WO2010026933A1 - Ｒｎａ検出用組成物 - Google Patents

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ribonuclease
rna
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derived
reaction
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PCT/JP2009/065151
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圭名子 碓井
上森　隆司
向井　博之
加藤　郁之進
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タカラバイオ株式会社
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1096—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA cDNA Synthesis; Subtracted cDNA library construction, e.g. RT, RT-PCR
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6848—Nucleic acid amplification reactions characterised by the means for preventing contamination or increasing the specificity or sensitivity of an amplification reaction

Definitions

  • the present invention relates to a composition useful for RNA detection, an RNA detection method using the composition, and an RNA detection kit.
  • the nucleic acid amplification method in particular, the polymerase chain reaction (PCR) method, is a technique for simply amplifying a desired nucleic acid fragment in a test tube.
  • PCR polymerase chain reaction
  • a method has been developed for accurately quantifying DNA serving as a template by measuring nucleic acid amplification by PCR over time using, for example, an intercalating dye (Non-patent Document 1). This method is called a real-time PCR method in order to distinguish it from the previously known quantitative PCR.
  • a method using a FRET (fluorescence resonance energy transfer) oligonucleotide probe is also known as the real-time PCR method.
  • Real-time PCR using a FRET oligonucleotide probe includes a method using the 5 ′ ⁇ 3 ′ exonuclease activity of DNA polymerase (Taq Man Probe method), a method using a Molecular Beacon probe, and FRET when hybridized to a target nucleic acid.
  • HybriProbe method a method using a FRET oligonucleotide probe containing ribonucleotides and a heat-resistant ribonuclease H (RNase H) (CyclePCR method, patent literature) 1) etc. are known.
  • the PCR method is also applied to an RNA detection method and is called a reverse transcriptase PCR (RT-PCR) method.
  • the RT-PCR method synthesizes a DNA transcript (cDNA) complementary to RNA using RNA-dependent DNA polymerase activity, that is, reverse transcriptase having reverse transcription activity or DNA polymerase having reverse transcription activity. This is a method for specifically amplifying and detecting RNA-derived cDNA by performing PCR using this as a template.
  • the RT-PCR method is useful not only for the cloning of mRNA-derived cDNA and the preparation of a cDNA library, but also as a method for examining the expression state of a specific mRNA.
  • the real-time RT-PCR method in which RT-PCR is applied to real-time PCR is applied to gene expression analysis, expression profile creation, and the like because mRNA can be accurately quantified.
  • RNA used as a template for reverse transcriptase. Therefore, from the beginning of RT-PCR development, in order to improve the reactivity of RT-PCR, a single-strand cDNA is obtained before PCR by treatment with alkali, heat, or enzyme after the reverse transcription reaction. It is good to keep it.
  • the enzyme treatment with E. coli-derived ribonuclease H is effective after the reverse transcription reaction (Non-patent Document 2).
  • RT-PCR if treatment with alkali, heat, or enzyme is performed after the reverse transcription reaction, more time is required to complete the reaction than when these treatments are not performed. Further, when a treatment with an alkali or an enzyme is performed, a step of adding the alkali or the enzyme to the reverse transcription reaction solution is required, so that the operation becomes complicated and the risk of contamination increases. Therefore, improvement of these problems is desired.
  • An object of the present invention is to provide an RNA detection reagent, an RNA detection method, and an RNA detection kit, which are superior to conventional ones.
  • thermostable ribonuclease H in a nucleic acid amplification reaction using a cDNA synthesized by a reverse transcription reaction using RNA as a template.
  • a nucleic acid amplification reaction that is simple, highly specific, and highly efficient is possible.
  • the present inventors have found that the thermostable ribonuclease H functions even in the presence of an intercalating dye, and completed the present invention.
  • the first invention of the present invention is to amplify a cDNA synthesized by a reverse transcription reaction, which contains a thermostable DNA polymerase, a thermostable ribonuclease H, and an intercalating dye, so that RNA used as a template for the reverse transcription reaction is amplified. It relates to a composition for detection.
  • examples of the thermostable DNA polymerase include DNA polymerases derived from highly thermophilic bacteria.
  • examples of the thermostable ribonuclease H include ribonuclease H derived from highly thermophilic bacteria such as Thermus bacteria and Thermococcus archaea.
  • the composition of the first invention of the present invention may further contain at least one selected from the group consisting of at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and a reaction buffer.
  • the second invention of the present invention is: (A) preparing a composition comprising a reverse transcriptase, at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and RNA serving as a template for a reverse transcription reaction; (B) incubating the composition prepared in step (A) to synthesize cDNA; (C) preparing a composition containing the cDNA synthesized in step (B), a heat-resistant DNA polymerase, a heat-resistant ribonuclease H, and an intercalating dye; (D) a step of performing a polymerase chain reaction using the composition prepared in step (C) to amplify the nucleic acid, and (E) a fluorescence signal from the intercalating dye by the nucleic acid amplified in step (D).
  • step (E) may be carried out during the polymerase chain reaction in step (D).
  • RNA as a template may be quantified from the signal intensity measured in the step (E).
  • the third invention of the present invention relates to a kit for detecting RNA containing a thermostable DNA polymerase, a thermostable ribonuclease H, and an intercalating dye.
  • thermostable DNA polymerase and thermostable ribonuclease H in the third invention of the present invention are the same as those exemplified in the first invention of the present invention.
  • the kit of the third invention of the present invention may further contain at least one selected from the group consisting of reverse transcriptase, at least one primer, at least one deoxyribonucleotide, and a reaction buffer. .
  • an RNA detection reagent for example, an RNA detection method, and an RNA detection kit that have a shorter working time than conventional methods, can be performed with a simple operation, and have excellent reactivity.
  • composition of the present invention contains a thermostable DNA polymerase, a thermostable ribonuclease H, and an intercalating dye.
  • thermostable DNA polymerase and a thermostable ribonuclease H and not containing an oligonucleotide probe containing ribonucleotides is also an embodiment of the present invention.
  • the composition of this embodiment is useful for real-time RT-PCR using a FRET oligonucleotide probe, a method for confirming an amplification product obtained by RT-PCR by electrophoresis, and the like.
  • the reactivity of the nucleic acid amplification reaction is not particularly limited, but can be confirmed by the number of temperature cycles (Ct value) when the amount of nucleic acid amplification reaches a certain amount in PCR.
  • Ct value the number of temperature cycles
  • the heat-resistant DNA polymerase refers to a DNA-dependent DNA polymerase that retains activity even after being treated at a temperature of 75 ° C. or higher for 30 minutes.
  • the thermostable DNA polymerase may further have 5 ' ⁇ 3' exonuclease activity, 3 ' ⁇ 5' exonuclease activity, and / or RNA-dependent DNA polymerase activity.
  • thermostable DNA polymerase used in the present invention is not limited as long as it can be used for PCR, and many types are already commercially available.
  • examples of the thermostable DNA polymerase used in the present invention include DNA polymerases derived from highly thermophilic bacteria.
  • Highly thermophilic bacteria refers to bacteria that can grow even in an environment of 75 ° C. or higher.
  • hyperthermophilic bacteria for example, eubacteria such as Thermus aquaticu, Thermus thermophilus, Thermus flavus, and thermus genus Thermus archaea, such as Thermus sp.
  • KS-1 genus Thermococcus
  • Thermococcus kodakaraensis a mixture of two or more heat-resistant DNA polymerases may be used.
  • Ribonuclease H refers to a hydrolase that specifically cleaves only the RNA strand of a DNA / RNA hybrid in an endo form, and is sometimes referred to as RNase H.
  • the thermostable ribonuclease H refers to ribonuclease H that retains activity even after being treated at a temperature of 60 ° C. or higher for 15 minutes.
  • thermostable ribonuclease H in the present invention is not particularly limited, but is exemplified by a hyperthermophile-derived ribonuclease H, such as Thermus thermophilus and Thermus flavus-derived Thermus genus ribonuclease H, and Thermococcus litoralis, etc. Thermococc.
  • the genus archaea-derived ribonuclease H is more preferably exemplified.
  • WO 02/22831 pamphlet also discloses thermostable ribonuclease H.
  • Intercalating dye refers to a dye whose fluorescence is enhanced by intercalation into a double-stranded nucleic acid.
  • ethidium bromide, SYBR (registered trademark) Green I, PicoGreen, SYTO9, SYTO13, EvaGreen, YOYO, TOTO, and analogs thereof are used as intercalating dyes for real-time PCR.
  • the intercalating dye in the present invention include the above-mentioned dyes, but are not particularly limited to these, and any intercalating dye in the present invention can be used as long as fluorescence is enhanced by intercalation to nucleic acids. Included in the calating dye.
  • composition of the present invention includes at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and / or a reaction buffer in addition to the heat-resistant DNA polymerase, heat-resistant ribonuclease H, and intercalating dye. It may be included.
  • Oligonucleotide primer (also simply referred to as primer) is not particularly limited as long as it is an oligonucleotide that anneals to a template nucleic acid or a primer extension strand on the complementary strand side under the reaction conditions used.
  • the primer chain length is preferably 6 nucleotides or more, more preferably 10 nucleotides or more from the viewpoint of specific annealing, and preferably 100 nucleotides or less, more preferably from the viewpoint of oligonucleotide synthesis. Is 30 nucleotides or less.
  • the oligonucleotide can be synthesized by, for example, the phosphoramidite method using a DNA synthesizer type 394 manufactured by ABI (Applied Biosystems Inc.). In addition, those synthesized by any method such as a phosphoric acid triester method, an H-phosphonate method, and a thiophosphonate method may be used. Moreover, it may be an oligonucleotide derived from a biological sample, for example, isolated from a restriction endonuclease digest of DNA prepared from a natural sample.
  • Deoxyribonucleotides are those in which a phosphate group is bound to deoxyribose bound to an organic base by a phosphoester bond.
  • Natural DNA contains four types of nucleotides. Each nucleotide having adenine, guanine, cytosine and thymine bases is included in the natural DNA. The bases adenine, guanine, cytosine, and thymine are often abbreviated as A, G, C, and T, respectively.
  • Deoxyribonucleotides include deoxyribonucleoside monophosphate, diphosphate and triphosphate types (ie, the phosphate moiety has one, two or three phosphate groups, respectively).
  • deoxyribonucleotides include deoxyribonucleoside triphosphates (eg, dATP, dCTP, dITP, dGTP, and dTTP) and derivatives thereof.
  • a composition containing four deoxyribonucleotides dATP, dCTP, dGTP and dTTP is used in the present invention.
  • Deoxyribonucleotide derivatives include [ ⁇ S] dATP, 7-deaza-dGTP, 7-deaza-dATP, and deoxynucleotide derivatives that are resistant to nucleic acid degradation.
  • Nucleotide derivatives include deoxyribonucleotides that are labeled such that they can be detected with, for example, a radioisotope such as 32 P or 35 S, a fluorescent moiety, a chemiluminescent moiety, a bioluminescent moiety, or an enzyme. These deoxyribonucleotide derivatives are added to the composition of the present invention as necessary, or substituted with deoxyribonucleotides corresponding to the natural DNA.
  • the reaction buffer solution refers to a solution containing one or more buffer components for adjusting the pH of the reaction solution, and may further contain a divalent cation and a monovalent cation.
  • the reaction buffer may contain a surfactant, a heat-resistant DNA polymerase and / or a component for improving the activity and stability of the heat-resistant ribonuclease H.
  • the method for preparing the composition of the present invention is not particularly limited. Specifically, for example, a mixture containing a heat-resistant DNA polymerase, an intercalating dye, and, if necessary, at least one deoxyribonucleotide, and a reaction buffer. Further, it can be prepared by mixing thermostable ribonuclease H and at least one oligonucleotide primer.
  • a mixture containing a heat-resistant DNA polymerase, an intercalating dye, deoxyribonucleotide, and a reaction buffer SYBR (registered trademark) Premix Ex Tag TM (Perfect Real Time) (manufactured by Takara Bio Inc.) is commercially available. The product can be suitably used.
