｔａｌ．、１９８７)。細胞内ポリマー過充填による副作用を回避するために、かかる超微粒子（サイズ約０．１μｍ）はｉｎｖｉｖｏで分解できるポリマーを用いて設計する。これらの要求に合致する生物分解可能なポリアルキル−シアノアクリレートナノ粒子は本発明の使用に考えられ、かかる粒子は記載のように（Ｃｏｕｖｒｅｕｒｅｔａｌ．、１９８４；１９８８）容易に製造し得る。４．８ＯＳＦ２／ＣＢＦＡ１−由来エピトープの発現Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１由来エピトープの発現に、１つの適当なクローンまたは複数のクローンが得られれば、それらが天然配列または遺伝子的に修飾されたものであれ、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープの組換え調製における発現系を調製し得る。原核または真核細胞系における発現用のＤＮＡ断片工学は、組換え発現において当業者に一般的に公知の技術により実施し得る。実質的にどの発現系もＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープの発現に使用し得ると信じられている。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープは、真核発現系において良好に発現され得るが、細菌発現系が全目的においてＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープの調製に好ましくあり得るとも考えられる。全長、切断短縮、部位特異的修飾、変異、または誘導化Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ペプチドをコードするＤＮＡ配列は、細菌系において別々に発現され得、コード化タンパク質がβ−ガラクトシダーゼ、ユビキノン、ＳｃｈｉｓｔｏｓｏｍａｊａｐｏｎｉｃｕｍグルタチオンＳ− 転移酵素、Ｓ．ａｕｒｅｕｓプロテインＡ、マルトース結合タンパク質等との融合物として発現される。原核発現系、および特に細菌発現系は究極的には、使用し易さ、およびそこで得られる物質の量の点で、真核発現よりも利点を有すると信じられている。かかるエピトープをコードするＤＮＡ断片を用いた宿主細胞の形質転換は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープペプチドを得る簡便な方法を提供すると提唱されている。ゲノムまたは染色体外配列は適当な発現ベクター内に存在し、コードタンパク質を発現できる適当な条件下に存在する場合、真核発現に適当であり、宿主細胞は当然核酸転写物を処理し、続くタンパク質への翻訳のための機能性ｍＲＮＡを産生する。ほとんどの真核発現系もＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープに使用し得ることが（例えば、バキュロウイルス基本、グルタミンシンターゼ基本またはジヒドロ葉酸還元酵素基本系を使用し得る）同様に信じられている。しかし、好ましい実施形態において、複製起源および効果的な真核プロモーターを取り込んだプラスミドベクター、例えばｐＣＭＶ関連種の真核ベクター例えばｐＣＭＶ５か最も有用であると考えられる。このように発現させるために、コード配列をプロモーターに隣接およびその制御下に配置する。当分野ではコード配列をかかるプロモーターの制御下に置くために、タンパク質の転写リーディングフレームの転写開始部位の５’端を、選択したプロモーターの「下流」（すなわち３’の）約１ないし約５０ヌクレオチドに配置すると理解される。真核発現を考える場合、もし元のクローン化断片内に含まれないのであれば、典型的には転写単位（これはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープ−コードＤＮＡ配列、適当なポリアデニル化部位（例えば、５’−ＡＡＴＡＡＡ−３’）を含む）に取り込むことを所望する。典型的には、ポリ−Ａ付加部位は、転写終結の前の位置であるタンパク質の終結部位の「下流」約３０−約２０００ヌクレオチドに位置する。実質的に任意の一般的に使用される宿主細胞を、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープの発現と関連づけて本明細書に従って使用できると考えられる。例は、例えば２３９、ＡｔＴ−２０、ＨｅｐＧ２、ＶＥＲＯ、ＨｅＬａ、ＣＨＯ、ＷＩ３８、ＢＨＫ、ＣＯＳ−７、ＲＩＮおよびＭＤＣＫ細胞系などの真核発現に典型的に使用される細胞系を含む。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープペプチドは「過剰発現」、すなわちヒト細胞における天然発現に比べて、またはＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープ−コードＤＮＡ断片を含む組換え宿主細胞における他のタンパタ質の発現に比べて高いレベルで発現され得ると考えられる。かかる過剰発現は、放射標識および／またはタンパク質精製を含む種々の方法により評価し得る。しかし、単純で直接的な方法が好ましく、例えば、ＳＤＳ／ＰＡＧＥおよびタンパク質染色またはウエスタンブロット、次いで定量分析、例えば得られたゲルまたはブロットの濃度測定を含む。天然Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来ペプチド−産生動物細胞におけるレベルと比較して組換えポリペプチドのレベルの特異的な増加は、過剰発現の指標であり、宿主細胞により産生された他のタンパク質に関連して特異的タンパク質が相対的に多く、例えばゲル上で見ることができる。本明細書で使用したように、「工学化」または「組換え」細胞は、例えばＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来エピトープペプチドをコードする遺伝子などの組換え遺伝子を導入した細胞を意味する。ゆえに、工学化細胞は、組換え導入遺伝子を含まない天然に存在する細胞から識別できる。従って工学化細胞は、ヒトの手を用いて導入された遺伝子を有する細胞である。組換え導入遺伝子は、ｃＤＮＡ遺伝子（すなわち、イントロンを含まない）、ゲノム遺伝子のコピーの形であるか、またはプロモーターに隣接し、特定の導入遺伝子と天然に関連しない遺伝子を含む。一般的に言えば、組換え遺伝子として遺伝子のｃＤＮＡ型を使用することがより簡便であり得る。ｃＤＮＡ型の使用により、遺伝子のサイズは、一般的にはるかに小さく、標的化細胞のトランスフェクトにゲノム遺伝子（これは典型的にｃＤＮＡ遺伝子よりも１桁まで大きい次元である）よりも容易に使用できるという点で利点があると信じられている。しかし、発明者は、所望であれば特定遺伝子のゲノム型を使用する可能性を除外しない。１つ以上の外来遺伝子の組換え型の導入が必要とされる場合、遺伝子を、工学に選択した細胞型において遺伝子発現を効果的に指向するプロモーターの制御下になるように導入することが重要である。一般的に、目的の遺伝子の構成的（定常）発現の可能なプロモーターを使用することを所望する。よく使用される構成プロモーターは、一般的に起源がウイルスであり、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーター、ラウス肉腫の長い末端反復（ＬＴＲ）配列およびＳＶ４０初期遺伝子プロモーターを含む。これらの構成プロモーターの使用により、導入遺伝子の高く、定常な発現レベルが確実となる。発明者は、目的の導入遺伝子からの発現レベルは、おそらく染色体ＤＮＡの組換え遺伝子の挿入部位の機能として、種々のクローンにより異なり得ることを認識した。従って、特定の組換え遺伝子の発現レベルは、各トランスフェクション実験由来の異なるクローンを評価することにより選択できる；その系を一旦選択すれば、構成プロモーターは所望レベルの発現が永久的に維持されることを確実にする。また、工学に使用した細胞型に特異的なプロモーター、例えばインスリノーマ細胞系におけるインシュリンプロモーターまたは前下垂体細胞系におけるプロラクチンまたは成長ホルモンプロモーターを使用することも可能である。４．９ペプチドおよび抗体組成物の検出あるポリペプチドが典型的な染色法（例えばクマーシーブルーまたは銀染色、これは通常ＳＤＳ／ＰＡＧＥゲルの解析に使用される）の検出限界以下の量で存在し得るか、またはその存在は類似Ｍ_rの不活性ポリペプチドによりマスクされ得ることがさらに理解される。本発明の通常の実施には必要でないが、他の検出法は有利には目的の特定のポリペプチドの可視化に使用され得ると考えられる。本明細書に記載の、免疫学に基づいた技術、例えば酵素−、放射標識−または蛍光標識抗体を用いたウエスタンブロットはこの点で特に有用であると考えられる。また、本発明のペプチドは、本発明の抗体を、かかる一次抗体に親和性を有する二次抗体と組合せて用いて検出され得る。二次抗体は酵素−または放射標識、または別に、蛍光−またはコロイド金標識し得る。かかる二段階二次抗体技術の標識および検出法は、当業者にはよく知られている。４．１０イムノアッセイ記載したように、天然および合成の本発明のペプチドおよびペプチドエピトープは、免疫原として（例えば、ワクチン開発と関連して）、または反応性抗体の検出のためのイムノアッセイにおいて抗原として有用である。初めにイムノアッセイについて、その最も単純かつ直接的な意味において、本発明の好ましいイムノアッセイは、当業者に公知のように、種々の型の酵素結合イムノソルベントアッセイ（ＥＬＩＳＡ）を含む。しかし、開示したタンパク質およびペプチドの有用性は、かかるアッセイに限定されず、他の有用な実施形態はＲＩＡおよび他の非−酵素結合抗体結合アッセイおよび方法を含むことが容易に理解される。好ましいＥＬＩＳＡアッセイにおいて、新規タンパク質抗原配列を取り込んだポリペプチドを、選択表面、好ましくはタンパク質親和性を示す表面、例えばポリスチレンマイクロタイタープレートのウエルに固定する。不完全に吸着した物質を取り除くために洗浄した後、次いで、一般的に、試験抗血清に関して抗原性的に中性であることが知られている非特異的タンパク質、例えばウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）またはカゼインをウエル上で結合すなわち被覆することを所望する。これにより、固定表面上の非特異的吸着部位の遮断が可能となり、従って抗血清の表面上での非特異的結合により生じるバックグラウンドは減少する。抗原性物質をウエルに結合させ、非反応性物質で被覆してバックグラウンドを減少させ、洗浄して非結合物質を除去した後、固定表面を、試験する抗血清または臨床的または生物学的抽出物と、免疫複合体（抗原／抗体）が形成されやすい仕様で接触させる。かかる条件は好ましくは、抗血清を希釈剤（例えばＢＳＡ、ウシガンマグロブリン（ＢＧＧ）およびリン酸緩衝液（ＰＢＳ）／Ｔｗｅｅｎ（登録商標））での希釈を含む。これらの添加剤はまた、非特異的バックグラウンドの減少に寄与する。次いで、層状の抗血清を例えば２−４時間、好ましくは２５−から約２７℃の温度でインキュベートする。インキュベート後、抗血清−接触表面を洗浄して非−免疫複合体物質を除去する。好ましい洗浄方法は、例えばＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（登録商標）またはホウ酸緩衝液などの溶液での洗浄を含む。試験サンプルと結合抗原間の特異的免疫複合体の形成、次いで洗浄後、免疫複合体形成の頻度および量を、複合体を一次抗体に特異的な二次抗体にさらすことにより決定し得る。もちろん、試験サンプルは典型的にはヒト起源であり、二次抗体は好ましくはヒト抗体に特異性を有する抗体である。検出法を提供するために、二次抗体は好ましくは、適当な発色物質とのインキュベート時に発色するといったシグナルを産生する、酵素標識などの結合した検出可能な標識を有する。従って、例えば、接触し、抗血清−結合表面をウレアーゼまたはペルオキシダーゼ−コンジュゲート抗ヒトギグ（ｇｉｇ）と共に、一定時間および免疫複合体形成に適した条件下、インキュベートすることを所望する(例えば、ＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ（登録商標）などのＰＢＳ−含有溶液中２時間室温でインキュベート)。二次標識または酵素−標識抗体と共にインキュベートし、次いで洗浄して非結合物質を除去した後、ペルオキシダーゼの場合には酵素標識として、例えば尿素およびブロモクレゾール紫などの発色基質または２，２秩｜アジノ−ジ−（３− エチル−ベンズチアゾリン−６−スルホン酸［ＡＢＴＳ］およびＨ₂Ｏ₂と共にインキュベートすることにより標識の量を定量した。次いで、定量は、例えば可視スペクトル分光光度計を用いて発色度を測定することにより実施する。４．１１免疫沈降法本発明の抗体は免疫沈降によるＯｓｆ２／Ｃｂｓ１ポリペプチド抗原の単離に特に有用である。免疫沈降は複合体混合物からの標的抗原成分の分離を含み、微量のタンパク質を識別および単離するために使用する。別の実施形態において、本発明の抗体は２つの抗原の近接した並置に有用である。これは、酵素−基質対などの抗原の局在濃度の上昇に特に有用である。関連した実施形態において、本発明の抗体は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の活性の調節に有用である。抗体と抗原性組成物間の結合の検出は、放射能標識抗体または別に、それから誘導した放射能−標識Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドも用いることにより達成され得る。また、ビオチン−標識抗体を用いたアッセイもまた記載（ＢａｙｅｒおよびＷｉｌｃｈｅｋ、１９８０）のように当分野でよく知られている。４．１２ウエスタンブロット本発明の組成物は、イムノブロットまたはウエスタンブロット解析に非常に有用である。抗体は、高親和性一次試薬として、ニトロセルロース、ナイロンまたはその組合せなどの固体支持体上に固定したタンパク質の同定に使用され得る。免疫沈降と組合せて、ゲル電気泳動後、これらは１段階試薬として、抗原の検出に使用し得、これに対して抗原の検出に使用した二次試薬が負のバックグラウンドを引き起こす。これは実験した抗原が免疫グロブリン（免疫グロブリン結合細菌細胞壁成分の使用を除外する）であり、実験した抗原が検出剤と交差反応する、またはそれらは交差反応シグナルとして同じ相対分子量で移動する場合、特に有用である。ウエスタンブロットと組合せて使用する免疫学に基づく検出法は、種々のペプチド部分に対してこの点で特に有用であると考えられる酵素−、放射標識−または蛍光標識二次抗体を含む。４．１３スクリーニングアッセイ形質転換した宿主細胞を、天然および人工由来の化合物または混合物のスクリーニングに使用し、本発明のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチドと複合体を形成できるものを選択し得る。これは、阻害または崩壊、またはさらにＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の骨芽細胞分化調節能を亢進する化合物の探索に有用であり得る。効果的な製剤は、特定のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１のエピトープと複合体を形成する化合物（例えば植物、動物および海洋源などの天然源から単離した化合物、および種々の合成化合物を含む）を同定することにより開発され得ると考えられる。かかる方法で試験し得る天然またはヒトの手による化合物はまた、種々のミネラルおよびタンパク質、ペプチドまたは抗体を含み得る。４．１４ポリペプチドおよびＤＮＡをコードするポリペプチドの変異ある実施形態において、変異ポリペプチドおよび／またはそれらをコードするポリヌクレオチドを調製することが望ましい。変異させる所望のペプチドの構造が解析されれば、生物学的特性が変化しおよび特に転写因子活性が上昇、ペプチド安定性が増加および／または毒性が軽減された変異ペプチド産生のために、１つ以上の変異をポリペプチドシークエンサー、また、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１−由来ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入することがしばしば望ましくあり得る。このために、本発明は、本発明のチャンネル−阻害ポリペプチドをコードする核酸断片の部位−特異的変異法およびランダム変異の両方を包含する。本明細書で記載のアッセイ法を用いて、次いで、これらの産生体から生じたチャンネル阻害活性が亢進し、ペプチド安定性が上昇し、および／または毒性が軽減した変異体を同定し得る。ポリペプチドをコードするＤＮＡ断片の変異法は、当業者によく知られている。修飾は、ランダム、または部位特異的突然変異誘発法により作製し得る。核酸は、配列から１つ以上のヌクレオチドの付加または欠失によりその構造を変化させることにより修飾され得る。変異は、特定のポリペプチドの配列内に１つ以上の変異を有するオリゴヌクレオチドを合成するなど当分野で公知の任意の技術に従って実施し得るが、これに限定されない。特に、部位特異的突然変異誘発は、基礎ＤＮＡの特異的変異による個々のペプチドまたは生物学的機能等価タンパク質またはペプチドの調製に有用な技術である。さらにこの技術により、１つ以上のヌクレオチド配列変化をＤＮＡに導入することにより、例えば、１つ以上の前記の考慮を取り込んだ配列変異体を容易に調製および試験できる。部位特異的突然変異誘発により、所望の変異のＤＮＡ配列をコードする特異的オリゴヌクレオチド配列、並びに十分な数の隣接ヌクレオチドの使用による変異体の産生が可能となり、横切る欠失接合部位の両面上で安定な二本鎖を形成するに十分なサイズおよび配列複雑度を有するプライマー配列が提供される。典型的に、約１７から約７５のヌクレオチドまたはそれ以上の長さのプライマーか好ましく、配列の接合部位の両面上の約１０から約２５またはそれ以上の残基を変化できる。一般的に、部位特異的突然変異誘発の技術は種々の刊行物に例示してあるように当分野でよく知られている。認識されるように、技術は典型的に一本鎖および二本鎖形の両方で存在するファージベクターを使用する。部位特異的突然変異誘発に有用な典型的なベクターは、例えばＭ１３ファージなどのベクターを含む。これらのファージは容易に市販で入手でき、その使用は一般的に当業者によりよく知られている。二本鎖プラスミドはまた、目的の遺伝子をプラスミドからファージに移す段階を削除した部位特異的突然変異誘発に慣用的に使用される。一般的に、本明細書に記載の部位特異的突然変異誘発は、初めに一本鎖ベクターを得るまたはその配列内に所望のペプチドをコードするＤＮＡ配列を含む二本鎖ベクターの二本鎖を融解して離すことにより実施する。所望の変異配列を有するオリゴヌクレオチドプライマーを一般的には合成的に調製する。次いでこのプライマーを、一本鎖ベクターとアニールさせ、大腸菌ポリメラーゼＩクレノウフラグメントなどのＤＮＡポリマー化酵素にさらし、変異を有する鎖の合成を完成させる。従って、ヘテロ二本鎖が形成され、１つの鎖は元の非変異配列をコードし、二番目の鎖は所望の変異を有する。次いで、このヘテロ二本鎖ベクターを使用して大腸菌細胞などの適当な細胞を形質転換またはトランスフェクトし、変異配列を有する組換えベクターを含むクローンを選択する。変異誘発性オリゴヌクレオチドを取り込んだクローンを増やす遺伝子選択スキームはＫｕｎｋｅｌｅｔａｌ．（１９８７）により考案された。また、市販で入手可能な熱安定性酵素、例えばＴａｑポリメラーゼと共にＰＣＲ（登録商標）を使用して、変異誘発性オリゴヌクレオチドプライマーを増幅ＤＮＡフラグメントに取り込み得、次いで、適当なクローニングまたは発現ベクターにクローン化できる。Ｔｏｍｉｃｅｔａｌ．（１９９０）およびＵｐｅｎｄｅｒｅｔａｌ．（１９９５）のＰＣＲ（登録商標）−仲介変異法は、かかるプロトコールの２つの例を提供する。熱安定性ポリメラーゼに加えて熱安定性リガーゼを使用したＰＣＲ（登録商標）もまたリン酸化変異オリゴヌクレオチドの増幅ＤＮＡフラグメントへの取り込みに使用され得、次いで適当なクローニングまたは発現ベクターにクローン化し得る。Ｍｉｃｈａｅｌ（１９９４）により記載の変異法はかかるプロトコールの例を提供する。部位特異的突然変異誘発を用いて選択したペプチド−コードＤＮＡ断片の配列変異体の調製は、効力的に有用な種を産生する方法として提供され、限定する意図はなく、それらをコードするペプチドおよびＤＮＡ配列の配列変異体が得られ得る他の方法が存在する。例えば、所望のペプチド配列をコードする組換えベクターは、ヒドロキシルアミンなどの変異誘発剤で処理し得、配列変異体が得られる。本明細書で使用したように、「オリゴヌクレオチド部位特異的突然変異誘発法」なる語は、鋳型−依存性プロセスおよびベクター−仲介増殖（これは結果的にその最初の濃度に比較して特異的核酸分子の濃度が上昇する、または増幅などの検出可能なシグナルの濃度の上昇を引き起こす）を意味する。本明細書で使用したように、「オリゴヌクレオチド部位特異的突然変異誘発法」なる語は、プライマー分子の鋳型−依存性伸長を含むプロセスを意味する。鋳型依存性プロセスなる語は、ＲＮＡまたはＤＮＡ分子（ここで新規に合成された核酸鎖の配列は相補的塩基対のよく知られている原則により指示される）の核酸合成を意味する（例えばＷａｔｓｏｎ、１９８７参照）。典型的に、ベクター仲介法は、核酸フラグメントのＤＮＡまたはＲＮＡベクターへの導入、ベクターのクローン増殖、および増殖した核酸フラグメントの回収を含む。かかる方法の例は、米国特許第４，２３７，２２４号により提供され、その全体を引用してここに明記して援用する。サンプル中に存在する目的の標的配列を増幅する多くの鋳型依存性プロセスが利用できる。最もよく知られている増幅法の１つは、複製連鎖反応（ＰＣＲ（登録商標））であり、これは米国特許第４，６８３，１９５号、４，６８３，２０２号および４，８００，１５９号（各々その全体を引用してここに明記して援用する）に記載されている。簡潔には、ＰＣＲ（登録商標）において、標的配列の反対の相補鎖上の領域に相補的な２つのプライマー配列を調製する。過剰のデオキシヌクレオチド三リン酸を、ＤＮＡポリメラーゼ（例えばＴａｑポリメラーゼ）と共に反応混合物に加える。もし標的配列がサンプル中に存在すれば、プライマーは標的に結合し、ポリメラーゼはヌクレオチド上に追加することによりプライマーを標的配列に沿って伸長する。反応混合物の温度を上昇または下降させることにより、伸長プライマーは標的から解離し、反応産物を形成し、過剰なプライマーは標的および反応産物に結合し、プロセスを反復する。好ましくは、逆転写ＰＣＲ（登録商標）増幅法は、増幅されたｍＲＮＡの量を定量するために行い得る。複製連鎖反応法は当分野でよく知られている。他の増幅法はリガーゼ鎖反応（ＬＣＲと呼ぶ）であり、欧州特許出願公開番号３２０，３０８号に開示され、その全体を引用してここに援用する。ＬＣＲにおいて、２つの相補的プローブ対を調製し、標的配列の存在下で、各対は隣接する標的の逆の相補鎖に結合する。リガーゼの存在下、２つのプローブ対は連結して単一の単位を形成する。温度循環により、ＰＣＲ（登録商標）のように、結合連結単位は標的から解離し、次いで、過剰なプローブ対のライケーションの「標的配列」として作用する。米国特許第４，８８３，７５０号（その全体を引用してここに明記して援用する）は、標的配列へのプローブ対の結合におけるＬＣＲに類似した別の増幅法を記載する。Ｑβレプリカーゼ（登録商標）（国際特許出願公開番号ＰＣＴ／ＵＳ８７／００８８０に記載、その全体を引用してここに援用する）はまた、本発明においてまた別の増幅法として使用され得る。この方法では、標的の領域と相補的な領域を有するＲＮＡの複製配列を、ＲＮＡポリメラーゼの存在下、サンプルに加える。ポリメラーゼは複製配列を複写し、次いで検出できる。等温増幅法（制限エンドヌクレアーゼおよびリガーゼを用いて、制限部位の１つの鎖にヌクレオチド５’−［α−チオ］三リン酸を含む標的分子の増幅を達成する（Ｗａｌｋｅｒｅｔａｌ．、１９９２、その全体を引用してここに援用する）はまた、本発明における核酸の増幅に有用であり得る。鎖置換増幅（ＳＤＡ）は別の核酸等温増幅法であり、これは複数回の鎖置換および合成、すなわちニック翻訳を含む。修復鎖反応（ＲＣＲ）と呼ばれる類似の方法は別の増幅法であり、本発明において有用であり得、増幅に標的化した領域を介していくつかのプローブとアニールさせ、次いで、４つの塩基のわずか２つが存在する修復反応を行うことに関する。他の２つの塩基は、容易に検出できるようにビオチニル化した誘導体として添加し得る。類似の方法はＳＤＡで使用される。配列はまた、環状プローブ反応（ＣＰＲ）を用いて検出できる。ＣＰＲにおいて、非−Ｃｒｙ−特異的ＤＮＡの３’および５’端配列およびＣｒｙ−特異的ＲＮＡの内部配列を有するプローブを、サンプル中に存在するＤＮＡにハイブリダイズさせる。ハイブリダイズ時に、反応をＲＮａｓｅＨで処理し、プローブの産物は、消化後に放出されるシグナルを産生する別の産物として同定された。元の鋳型は別の環状プローブにアニールさせ、反応を反復する。従って、ＣＰＲはプローブのｃｒｙ−特異的発現核酸へのハイブリダイゼーションにより産生されたシグナルの増幅を含む。英国特許出願番号２，２０２，３２８号および国際特許出願公開番号ＰＣＴ／ＵＳ８９／０１０２５に記載（各々その全体を引用してここに援用する）のさらに別の増幅法は、本発明に従って使用し得る。前者の出願において、「修飾」プライマーは、ＰＣＲ（登録商標）様鋳型および酵素依存性合成に使用される。プライマーは捕獲部分（例えばビオチン）および／または検出部分（例えば酵素）での標識により修飾され得る。後者の出願において、過剰の標識プローブをサンプルに加える。標的配列の存在下、プローブは結合し、触媒的に開裂する。開裂後、標的配列は無傷で放出され過剰のプローブに結合する。標的プローブの開裂は、標的配列の存在を信号する。他の核酸配列増幅法は、核酸配列基本増幅（ＮＡＳＢＡ）および３ＳＲを含む、転写基本増幅系（ＴＡＳ）（Ｋｗｏｈｅｔａｌ．、１９８９；国際出願公開番号ＷＯ８８／１０３１５、その全体を引用してここに援用する）を含む。ＮＡＳＢＡにおいて、核酸は、標準的フェノール／クロロホルム抽出、サンプルの熱変性、溶解緩衝液での処理およびＤＮＡおよびＲＮＡまたはＲＮＡの塩化グアニジニウム抽出物の単離におけるミニスピンカラムによる増幅により調製できる。これらの増幅技術はポリペプチド−特異的配列を有するプライマーにアニールさせることを含む。ポリマー化後、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドをＲＮａｓｅＨで消化し、一方、二本鎖ＤＮＡ分子を再度熱変性させる。どの場合でも一本鎖ＤＮＡは、二次ポリペプチド−特異的プライマーを添加し、次いでポリマー化することにより完全に二本鎖となる。次いで、二本鎖ＤＮＡ分子はＴ７またはＳＰ６などのポリメラーゼにより複重して転写されている。等温環状反応において、ＲＮＡは二本鎖ＤＮＡに逆転写され、一度Ｔ７またはＳＰ６などのポリメラーゼに対して転写される。得られた産物（切断短縮または完全）はポリペプチド−特異的配列を示す。欧州特許出願公開番号３２９，８２２号（その全体を引用してここに援用する）は、核酸増幅法を開示し、これは環状合成一本鎖ＲＮＡ（「ｓｓＲＮＡ」）、ｓｓＤＮＡ、および二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を含み、これは本発明に従って使用され得る。ｓｓＲＮＡは最初のプライマーオリゴヌクレオチドの最初の鋳型であり、これは逆転写酵素（ＲＮＡ−依存性ＤＮＡポリメラーゼ）により伸長する。次いで、ＲＮＡを、得られたＤＮＡ：ＲＮＡ二本鎖からリボヌクレアーゼＨ（ＲＮａｓｅＨ、ＤＮＡまたはＲＮＡの二本鎖においてＲＮＡに特異的なＲＮａｓｅ）の作用により除去する。得られたｓｓＤＮＡは二次プライマーの二次鋳型であり、これはまた鋳型に５’が相同性のＲＮＡポリメラーゼプロモーター（例えばＴ７ＲＮＡポリメラーゼ）の配列を含む。次いで、このプライマーをＤＮＡポリメラーゼ（例えば大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩの大きい「クレノウ」フラグメント）により伸長し、結果として二本鎖ＤＮＡ（「ｄｓＤＮＡ」）分子が得られ、これはプライマー間で元のＲＮＡのそれと同一の配列を有し、さらに一端にプロモーター配列を有する。このプロモーター配列は適当なＲＮＡポリメラーゼにより使用でき、ＤＮＡのＲＮＡコピーを数多く作製できる。次いで、これらのコピーはサイクルに再入し、非常に迅速な増幅がもららされる。酵素を適当に選択し、この増幅は等温的に酵素を添加せずに、各サイクルにおいて実施することができる。このプロセスが環状の性質を有するために、出発配列はＤＮＡまたはＲＮＡの形であるように選択できる。国際特許出願公開番号ＷＯ８９／０６７００（その全体を引用してここに援用する）は、プロモーター／プライマー配列の標的一本鎖ＤＮＡ（「ｓｓＤＮＡ」）へのハイブリダイゼーション、次いで配列の多くのＲＮＡコピーの転写に基づく核酸配列増幅スキームを開示する。このスキームは循環しておらず、すなわち、新規な鋳型が得られたＲＮＡ転写物から産生されない。他の増幅法は「ＲＡＣＥ」(Ｆｒｏｈｍａｎ、１９９０)、および「片面ＰＣＲ（登録商標）」（Ｏｈａｒａ、１９８９）を含み、これは当業者によく知られている。得られた「ジ−オリゴヌクレオチド」の配列を有する核酸の存在下における２（またはそれ以上）のオリゴヌクレオチドをライゲーションし、よってジ−オリゴヌクレオチド（ＷｕおよびＤｅａｎ、１９９６、その全体を引用してここに援用する）を増幅することに基づく方法はまた、本発明のＤＮＡ配列の増幅に使用し得る。４．１５リボザイム「優性ネガティブ」変異腫瘍サプレッサーを扱う他の方法はリボザイムの使用を介してである。タンパク質は伝統的に、核酸の触媒に使用されてきたが、他のクラスの巨大分子はこの努力に有用であった。リボザイムは、部位特異的な方法で核酸を開裂するＲＮＡ−タンパク質複合体である。リボザイムはエンドヌクレアーゼ活性を有する特異的な触媒ドメインを有する（ＫｉｍおよびＣｅｃｈ、１９８７；Ｇｅｒｌａｃｈｅｔａｌ．、１９８７；ＦｏｒｓｔｅｒおよびＳｙｍｏｎｓ、１９８７）。例えば、多くのリボザイムがホスホエステル転移反応を高度の特異性をもって促進し、しばしばオリゴヌクレオチド基質においていくつかのホスホエステルのわずか１つを開裂する（Ｃｅｃｈｅｔａｌ．、１９８１；ＭｉｃｈｅｌおよびＷｅｓｔｏｆ、１９９０；Ｒｅｉｎｈｏｌｄ−ＨｕｒｅｋおよびＳｈｕｂ、１９９２）。この特異性は基質は、特異的塩基対相互作用により、化学反応の前にリボザイムの内部ガイド配列（「ＩＧＳ」）に結合する要求に起因する。リボザイム触媒は元来、核酸を含む配列−特異的開裂／ライゲーション反応の一部として観察された（Ｊｏｙｃｅ、１９８９；Ｃｅｃｈｅｔａｌ．、１９８１）。例えば、米国特許第５，３５４，８５５号（引用してここに明記して援用する）は、あるリボザイムは配列特異性が公知のリボヌクレアーゼよりも大きく、ＤＮＡ制限酵素のそれに近いエンドヌクレアーゼとして作用できることを報告する。従って、遺伝子発現の配列特異的リボザイム−仲介阻害は特に、治療適用に適当であり得る（Ｓｃａｎｌｏｎｅｔａｌ．１９９１；Ｓａｒｖｅｒｅｔａｌ．、１９９０）。近年、リボザイムはそれを適用したいくつかの細胞系において遺伝子変化を顕現することが報告された、変化した遺伝子は、腫瘍遺伝子Ｈ−ｒａｓ、ｃ−ｆｏｓおよびＨＩＶの遺伝子を含んだ。