WO2007026829A1 - 小粒子低比重リポ蛋白の定量方法および定量キット - Google Patents

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small
dense ldl
ldl
dense
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Yasuki Itoh
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Denka Seiken Co., Ltd.
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/60Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/92Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving lipids, e.g. cholesterol, lipoproteins, or their receptors

Definitions

  • the present invention relates to a method and a reagent for measuring cholesterol in small, dense LDL, which are important for the diagnosis of arteriosclerosis.
  • LDL Low-density lipoprotein
  • LDL Low-density lipoprotein
  • it has a particularly small particle size and higher specific gravity than average LDL. It is known that small.dense LDL is several times higher than normal LDL. Increased small.dense LDL is one of the major risk factors for arteriosclerotic disease, and differential measurement is extremely important clinically.
  • small particle LDL is turbid or dissolved by the difference in ionic strength, and small particle LDL is measured by the difference in absorbance (JP 2003- 28882).
  • this method measures the difference in absorbance due to turbidity, the specificity and accuracy are insufficient.
  • Patent Document 2 WO2004 / 053500
  • An object of the present invention is to provide a small, dense LDL fractional measurement method compatible with a rapid and simple automatic analyzer without performing a pretreatment operation of a specimen.
  • the present invention provides the following methods and kits.
  • An enzyme for cholesterol measurement is added to a specimen sample in the presence of a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof, and the polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof is added to a lipoprotein.
  • a method for quantitatively determining small, dense LDL cholesterol comprising selectively measuring small, dense LDL and measuring the amount of cholesterol produced.
  • kit for quantifying small, dense LDL cholesterol according to (6) further comprising a nonionic and a Z or anionic surfactant.
  • the kit for quantifying small, dense LDL cholesterol according to (6) or (7), wherein the cholesterol measuring enzyme comprises cholesterol esterase and cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase.
  • an enzyme for measuring cholesterol is added to the sample in the presence of a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof.
  • a method of measuring the cholesterol produced by selectively allowing a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof to act on small, dense LDL of lipoproteins.
  • FIG. 1 is a diagram showing the reactivity to Large LDL and small, dense LDL when lipoprotein lipase is added.
  • Lipoproteins are roughly divided into VLDL, LDL and HDL fractions, and LDL is further divided into smal ll'dense LDL and other subfractions.
  • Small and dense LDL are sometimes called small particle LDL, SL DL (small LDL) and dense LDL, and other LDLs are sometimes called LLDL (large LDL) and Light LDL.
  • These fractions and subfractions can be distinguished by particle size or specific gravity. The diameter of the particle size varies depending on the reporter, but VLDL is 30 nm to 8 Onm (30 nm to 75 nm), LDL is 22 nm to 28 nm (19 nm to 30 nm), and HDL is 7 to 10 nm in diameter.
  • Specific gravity is VLDL force S1.006 or less, LDL force Sl.019 to 1.063, HDL force 1.063 to 1.21.
  • LDL particle diameters gradient gel electrophoresis (GGE) JAMA, 260, p.1917-21, 1988
  • N MR HANDBOOK OF LIPOPROTEIN TESTING 2 nd Edition, Nader Rifai other eds, p.60 9-623, AACC PRESS: TheFats of Life Summer 2002, LVDD 15 YEAR ANNIVERSA RY ISSUE, Volume AVI No.3, p.15-16
  • specific gravity is analyzed by ultracentrifugation (Atherosclerosis, 106, p.241-253, 1994: Atherosclerosis, 83, p.59, 1990).
  • the small, dense LDL to be measured by the method of the present invention generally refers to a subfraction having a diameter of about 22.0 to about 25.5 nm and a subfraction having a specific gravity of 1.040 to 1.063. .
  • LDL large Therefore, the sub-fraction is divided into sub-fractions because LDL with a small particle size is more prone to arteriosclerosis and is more malignant than LDL. It was the power that was there.
  • the diameter distribution and specific gravity distribution are continuous in the LDL, and those with a specific gravity of more than a certain degree are particularly high in malignancy.
  • the above specific gravity value of 1.040 to 1.063 is also widely used and not as established as a characteristic of small, dense LDL, but it is divided by the central point of LDL specific gravity range of 1.019 to 1.063. . For example, in another report it is fractionated between 1.044 and 1.060 (Athe rosclerosis: 106 241-253 1994).