  • the template DNA is added to the composition of the present invention, and diluted at the time of use with sterilized distilled water or the like, so that various components are formulated so as to have concentrations suitable for PCR.
  • a concentrated composition can be mentioned. This embodiment makes it possible to easily prepare a reaction solution for nucleic acid amplification.
  • the method for detecting RNA of the present invention comprises: (A) preparing a composition comprising reverse transcriptase, at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and RNA as a template; (B) incubating the composition prepared in step (A) to synthesize cDNA; (C) preparing a composition containing the cDNA synthesized in step (B), a heat-resistant DNA polymerase, a heat-resistant ribonuclease H, and an intercalating dye; (D) A step of performing a polymerase chain reaction using the composition prepared in step (C) to synthesize nucleic acid, and (E) a fluorescence signal from an intercalating dye for the nucleic acid synthesized in step (D). Detecting by measuring the intensity of including.
  • the reverse transcriptase in the above step (A) can be used in the present invention as long as it has reverse transcription activity, that is, activity of synthesizing complementary DNA using RNA as a template.
  • reverse transcriptases derived from viruses such as Moloney murine leukemia virus-derived reverse transcriptase (MMLV-derived reverse transcriptase) and avian myeloblastosis virus-derived reverse transcriptase (AMV-derived reverse transcriptase), and thermus genus bacteria
  • viruses such as Moloney murine leukemia virus-derived reverse transcriptase (MMLV-derived reverse transcriptase) and avian myeloblastosis virus-derived reverse transcriptase (AMV-derived reverse transcriptase), and thermus genus bacteria
  • thermostable reverse transcriptase derived from eubacteria such as DNA polymerase (Tth DNA polymerase, etc.) and thermophilic Bacillus genus-derived DNA polymerase (Bca DNA polymerase
  • virus-derived reverse transcriptase is preferably used, and MMLV-derived reverse transcriptase is more preferably used.
  • reverse transcriptase in which a naturally occurring amino acid sequence is modified within a range having reverse transcription activity can also be used in the present invention.
  • the template RNA is RNA that can serve as a template for reverse transcription reaction from the primer when the primer is annealed.
  • the composition prepared in step (A) may contain one type of template RNA, or may contain multiple types of templates having different nucleotide sequences.
  • cDNA complementary to the template can be prepared.
  • primer extension products can be prepared for a plurality of types of templates in the nucleic acid mixture. Multiple templates may be present in different nucleic acids or in the same nucleic acid.
  • the template RNA that can be applied to the present invention is not particularly limited, and is a total RNA in a sample, that is, an RNA molecule group such as mRNA, tRNA, and rRNA, or a specific RNA molecule group (for example, a common base).
  • RNA used as a template may be contained in a sample that may contain a living organism such as a cell, tissue, or blood, or a living organism such as food, soil, or waste water.
  • the nucleic acid-containing preparation obtained by treating the sample or the like by a known method may be used. Examples of the preparation include cell debris and a sample obtained by fractionating the same, total RNA in the sample, or a specific RNA molecule group, for example, a sample enriched with mRNA.
  • a composition for performing a reverse transcription reaction that is, a method for preparing a reverse transcription reaction solution, is well known to those skilled in the art, and a reaction solution containing the above-described various components at appropriate concentrations may be prepared.
  • a reverse transcription reaction solution can be easily prepared by using a commercially available reverse transcription kit.
  • step (B) in the above method cDNA complementary to RNA serving as a template is synthesized.
  • the incubation conditions in the step (B) are not particularly limited, but examples of the temperature conditions include 30 ° C. to 65 ° C., and 37 ° C. to 45 ° C. are more preferable.
  • the reaction time is exemplified by 5 minutes to 120 minutes, and more preferably 15 minutes to 60 minutes. The conditions may be appropriately adjusted according to the reverse transcriptase used and the amount of template RNA.
  • step (C) in the above method a composition containing the cDNA synthesized in step (B), heat-resistant DNA polymerase, heat-resistant ribonuclease H, and intercalating dye is prepared.
  • thermostable DNA polymerase, thermostable ribonuclease H, and intercalating dye include those described in the above (1) “Composition of the present invention”. These compositions may be mixed and prepared.
  • step (D) in the above method nucleic acid amplification is performed by polymerase chain reaction using the composition prepared in step (C) with the cDNA synthesized in step (B) as a template.
  • the PCR in the method of the present invention may be a PCR performed in a temperature cycle in which the temperature of three stages is one cycle, or may be a shuttle PCR performed in a temperature cycle in which the temperature of two stages is one cycle. PCR may be performed at a temperature cycle of 20 to 50 cycles, for example.
  • a heat treatment at 90 ° C. or more for 15 seconds to 10 minutes may be performed before the above three-stage or two-stage temperature cycle.
  • heat treatment is preferably performed before the PCR temperature cycle from the viewpoint of improving reactivity.
  • the composition of the present invention is used for PCR using cDNA as a template, the amplification efficiency of PCR in which heat treatment is performed before the PCR temperature cycle is further improved.
  • step (E) in the above method the nucleic acid amplified in step (D) is detected by measuring the intensity of the fluorescent signal from the intercalating dye.
  • RNA used as the template of the amplified nucleic acid can be detected.
  • the fluorescence signal from the intercalating dye is emitted by irradiating the reaction composition with excitation light of the intercalating dye, and its intensity increases with an increase in the amount of double-stranded nucleic acid.
  • the detection of the fluorescence signal intensity may be performed after the PCR reaction is completed, or may be performed for each temperature cycle of the PCR reaction in the step (D).
  • the RNA detection method of the present invention may further include a step of (F) quantifying RNA serving as a template from the signal intensity measured in step (E).
  • a commercially available device for real-time PCR may be used for measuring the fluorescence signal intensity in the PCR reaction.
  • Examples of commercially available devices for real-time PCR include Thermal Cycler Dice (registered trademark), Real Time System (manufactured by Takara Bio Inc.), and Smart Cycler (registered trademark) II System (manufactured by Takara Bio Inc.).
  • Kit of the present invention is a kit for detecting RNA and contains a heat-resistant DNA polymerase, a heat-resistant ribonuclease H, and an intercalating dye. Since the kit of the present invention can efficiently perform a nucleic acid amplification reaction using cDNA synthesized by reverse transcription as a template, it is useful for detection of RNA having a target sequence, and also has a target sequence. Useful for RNA quantification.
  • the kit of the present invention contains at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and / or a reaction buffer in addition to the heat-resistant DNA polymerase, heat-resistant ribonuclease H, and intercalating dye. May be.
  • thermostable DNA polymerase thermostable ribonuclease H
  • intercalating dye at least one oligonucleotide primer
  • at least one deoxyribonucleotide at least one deoxyribonucleotide
  • reaction buffer for example, as a mixture of a thermostable DNA polymerase, an intercalating dye, at least one deoxyribonucleotide, and a reaction buffer, SYBR (registered trademark) Prex Ex Tag TM (Perfect Real Time) (manufactured by Takara Bio Inc.) ) And other commercial products.
  • the kit of the present invention may further contain a reagent for performing a reverse transcription reaction.
  • reagents include reverse transcriptase, at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and / or a reaction buffer.
  • a primer here, what is used suitably for reverse transcription is mentioned, There is no limitation in particular.
  • thermostable DNA polymerase thermostable ribonuclease H, intercalating dye, reverse transcriptase, at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and the reaction buffer contained in the kit of the present invention are as described above.
  • thermostable DNA polymerase thermostable ribonuclease H, intercalating dye, reverse transcriptase, at least one oligonucleotide primer, at least one deoxyribonucleotide, and the reaction buffer contained in the kit of the present invention are as described above. Examples of (1) “the composition of the present invention” and (2) “the method of the present invention” are exemplified.
  • composition of the present invention can suppress the influence on the nucleic acid amplification reaction by RNA used as a template for cDNA synthesis, it is useful for RNA detection, and further for detecting RNA and quantifying it. May be used. Further, it is useful for quantification of RNA having a target sequence by real-time RT-PCR.
  • Example 1 (1) Synthesis of cDNA from RNA Using Human Testis Total RNA (Clontech) as a template, PrimeScript (registered trademark) RT reagent Kit (Perfect Real Time) (product code: RR037A) A reverse transcription reaction was performed according to the standard protocol of the product to prepare cDNA.
  • PrimeScript registered trademark
  • RT reagent Kit Perfect Real Time
  • Tli RNase H Thermococcus litoralis-derived ribonuclease H
  • reaction solution having the same composition as the above reaction solution except that Tli RNase H was not contained was prepared (total 25 ⁇ L).
  • the fluorescence intensity from SYBR (registered trademark) Green I was measured for each PCR cycle, and the change in the amount of amplified product was observed.
  • the Ct value calculated by the Crossing Point method was confirmed with an Auto setting using a real-time device, and the average value was obtained.
  • the reaction solution containing Tli RNase H had a lower Ct value. This revealed that the amplification efficiency was improved by adding thermostable RNase H to the reaction solution during PCR using cDNA synthesized by reverse transcription reaction as a template.
  • Example 2 Using the same apparatus and reagents as in Example 1 and also when heat denaturation was performed before PCR nucleic acid amplification, it was confirmed that the Ct value decreased by adding RNase H.
  • the SOX-F primer having the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing and the SOX-R primer having the base sequence shown in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing
  • a reaction solution for amplification and detection of the Sex-Determining Region Y Box 18 (SOX18) gene fragment was prepared in the same manner as above except that was used.
  • a NAT-F primer having the base sequence shown in SEQ ID NO: 5 in the sequence listing and a NAT-R having the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 in the sequence listing A reaction solution for amplification and detection of N-acetyltransferase 14 (NAT14) gene fragment was prepared using primers. A reaction solution for amplification and detection of each target sequence having the same composition as each of the above reaction solutions except that 1 U of Tli RNase H was not included was prepared.
  • the amplification efficiency was confirmed when heat denaturation was not performed before PCR and when heat denaturation was performed before PCR.
  • the reaction solution is subjected to 40 cycles PCR with 1 cycle: 95 ° C, 5 seconds, 2 steps: 60 ° C, 30 seconds as 1 cycle, and heat denaturation is performed before PCR.
  • Hybridase TM registered trademark
  • Thermostable RNase H hereinafter referred to as Hybridase, manufactured by Epicentre, thermostable RNase H derived from Thermus sp.
  • Table 3 shows the calculated Ct values. The relationship between the amount of RNase H in the reaction solution and the Ct value is shown in FIG.
  • thermostable RNase H derived from a Thermus bacterium was used, the nucleic acid amplification efficiency was improved by the addition of RNase H.
  • composition of the present invention the RNA detection method using the composition, and the RNA detection kit are widely useful in the field of genetic engineering.
  • the present invention can suppress the influence on the nucleic acid amplification reaction by RNA used as a template for cDNA synthesis according to the present invention, so that it is useful for RNA detection and also by real-time RT-PCR of RNA having a target sequence. More useful by quantification.
  • SEQ ID NO: 1 Primer to amplify the cDNA fragment of human APOE gene.
  • SEQ ID NO: 2 Primer to amplify the cDNA fragment of human APOE gene.
  • SEQ ID NO: 3 Primer to amplify the cDNA fragment of human SOX18 gene.
  • SEQ ID NO: 4 Primer to amplify the cDNA fragment of human SOX18 gene.
  • SEQ ID NO: 5 Primer to amplify the cDNA fragment of human NAT14 gene.
  • SEQ ID NO: 6 Primer to amplify the cDNA fragment of human NAT14 gene.