この研究のほとんどは、特異的リボザイムにより開裂される特異的変異コドンに基づく標的ｍＲＮＡの修飾を含んだ。６つの基本的な種類の天然に存在する酵素的ＲＮＡが現在知られている。各々、生理学的条件下における、トランスのＲＮＡホスホジエステル結合の加水分解（従って他のＲＮＡ分子を開裂できる）を触媒できる。一般的に、酵素的核酸は、初めに標的ＲＮＡに結合することにより作用する。かかる結合は、標的ＲＮＡを開裂するように作用する分子の酵素部分に近接する酵素的核酸の標的結合部分を介して生じる。従って、酵素核酸は初めに認識し、次いで相補的塩基対を介して標的ＲＮＡに結合し、一旦正しい部位に結合すれば、酵素的に作用し、標的ＲＮＡを切断する。かかる標的ＲＮＡの戦略的開裂法は、コードタンパク質の合成を指向する能力を破壊する。酵素的核酸がそのＲＮＡ標的に結合し開裂した後、別の標的を探索するＲＮＡが放出され、繰り返し新規標的に結合および開裂できる。リボザイムの酵素的性質は、アンチセンス技術（核酸分子は単純に核酸標的に結合しその翻訳を遮断する）などの多くの技術に有利である。なぜなら、治療処置に効力を示すに必要なリボザイムの濃度はアンチセンスオリゴヌクレオチドのそれよりも低いからである。この利点はリボザイムの酵素的に作用する能力を反映する。従って、単一のリボザイム分子は、多くの分子の標的ＲＮＡを開裂できる。さらに、リボザイムは高度に特異的な阻害剤であり、阻害の特異性は標的ＲＮＡへの結合の塩基対機構に依存するだけでなく、標的ＲＮＡ開裂の機構にも依存する。開裂部位付近での単一のミスマッチ、または塩基置換は完全にリボザイムの触媒活性を消失させ得る。アンチセンス分子における類似のミスマッチはその作用を提示しない（Ｗｏｏｌｆｅｔａｌ．、１９９２）。従って、リボザイムの作用の特異性は同じＲＮＡ部位に結合しているアンチセンスオリゴヌクレオチドのそれよりも大きい。酵素的核酸分子は、ハンマーヘッド、ヘアピン、肝炎δウイルス、Ｉ群イントロンまたはＲＮａｓｅＰＲＮＡ（ＲＮＡガイド配列と関連）またはアカパンカビＶＳＲＮＡモチーフにおいて形成され得る。ハンマーヘッドモチーフの例は、Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．(１９９２)により記載されている。ヘパリンモチーフの例は、Ｈａｍｐｅｌｅｔａｌ．（欧州特許出願公開番号ＥＰ０３６０２５７）、ＨａｍｐｅｌおよびＴｒｉｔｚ（１９８９）、Ｈａｍｐｅｌｅｔａｌ．（１９９０）および米国特許第５，６３１，３５９号（引用してここに明記して援用する）により記載されている。肝炎δウイルスモチーフの例は、ＰｅｒｒｏｔｔａおよびＢｅｅｎ（１９９２）により記載され；ＲＮａｓｅＰモチーフの例は、Ｇｕｅｒｒｉｅｒ−Ｔａｋｅｄａｅｔａｌ．（１９８３）により記載され；アカパンカビＶＳＲＮＡリボザイムモチーフは、Ｃｏｌｌｉｎｓ（ＳａｖｉｌｌｅおよびＣｏｌｌｉｎｓ、１９９０；ＳａｖｉｌｌｅおよびＣｏｌｌｉｎｓ、１９９１；ＣｏｌｌｉｎｓおよびＯｌｉｖｅ、１９９３）により記載され；Ｉ群イントロンの例は、米国特許第４，９８７，０７１号（明確に引用してここに援用する）に記載されている。本発明の酵素的核酸分子に重要な全ては、１つ以上の標的遺伝子ＲＮＡ領域に相補的な特異的基質結合部位を有し、分子にＲＮＡ開裂活性を付与する基質結合部位内またはその周辺にヌクレオチド配列を有することである。従って、リボザイム構築物は本明細書で記載した特定のモチーフに限定する必要はない。ある実施形態において、本明細書で開示した配列の１つなどの、所望の標識のＲＮＡに高い特異性を示す酵素的開裂剤を産生することは重要であり得る。酵素的核酸配列分子は、好ましくは、標的ｍＲＮＡの高度に保存された配列領域に標的化する。かかる酵素的核酸分子は、必要とされる特定の細胞に外因的に送達できる。また、リボザイムは、特異的細胞へ運搬されるＤＮＡまたはＲＮＡベクターから発現できる。小さな酵素的核酸モチーフ（例えばハンマーヘッドまたはヘアピン構造）はまた外因性送達に使用し得る。これらの分子の単純な構造は、酵素的核酸分子のｍＲＮＡ構造の標的領域に侵入する能力を増加させる。また、触媒的ＲＮＡ分子は細胞内で真核プロモーターから発現できる（例えば、Ｓｃａｎｌｏｎｅｔａｌ．、１９９１；Ｋａｓｈａｎｉ−Ｓａｂｅｔｅｔａｌ．、１９９２；Ｄｒｏｐｕｌｉｃｅｔａｌ．、１９９２；Ｗｅｅｒａｓｉｎｇｈｅｅｔａｌ．、１９９１；Ｏｊｗａｎｆｅｔａｌ．、１９９；２Ｃｈｅｎｅｔａｌ．、１９９２；Ｓａｒｖｅｒｅｔａｌ．、１９９０）。当業者は任意のリボザイムは真核細胞において適当なＤＮＡベクターから発現できることを認識する。かかるリボザイムの活性は、二次リボザイムによる一次転写物からのその放出により増加できる（国際特許出願公開番号ＷＯ９３／２３５６９、および国際特許出願公開番号ＷＯ９４／０２５９５、両方引用してここに援用する；Ｏｈｋａｗａｅｔａｌ．、１９９２；Ｔａｉｒａｅｔａｌ．、１９９１；およびＶｅｎｔｕｒａｅｔａｌ．、１９９３）。リボザイムは直接加え得るか、またはカチオン脂質、脂質複合体と複合体を形成でき、リポソーム内にパッケージングし、または別に標的細胞に送達できる。ＲＮＡまたはＲＮＡ複合体はｅｘｖｉｖｏで、またはｉｎｖｉｖｏにおいて注入、エアロゾル吸入、注入ポンプまたはステントを介して、生体ポリマーへ取り込みまたは取り込まずに、関連組織に局所投与できる。リボザイムは、国際特許出願公開番号ＷＯ９３／２３５６９および国際特許出願公開番号ＷＯ９４／０２５９５（各々、引用してここに明記して援用する）に記載のように設計され得、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおいて記載の通りに試験するために合成した。かかるリボザイムはまた、送達用に最適化できる。特定の例を提供するが、当業者は他の種における等価のＲＮＡ標的物は必要時に利用できることを認識する。ハンマーヘッドまたはヘアピンリボザイムは、コンピューターホールディング（Ｊａｅｇｅｒｅｔａｌ．、１９８９）により個々に解析し、リボザイム配列は適当な二次構造に折り畳まれるかを評定し得る。結合腕および触媒コア間での好ましくない分子内相互作用を有するリボザイムは考慮しない。結合腕長の変化を選択して活性を最適化できる。一般的に、各腕上の少なくとも５程度の塩基が標的ＲＮＡに結合できる、または相互作用できる。ハンマーヘッドまたはヘアピンモチーフのリボザイムは、ｍＲＮＡメッセージにおいて種々の部位にアニールするように設計し得、化学的に合成できる。使用した合成法は、Ｕｓｍａｎｅｔａｌ．（１９８７）およびＳｃａｒｉｎｇｅｅｔａｌ．（１９９０）に記載の通常のＲＮＡ合成の方法に従い、共通の核酸保護およびカップリング基、例えばジメトキシトリチルを５’端で、およびホスホルアミジトを３’端で利用する。平均の段階的カップリング収量は典型的には＞９８％である。ヘアピンリボザイムは、２部で合成され得、アニールさせ活性リボザイムを再構築し得る（ＣｈｏｗｒｉｒａおよびＢｕｒｋｅ、１９９２）。リボザイムは、広範に修飾され、ヌクレアーゼ耐性基、例えば２’−アミノ、２’−Ｃ−アリル、２’−フルオロ、２’−ｏ−メチル、２’−Ｈを用いた修飾により安定性を亢進し得る（論評、例えばＵｓｍａｎおよびＣｅｄｅｒｇｒｅｎ、１９９２参照）。リボザイムはゲル電気泳動により一般的な方法または高圧液体クロマトグラフィーを用いて精製され得、水中に再懸濁する。リボザイム活性は、リボザイム結合腕の長さを変化、または血清リボヌクレアーゼによるその分解を防ぐ修飾を有するリボザイムを化学的に合成する（例えば国際特許出願公開番号ＷＯ９２／０７０６５；Ｐｅｒｒａｕｌｔｅｔａｌ．、１９９０；Ｐｉｅｋｅｎｅｔａｌ．、１９９１；ＵｓｍａｎおよびＣｅｄｅｒｇｒｅｎ、１９９２；国際特許出願公開番号ＷＯ９３／１５１８７；国際特許出願公開番号ＷＯ９１／０３１６２；欧州特許出願公開番号９２１１０２９８．４；米国特許第５，３３４，７１１号；および国際特許出願公開番号ＷＯ９４／１３６８８参照、これは酵素的ＲＮＡ分子の糖部分に作製できる種々の化学的修飾を記載する）、細胞におけるその効力を亢進する修飾、およびＲＮＡ合成時間を短縮し、化学的要求を軽減するステムＩＩ塩基の除去により最適化できる。Ｓｕｌｌｉｖａｎｅｔａｌ．（国際特許出願公開番号ＷＯ９４／０２５９５）は、酵素的ＲＮＡ分子の運搬の一般的な方法を記載する。リボザイムは当業者に公知の種々の方法により細胞に投与し得、リポソーム中へのカプセル化、イオントホレシス、または例えばヒドロゲル、シクロデキストリン、生物分解可能なナノカプセル、および生体粘着微小球などの他の媒体への取り込みを含むがこれに限定されない。ある適用において、リボザイムは、前記の媒体無しでまたはそれと共に直接ｅｘｖｉｖｏで細胞または組織に運搬し得る。また、ＲＮＡ／媒体の組合せは、直接吸入により、直接注入により、またはカテーテル、注入ポンプまたはステントの使用により局所送達し得る。他の送達経路は、血管内、筋肉内、皮下または関節注射、エアゾール吸入、経口（錠剤または丸薬形）、局所、全身性、眼、腹腔内および／または髄腔内送達を含むかこれに限定されない。リボザイム送達および投与のより詳細な記載は、国際特許出願公開番号ＷＯ９４／０２５９５および国際特許出願公開番号ＷＯ９３／２３５６９（各々引用してここに明記して援用する）で提供される。高濃度の細胞内リボザイムを蓄積する別法は、リボザイム−コード配列をＤＮＡ発現ベクターに取り込むことである。リボザイム配列の転写は、真核ＲＮＡポリメラーゼＩ（ｐｏｌＩ）、ＲＮＡポリメラーゼＩＩ（ｐｏｙＩＩ）、またはＲＮＡポリメラーゼＩＩＩ（ｐｏｌＩＩＩ）のプロモーターから誘導される。ｐｏｌＩＩまたはｐｏｌＩＩＩプロモーター由来転写物は全細胞において高いレベルで発現される；該ｐｏｌＩＩプロモーターの該細胞型におけるレベルは、近くに存在する遺伝子調節配列（エンハンサー、サイレンサー等）の性質に依存する。原核ＲＮＡポリメラーゼ酵素が適当な細胞中で発現されるならば、原核ＲＮＡポリメラーゼプロモーターもまた使用し得る（Ｅｌｒｏｙ−ＳｔｅｉｎよびＭｏｓｓ、１９９０；ＧａｏおよびＨｕａｎｇ、１９９３；Ｌｉｅｂｅｒｅｔａｌ．、１９９３；Ｚｈｏｕｅｔａｌ．、１９９０）。かかるプロモーターから発現されたリボサイムは、哺乳動物細胞で機能できる（例えば、Ｋａｓｈａｎｉ−Ｓａｂｅｒｅｔａｌ．、１９９２；Ｏｊｗａｎｇｅｔａｌ．、１９９２；Ｃｈｅｎｅｔａｌ．、１９９２；Ｙｕｅｔａｌ．、１９９３；Ｌ’Ｈｕｉｌｌｉｅｒｅｔａｌ．、１９９２；Ｌｉｓｚｉｅｗｉｃｚｅｔａｌ．、１９９３）。かかる転写単位は、哺乳動物細胞への導入のために種々のベクターに取り込むことができ、プラスミドＤＮＡベクター、ウイルスＤＮＡベクター（例えばアデノウイルスまたはアデノ−関連ベクター）、またはウイルスＲＮＡベクター（例えばレトロウイルス、セムリキ森林ウイルス、シンドビスウイルスベクター）を含むがこれに限定されない。本発明のリボザイムは、診断手段として、疾患細胞内の遺伝的ドリフトおよび変異を検査するために使用し得る。それらはまた、標的ＲＮＡ分子のレベルの評定に使用できる。リボザイム活性と標的ＲＮＡ分子構造の間の近接な関係により、標的ＲＮＡの塩基対および３次元構造を変化させる分子の任意の領域において変異の検出が可能となる。本発明に記載の複数のリボザイムを使用することにより、ｉｎｖｉｔｒｏ、並びに細胞および組織においてＲＮＡ構造および機能に重要なヌクレオチド変化をマッピングし得る。標的ＲＮＡのリボザイムによる開裂を用いて、遺伝子発現を阻害し、疾患の進行における（実質的に）特定の遺伝子産物の役割を定義し得る。このように、他の遺伝子標的を、疾患の重要なメディエーターとして定義し得る。これらの研究により、組合せ療法の可能性を提供することにより疾患の進行のより良好な処置がもたらされる（例えば異なる遺伝子に標的化した複数リボソーム、公知の小分子阻害剤でカップリングさせたリボザイムまたはリボザイムおよび／または他の化学的または生物学的分子との組合せを用いた間欠処置）。本発明の他のｉｎｖｉｔｒｏでのリボザイムの使用は、当分野でよく知られており、ＩＬ−５関連症状に関連したｍＲＮＡの存在の検出を含む。かかるＲＮＡは、標準的な方法を用いてリボザイムで処置後開裂産物の存在を測定することにより検出する。４．１６生物学的機能等価体修飾および変化は、本発明のペプチド構造およびそれらをコードするＤＮＡ断片に施し得、所望の特性を有するポリペプチドをコードする機能性分子を得る。以下は、タンパク質のアミノ酸を変化させ、等価または亢進した二次産生分子を作製することに基づく議論である。アミノ酸変化は、表１に記載のＤＮＡ配列のコドンを変化させることにより達成し得る。例えば、タンパク質構造において、例えば抗体の抗原−結合領域または基質分子上の結合部位などの、構造に相互作用結合能力の感知可能な程度の消失もなく、あるアミノ酸を、他のアミノ酸で置換し得る。タンパク質の生物学的機能活性を規定するのは相互作用能力およびタンパク質の性質であるので、あるアミノ酸配列置換をタンパク質配列、およびもちろんその基本ＤＮＡコード配列に施し得るが、それにも関わらず類似した特性のタンパク質が得られる。従って、種々の変化を、開示した組成物のペプチド配列、または生物学的有用性または活性を感知可能な程度で消失することなく該ペプチドをコードする対応するＤＮＡ配列において作製し得ることが発明者により考えられる。かかる変化の作製において、アミノ酸の水治療係数（hydropathic index）を考慮し得る。タンパク質上の相互作用生物学的機能の参照における水治療アミノ酸係数の重要性は当分野で一般的に理解されている（ＫｙｔｅおよびＤｏｏｌｉｔｔｌｅ、１９８２、引用してここに援用する）。アミノ酸の相対的水治療特性は得られたタンパク質の二次構造に寄与し、代わって、例えば酵素、基質、レセプター、ＤＮＡ、抗体、抗原等の他の分子とのタンパク質の相互作用を定義することが認められている。各アミノ酸はその疎水性および荷電特性に基づき水治療係数(hydropathic index)が当てられ（ＫｙｔｅおよびＤｏｏｌｉｔｔｌｅ、１９８２）：イソロイシン（＋４．５）；バリン（＋４．２）；ロイシン（＋３．８）；フェニルアラニン（＋２．８）；システイン／シスチン（＋２．５）；メチオニン（＋１．９）；アラニン（＋１．８）；グリシン（−０．４）；トレオニン（−０．７）；セリン（−０．８）；トリプトファン（−０．９）；チロシン（−１．３）；プロリン（−１．６）；ヒスチジン（−３．２）；グルタミン酸（−３．５）；グルタミン（−３．５）；アスパラギン酸（−３．５）；アスパラギン（−３．５）；リジン（−３．９）；およびアルギニン（−４．５）がある。あるアミノ酸は、類似の水治療係数または評点を有する他のアミノ酸により置換され得、依然として類似の生物学的活性を有するタンパク質が得られる、すなわち依然として生物学的に等価なタンパク質が得られることは当分野では公知である。かかる変化の作製において、水治療係数が±２以内であるアミノ酸の置換が好ましく、±１以内のものが特に好ましく、±０．５以内のものがさらにより特に好ましい。また、類似のアミノ酸の置換は親水性に基づき効果的に作製できることが当分野では理解される。米国特許第４，５５４，１０１号（引用してここに援用する）は、その隣接するアミノ酸の親水性により左右される、タンパク質の最大の局所平均親水性は、タンパク質の生物学的特性と相関すると記載されている。米国特許第４，５５４，１０１号に詳述したように、以下の親水性値は以下のアミノ酸残基に該当する：アルギニン（＋３．０）；リジン（＋３．０）；アスパラギン酸（＋３．０±１）；グルタミン酸（＋３．０±１）；セリン（＋０．３）；アスパラギン（＋０．２）；グルタミン（＋０．２）；グリシン（０）；トレオニン（−０．４）；プロリン（−０．５±１）；アラニン（−０．５）；ヒスチジン（−０．５）；システイン（−１．０）；メチオニン（−１．３）；バリン（−１．５）；ロイシン（−１．８）；イソロイシン（−１．８）；チロシン（−２．３）；フェニルアラニン（−２．５）；トリプトファン（−３．４）。アミノ酸は類似の親水性値を有する別のもので置換でき、依然として生物学的等価体が得られ、特に免疫学的に等価なタンパク質が得られると理解される。かかる変化において、親水性値が±２以内であるアミノ酸の置換が好ましく、± １以内のものが特に好ましく、±０．５以内のものがさらにより特に好ましい。上記で概略を示したように、アミノ酸置換は一般的にアミノ酸側鎖置換基の相対的類似性、例えば疎水性、親水性、荷電、サイズ等に基づく。前記の種々の特性を有する置換基の例は、当業者にはよく知られており、アルギニンおよびリジン、グルタミン酸およびアスパラギン酸、セリンおよびトレオニン、グルタミンおよびアスパラギン、およびバリン、ロイシンおよびイソロイシンを含む。４．１７ＯＳＦ２プロモーターの特徴本発明は、機能性ＲＮＡの発現を可能とするプロモーター領域を提供する。機能性ＲＮＡはｍＲＮＡであり得るが、またアンチセンスＲＮＡまたはリボザイムなどの酵素学的特性を有するＲＮＡであり得る。好ましい実施形態において、本発明は、Ｏｓｆ２プロモーター領域を開示し請求する。Ｏｓｆ２プロモーター領域は実質的に配列番号７２の６１７８ｂｐの核酸配列から構成される。発明者は配列番号７２に含まれる小さな連続核酸配列はＯｓｆ２プロモーターの特徴を維持すると考えられる。４．１８発現ベクター本発明は、本発明のポリヌクレオチドを含む発現ベクターを考える。従って、１つの実施形態において、発現ベクターは、ポリペプチドをコードするコード領域（このコード領域は操作的に転写終結因子に結合させている）に操作的に結合させた本発明のプロモーター（このプロモーターはコード領域の転写から誘導する）を含む単離および精製ＤＮＡ分子である。別の実施形態において、本発明のプロモーターは操作的に機能性ＲＮＡをコードするコード領域に結合させる。機能性ＲＮＡは、ポリペプチド（ｍＲＮＡ）をコードする、ｔＲＮＡである、リボザイム活性を有する、またはアンチセンスＲＮＡであり得る。本明細書で使用したように、「操作的に結合」なる語は、プロモーターにより機能性ＲＮＡの転写が制御および調節されるようにプロモーターを機能性ＲＮＡに連結させることを意味する。プロモーターを操作的に機能性ＲＮＡに結合させる方法は当分野でよく知られている。どの発現ベクターおよび究極的にはポリペプチドコード領域をどのプロモーターに操作的に結合せるかの選択は、直接、所望の機能性特性、例えばタンパク質発現の位置および時間、および形質転換する宿主細胞に依存する。これらは組換えＤＮＡ分子構築に固有のよく知られた制限がある。しかし、本発明の実施に有用なベクターは操作的に結合した機能性ＲＮＡの発現を指向できる。ＲＮＡポリメラーゼはコードＤＮＡ配列をポリアデニル化が生じる部位を通して転写する。典型的に、ポリアデニル化部位の下流数百塩基対に位置するＤＮＡ配列は転写終結に関与する。これらのＤＮＡ配列は、本明細書で転写−終結領域と呼ぶ。これらのＤＮＡ配列は転写メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）の十分なポリアデニル化に必要である。ＤＮＡを操作的に相補的結合末端または平滑端を介してベクターに結合させる種々の方法が開発された。例えば、相補ホモポリマー系を、挿入するＤＮＡ断片およびベクターＤＮＡに加えることかできる。次いで、ベクターおよびＤＮＡ断片は水素結合により相補的なホモポリマー端間を結合し、組換えＤＮＡ分子を形成する。４．１９動物細胞における発現発明者は、配列番号７２の連続核酸配列、または実質的にそれと同一な核酸配列を含むＯｓｆ２プロモーターは、形質転換宿主細胞における相同または異種遺伝子の発現の促進に使用し得ることが考える。かかる細胞は好ましくは動物細胞（哺乳動物細胞、例えばヒトまたは他の霊長類から得られたもの、ネズミ、イヌ、ウシ、ウマ、またはブタ種を含む）である。細胞を、プロモーター（単独または１つ以上のエンハンサーエレメントと組合せて）が目的の操作的に結合させた遺伝子によりコードされるポリペプチド産物の発現を十分促進するように、操作的に目的の遺伝子断片に結合させたプロモーターを含む１つ以上のベクターで形質転換し得る。かかる遺伝子は天然または変異遺伝子、遺伝子融合、タンパク質融合をコードする遺伝子、または目的のポリペプチドの切断短縮形をコードする遺伝子であり得る。４．１９．１ポリペプチド本発明に従い、様々なポリペプチドを発現させることができる。一般的に、タンパク質は分泌タンパク質と非分泌タンパク質の二つのカテゴリーに分類される。それぞれの詳細を以下に述べる。まず、多くのタンパク質が一つの配列を有するわけではなく、むしろ様々な形で存在することが考えられる。これらの形の違いは対立遺伝子変異を表すこともあるが、タンパク質の変異を表していることが多い。第二に、様々なタンパク質が“融合”タンパク質として都合良く発現されることが考えられる。融合は、二つのタンパク質のコード領域、あるいは二つのタンパク質の一部を結合して行う。これにより、融合タンパク質を生み出す新規な単一コード領域ができる。融合は、通常は分泌されないタンパク質の分泌型を作製したり、免疫学的にタグを付加するのに有効である。タグを付加したタンパク質はより簡便に精製でき、タグに対する抗体を用いてモニターすることができる。本発明の第三の観点は、タンパク質断片の発現である。タンパク質全体を発現する必要がない場合もあり、時にはある機能ドメインの発現が望ましい場合もある。例えば、タンパク質断片がその機能を維持しつつ、より安定である、あるいは抗原性が少ない、あるいはその両者である場合である。４．１９．１．１分泌タンパク質通常分泌される多くのタンパク質の発現は、動物細胞で操作できる。有用なヒトタンパク質をコードする多くのｃＤＮＡが利用できる。例として、可溶性ＣＤ −４、第VIII因子、第IX因子、フォンビルブラント因子、ｔ−ＰＡ、ウロキナーゼ、ヒルジン、インターフェロン、ＴＮＦ、インターロイキン、造血成長因子、抗体、アルブミン、レプチン、トランスフェリン、神経成長因子が挙げられる。ペプチドホルモンは三つのクラスに分類され、それぞれに明確な例が挙げられる。クラスは、翻訳後プロセッシングの複雑さにより定義される。クラスＩタンパク質には、一般的に、成長ホルモン、プロラクチン、胎盤ラクトゲン、黄体形成ホルモン、卵胞刺激ホルモン、絨毛性性腺刺激ホルモン、甲状腺刺激ホルモンか含まれると考えられている。比較的限定的なタンパク質分解プロセシングを必要とし、その後貯蔵され、分泌顆粒から刺激放出される。クラスIIは、副腎皮質刺激ホルモン(ＡＣＴＨ)、アンジオテンシンＩおよびII 、β−エンドルフィン、β−メラニン細胞刺激ホルモン(β−ＭＳＨ)、コレシストキニン、エンドセリンＩ、ガラニン、胃抑制ペプチド(ＧＩＰ)、グルカゴン、インスリン、リポトロピン、ニューロフィシン、ソマトスタチン等のヒトペプチドホルモンで表される。さらなるタンパク質分解プロセッシングを必要とし、エンドプロテアーゼとカルボキシペプチダーゼにより、分泌顆粒内で大きな前駆体分子のプロセシングが行われる。クラスIIIは、例えば、カルシトニン、カルシトニン遺伝子関連ペプチド(ＣＧＲＰ)、β−カルシトニン遺伝子関連ペプチド、がん性高カルシウム血症因子（１−４０）(ＲＴＨ−ｒＰ)、副甲状腺ホルモン関連タンパク質（１０７−１３９）(ＲＴＨ−ｒＰ)、副甲状腺ホルモン関連タンパク質（１０７−１１１）(ＲＴＨ−ｒＰ)等のカルシウム代謝ペプチド、コレシストキニン（２７−３３）(ＣＣＫ)、ガラニンメッセージ関連ペプチド、プレプロガラニン(６５−１０５)、ガストリンＩ、ガストリン放出ペプチド、グルカゴン様ペプチド(ＧＬＰ−１)、パンクレアスタチン、膵ペプチド、ペプチドＹＹ、ＰＨＭ、セクレチン、血管作用性小腸ペプチド（ＶＩＰ）等の胃腸ペプチド、オキシトシン、バソプレッシン( ＡＶＰ)、バソトシン等の下垂体ペプチド、エンケファリンアミド、メトルフィンアミド（アドレノルフィン）等のエンケファリンを含む。クラスIIIには、α メラニン細胞刺激ホルモン(α−ＭＳＨ)、心房性ナトリウム利尿因子（５−２８）(ＡＮＦ)、アミリン、アミロイドＰ成分(ＳＡＰ−１)、コルチコトロピン放出因子(ＣＲＨ)、成長ホルモン放出因子(ＧＨＲＨ)、黄体形成ホルモン放出ホルモン(ＬＨＲＨ)、ニューロペプチドＹ、サブスタンスＫ(ニューロキンＡ)、サブスタンスＰ、甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）等のペプチドも含まれる。クラスIIペプチドで見られるタンパク質分解プロセシングに加え、適当な生物機能にはＣ末のアミド化か必要である。４．１９．１．２非分泌タンパク質非分泌タンパク質の発現は動物細胞で操作できる。非分泌タンパク質は二つのクラスに定義できる。一つめは、細胞で発現された後、様々な場で細胞と結合してとどまるタンパク質である。場には、細胞質、核、ミトコンドリア、小胞体、ゴルジ体、分泌顆粒膜、細胞膜等が含まれる。非分泌タンパク質には、可溶性と膜結合性がある。二つめのクラスは、通常は細胞と結合しているが、細胞から分泌されるよう修飾されたタンパク質である。修飾には、非分泌タンパク質の分泌を起こす新規融合タンパク質の構築や、分泌を起こす部位特異的突然変異誘発や改変タンパク質によるタンパク質断片の発現が含まれる。そのようなタンパク質を生産するように改変した細胞は、タンパク質のｉｎｖｉｔｒｏ生産、あるいはｉｎｖｉｖｏの細胞ベースの治療法に利用できる。ｉｎｖｉｔｒｏ生産では、細胞に結合しているタンパク質の場合にはペレットから、分泌した改変タンパク質の場合には上清から、発現したタンパク質を精製する必要がある。ｉｎｖｉｖｏの細胞ベースの治療法は、改変タンパク質の分泌、または非分泌タンパク質を発現する細胞の扶助効果に基づく。治療的に有効なヒトタンパク質をコードするｃＤＮＡは、数多く利用できる。これには、ＧＬＵＴ２、ＣＦＴＲ、レプチンレセプター、スルホニル尿素レセプター、β−細胞内向整流性チャネル等の細胞表面レセプター、輸送体やチャネルが含まれる。その他のタンパク質として、ＰＣ２およびＰＣ３、ＰＡＭ等のタンパク質プロセシング酵素、ＩＰＦ１等の転写因子、アデノシンデアミナーゼ、フェニルアラニン水酸化酵素、グルコセレブロシダーゼ等の代謝酵素が含まれる。４．１９．２遺伝子コンストラクト異種タンパク質の発現を至適化するようにデザインされたＤＮＡ発現プラスミドについても考える。発現プラスミドは、動物細胞内で目的遺伝子の発現をドライブする、ウイルスおよび哺乳類由来の多数のエンハンサー／プロモーターを含む。動物細胞内でのメッセンジャーＲＮＡの安定性および翻訳能を至適化する要素について定義する。４．１９．２．１ベクターの骨格本出願を通して、“発現コンストラクト”という語は、遺伝子産物をコードする核酸を含むどのようなタイプの遺伝子コンストラクトをも含み、配列をコードする核酸の一部あるいは全部が転写可能であることを示す。転写産物はタンパク質に翻訳される場合もあるが、そうである必要はない。ある実施形態では、発現は遺伝子の転写とｍＲＮＡの遺伝子産物への翻訳の両者を含む。他の実施形態では、発現は目的遺伝子をコードする核酸の転写のみを含む。好ましい実施形態では、目的遺伝子をコードする核酸は、ＳＥＱＴＤＮＯ：７２に実質的に近傍の核酸配列よりなるＯｓｆ２プロモーターの転写調節下にある。“プロモーター”とは、細胞の合成機構、あるいは導入された合成機構により認識されるＤＮＡ配列のことで、遺伝子の特異的転写を開始するのに必要とされる。“転写調節下”という語句は、ＲＮＡポリメラーゼの開始と遺伝子の発現を調節する核酸に関連し、プロモーターが正しい位置と向きに存在することを意味する。プロモーターという語は、ここでは、ＲＮＡポリメラーゼIIの開始点付近にある一連の転写調節モジュールを表すこともある。プロモーターがいかに組織化されているかという考えは、ＨＳＶチミジンキナーゼ（ｔｋ）やＳＶ４０初期転写単位のプロモーターを含む様々なウイルスプロモーターの解析からきている。これらの研究はさらに新しい研究によって議論されているが、プロモーターは分散した機能的モジュールから構成され、それぞれは約７−２０ｂｐのＤＮＡから成り、一つ以上の転写活性化あるいはリプレッサータンパク質の認識部位を含んでいることを示した。ＲＮＡ合成の開始点を定めるため、それぞれのプロモーター中少なくとも一つのモジュールが機能する。最も良く知られた例がＴＡＴＡボックスであるが、哺乳類のターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼ遺伝子のプロモーターやＳＶ４０後期遺伝子のプロモーターのようにＴＡＴＡボックスがなく、分散した要素がそれ自身で開始点に重なって開始の位置を固定する場合もある。さらなるプロモーター要素が転写開始の頻度を調節する。最近になって多くのプロモーターが開始点の下流にも機能的要素を含んでいることが示されたが、開始点の上流３０−１１０ｂｐ部位に位置するのが典型的である。プロモーター要素間の間隔は融通がきくことが多く、それゆえ要素が反転したり互いに移動してもプロモーター機能は保存される。ｔｋプロモーターでは、活性が減少し始める前に、プロモーター要素間の間隔が５０ｂｐ離れて増加することかある。プロモーターによって、転写を活性化するため、個々の要素が協同して機能する場合もあれば独立して機能する場合もある。エンハンサーは、元来、同じＤＮＡ分子の離れた位置に存在し、プロモーターからの転写を増加させる造伝子要素として検出された。遠く離れた距離を越えて働くこの能力は、原核生物の転写調節の古典的研究では前例のないものであった。続く研究によって、エンハンサー活性を有するＤＮＡ部位はプロモーターのように構成されていることが示された。つまり、エンハンサーは多くの個々の要素から構成され、それぞれの要素は一つ以上の転写タンパク質と結合している。エンハンサーとプロモーターの基本的な相違は、操作上の相違である。エンハンサー部位は全体として、離れた位置で転写を刺激することが可能でなくてはならない。真のプロモーター部位やその成分要素である必要はない。逆に、プロモーターは、特定の位置と特定の向きでＲＮＡ合成の開始を導く一つ以上の要素を有していなくてはならない。エンハンサーではこれらの特異性を欠いている。プロモーターとエンハンサーは重複したり近接していることが多く、非常によく似たモジュラー機構を有しているように思われる。本発明の好ましい実施形態では、発現コンストラクトはウイルスあるいはウイルスゲノム由来の改変コンストラクトよりなる。あるウイルスがレセプター依存性エンドサイトーシスを介して細胞に進入し、宿主細胞のゲノムに組み込まれ、ウイルス遺伝子を安定に効果的に発現するという能力を有することから、ウイルスは外来遺伝子を哺乳類細胞に導入するのに魅力的な候補であるとみなされるようになった(Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８；ＮｉｃｏｌａｓａｎｄＲｕｂｅｎｓｔｅｉｎ，１９８８；Ｔｅｍｉｎ，１９８６)。遺伝子ベクターとして用いられた最初のウイルスは、パポーバウイルス（シミアンウイルス４０、ウシパピローマウイルス、ポリオーマ）(Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８)とアデノウイルス（Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８）を含むＤＮＡウィルスである。これらのウイルスは、外来ＤＮＡ配列の許容量は比較的低く、宿主範囲は限られている。さらに、許容細胞中での発癌性の可能性と細胞変性効果により、安全性が懸念される。これらのウイルスは８ｋｂまでの外来遺伝物質しか組込むことができないが、様々な培養細胞株や実験動物に容易に導入することができる(ＮｉｃｏｌａｓａｎｄＲｕｂｅｎｓｔｅｉｎ，１９８８；Ｔｅｍｉｎ，１９８６ )。