  • the range of specific gravity of small, dense LDL depends on the strength of small, dense LD L when clinically graded. Yes.
  • small, dense LDL ! in which case the specific gravity of LDL is small! /, And clinically has a greater ability to induce arteriosclerosis than other LDL.
  • it means an LDL belonging to a specific gravity range above the center point in the specific gravity range of the LDL, and more preferably an LDL belonging to a specific gravity range of 1.040 to 1.063.
  • the method of the present invention is usually performed in an automatic analyzer. Separated from Large LDL cholesterol in the method of the present invention, differentiated by S mall, in order to measure the dense LDL cholesterol, cholesterol one Honoré esterase, cholesterol one Noreokishidaze or cholesterol one Honoré small enzyme for cholesterol measurement, such as dehydrogenase, dense LDL In the presence of a surfactant that acts selectively on the surface.
  • the enzyme for measuring cholesterol can also be carried out in the presence of a surfactant that suppresses the action of lipoproteins other than small, dense L DL.
  • Sma enzyme for cholesterol measurement ll be selectively applied to dense LDL is cholesterol measuring enzyme another point of view small, so it can be said that suppressing effects on lipoproteins other than dense LDL, resulting in
  • the same meaning and the surfactants that achieve both purposes may refer to the same.
  • the surfactant may be used together with a surfactant that increases the activity of an enzyme for measuring cholesterol, such as cholesterol esterase, cholesterol monoreoxidase, or cholesterol monodeoxygenase, or may be used alone.
  • the surfactant include polyoxyethylene polyoxypropylene copolymers or derivatives thereof.
  • Polyoxyethylene Polyoxypropylene copolymer or its derivative acts selectively on small, dense LDL, and as a result, suppresses the action of cholesterol esterase and cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase on lipoproteins other than small and dense LDL To do.
  • polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or its derivative acts selectively on small, dense LDL in the sample, cholesterol in the small, dense LDL is selectively released, and then the enzyme for measuring cholesterol is released.
  • smal dense Reacts with cholesterol in LDL.
  • Polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or its derivative acts selectively on small.dense LDL in lipoprotein” means that cholesterol in small, dense LDL in lipoprotein is converted to polyoxyethylene polyoxy This refers to selective release by the action of a propylene copolymer or its derivative. “Selectively act on small, dense LDL” means that it acts mainly on small, dense LDL in lipoproteins, preferably only on sm all, dense LDL. Cholesterol can be measured by reacting the released cholesterol with an enzyme for measuring cholesterol.
  • polyoxyethylene polyoxypropylene copolymers or derivatives thereof include general formulas (I) and ( ⁇ ) and ( ⁇ ).
  • the number of polyoxypropylenes (b in the formula) is preferably 1 to 200, more preferably 20 to 150, and particularly preferably 30 to 100.
  • Polyoxyche The number of len (a and c in the formula) is preferably 1 to 200, more preferably 1 to 100, and particularly preferably 1 to 60.
  • the linear or branched alkyl group represented by R is particularly preferably 2 to 25 carbon atoms, preferably 1 to 30 carbon atoms.
  • the number of polyoxypropylenes (e in the formula) is preferably 20 to 100, and the number of polyoxyethylenes (d and f in the formula) is preferably 1 to 60, respectively.
  • the number of polyoxypropylenes (y in the formula) is preferably 2-30.
  • the number of polyoxyethylene (X in the formula) is preferably 1 to 50, particularly preferably 1 to 30
  • the concentration of the polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or derivative thereof is preferably 0.1 to 10 gZL, more preferably 0.3 to 5 gZL, and particularly preferably 0.5 to 3 gZL.
  • 0.01 to 1% (w / w) is preferable, 0.03 to 0.5% (w / w) is more preferable, and 0.05 to 0.3% (w / w) is particularly preferable.
  • the specific gravity of the acting lipoprotein can be changed by changing the molecular weight of the hydrophobic group and the addition amount of ethylene oxide.
  • a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer having a hydrophobic group molecular weight of 3 ⁇ 4 to 3850 and a total ethyleneoxide percentage of 10 to 80% or a derivative thereof can preferably act on small, dense LDL.
  • the polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or derivative thereof acts on LDL other than small, dense LDL
  • the LDL on which the polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or derivative acts acts on the LDL.