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Abstract

　逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを増幅し、前記逆転写反応の鋳型となったＲＮＡを検出するための組成物であって、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有してなる組成物。本発明の組成物は、ｃＤＮＡ合成の鋳型となったＲＮＡによる核酸増幅反応への影響を抑えることができるため、ＲＮＡの検出に有用であり、目的の配列を有するＲＮＡのリアルタイムＲＴ－ＰＣＲによる定量により有用である。

Description

ＲＮＡ検出用組成物
　本発明は、ＲＮＡの検出に有用な組成物、該組成物を用いるＲＮＡの検出方法、及びＲＮＡ検出用キットに関する。
　核酸増幅方法、なかでもポリメラーゼ連鎖反応（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　Ｃｈａｉｎ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ、ＰＣＲ）法は、試験管内において簡便に所望の核酸断片を増幅する技術であり、近年、遺伝子に関する研究のみならず、生物学、医学、農業等幅広い分野において不可欠の実験手法となっている。また、ＰＣＲによる核酸の増幅を、例えばインターカレーティング色素を利用して経時的に測定することで、鋳型となるＤＮＡの定量を精度良く行う方法が開発されている（非特許文献１）。この方法は、それまで知られていた定量的ＰＣＲと区別する意味で、リアルタイムＰＣＲ法と呼ばれている。
　リアルタイムＰＣＲ法は、インターカレーティング色素を用いる方法以外に、ＦＲＥＴ（蛍光共鳴エネルギー移動）オリゴヌクレオチドプローブを用いる方法も知られている。ＦＲＥＴオリゴヌクレオチドプローブを用いるリアルタイムＰＣＲとしては、ＤＮＡポリメラーゼの５’→３’エキソヌクレアーゼ活性を利用する方法（Ｔａｑ　Ｍａｎ　Ｐｒｏｂｅ法）、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｅａｃｏｎプローブを用いる方法、標的核酸にハイブリダイズした場合にＦＲＥＴが起こるように設計された２種類のオリゴヌクレオチドプローブを用いる方法（ＨｙｂｒｉＰｒｏｂｅ法）、及びリボヌクレオチドを含有するＦＲＥＴオリゴヌクレオチドプローブと耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ（ＲＮａｓｅ　Ｈ）とを利用する方法（ＣｙｃｌｅａｖｅＰＣＲ法、特許文献１）等が知られている。
　ＰＣＲ法は、ＲＮＡの検出方法にも応用され、Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ　ＰＣＲ（ＲＴ－ＰＣＲ）法と呼ばれている。ＲＴ－ＰＣＲ法は、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、すなわち逆転写活性を有する逆転写酵素、あるいは逆転写活性を併せ持つＤＮＡポリメラーゼを用いてＲＮＡに相補的なＤＮＡ転写物（ｃＤＮＡ）を合成し、続いてこれを鋳型としてＰＣＲを行うことによりＲＮＡ由来ｃＤＮＡを特異的に増幅、検出する方法である。ＲＴ－ＰＣＲ法は、ｍＲＮＡ由来のｃＤＮＡのクローニングやｃＤＮＡライブラリーの作製に利用されるほか、特定のｍＲＮＡの発現状態を調べる方法としても有用である。また、ＲＴ－ＰＣＲをリアルタイムＰＣＲに応用したリアルタイムＲＴ－ＰＣＲ法は、ｍＲＮＡの定量を精度良く行えるため、遺伝子の発現解析や発現プロファイルの作成等に応用されている。
　ＲＴ－ＰＣＲにおいて、逆転写反応後のｃＤＮＡは逆転写酵素の鋳型として用いたＲＮＡとＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドを形成している。このため、ＲＴ－ＰＣＲが開発された当初より、ＲＴ－ＰＣＲの反応性を向上させるためには、逆転写反応後にアルカリ、熱、又は酵素での処理によって、ＰＣＲの前にｃＤＮＡを一本鎖にしておくことが良いとされている。例えば、鋳型となるＲＮＡのＧＣ含量が高い場合には、逆転写反応後に大腸菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈによる酵素処理の実施が効果的であるとの報告がある（非特許文献２）。
国際公開第２００３／０７４６９６号パンフレット Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　（Ｎ　Ｙ）．　１９９３　Ｓｅｐ；１１（９）：１０２６－１０３０． Ｂｉｏｓｃｉ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　２００３　Ｎｏｖ；６７（１１）：２４７４－２４７６．
　ＲＴ－ＰＣＲにおいて、逆転写反応後にアルカリ、熱、又は酵素による処理を行うと、これらの処理を行わない場合に比べて反応終了までにより多くの時間を要する。また、アルカリや酵素での処理を行う場合には、逆転写反応液にアルカリや酵素を添加する工程が必要となるため、操作が煩雑となり、コンタミネーションの危険も増す。従って、これらの問題点の改善が望まれている。
　本発明の課題は、従来のものに比べて優れた、ＲＮＡ検出用試薬、ＲＮＡの検出方法、及びＲＮＡの検出用キットを提供することにある。
　本発明者らは上記課題を解決するべく鋭意努力した結果、驚くべきことに、ＲＮＡを鋳型とした逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを鋳型とする核酸増幅反応において、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈを利用することによって、簡便で、高い特異性で、かつ高い効率での核酸増幅反応が可能であることを見出した。また、更に驚くべきことに、インターカレーティング色素の存在下であっても耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈが機能することを見出し、本発明を完成させた。
　本発明の第１の発明は、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する、逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを増幅し、逆転写反応の鋳型となったＲＮＡを検出するための組成物に関する。本発明の第１の発明において、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとしては高度好熱菌由来のＤＮＡポリメラーゼが例示される。また、本発明の第１の発明において、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈとしては、Ｔｈｅｒｍｕｓ属細菌やＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属古細菌のような高度好熱菌に由来するリボヌクレアーゼ　Ｈが例示される。本発明の第１の発明の組成物は、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液からなる群より選ばれる少なくとも１つをさらに含有していても良い。
　本発明の第２の発明は、
（Ａ）逆転写酵素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び逆転写反応の鋳型となるＲＮＡを含有する組成物を調製する工程、
（Ｂ）工程（Ａ）で調製した組成物をインキュベーションし、ｃＤＮＡを合成する工程、
（Ｃ）工程（Ｂ）で合成したｃＤＮＡ、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する組成物を調製する工程、
（Ｄ）工程（Ｃ）で調製した組成物を用いてポリメラーゼ連鎖反応を行い、核酸を増幅する工程、並びに
（Ｅ）工程（Ｄ）において増幅された核酸を、インターカレーティング色素からの蛍光シグナルの強度を測定することによって検出する工程、
を包含する、ＲＮＡを検出するための方法に関する。本発明の第２の発明において、工程（Ｅ）は工程（Ｄ）におけるポリメラーゼ連鎖反応中に実施されていても良い。また、工程（Ｅ）で測定されたシグナル強度から鋳型となるＲＮＡの定量が実施されても良い。
　本発明の第３の発明は、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する、ＲＮＡを検出するためのキットに関する。本発明の第３の発明における耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ及び耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈとしては、本発明の第１の発明において例示されたものと同様のものが例示される。本発明の第３の発明のキットは、逆転写酵素、少なくとも１種のプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液からなる群より選ばれる少なくとも１つをさらに含有していても良い。
　本発明により、従来に比べて作業時間が短く、簡便な操作で行うことができ、かつ反応性が優れた、ＲＮＡ検出用試薬、ＲＮＡの検出方法、及びＲＮＡの検出用キットが提供される。
ＰＣＲ反応液中のＲＮａｓｅ　Ｈ量とＣｔ値との関係を示す図である。 ＰＣＲ反応液中のＲＮａｓｅ　Ｈ量とＣｔ値との関係を示す図である。
（１）本発明の組成物
　本発明の組成物は、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含む。
　また、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ及び耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈを含み、かつリボヌクレオチドを含有するオリゴヌクレオチドプローブを含まない組成物も本発明の一態様である。この態様の組成物は、ＦＲＥＴオリゴヌクレオチドプローブを用いるリアルタイムＲＴ－ＰＣＲや、ＲＴ－ＰＣＲによって得られた増幅産物を電気泳動により確認する方法等に有用である。