４．１９．２．２調節要素ｃＤＮＡを利用する場合、遺伝子転写物のポリアデニル化を効果的にするため、通常はポリアデニル化シグナルを含むようにする。ポリアデニル化シグナルの性質は、本発明の実施に重要であるとは考えがたく、そのような配列どれでも利用可能である。発現カセットの要素として、ターミネーターも考えられる。この要素は、カセットから他の配列に対して、メッセージの量を増強し読み過ごしを最小限にする働きができる。４．１９．２．３選択マーカー本発明のある実施形態では、細胞への核酸の導入は、発現コンストラクトにマーカーを含むことでｉｎｖｉｔｒｏあるいはｉｎｖｉｖｏで検出される。トランスフェクトされた細胞がマーカーにより検出可能な変化を受け、発現の検出を容易にする。通常、薬剤選択マーカーを含むことにより、クローニングやトランスフォーマントの選択か容易となる。例えば、ネオマイシン、ピューロマイシン、ハイグロマイシン、ＤＨＦＲ、ＧＰＴ、ゼオシン、ヒスチジノールである。代わりに、グリーン蛍光タンパク質やルシフェラーゼ等のマーカーと同様に、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ（ｔｋ）(真核生物の)やクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）(原核生物の)等の酵素が利用できる。免疫マーカーも利用できる。利用する選択マーカーは、遺伝子産物をコードする核酸と同時に発現されることが可能である限り、重要であるとは考えられない。選択マーカーのさらなる例は、最新の技術でよく知られている。４．１９．２．４多重遺伝子とＩＲＥＳ本発明のある実施形態では、多重遺伝子や多シストロン性メッセージの構築に、内部リボソーム結合部位（ＩＲＥＳ）の効果が利用されている。ＩＲＥＳ要素は、５'メチル化Ｃａｐ依存性のリボソームスキャニングモデルを無視し、内部位置での翻訳を開始することができる(ＰｅｌｌｅｔｉｅｒａｎｄＳｏｎｅｎｂｅｒｇ，１９８８；Ｙａｎｇｅｔａｌ.，１９８８)。哺乳類メッセージ由来のＴＲＥＳと同様(ＭａｃｅｊａｋａｎｄＳａｒｎｏｗ，１９９１)、ピカノウイルスファミリーの二つのメンバー（ポリオと脳心筋炎）由来のＩＲＥＳ要素か述べられている(ＰｅｌｌｅｔｉｅｒａｎｄＳｏｎｅｎｂｅｒｇ，１９８８)。ＩＲＥＳ要素は、異種オープンリーディングフレームに結合可能である。それぞれをＩＲＥＳで分離し、複数のオープンリーディングフレームを共に発現させ、多シストロン性メッセージの構築か可能である。ＩＲＥＳ要素のお陰で、それぞれのオープンリーディングフレームが効果的な翻訳のためにリボソームに接近できる。一つのプロモーター／エンハンサーを利用し、複数の遺伝子を効果的に発現し、単一のメッセージを翻訳することが可能となる。いかなる異種オープンリーディングフレームもＩＲＥＳ要素に結合させ得る。これには、分泌タンパク質、独立した遺伝子にコードされる多サブユニットタンパク質、細胞内あるいは膜結合タンパク質、選択マーカーの遺伝子が含まれる。このように、単一のコンストラクトと単一の選択マーカーで、様々なタンパク質の発現を細胞内で同時に操作できる。４．１９．３ｉｎｖｉｖｏ導入と治療プロトコール遺伝子コンストラクトをｉｎｖｉｖｏで細胞に導入できることは望ましい。核酸を細胞に導入する数々の方法がある。いくつかの方法の要点を以下に記述する。４．１９．３．１アデノウイルスＯｓｆ２プロモーターに結合させた一つ以上の異種遺伝子をｉｎｖｉｖｏで導入する好ましい方法の一つに、アデノウイルス発現ベクターの利用がある。“ アデノウイルス発現ベクター”は、（ａ）コンストラクトのパッケージングを支持し（ｂ）クローン化したアンチセンスポリヌクレオチドを発現するに十分なアデノウイルスの配列を含むコンストラクトを含むことを意味する。この意味で、発現は遺伝子産物が合成されることを必要としない。発現ベクターは、アデノウイルスを遺伝的に操作した形で構成される。３６ｋｂ、直鎖状、二本鎖ＤＮＡウイルスであるアデノウイルスの遺伝的機構の知識によって、アデノウイルスＤＮＡの大きな断片を７ｋｂまでの外来配列と置換することが可能となる(ＧｒｕｎｈａｕｓａｎｄＨｏｒｗｉｔｚ，１９９２)。レトロウイルスとは異なり、アデノウイルスＤＮＡは遺伝毒性の可能性なしにエピソーム様式で複製できるので、アデノウイルスの宿主細胞への感染の際には染色体への組込みは起こらない。また、アデノウイルスは構造的に安定であり、何度にもわたって増幅してもゲノムの再編成は検出されない。アデノウイルスは、どんな上皮細胞にもその細胞周期段階にかかわらず実質的に感染可能である。従来、アデノウイルス感染はヒトの急性呼吸疾患等の軽い疾患のみに利用されてきたようである。アデノウイルスは、ゲノムサイズが中程度であること、操作の容易性、高タイター、ターゲット細胞の範囲の広さ、高感染性の理由から、遺伝子導入ベクターとしての利用に特に適している。ウイルスゲノムは、その両端に、ウイルスＤＮＡの複製とパッケージングに必要なシス要素である１００−２００ｂｐの逆方向反復配列（ＩＴＲ）を含む。ゲノムの初期（Ｅ）および後期（Ｌ）部位は、ウイルスＤＮＡの複製の開始によって分類される異なった転写単位を含む。Ｅ１部位（Ｅ１ＡおよびＥ１Ｂ）は、ウイルスゲノムといくつかの細胞遺伝子の転写を調節する役割を果たすタンパク質をコードする。Ｅ２部位(Ｅ２ＡおよびＥ２Ｂ)の発現により、ウイルスＤＮＡ複製のためのタンパク質が合成される。これらのタンパク質は、ＤＮＡ複製、後期遺伝子発現、宿主細胞の遮断に関与する(Ｒｅｎａｎ，１９９０)。後期遺伝子の産物は、ウイルスキャプシドタンパク質の大多数を含み、主要後期プロモーター（ＭＬＰ）によって生じる単一の一次転写産物のプロセッシングを受け発現される。ＭＬＰ（１６．８ｍ．ｕ．に位置する）は感染後期に特に効率的であり、このプロモーターによって生じたｍＲＮＡのすべてが、ｍＲＮＡを翻訳に適したｍＲＮＡへとする５’−トリパータイトリーダー（ＴＰＬ）配列を有する。現行の方法では、組換えアデノウイルスは、シャトルベクターとプロウイルス間の相同的組換えにより作製する。二つのプロウイルス間での組換えが可能であるため、この過程で野生型アデノウイルスができることがある。それゆえ、個々のプラークからウイルスの単一クローンを単離し、そのゲノム構造を調べることが必須である。現行の複製欠損性アデノウイルスベクターの作製と増殖は、２９３という独特のヘルパー細胞株に依存する。２９３はＡｄ５ＤＮＡ断片をヒト胚性腎細胞に形質転換したもので、Ｅ１タンパク質を構成的に発現する(Ｇｒａｈａｍｅｔａｌ.，１９７７)。Ｅ３部位はアデノウイルスのゲノムに必要ないことから( ＪｏｎｅｓａｎｄＳｈｅｎｋ，１９７８)、現行のアデノウイルスベクターは、２９３細胞の支持下で、Ｅ１、Ｄ３、あるいはその両部位に外来ＤＮＡを保有する(ＧｒａｈａｍａｎｄＰｒｅｖｅｃ，１９９１)。本来、アデノウイルスは野生型ゲノムの約１０５％をパッケージすることができ(Ｇｈｏｓｈ−Ｃｈｏｕｄｈｕｒｙｅｔａｌ.，１９８７)、さらに約２ｋｂのＤＮＡを許容できる。Ｅ１およびＥ３部位と置換可能な約５．５ｋｂのＤＮＡと合わせると、現行のアデノウイルスベクターの最大許容量は７．５ｋｂ以下またはベクター全長の約１５％となる。アデノウイルスのウイルスゲノムの８０％以上がベクターの骨格として残り、それがベクターによる細胞毒性となる。また、Ｅ１欠損ウイルスの複製欠損性は不完全である。例えば、現在利用できる高感染効率（ＭＯＩ）のベクターで、ウイルス遺伝子発現のリークが観察された(Ｍｕｌｌｉｇａｎ，１９９３)。ヘルパー細胞株は、ヒト胚性腎細胞、筋細胞、造血細胞、他のヒト胚性間葉あるいは上皮細胞等のヒト由来細胞である。代わりに、ヒトアデノウイルスを許容する他の哺乳類種由来細胞でもよい。そのような細胞には、例えば、ベロ細胞、他のサル胚性間葉あるいは上皮細胞が含まれる。上記したように、好ましいヘルパー細胞株は２９３である。最近、Ｒａｃｈｅｒらが(１９９５)、２９３細胞の培養とアデノウイルスの増殖改良法を明らかにした。ある型式では、１００−２００ｍｌの培地を含む１リットルのシリコナイズしたスピナ−フラスコ（Ｔｅｃｈｎｅ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ,ＵＫ）に個々の細胞を播種し、自然の細胞凝集体を増殖させる。４０ｒｐｍで撹拌後、トリパンブルーで細胞の生存度を測定する。別の型式では、Ｆｉｂｒａ−Ｃｅｌマイクロキャリア（ＢｉｂｂｙＳｔｅｒｌｉｎ，Ｓｔｏｎｅ，ＵＫ）(５ｇ／ｌ)を以下のように使用する。種細胞を５ｍｌの培地に再懸濁し、２５０ｍｌの三角フラスコ中のキャリア（５０ｍｌ）に添加し、１〜４時間、たまに撹拌しつつ静置する。次に５０ｍｌの新鮮培地で培地交換し、振盪を開始する。ウイルスの生産には、細胞を細胞密度約８０％まで増殖させ、その後培地を交換し(最終量の２５％へ)、０．０５のＭＯＩでアデノウイルスを添加する。培養細胞は一晩静置し、１００％の量に増し、続く７２時間の振盪を開始する。アデノウイルスベクターが複製欠損性である、あるいは少なくとも条件的に欠損性であるという必要性以外に、アデノウイルスベクターの性質は本発明の実施に重要であると考えられない。アデノウイルスは、４２の血消型あるいはＡ−Ｆサブグループのうちのどれでもよい。サブグループＣのアデノウイルス５型は、本発明で用いる条件的複製欠損性アデノウイルスベクターを得るのに好ましい開始材料である。これは、アデノウイルス５型が生化学的および遺伝学的情報がよく知られているヒトアデノウイルスであり、歴史的にもアデノウイルスをベクターとして用いたほとんどのコンストラクトで使用されていたからである。上述したように、本発明による典型的なベクターは、複製欠損性でありアデノウイルスＥ１部位をもたない。このように、Ｅ１をコードする配列を除去した部位に、目的遺伝子をコードするポリヌクレオチドを導入するのが最も簡便である。しかしながら、アデノウイルス配列のコンストラクト挿入位置は本発明に重要ではない。目的遺伝子をコードするポリヌクレオチドはまた、Ｋａｒｌｓｓｏｎら（１９８６）により記述されたＥ３置換ベクターのＥ３除去部位の代わりに、あるいはヘルパー細胞株またはヘルパーウイルスがＥ４補足するＥ４欠損部位に挿入される。アデノウイルスの増殖と操作は容易で、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏでの宿主範囲は広い。このグループのウイルスは、例えばｍｌ当たりのプラーク形成単位が１０⁹−１０¹¹と高タイターで得られ、感染性が高い。アデノウイルスの生活環は、宿主細胞ゲノムへの組込みを必要としない。アデノウイルスベクターにより運ばれる外来遺伝子はエピソーム型で、それゆえ宿主細胞への遺伝毒性は低い。野生型アデノウイルスによるワクチン接種研究において副作用の報告はなく(Ｃｏｕｃｈｅｔａｌ.，１９６３；Ｔｏｐｅｔａｌ.，１９７１)、安全性とｉｎｖｉｖｏ遺伝子導入ベクターとしての治療の可能性を示す。アデノウイルスベクターは真核生物の遺伝子発現（Ｌｅｖｒｅｒｏｅｔａｌ.，１９９１；Ｇｏｍｅｚ−Ｆｏｉｘｅｔａｌ.，１９９２）とワクチンの開発（ＧｒｕｎｈａｕｓａｎｄＨｏｒｗｉｔｚ，１９９２；ＧｒａｈａｍａｎｄＰｒｅｖｅｃ，１９９２）で利用されている。最近、動物試験により、組換えアデノウイルスが遺伝子治療に利用できることが示唆された(Ｓｔｒａｔｆｏｒｄ−ＰｅｒｒｉｃａｕｄｅｔａｎｄＰｅｒｒｉｃａｕｄｅｔ，１９９１；Ｓｔｒａｔｆｏｒｄ−Ｐｅｒｒｉｃａｕｄｅｔｅｔａｌ.，１９９０；Ｒｉｃｈｅｔａｌ.，１９９３)。組換えアデノウイルスを様々な組織に投与する研究は、気管点滴(Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄｅｔａｌ.，１９９１；Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄｅｔａｌ.，１９９２)、筋肉注射(Ｒａｇｏｔｅｔａｌ.，１９９３)、末梢静脈内注射(ＨｅｒｚａｎｄＧｅｒａｒｄ，１９９３)、脳への定位的接種（ＬｅＧａｌＬａＳａｌｌｅｅｔａｌ. ，１９９３）を含む。４．１９．３．２レトロウイルスレトロウイルスは一本鎖ＲＮＡウイルスのグループで、逆転写により感染細胞内で自分のＲＮＡをＤＮＡに変換できるという特徴がある(Ｃｏｆｆｉｎ，１９９０)。次にこのＤＮＡが細胞の染色体にプロウイルスとして安定に組込まれ、ウイルスタンパク質の合成を導く。組込みにより、レシピエント細胞およびその子孫にウイルスの遺伝子配列が保持されることになる。レトロウイルスのゲノムはそれぞれキャプシドタンパク質、ポリメラーゼ酵素、エンベロープ成分をコードするｇａｇ、ｐｏｌ、ｅｎｖという三つの遺伝子を含む。ｇａｇ遺伝子の上流に見られる配列は、ゲノムをビリオンにパッケージするシグナルを含む。二つの末端反復配列（ＬＴＲ）がウイルスゲノムの５'と３'末に存在する。これらは強力なプロモーターとエンハンサー配列を含み、宿主細胞ゲノムへの組込みにも必要である(Ｃｏｆｆｉｎ，１９９０)。レトロウイルスベクターを構築するには、目的遺伝子をコードする核酸をウイルスゲノムのあるウイルス配列の位置に挿入し、複製欠損性のウイルスを作製する。ビリオンを産生するには、ｇａｇ、ｐｏｌ、ｅｎｖ遺伝子を含みＬＴＲとパッケージング成分をもたないパッケージング細胞株を構築する(Ｍａｎｎｅｔａｌ.，１９８３)。ｃＤＮＡを含む組換えプラスミドをレトロウイルスのＬＴＲとパッケージング配列と共にこの細胞株に導入すると(例えばリン酸カルシウム法により)、パッケージング配列によって組換えプラスミドのＲＮＡ転写物がウイルス粒子にパッケージされ、次に培地中に分泌される(ＮｉｃｏｌａｓａｎｄＲｕｂｅｎｓｔｅｉｎ，１９８８；Ｔｅｍｉｎ，１９８６；Ｍａｎｎｅｔａｌ.，１９８３)。次に、組換えレトロウイルスを含む培地を回収し、必要があれば濃縮し、遺伝子導入に用いる。レトロウイルスベクターは広く様々なタイプの細胞に感染できる。しかしながら、組込みと安定した発現には宿主細胞の分裂を必要とする(Ｐａｓｋｉｎｄｅｔａｌ.，１９７５)。ラクトース残基をウイルスエンベロープに化学的に付加するというレトロウイルスの化学的修飾に基づいて、レトロウイルスベクターの特異的ターゲティングを可能とする新しい方法が最近になって開発された。この修飾により、シアロ糖タンパク質レセプターを介して肝細胞に特異的に感染する。組換えレトロウイルスをターゲティングするのに、レトロウイルのスエンベロープタンパク質や特異的細胞レセプターに対するビオチン化抗体を利用するという別の方法もデザインされた。抗体は、ストレプトアビジンを用いてビオチン構成成分を介して結合させた(Ｒｏｕｘｅｔａｌ.，１９８９)。主要組織適合遺伝子複合体クラスＩおよびII抗原に対する抗体を用いて、ｉｎｖｉｔｒｏで、そのような表面抗原を有する様々なヒト細胞への同種指向性ウイルスの感染を立証した(Ｒｏｕｘｅｔａｌ.，１９８９)。本発明のすべての局面において、レトロウイルスの利用にはある制限がある。例えば、レトロウイルスは通常細胞ゲノムのランダムな位置に組込まれる。これにより、宿主遺伝子が妨げられ、あるいは隣接する遺伝子の機能を妨げるウイルス調節配列が挿入され、挿入突然変異が起こる(Ｖａｒｍｕｓｅｔａｌ.，１９８１)。欠損性レトロウイルスを利用するに当たってのもう一つの懸念は、パッケージング細胞内で野生型複製可能ウイルスが出現する可能性である。これは、組換えウイルス由来の元の配列が、宿主細胞ゲノムに組込まれたｇａｇ、ｐｏｌ、ｅｎｖ配列の上流に挿入するという組換え現象により生じる。しかしながら、現在では、組換えの可能性を大きく減少させた新しいパッケージ細胞株が利用可能である(Ｍａｒｋｏｗｉｔｚｅｔａｌ.，１９８８；Ｈｅｓｄｏｒｆｆｅｒｅｔａｌ.，１９９０)。４．１９．３．３発現コンストラクトとしての他のウイルスベクター本発明では、発現コンストラクトとして他のウイルスベクターも利用できる。ワクシニアウイルス(Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８；Ｃｏｕｐａｒｅｔａｌ. ，１９８８)、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）(Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８；ＨｅｒｍｏｎａｔａｎｄＭｕｚｙｃｓｋａ，１９８４)、ヘルペスウイルス等のウイルス由来のベクターが利用できる。これらは、様々な哺乳類細胞に対していくつかの魅力的な特徴を示す(Ｆｒｉｅｄｍａｎｎ，１９８９；Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８；Ｃｏｕｐａｒｅｔａｌ.，１９８８；Ｈｏｒｗｉｃｈｅｔａｌ.，１９９０)。欠損Ｂ型肝炎ウイルスについての最近の認識と共に、別のウイルス配列の構造と機能間の関係が新たに洞察された。ｉｎｖｉｔｒｏ実験により、ゲノムの８０％までを欠失しても、ウイルスはヘルパー依存性パッケージングと逆転写の能力を保持できることが示された(Ｈｏｒｗｉｃｈｅｔａｌ.，１９９０)。このことは、ゲノムの大きな部分が外来の遺伝子物質と置換可能であることを示す。肝向性と持続性（挿入）は肝臓への遺伝子導入に特に魅力的な特徴である。Ｃｈａｎｇらは、最近、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）遺伝子をアヒルＢ型肝炎ウイルスのポリメラーゼ、表面、前表面をコードする配列の位置に導入した。それを野生型ウイルスと同時にトリ肝細胞癌細胞株にトランスフェクトした。高タイターの組換えウイルスを含む培地を、初代子アヒル肝細胞に感染させた。トランスフェクションから少なくとも２４時間後に、安定したＣＡＴ遺伝子の発現が検出された(Ｃｈａｎｇｅｔａｌ.，１９９１) 。４．１９．３．４非ウイルス性ベクターセンスまたはアンチセンスの遺伝子コンストラクトを発現させるためには、発現コンストラクトを細胞に導入しなくてはならない。この導入は、細胞株を形質転換する実験室での方法と同様にｉｎｖｉｔｒｏで、あるいはある疾患状態の治療と同様にｉｎｖｉｖｏ、ｅｘｖｉｖｏで実施される。上記したように、好ましい導入機構は、発現コンストラクトが感染性ウイルス粒子に内包されたウイルスの感染による。発現コンストラクトが細胞内に導入されると、目的遺伝子をコードする核酸は様々な位置に定まり発現する。ある実施形態では、造伝子をコードする核酸は細胞のゲノムに安定に挿入される。相同的組換え（遺伝子置換）によって同系の位置及び向きに挿入されるか、またはランダムに非特異的位置に挿入される(遺伝子増大)。さらなる実施形態では、核酸は、別のエピソーム型ＤＮＡセグメントとして細胞内に安定に維持される。そのような核酸セグメントあるいは“エピソーム”は、宿主細胞の細胞周期と独立したあるいは同調した維持と複製を可能とするに十分な配列をコードする。いかに発現コンストラクトを細胞に導入するか、細胞のどこに核酸が存在するのかは、利用する発現コンストラクトのタイプに依存する。本発明の一つの実施形態では、Ｏｓｆ２プロモーターを含む発現コンストラクトは、単に裸の組換えＤＮＡあるいはプラスミドからなる。コンストラクトの導入は、物理的あるいは化学的に細胞膜を透過させる、上記したいずれかの方法で実施する。これはｉｎｖｉｔｒｏでの導入に特に適用可能であるが、ｉｎｖｉｖｏにも適用できる。Ｄｕｂｅｎｓｋｙら（１９８４）は、リン酸カルシウム沈殿形状のポリオーマウイルスＤＮＡを成体および新生マウスの肝臓および脾臓にうまく注入し、積極的なウイルスの複製と急性感染を示した。ＢｅｎｖｅｎｉｓｔｙとＲｅｓｈｅｆ（１９８６）も、リン酸カルシウム沈殿したプラスミドを直接腹腔内に注入すると、トランスフェクションした遺伝子が発現されることを示した。目的遺伝子をコードするＤＮＡをｉｎｖｉｖｏでも同様の方法で導入し、遺伝子産物が発現されることが想像される。裸のＤＮＡ発現コンストラクトを細胞に導入する本発明の別の実施形態は、微粒子銃を含む。この方法はＤＮＡをコートした微粒子を高速にする能力に依存し、これにより、細胞を殺すことなく、細胞膜を貫通し細胞に入れることができる (Ｋｌｅｉｎｅｔ．ａｌ.，１９８９)。小さな粒子を加速するいくつかの装置が開発された。そのような装置の一つは、電流を起こす高電圧放電によるもので、次にこの電流が輸送力を生み出す(Ｙａｎｇｅｔａｌ.，１９９０)。利用される微粒子は、タングステンや金ビーズ等の生物学的に不活性な物質から構成される。ラットおよびマウスの肝臓、皮膚、筋肉組織を含むいくつかの器官を、ｉｎｖｉｖｏで照射した(Ｙａｎｇｅｔａｌ.，１９９０；Ｚｅｌｅｎｉｎｅｔａｌ.，１９９１)。これには組織や細胞の外科的曝露を必要とする。銃とターゲット器官の間の介在性組織を除去するためであり、すなわちｅｘｖｉｖｏ治療である。あらためて、特定の遺伝子をコードするＤＮＡがこの方法により導入され、これも本発明に包括される。本発明のさらなる実施形態では、Ｏｓｆ２プロモーターを含む発現コンストラクトは、一つ以上のナノカプセル、リポソーム、他の脂質ベースのＤＮＡ導入剤に内包される。リポソームは、リン脂質二重層膜と内部の水溶液層で特徴付けられる小胞構造である。多重膜リボソームは、水溶液層で仕切られた複数の脂質層を有する。これは、リン脂質を過剰の水溶液に懸濁することで自然に形成される。脂質成分は閉鎖した構造を形成する前に自己再構成し、脂質二重層間に水および溶解した溶質を閉じ込める(ＧｈｏｓｈａｎｄＢａｃｈｈａｗａｔ，１９９１)。また、リポフェクトアミン−ＤＮＡ複合体も考えられる。リポソーム依存性核酸導入とｉｎｖｉｔｒｏでの外来ＤＮＡ発現は、非常に良好に行われている。Ｗｏｎｇら（１９８０）は、培養ニワトリ胚、Ｈｅｌａ、肝細胞がん細胞におけるリポソーム依存性核酸導入と外来ＤＮＡ発現の実現可能性を示した。Ｎｉｃｏｌａｕら（１９８７）は、ラットで、静脈内注射後のリポソーム依存性遺伝子導入に成功した。本発明のある実施形態では、リポソームをセンダイウイルス（ＨＶＪ）と複合化する。これにより、細胞膜との融合を容易にし、リポソームに内包されたＤＮＡの細胞進入を促進することが示された(Ｋａｎｅｄａｅｔａｌ.，１９８９)。他の実施形態では、リポソームは核非ヒストン染色体タンパク質(ＨＭＧ −１)と組み合わせて複合化あるいは利用される(Ｋａｔｏｅｔａｌ.，１９９１)。さらなる実施形態では、リポソームはＨＶＪとＨＭＧ−１の両方と組み合わせて複合化あるいは利用される。発現コンストラクトはｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏでの核酸の導入と発現において良好に利用され、よって本発明に適用できる。細菌のプロモーターがＤＮＡコンストラクトに利用される場合、リポソームに適当な細菌のポリメラーゼを含むのが望ましい。特定の遺伝子をコードする核酸の細胞導入に利用される他の発現コンストラクトは、レセプター依存性導入剤である。これは、ほとんどすべての真核生物細胞でのレセプター依存性エンドサイトーシスによる巨大分子の選択的取り込みを利用している。様々なレセプターが細胞タイプ特異的に分布することにより、導入は非常に特異的となり得る(ＷｕａｎｄＷｕ，１９９１；Ｗｕｅｔａｌ. ，１９９１；Ｗｕｅｔａｌ.，１９８８)。レセプター依存性ジーンターゲティング剤は、一般に二つの成分からなる。細胞レセプター特異的リガンドとＤＮＡ結合剤である。様々なリガンドがレセプター依存性遺伝子導入に利用されている。最も広く性質が解明されているリガンドは、アシアロオロソムコイド（ＡＳＯＲ）(ＷｕａｎｄＷｕ，１９８７)とトランスフェリン（Ｗａｇｎｅｒｅｔａｌ.，１９９３）である。最近、ＡＳＯＲと同じレセプターを認識するネオ糖タンパク質が遺伝子導入剤として利用され(Ｆｅｒｋｏｌｅｔａｌ.，１９９３；Ｐｅｒａｌｅｓｅｔａｌ.，１９９４)、上皮増殖因子（ＥＧＦ）もまた遺伝子を扁平上皮がん細胞に導入するのに利用された(Ｅｕｒ．Ｐａｔ．Ａｐｐｌ．Ｎｏ．０，２７３，０８５)。他の実施形態では、導入剤はリガンドとリポソームから構成される。例えば、Ｎｉｃｏｌａｕら（１９８７）はラクトシルセラミド、ガラクトースターミナルアシアルガングリオシドをリポソームに取り込んで利用し、肝細胞によるインスリン遺伝子の取り込みの増加を観察した。このように、リポソーム有り無しで、様々なレセプター−リガンド系を利用し、特定の遺伝子をコードする核酸を肺、上皮あるいは腫瘍細胞等の細胞タイプに明確に導入することも実現可能である。例えば、上皮増殖因子（ＥＧＦ）は、ＥＧＦレセプターのアップレギュレーションを示す多くの腫瘍細胞で、遺伝子をコードする核酸の依存性導入に利用される。マンノースは、肝細胞のマンノースレセプターをターゲットするのに利用される。また、ＣＤ５(ＣＬＬ)、ＣＤ２２(リンパ腫)、ＣＤ２５(Ｔ−細胞白血病) 、ＭＡＡ（メラノーマ）に対する抗体も同様に、ターゲティングの一部として利用することが可能である。ある実施形態では、遺伝子導入はｅｘｖｉｖｏ条件下でより簡便に実施される。ｅｘｖｉｖｏ遺伝子治療は、動物からの細胞単離、ｉｎｖｉｔｒｏでの細胞への核酸導入、修飾した細胞の動物への返還による。これは、動物あるいは細胞や組織の初期培養からの組織／器官の外科的除去を含む。米国特許第５，３９９，３４６号（全体がここに包含される）は、典型的なｅｘｖｉｖｏ治療法を公開している。４．２０タンパク質核酸ある実施形態では、発明者は本発明の実施において、ペプチド核酸（ＰＮＡ）の利用を考察する。ＰＮＡは、核酸塩基を偽ペプチド骨格に付加したＤＮＡミミックである(ＧｏｏｄａｎｄＮｉｅｌｓｅｎ，１９９７)。ＰＮＡは、伝統的にＲＮＡやＤＮＡを使用していた多くの方法で利用可能である。ＰＮＡ配列は相当するＲＮＡやＤＮＡ配列よりも技術上良好に働くことも多く、ＲＮＡやＤＮＡには備わっていない有効性を有している。製作法、特徴、利用法を含むＰＮＡのすぐれたレビューがＣｏｒｅｙ（１９９７）によって出され、ここでは参考文献に包括する。４．２０．１ＰＮＡの製作法Ｃｏｒｅｙによると、ＰＮＡは、通常のＤＮＡのホスホジエステル骨格に代わって、２−アミノエチルグリシン結合を有する(Ｎｉｅｌｓｅｎｅｔａｌ.，１９９１；Ｈａｎｖｅｙｅｔａｌ.，１９９２；ＨｙｒｕｐａｎｄＮｉｅｌｓｅｎ，１９９６；Ｎｉｅｌｓｅｎ１９９６)。この化学的性質には三つの重要性がある。まず、ＤＮＡやホスホロチオネートオリゴヌクレオチドと異なり、ＰＮＡは中性の分子である。第二に、ＰＮＡはアキラルであり、立体選択的合成をする必要がない。第三に、ＰＮＡ合成には、メリーフィールド変法を含む他の方法も用いられるが(Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎｅｔａｌ.，１９９５)、固相ペプチド合成に用いる標準のＢｏｃ（Ｄｕｅｈｏｌｍｅｔａｌ.，１９９４）あるいはＦｍｏｃ（Ｔｈｏｍｓｏｎｅｔａｌ.，１９９５）プロトコールが用いられる。ＰＮＡモノマーや既製のオリゴマーはＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ（Ｆｒａｍｉｎｇｈａｍ，ＭＡ，ＵＳＡ）により商業ベースで入手可能である。ＢｏｃあるいはＦｍｏｃプロトコールによるＰＮＡ合成は、手動あるいはオートメーション化プロトコール（Ｎｏｒｔｏｎｅｔａｌ.，１９９５）により容易である。手動プロトコールは、化学的修飾したＰＮＡの生産や、蜜に関連したＰＮＡ群の同時合成に役に立つ。ペプチド合成と同様に、特定のＰＮＡ合成の成功は選んだ配列の性質に依存する。例えば、理論的にはＰＮＡはヌクレオチド塩基のどんな組み合わせも取り込めるが、近傍のプリンの存在により産物中の一つ以上の残基が除去され得る。この難しさを予測して、近傍にプリンを有したＰＮＡを合成するには、非効率的に付加されると思われる残基のカップリングを繰り返すことが提案される。次に逆相高圧液体クロマトグラフィーによりＰＮＡを精製し(Ｎｏｒｔｏｎｅｔａｌ.，１９９５)、ペプチド合成で見られるのと同様の産物の収量と純度を得る。Ｃｏｒｅｙによりさらに論じられたのは、応用に適したＰＮＡ修飾についてである。修飾は、固相合成中にアミノ酸をカップリンダすることにより、あるいはカルボン酸グループを含む化合物を露出したＮ−末アミンに付加することにより行う。代わりに、合成後、導入したリジンやシステインにカップリングすることでもＰＮＡを修飾できる。ＰＮＡが容易に修飾できるため、溶解度や特異的機能の至適化も容易となる。合成後、ＰＮＡとその派生物の同一性を質量分析法により確認する。様々な研究でＰＮＡの修飾が行われ利用された(Ｎｏｒｔｏｎｅｔａｌ.，１９９５；Ｈａａｉｍａｅｔａｌ.，１９９６；Ｓｔｅｔｓｅｎｋｏｅｔａｌ.，１９９６；Ｐｅｔｅｒｓｅｎｅｔａｌ.，１９９５；Ｕｌｍａｎｎｅｔａｌ.，１９９６；Ｋｏｃｈｅｔａｌ.，１９９５；Ｏｒｕｍｅｔａｌ.，１９９５；Ｆｏｏｔｅｒｅｔａｌ.，１９９６；Ｇｒｉｆｆｉｔｈｅｔａｌ.，１９９５；Ｋｒｅｍｓｋｙｅｔａｌ.，１９９６；Ｐａｒｄｒｉｄｇｅｅｔａｌ.，１９９５；Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９５；Ｌａｎｄｓｄｏｒｐｅｔａｌ.，１９９６；Ｇａｍｂａｃｏｒｔｉ −Ｐａｓｓｅｒｉｎｉｅｔａｌ.，１９９６；Ａｒｍｉｔａｇｅｅｔａｌ.，１９９７；Ｓｅｅｇｅｒｅｔａｌ.，１９９７；Ｒｕｓｋｏｗｓｋｉｅｔａｌ.，１９９７)。米国特許第５，７００，９２２号は、ＰＮＡ−ＤＮＡ −ＰＮＡキメラ分子と治療での利用、生物体の調節タンパク質、薬剤感受性の病気の治療について考察している。４．２０．２ＰＮＡの物理学的性質負に荷電した結合を含むＤＮＡおよびＲＮＡとは異なり、ＰＮＡ骨格は中性である。この劇的な変化にかかわらず、ＰＮＡはワトソン−クリック対形成により相補的なＤＮＡおよびＲＮＡを認識し(Ｅｇｈｏｌｍｅｔａｌ.，１９９３) 、Ｎｉｅｌｓｅｎら（１９９１）による最初のモデリングを立証する。ＰＮＡは３'から５'の方向性を欠き、逆平行様式が好まれるが、平行様式と逆平行様式のどちらでも結合することかできる(Ｅｇｈｏｌｍｅｔａｌ.，１９９３)。ＤＮＡオリゴヌクレオチドのＤＮＡおよびＲＮＡへのハイブリダイゼーションは、相補鎖の負に荷電したリン酸骨格間の静電相反により不安定化される。これに比べて、ＰＮＡ−ＤＮＡあるいはＰＮＡ−ＲＮＡ二重鎖には電荷相反がないため、融解温度（Ｔ_m）が上昇し、Ｔ_mの一価あるいは二価カチオンへの依存性が減少する(Ｎｉｅｌｓｅｎｅｔａｌ.，１９９１)。このため、ＰＮＡが弛緩した二本鎖ＤＮＡの相補配列に侵入するという驚くべき能力が生じ、ハイブリダイゼーションの速度とアフィニティーの促進が顕著となる。加えて、逆方向反復配列における効率的なハイブリダイゼーションにより、ＰＮＡが二本鎖ＤＮＡの二次構造を効率的に認識できることが示唆される。表層に固定化したＰＮＡでも認識は高く、Ｗａｎｇらは支持体に結合したＰＮＡがハイブリダイゼーション現象の検出に利用可能であることを示した(Ｗａｎｇｅｔａｌ.，１９９６)。ＰＮＡの相補配列への結合が強いことから、類似した（しかし同じではない）配列への結合も強く、ＰＮＡの配列特異性の認識が減少することが想定される。しかしながら、ＤＮＡハイブリダイゼーションのように、オリゴマーの長さとインキュベーション温度のバランスにより選択的認識が可能となる。さらに、ＰＮＡの選択的ハイブリダイゼーションはＰＮＡ−ＤＮＡハイブリダイゼーションにより促進され、ＤＮＡ−ＤＮＡハイブリダイゼーションよりも塩基のミスマッチの寛容性が低い。例えば、１６ｂｐのＰＮＡ−ＤＮＡ二重鎖内の一つのミスマッチは、Ｔ_mを１５℃分下げることが可能である(Ｅｇｈｏｌｍｅｔａｌ.，１９９３)。この判別能の高さにより、点突然変異を分析するいくつかのＰＮＡベースのストラテジーが開発された(Ｗａｎｇｅｔａｌ.，１９９６；Ｃａｒｌｓｓｏｎｅｔａｌ.，１９９６；Ｔｈｉｅｄｅｅｔａｌ.