  • Small, dense LDL cholesterol can be introduced outside the quantitative reaction system.
  • Polyoxyethylene Polyoxypropylene copolymer or derivative thereof for example, pull mouth nick 17R-4, pull mouth nick L-64, pull mouth nick PE3100, pull mouth nick P-85, pull mouth nick
  • pull mouth nick registered trademark
  • surfactants BASF, Asahi Denka Kogyo Co., Ltd.
  • F-88 pull mouth nick P-103
  • pull mouth nick F-127 pull mouth nick F-127.
  • a nonionic surfactant and an anionic surfactant can be further added to the surfactant. These surfactants increase the activity of cholesterol esterase and cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase. [0037] The hydrophilic / lipophilic balance of the nonionic surfactant and the anionic surfactant (HL
  • B) is preferably 12-14.
  • Nonionic surfactants include polyoxyethylene derivatives and the like, and in particular, polyoxyethylene alkyl ethers and polyoxyethylene alkylene alkyl ethers.
  • alkyl group preferred by polyoxyethylene alkylphenol ether those having 8 or more carbon atoms are preferred, such as octyl group and nor group.
  • Emulgen registered trademark 909, Emulgen 100 series, Emulgen 210P, 220, 306P, 320P, 404, 408, 409P, 420, 430, 705, 707, 709, 1108, 1118S-70, 1135S- 70, 1150S-70, 408 5, 2020G-HA, 2025G, PI-20T (Kao Corporation), Persoft NK60 (Nippon Yushi Co., Ltd.) and other polyoxyethylene alkyl ethers, Emargen LS-106, LS-110 , LS-1 14, MS-110 (Kao Corporation) and other polyoxyethylene alkylene alkyl ethers, Non-one HS-208, HS-210, NS-208.5, NS210 (Nippon Yushi Co., Ltd.) and other polyoxyethylene alkylene alkyl
  • the concentration of the polyoxyethylene derivative is preferably 0.1 to 50 gZL, particularly preferably 0.5 to 10 gZL. Alternatively, 0.01 to 5% (w / w) is preferable, and 0.05 to 1% (w / w) is particularly preferable.
  • the anionic surfactant is preferably sodium alkyl sulfate, sodium polyoxyethylene alkyl ether sulfate, or sodium alkylbenzene sulfonate.
  • TRAX H-45 Nippon Yushi Co., Ltd.
  • succinide 3LN Nippon Yushi Co., Ltd.
  • the concentration of the anionic surfactant is preferably 0.1 to 20 gZL, particularly preferably 0.5 to 10 gZL. Alternatively, 0.01 to 2% (w / w) is preferable, and 0.05 to 1% (w / w) is particularly preferable.
  • the measurement of small, dense LDL cholesterol of the present invention is carried out in an aqueous solution, preferably in a buffer solution.
  • Buffers used in the buffer are preferably buffers containing amines such as Tris, triethanolamine, and Datt's buffer. Particularly good buffers include Bis-Tris, PIPE S, BES, MOPSO, and HEPES. And POPSO are preferred.
  • the pH of the buffer is preferably 5-9,
  • the concentration of the buffer is preferably 10 to 500 mmol / L.
  • cholesterol in the lipoprotein is liberated, and by reacting the cholesterol with an enzyme (cholesterol esterase and cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase), cholesterol is decomposed and oxidized. Is done.
  • an enzyme cholesterol esterase and cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase
  • the cholesterol esterase in the present invention is not particularly limited as long as it is an enzyme that hydrolyzes a cholesterol ester, and an animal or microorganism-derived cholesterol esterase can be used.
  • the concentration of cholesterol esterase is preferably 0.01 to 50 U / mL, and particularly preferably 0.1 to 10 U / mL.
  • the cholesterol oxidase is not particularly limited as long as it is an enzyme having an ability to oxidize cholesterol, and an animal or microorganism-derived cholesterol oxidase can be used.
  • the concentration of cholesterol oxidase is preferably 0.01 to 20 U / mL, and particularly preferably 0.1 to 1 U / mL.
  • the cholesterol dehydrogenase is not particularly limited as long as it is an enzyme having the ability to oxidize cholesterol and reduce oxidized coenzyme, and animal or microorganism-derived cholesterol dehydrogenase can be used.