　核酸増幅反応の反応性は、特に限定するものではないが、ＰＣＲにおいて核酸増幅量がある一定量に達する時の温度サイクル数（Ｃｔ値）により確認することができる。例えば、２つの異なる核酸増幅反応系の反応性を比較する場合、同じ量の鋳型を用いてそれぞれの系の核酸増幅反応を実施してＣｔ値を確認すれば、Ｃｔ値が低い方を反応性が高い核酸増幅反応系と見なすことができる。
　本明細書において、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとは、７５℃以上の温度で３０分間処理した後であっても活性を保持するＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの事を言う。当該耐熱性ＤＮＡポリメラーゼは、５’→３’エキソヌクレアーゼ活性、３’→５’エキソヌクレアーゼ活性、及び／又はＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性をさらに有していてもよい。
　本発明に使用される耐熱性ＤＮＡポリメラーゼは、ＰＣＲに使用可能なものであればよく、すでに多くの種類のものが市販されている。本発明を特に限定するものではないが、本発明に使用される耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとしては、高度好熱菌由来のＤＮＡポリメラーゼが例示される。高度好熱菌とは７５℃以上の環境下でも生育できる菌の事を指す。高度好熱菌としては、例えば真正細菌ではＴｈｅｒｍｕｓ　ａｑｕａｔｉｃｕ、Ｔｈｅｒｍｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ　ｆｌａｖｕｓ、及びＴｈｅｒｍｕｓ　ｆｉｌｉｆｏｒｍｉｓのようなＴｈｅｒｍｕｓ属の真正細菌、古細菌ではＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆｕｒｉｏｓｕｓ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｗｏｓｅｉｉ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉのようなＰｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属の古細菌、並びにＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｌｉｔｏｒａｌｉｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｃｅｌｌｅｒ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｓｉｃｕｌｉ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｓｐ．　ＫＳ－１、及びＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｋｏｄａｋａｒａｅｎｓｉｓのようなＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属の古細菌が挙げられる。なお、本発明における耐熱性ＤＮＡポリメラーゼとしては、２種以上の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの混合物を用いても良い。
　リボヌクレアーゼ　Ｈとは、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドのＲＮＡ鎖のみを特異的にエンド型で切断する加水分解酵素の事を言い、ＲＮａｓｅ　Ｈと表記されることもある。本明細書において、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈとは、６０℃以上の温度で１５分間処理した後であっても活性を保持するリボヌクレアーゼ　Ｈの事を言う。
　本発明における耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈとしては、特に限定するものではないが、高度好熱菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈが例示され、Ｔｈｅｒｍｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓやＴｈｅｒｍｕｓ　ｆｌａｖｕｓ等のＴｈｅｒｍｕｓ属細菌由来リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｌｉｔｏｒａｌｉｓ等のＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属古細菌由来リボヌクレアーゼ　Ｈがより好適に例示される。国際公開第０２／２２８３１号パンフレットにも耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈが開示されている。
　インターカレーティング色素とは、二本鎖核酸へのインターカレーションにより蛍光が増強される色素のことを言う。例えば臭化エチジウム、ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｒｅｅｎ　Ｉ、ＰｉｃｏＧｒｅｅｎ、ＳＹＴＯ９、ＳＹＴＯ１３、ＥｖａＧｒｅｅｎ、ＹＯＹＯ、ＴＯＴＯ、及びこれらの類似体等がリアルタイムＰＣＲ用のインターカレーティング色素として利用されている。本発明におけるインターカレーティング色素としては、上記の色素が例示されるが、特にこれらに限定されるものではなく、核酸へのインターカレーションにより蛍光が増強される色素であれば、本発明におけるインターカレーティング色素に包含される。
　本発明の組成物には、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素に加えて、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び／又は反応用緩衝液が含まれていても良い。
　オリゴヌクレオチドプライマー（単に、プライマーともいう）は、使用される反応条件において鋳型となる核酸又は相補鎖側のプライマー伸長鎖に対してアニールするオリゴヌクレオチドであれば特に限定されるものではない。プライマーの鎖長は、特異的なアニーリングを行う観点から、好ましくは６ヌクレオチド以上であり、より好ましくは１０ヌクレオチド以上であり、オリゴヌクレオチドの合成の観点から、好ましくは１００ヌクレオチド以下であり、より好ましくは３０ヌクレオチド以下である。前記オリゴヌクレオチドは、例えばＡＢＩ社（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍ　Ｉｎｃ．）のＤＮＡシンセサイザー３９４型を用いて、ホスホアミダイト法により合成出来る。他にもリン酸トリエステル法、Ｈ－ホスホネート法、チオホスホネート法等いかなる方法で合成されたものであっても良い。また、生物試料由来のオリゴヌクレオチドであっても良く、例えば天然の試料より調製したＤＮＡの制限エンドヌクレアーゼ消化物から単離して作製しても良い。
　デオキシリボヌクレオチドは、有機塩基に結合しているデオキシリボースにホスホエステル結合によってリン酸基が結合したものである。天然型ＤＮＡは、４種類のヌクレオチドを含有する。アデニン、グアニン、シトシン及びチミン塩基を有する各ヌクレオチドが天然型ＤＮＡに含まれる。塩基のアデニン、グアニン、シトシン、及びチミンはそれぞれ、Ａ、Ｇ、Ｃ、及びＴと略されることが多い。
　デオキシリボヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオシドの一リン酸型、二リン酸型及び三リン酸型（すなわち、リン酸部分が、それぞれ、１つ、２つ又は３つのリン酸基を有する）を含む。従って、デオキシリボヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオシド三リン酸（例えば、ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＩＴＰ、ｄＧＴＰ及びｄＴＴＰ）並びにそれらの誘導体を含む。好適には、ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ及びｄＴＴＰの４種のデオキシリボヌクレオチドを含有する組成物が本発明に使用される。
　デオキシリボヌクレオチド誘導体は、［αＳ］ｄＡＴＰ、７－デアザ－ｄＧＴＰ、７－デアザ－ｄＡＴＰ、及び核酸分解に抵抗性を示すデオキシヌクレオチド誘導体を含む。ヌクレオチド誘導体は、例えば、３２Ｐ若しくは３５Ｓなどの放射性同位体、蛍光部分、化学発光部分、生物発光部分又は酵素で検出できるように標識されているデオキシリボヌクレオチドを含む。これらのデオキシリボヌクレオチド誘導体は、必要に応じて本発明の組成物に添加され、又は前記の天然型ＤＮＡに対応するデオキシリボヌクレオチドと置換される。
　反応用緩衝液とは、反応液のｐＨを調節するための１種又は複数の緩衝成分を含む溶液のことを示し、２価陽イオン及び１価陽イオンをさらに含む場合もある。反応用緩衝液は前記の成分の他、界面活性剤や耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ及び／又は耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈの活性や安定性を向上させるための成分を含んでもよい。
　本発明の組成物の調製方法に特に限定はなく、具体的には、例えば、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、インターカレーティング色素、必要により、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液を含有する混合物に、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ及び少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマーを混合することで調製することができる。なお、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、インターカレーティング色素、デオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液を含有する混合物としては、ＳＹＢＲ（登録商標）　Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｇＴＭ（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）（タカラバイオ社製）等の市販品を好適に使用することができる。