，１９９６；ＷｅｂｂａｎｄＨｕｒｓｋａｉｎｅｎ，１９９６；Ｐｅｒｒｙ−Ｏ’Ｋｅｅｆｅｅｔａｌ.，１９９６)。高いアフィニティー結合を起こすことから、分子認識の利点か生じ、ＰＮＡの新しい応用法が開発される。例えば、１１〜１３ヌクレオチドのＰＮＡは、テロメラーゼの活性を阻害する(Ｎｏｒｔｏｎ，ｅｔａｌ.，１９９６)。テロメラーゼとは、ＲＮＡ鋳型を用いてテロメア端を伸張させるリボ核タンパク質であり、類似のＤＮＡオリゴマーはテロメラーゼを阻害しない。中性のＰＮＡは類似のＤＮＡオリゴマーよりも疎水性で、このため、特にプリン含有量が高いまたは二次構造を形成する可能性がある場合に、中性のｐＨでのＰＮＡの溶解が困難となる。この溶解性は、ＰＮＡ末端に一つ以上の正電荷を付加することにより改善することができる(Ｎｉｅｌｓｅｎｅｔａｌ.，１９９１)。４．２０．３ＰＮＡの応用Ａｌｌｆｒｅｙとその同僚による発見により、鎖の侵入は染色体ＤＮＡ内の配列で自然に起こることが示唆された（Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９５；Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９６)。これらの研究では、ＰＮＡをヌクレオチドＣＡＧの三塩基反復へターゲットし、この認識を利用して転写的に活性のあるＤＮＡを精製して（Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９５）転写を阻害した(Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９６)。この結果により、ＰＮＡを細胞に導入することかできれば、ＰＮＡが遺伝子発現における一般的な配列特異的制御因子となり得ることが示唆された。アンチセンスや抗遺伝子剤としてのＰＮＡの利用に関する研究とレビューは、Ｎｉｅｌｓｅｎら(１９９３ｂ)、Ｈａｎｂｅｙら(１９９２) 、ＧｏｏｄとＮｉｅｌｓｅｎ（１９９７）などである。Ｋｏｐｐｅｌｈｕｓら（１９９７）はＨＩＶ−１の逆転写を阻害するのにＰＮＡを利用し、ＰＮＡが抗ウイルス治療に利用できることを示した。ＰＮＡのアンチセンス結合の性質を調べる方法は、Ｒｏｓｅ（１９９３）とＪｅｎｓｅｎら（１９９７）によって考察されている。ＲｏｓｅはＰＮＡの相補オリゴヌクレオチドへの結合を調べるのにキャピラリー電気泳動法を利用し、相対的結合キネティクスとストイキオメトリを測定した。同様の測定がＢＩＡｃｏｒｅ^TM技術を利用してＪｅｎｓｅｎらによって行われた。ＰＮＡの他の応用法は、ＤＮＡ鎖侵入(Ｎｉｅｌｓｅｎｅｔａｌ.，１９９１)、アンチセンス阻害(Ｈａｎｖｅｙｅｔａｌ.，１９９２)、変異性解析(Ｏｒｕｍｅｔａｌ.，１９９３)、転写のエンハンサー(Ｍｏｌｌｅｇａａｒｄｅｔａｌ.，１９９４)、核酸精製(Ｏｒｕｍｅｔａｌ.，１９９５)、転写的活性遺伝子の単離(Ｂｏｆｆａｅｔａｌ.，１９９５)、転写制御因子結合の阻止(Ｖｉｃｋｅｒｓｅｔａｌ.，１９９５)、ゲノムの切断(Ｖｅｓｅｌｋｏｖｅｔａｌ.，１９９６)、バイオセンサー(Ｗａｎｇｅｔａｌ.，１９９６)、ｉｎｓｉｔｕハイブリダイゼーション(Ｔｈｉｓｔｅｄｅｔａｌ.，１９９６)、サザンブロッティングの代替法（Ｐｓｒｒｙ−Ｏ’Ｋｅｅｆｅ，１９９６）での利用を含む。４．２１ウイルス発現ベクター本発明は、本発明の１つ以上のポリヌクレオチド配列を含むウイルス発現ベクターを考慮する。ウイルス発現ベクターは、典型的には、宿主細胞に導入されると、異種性遺伝子産物を最適に発現させるように操作された、複製能が欠損しているウイルスである。勿論、複製能を有するウイルス発現ベクターは存在し、本発明のポリヌクレオチドを発現させるのに使用できる。しばしば、最適な発現は、ウイルスゲノムに異所性プロモーターを導入することによりために達成される。他のウイルス発現ベクターは、ウイルスに既に含まれているプロモーターを利用する。発現ベクターに異種性ポリヌクレオチドを導入するのを容易化するために、多数のウイルス発現ベクターは、多重クローニング領域（ＭＣＲ）を含む。ＭＣＲは、しばしば、多数の制限酵素切断部位を含むように操作された、ＤＮＡ内の領域である。発現ベクターが、ＭＣＲを含む場合、ＭＣＲは、ポリヌクレオチドが、正しい方向でＭＣＲ内にクローニングされると、プロモーターに操作可能に結合されるように配置される。本願明細書で使用する用語「操作可能に結合された」は、プロモーターが、ポリヌクレオチドの転写が、プロモーターにより制御および調節されるようにポリヌクレオチドに結合されていることを意味する。プロモーターをポリヌクレオチドに操作可能に結合する手段は、当技術分野において良く知られている。１つの実施例では、ウイルス発現ベクターは、本発明のポリヌクレオチドに操作可能に結合したプロモーターを含む、単離および精製されたＤＮＡ分子であり、このポリヌクレオチドは、転写終結領域に操作可能に結合し、これにより、プロモーターは、コーディング領域の転写を作動する。いずれの発現ベクターを選択するか、そして、最終的に、いれずれのプロモーターにポリペプチドコーディング領域を操作可能に結合するかは、直接に、たとえばタンパク質発現の位置およびタイミングなどの、所望の機能的特性に依存する。これらは、組換えＤＮＡ分子を構築する技術に内在する、良く知られている制限である。しかしながら、本発明を実施するのに有用なベクターは、このベクターが操作可能に結合した、本発明のポリヌクレオチドの発現を指令することができる。ウイルス発現ベクターは、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、バキュロウイルス、ワクチンウイルス、トガウイルス、およびバクテリオファージを含む、多数のウイルスのいずれから由来してもよい。しかしながら、分子生物学の最新技術が与えられるならば、発明人は、本質的に任意のウイルスケノムを、ウイルス発現ベクターとして使用することを考慮する。４．２１．１レトロウイルス発現ベクター多数のウイルス発現ベクターが、レトロウイルス科に由来する。この科は、ネズミ白血病ウイルス、マウス哺乳類腫瘍ウイルス、ヒトフォーミーウイルス、Ro us（ラウス）肉腫ウイルス、および、ヒト、猿、およびネコのものを含む免疫不全ウイルスを含む。レトロウイルス発現をデザインする場合に考えるべきことが、Comstockら(1997)に記載されている。優れた、ネズミ白血病ウイルス（ＭＬＶ）に基づくウイルス発現ベクターが、 Kimら(1998)により開発された。ＭＬＶベクターを形成する際、Kimらは、ｇａｇ配列全部を、直接に上流の領域と一緒に、ウイルスパッケージングまたは遺伝子発現に有意に影響せずに、除去できることを発見した。さらに、Ｕ３領域ほぼ全部を、不利な影響なしにヒトサイトメガロウイルスの直接的初期プロモーターにより置換できることが分かった。さらに、ＭＣＲおよび内部リボソームエントリー部位（ＩＲＥＳ）を、不利な影響なしに付けることかできる。彼らの観察に基づき、Kimらは、前述の特徴を１つ以上含む、一連の、ＭＬＶに基づく発現ベクトルをデザインした。ヒトフォーミーウイルス（ＨＦＶ）についての知見が増加するにつれ、発現ベクターとしての使用に適する、ＨＦＶの特徴が発見された。こらの特徴は、スプライシングによるｐｏｌの発現、画定された開始コドンにおける翻訳の開始を含む。ＨＦＶウイルス発現の他の態様は、Bodemら(1997) に検討されている。 Murakamiら(1997)は、高いレベルで異種性遺伝子を発現させる、Rous肉腫ウイルス（ＲＳＶ）に基づく、複製能を有するニワトリレトロウイルスベクターＩＲ１およびＩＲ２を記載している。これらのベクターでは、脳心筋炎ウイルス（ＥＭＣＶ）に由来のＩＲＥＳが、ｅｎｖ遺伝子と異種性遺伝子との間に挿入される。ＩＲ１ベクターは、ｅｎｖ遺伝子の下流に存在するスプライスアクセプター部位を保持し、ＩＲ２ベクターは、それを欠く。最近、多数の、レンチウイルスに基づくレトロウイルス発現ベクターが、開発された。Kafriら(1997)は、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）に基づく発現ベクターにより、肝臓および筋肉に直接に送達された遺伝子の持続性発現を示した。このシステムの１つの利点は、非分裂細胞に形質導入できるＨＴＶの内在能力である。Kafriらのウイルスは、水泡性口内炎ウイルスＧ糖タンパク質（ＶＳＶＧ）により偽型化され、それらは、広範囲の組織および細胞型に形質導入できる。４．２２．アデノウイルス発現ベクター多数の、アデノウイルスに基づく発現ベクターが、開発された。このように多数である１つの理由は、好ましい、治療因子としてのベクターの有用性である。アデノウイルス発現ベクターおよび、このようなベクターを使用する方法は、引用することにより本願明細書の一部をなすものとする米国特許第５６９８２０２号明細書、米国特許第５６１６３２６号明細書、米国特許第５５８５３６２号明細書および米国特許第５５１８９１３号明細書を含む、多数の米国明細書の主題である。付加的なアデノウイルス構築物は、Khatriら(1997)およびTomaninら(1997)に記載されている。Khatriらは、新規のヒツジアデノウイルス発現ベクターおよび、子ウシ鼻甲介およびウサギ腎臓細胞および、肺臓および包皮線維芽細胞および肝臓、前立腺、乳房、結腸および網膜の細胞系を含む、一連のヒト細胞型に完成するそれらの能力を記載している。Tomaninらは、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子を含むアデノウイルス発現ベクターを記載している。Ｔ７ＲＮＡプロモーターに操作可能に結合した異種性遺伝子を含む細胞に導入されると、ベクターは、Ｔ７プロモーターから発現遺伝子を作動することができる。作者は、このシステムは、遺伝子コード細胞障害性タンパク質のクローニングおよび発現に有用であると考える。４．２３．３ポックスウイルス発現ベクターポックスウイルスは、哺乳類細胞の異種性遺伝子の発現に、広範囲に使用されている。数年にわたり、ベクターは改善されて、異種性遺伝子の高い発現が可能となり、単一の分子に複数の異種性遺伝子を組み込むことが簡単化された。細胞障害効果を消去し、安全性を向上する努力において、哺乳類細胞の中で頓挫性感染を経験したワクチンウイルス突然変異体および他のポックスウイルスは、特別の注意が払われた。発現ベクターとしてポックスウイルスを使用することは、Ca rrolおよびMoss(1997)で検討されている。４．２４．４トガウイルス発現ベクターアルファウイルス属発現ベクターを含むトガウイルス発現ベクターは、タンパク質の構造および機能を研究するためと、タンパク質生産の目的のためとに使用されてきた。トガウイルス発現ベクターの魅力的な特徴は、迅速かつ効率的な遺伝子発現、広範囲な宿主領域、およびＲＮＡゲノム(Huang,1996)である。アルファウイルス属発現ベクターに基づく組換えワクチンも、良好な免疫記憶および保護効果を有する、強い体液性および細胞性免疫応答を誘導する(Tubulekasら,199 7)。アルファウイルス発現ベクターおよびそれらの使用は、Lungstrom(1997)に記載されている。１つの興味深い研究で、LiおよびGaroff(1996)は、レトロウイルス遺伝子を発現させ、ＢＨＫ−２１細胞内にレトロウイルス粒子を生産するために、Semliki Forestウイルス（ＳＦＶ）発現ベクターを使用した。この方法により生産された粒子は、プロテーゼおよび逆転写酵素活性を有し、感染性であった。さらに、ヘルパーウイルスを、これらのウイルス系統の中に検出できなかった。したがって、このシステムは、遺伝子治療プロトコルでこのシステムを使用するのに魅力的である。４．２４．５バキュロウイルス発現ベクターバキュロウイルス発現ベクターは、伝統的に、昆虫細胞ウイルス内の異種性タンパク質を発現させるのに使用されてきた。タンパク質の例は、哺乳類ケモキネシスレセプター(Wangら,1997)、緑色蛍光タンパク質(Wangら,1997)などのレポータータンパク質を含む。バキュロウイルス発現ベクター技術の最近の進歩は、Po sse(1997)により検討されている。バキュロウイルス発現ベクターに関する他の検討は、JonesおよびMorikawa(1996)およびO'Reilly(1997)により行われている。５．０例次の例は、本発明の好ましい実施例を示めすために記載されている。当業者には、次の例に開示されている技術が、本発明の実施で良好に機能するように、本発明人により開発された技術を示すことは自明であり、したがって、その実施のためのモードを形成すると考えることができる。しかしながら、当業者は、本開示を斟酌して、多数の変更を、開示されている特定の実施例において行って、しかも、本発明の精神および範囲から逸脱することなしに、同一および同様の結果を得ることができる。５．１例１―Osteocalcinプロモーター活性を調整するＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１タンパク質の単利および特徴付けこの例は、ＯＳＥ２要素に結合している因子であるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の同定、クローニングおよび特徴付けを記載する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞分化の第１の転写レギュレーターとしてそれを同定するいくつかの機能的特徴を有する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、発展の間および誕生の後は骨芽細胞系列系譜に制限され、骨形態形成タンパク質７（ＢＭＰ）および１．２５（ＯＨ）₂ ビタミンＤ₃（１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃）などの骨芽細胞分化因子により調節される。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞内に発現されている複数の遺伝子のプロモーター内に存在するＯＳＥ２要素に結合し、これらの遺伝子の発現を調整する。最後に、非骨芽細胞系内のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の強制された８がは、いくつかの骨芽細胞特異的遺伝子の発現を誘導する。５．１．１方法５．１．１．１Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのクローニングｃＤＮＡは、２日令のマウスからの頭蓋冠の逐次消化により得られた一次骨芽細胞から、ポリ（Ａ）⁺ＲＮＡと、プライマーとしてオリゴ−ｄＴおよびランダムオリゴヌクレオチドの混合物とを使用して、調製される(DucyおよびKarsenty 、1995)。ｃＤＮＡライブラリーはＥｃｏＲＩアダプターを使用してλｇｔ１１内に形成された。ＥｃｏＲＩアダプター(Promega、Madison、WI)は、ｃＤＮＡの各末端にライゲーションされた。過剰のアダプターは、エタノールの沈降により除去された。ライゲーションされたアダプターを有するｃＤＮＡは、λｇｔ１１バクテリオファージ脱リン酸化ＥｃｏＲＩ消化腕にライゲーションされた(Stratag ene、La Jolla、CA)。バクテリオファージＤＮＡは、ＧｉｇａｐａｃｋＩＩＧｏｌｄ抽出物を使用して、ウイルスタンパク質によりパッケージングされた(S tratagene、La Jolla、CA)。大腸菌バクテリア(Ｙ１０８８、Ｙ１０８９、Ｙ１０９０、Stratagene、La Jolla、CA)を、これらのウイルスで感染し、製造業者のインストラクションにしたかってプレーティングした。プラークスクリーニングは、低いストリンジェンシー（３７℃、２０％ホルムアミド、１０％デキストラン硫酸、６ＸＳＳＣ［１ＸＳＳＣは、０．１５ｍＮａＣｌ＋０．０１５クエン酸ナトリウム）で、２０時間にわたり３７℃で、プローブとして、Ｃｂｆａ１ runtドメインのＡｓｐ７１８／ＨｉｎｄＩＩＩ断片（＋１４３１／＋１６８７）コード部分を使用して、行った。ファージ挿入物は、ＥｃｏＲＩ消化によりファージ腕から解放され、ゲル精製され、脱リン酸化ＥｃｏＲＩ消化ｐＢＳＫＳ（−）プラスミド内にライゲーションされ(Stratage、La Jolla、CA)、従来の方法を使用して配列決定された。ライゲーション固定ＰＣＲ^TMは、Ansari-Lari ら(1996)にしたがつて、ＤＮａｓｅＩ(Boehringer Mannheim、Indianapolis、 IN)により処理された一次骨芽細胞全ＲＮＡ上で行った。ｃＤＮＡ合成および特異的人れ子式のＰＣＲ^TMのためのプライマーは、それぞれ、５’−ＣＡＣＣＡＣＣＧＧＧＣＴＣＡＣＧＴＣＧＣ−３'（配列番号３）および５’−ＣＴＧＣＧＣＧＧＡＡＧＡＧＧＴＧＴＴＧＡＣＧ−３'（配列番号４）であった。初期変性：９４℃で５分、４０サイクル：９４℃で１分の変性、６２℃ で１分のアニーリング、７２℃で１分の延長、最終的延長：１７℃で１５分。配列の解析およびアライメントは、Mac Vectorソフトウェア(Oxford Molecular Group、Cambell、CA)を使用して行った。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１全長含有プラスミドは、ＴｎＴキット(Promega、Prom ega、Madison、WI)および［³⁵Ｓ］−メチオニンを使用して、９０分にわたり３０℃で、ｉｎｖｉｔｒｏで転写／翻訳された。³⁵Ｓ標識タンパク質は、ＳＤＳ −ＰＡＧＥにより解析された。５．１．１．２プラスミド組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の生産のために、タンパク質全長をコードするＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのＡｃｙＩ／Ｘｂａｌ（＋３１１／＋３３３４）断片が、６ヒスチジン残基のためのコード配列と同一のフレーム内にライゲーションされた(Van dykeら,1992)。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１（ｐＣＭＶ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１）のための発現プラスミドは、ｐＣＭＶ５プラスミド(Meyersら,1995 )のＣＭＶプロモーター領域の転写制御下で、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡを挿入することにより構築される。レポータープラスミドｐ６ＯＳＥ２−ｌｕｃ、ｐ６ＯＳＥ２ｍ−ｌｕｃ、ｐ１４７ｌｕｃ、およびｐ１４７ｍ−ｌｕｃが、前に説明された(DucyおよびKarsenty 1995、Zhangら,1997)。ｐ９１０−Ｏｐｎ− ｌｕｃは、ｐＧＬ２ベクター(Promega)内にネズミOsteopontinプロモーターの− ９１０／＋９０ＰｓｔＩ断片をクローニングすることにより得られた。ｐ１０６−Ｏｐｎ−ｌｕｃは、次いで、−９１０〜−１０６断片の除去により生成された。５．１．１．３組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびＤＮＡ結合分析法ＨｉｓタグＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド（Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１）が、製造業者にインストラクションに従って、Ｎ結合イミノ二酢酸アガロース樹脂(Quiagen、Santa Clarita、CA)上で濃縮され、アリコートされ、−８０ ℃で貯蔵される。ＥＭＳＡに対して、標識二本鎖オリゴヌクレオチドが、前述のように調製された(DucyおよびKarsenty 1995)。この研究に使用されたオリゴヌクレオチドは、表２に示されている。約５ｆｍｏｌの標識プログラムが、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ［ｐＨ８］２０ｍＭ、ＮａＣｌ１０ｍＭ、ＥＧＴＡ３ｍＭ、０．Ｃ)．ポリ（ｄｌ．ｄＣ）含有バッファー１０μｌ中組み合せタンパク質に加えられた。１０分にわたり室温でインキュベートした後、ローディングバッファーか加えられ(５％グリセロール、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ［ｐＨ８］２ｍＭ、０．０２５％キシレンシアノール／ブロモフェノールブルー)、標本は、９０分にわたり１６０Ｖで０．２５ＸＴＢＥ中５％ポリアクリルアミドゲル上で電気泳動にかけられた。ゲルは乾燥され、オートラジオグラフィにかけられた。競争研究のために、示されている二本鎖無標識オリゴヌクレオチドが、他の成分との結合反応に加えられた。抗ＣＢＦＡ抗血清(Meyersら,1995)を使用する研究において、この抗血清または免疫前血清が、示されている場合、プローブを加える３０分マイクロエレクトロニクスに反応混合物に加えられた。ＯＳＥ２コア結合部位は下線を引かれている。突然変異体は太字。５．１．１．４ＲＮＡ解析ＲＮＡは、製造業者のインストラクションに従って、ＲＮＡｚＯＬ(Cinna/Bit ecx Lab.Houston,TX)により、培養細胞から単離された。マウス胚および成熟マウス組織からのＲＮＡが、前述のようにチオシアン酸グアニジン−ＣｓＣｌ勾配法を使用して、単離された(Sambrookら,1989)。簡単に記述すると、全またはポリ（Ａ）⁺ＲＮＡは、アガロース−ホルムアルデヒド変性ゲル上で電気泳動により分画され、Hybond―Ｎ^+TMに移行された(Amersham,Arlington Heights,IL)。使用プローブは、Ｏｓｆ2/Ｃｂｆａ１無翻訳およびコード配列の第１の３３６−ｂｐ、Ｃｂｆａ１のruntドメインのＡｓｐ７１８／ＨｉｎｄＩＩＩ断片（＋１４３１／＋１６８７）コード部分、マウスOsteocalcin ｃＤＮＡ、マウスOsteoponti n ｃＤＮＡ、マウスα１（Ｉ）collagen ｃＤＮＡおよび１８ＳｒＲＮＡｃＤＮＡ(Ambion,Austin,TX)を含む。ハイブリッド形成（ハイブリダイゼーション）は、６．６％ＳＤＳおよび０．３３Ｍリン酸ナトリウムバツファーｐＨ７．２中で６０℃で行われた。最終的な洗浄は、０．２または０．５ＸＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳ中で、６０％で、二度２５分行われた。ＲＴ−ＰＣＲ^TM解析において、様様な発育段階におけるマウス胚からのＤＮＡｓｅＩ処理された全ＲＮＡが、オリゴ−ｄＴおよびrunt特異的5'-CGGGACCGTCC ACTGT-3'(配列番号１７)プライマーを使用して、逆転写された。ｃＤＮＡは、プライマー5'-GAGGGCACAAGTTCTATCTGGA-3'（配列番号１８）および5'-GGTGGTCCGCGATGATCTC-3'（配列番号１９）を使用して、３０サイクルにわたり増幅された。ＰＣＲ^TM生成物は、アガロースゲル上で分離され、Hybond−Ｎ⁺(Amersham)へ移行され、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１無翻訳およびコード配列の第１の３３６−ｂｐを含む³²Ｐによりハイブリッド形成された。プライマー5'-GTTGAGAGATCATCTCCACC-3'（配列番号２０）および5'-AGCGATGATGAACCAGG TTA-3'（配列番号２１）が、ｃＤＮＡの質およびローディングの制御として、Ｈｐｒｔ遺伝子の増幅エクソン２に使用された。５．１．１．５ｉｎｓｉｔｕハイブリッド形成５’無翻訳およびコード配列を含むＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡの３３６ｂｐ断片、マウスＭＧＰｃＤＮＡ(Luoら，1997)、およびｐＢＳＫＳ（−）(St ratagene)内へクローニングされたマスタα１（II）collagen ｃＤＮＡの３’無翻訳領域が、Ｔ3またはＴ7 ＲＮＡポリメラーゼを使用して、アンチセンスリボプローブを生成するために使用された。切片ｉｎｓｉｔｕハイブリッド形成手順は、次の変更を除いては、前述のようである(Sundinら,1990)。すなわち、８ −μｍの切片は、ポリ−リシン−処理されたスライド上に取付けられた。ハイブリッド形成およびハイブリッド形成後洗浄は、前述のように行われた(Wilkinson ,1992)。簡単に記述すると、切片は、５０℃で一夜にわたりハイブリッド形成された。ストリンジェンシー洗浄は、６２℃で行われた。露出時間は、２〜１６日であった。オートラジオグラフィ、Hoechst ３３２５８染色、および写真は、前述のように行われた(Sundinら，1990)。５．１．１．６細胞培養および骨芽細胞分化の誘導マウスＦ９奇形癌細胞が、ＥＭＥＭ／１０％胎児ウシ血清（ＦＢＳ；ＧＩＢＣＯ，GAitherburg,ＭＤ）中で培養された。Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２線維芽細胞が、ＤＭＥＭ／１０％ＦＢＳ中で培養された。ネズミＭＣ３Ｔ３−Ｅ１頭蓋冠細胞系が、α−ＭＥＭ１０％ＦＢＳ中に維持された。ラット骨肉腫ＲＯＳ１７／２．８細胞が、ＤＭＥＭ／Ｆ１２／１０％ＦＢＳ中に維持された。骨芽細胞分化Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２線維芽細胞の誘導のために、２×１０⁴細胞／ｃｍ²の密度で、プレーティングされた。２４時間（ｔ₀）後、この培地、前述のように(Zhangら,1997 )、１２時間にわたり、ＢＭＰ７２００ｎｇ／ｍｌまたはビークルにより補足された新鮮な混合物により置換された。５．１．１．７ＤＮＡトランスフェクションＦ９およびＣ３Ｈ１０Ｔ１／２細胞は、リン酸カルシウム随伴沈降（共同沈降）手順(Sambrookら,1989)を使用して、各レポータープラスミド(５μｇ)、発現プラスミド５μｇ、およびｐＳＶβ−ｇａｌ２μｇにより、同時トランスフェクション(cotransfection)された。トランスフェクション後、細胞は、ＰＢＳ（ＮａＣｌ１５０ｍＭ、リン酸ナトリウム１０ｍＭ[ｐＨ７．２]）により二度洗浄され、通常の培地が、２４時間にわたり加えられた。細胞が回収され、凍結融解３サイクルにより溶解された。レゾルシンβ―Ｄ−ガラクトピラノシド(Boehringe r Mannheim)を使用して比色酵素分析により測定された、各溶解物中に存在する β―ガラクトシダーゼ活性は、異なる研究の間のトランスフェクション効率を正常化するために使用された。ＤＮＡ同時トランスフェクション(Ausubelら,1997) は、複製で行われ、少なくとも四度繰り返され、量的および質的に同様の結果が得られた。ルシフェラーゼ活性が、Monolight 2010発光計(Analytical Luminesc ence Laboratory，San Diego，CA)およびＤ−ルシフェリン基質(Analytical Lum inescence Laboratory)を使用して、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ［ｐＨ７．８］１００ｍＭ、ＡＴＰ５ｍＭ、ＭｇＳＯ₄１５ｍＭ、ジチオトレイトール（ＤＤＴ）１ｍＭ中で、分析された。超発現(overexpression)研究において、発現プラスミドが、製造業者のインストラクションに従って、Lipofectam in（ＧＩＢＣＯ）で４時間にわたりトランスフェクションされた。ＲＮＡは、トランスフェクション後４０時間経てからか知れた。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ＡＵＧ配列の下流の領域１０５−ｂｐに対応する、アンチセンスオリゴヌクレオチド（5'-CTGCGCTGAAGAGGCTGTTTGA-3';配列番号２２）およびコントロールスクランブルされたオリゴヌクレオチド(5'-CGCGTATCGTGATGTAGACGTG-3'；配列番号２３) がホスホチオエート改変条件(Midlands,Inc.,Midlads,TX)中で合成された。０．１μＭが、Lipofectamin（ＧＩＢＣＯ）をしよて５時間にわたりトランスフェクションされ、ＲＮＡが、トランスフェクション後４０経てから単離された。５．１．２結果Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の単離、骨芽細胞特異的ＣＢＦＡｃＤＮＡＣＢＦＡとＯｓｆ２との間の免疫類似性(Geoffroyら,1995;Merrimanら,1995) が与えられているとして、発明人は、骨芽細胞中のＣｂｆａ関連ｍＲＮＡを探した。ノーザンブロッティング分析が、マウス胸腺および脾臓、すなわちＣｂｆａ１、Ｃｂｆａ２、およびＣｂｆａ３が発現されている２つの組織と、一次骨芽細胞とに由来のポリ（Ａ）⁺ＲＮＡを使用して、行われた、このフィルターが、Ｃｂｆａ１のruntドメインをコードする配列、すなわち、Ｔリンパ球内に発現されると予測された遺伝子(Satakeら,1995)を含むプローブによりハイブリッド形成された場合、転写が、胸腺内に検出された信号より２０倍豊富であった骨芽細胞内に検出された(図１Ａ，レーン１、３、および４)。この知見に基づき、マウス骨芽細胞ｃＤＮＡライブラリーが、前述と同一のプローブを使用して、低減されたストリンジェンシーでスクリーニングされた。同一のタンパク質をコードする３つの独立したクローンが、同定された。このｃＤＮＡは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１と称される、何故ならばそれは、ＯＳＥ２に結合する因子をコードし、Ｃｂｆａ１遺伝子によりコードされる。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、そのＮ−末端に近いグルタミン／アラニンに富むドメイン、runtドメイン、および、そのＣ−末端におけるプロリン／セリン／トレオニンに富むドメインを含む。runtドメインおよびＰＳＴドメインをコードする配列は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１および、最初に記載のＣｂｆａ１において同一であるが、これらの２つの転写産物は、それらの５’末端において全く異なる。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、グルタミン／アラニンドメインの、異なるアミノ酸区間をコードし、全く異なる５’無翻訳配列を有する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１とＣｂｆａ１との間のヌクレオチドの３’部分の同定は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、Ｃｂｆａ遺伝子から由来することを示唆する。これは、Ｃｂｆａ遺伝子内のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１５’配列をコードするエクソンの存在により確認される。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の５'末端は、予測されたコード配列と同一のフレーム内に、２つのＡＴＧコドンを含む。