  • the concentration of cholesterol dehydrogenase is preferably 0.01 to 200 U / mL, particularly preferably 0.1 to 100 U / mL.
  • phospholipase and Z or lipoprotein lipase can be further used in order to enhance the reaction selectivity for small, dense LDL.
  • phospholipase As the phospholipase, phospholipase A2, phospholipase, phospholipase 1), lyso phospholipase and the like can be used, and the use concentration is preferably 0.01 to 10 U / mL.
  • U / mL is more preferable, and 0.01 to 1 U / mL is particularly preferable! /.
  • the lipoprotein lipase is not particularly limited as long as it is an enzyme having the ability to degrade lipoproteins, and lipoprotein lipases derived from animals or microorganisms can be used.
  • the use concentration of the lipotin tin lipase is preferably 0.01 to 10 U / mL, more preferably 0.01 to 5 U / mL, and further preferably 0.01 to lU / mL.
  • Peracid generated Hydrogen fluoride can be quantified by measuring at a wavelength of 400 to 700 nm with a dye (colored quinone) formed by a coupling reaction between a hydrogen donor and a hydrogen acceptor in the presence of peroxidase.
  • an aryl derivative is preferred.
  • the working concentration of the hydrogen donor is preferably 0.1 to 1.5 mmol / L at the final concentration.
  • NAD (P) and other NAD (P) H are generated by the enzymatic reaction.
  • the generated NAD (P) H can be quantified by measuring the absorbance at 330 to 400 nm.
  • cholesterol contained in HDL, VLDL, Large LDL, and the like, which are lipoproteins other than small, dense LDL, in the test sample is further reduced in order to further enhance the selectivity of the reaction to small, dense LDL.
  • Erasing means decomposing a substance in a specimen sample so that the decomposed product is not detected in the next step.
  • surfactants that act in addition to small.dense LDL include polyoxyethylene derivatives having an HDL value of 13 to 15, and specific examples include polyoxyethylene lauryl ether, polyoxyethylene cetyl ether, Oxyethylene glycol ether, polyoxyethylene higher alcohol ether, polyoxyethylene octyl phenyl ether, polyoxyethylene nonyl phenyl ether, polyoxyethylene benzyl phenol ether, etc.
  • the concentration of the surfactant is preferably about 0.1 to 10 g / L, more preferably about 0.3 to 5.0 g / L. Alternatively, it is preferably about 0.01 to 1% (w / w), more preferably about 0.03 to 0.5% (w / w).
  • monovalent cations and Z or divalent cations and salts thereof can be used as the ionic strength adjusting agent.
  • an ionic strength adjusting agent By adding an ionic strength adjusting agent, small. Dense LDL can be easily separated. Specifically, sodium chloride, potassium salt, magnesium chloride, manganese chloride, calcium chloride, lithium chloride, ammonium chloride, magnesium sulfate, potassium sulfate, lithium sulfate, ammonium sulfate, magnesium acetate, etc. Can be used. Concentrations are used from 0 to 100 mmol ZL.
  • the reaction temperature is preferably 2 ° C to 45 ° C, more preferably 25 ° C to 40 ° C.
  • the reaction time is preferably 1 to 30 minutes, more preferably 3 to 15 minutes.
  • Serum and plasma can be used as the analyte sample of the present invention, but are not limited thereto.
  • Aggregation means that an aggregating agent that aggregates a substance in a specimen sample, an antibody against the substance in the specimen sample, or the like is used, and the aggregate is not detected in the next step. It means to do.
  • the aggregating agent is an agent that induces aggregation by a chemical reaction
  • the antibody is an antibody against a specific lipoprotein fraction that causes an immunoaggregation reaction.
  • the reaction solution can contain a lipoprotein flocculant as necessary.
  • Lipoprotein flocculants include polyamines such as phosphotungstic acid, heparin, and dextran sulfate. And salts thereof, and divalent cations such as magnesium, manganese and calcium.
  • Examples of automatic analyzers used in the present invention include TBA-120FR'200FR (Toshiba), JCA-B M1250-1650 ⁇ 2250 (JEOL), HITACHI7180 ⁇ 7700 (Hitachi), AU2700 (OLYMPUS) and the like. It is done.