　本発明の組成物の一つの態様として、本発明の組成物に鋳型ＤＮＡを添加して、滅菌蒸留水等で用時に希釈することにより、各種成分がＰＣＲに適した濃度となるように配合された、濃縮型の組成物が挙げられる。本態様により、核酸増幅用反応液を簡便に調製することが可能となる。
（２）本発明の方法
　本発明のＲＮＡの検出方法は、
（Ａ）逆転写酵素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び鋳型となるＲＮＡを含有する組成物を調製する工程、
（Ｂ）工程（Ａ）で調製した組成物をインキュベーションし、ｃＤＮＡを合成する工程、
（Ｃ）工程（Ｂ）で合成したｃＤＮＡ、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する組成物を調製する工程、
（Ｄ）工程（Ｃ）で調製した組成物を用いてポリメラーゼ連鎖反応を行い、核酸を合成する工程、並びに
（Ｅ）工程（Ｄ）において合成された核酸を、インターカレーティング色素からの蛍光シグナルの強度を測定することによって検出する工程、
を含む。
　上記の工程（Ａ）における逆転写酵素は、逆転写活性、すなわちＲＮＡを鋳型としてこれに相補的なＤＮＡを合成する活性を有するものであれば本発明に使用でき、このような逆転写酵素としては、モロニーマウス白血病ウイルス由来逆転写酵素（ＭＭＬＶ由来逆転写酵素）やトリ骨髄芽球症ウイルス由来逆転写酵素（ＡＭＶ由来逆転写酵素）等のウイルス由来の逆転写酵素、サーマス（Ｔｈｅｒｍｕｓ）属細菌由来ＤＮＡポリメラーゼ（Ｔｔｈ　ＤＮＡポリメラーゼ等）や好熱性バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属細菌由来ＤＮＡポリメラーゼ（Ｂｃａ　ＤＮＡポリメラーゼ等）等の真正細菌由来の耐熱性の逆転写酵素が例示される。市販の逆転写酵素を使用してもよい。
　本発明の方法には、ウイルス由来の逆転写酵素が好適に使用され、ＭＭＬＶ由来逆転写酵素がより好適に使用される。また、逆転写活性を有する範囲で天然由来のアミノ酸配列に改変が施された逆転写酵素も本発明に使用できる。
　鋳型となるＲＮＡは、プライマーがアニーリングした場合に、プライマーからの逆転写反応の鋳型として働くことができるＲＮＡである。工程（Ａ）で調製される組成物中には、１種類の鋳型ＲＮＡが含まれていても、又は異なるヌクレオチド配列を有する複数種の鋳型が含まれていてもよい。特定の鋳型ＲＮＡに特異的なプライマーを使用することによって前記鋳型に相補的なｃＤＮＡを作製することができる。複数の鋳型ＲＮＡにアニーリングしうるプライマーを選択した場合には、核酸混合物中の複数種の鋳型についてプライマー伸長産物を作製することができる。複数の鋳型は、異なる核酸内に存在しても同一の核酸内に存在してもよい。
　本発明に適用することができる鋳型となるＲＮＡとしては特に制限はなく、試料中の全ＲＮＡ、即ち、ｍＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｒＲＮＡ等のＲＮＡ分子群、あるいは特定のＲＮＡ分子群（例えば、共通の塩基配列モチーフを有するＲＮＡ分子群、ＲＮＡポリメラーゼによる転写物、サブトラクション法によって濃縮されたＲＮＡ分子群）が挙げられ、逆転写反応に使用されるプライマーが作製可能な任意のＲＮＡが挙げられる。
　本発明において、鋳型となるＲＮＡは、例えば細胞、組織、血液のような生体由来試料、食品、土壌、排水のような生物を含有する可能性のある試料に含有されたものであっても良く、該試料等を公知の方法で処理することによって得られる核酸含有調製物に含有されたものであっても良い。該調製物としては、例えば細胞破砕物やそれを分画して得られる試料、該試料中の全ＲＮＡ、あるいは特定のＲＮＡ分子群、例えば、ｍＲＮＡを富化した試料等が挙げられる。
　逆転写反応を行うための組成物、すなわち逆転写反応液の調製方法は当業者に周知であり、上記の各種成分を適切な濃度で含む反応液を調製すればよい。市販の逆転写用キットを使用すれば容易に逆転写反応液を調製できる。
　上記の方法における工程（Ｂ）では、鋳型となるＲＮＡに相補的なｃＤＮＡが合成される。当該工程（Ｂ）におけるインキュベーションの条件としては、特に限定するものではないが、温度条件としては３０℃～６５℃が例示され、３７℃～４５℃がより好適である。また、反応時間としては、５分～１２０分が例示され、１５分～６０分がより好適である。前記条件は使用する逆転写酵素や鋳型ＲＮＡ量に応じて適宜調節すればよい。
　上記の方法における工程（Ｃ）では、工程（Ｂ）で合成したｃＤＮＡ、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する組成物を調製する。耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素としては、前記の（１）「本発明の組成物」に記載のものが例示され、工程（Ｂ）で合成したｃＤＮＡに、本発明の組成物を混合して調製してもよい。
　上記の方法における工程（Ｄ）では、工程（Ｃ）で調製した組成物を用いて、工程（Ｂ）において合成されたｃＤＮＡを鋳型にポリメラーゼ連鎖反応により核酸増幅を行う。本発明の方法におけるＰＣＲは、３段階の温度を１サイクルとする温度サイクルで行うＰＣＲであっても良く、２段階の温度を１サイクルとする温度サイクルで行うシャトルＰＣＲであっても良い。ＰＣＲは、例えば２０サイクル～５０サイクルの温度サイクルで行えばよい。
　また、上記の３段階又は２段階の温度サイクルの前に、９０℃以上、１５秒～１０分の熱処理を施しても良い。逆転写反応により生成したｃＤＮＡを鋳型とするＰＣＲにおいては、反応性の向上の観点から、ＰＣＲの温度サイクル前に熱処理を行うことが好ましい。驚くべきことに、ｃＤＮＡを鋳型とするＰＣＲに本発明の組成物を用いた場合には、上記のＰＣＲの温度サイクル前に熱処理を行うＰＣＲの増幅効率が更に向上する。
　上記方法における工程（Ｅ）では、工程（Ｄ）において増幅された核酸を、インターカレーティング色素からの蛍光シグナルの強度を測定することによって検出する。これにより、増幅された核酸の鋳型となったＲＮＡを検出することができる。インターカレーティング色素からの蛍光シグナルは、インターカレーティング色素の励起光を反応組成物に照射することによって発せられ、２本鎖核酸量の増大とともにその強度が増大する。蛍光シグナル強度の検出は、ＰＣＲ反応終了後に行っても良いし、工程（Ｄ）におけるＰＣＲ反応の温度サイクルごとに行っても良い。ＰＣＲ反応の温度サイクルごとにインターカレーティング色素からの蛍光シグナル強度を測定することにより、ＰＣＲの鋳型のｃＤＮＡ量を定量することが可能であり、さらには、定量されたｃＤＮＡ量から、増幅されたｃＤＮＡの鋳型となったＲＮＡ量を決定することが可能となる。従って、本発明のＲＮＡの検出方法は、さらに、（Ｆ）工程（Ｅ）で測定されたシグナル強度から鋳型となるＲＮＡの定量を行う工程を含んでもよい。
　ＰＣＲ反応における蛍光シグナル強度の測定には、例えば市販のリアルタイムＰＣＲ用の機器を用いれば良い。市販のリアルタイムＰＣＲ用の機器としては、Ｔｈｅｒｍａｌ　Ｃｙｃｌｅｒ　Ｄｉｃｅ（登録商標）　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ　Ｓｙｓｔｅｍ（タカラバイオ社製）、Ｓｍａｒｔ　Ｃｙｃｌｅｒ（登録商標）　ＩＩ　Ｓｙｓｔｅｍ（タカラバイオ社製）が例示される。
（３）本発明のキット
　本発明のキットは、ＲＮＡの検出を行うためのキットであり、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含む。本発明のキットは、逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを鋳型とする核酸増幅反応を効率よく行うことができるため、目的の配列を有するＲＮＡの検出に有用であり、また、目的の配列を有するＲＮＡの定量により有用である。
　本発明のキットには、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、インターカレーティング色素に加えて、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び／又は反応用緩衝液が含まれていても良い。
　耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、インターカレーティング色素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び／又は反応用緩衝液は、これらのうち一部又は全部が混合された状態でキットに包含されていても、それぞれが単独のコンポーネントの状態でキットに包含されていてもよい。例えば、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、インターカレーティング色素、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液が混合されたものとして、ＳＹＢＲ（登録商標）　Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｇＴＭ（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）（タカラバイオ社製）等の市販品が挙げられる。
　また、本発明のキットには、逆転写反応を行うための試薬がさらに含有されていても良い。このような試薬としては、逆転写酵素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び／又は反応用緩衝液が挙げられる。なお、ここでいうプライマーとしては、逆転写用に好適に用いられるものが挙げられ、特に限定はない。
　本発明のキットに含まれる耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、インターカレーティング色素、逆転写酵素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び反応用緩衝液としては、前記の（１）「本発明の組成物」や（２）「本発明の方法」に記載のものが例示される。