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのｉｎｖｉｔｒｏ転写／翻訳は、それぞれ、６３ｋＤａまたは６９ｋＤａで走行する、２つのポリペプチド種をもたらし、これは、双方のＡＴＧコドンが、６９位（番目）におけるＡＴＧコドンが最も効率的なイニシエーターに見えるにもかかわらず、翻訳イニシエーターとして機能することができることを示す。ＯＳＥ結合活性は、骨芽細胞核抽出物中のみに検出可能である。したがって、ノーザンブロッティング分析が、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現が、成熟マウス内の骨芽細胞に制限されているかどうかを決定するために、行われた。図１Ｄに示されているように、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１転写産物は、骨および骨芽細胞内にのみ検出可能であり、他の検査組織内では検出可能でなかった。特に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、胸腺および脾臓、すなわち、他のＣＢＦＡが発現されている２つの組織、または、線維芽細胞を含む組織(皮膚)、筋芽細胞(筋肉、心臓)、または軟骨細胞(軟骨)、間葉由来の他の細胞型内に検出された。同一の結果が、ＲＴ −ＰＣＲ^TM分析と、後続の、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１特定的プローブによるサザンハイブリッド形成とにより得られた。５．１．２．２Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、ＯＳＥ２へのその結合により、Oste ocalcinプロモーター活性を増加するＯＧプロモーター内に存在するＯＳＥ２要素へのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の結合は、ヒスチジンによりタグされた組換えＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ポリペプチド（Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１）を使用して、電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）で、分析された。一連の、突然変異したＯＳＥ２が、Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を結合するそれらの能力の点で、野生型ＯＳＥ２と比較された(図２Ａ)。5'-AACCAC-3'配列内のいずれの単一または二重ｂｐ突然変異も、Ｈｉｓ −Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の結合を撤廃し(図２Ａ、レーン３〜８)、このコア配列の外部に位置する突然変異は、ＤＮＡへのＨｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１結合に影響しなかった(図２Ａ、レーン２)。骨芽細胞核抽出物内に存在するＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１結合活性とＯＳＥ２結合活性とが関連することを証明するために、抗Ｃｂｆａ１抗血清が、ＯＳＥ２への核抽出物の結合を撤廃するＥＭＳＡ中で使用された(Geoffroyら,1995)。図２Ｂに示されているように、この抗血清は、ＯＳＥ２へのＨｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の結合を撤廃した、免疫前血清は撤廃しなかった。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の転写活性は、ＤＮＡ同時トランスフェクション研究により評価された。これらの研究は、最初は、OsteocalcinもＣｂｆａ遺伝子も発現していないＦ９マウス奇形癌細胞内で行われ(DucyおよびKarsenty,1995、Furu kawaら,1990)、このようにして、ヌルバツクグラウンドを提供する。Osteocalci n基底プロモーター（ｐ６ＯＳＥ−ｌｕｃ）の上流でクローニングされたＯＳＥ２オリゴヌクレオチドの６つのコピーを含む構築物の活性は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現ベクターによる同時トランスフェクションが行われると、７０倍より大きく刺激された。この効果は、Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１（ｐ６ＯＳＥ２ｍ−ｌｕｃ）の結合を撤廃するＯＳＥ２内での２ｂｐ突然変異により撤廃された(図２Ｃ)。同様の結果が、ＤＮＡ同時トランスフェクションがＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２線維芽細胞内で発現されていない、別の細胞系内で行われた(図２Ｄ)。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、単一野生型ＯＳＥ２要素（ｐ１４７−Ｌｕｃ）を含むOsteocalcinプロモーター断片（−１４７／＋１３）をトランス活性化することもできる(図２Ｅ)。このようにして、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、特異的に、ＯＧ２プロモーター内に存在するＯＳＥ２要素に結合し、この結合により転写を活性化できる。５．１．２．３Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、発育中に骨芽細胞系列系譜の細胞に印を付ける何時、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現がマウス発育中に開始されるかを決定するために、ＲＴ−ＰＣＲ^TM分析が、行われ、次いで、異なる段階のマウス胚からのＲＮＡを使用して、サザンブロッティングハイブリダイゼーションが行われた。意外にも、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、交配後（ｄｐｃ）１２．５日胚でピークに達し、第１の骨形成センターは、１４．５ｄｐｃ前には観察できなかった(Kau fman,1992)。ｉｎｓｉｔｕハイブリダイゼーション研究内のこの分析節に基づいて、骨格発育のいくつかの段階で行われた。骨格発育中の第１の重要な段階は、間葉細胞圧縮の形成である。この間葉圧縮は、１２．５ｄｐｃマウス胚で同定可能であり、完全に分化された軟骨細胞は、 Meckel軟骨内のみに存在した(Kaufman,1992)。重要なことは、これらの細胞は、 α１（II）collagen、すなわち軟骨細胞系列系譜おマーカーを発現し、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を発現しないことであり、これは、その発現が、分化されていない間葉細胞と、骨芽細胞系列系譜の細胞とに制限されているが、分化された軟骨細胞表現型とは互いに排他的である。１４．５ｄｐｃマウス胚において、無機質化された骨はまだ存在しないが、第１の骨形成センターは、頭蓋骨内に現れた。この段階で、１２．５ｄｐｃ胚の場合と同様、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、頭蓋骨および骨格の他の部分の各発育中骨格要素内に発現された。その発現は、この時点で明瞭に、骨芽細胞系列系譜の細胞と、軟骨膜とに制限され、分化された軟骨細胞内には存在しなかった。たとえば、助骨郭において、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、最初に骨形成する肋骨自身に制限され(Kaufman,1992)、α１（II）が最高に発現された肋軟骨内には存在しなかった。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１およびα１（II）の発現の同様の排他的パターンは、発育中の長い骨内にも観察された。最後に、ｉｎｓｉｔｕハイブリッド形成が、１６．０ｄｐｃ胚上で行われた。この段階で、骨形成センターは、大部分の骨格内に存在しないか、すべての骨が、骨格製剤のアリザリン赤色染色による評価によると、無機質化されてはいなかった(Kaufman,1992)。最後の骨形成は、２つの明確な経路により発生する。頭蓋骨において、間葉細胞が、直接に、骨芽細胞内で分化する(膜内骨形成)。骨格の残りの部分において、間葉圧縮は、最初に、軟骨形成細胞内で分化し、軟骨形成細胞は、骨芽細胞により置換される（軟骨内骨形成）(Erlebacherら,1995)。１６．０ｄｐｃ胚の頭蓋骨において、鼻骨、前頭骨、蝶形骨底、後頭骨底および下顎骨が、高レベルのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｍＲＮＡを発現した。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現が、構造の無機質化が発生する１２〜２４時間前に、胸骨柄、胸骨分節および舌骨などの骨内に検出された(Kaufman,1992)。前と同様に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、Meckel軟骨および胸骨柄の軟骨細胞、皮膚の線維芽細胞、いずれの検査組織内にも検出可能でなかった。身体中心部骨格において、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、尾椎が無機質化される２日前に、尾椎の骨形成センターの細胞内で発現された(Kaufman,1992)。隣接切片上の対照研究において、Matrix glaタンパク質(Ｍｇｐ)、すなわち、軟骨細胞内では発現されたが、骨芽細胞内では発現されなかった遺伝子(Luoら,1997)の発現が、椎骨発育中、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現とは互いに排他的であった。Ｍｇｐ発現軟骨細胞は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現細胞が存在する骨形成センターを包囲した。５．１．２．４骨芽細胞分化因子により調節されるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現次に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現が、骨芽細胞分化に影響することが知られているビタミン、成長因子およびホルモンにより調節されるかどうか、そして、それが、骨芽細胞分化のｉｎｖｉｔｒｏモデル内の骨芽細胞表現型の既知のマーカーの発現に先行するかどうかが問われた。ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１細胞(Sudoら,1983 )が、マウス肉腫から得られた。それらは、それらが、アスコルビン酸の存在下で６〜８日にわたり培養されないかぎり、Bone sialoprotein(Bsp)またはOsteoc alcinなどの骨芽細胞特異的遺伝子を発現しない(Reynolds,1967)。図４Ａに示されているように、アスコルビン酸により処理されたＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１細胞内で発現された、骨芽細胞表現型のうちの最初の遺伝子特徴であった。その発現は、数日のＢｓｐおよびOsteocalicin発現を先行した。Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２は、骨芽細胞系列系譜に関与せず、いかなる骨芽細胞遺伝子も通常は発現しない。しかしながら、ＢＭＰ２およびＢＭＰ７によるこれらの細胞の処理は、骨芽細胞分化を誘導できる(Piccoloら,1996)。Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２細胞が、ＢＭＰのみの存在下で培養された場合、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、Oste ocalcinおよびOsteopontinの発現の前に誘導された(図４Ｂ)。最後に、１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃、すなわち、骨リモデリング（再造形）を調節する主要ホルモンのうちの１つは、マウスOsteocalcin発現を抑制する。この効果は、ＯＳＥ２への骨芽細胞核抽出物の結合を撤廃する(Zhangら,1997)。この観察と一致して、１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃による一次マウス骨芽細胞の処理は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現をほぼ撤廃した。５．１．２．５Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞内の遺伝子に影響するＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の発現の発育パターンは、それが、骨芽細胞表現型の確立に必要とされ、したて、骨芽細胞内に発現された主遺伝子の発現を調節する。発明人は、Osteocalcin遺伝子１(ＯＧ１)、α１（Ｉ）collagen、Ｂｓｐ、およびOsteopontinなどの遺伝子のプロモーター内のＯＳＥ２様要素を探し、各場合にこのような要素を見つけた。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を結合する、これらの様様なＯＳＥ２要素の能力は、各部位をカバーするオリゴヌクレオチドをプローブとして使用し、骨芽細胞核抽出物をタンパク質源として使用して、ＥＭＳＡにより検査された。各場合、骨芽細胞核抽出物を使用する場合、野生型ＯＳＥ２オリゴヌクレオチドか競争して除去することができるが、突然変異体ＯＳＥ２オリゴヌクレオチドが競争して除去することはできないタンパク質ＤＮＡ複合体の発生が、観察された(図５Ａ)。同様に、Ｈｉｓ−Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、ＯＧ１、α １(Ｉ)、ＢＳＰおよびOsteopontinプロモーター内に存在するＯＳＥ２配列を含む標識オリゴヌクレオチドを結合することが分かった(図５Ｂ)。これらの遺伝子のプロモーターへのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の結合の機能的妥当性が、ＤＮＡ同時トランスフェクションと、オリゴヌクレオチドアンチセンス研究とによりテストされた。ＤＮＡ同時トランスフェクションにおいて、ＯＳＥ２配列を含むマウスOsteopontinプロモーターの断片の活性が、Ｆ９細胞内のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現による同時トランスフェクションが行われると、４倍増加され、この要素の除去は、この効果を撤廃する(図５Ｃ)。異なるアッセイにおいて、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１アンチセンスオリゴヌクレオチドが、ＲＯＳ１７／２．８骨芽細胞内でトランスフェクションされ、ＲＮＡが、４０時間後に回収された。対照オリゴヌクレオチドではなく、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１アンチセンス発現が、α１（Ｉ）collagen発現の撤廃をもたらし、OsteocalcinおよびOsteopontin の発現されの顕著な低下をもたらした。これらの遺伝子の発現のよく抑制は、処理の毒性効果に起因しない、何故ならば細胞生存率は、処理されたアンチセンスオリゴヌクレオチドと、対照プレートとでは同一であった。これらの研究は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、骨芽細胞内に発現された重要な遺伝子の発現を調節することを示唆し、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、分化された骨芽細胞表現型の確立に必要とされるであろうことを示唆する。５．１．２．６Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、非骨芽細胞系の骨芽細胞分化を誘導する総合すると、前述の結果は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、非骨芽細胞の骨芽細胞分化を誘導するとの仮定に導く。この仮定をテストするために、通常はＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１も、α１（Ｉ）collagen、Ｂｓｐ、およびOsteocalcinなどの骨芽細胞表現型の遺伝子特徴も、発現しない２つの細胞系のＤＮＡトランスフェクションが行われた。ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１肉腫細胞が、骨芽細胞系列系譜に関与する、分化されない細胞であると考えられる。それらは、アスコルビン酸の欠如下で培養されると、骨芽細胞特異的遺伝子を発現しない。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡおよび空のベクターにより一時的にトランスフェクションされたＭＣ３Ｔ３ −Ｅ１細胞のノーザンブロッティング分析は、これらの細胞内のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の強制された発現は、Ｂｓｐ、Osteocalcinおよびα（Ｉ）collagen発現をもたらし、空のベクターのトランスフェクションは、この効果を有しないことを示した(図６Ａ)。別の重要な細胞系は、Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２系である、何故ならばこれらの細胞は、骨芽細胞系列系譜に関与しない多能性線維芽細胞であるからである。実際、それらは、５−アザシチジンによる処理に従って、筋芽細胞、脂肪細胞、または軟骨細胞さえも獲得できるが、骨芽細胞表現型は獲得できない(TaylorおよびJon es,1979)。骨芽細胞遺伝子発現を誘導する、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１のこの能力は、ラット軟骨肉腫またはＣ２Ｃ１２筋芽細胞などの、形質転換または分化された細胞系内で観察されなかった。５．１．３概要５．１．３．１Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１骨格内の細胞特異的分化を制御する遺伝子の同定は、開始されたにすぎない。今まで、これらの研究は、主に、軟骨細胞および骨芽細胞の分化を解明した(Kar aplisら,1994;Wangら,1992;Johnsonら,1992)。骨芽細胞分化のメカニズムを理解するために、発明人は、Osteocalcin、すなわち最も骨芽細胞特異的な遺伝子の発現の調節を研究した。発明人は、本願明細書において、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１、すなわち、骨芽細胞分化の決定因の多数の特徴を有する、第１の骨芽細胞特異的転写要素のクローニングを報告する。いくつかの実験的論拠は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、Ｃｂｆａ１遺伝子、すなわち、Dosophila遺伝子runtおよびlozenge(Kaniaら,1990;Ogawaら,1993a,b;Da gaら,1996)の３つの既知のマウス同族体のうちの１つによりコードされる。第一に、Ｃｂｆａ１のゲノム構造の解析は、大きいイントロンにより、グルタミン／アラニンをコードするエクソンから分離されたＯｓｆ２５'端末をコードするエクソンを示した。第二に、ヒトおよびマウス内の遺伝的証拠は、いかなる他の異常性の欠如下で、骨芽細胞分化におけるＣｂｆａ１の役割を証明する。第三に、ＲＴ−ＰＣＲ^TM研究において、発明人は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の５'端末に対応する配列のみを増幅でき、これは、最初にＣｂｆａ着せれた５'配列が、この遺伝子に無関係である可能性を証明する。新規のＣＢＦＡを増幅するようにデザインされているオリゴヌクレオチドと、低いストリンジェンシーでのマウス骨芽細胞ｃＤＮＡライブラリーの繰り返しのスクリーニングとによる、大規模なＰＣＲ^TM解析でも、他のＣｂｆａ転写産物を同定できず、これは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、唯一のＣｂｆａが骨芽細胞内に発現しない場合、優勢でだることを証明する。５．１．３．Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現および調節骨芽細胞は、未知の遺伝的経路を介して間葉の先祖から分化する。骨芽細胞に特異的なけた形態形成的特徴が存在しないので、表現型は、いくつかの遺伝子、すなわち型１ collagen、骨sialoprotein、骨芽細胞に最も特異的であるOsteoc alcin、および、他のより特異的でない遺伝子、たとえばOsteopontinの共存性発現と、ＥＣＭを無機質化する能力とによってのみ画定することができる(AubinおよびLiu,1996)。第１の同定可能な骨芽細胞は、比較的遅く、マウスにおいて１４．５ｄｐｃでの発育中に現れた(Kaufman,1992)。ｉｎｓｉｔｕハイブリッド形成研究は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、骨芽細胞系列系譜の最も早期の分子マーカーである。その発現は、既に、１２．５ｄｐｃ胚中の発育する頭蓋骨、身体中心部骨格および四肢骨格の間葉圧縮内で観察できる。重要なことは、骨格発育のその段階で、将来の身体中心部骨格および四肢骨格の間葉圧縮内に存在する細胞が、軟骨細胞表現型に特異的な多数の遺伝子を発現することである(Horton,1993)。１２．５ｄｐｃにおけるこれらの細胞内のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１の発現は、それらが、骨芽細胞になる能力を有することを示し、間葉圧縮内に骨芽細胞と軟骨細胞とのための共通の先祖細胞が存在することを意味する。骨格発育のより後期の段階で、細胞分化がより進行した１４．５ｄｐｃおよび１６．０ｄｐｃ胚において、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現は、骨芽細胞細胞になる、または、既に骨芽細胞特徴を有するが、分化された軟骨細胞内で検出可能でない細胞のサブセットに制限された。発育中のマウス胚の他の細胞型は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１を、検出可能なレベルまで発現しなかった。骨芽細胞先祖内のその発現と一致して、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の発現は、骨芽細胞分化に影響する制御因子および成長ホルモンにより調節された。ＢＭＰは、発育中に骨形成をもたらす、一連のイベントから成るカスケードを誘導する、分泌されたシグナリング分子である(Kingsley,1994)。この場合、ＢＭＰ７は、通常は発現されない細胞内でのＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現を誘導することが示され、これは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、骨芽細胞内のＢＭＰシグナル形質導入経路内の核標的のうちの１つであるとの仮説を示唆する。早期に、マウスにおいて、 Osteocalcin発現が、間接的メカニズムを介して、１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃によりダウンレギュレーションされる。一次骨芽細胞培養の１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃処理は、ＯＳＥ２への骨芽細胞核抽出物の雨後を撤廃する(Zhangら,1997)。この場合に報告された、１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃によるＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１発現のダウンレギュレーションは、粗核抽出物を使用して行われた前の研究と一致し(Zhangら ,1997)、１．２５（ＯＨ）₂Ｄ₃は、骨芽細胞末端分化を阻止し、形成不全性骨疾患を引き起こすことを示唆する臨床的証拠の増大する体系と一致する(Goodmanら ,1994)。５．１．３．３骨芽細胞分化中のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１融合発現のＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１パターンと、ＢＭＰによるその調節は、それが、骨芽細胞特異的遺伝子発現および分化において大幅に広範囲な役割を果たすことを示唆する。この仮説と一致して、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１結合部位が、大部分は骨芽細胞内に発現された４つの遺伝子、すなわち、２つのOsteocalcin遺伝子、 α１（Ｉ）Collagen、Ｂｓｐ、および、骨芽細胞および他の＾細胞型内に発現された、別の遺伝子におけるOsteopontinのプロモーター内で同定された。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１結合部位の機能的妥当性は、３つの異なる系統の証拠により支持されている。第一に、ＤＮＡ同時トランスフェクション研究において、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、ＯＳＥ２要素を含む、OsteopontinプロモーターまたはOsteoca lcinプロモーターの断片の活性を増加した。第二に、オリゴヌクレオチドアンチセンス研究は、骨芽細胞系内のα１（Ｉ）Collagen、Osteocalcin、およびOsteo pontin発現のレベルの急激な低下を示した。第三に、より重要なことに、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１機能の分析は、それが、細胞培養研究において非骨芽細胞内の骨芽細胞特異的遺伝子発現の誘導により評価されたように、骨芽細胞分化にとって充分であることを示した。非骨芽細胞内の骨芽細胞特異的遺伝子発現を誘導する、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１のこの能力は、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１が、ｉｎｖｉｖｏでの骨芽細胞系列系譜に沿っての問葉細胞の分化のために必要とされることを示唆する。前述の細胞培養研究と一致して、Ｃｂｆａ１欠如マウスは、骨芽細胞が無い。５．１．３．４Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１お多数の骨形成異常症および骨粗しょう症のなじみの形は、まだ、分子レベルで説明できない。遺伝的疾患に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１のような転写因子が原因であるためには、膜内および軟骨内の骨形成に関与する一般的な欠陥が存在しなければならない。Ｃｂｆａの遺伝マッピングは、それが、ヒト(Mundlosら,1995)およびマウス(Ｃｃｄマウス突然変異体，S illenceら,1987)内の鎖骨頭蓋形成異常症の原因である遺伝子と同一の位置にマッピングされることを示した。さらに、分子分析は、鎖骨頭蓋形成異常症を有する科じゃのＣｂｆａ１遺伝子のナンセンス突然変異を検出し、強い遺伝的証拠は、Ｃｂｆａ遺伝子が、Ｃｃｄマウス内に検出されることを示唆し、これは、ｉｎｖｉｖｏでの骨芽細胞分化におけるこの遺伝子の重要性を証明する。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１の各ドメインの機能的分析は、完成されていないが、そのＮ−端末におけるアラニン残基の長い区間の存在が、目につく。Ｈｏｘｄ１３内のアラニン区間を延ばす突然変異は、合多指症、すなわち、手足の遺伝的骨格奇形を引き起こす(Muragakiら,1996)。Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１内のアラニン区間の延長は、若年骨粗しよう症のなじみの形などの骨の疾患を引き起こす可能性がある。最後に、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１は、腫瘍形成形質転換に関与する転写因子のファミリーに属し、これにおいて、白血病を引き起こす再配置が示された(Okudaら,1996; SpeckおよびTracy,1995)。このようにして、骨肉腫、すなわち最も頻繁な悪性骨腫瘍内のＣｂｆａ遺伝子の再配置を探すことが重要である。５．２ゲノム構成、１とＣｂｆａ１遺伝子の発現 runt／Ｃｂｆａ遺伝子ファミリーは、Drosophilaおよび１との間で高度に保存されている(Kagoshimaら,1993;Ogawaら,1993a,b)。これらの遺伝子は、ＤＮＡ結合ドメイン、すなわちruntドメインが、１２８アミノ酸ポリペプチドである転写因子であって、これらのポリペプチドのアミノ酸配列は、Drosophilaとヒトタンパク質との間に高度に保存されている転写因子をコードする。３つのヒトＣＢＦＡ遺伝子、すなわち、ＣＢＦＡ１、ＣＢＦＡ２およびＣＢＦＡ３が、最近、同定された(Levansonら,1994;Ahnら,1996;Wijmengaら,1995)。正式にはＡＭＬ−２として知られているＣＢＦＡ２は、多数の研究者の焦点であった、何故ならばそれは、急性骨髄性白血病のいくつかの形において観察されたｔ(８；１２)トランスロケーションにおいて破断されているからである(SpeckおよびTracy，1995;Nu ciforaおよびRowley，1995;Ito,1996)。この臨床的観察と一致して、マウス内の遺伝子標的によりＣｂｆａ２遺伝子の除去は、発育中に早期の造血の停止をもたらす。例１は、このファミリーの別の重要なメンバー、すなわちＣＢＦＡ１の重要な生物的特性を示した。それは、Ｏｓｆ２／Ｃｂｆａ１、すなわち、マウントＣｂｆａ１の転写産物が、骨芽細胞内に発現された多数の遺伝子の発現を制御する骨芽細胞特異的転写因子であり、非骨芽細胞の骨芽細胞分化を誘導することができることを示した。Ottoら(1997)は、マウスにおけるＣｂｆａ１遺伝子の除去は、骨芽細胞の分化の停止に起因して骨芽細胞の全くの欠如をもたらすことを示した。