  • a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof and an enzyme for measuring cholesterol are added to a specimen sample in the first step, and cholesterol in small, dense LDL is added. It is liberated and decomposed, and the degradation product of cholesterol is quantified in the second step. Since polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof has high selectivity to small, dense LDL, small.dence LDL can be selectively quantified by the above process.
  • a step of introducing cholesterol contained in HDL, VLDL, Large LDL, etc., which are lipoproteins other than small, dense LDL, in the test sample out of the small, dense LDL cholesterol quantitative reaction system is included prior to the first step.
  • cholesterol esterase is supplemented with cholesterol measuring enzymes such as cholesterol oxidase, and it acts on cholesterol contained in lipoproteins other than small.dense LDL such as HDL, VLDL, and Large LDL.
  • cholesterol measuring enzymes such as cholesterol oxidase
  • lipoproteins other than small and dense LDL such as HDL, VLDL, and Large LDL.
  • a polyoxyethylene-polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof may be added to the system together with a surfactant as necessary.
  • An enzyme for measuring cholesterol in the system polyoxyethylene-po Small, dense LDL cholesterol power hydrogen peroxide is generated by the action of a reoxypropylene copolymer or a derivative thereof, or a surfactant, and the hydrogen peroxide may be quantified.
  • the reagents used may be divided into a plurality of reagent compositions.
  • the reagent includes a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof, an enzyme for measuring cholesterol such as cholesterol esterase and cholesterol oxidase, a surfactant, a catalase that decomposes hydrogen peroxide, a peroxide.
  • Peroxidase, hydrogen donor, buffer solution and the like for forming a dye by a coupling reaction are also used.
  • the distribution of these reagents to each reagent composition is appropriately distributed in consideration of the stability of the reagents.
  • the reagent is divided into a first reagent composition and a second reagent composition.
  • the first reagent composition contains an enzyme for measuring cholesterol such as cholesterol esterase or cholesterol oxidase, and the like.
  • polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof, a surfactant for increasing the activity of the enzyme for measuring cholesterol, and the like can be contained.
  • the second reagent composition may further contain a phospholipase or a lipolip tin lipase.
  • first step and second step of the present invention are carried out using a specimen sample from which cholesterol contained in lipoproteins other than small and dense LDL, such as HDL, VLDL, and Large LDL, has been eliminated. May be implemented.
  • small and dense LDL fractions may be separated from the subject by centrifugation and measured.
  • the present invention relates to a small, dense LDL cholesterol containing a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof for quantifying small, dense LD L cholesterol in a sample containing small. Dense LDL cholesterol. It also includes measurement reagents.
  • the present invention also includes a kit for quantifying small.dense LDL cholesterol.
  • the kit is At least a polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer or a derivative thereof.
  • the kit may further contain an enzyme for measuring cholesterol.
  • the kit may further comprise nonionic and Z or anionic surfactants.
  • the kit may further contain a reagent for introducing cholesterol in lipoproteins other than small, dense LDL out of the small, dense LDL cholesterol quantitative reaction system.
  • the reagent for guiding out of the small.dense LD L cholesterol quantitative reaction system is a reagent for eliminating, aggregating and inhibiting the cholesterol in the lipoproteins other than the above small, dense LDL.
  • the present invention further relates to a reagent for measuring small, dense LDL cholesterol of polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer for quantifying small, dense LDL cholesterol in a sample containing small and dense LDL cholesterol.
  • a reagent for measuring small, dense LDL cholesterol of polyoxyethylene polyoxypropylene copolymer for quantifying small, dense LDL cholesterol in a sample containing small and dense LDL cholesterol. The use as is also included.
  • the following reagent compositions were prepared using various polyoxyethylene polyoxypropylene copolymers in the second reagent composition.
  • PIPES buffer pH 7.0 50mmol / L cholesterol monoesterase 0.6U / mL cholesterol monooxidase 0.5U / mL catalase 600U / mL cow blood clot almin 5%
  • Table 1 is a table showing a list of correlation coefficients between the product of the present invention using various polyoxyethylene polyoxypropylene copolymers and the reagent kit sd LDL-C “SEIKEN” for small, dense LDL cholesterol measurement.