　本発明の組成物は、ｃＤＮＡ合成の鋳型となったＲＮＡによる核酸増幅反応への影響を抑えることができるため、ＲＮＡの検出に有用であり、さらには、ＲＮＡを検出し、その定量を行うために使用されてもよい。また、目的の配列を有するＲＮＡのリアルタイムＲＴ－ＰＣＲによる定量により有用である。
　以下に実施例をもってさらに詳細に本発明を説明するが、本発明は実施例の範囲に何ら限定されるものではない。なお、下記実施例において各酵素の活性は、特段の記載がない限り各酵素に添付の説明書の表示に基づいて示した。
実施例１
（１）ＲＮＡからのｃＤＮＡの合成
　Ｈｕｍａｎ　Ｔｅｓｔｉｓ　Ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を鋳型として、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標）ＲＴ　ｒｅａｇｅｎｔ　Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）（タカラバイオ社製、製品コード：ＲＲ０３７Ａ）を利用し、製品の標準プロトコールに従い逆転写反応を行い、ｃＤＮＡを調製した。
（２）ｃＤＮＡの増幅及び検出
　リアルタイムＰＣＲ装置としては、Ｔｈｅｒｍａｌ　Ｃｙｃｌｅｒ　Ｄｉｃｅ（登録商標）　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ　Ｓｙｓｔｅｍ　（タカラバイオ社製）を用いた。逆転写反応により得られたｃＤＮＡのうち２０ｎｇ分を鋳型に、ＳＹＢＲ（登録商標）　Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｇＴＭ（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）（タカラバイオ社製、製品コード：ＲＲ０４１）を使用して、Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ　Ｅ（ＡＰＯＥ）遺伝子の配列を増幅・検出した。具体的には、ｃＤＮＡの増幅及び検出用の反応液として、（１）により得られたｃＤＮＡ　２０ｎｇに、Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｇＴＭ（登録商標）（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）に添付の２倍濃度の反応液に、配列表の配列番号１に示される塩基配列を有するＡＰＯＥ－Ｆプライマー　１０ｐｍｏｌ、配列表の配列番号２に示される塩基配列を有するＡＰＯＥ－Ｒプライマー　１０ｐｍｏｌ、及び滅菌蒸留水を添加し、さらに、０．０００１Ｕ、０．００１Ｕ、０．０１Ｕ、０．１Ｕ、１Ｕ、１０Ｕ、又は１００ＵのＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｌｉｔｒａｌｉｓ由来リボヌクレアーゼ　Ｈ（以下、Ｔｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈという、国際公開第０２／２２８３１号パンフレットの記載に従って調製）を添加したものを加え、Ｔｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈの含有量がそれぞれ異なる７種類の反応液（各２５μＬ）を調製した。また、Ｔｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈを含まない以外は上記の反応液と同様の組成を持つ反応液を調製した（計２５μＬ）。上記８種類の反応液について、１段階：９５℃、５秒、２段階：６０℃、３０秒を１Ｃｙｃｌｅとする４０ＣｙｃｌｅｓのＰＣＲに供した（ｎ＝２）。このとき、ＰＣＲのＣｙｃｌｅごとに、ＳＹＢＲ（登録商標）　ＧｒｅｅｎＩからの蛍光強度を測定し、増幅産物量の変化を観測した。反応終了後、リアルタイム装置により、Ａｕｔｏ設定でＣｒｏｓｓｉｎｇ　Ｐｏｉｎｔ法により算出されたＣｔ値を確認し、また、平均値を求めた。
（３）結果
　算出されたＣｔ値を表１に示す。また、ＰＣＲ反応液中のＲＮａｓｅ　Ｈ量とＣｔ値との関係を図１のグラフに示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　その結果、ＲＮａｓｅ　Ｈ無添加の場合と比較し、Ｔｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈを含む反応液では低いＣｔ値であった。このことから、逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを鋳型とするＰＣＲの際に、反応液中に耐熱性ＲＮａｓｅ　Ｈを添加することにより増幅効率が向上することが明らかとなった。
実施例２
　実施例１と同様の装置及び試薬を使用し、熱変性をＰＣＲ核酸増幅前に行った場合についても、ＲＮａｓｅ　Ｈを添加することでＣｔ値が低下することを確認した。
　実施例１（１）と同様の方法で調製したｃＤＮＡ　１０ｎｇに、Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｑＴＭ（登録商標）（Ｐｅｒｆｅｃｔ　Ｒｅａｌ　Ｔｉｍｅ）に添付の２倍濃度の反応液に、ＡＰＯＥ－Ｆプライマー　１０ｐｍｏｌ、ＡＰＯＥ－Ｒプライマー　１０ｐｍｏｌ、及び滅菌蒸留水を添加し、さらに、１ＵのＴｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈを加えたものを添加して、計２５μＬのＡＰＯＥ遺伝子断片の増幅及び検出用反応液を調製した。また、ＡＰＯＥ－Ｆプライマー及びＡＰＯＥ－Ｒプライマーの代わりに、配列表の配列番号３に示される塩基配列を有するＳＯＸ－Ｆプライマー及び配列表の配列番号４に示される塩基配列を有するＳＯＸ－Ｒプライマーを用いる以外は上記と同様の方法で、Ｓｅｘ－Ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　Ｒｅｇｉｏｎ　Ｙ　Ｂｏｘ　１８（ＳＯＸ１８）遺伝子断片の増幅及び検出用反応液を調製した。同様に、ＡＰＯＥ－Ｆプライマー及びＡＰＯＥ－Ｒプライマーの代わりに、配列表の配列番号５に示される塩基配列を有するＮＡＴ－Ｆプライマー及び配列表の配列番号６に示される塩基配列を有するＮＡＴ－Ｒプライマーを用いてＮ－ａｃｅｔｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ　１４（ＮＡＴ１４）遺伝子断片の増幅及び検出用反応液を調製した。また、１ＵのＴｌｉ　ＲＮａｓｅ　Ｈを含まない以外は上記の各反応液と同様の組成を持つ各標的配列の増幅及び検出用の反応液を調製した。
　上記６種類の反応液それぞれについて、ＰＣＲ前に熱変性を実施しない場合と、ＰＣＲ前に熱変性を実施する場合の増幅効率を確認した。ＰＣＲ反応前に熱変性を実施しない場合は、１段階：９５℃、５秒、２段階：６０℃、３０秒を１Ｃｙｃｌｅとする４０ＣｙｃｌｅｓのＰＣＲに反応液を供し、ＰＣＲ前に熱変性を実施する場合は、熱変性９５℃、３０秒の処理後に１段階：９５℃、５秒、２段階：６０℃、３０秒を１Ｃｙｃｌｅとする４０ＣｙｃｌｅｓのＰＣＲに反応液を供した（各ｎ＝１）。ＰＣＲの際には、ＣｙｃｌｅごとにＳＹＢＲ（登録商標）　ＧｒｅｅｎＩからの蛍光強度を測定して増幅産物量の変化を観測した。反応終了後、リアルタイム装置によりＡｕｔｏ設定でＣｒｏｓｓｉｎｇ　Ｐｏｉｎｔ法により算出されたＣｔ値を確認した。算出されたＣｔ値を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　その結果、ＰＣＲの反応前に熱変性を実施した場合においても、ＲＮａｓｅ　Ｈを添加することにより更に反応効率が向上することが分かった。この結果から、逆転写反応後のｃＤＮＡと逆転写反応の鋳型となったＲＮＡとで形成されるＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドを、熱変性により核酸増幅反応前に解消した場合であっても、ＰＣＲ反応液中の耐熱性ＲＮａｓｅ　Ｈが効果を示すことが明らかとなった。
実施例３
　Ｔｌｉ　ＲＮａｓｅＨの代わりにＨｙｂｒｉｄａｓｅＴＭ（登録商標）　Ｔｈｅｒｍｏｓｔａｂｌｅ　ＲＮａｓｅ　Ｈ（以下、Ｈｙｂｒｉｄａｓｅという、Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社製、Ｔｈｅｒｍｕｓ属細菌由来耐熱性ＲＮａｓｅ　Ｈ）を用いる点、ＲＮａｓｅ　Ｈ量を反応液２５μＬ当り０．０００１Ｕ、０．００１Ｕ、０．０１Ｕ、０．１Ｕ、及び１Ｕとする点、並びに９５℃、３０秒間の初期変性をＰＣＲの前に実施する点以外は、実施例１と同様の方法でｃＤＮＡの増幅及び検出を行い、Ｃｔ値を確認した。
　算出されたＣｔ値を表３に示す。また、反応液中のＲＮａｓｅ　Ｈ量とＣｔ値との関係を図２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　その結果、耐熱性ＲＮａｓｅ　ＨとしてＴｈｅｒｍｕｓ属細菌由来のものを用いた場合も、ＲＮａｓｅ　Ｈの添加による核酸増幅効率の向上が見られた。
　本発明の組成物、該組成物を用いるＲＮＡの検出方法、及びＲＮＡの検出用キットは、広く遺伝子工学の分野に有用である。なかでも、本発明によりｃＤＮＡ合成の鋳型となったＲＮＡによる核酸増幅反応への影響を抑えることができるため、ＲＮＡの検出に有用であり、また、目的の配列を有するＲＮＡのリアルタイムＲＴ－ＰＣＲによる定量により有用である。
SEQ ID NO:1 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman APOE gene.
SEQ ID NO:2 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman APOE gene.
SEQ ID NO:3 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman SOX18 gene.
SEQ ID NO:4 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman SOX18 gene.
SEQ ID NO:5 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman NAT14 gene.
SEQ ID NO:6 ;Primer to amplify the cDNA fragment ofhuman NAT14 gene.