Ｃｂｆａは、マウス染色体１７およびヒト染色体６ｐ２１にマッピングされる (Baeら,1995;Levanonら,1994)。鎖骨頭蓋形成異常症（ＣＤＤ）は、すなわち、鎖骨の形成不全、泉門および頭の構造の閉鎖の遅延、短頭症、顎前突症、骨格の骨の大部分の画定における不規則および構造的異常を特徴とする、常染色体優勢の遺伝的一般的骨格疾患である。Ottoら(1997)は、ＣｂｆａがマウスＣＣＤにおいて除去されている強い証拠示し、Mundlosら(1995)は、ＣＣＤを有する患者におけるＣＢＦＡ１の除去およびナンセンス突然変異を示し、ＤＮＡ結合を撤廃するＣＢＦＡ１遺伝子における２つのミスセンス突然変異を同定した。このようにして、ＣＢＦＡ１は、マウスおよびヒトにおける骨芽細胞分化の重要なレギュレータであるようである。マウスＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡのクローニングおよび特徴付け中、ＣＢＦＡ１転写産物において前には知られていなかった５'配列が、見つけられた。この発見および、ヒトおよびマウスの骨格発育におけるこの遺伝子の生物的重要性が、ヒトＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１ｃＤＮＡおよびヒトＯｓｆ２／Ｃｂｆａ１遺伝子のクローニングおよび解析を促進した。この例は、ヒト遺伝子のクローニングおよび特徴付けを証明する。 5.2.1 対象と方法 5.2.1.1 OSF2/CBFA1 cDNAのクローニングヒトOSF2/CBFA1 cDNAのクローニングは、全RNAの源として、SaOS-2骨肉腫細胞を使用してRT-PCR^TM法によって行われた。全RNAはグアニジウムチオシアネートCsCl勾配法（Sambrookら、1989）を使用して作成された。cDNAは、GenBan kで入手可能な、部分ヒトCBFA1 cDNA配列から設計されたオリゴ（dT）プライマーあるいはプライマー（5'-GATACGTGTGGGAT-3';配列番号24）を使用して生成された。完全コード配列は４つの重複フラグメントのPCR^TM法による増幅によって生成された。増幅のために使用されたプライマーは、マウスOsf2/Cbfa1 cDNA配列により設計された。すなわち、においてサブクローン化され、配列を決められた。完全長cDNAはその後に、クローニング部位としてユニーク制限部位を使用して生成された。 5.2.1.2サザンブロット法による分析サザンブロット法による分析に関しては、脾臓組織（Strauss、1994）から作成されたヒトゲノムDNAはさまざまな制限エンドヌクレアーゼ（HindIII、Ba mHＩ、SpeＩ、XbaＩ、EcoRＩ）によって加水分解され、１×TBEで0.8％アーリントンハイツ市）上に転移された。ハイブリダイゼーションは放射線元素で標識されたOsf2/Cbfa1 cDNAをプローブとして使用して行われ、65℃で0.2 ×SSC/0.1％ SDSにて30分間２回洗浄された。 5.2.1.3 ヒトCBFA1遺伝子のクローニング CBFA1遺伝子のゲノム機構を解明するために、いくつかのヒトゲノムDNAのライブラリーが使用された。λ-FixIIヒトゲノムライブラリー（Stratagene、カリフォルニア州ラジョラ市）をcDNAから得られたいくつかの放射性同位元素で標識されたプローブを使用してスクリーニングした(図7A)。プローブ１、２、３、４、６が完全長cDNAの制限消化物によって生成され、またプローブ５はPCR^TM法による増幅によって生成された。ハイブリダイゼーションは52℃で一夜6×SSC/10％デキストラン硫酸/5×デンハルト溶液/0.5％SDS/20％ホルムアミド/200μg/ml変性魚精子DNAにて実施された。洗浄はSSC緩衝液にて0.1％SDSで行われた。時間、温度、SSC濃度などの洗浄条件はプローブの長さに適合された。分離されたCbfa1 λファージクローンはサブクローン化され、に、限定DNA配列だけではなくイントロン-エキソン境界の位置を判定するため、オリゴヌクレオチドをプローブとして使用してハイブリダイゼーション法による分析によって分析された。この分析はその遺伝子全体をカバーするクローンを生成することには失敗したが、ヒトPACライブラリーのスクリーニングは促進した。ヒトゲノムPACライブラリーはPCR^TM法による増幅の２ラウンドにより、またサザンブロットハイブリダイゼーション法によりスクリーニングされた。オリゴヌクレオチドの２セットが使用された。第一のセットはruntドメインに位置していた。すなわち、サザンブロット法では、以下に説明されているように、完全長cDNAによりハイブリダイゼーションされた。遺伝子の5'末端をカバーしていたPACゲノムクローンの1.8kb BamHＩ/BglII制限フラグメントは、プライマー拡張によってドのBamHＩ部位に導入された。 5.2.1.4 イントロン-エキソン境界の判定 BamHＩ、HindIII、EcoRＩ、NotＩによって加水分解された各正のクローンからのサザンブロット法による分析ではcDNA配列のさまざまな部分を含むオリゴヌクレオチド（18〜28mers）によってハイブリダイゼーションされた。オリゴヌクレオチドはGenosys（テキサス州ヒューストン市）から購入され、T4ポリヌクレオチドキナーゼ（Pharmacia、ニュージャージー州Piscataway市）によって末端-標識された。サザンハイブリダイゼーション法は前出に説明されているように（Br own、1993）実施され、膜は、45℃で10分間6×SSC0.01％ピロリン酸ナトリウムにて洗浄された。イントロン-エキソン境界のヌクレオチド配列は、プライマーとして適当なオリゴヌクレオチドを使用してジデオキシヌ Corp.、オハイオ州クリーブランド市)。ゲノム配列は、イントロン-エキソン境界を確定するため、cDNA配列と比較された。 5.2.1.5 プライマー拡張分析全RNAはSaOS-2ヒト骨肉腫細胞系から単離された。+25から+53までのCBFA1 cDN A配列に対応するCBFA1転写に特異的な合成オリゴヌクレオチドは以下のように設計された。プライマー拡張研究は前出で説明された通りに行われた(Chen、1990)。逆転写研究は製造業者（Life Science Inc.、フロリダ州セントピータースバーグ市）によって明細に説明された通りにAMV逆転写により１時間45℃で実施された。 RNAのアルカリ性加水分解の後、拡張産物はエタノール沈殿、および配列決定反応を一緒に伴った変性6％ポリアクリルアミドゲル電気泳動法を施行した。 5.2.1.6 長い拡張PCR^TM法による増幅ファージ、PACあるいはヒトゲノムDNAの200ng〜1μgが、イントロンを増幅し、ヒトOsf2/Cbfa1のイントロン-エキソン境界の位置を判定するために鋳型として使用された。プライマーは、マウス相同染色体に関して既に説明されているイントロン-エキソン構造（Ogawaら、1993a）を確認するために、cDNAに沿って設計された。すなわち、増幅は長い拡張鋳型PCR^TMキット（BoehringerMannheim、インディアナ州インディアナポリス市）を使用して行われたが、製造業者の推奨する手順により実施された。DNAフラグメントは0.7％アガロースゲルから精製され、また内部プライマーを使用して配列が決定された。 5.2.1.7 ノーザンブロット法による分析全RNAは、前出に説明されているように(Sambrookら、1989)、さまざまなヒト組織、ヒト細胞系あるいはヒト形質転換線維芽細胞および軟骨細胞からグアニジウムチオシアネート-CsCl勾配上で単離された。RNAは1％ホルムアルデヒド-アガロースゲル上に載せられ、またHybond-N⁺ナイロン膜（Amersham、イリノイ州アーリントンハイツ市）上に転移された。フィルターはcDNAの5'末端に位置するhO sf2/Cbfa1遺伝子に特異的なプローブによってハイブリダイゼーションされた(図 7A、プローブ1)。185SrRNAプローブは内部対照として使用された。ハイブリダイゼーションは6.6％SDS/0.33Ｍリン酸ナトリウム緩衝液pH7.2にて60℃で実施され、また２回各30分間0.2×SSC/0.1％ SDSにて60℃で洗浄が行われた。 5.2.1.8 DNAトランスフェクション研究マウスF9奇形癌細胞系がDNAトランスフェクション研究のために使用された。細胞は5×10⁵細胞/皿の濃度で10cm皿上にプレートされた。細胞は、前出に説明されているように(Geoffroyら、1995)、リポータープラスミド5μg、発現プラスミド５μg、pRSV/βGal 2μgを使用してリン酸カルシウム共同沈殿法によりトランスフェクションされた(ChenとOkayama、1987)。-34/+13mOG2プロモーター-ルシフェラーゼ（luc）の前にある野生型OSE2オリゴヌクレオチドの６つのコピーを含むp6OSE2-lucプラスミドがリポータープラスミドとして使用された(DucyとKarsenty、1995)。pCMV-hOSF2/CBFA1aとpCMV-hOSF2/CB FA1bが発現プラスミドとして使用された。それらにはそれぞれ、CMVプロモーターから上流に正確な配向でエキソン８を欠いた完全長hOSF2/CBFA1a cDNAとhOSF2 /CBFA1b cDNAが含まれている。ルシフェラーゼとβ-ガラクトシダーゼ活性は前出に説明されているように測定された(Geoffroyら、1995)。 5.2.2 成績 5.2.21 ２つの完全長ヒトOSF2/CBFA1 cDNAの単離と特徴付けヒトOSF2/CBFA1 cDNAがSaOS-2ヒト骨肉腫RNAを使用してRT-PCR^TM法によってクローン化された。驚くべきことに、２つのcDNA、OSF2/CBFA1aとOSF2/CBFA1bが生成された。OSF2/CBFA1 aは521アミノ酸の読み取り枠をもっていた。アミノ酸レベルではマウスOsf2/Cbfa1との相同性は98％であった(図7B)。Ｎ末端のグルタミン/アラニン豊富ドメイン、runtドメイン、プロリン/セリン/スレオニン(PST)豊富ドメインはすべて存在した。hOSF2/CBFA1bはPSTドメインにおける１つの66bp 読み枠内欠失以外は同じヌクレオチドをもっていた。この66-bpセグメントは、GenBankには預けられている、部分ヒトCBFA1 cDNAには存在しなかった推定上の22アミノ酸エキソンをコード化する。この読み枠内欠失が推定上の転写活性化ドメインに位置しているので、DNAコ-トランスフェクション研究ではそれがないことがそのタンパク質の転写活性に影響を及ぼすかどうかのテストが行われた。 DNAコ-トランスフェクション研究はCbfa1遺伝子のいずれも発現させないF9マウス奇形癌細胞系において行われた。リポータープラスミドには、最小の-34/+1 3マウスオステオカルシン遺伝子２（mOG2）プロモーターと上流でクローン化されている野生型OSE2オリゴヌクレオチド（p6OSE2-luc）の６つコピーによって駆動されるルシフェラーゼ（luc）遺伝子が含まれていた。発現ベクターにはCMVプロモーターによって駆動されるOSF2/CBFA1 aかあるいはOSF2/CBFA 1bかのいずれかが含まれていた。OSF2/CBFA1 aのトランスフェクションはp60SE2 -lucのルシフェラーゼ活性において75倍増になり、一方、OSF2/CBFA1bを使用したコ-トランスフェクションはルシフェラーゼ活性において40倍増になったが、このことは、これら22アミノ酸がOSF2/CBFA1の転写活性化ドメインの一部であることを示している(図８)。 OSF2/CBFA1aとOSF2/CBFA1bにおける5'非翻訳領域（5'UTR）のヌクレオチド配列は互いに同じであり、またマウスOsf2/Cbfa1 cDNAにおいて説明された同じ配列には密接に関連しているが、しかし当初に説明されているマウスCbfa1転写の配列とは完全に異なっている（Ogawaら、1993a）(図7C-1と図7C-2)。この不一致を取り扱うために、以前に公表されたマウスCbfa1 cDNA(Cbfa1)の5'UTR配列か、あるいはOsf2/Cbfa1 cDNAの5'UTRの配列か、いずれかの配列を含むオリゴヌクレオチドが生成され、またruntドメインの5'末端に位置する3'プライマーを使用してRT-PCR^TMを行うのに使用された。この3'プライマーには、ヒトとマウス両方で同じ配列が含まれている。図９に示されているように、5'UTR OSF2/CBFA1オリゴヌクレオチドでの増幅は予測寸法のバンドと配列を生じ(図９、レーン２、４)、一方、5'UTR Cbfa1ヌクレオチドでの増幅は骨のRNAにおけるいかなるバンド生成にも失敗した(図９、レーン６、７)。マウスの転写の分析と一致しているこの結果から、CBFA1遺伝子の5'末端の複合スプライシングパターンの可能性が生じ、またヒトCBFA1のゲノム構造の分析を進める刺激となった。 5.2.22 発現分析転写（複数）の寸法とhOSF2/CBFA1遺伝子の組織特異的な発現を判定するために、ノーザンブロット法による分析が、さまざまなヒト組織、細胞系、形質転換細胞から単離された全RNAを使用して行われた(図10)。ハイブリダイゼーションは遺伝子の5'末端に位置するヒトOSF2/CBFA1遺伝子に特異的なプローブを使用して行われた(図7A)。hOSF2/CBFA1は骨芽細胞系において発現されるが、他のいずれの細胞系あるいは組織においても発現されない。この結果はマウスにおける遺伝子の骨芽細胞特異的発現と一致している。同じ点染が３倍長くさらされた場合は、他のいずれの細胞系ならびに組織においても転写は検出することはできなかった(図10)。 5.2.23 OSF2/CBFA1遺伝子のゲノム構造最初に、異なった制限エンドヌクレアーゼ（BamHＩ、HindIII、SpeＩ、XbaＩ、EcoRＩ）によって加水分解されたヒトゲノムDNAのサザンブロット法ではヒト完全長cDNAがプローブされる。図11に示されているように、各反応消化物はこのプローブによりハイブリダイゼーションされる複数のバンドを生成した。ヒトλ-fixIIゲノムライブラリーは、６つの異なったプローブ、それらのそれぞれがOSF2/CBFA1 cDNA配列をカバーしているプローブを使用してスクリーニングされた(図7A)。複数の正のクローンが分離された。サザンブロットハイブリダイゼーション法による分析と組合せて、cDNA内に存在する制限酵素部位（BamHＩ、HindIII、EcoRＩ、NotＩ）を使用して互いに対するλクローンの相対位置が判定され、また遺伝子の制限地図が確定された。さらなる分析のための遺伝子のほとんどをカバーした、４つの独立しているが重複しているクローンが選択された (図10)。エキソン配列に位置するオリゴヌクレオチドによるハイブリダイゼーションは遺伝子の中のほとんどのエキソンの相対位置を判定することができる。この分析のこの点において、遺伝子の5'部分はこれらクローンによっては全部はカバーされていなかった。このため、PACヒトゲノムライブラリーは遺伝子構造全体を特徴付けるためにスクリーニングされた。２つのPACクローンが分離されたが、１つは遺伝子の3'部分（222G16）をカバーし、また二番目のものは5'部分（ 244F24）をカバーしていた(図11)。同様に、制限酵素部位の位置およびサザンブロットハイブリダイゼーション分析はλクローン地図に対するPACクローンの相対位置を判定するのに使用された。マウスCbfa1遺伝子（Ahnら、1996）の構造に関して入手可能な情報はまた、ヒト遺伝子のイントロン-エキソン境界の推定上の位置を判定するのに使用された。この分析によると、推定上のエキソンの境界をなすオリゴヌクレオチドはこれらのクローンからイントロン配列を増幅する目的で、またイントロン-エキソン境界の配列を決定することにより判定する目的で設計された。さらに、大部分のイントロンの寸法は、λファージ、PAC、ヒトゲノム DNAを鋳型として使用してPCR^TM増幅することによって確定された。イントロン１はゲノムDNAをPCR^TM法による増幅後に直接配列を決定することによって同定された。長い拡張鋳型PCR^TMシステムは通常のPCR^TM 反応によって増幅するには大き過ぎた他のイントロン（３、４、６、７、８）の大部分を増幅するのに必要であった。この技術では増幅することができなかったイントロン２の相対寸法は確定した地図から推定された(図11)。イントロン２の寸法はPAC 244F24挿入の制限地図におけるエキソン２と３のマッピング後、判定された。イントロン増幅に使用された同じオリゴヌクレオドがイントロン-エキソン境界の配列を判定するため、エキソンにより配列を決定するのに使用された。イントロンの長さとイントロン-エキソン境界のほとんどの配列を表３に示す。遺伝子配列の分析では、コード配列全体（1566bp）が８エキソン（エキソン2〜9）によってコード化されることが示されている。 5.2.24 CBFA1の転写開始部位の判定プライマー拡張研究はCBFA1の転写の開始部位を正確に同定するために行われた。この研究では、+25から+28までのヒトCBFA1遺伝子の１番目のエキソンに対応する配列を含む28塩基オリゴヌクレオチドがSaOS-2細胞由来の全RNA15μgでアニーリングされた。CBFA1遺伝子が高度にそれらの細胞の中で発現されるので、S aOS-2 RNAが選択された。鋳型としてゲノムクローンを使用し、またプライマー拡張と平行に走るプライマーとして同じオリゴヌクレオチドを使用した配列決定反応により単一の開始部位が同定された(図12)。 5.2.25 エキソン８の代替的スプライシングの証拠上述のように、ヒトとマウスOSF2/CBFA1 cDNAの5'末端は前出に報告されているCBFA1転写物の5'末端とは異なる。興味深いことに、CBFA1の5'末端として初めに説明された配列は75kbイントロン２の3'末端に全部存在する。この結果から、この大きなイントロンの中に潜在スプライスアクセプター部位が存在することが示唆される。一旦CBFA1遺伝子の完全ゲノム構造が解読されたら、この情報は、O SF2/CBFA1b cDNAにおける読み取り枠内での66bpの欠失がエキソン８周辺の代替的なスプライシング出来事によるものであったことを疑いなく判定するのに使用された。SaOS-2骨肉腫細胞をRNAの源として使用して、エキソン７と９に存在する配列に対応するプライマーは設計され、またRT-PCR^TM反応で使用された。図12 に示されているように、２つの異なるバンドが生成された。上方のバンドにはエキソン７、８、９の配列が含まれ、一方、下方のバンドにはエキソン７、９の配列しか含まれていなかった。（１）ヒトCBFA1遺伝子は、少なくとも120kbにまたがる９エキソンと８イントロンから成り、（２）タンパク質の機能に影響を与える遺伝子の3'末端で代替的スプライシング出来事があり、（３）遺伝子の5'末端は、マウスOSF2 /CBFA1 cDNAの5'末端に非常に類似しており、また初めに説明されているマウスC bfa1転写の5'末端には無関係であり、（４）事実、初めに説明されているCBFA1 転写の5'末端はイントロン２の末端に存在し、また（５）マウスの例では、遺伝子は骨芽細胞起原の細胞においてのみ発現される、ことかはっきりしている。ヒトCBFA1遺伝子はCCDで突然変異させられ、また脊椎動物における骨芽細胞分化を担うマスター遺伝子であると考えられる。 5.3 実施例３ - E.coliにおける発現クローニングサウスウェスタン測定法に基づいて、細菌発現ライブラリーのサウスウェスタン法によるスクリーニングを行うことが可能である。この測定法では、cDNAライブラリーはクローン化されて細菌発現ベクターに導入され、標識OSE2の単量体あるいは多量体によりスクリーニングされる。ライブラリーはプレートされ、またタンパク質融合発現がIPTGで含浸したフィルター上で保温培養することによって誘導される。³²Ｐ標識された単一あるいは鎖状体形成されたwt OSE2オリゴヌクレオチドは、GRAで使用されたものと同じ緩衝液を使用して、フィルターをプローブするのに使用される。正のファージクローンは再度プレートされて、100％純度に達するまで最初のスクリーニングに関してプローブされる。正のクローンの結合の特異性は、分離された正のクローンが突然変異を起こしたOSE2配列の多量体に結合することに失敗するかどうかを判定するために、wtプローブとその突然変異を起こしたバージョン（複数）によってフィルターをプローブすることにより第四回目のスクリーニング上でテストされる。実施例４ - 酵母1-ハイブリッドクローニングシステムこの手順の中では、OSE2-結合部位はHis3遺伝子にリンクされている不活性な酵母プロモーターの上流でクローン化される。cDNAライブラリーは、そのcDNAによってコード化されるポリペプチドが酵母転写因子Gal４の酸性転写活性化ドメインに融合される、その酵母発現ベクターに導入される。cDNAがOSE2 配列を結合するポリペプチドをコード化するのであれば、コロニーはHis⁺になる。このシステムは真核生物サウスウェスタンクローニングシステムと考えることができる。この酵母クローニングシステムが細菌で発現されるタンパク質のサウスウェスタンクローニングシステムを凌駕している長所とは、処理されたタンパク質を伴っていれば、またTBP-関連因子(TAF)、ヒストン、他のクロマチンタンパク質が存在すれば、酵母細胞の中で選択が起こることである。 5.4 実施例５ - OSF2/CBFA1の転写活性の分析 Osf2/Cbfa1遺伝子の5'非翻訳配列の大きなフラグメント（50kb）から成るクローンを使用して、この大きなプロモーターフラグメントの転写活性は、細菌lacZ 遺伝子にそれらを融合し、また前核注入によってトランスジェニックマウスを生成する、このプロモーターの5'欠失突然変異体を生成することによって分析することが可能である。さまざまなプロモーターフラグメントの活性は、トランスジェニックマウスに潜むさまざまな寸法のプロモーターフラグメントも含めて、β -ガラクトシダーゼで染色することによって分析することが可能である。最初50k bクローンを超える付加的な調節エレメントを得るために、3'非翻訳配列の約500 kbに至る長いフラグメントばかりではなく、5'非翻訳配列の大きなフラグメント（すなわち、約500kbに至るものまで）が分離されることも考えられる。 Osf2/Cbfa1と相互作用するタンパク質（複数）を同定するために、放射性同位元素で標識されたポリペプチドが骨芽細胞発現ライブラリーをスクリーニングするのに使用されることが考えられる。Osf2/Cbfa1 cDNAの部分部分はまた、酵母2-ハイブリッドシステムの使用によりそれと相互作用する遺伝子産物（複数）を見つけ出すために「餌」として使用することが可能である。このシステムでは、その「餌食」が骨芽細胞cDNAライブラリー、中胚葉節cDNAライブラリー、間葉圧縮から作成されたcDNAライブラリーである。これら２つの測定法を使用して単離された遺伝子はその後に配列を決定されるが、それらの発現のパターンはノーザンブロット法による分析とin situハイブリダイゼーションによって特徴付けられ、またそれらの機能は遺伝子欠失研究によって定義される。ビタミンD3、性ステロイド、グルココルチコイドやパラトルモンなどのホルモン、レチン酸などのモルフォゲン、ソニック-、インディアン-、デザート-ヘッジホッグなどの増殖因子、骨形態形成タンパク質、線維芽増殖因子、パラトルモン関連ペプチドによってOsf2/Cbfa1の発現を調節することを研究するために、非骨芽細胞あるいは初代骨芽細胞が培養に置かれ、またホルモン、モルフォゲン、増殖因子あるいはビイークルの１つないしはそれ以上によって処理される。 Osf2/Cbfa1 cDNAはまた、トランスジェニックマウスを生成するのに、骨芽細胞における遺伝子を過剰発現させるのに、あるいは軟骨細胞において異所性にそれを発現させるのに使用される構築物を作成するために、オステオカルシンプロモーターあるいはα1（II）コラーゲンプロモーターの前に置かれることが考えられる。関連研究では、本発明者らはOsf2/Cbfa1遺伝子が生後のみ不活性であるマウス株の世代を考えている。こうした動物は骨粗鬆症の動物モデルを作成する際に有用であると考えられる。 5.6 実施例６ - ２つのOSF2/CBFA1ドメインは転写機能およびCBFβによるヘテロ二量体化が不能であることを判定するタンパク質のRunt/Cbfaファミリーは無脊椎動物と脊椎動物における器官形成の主要な調節遺伝子として最近出現した転写因子の１つのグループから成る。このファミリーには、RuntとLozenge、２つのショウジョウバエのタンパク質（Kan iaら1990、Dagaら1996）と、マウスとヒトのCbfa1、２、３（Ogawaら1993a、Bae ら1993、Baeら1995）が含まれている。さらに、Runt相同染色体はC.elegansとウニで同定されている(ItoとBae1997、Coffmanら1996)。このように進化をとげながらなお保存されていることによって、さらに、これらタンパク質の生物学的な重要性が強調される。ショウジョウバエ、マウス、ヒトにおける遺伝子および分子生物学的分析では、ショウジョウバエにおけるrunt、lozenge、マウスとヒトにおけるCbfa2とOsf2が神経発生、眼の発達、造血、骨格形成のそれぞれにおいて重要な役割を果たしていることが示された(Kaniaら、1990;Dagaら、1996;Okud aら、1996;Ducyら、1997;Komoriら、1997;Leeら、1997;Mundlosら、1997;Ottoら、1997)。それによってこれら転写因子が制御しているさまざまな細胞分化プログラムと器官形成過程のメカニズムは大部分分からないままである。Runt関連タンパク質はすべて、それらのDNA-結合ドメインとして作用する、runtドメインと呼ばれる共通128アミノ酸モチーフを分かち合っている(Kagoshimaら、1993)。RuntとCbfa タンパク質は共通部位5'-TGT/cGGT-3'に結合している（Meyersら、1993）が、それはさまざまな発達過程に関与する無数の遺伝子の制御領域で見られる。これらタンパク質は単量体としてDNAに結合することができるが、しかしRuntとCbfa2の両方とも(AML1として公式には知られている)、Cbfβと呼ばれる偏在的に発現されるパートナータンパク質によってヘテロ二量体化することができる(Gollingら、1996;Ogawaら、1993b)。Cbfβは直接DNAと結合するのではないが、しかしDNA に対するRuntとCbfa2の親和性を増大させる(Gollingら、1996;Baeら、1994)。 Cbfa1不活性化に対するマウス異型接合性は、骨形成において遅延があり、鎖骨頭蓋骨形成不全症（ccd）と命名されている古典的なマウス突然変異の表現型を反復する(SelbyとSelby、1978;Sillenceら、1987)。ヒトでも、やはりCCDと呼ばれる骨格形成不全症があり、また患者の表現型はマウスCCDで観察されたものと類似している(Jones、1997)。CCD患者は、DNA-結合を破壊するCBFA1遺伝子における削除、挿入あるいはミスセンス突然変異のいずれかが起こることが示されている(Mundlosら、1997;Leeら、1997)。一緒にすると、これらの結果から、Osf 2は骨格形成の鍵を握る調節遺伝子であり、その機能は他の遺伝子の機能に比較して非冗長であり、またその発現レベルはきっちりとした限度内に維持されていなければならない、ことを示している。 runtやCbfa2などのこのファミリーの他の構成メンバーに関して入手可能な豊富な知識とは対照的に、Osf2が骨芽細胞遺伝子発現を制御しているそのメカニズムについては何も知られていない。Osf2とその他のRunt-関連タンパク質とを比較すると、このファミリーの他の構成メンバーによって保存されている２つの領域が存在することが明らかになる。すなわち、runtドメインと、runtドメインの C-末端に位置するPSTドメインである(図13Aと図13B)。しかし、Osf2には他のRun t関連、またCbfaタンパク質には存在しない３つのドメインが含まれている(図13 Aと図13B)。最初のドメインは、元のCbfa1の部分cDNAに存在しなかったアミノ末端にある、19アミノ酸残基の１つの伸張である(Ogawaら、l993a)。二番目のドメインはruntドメインに対してＮ-末端側に位置しているユニークグルタミン-アラニンドメイン（QAドメイン）である。このドメインには、18アラニン残基の１つの伸張が１つ後続している、一列に並んだ29グルタミン残基が含まれている。 CCD患者における突然変異の分析では、その患者らの表現型は古典的なCCD表現型とは異なると言わなければならないか、しかしQAドメイン内にあるアラニン伸張はタンパク質の転写活性に影響を与えることが示唆されている(Mundlosら、1997 )。最後のドメインには、他のRunt関連タンパク質のPSTドメインに存在する配列とは相同性をもっていないPSTドメインの中に27アミノ酸の１つの伸張がある。本発明者らは、Osf2が骨芽細胞の分化を制御しているそのメカニズムを理解するために、ヘテロ二量体化の調節にかかわっているドメインだけではなく、核局在化、転写機能を担っているドメインを同定した。分析では、Osf2は他のRunt- 関連タンパク質の間でユニークな機能的な体制を有していることを示している。実際、１番目の19アミノ酸、およびQAドメインは転写機能の大部分を制御しており、またQAドメインは付加的にOsf2のヘテロ二量体化を阻害している。 5.6.1 対象と方法 5.6.1.1プラスミド pBluescript KS(-)とpCMV5においてクローン化されたOsf2 cDNA(Ducyら、1997 )が、pCMV5発現ベクターで欠失突然変異体を生成するために使用された。9-アミノ酸核局在化シグナル（Osf2ΔNLS）が欠けているOsf2が、2-ステップPCR^TM法によって(Ausubelら、1994)、以下のオリゴヌクレオチドを使用して生成された。すなわち、 Osf2Δ1-108は、翻訳イニシエーターとして役立っているNcoＩ部位の中にある ATGコドンを伴い、pCMV5の中のOsf2コード配列の1275 bp Nco Ｉフラグメントを挿入することによって生成された。Δ1-38は、翻訳イニシエーターとして役に立つように意図されているPstＩ部位の直ぐ下流のATGコドンを伴い、PstＩ-加水分解されたpCMV5の中にある1856 bp PstＩフラグメントを挿入することによって生成された。Δ1-19は、以下のプライマーを使用して、Osf2コード配列の5'領域のPCR^TM法による増幅によって生成された。すなわち、 PCR^TM産物はBstEIIで加水分解され、またその結果生じた5'-末端/BstEIIフラグメントはMluＩ（末端-充填）とBstEIIにより加水分解されたΔ1-38に結合された。DEL5'Fプライマーの中にあるATGコドン（下線部分）は翻訳イニシエーターとして役に立つことを意図された。QAドメインはFspＩ-NotＩとNotＩ-NotＩフラグメントを除去することによって削除されたが、その後再結合された。またA82- 96はNotＩフラグメントを除去することによって生成されたが、その後pCMV5-Osf 2が再結合された。24bp内部欠失を伴うOsf2コード配列をもったPCR^TM法によって増幅された分子はΔ89-96を得るためにpCMV5においてクローン化された。Δ（1- 38、89-96）はNotＩフラグメントを除去することによって作成されたが、その後 Δ1-38が再結合された。