  • PIPES buffer pH 7.0 aOnimol / sister cholesterol-reductase 0.6 U / m cholesterol-reductive oxidase 0.5 U / mL catalase 600 U / mL bovine serum almin 0.5%
  • PIPES buffer pH 7.0 50 ramol / L
  • Polyoxyethylene-polyoxypropylene copolymer 0.3% Polyoxyethylene-norenophenol / Leetenole
  • the reagent kit for measuring small, dense LDL cholesterol, sd LDL-C “Seiken” manufactured by Denka Seiken Co., Ltd. was used as a comparative control, and the concentrations of small, dense LDL cholesterol were compared by primary regression analysis. The results are shown in Table 2.
  • Table 2 shows the correlation coefficient between the products of the present invention using various polyoxyethylene polyoxypropylene copolymers and nonionic surfactants and the reagent kit for measuring small, dense LDL cholesterol.
  • Sd LDL-C “SEIKEN” It is a table
  • cholesterol can be efficiently measured in small, dense LDL by adding an anionic surfactant.
  • the following reagent composition was prepared by further adding 0, 2, 4, 5 U / mL of lipoprotein lipase to the second reagent yarn composition of Example 1.
  • PIPES buffer pH 7.0 50 mmol / L cholesterol monoesterase 0.6 U / mL cholesterol oxidase 0.5 U / mL catalase 600 U / mL bovine serum alpmin 0.5%

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Abstract

 検体の前処理操作をすることなしに、迅速かつ簡便な自動分析装置対応のsmall,dense LDLの分別測定ができる方法の提供。被検体試料にポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体の存在下にコレステロール測定用酵素を添加し、ポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうちsmall,dense LDLに選択的に作用させ、生成したコレステロール量を測定することを特徴とするsmall,dense LDLコレステロールの定量方法。

Description

明 細 書
小粒子低比重リポ蛋白の定量方法および定量キット
技術分野
[0001] 本発明は、動脈硬化の診断に重要な small,dense LDL中のコレステロール測定方 法と測定試薬に関する。
背景技術
[0002] 低密度リポ蛋白(LDL)は血液中におけるコレステロール運搬の主役であり、動脈硬 化性疾患の危険因子であるが、 LDLの中でも特に粒子サイズが小さく平均的な LDL より高比重な、 small.dense LDLは動脈硬化惹起性が通常の LDLより数倍高くなること が知られている。 small.dense LDLの増加は動脈硬化性疾患の主要な危険因子の 1 つであり、分別測定することは臨床上極めて重要である。
[0003] 従来の small,dense LDL測定法は、超遠心法、電気泳動法、高速液体クロマトダラ フィーを用いる方法などがあるが、この方法は高価な設備を必要とし、測定に非常に 時間を要するため簡便ではな 、。
[0004] 自動分析装置を用いて small,dense LDLを測定する方法としては、イオン強度の差 により小粒子 LDLを混濁または溶解させ吸光度の差により小粒子 LDLを測定する方 法 (特開 2003-28882号公報)がある。しかし、この方法では濁りによる吸光度差を測 定しているため、特異性や精度が不十分であった。
[0005] また、 small,dense LDL中のコレステロールや中性脂肪を、ポリア-オンと二価陽ィ オンからなる分離剤と自動分析装置対応の試薬の組み合わせて測定する方法 (WO 2004/053500)が知られている。この方法では、超遠心法や電気泳動法に比べ簡便 に Small,dense LDL中の脂質成分が測定でき、特異性や精度に優れている力 検体 を前処理し LDLを small,dense LDLとそれ以外の LDLに分離する操作が必要であった 特許文献 1:特開 2003-28882号公報
特許文献 2: WO2004/053500号公報
発明の開示 発明が解決しょうとする課題
[0006] 本発明の目的は、検体の前処理操作をすることなしに、迅速かつ簡便な自動分析 装置対応の small,dense LDLの分別測定法を提供することである。
課題を解決するための手段