Claims (14)

  1. 　逆転写反応によって合成されたｃＤＮＡを増幅し、前記逆転写反応の鋳型となったＲＮＡを検出するための組成物であって、
    耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、
    耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及び
    インターカレーティング色素
    を含有してなる組成物。
  2. 　耐熱性ＤＮＡポリメラーゼが高度好熱菌由来のＤＮＡポリメラーゼである、請求項１記載の組成物。
  3. 　耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈが高度好熱菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈである、請求項１記載の組成物。
  4. 　高度好熱菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈが、Ｔｈｅｒｍｕｓ属細菌由来リボヌクレアーゼ　Ｈ、及び／又はＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属古細菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈである、請求項３記載の組成物。
  5. 　さらに、
    少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、
    少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び
    反応用緩衝液
    からなる群より選ばれる少なくとも１つを含有してなる請求項１記載の組成物。
  6. 　逆転写反応の鋳型となったＲＮＡを検出し、さらに定量するために使用される、請求項１～５いずれか１項記載の組成物。
  7. 　ＲＮＡを検出するための方法であって、
    （Ａ）逆転写酵素、少なくとも１種のオリゴヌクレオチドプライマー、少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び逆転写反応の鋳型となるＲＮＡを含有する組成物を調製する工程、
    （Ｂ）工程（Ａ）で調製した組成物をインキュベーションし、ｃＤＮＡを合成する工程、
    （Ｃ）工程（Ｂ）で合成したｃＤＮＡ、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及びインターカレーティング色素を含有する組成物を調製する工程、
    （Ｄ）工程（Ｃ）で調製した組成物を用いてポリメラーゼ連鎖反応を行い、核酸を増幅する工程、並びに
    （Ｅ）工程（Ｄ）において増幅された核酸を、インターカレーティング色素からの蛍光シグナルの強度を測定することによって検出する工程、
    を含む方法。
  8. 　工程（Ｅ）が工程（Ｄ）におけるポリメラーゼ連鎖反応中に実施される、請求項７記載の方法。
  9. 　さらに、（Ｆ）工程（Ｅ）で測定されたシグナル強度から鋳型となるＲＮＡの定量を行う工程を含む、請求項７又は８記載の方法。
  10. 　ＲＮＡを検出するためのキットであって、
    耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ、
    耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈ、及び
    インターカレーティング色素
    を含有してなるキット。
  11. 　耐熱性ＤＮＡポリメラーゼが高度好熱菌由来のＤＮＡポリメラーゼである、請求項１０記載のキット。
  12. 　耐熱性リボヌクレアーゼ　Ｈが高度好熱菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈである、請求項１０記載のキット。
  13. 　高度好熱菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈが、Ｔｈｅｒｍｕｓ属細菌由来リボヌクレアーゼ　Ｈ、及び／又はＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属古細菌由来のリボヌクレアーゼ　Ｈである、請求項１２記載のキット。
  14. 　さらに、逆転写酵素、
    少なくとも１種のプライマー、
    少なくとも１種のデオキシリボヌクレオチド、及び
    反応用緩衝液
    からなる群より選ばれる少なくとも１つを含有してなる請求項１０～１３いずれか記載のキット。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022140553A1 (en) * 2020-12-24 2022-06-30 Integrated Dna Technologies, Inc. Rnase h2 mutants that reduce primer dimers and off-target amplification in rhpcr-based amplicon sequencing with high-fidelity dna polymerases
US12024742B2 (en) 2021-12-22 2024-07-02 Integrated Dna Technologies, Inc. RNASE H2 mutants that reduce primer dimers and off-target amplification in RHPCR-based amplicon sequencing with high-fidelity DNA polymerases