Δ258-528はpCMV5-Osf2由来のBsmＩ-BsmＩとBsmＩ-Xba Ｉフラグメントを除去することによって作成されたが、その後再結合された。 PST領域における機能的ドメインの分析に関しては、PSTコード配列の完全長ないしはフラグメントはベクターpSG424の中で、GAL4DNA-結合ドメイン（アミノ酸 1-147）をコードする配列を伴う読み枠内にクローン化された(SadowskiとPtashn e、1989)。コード配列のフラグメントは適当な制限部位を使用して得られたか、あるいは適当なプライマーを使用してPCR^TM法により増幅され、またクローン化された。構築物GAL4-6x VWRPY-VP16、とGAL4-6x GASEL-VP16は、GAL4DBDとVP16活性化ドメインをコードする配列の間に、Asp718部位にある合成二本鎖オリゴヌクレオチド（VWRPYあるいはGASEL配列のいずれかの６つのコピーをコードすると考えられる）を挿入することによって作成された。TLE2発現構築物はEcoRＶとXbaＩでT LE2 cDNAを加水分解することによって得られたが、その後同じ酵素によりpcDNA3 カットに結合された。Osf2ΔC12は同じ酵素でpCMV5カットの中にEcoRＩフラグメント(pCMV5-Osf2から得たもの)を挿入することによって生成された。リポータープラスミドp6OSE2-lucは前出に説明されており（DucyとKarsenty、1995）またpG AL4SV-lucリポータープラスミド（SV40最小プロモーターの上流でクローン化されたUAS_Gの５コピーによって駆動されるlucリポーター遺伝子をもっている）は、テキサス州スミスビル市にあるM.D.アンダーソン癌センターサイエンスパーク研究部門のJennifer Philhowerから入手された。組換えタンパク質の細菌発現に関しては、Cbfa2とCbfβのコード配列は、pTrc Hisベクター（Invitrogen、カリフォルニア州サンディエゴ市）の中の６つのヒスチジン残基をコードする配列により、下流でまた読み枠内でクローン化された。His-Osf2発現構築物は前出で説明されている(Ducyら、1997)。ドメイン-スワッピング研究に関しては、キメラ構築物1.2.2は、Osf2とCbfa2コード配列のフラグメントをPCR^TM法により増幅によって生成され、またベクターpV2aの中にある６つのヒスチジン残基をコードする配列に対して読み枠内にあるそれらを結合する(Van Dykeら、1992)。ΔN19.1.1は、Osf2コード配列の5'末端にあるBamHＩフラグメントを除去することによって作成され、その後His-Osf2発現構築物の再結合が行われた。Δ.runt.PSTは1275-bp NcoＩフラグメントをpTrcHisベクターに挿入することによって作成された。In vitro結合測定に関しては、Cbfβコード配列が発現ベクターpGEX- 2TのGSTをコードする配列により読み枠内にクローン化された。すべての構築物の組込みはDNA配列決定によって検証された。 In vitro転写と翻訳に関しては、Osf2Met⁶⁹が元のOsf2 cDNAの189-bp５'-末端 /DraＩフラグメントの削除によって生成された。Osf2Met¹[pBluescriptKS(-)においてクローン化された元のOsf2 cDNA]とOsf2Met⁶⁹ cDNAは、製造業者の指示によりTNTキット（Promega、ウィンスコンシン州マディソン市）を使用して転写され、また翻訳され、また標識タンパク質はSDS-PAGEによって分析された。 5.6.1.2 細胞培養とDNAトランスフェクション腎臓細胞系COS7はDMEM/10％ウシ胎仔血清（GIBCO-BRL）の中で増殖された。３ ×10⁵細胞／皿はリポータープラスミド（p6OSE2-lucあるいはpGAL4SV-luc）5 μg、発現構築物5μg、pRSVβgal 2μgによりトランスフェクションされた。トランスフェクション後、細胞はリン酸緩衝生理食塩水（PBS）で２回洗浄され、また24時間適当な培地で保温培養された。細胞は0.25M Tris-HClの0.3ml で収集され、凍結-解凍法によって溶解し、また基質としてレゾルフィン-β-D -ガラクトピラノシド（Sigma Chemical Co.、ミズーリ州セントルイス市）を使用して比色分析β-ガラクトシダーゼ活性測定に委ねた。細胞抽出物20μlが Monolight 2010発光計(Analytica Luminescence Laboratory)により、D-ルシフェリン基質を使用して、D-ルシフェラーゼ反応緩衝液（100mM Tris-HCl pH7 .8;5mM ATP;15mM MgSO₄;1mM DTT）の中でルシフェラーゼ活性を測定するために使用された。ルシフェラーゼ活性値はトランスフェクション効率に関して正常化するためにβ-gal値に調節された。 5.6.1.3 組換え融合タンパク質の生成、DNA結合測定、およびIn vitr 結合測定タンパク質産生に関しては、細菌細胞は2mM IPTGで誘導され、また融合タンパク質はNi-NTAアガロースレジン(Qiagen、カリフォルニア州チャットワース市)を製造業者のガイドラインにより使用して、豊富にされた。DNA-結合測定は、20Mm Tri-HCl、pH8.0、10mM NaCl、3mM EGTA、0.05％ NP-40、5mM DTT、ポリ（dI.dC ）.ポリ（dI.dC）2μgを含んだ緩衝液に野生型あるいは突然変異型タンパク質を等量加えて、³²P標識二本鎖OSE2オリゴヌクレオチド５fmolにより行われた。反応は室温で10分間保温培養され、その後8％ポリアクリルアミドゲル上で電気泳動法を施行した(Ducyら、1997)。In vitro結合測定に関しては、GSTとGST-Cbfβ タンパク質が還元グルタチオンにより溶離されるか、あるいはビーズへ結合させるものとして使用された。タンパク質は純度に関して検査され、使用前に定量された。³⁵S-標識したOsf2とCbfa2は、in vitroで結合した転写と翻訳（TNTキット、Promega）を使用して、ウサギ網状赤血球溶解産物に中で合成された。典型的には、グルタチオン-アガロースビーズに結合した融合タンパク質100ngがそれぞれの測定用に使用されたが、一方、測定での標識タンパク質の分量は蛍光光度法を使用して求められた。In vitro結合測定はAusubelら（1994）に説明されている通りに実施された。 5.6.1.4 細胞分画および免疫蛍光分析法１×10⁶COS7細胞は、リン酸カルシウム共同沈澱法を使用して、野生型Osf2かあるいはOsf2ΔMNLSかのいずれかによってトランスフェクションされた(Ausubel ら、1994)。細胞質および核分画がSDS-PAGE上で分離された、トランスフェクション細胞から作成され、ウサギポリクローナル抗-Osf2抗体（ペプチド配列SFFWD PSTSRRFSPPS(配列番号66)に対して生成され、Osf2のＮ末端に存在する）と西洋ワサビペルオキシダーゼ共役抗-ウサギgig により免疫ブロット法分析に委ねられ、その後にECL検出が行われた(Amersham、イリノイ州アーリントンハイツ市)。免疫蛍光分析法に関しては、トランスフェクション後２日で、細胞はスライド上にプレートされ、PBS緩衝液で洗浄され、1 0分間室温で3.7％ホルムアルデヒドで固定され、その後に0.1％ Triton X-100で透過性にされた。遮断は30分間5％ヤギ血清/3％BSAで行われた。細胞はその後、室温で１時間遮断緩衝液の中で１：150の希釈度で抗-Osf2抗体によって保温培養され、その後遮断緩衝液で洗浄、それからPBSで洗浄された。ローダミン-共役ヤギ抗-ウサギgigはその後に１：10,000の希釈度で使用された。スライドはその後に、50％グリセロールを使用して取りつけられ、またOsf2の染色パターンは共焦点顕微鏡によって視覚化された。 5.6.1.5 成績 5.6.1.6 OSF2におけるmyc関連核局在化シグナル（NLS）の同定欠失真正世代交代アプローチによりOsf2の転写活性ドメイン（複数）を同定するために、Osf2の中でもっとも短い可能性のあるNLSを辿った。NLSは元はCbfa1 のruntドメインとPSTドメイン全体を含むタンパク質の広範な領域に帰属していた(Luら、1995)。短めのNLSを定義するために、本発明者らはOsf2の配列を公知のNLS配列と比較した。塩基性アミノ酸残基の伸張は、核を標的としてタンパク質を送ることを担っていることが示されている(DingwallとLaskey、1991;Nigg、 1997)。本発明者らは、Osf2のruntとPSTドメインの重複、５塩基性残基（太字）を含む9-アミノ酸の１つの伸張（PRRHRQKLD）(配列番号67)を発見したが、それには公知のc-MycのNLSに高度に相同性がある(図14A)。この配列には、短いモチーフ、RRHRが含まれており、それはさまざまなタンパク質の核局在化を担っていることが示されている(Nigg、1997)。さらに、この9-アミノ酸配列はいくつかの他のRunt-関連タンパク質（CBFA2、Cbfa2、CBFA3、SpRunt-1）(図14A)の中の同じ位置に存在しており、このアミノ酸の伸張が、これらタンパク質における共通のNLSとして作用している可能性があることを示唆している。この9-アミノ酸伸張がOsf2においてNLSとして作用するかどうかをテストするために、このモチーフの読み枠内欠失が完全長コード配列の中に構築された。この突然変異体Osf2（Osf2ΔNLS）がpCMV5発現ベクターの中にクローン化され(図1 4B)、また、Cbfa2遺伝子を発現させないCOS7細胞における規定Osf2結合部位（OS E2）の６つのコピーを含む構築物であるp6OSE2-luc（DucyとKarsenty、1995）からの転写を活性化する能力が検査された(Kurokawaら、1996a)。Osf2ΔNLSはluc リポーターの発現を駆動することには失敗し、一方、野生型Osf2は同じ条件下で転写を活性化させた(図14C)。このOsf2ΔNLSによるトランス活性化の欠如は核に転移する突然変異タンパク質の能力の無さによるものであり、細胞分画と免疫局在化の分析が行われた。トランスフェクションされた細胞からの抽出物は核と細胞質ゾル分画に分離され、またOsf2に向かっていくポリクローナル抗体を使用して免疫ブロット法による分析に委ねられた。野生型タンパク質が核分画において主に見つかり、一方、Osf2ΔNLSは細胞質ゾル分画でのみ見つかった(図14D)。最後に、トランスフェクションされた細胞の間接免疫蛍光法による分析では、核の中に野生型タンパク質の存在が明らかにされ、一方、Osf2ΔNLSは細胞質ゾルの中に局在化していることが明らかになった。このように、これらの研究では、9- アミノ酸伸張（PRRHRQKLD）(配列番号68)がOsf2の核局在化には必要かつ十分な配列であることを確認した。 5.6.2.2 １番目の19アミノ酸は１つの活性化ドメインから成る Osf2の5'末端には、予測コード配列を伴う読み枠内に２つのATGコドンがある。位置１（Met¹）にある１つは翻訳開始の関連性に乏しく、一方、位置69（Met⁶ ⁹ ）は翻訳開始への関連性が適当である(Kozak、1987)。これら２つの潜在的な翻訳イニシエーターのそれぞれの効率をテストするために、２つの構築物が生成されたが、１つは両方のATGコドン（Osf2Met¹）を含み、もう１つは第二のATGコドン（Osf2Met⁶⁹）のみを含んでいるもので、それらをin vitroでの転写/翻訳測定法でテストした。図15Aに示されているように、Met⁶⁹は、唯一の翻訳イニシエーターでないとしても、断然良好である。その理由のため、本発明者らはこの研究の残りの中では、Met⁶⁹から開始するタンパク質である、完全長タンパク質として考えるようになった。転写活性化を担うOsf2の領域を同定するために、一連の欠失突然変異体が生成され、すべてにNLSが含まれており、またDNAコ-トランスフェクション研究においてOSE2-依存性ルシフェラーゼリポーター構築物(p6OSE2-luc)をトランス活性化するそれらの能力が測定された。驚くべきことに、runtとPSTドメインのみを手付かずのまま（Δ1-108）残してOsf2のＮ-末端全体を削除した結果、タンパク質のトランス活性化能力において80％減となった（図15B）のである。このことから、Cbfa2に関して提案されたもの（Baeら、1994）とは異なり、Osf2の主要なトランス活性化ドメインはPSTドメインに位置しているのではなく、その分子のＮ-末端部分に位置していることが示唆される。このことに促されて、本発明者らはトランス活性化ドメインを辿るために、Osf2のこの領域の付加的な欠失突然変異体を生成した。 QA、runt、PSTドメインのみを手付かずのまま残して１番目の38アミノ酸残基（Δ1-38）を削除すると、トランス活性化において70％減になった。この領域は２つの部分からできている。すなわち、Osf2にユニークであり、また初めに同定された部分Cbfa1 cDNAの中には存在しない１番目の19アミノ酸と、Cbfa2の対応するアミノ酸に高度の類似性（85％）を示す次の21アミノ酸、である(図13Aと図13B)。興味深いことに、１番目の19アミノ酸（Δ1-19）を削除すると、結果としてトランス活性化能力において75％減となったが、これは、それらがOsf2にユニークであり、またAD1（活性化ドメイン１）と呼ばれたトランス活性化ドメインを構成していることを示している。 5.6.2.3 QAドメインは第二の活性化ドメインを形成する QAドメインのトランス活性化機能が分析された。QAドメインのみ（Δ49-96）の削除は結果としてタンパク質のトランス活性化能力において75％減になったが、これはQAドメインがトランス活性化機能をもっていることを示している。この理由のため、この領域はAD2と称された。QAドメインをトランス活性化ドメインとして同定することは、転写の活性化因子としてのグルタミン伸張の公知の機能と全般的に一致し(Gerberら、1994)、またアラニン伸張を延長することがCCD患者におけるOsf2の機能喪失に結果的になる（Mundlosら、1997）という事実と一致する。QAドメインにおけるグルタミンとアラニン残基のそれぞれの重要性を評価するために、Osf2の付加的な欠失突然変異体が生成された(図15B)。18アラニン（Δ89-96）の８つの欠失はOsf2のトランス活性化機能には影響を与えなかった。このことは、類似した多型はヒトにおいては表現型異常を引き起こさないことを示す遺伝子分析と一致している(Mundlosら、1997)。18アラニン残基（Δ82- 96）の15の欠失もOsf2のトランス活性化機能には影響を与えなかった。次に、Os f2（AD1）のN-末端部分全体と、18アラニン残基の15が削除され、その場にはグルタミン残基のみ[Δ(1-38、82-96)]が残された。この欠失突然変異体は、QA、r unt、PSTドメインを含むΔ1-38として同じトランス活性化能力をもち、QAドメイン内でそれを示しているが、トランス活性化機能の全部ではないとしても、ほとんどをもっているのはグルタミン伸張である。上記にテストされた突然変異体タンパク質はすべて、当量で発現させることが見出されており、またOSE2エレメントに結合することができた。 5.6.2.4 OSF2のPST領域における活性化と抑制ドメインの同定 Osf2(A258-528)のPSTドメイン全体の削除はまたタンパク質のトランス活性化能力において80％減という結果になったが(図15B)、このことはPST領域内に付加的なトランス活性化ドメイン（複数）が存在することを示す。しかし、runtとPS Tドメインのみを含む欠失突然変異体はほとんど不活性であったので、この後者の活性化ドメインは、AD1およびAD2から独立して作用することはないと考えられる。この第三の活性化ドメインを局在化させるために、また何らかの可能性のある機能的干渉がAD1およびAD2に関して行われるのを回避するため、Osf2 PSTドメインは酵母転写因子GAL4（DBD、アミノ酸1-147）の異種DNA-結合ドメインに融合され(図16A)、またSV40最小プロモーターの上流でクローン化されたGAL4上流活性化配列（UAS_G）の５つのコピーによって駆動されるルシフェラーゼリポーター構築物のトランス活性化がテストされた。その測定法を使用して、PSTドメイン（C241-528）は転写活性をもっていなかった。観察されたトランス活性化がなくなったことは、複数の活性化と抑制サブドメインが存在することを反映していると考えられる。削除はまたPST領域のC-末端からも行われた。すべてのRunt-関連タンパク質で同一である最後の５アミノ酸残基（VWRPY）(C241-523)（配列番号69）の削除（A ronsonら、1997）は活性化における有意な、また再現性のある増加になった（図 16A）が、このことは、この短いモチーフがそれ自体抑制機能をもっていることを示唆している。さらに、アミノ酸374（C241-374）にまで拡張するC-末端の削除は、リポーター遺伝子の発現のレベルにおいては漸進的に増加する結果になったが(図16A)、このことは抑制ドメイン(RD)は154 アミノ酸長であり、またアミノ酸374と528の間に位置していることを示している。アミノ酸370から374（GASEL）の除去は転写活性を全部喪失する結果となった（図16A）が、このことは、これら５アミノ酸が転写ドメインの重要不可欠な部分であることを示している。興味深いことに、このGASELモチーフは、Cbfa2のPS Tドメインとはもっとも異なっているOsf2 PSTドメインの広範な領域に位置している(図13Aと図13B)。PSTドメインのN-末端から行われた削除はトランス活性化における漸進的な減少となったが、このことは、PSTドメインのN-末端全体の半分、GASELモチーフ（135アミノ酸長）までがトランス活性化には必要であることを示唆している。この領域はAD3と称された。GAL4融合タンパク質が作成されていたかどうかを判定するために、トランスフェクション細胞が、GAL4DBDに対して向かっていくモノクローナル抗体を使用して免疫ブロット法に使用された。図 16Bは上記でテストされたキメラタンパク質のそれぞれをコードするプラスミドでトランスフェクションされた細胞が、組換えタンパク質を発現させたことを示している。図16Cは、Osf2のPSTドメイン内で同定されたさまざまな機能的ドメインの略図を示す。 5.6.2.5VWRPYモチーフは転写のリプレッサーとして作用することができる上に提示された分析では、Osf2（VWRPY）の最後の５アミノ酸が転写を抑制したことが示唆された。このモチーフはすべての公知のRunt-関連タンパク質において保存される(ItoとBae、1997)。これら５アミノ酸の抑制機能を示すために、 VWRPY配列の６つのコピーがGAL4DBDとVP16活性化ドメインとの間にある読み枠内にクローン化され(図16D)、またDNAコ-トランスフェクション測定法でそれらの機能がテストされた。VWRPYのこの多量体によって、VP16のトランス活性化が２８０倍の減少を示した(図16E)。抗GAL4DBD抗体に関する免疫ブロット法による分析では、（GAL4-6x VWRPY-VP16 ）融合タンパク質はトランスフェクション細胞において実際に発現されたことが示された。１つの対照研究では、AD3のC-末端に位置する５アミノ酸（GASEL）の６つのコピーをコード化するオリゴヌクレオチド（図16D）はまた、同じ位置でクローン化されていた。これはVP16のトランス活性化能力においてほぼ２倍増の結果となった(図16E)。これらの結果から、VWRPYモチーフは転写のリプレッサーとして作用することが示され、またGASELモチーフはトランス活性化機能をもっていることが示唆される。ショウジョウバエRuntにおいては、Grouchoはこのモチーフがない場合にはRun tによってトランス活性化をそれでも防ぐことができるが、VWRPYモチーフはまた Grouchoと相互作用することによって転写のリプレッサーとして作用すると考えられてきた(Aronsonら、1997)。このように、本発明者らはGruochoの哺乳動物相同染色体であるTLE2がOsf2のトランス活性化能力に影響を与えることがてきたかどうかを訊ねた。Osf2かあるいはOsf2ΔC12（VWRPYを含めて、最後の12アミノ酸を欠いている）のいずれかと一緒にTLE2をコ-トランスフェクションした結果、O sf2トランス活性化能力が２倍の減少を示した(図16)。この観察結果は、VWRPYモチーフがTLE2と相互作用するという可能性は除外していないが、しかしそれによってTLE2がOsf2のトランス活性機能を阻害しているかもしれないそのメカニズムはVWRPYモチーフの存在には厳密には依存していないことを支持している。 5.6.2.6 QAドメインはCBFβによる完全長OSF2のヘテロ二量体化を阻害する Cbfa2とショウジョウバエRuntタンパク質は脊椎動物において広範に発現されたCbfβタンパク質によりヘテロ二量体化することができ(SpeckとStacy、 1995)、またショウジョウバエにおいてはCbfβの２つの相同染色体、「ブラザー」と「ビッグブラザー」によってヘテロ二量体化することができる(Gollingら、 1996)。Cbfβは何らかの内因性DNA-結合活性をもっているわけではなく、DNAに対するRuntとCbfa2の親和性を増大させる(Gollingら、1996;Baeら、1994)。Cbf βはRunt-関連タンパク質のトランス活性化能力に影響を与えたかどうかは報告されていなかったが、マウスにおけるCbfβあるいはCbfa2を削除した場合には、結果的には、同一の表現型になり、in vivoでのCbfa2-Cbfβ相互作用の重要性を強調することになる(Okudaら、1996;Wangら、1996a;1996B;Sasakiら、1996)。 Cbfβはまた骨芽細胞において発現されるので、本発明者らはCbfβはまたOsf2 にとってパートナーであるのかどうかを、電気泳動移動度シフト分析（EMSA）を使用してテストした。His-Osf2単独ではOSE2と特定の複合体を形成し、またCbf βを付加することにより、Osf2-DNA複合体を強化するという結果になったが、しかし、遅い遊走タンパク質-DNA複合体が出現するという結果にはならなかった( 図18A、レーン１と２を比較)。対照的に、正の対照としてHis-Cbfa2タンパク質を使用したときには、本発明者らはCbfβによるヘテロ二量体化を常に検出したが、結果的には、遅い移動性のタンパク質-DNA複合体になった(図18A、レーン３と４を比較)。これら２つの結果からは、Osf2とCbfβの検出可能な二量体化は存在しないことが強く示唆される。Osf2はCbfβとは直接的に相互作用することができなかったことをさらに確定するために、in vitroでのタンパク質会合測定が精製された組換えグルタチオン-S-トランスェラーゼ（GST）-Cbfβ融合タンパク質により行われた。³⁵S-標識Cbfa2タンパク質は固定化GST-Cbfβにより結合されたが、GST単独によってではなかった(図18B、レーン4-6)。対照的に、S-標識Osf2タンパク質は固定化GST-Cbfβタンパク質によって結合されなかった(図18 B、レーン1-3)。ヘテロ二量体化の阻害は２つの主要なOsf2-特異的ドメインであるAD1あるいは AD2（QAドメイン）のうちの１つによるものと考えられる。これをテストするために、Cbfa2のアミノ-末端領域はOsf2のアミノ-末端領域とスワップさせた(図18 C)。EMSAでは、このキメラタンパク質（1.2.2）はCbfβによっては二量体化することができなかった(図18A、レーン５と６を比較)。Osf2のもう１つの欠失突然変異体であるΔ19.1.1はCbfβによっては二量体化することができなかった（図1 6A、レーン８）が、一方、Osf2のruntとPSTドメインのみを含む欠失突然変異体（Δ.runt.PST）はCbfβによって二量体化することができた(図18A、レーン10) 。このことから、Cbfβによる在来タンパク質の二量体化をおそらく阻害しているのはOsf2のN-末端に存在するQAドメインであることが示された。この結果と、 Osf2とのCbfβのコ-トランスフェクションがOsf2を増加させないこととは一致する。 5.6.3 考察 Osf2は、転写因子Runt-関連ファミリーの哺乳動物の構成メンバーの一員である。骨格形成時のその重要不可欠な機能、ならびに他のほとんどのRunt-関連タンパク質のそれとは区別されるこの分子のアミノ酸の伸張の存在（図13Aと図13B ）から、骨芽細胞分化においてそのユニークな機能を特定できる機能的ドメインをOsf2がもっていることが示唆される。拡張構造/機能分析では、N-末端とQAドメインが大部分、そのトランス活性化と二量体化能力を制御していることを示す、タンパク質のこのファミリーに関する新規な機能的組織が明らかにされた。発見されたこれらのものを図19に要約した。 5.6.3.1 OSF2における短い核局在化シグナルの定義 Cbfa1についての前出の分析では、NLSはruntとPSTドメインをカバーする広範な領域にまたがっていることが示された。これは一連の欠失突然変異体のサブ細胞局在化についてのある研究を土台にしたものであった(Luら、1995)。しかし、野生型タンパク質の文脈においては、Osf2のNLSはずっと短い。runtとP STドメインの接合部に位置する9-アミノ酸配列はそのタンパク質の核局在化には必要かつ十分である。この配列は、いくつかのタンパク質の核局在化に重要であることが知られている塩基性残基においては豊富であり(Nigg、1997)、また他の Runt-関連タンパク質と同様に存在し、それがこれらのタンパク質で同じ機能を行使できることを暗に示している。 5.6.3.2 OSF2のN-末端における効率的なトランス活性化ドメインの存在 Osf2のN-末端欠失突然変異体が生成され、またruntとPSTドメインのみを手付かずのまま残して削除した場合は、実質的にトランス活性化測定において不活性になった。これは何らかのRunt-関連タンパク質のN-末端におけるトランス活性化機能を最初に立証したのものとなった。Osf2のN-末端は実質的にCbfa2とRunt における相同領域とは異なる。これには、Osf2にはユニークである２つのサブドメインが含まれている。１つには１番目の19アミノ酸残基が含まれおり、またもう１つはQAドメインである。これら両方のドメインはトランス活性化機能をもっている。AD1とAD2配列はOsf2にユニークであり、またこのファミリーの他の構成メンバーには存在せず、N-末端にトランス活性化ドメインが存在する場合は、Os f2に特異的であると考えられる。 5.6.3.3 QAドメインのトランス活性化能力の分析 Runtは、そのN-末端に12アラニンの１つの伸張（Kaniaら、1990）をもち、またLozengeはそのC-末端にあるグルタミン-豊富領域である（Dagaら、1996）をもつが、Osf2は連続的なグルタミンとアラニンの伸張をもつ唯一のRunt-関連タンパク質である。これらの分析から、それ自身、QAドメインは重要なトランス活性化機能をもち、またQAドメイン内には29グルタミン残基の伸張がトランス活性化機能のすべてではないにしても、ほとんどを担っていることが示されている。これは、グルタミン伸張はいくつかの他の転写因子におけるトランス活性化機能をもっていることを示す諸研究と一致する(Gerberら、199 4)。ヒトにおけるこのアラニン伸張の拡張、17から27アラニン残基は、機能喪失の表現型であるCCD表現型になり(Mundlosら、1997)、またアラニン-豊富領域はいくつかの転写因子におけるリプレッサー機能をもっていることが示された(Han とManley、1993a;HanとManley、1993b)。 QAドメインほど、これほど記述されている脊椎動物転写因子は他にはなかった。ショウジョウバエでは、グルタミン-およびアラニン-豊富領域をもつ転写因子はいくつかあって、それらはOsf2におけるQAドメインの機能を予測する実施例として役に立つと考えられる。ビコイドは、集中的に研究され、そのグルタミン- アラニン-豊富領域とTAF₁₁₀およびTAF₆₀の間の相互作用により転写を活性化することが示されたショウジョウバエ因子の１つである(Sauerら、1995)。このように、Osf2のQAドメインはTAFおよび/または全般的な転写機械装置の他のタンパク質と相互作用することが可能である。その他に、QAドメインはまた、細胞-特異的コアクチベーターと相互作用することができた。 5.6.3.4 第三の活性化ドメインはPSTドメインに存在する欠失分析では、PSTドメインにはまた、本発明者らがAD3と称する、トランス活性化ドメインが含まれることが示されている。これは、Cbfa2などの他のRunt-関連タンパク質に関して既に知られていることに一致している(Baeら、1994)。PST ドメインそれ自体はDNAコ-トランスフェクション測定法においてはOsf2のトランス活性化機能を付与することはできないが、遺伝子分析では、このドメインはin vivoでは重要不可欠であることが示されている。実際、ヒトにおいてCCDを引き起こすPSTドメインの中にあるノンセンス突然変異体はAD3に位置している(Mundlosら、1997)。Osf2における活性化ドメインのそれぞれの欠失がタンパク質のトランス活性化機能における同様な減少に結果になるという事実は、これらのドメインが互いに機能的に依存性があり、またそれらは共通コ-アクチベータ-と一緒になって相互作用する可能性があることを示している。AD3は、そのC-末端27アミノ酸以外は、Cbfa2の対応する領域に高度に相同性がある(Baeら、1993)。ヒトOSF2に関して行った研究では、PSTドメインのこの小さな利用域はまた最適トランス活性化を必要とし(Geoffroyら、1998)、またAD3のC-末端にあるGASELモチーフそれ自体がトランス活性化機能をもっていると考えられることが示されている。 5.6.3.5 PSTドメインにおける大きなリプレッサーサブドメインの存在 PSTドメインは、全体として、GAL4をベースとしたコ-トランスフェクション測定においてはトランス活性化機能はもっていない。これは、最後の154アミノ酸から成る比較的大きなリプレッサードメイン（RD）が存在していることが原因である。このリプレッサードメインには、VWRPYモチーフ、その分子の最後の５アミノ酸が含まれる。このリプレッサードメインの中のOsf2とCbfa2の間に配列相同性が付与されると、Cbfa2におけるそれに対応する領域にもまたリプレッサー機能があるのかどうかを判定することは興味深いことであった。 VWRPYモチーフの６つのコピーは、VP16のトランス活性化機能を阻害することができることを示した。ショウジョウバエでは、RuntのこのモチーフはGroucho と相互作用し、転写抑制に導く。しかし、効率的には悪いにもかかわらず、Grou choはそれでもVWRPYモチーフが存在しないRuntのトランス活性化機能を阻害することができる(Aronsonら、1997)。Grouchoの哺乳動物の相同染色体であるTLE2は、最後の５アミノ酸が存在しない場合でも、Osf2によるトランス活性化を阻害する。このことは、リプレッサードメインは、PSTドメインのアミノ末端をさらに拡張するという事実と一致し、またTLE2がOsf2のトランス活性化機能を阻害するその分子メカニズムはこのモチーフの存在に厳密には依存しているわけではないことを示唆している。