[0007] 本発明者らは種々のリポ蛋白を含有する被検体試料中のコレステロールをコレステ ロールエステラーゼならびにコレステロールォキシダーゼもしくはコレステロールデヒ ドロゲナーゼにて測定する際、あら力じめ small,dense LDLとそれ以外の LDLに対す る反応性が異なる界面活性剤を作用させることにより small,dense LDL中のコレステロ ールを選択的に測定することを検討し、ポリオキシエチレン—ポリオキシプロピレン共 重合体またはその誘導体力 mall,dense LDLに選択的に作用し、 small,dense LDL中 のコレステロールを測定できることを見いだし、本発明を完成するに至った。
[0008] すなわち、本発明は以下の方法およびキットを提供する。
[0009] (1) 被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその 誘導体の存在下にコレステロール測定用酵素を添加し、ポリオキシエチレン ポリオ キシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選 択的に作用させ、生成したコレステロール量を測定することを特徴とする small,dense LDLコレステロールの定量方法。
[0010] (2) さらに非イオン性および Zまたは陰イオン性界面活性剤を添加することを特徴 とする(1)の方法。
[0011] (3) コレステロール測定用酵素がコレステロールエステラーゼならびにコレステロ一 ルォキシダーゼもしくはコレステロールデヒドロゲナーゼカもなることを特徴とする(1) または(2)の方法。
[0012] (4) さらにホスホリパーゼおよび Zまたはリポプロテインリパーゼを添加することを特 徴とする(1)〜(3)の 、ずれかの方法。
[0013] (5) ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋 白質のうち small,dense LDLに選択的に作用させる前に、 small,dense LDL以外のリポ 蛋白中のコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導くことを 特徴とする(1)〜 (4)の 、ずれかの方法。 [0014] (6) 被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその 誘導体の存在下でコレステロール測定用酵素を添加し、ポリオキシエチレン ポリオ キシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選 択的に作用させ、生成したコレステロール量を測定するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体ならびにコレステロール測定用 酵素を含む small,dense LDLコレステロールの定量用キット。
[0015] (7) さらに非イオン性および Zまたは陰イオン性界面活性剤を含む(6)の small,den se LDLコレステロール定量用キット。
[0016] (8) コレステロール測定用酵素がコレステロールエステラーゼおよびコレステロール ォキシダーゼまたはコレステロールデヒドロゲナーゼからなる(6)または(7)の small,d ense LDLコレステロール定量用キット。
[0017] (9) さらにホスホリパーゼおよび Zまたはリポプロテインリパーゼを含む(6)〜(8)の V、ずれかの small,dense LDLコレステロール定量用キット。
[0018] (10) ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ 蛋白質のうち small,dense LDLに選択的に作用させる前に、 small,dense LDL以外のリ ポ蛋白中のコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導くた めの試薬を含む(6)〜(9)の!、ずれかの small,dense LDLコレステロール定量用キッ
[0019] (11) 被検体試料中の small,dense LDLコレステロールを定量する方法において、 被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体 の存在下にコレステロール測定用酵素を添カ卩し、ポリオキシエチレン ポリオキシプ ロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選択的に 作用させ、生成したコレステロールを測定する工程力 なる方法。
[0020] (12) small, dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dense LDLコレ ステロールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体も しくはその誘導体を含む small,dense LDLコレステロール測定用試薬。
[0021] (13) small, dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dense LDLコレ ステロールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体の small.dense LDLコレステロール測定用試薬としての使用。
発明の効果
[0022] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白 質を含む被検体試料に添加することにより、リポ蛋白中の small,dense LDLをフィルタ 一や遠心分離を用いた分離操作をすることなぐ直接、選択的に測定することができ る。
[0023] 本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願 2005-252091号の明細書 および Zまたは図面に記載される内容を包含する。
図面の簡単な説明
[0024] [図 1]リポプロテインリパーゼを添カ卩した場合の、 Large LDLおよび small,dense LDLに 対する反応性を示す図である。
発明を実施するための最良の形態