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114134207A (zh) 2012-04-09 2022-03-04 一龙公司 用于量化样品中核酸序列的组合物和方法
EP3748011A1 (en) 2014-04-22 2020-12-09 Envirologix Inc. Compositions and methods for enhancing and/or predicting dna amplification
US10793922B2 (en) * 2014-10-20 2020-10-06 Envirologix Inc. Compositions and methods for detecting an RNA virus
CN110643732A (zh) * 2019-11-04 2020-01-03 福建省中科生物股份有限公司 一种用于鉴定白菜耐低溶氧植株的引物组合
KR20210109745A (ko) * 2020-02-28 2021-09-07 주식회사 누리바이오 단일 표적 유전자의 유전적 변이 실시간 검출용 단일핵산 및 이를 이용한 검출 방법

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002022831A1 (fr) 2000-09-14 2002-03-21 Takara Bio Inc. Ribonuclease h thermotolerant
WO2003074696A1 (fr) 2002-03-07 2003-09-12 Takara Bio Inc. Procede de detection d'une substitution de base
JP2007228977A (ja) * 2001-06-12 2007-09-13 Takara Bio Inc 核酸増幅又は検出反応用試薬の安定化方法ならびに保存方法
WO2007119815A1 (ja) * 2006-04-14 2007-10-25 Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. Ｔｏｌｌ様受容体９作動薬
JP2008017777A (ja) * 2006-07-13 2008-01-31 Tottori Univ 肝炎の診断キット及び診断マーカー
JP2009050217A (ja) * 2007-08-28 2009-03-12 Olympus Corp 標的ｄｎａを検出する方法

Family Cites Families (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5561058A (en) * 1986-08-22 1996-10-01 Hoffmann-La Roche Inc. Methods for coupled high temperatures reverse transcription and polymerase chain reactions
US5310652A (en) * 1986-08-22 1994-05-10 Hoffman-La Roche Inc. Reverse transcription with thermostable DNA polymerase-high temperature reverse transcription
US5268289A (en) * 1991-12-27 1993-12-07 Epicentre Technologies Corp. Thermostable ribonuclease H
US5436149A (en) * 1993-02-19 1995-07-25 Barnes; Wayne M. Thermostable DNA polymerase with enhanced thermostability and enhanced length and efficiency of primer extension
DE69431240T2 (de) * 1993-12-01 2003-04-17 Toyo Boseki Verfahren zur ampflifizierung und zum nachweis bestimmter nukleinsäuresequenzen mittels thermostabiler enzyme
DE19612684A1 (de) * 1996-03-29 1997-10-02 Gsf Forschungszentrum Umwelt Neue Verwendung extrem thermophiler DNA-Polymerasen
US5712127A (en) * 1996-04-29 1998-01-27 Genescape Inc. Subtractive amplification
JPH1028585A (ja) * 1996-07-16 1998-02-03 Toyobo Co Ltd 耐熱性リボヌクレアーゼｈを用いる核酸増幅法
US5853990A (en) * 1996-07-26 1998-12-29 Edward E. Winger Real time homogeneous nucleotide assay
EP1367136A4 (en) * 2001-02-15 2005-01-12 Takara Bio Inc METHOD FOR DETECTING NUCLEOTIDE POLYMORPHISM
EA006679B1 (ru) * 2001-06-12 2006-02-24 Такара Био Инк. Способ стабилизации реагента для амплификации или детекции нуклеиновой кислоты и способ хранения
US7354742B2 (en) * 2002-02-22 2008-04-08 Ortho-Mcneil Pharmaceutical, Inc. Method for generating amplified RNA
WO2004020621A1 (ja) * 2002-08-30 2004-03-11 Takara Bio Inc. 耐熱性リボヌクレアーゼh
CN101426908B (zh) * 2004-06-09 2014-06-11 纽星实验室 可逆性修饰的热稳定酶组合物及其制备方法和使用方法
KR20080066727A (ko) 2005-11-02 2008-07-16 가부시키가이샤 시마즈세이사쿠쇼 Ｒｎａ의 추출방법 및 ｒｎａ의 검출방법
JP2008017787A (ja) 2006-07-14 2008-01-31 Toyobo Co Ltd 改良された逆転写反応方法
US20130302794A1 (en) * 2012-05-09 2013-11-14 Samsung Techwin Co., Ltd. Nucleic acid detection by oligonucleotide probes cleaved by both exonuclease and endonuclease

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002022831A1 (fr) 2000-09-14 2002-03-21 Takara Bio Inc. Ribonuclease h thermotolerant
JP2007228977A (ja) * 2001-06-12 2007-09-13 Takara Bio Inc 核酸増幅又は検出反応用試薬の安定化方法ならびに保存方法
WO2003074696A1 (fr) 2002-03-07 2003-09-12 Takara Bio Inc. Procede de detection d'une substitution de base
WO2007119815A1 (ja) * 2006-04-14 2007-10-25 Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. Ｔｏｌｌ様受容体９作動薬
JP2008017777A (ja) * 2006-07-13 2008-01-31 Tottori Univ 肝炎の診断キット及び診断マーカー
JP2009050217A (ja) * 2007-08-28 2009-03-12 Olympus Corp 標的ｄｎａを検出する方法

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOSCI BIOTECHNOL BIOCHEM., vol. 67, no. 11, November 2003 (2003-11-01), pages 2474 - 2476
BIOTECHNOLOGY (NY), vol. 11, no. 9, September 1993 (1993-09-01), pages 1026 - 1030
HIGUCHI R. ET AL.: "Kinetic PCR Analysis: Real-time Monitoring of DNA Amplification Reactions", BIO/TECHNOLOGY, vol. 11, 1993, pages 1026 - 1030, XP000197685 *
KITABAYASHI, M. ET AL.: "Improvement of Reverse Transcription PCR by RNase H", BIOSCI. BIOTECHNOL. BIOCHEM., vol. 67, no. 11, 2003, pages 2474 - 2476, XP008135595 *
See also references of EP2333109A4

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022140553A1 (en) * 2020-12-24 2022-06-30 Integrated Dna Technologies, Inc. Rnase h2 mutants that reduce primer dimers and off-target amplification in rhpcr-based amplicon sequencing with high-fidelity dna polymerases
US12024742B2 (en) 2021-12-22 2024-07-02 Integrated Dna Technologies, Inc. RNASE H2 mutants that reduce primer dimers and off-target amplification in RHPCR-based amplicon sequencing with high-fidelity DNA polymerases

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