一旦Osf2によって補充されると、TLE2はクロマチン構造を修飾することができ、またそれによってOsf2機能を調節することが可能である(Paroushら、1994)。 5.6.3.6 CBFβによる完全長OSF2のヘテロ二量体化の欠如 Cbfa2はCbfβによりヘテロ二量体化し(Baeら、1994)、またショウジョウバエでは、Runtは「ブラザー」と「ビッグブラザー」と呼ばれるCbfβ相同染色体と相互作用する(Gollingら、1996)。さらに、マウスにおけるCbfβ遺伝子の欠失は Cbfa2の不活性化によって起こったものと同一な表現型になる（Okudaら、1996;W angら、1996a;1996b;Sasakiら、1996）が、このことは、CbfβとCbfa2の間の相互作用はin vivoでは機能的に重要であることを示している。そのため、DNA-結合測定においてOsf2とCbfβの間の相互作用が検出できないときに驚くべきことになった。相互作用のこの欠如は本当であり、またQAドメインはこのヘテロ二量体化の欠如の責任を担っているかもしれないことが、いくつかの証拠の糸を辿ることで示されるのである。第一に、対照研究では、Cbfa2とCbfβのヘテロ二量体化が常に観察された。第二に、CbfβはそのN-末端を欠くCbfa1タンパク質の欠失突然変異体とのみ、核に共局在化される(Luら、1995)。このことは、Cbfβ欠失に異型接合するマウスにおいて骨格異常がないこと(Sasakiら、1996;Wangら、19 96b)、またCbfβは一過性トランスフェクション測定において手付かずの Osf2のトランス活性化機能を増大させないという事実と一致する。最後に、欠失とドメイン-スワッピング研究から、Cbfβによるヘテロ二量体化を阻害することを担っているものとして、QAドメインを強く示唆している。 AD1を除去した削除は、Cbfa2とQAドメインの対応する領域に対して高度に相同であるOsf2のアミノ-末端部分をその場に残した。完全長Cbfa2はCbfβによって容易に二量体化する、そのため、CbfβによるOsf2の二量体化を阻害しているのはQAドメインではないかと考えられる。このことはおそらくQAドメインによって分子上に押し付けられた立体配座の変化によるものである。そうでなければ、Os f2はまだに知られていない、おそらくは細胞特異的なタンパク質によって二量体化することができたはずである。 5.7 実施例７ - OSF2 DNA結合ドメインを過剰発現させるトランスジェニックマウスは骨減少症表現型を発症する骨芽細胞の機能は骨基質を産生することである。Osf2/Cbfa1（Osf2）はまた生後に骨芽細胞の中で発現される。Osf2が骨形成を制御しているかどうかを判定するために、本発明者らは生後のみ、骨芽細胞におけるOsf2DNA-結合ドメイン（Δ Osf2）を過剰発現させるトランスジェニックマウスを生成した。ΔOsf2はOsf2トランス活性化機能を阻害し、またΔOsf2-発現マウスは正常な骨格発達を遂げるが、しかし生後には骨減少症表現型になる。組織形態計測的研究では、ΔOsf2- 発現マウスにおいては骨形成の割合で主要な減少を示す。目立っていたことは、骨芽細胞数は変化しなかったことである。分子分析では、主な骨芽細胞-特異的遺伝子の発現は、タイプＩコラーゲン、主要な骨芽細胞生合成産物を含めて、トランスジェニックマウスではほぼ完全に破壊されたことが明らかにされた。Osf2 はまた自分のプロモーターに結合し、表現型の重症度を説明する分子メカニズムを提供する、その自分のプロモーターの活性を調節する。本実施例では、Osf2は二重の機能をもっていることが示される。その発達上の役割の他に、生後の骨芽細胞より先に存在することによって、Osf2は骨形成の正の調節因子となる。このことは、Osf2発現をアップレギュレーションすることは、骨減少症状態における骨喪失を補正するための手段となるであろうことを示唆している。 Osf2を含む、すべてのrunt-関連タンパク質のDNA-結合ドメインには、検出可能なトランス活性化機能はない。そのため、タンパク質の不活性形態を生成するために、そのDNA-結合ドメインのみを含むOsf2の欠失突然変異体（以降、ΔOsf2 と呼ぶ）が構築された。DNAコ-トランスフェクション測定では、ΔOsf2の増加分がROS17/2.8骨芽細胞における内因性Osf2によってオステオカルシンプロモーター-ルシフェラーゼキメラ遺伝子のトランス活性化を阻害し、ΔOsf2は、Osf2トランス活性化機能を、おそらくは同じ部位への結合を競争することによって、阻害できることを示している。 Osf2がin vivoで骨芽細胞機能の維持に関与しているかどうかを判定するために、マウスのオステオカルシン遺伝子２（OG2）プロモーター制御下でΔOsf2を過剰発現するトランスジェニックマウスが生成された。オステオカルシンは胎児発達の間は有意なレベルで発現されることはなく、またその発現は生後の骨芽細胞に限定されている。このように、OG2プロモーターは骨芽細胞-特異的で、また生後-特異的な発現をΔOsf2に対して付与するはずである。それぞれの研究に関して、２つの独立したトランスジェニック系の子孫で同一の結果が得られた。RT -PCR^TM法による分析では、導入遺伝子の骨-特異的発現を示した。予想通りに、 ΔOsf2-発現マウスは誕生時正常で、とくに骨格は、Cbfa1-欠損マウスのケースとは異なり、鉱化作用を受けていた。しかし、生後間もなくΔOsf2-発現マウスは骨格異常を発症した。２週齢の野生型と突然変異体動物の放射線学的な検査では、トランスジェニックマウスでは、野生型マウスと比較して、短めの長骨、少なめの皮質の厚さ、少なめの骨密度になっていることが明らかになった。組織学的な分析では、脊椎動物では海綿質と皮質骨の分量が少なめであり、野生型の同腹子に比較してトランスジェニック動物の長骨で少なめであることが示された。これらの発見では、ΔOsf2 -発現マウスにおける骨減少症の存在が示された。骨塊におけるこの減少は、骨芽細胞分化での遮断が原因、あるいは骨芽細胞より先に存在することによる骨基質沈着の欠如が原因かどうかを判定するため、静的および動的組織形態計測的分析が、新規の骨形成の分量のマーカーであるテトラサイクリン/カルセインにより二重標識した後に行われた。２週齢で、新たに形成された骨の分量は有意に減少し、また野生型動物に比較するとΔOsf2-発現マウスの長骨での骨形成率が３から４倍の減少を示した。骨基質沈着の間接的な指標である骨の厚さもまた減少した。これらの発見は、Ｘ線や通常の組織学的分析と一致していた。目立っていたことは、骨形成率においてこの減少が起こったが、一方では、骨芽細胞の数は、骨芽細胞により覆われている骨表面によって測定されたが、不変であった。同様に、骨再吸収細胞である破骨細胞の数は野生型とトランスジェニックマウスで同一であった。これらの結果から、 ΔOsf2-トランスジェニックマウスの骨減少症表現型は骨芽細胞の機能的な欠損のためであり、骨芽細胞分化における遮断のためではないことが示された。それらは、Osf2は生後分化した骨芽細胞表現型の維持に必要であることが示している。骨芽細胞が正常数存在する場合のこの骨減少症表現型の分子的基盤を解読するために、本発明者らは骨基質の構造タンパク質をコード化する遺伝子の発現を研究した。Osf2によって調節されることが知られている２つの骨芽細胞-特異的遺伝子である、オステオカルシン遺伝子１（OG1）とOG2の発現、もう１つの骨芽細胞-特異的遺伝子である骨シアロタンパク質（BSP）の発現、オステオポンチンの発現はすべて減少した。それら遺伝子は、骨基質タンパク質の少量のみを表す非コラーゲン性タンパク質をコード化し、またそれらの減少発現からは骨減少症表現型を単独で説明することはできなかった。タイプＩコラーゲンはそのタンパク質内容の90％を数える、骨基質の主要な成分である。α1(Ｉ)コラーゲンとα2（Ｉ）コラーゲンの発現、つまりタイプＩコラーゲンをコード化する２つの遺伝子の発現であるが、その発現は野生型同腹子に比較してΔOsf2-発現マウスでは顕著に減少した。DNA配列検査とDNA結合測定により、マウスα1(Ｉ)コラーゲン遺伝子のプロモーターにおける潜在的Osf2-結合部位[OSE2α1(Ｉ)]と、α2（Ｉ）コラーゲン遺伝子の１番目のエキソンにおける潜在的なOsf2-結合部位[OSE2α2(Ｉ)]が同定された。さらに、これら部位は、マウス、ラット、ヒト遺伝子においてほぼ同じ位置に存在している。OSE2α1(Ｉ )の機能上の妥当性はin vitroとin vivoで評価された。Osf2を発現させないCOS 細胞の中で行われたDNAコ-トランスフェクション測定では、外因性Osf2トランス活性化P4OSE2α(Ｉ)ルシフェラーゼ(Luc)、4OSE2α(Ｉ)部位を含む構築物はα1( Ｉ)コラーゲン最小プロモーターに融合した。このトランス活性化はDNA結合を破壊したOSE2α(Ｉ)部位における突然変異によって阻害された。第二に、α(Ｉ)コラーゲン最小プロモーター-lucキメラ遺伝子の前にあるOSE2α(Ｉ)エレメントの複数コピーを過剰発現するトランスジェニックマウスにおいて、ルシフェラーゼ活性が、この発現を破壊した上記のように、骨ならびに同じ2-bp突然変異体においてのみ検出された。これらの研究を一緒にまとめると、in vivoで骨芽細胞の主要な生合成的産物であるタイプＩコラーゲンの骨芽細胞発現にOsf2は貢献していることが唆され、またΔOsf2-発現マウスにおいて観察された骨減少症表現型に関する分子上の基盤を提供している。表現型の重症度が導入遺伝子の高度な発現のためであったかどうかを判定するために、本発明者らは、その発現を内因性OSF2の発現と比較した。驚くべきことに、導入遺伝子の発現レベルと内因性遺伝子のそれがほぼ同じであった。Δ Osf2がそれによって構造遺伝子の発現を阻害するはずのそのメカニズムは、同一の結合部位に対して内因性Osf2と競合することによるものであるはずである。したがって、この導入遺伝子と内因性遺伝子の発現がほぼ同等のレベルというだけではその表現型を説明することはできなかった。このことから、本発明者らは調節の付加的なレベルを探してΔOsf2-発現マウスにおいてOsf2発現を研究することになった。内因性Osf2発現は分析されたあらゆるトランスジェニックマウスにおいてほぼ全部破壊されており、Osf2がそれ自体の発現を制御していることを示していた。Osf2遺伝子のマウス5'領域の配列検査では、１つの共通Osf2-結合部位は転写開始部位の上流5'-ACCACA-3'であり、また他の２つは、並んでいて、5' 非翻訳領域にあることが示された。これらと同じ配列がまた、ヒトOsf2遺伝子の同じ位置に存在する。DNA結合測定では、これらのエレメントの野生型配列を含むオリゴヌクレオチドに骨芽細胞核抽出物が結合し、またOsf2に対する抗体がタンパク質-DNA複合体の上方へのシフトを引き起こした。同様に、組換えOsf2は野生型エレメントに結合したが、しかしそれらの突然変異した対応する部分には結合せず、これら配列が真正のOSE2部位であることが示された。さらに、組換えOs f2の増分量を使用した量的なDNA結合測定では、Osf2プロモーターが存在する部位はよく特徴付けがなされた他のOsf2結合部位よりもOsf2に対する親和性が10〜 100倍高いことが示された。DNAコ-トランスフェクション研究では、外因性Osf2 は、野生型OSE2エレメントを含むが、しかし突然変異したOSE2エレメントを含む同様の構築物は含まない、Osf2プロモーター-ルシフェラーゼキメラ遺伝子をトランス活性化した。これらの結果から、ΔOsf2-発現マウスにおいて観察されたO sf2発現のダウンレギュレーションに沿って、骨芽細胞におけるそれ自体の発現を肯定的に制御していることが示されている。これは、Osf2が分化骨芽細胞における構造遺伝子発現を制御し、それによって骨形成率が決まるわけだが、その分化骨芽細胞における構造遺伝子発現を制御している１つの不可欠な手段であると考えられる。本実施例では、Osf2機能は、骨芽細胞系譜に沿った細胞分裂に限定されていないというだけでなく、細胞生理学的にも関与していることが示されている。実際、Osf2は既に分化した骨芽細胞によって骨形成の正常な割合を維持するのに必要である。これらの結果から、成人鎖骨頭蓋骨形成不全症患者で観察される成長遅延や他の異常な骨格的な特徴に対する分子上の説明がもたらされる。Osf2が生後の骨形成を維持するのに必要であるということと、Osf2に関するハプロ機能不全が骨形成の全般的な欠損につながるという事実とを一緒にすると、Osf2発現が増加することで骨減少症状態の治療に使用できることが示唆されている。 5.8 実施例８ - 代替的にスプライシングされた、OSF2の優性負の変異体本発明者らは代替的にスプライシングされた、OSF2の優性負の変異体を同定した。この変異体はin vivoでのOsf2発現と機能の調節を改変することができる。これにはOsf2による転写の活性化を担うドメインが欠如しているが、ＤＮＡ−結合ドメインは保持している。したがって、この代替的にスプライシングされたｍＲＮＡによってコード化されるタンパク質は、Osf2-結合部位に結合することに関しては内因性Osf2と競争することができるが、転写の活性化はできない。そのため、この変異体は欠失突然変異体Δosf2とほぼ同様のOsf2により遺伝子の活性化を防ぐことができる。 5.8.1 代替的にスプライシングされた、OSF2の優性負の変異体の核酸配列（配列番号70） 6.0 参照文献次の文献は、ここに示した例示的な手順やその他の詳細を補完する範囲において、引用することにより本明細書の一部をなすものとするものである。ここに開示したすべての組成物および方法は、本開示に鑑みて不当な実験を必要とせずに実施することができるものである。本発明の組成物と方法は好適実施例により説明されてきているが、本発明の概念、精神、および範囲から離れることなしに、ここに開示した方法のステップまたはステップのつながりを変更することは当業者にとって明らかである。より具体的には、化学的にも生理学的にも関連している特定の試薬を、ここに開示した試薬の代わりに使用しても、類似または同じ結果が得られよう。当業者にとって明らかな、そのような類似の代替物や変更は、すべて、添付の特許請求の範囲において規定した本発明の精神、範囲、および概念の範囲内にあるものであると考えられる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｋ 48/00 Ｃ０７Ｋ 14/47 Ａ６１Ｐ 19/00 16/18 Ｃ０７Ｋ 14/47 Ｃ１２Ｎ 1/15 16/18 1/19 Ｃ１２Ｎ 1/15 1/21 1/19 7/00 1/21 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 5/10 Ｃ１２Ｑ 1/68 Ａ 7/00 (Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:19）Ｃ１２Ｑ 1/68 (Ｃ１２Ｎ 1/21 //(Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:42）Ｃ１２Ｒ 1:19）Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (Ｃ１２Ｎ 1/21 5/00 ＡＣ１２Ｒ 1:42）Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＧＷ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ

Claims

【特許請求の範囲】１．配列番号１または配列番号７０の配列を有するポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイゼーションする遺伝子を含むヌクレオチド鎖長約６００〜約１０，０００のポリヌクレオチドまたはその相補鎖。２．前記ポリヌクレオチドが造骨細胞特異的な転写因子活性を有するポリペプチドをコードする、請求項１に記載のポリヌクレオチド。３．前記ポリヌクレオチドがマウス細胞またはヒト細胞から単離することができる、請求項１または２に記載のポリヌクレオチド。４．前記ポリヌクレオチドが配列番号２または配列番号７１のアミノ酸配列を含むOsf2/Cbfa1ポリペプチドをコードする、請求項１乃至３のいずれかに記載のポリヌクレオチド。５．前記ポリヌクレオチドが配列番号１の核酸配列または配列番号７０の核酸を含む、請求項１乃至４のいずれかに記載のポリヌクレオチドまたはその相補鎖。６．アミノ酸鎖長約２２８のOsf2/Cbfa1ポリペプチドをコードするOsf2/Cbfa1 遺伝子を含む、請求項１乃至５のいずれかに記載のポリヌクレオチド。７．さらにＤＮＡ部分と規定される、請求項１乃至６のいずれかに記載のポリヌクレオチド。８．前記遺伝子を発現して前記ポリペプチドを産生するプロモーターと機能的に結合する、請求項１乃至７のいずれかに記載のポリヌクレオチド。９．ポリオーマプロモータープロモーター、アデノウイルス２プロモーター、シミアンウィルス４０プロモーター、β−ラクタマーゼプロモーター、lacプロモーター、tacプロモーター、trpプロモーター、Osfプロモーター、Cbfa1プロモーター、Runtプロモーター、Osf2プロモーター、３−ホスホグリセリン酸キナーゼプロモーター、エノラーゼプロモーター、アルコール脱水素酵素２プロモーター、イソシトクロムＣプロモーター、酸ホスファターゼプロモーター、グリセルアルデヒド−３−リン酸脱水素酵素プロモーター、ヘキソキナーゼプロモーター、ピルビン酸脱炭酸酵素プロモーター、グルコース−６−リン酸イソメラーゼプロモーター、ホスホグリセリン酸ムターゼプロモーター、ピルビン酸キナーゼプロモーター、トリオースリン酸イソメラーゼプロモーター、ホスホグルコースイソメラーゼプロモーターおよびグルコキナーゼプロモーターからなる群から選択されるプロモーターに機能的に結合する、請求項１乃至８のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１０．少なくとも第１の発現単位を有する組換えベクター内に含まれる、請求項１乃至９のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１１．プラスミドベクター、コスミドベクター、ファージベクター、ファージミドベクター、バキュロウィルスベクター、人工細菌染色体ベクターまたは人工酵母染色体ベクター内に含まれる、請求項１乃至１０のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１２．組換えウィルスまたはビリオン内に含まれる、請求項１乃至１１のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１３．組換えポリペプチドを作製する際に使用するための請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１４．骨原性疾患を治療するための遺伝子治療薬を製造する際に使用するための、請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド。１５．骨原性疾患を治療するための組換えポリペプチド薬剤を製造する際に使用するための、請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１６．動物における免疫応答を誘導する際に使用するための、請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１７．ヒト以外のトランスジェニック動物を作製する際に使用するための、請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチド。１８．宿主細胞内で前記ポリヌクレオチドを発現させるステップと、発現されたポリペプチドを回収するステップとを含む、請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチドを使用する方法。１９．組換えOsf2/Cbfa1ポリペプチド組成物を作製する際の請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドの用途。２０．骨原性疾患を治療するための遺伝子治療薬を製造する際の請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチドの用途。２１．骨原性疾患を治療するための組換えポリペプチド薬剤を製造する際の請求項１乃至１２のいずれかに記載のポリヌクレオチドの用途。２２．ヒト以外のトランスジェニック動物細胞を作製する際に使用するためのベクターを作製する際の請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドの用途。２３．ヒト以外の多能性動物細胞を作製する際の請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドの用途。２４．請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドを含む少なくとも第１の発現単位を有するベクターを含む宿主細胞。２５．前記宿主細胞が細菌細胞である、請求項２４に記載の宿主細胞。２６．前記細胞が大腸菌（E.coli）またはサルモネラ属（Salmonella spp.）細胞である、請求項２４または２５に記載の宿主細胞。２７．前記細胞が真核細胞である、請求項２４に記載の宿主細胞。２８．前記宿主細胞が酵母、真菌または動物細胞である、請求項２７に記載の宿主細胞。２９．前記細胞がほ乳類細胞である、請求項２７または２８に記載の宿主細胞。３０．前記細胞が造骨細胞である、請求項２７乃至２９のいずれか１項に記載の宿主細胞。３１．請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドを含むウィルス。３２．前記細胞またはウィルスがヒト以外のトランスジェニック動物に含まれる、請求項２４乃至３１のいずれか１項に記載の宿主細胞またはウィルス。３３．前記細胞またはウィルスが転写因子活性を有するポリペプチドを産生する、請求項２４乃至３２のいずれかに記載の宿主細胞またはウィルス。３４．組換えポリペプチドを発現させる際に使用するための、請求項２４乃至３３のいずれか１項に記載の宿主細胞またはウィルス。３５．ヒト以外のトランスジェニック動物細胞を作製する際に使用するための、請求項２４乃至３３のいずれか１項に記載の宿主細胞またはウィルス。３６．多能性動物細胞を作製する際の、請求項２４乃至３３のいずれか１項に記載の宿主細胞またはウィルスの用途。３７．転写因子ポリペプチド製剤を製造する際の、請求項２４乃至３３のいずれか１項に記載の宿主細胞またはウィルスの用途。３８．配列番号２または配列番号７１のアミノ酸配列を含む単離ポリペプチドを含む組成物。３９．前記ポリペプチドが造骨細胞特異的な転写因子活性を有する、請求項３８に記載の組成物。４０．前記ポリペプチドがほ乳類細胞から単離することができる、請求項３８または３９に記載の組成物。４１．前記ポリペプチドがヒト細胞またはマウス細胞から単離することができる、請求項３８乃至４０のいずれか１項に記載の組成物。４２．前記ポリペプチドが、（ａ）Osf2/Cbfa1転写因子ポリペプチドを含む組成物を製造するのに有効な条件下においてほ乳類細胞を培養するステップと、（ｂ）前記細胞から前記組成物を得るステップとを含む方法によって製造される、請求項３８乃至４１のいずれか１項に記載の組成物。４３．細胞内において遺伝子を特異的に転写する際に使用するための、請求項３８乃至４２のいずれか１項に記載の組成物。４４．骨原性疾患を治療するための薬剤を製造する際の、請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載の組成物の用途。４５．Osf2/Cbfa1ポリペプチドに特異的に結合する抗体を製造する際の、請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載の組成物の用途。４６．細胞内でOSE2要素を有する遺伝子を特異的に転写する方法であって、請求項１乃至１２，請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチド組成物の、前記遺伝子を特異的に転写するのに有効な量を細胞に提供するステップを含む方法。４７．前記細胞が動物内に含まれる、請求項４６に記載の方法。４８．配列番号２または配列番号７１のアミノ酸配列を含むポリペプチドに特異的に結合する精製抗体。４９．検出可能な標識に機能的に結合される、請求項４８に記載の抗体。５０．請求項４８または４９に記載の抗体と免疫検出試薬とを好適な容器手段内に含む免疫検出キット。５１．免疫検出試薬が、前記ポリペプチドまたは前記第１の抗体に結合する検出可能な標識である、請求項５０に記載の免疫検出キット。５２．前記免疫検出試薬が、前記ポリペプチドまたは前記第１の抗体に対する結合親和性を有する第２の抗体に結合する検出可能な標識である、請求項５０または５１に記載の免疫検出キット。５３．免疫検出試薬が、ヒト抗体に対する結合親和性を有する第２の抗体に結合する検出可能な標識である、請求項５０乃至５２のいずれか１項に記載の免疫検出キット。５４．生物試料中のOsf2/Cbfa1ポリペプチドを検出するための方法であって、前記ポリペプチドを含有することが疑われる生物試料と請求項４８または４９に記載の抗体とを、免疫複合体を形成するのに有効な条件下において接触させるステップと、このように形成された免疫複合体を検出するステップとを含む方法。５５．配列番号２または配列番号７１のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするトランスジーンをゲノムに組み込んだヒト以外のトランスジェニック動物。５６．前記トランスジーンが配列番号１または配列番号７０のアミノ酸配列を含む、請求項５５に記載のヒト以外のトランスジェニック動物。５７．Osf2/Cbfa1ポリペプチドを作製する方法であって、（ａ）Osf2/Cbfa1をコードする核酸部分がプロモーターの制御下におかれているベクターを宿主細胞に導入するステップと、（ｂ）前記Osf2/Cbfa1ポリペプチドを発現させるのに有効な条件下において形質転換した宿主細胞を培養するステップと、（ｃ）このように作製されたOsf2/Cbfa1ポリペプチドを回収するステップとを含む方法。５８．Osf2/Cbfa1遺伝子を検出するための方法であって、（ａ）Osf2/Cbfa1遺伝子を含有することが疑われる試料核酸を得るステップと、（ｂ）前記試料核酸と少なくとも第１のOsf2/Cbfa1特異的核酸部分とを、実質的に相補的な核酸のハイブリダイゼーションを可能にするのに有効な条件において接触させる段階と、（ｃ）このように形成されたハイブリダイゼーションした相補的核酸を検出するステップとを含む方法。５９．接触させられる前記試料核酸が細胞内に存在するか、または接触の前に細胞から分離される、請求項５８に記載の方法。６０．前記試料核酸がＤＮＡである、請求項５８または５９に記載の方法。６１．単離されたOsf2/Cbfa1核酸部分が検出可能な標識を含み、ハイブリダイゼーションされた相補的な核酸が前記標識を検出することによって検出される、請求項５８乃至６０のいずれか１項に記載の方法。６２．核酸部分が放射性標識、酵素標識または蛍光標識を含む、請求項５８乃至６１のいずれか１項に記載の方法。６３．検出キットを製造する際に使用するための請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリペプチド組成物。６４．診断用製剤を製造する際の請求項項１乃至１２のいずれか１項に記載のポリヌクレオチドまたは請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリペプチド組成物の用途。６５．配列番号１、配列番号７０または配列番号７２の隣接ヌクレオチド配列を含む第１の単離Osf2/Cbfa1核酸部分と検出試薬とを好適な容器手段内に含む核酸検出キット。６６．各々が配列番号１、配列番号７０または配列番号７２の隣接ヌクレオチド配列を含み、各々がヌクレオチド鎖長約１６〜４０のサイズを有する少なくとも２つのOsf2/Cbfa1特異的核酸部分を含む、請求項６５に記載の核酸検出キット。６７．免疫応答を形成する方法であって、請求項１乃至１２、請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチドの免疫学的に有効な量を含む薬学的組成物を動物に投与するステップを含む方法。６８．OSE2配列要素と相互作用するポリペプチドをコードする遺伝子を同定する方法であって、（ａ）標識OSE2配列要素を得るステップと、（ｂ）前記標識OSE2配列要素を用いて発現ライブラリーをスクリーニングうるステップと、（ｃ）前記OSE2配列要素と相互作用する１種以上のポリペプチドをコードする遺伝子を前記ライブラリー中で同定するステップと、（ｄ）相互作用するポリペプチドをコードする前記遺伝子を前記ライブラリーから得るステップとを含む方法。６９．細胞中で造骨細胞特異的遺伝子を特異的に転写する方法であって、請求項１乃至１２、請求項３１、または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチド組成物の、前記造骨細胞特異的遺伝子を特異的に転写するのに有効な量を前記細胞に提供するステップを含む方法。７０．細胞中で造骨細胞特異的遺伝子の発現を促進する方法であって、請求項１乃至１２、請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチド組成物の、前記遺伝子の発現を促進するのに有効な量を前記細胞に提供するステップを含む方法。７１．細胞中で選択された遺伝子の発現を促進する方法であって、OSE2要素の転写制御下に置かれた前記選択された遺伝子を含む発現系と前記細胞中での前記遺伝子の発現を促進するのに有効な量のOsf2/Cbfa1組成物とを前記細胞に提供するステップを含む方法。７２．細胞中で選択された遺伝子の発現を促進する方法であって、配列番号７２のヌクレオチド配列を含むOsf2プロモーター配列の転写制御下に置かれた前記選択された遺伝子を含む発現系を前記細胞に提供するステップを含む方法。７３．OSE2要素を含む核酸部分を検出する方法であって、OSE2要素を含むことが疑われる核酸部分の集団を、請求項１乃至１２、請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチドの、前記Osf2/Cbfa1組成物を前記要素に結合させるのに有効な量を、前記Osf2 /Cbfa1組成物を前記要素に結合させるのに有効な条件下において接触させるステップと、結合した複合体を検出するステップとを含む方法。７４．OSE2要素を精製する方法であって、OSE要素を含むことが疑われる試料を、請求項１乃至１２、請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチドの、前記Osf2/Cbfa1組成物を前記要素に結合させるのに有効な量を、前記Osf2/Cbfa1組成物を前記要素に結合させるのに有効な条件下において接触させるステップと、結合した複合体を検出するステップとを含む方法。７５．造骨細胞の分化を誘発する方法であって、造骨始原細胞に、請求項１乃至１２、請求項３１または請求項３８乃至４３のいずれか１項に記載のポリヌクレオチド、ウィルスまたはポリペプチドの、前記始原細胞の分化を誘発するのに有効な量を提供するステップを含む方法。