[0025] 以下、本発明について詳細に説明する。
[0026] リポタンパク質は大きく VLDL、 LDLおよび HDLの分画に分けられ、 LDLはさらに sma ll'dense LDLとそれ以外の亜分画に分けられる。 small, dense LDLを小粒子 LDL、 SL DL(small LDL), dense LDLと呼ぶこともあり、またそれ以外の LDLを LLDL(large LDL) 、 Light LDLと呼ぶこともある。これらの分画および亜分画は、粒子サイズまたは比重 により区別できる。その粒子サイズの直径は、報告者により異なるが VLDLが 30nm〜8 Onm (30nm〜75nm)で、 LDLが 22nm〜28nm(19nm〜30nm)、 HDLが直径 7〜10nmで ある。比重は、 VLDL力 S1.006以下、 LDL力 Sl.019〜1.063、 HDL力 1.063〜1.21である。 LDL粒子直径はグラジェントゲル電気泳動(GGE) (JAMA, 260, p.1917-21, 1988)、 N MR (HANDBOOK OF LIPOPROTEIN TESTING 2nd Edition, Nader Rifai他編、 p.60 9-623、 AACC PRESS : TheFats of Life Summer 2002、 LVDD 15 YEAR ANNIVERSA RY ISSUE, Volume AVI No.3、 p.15- 16)により測定でき、比重は超遠心分離による分 析 (Atherosclerosis, 106, p.241-253, 1994: Atherosclerosis, 83, p.59, 1990)に基づ いて決定できる。
[0027] 本発明の方法で測定しょうとする small,dense LDLは、一般的には LDL画分のうち 直径が約 22.0〜約 25.5nmの亜分画、比重 1.040〜1.063の亜分画を指す。 LDLを大き さにより亜分画に分けているのは、 LDLのうち粒子径が小さいものが動脈硬化惹起性 が高ぐ LDLの中でもより悪性度が高いので、 LDLの中でも小さいものを分別測定す る必要があった力 である。 LDL内で直径分布や比重分布は連続しており、比重がど の程度以上のものが特に悪性度が高 、と 、うように明確に区別できるものではな 、。 従って、上記の比重 1.040〜1.063という値も small,dense LDLの特性として確立したも のではなぐ広く用いられており確立した値といえる LDLの比重範囲 1.019〜1.063を 中央点で分けたものである。例えば、別の報告では 1.044〜1.060に分画される (Athe rosclerosis: 106 241-253 1994)。 small,dense LDLの比重をどの範囲にするかは、報 告者により若干の違いがある力 いずれもその範囲で分別した場合の small,dense LD Lの存在が臨床的な悪性度と関連している。
[0028] 本発明にお 、て、 small,dense LDLと!、う場合、 LDLのうち比重が小さ!/、ものであつ て、臨床的に動脈硬化惹起性がそれ以外の LDLよりも大きいもの、好ましくは LDLの 比重範囲のうち中央点より上の比重範囲に属するもの、さらに好ましくは比重 1.040〜 1.063の範囲に属する LDLをいう。
[0029] 本発明の方法は通常、自動分析装置内で行われる。本発明の方法では Large LDL コレステロールから分離、差別化して Small,dense LDLコレステロールを測定するため に、コレステロ一ノレエステラーゼ、コレステロ一ノレォキシダーゼまたはコレステロ一ノレ デヒドロゲナーゼ等のコレステロール測定用酵素を small,dense LDLに選択的に作用 させる界面活性剤の存在下で行う。また、コレステロール測定用酵素を small,dense L DL以外のリポ蛋白に作用するのを抑制する界面活性剤の存在下で行うこともできる 。コレステロール測定用酵素を small,dense LDLに選択的に作用させることは、見方を 変えればコレステロール測定用酵素を small,dense LDL以外のリポ蛋白への作用を 抑制することとも言えるので、結果的に同じことを意味し、両目的を達成する界面活 性剤は同一のものを指す場合がありうる。前記界面活性剤はコレステロールエステラ ーゼ、コレステロ一ノレォキシダーゼまたはコレステロ一ノレデヒドロゲナーゼ等のコレス テロール測定用酵素の活性を上昇させる界面活性剤と共に用いても良いし、単独で 用いることでさる。
[0030] 上記 small,dense LDLに対するコレステロール測定用酵素を選択的に作用させる界 面活性剤としてはポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘 導体が挙げられる。ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその 誘導体は small,dense LDLに選択的に作用し、結果的にコレステロールエステラーゼ ならびにコレステロールォキシダーゼもしくはコレステロールデヒドロゲナーゼの small, dense LDL以外のリポ蛋白への作用を抑制する。ポリオキシエチレン ポリオキシプ ロピレン共重合体またはその誘導体を被検体試料中の small,dense LDLに選択的に 作用させることで small,dense LDL中のコレステロールが選択的に遊離し、次いでコレ ステロール測定用酵素を small,dense LDL中のコレステロールに反応させる。「ポリオ キシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質の中の small.dense LDLに選択的に作用させる」とは、リポ蛋白質の中の small,dense LDL中 のコレステロールをポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘 導体の作用により選択的に遊離させることをいう。「small,dense LDLに選択的に作用 させる」とは、リポ蛋白質の中の small,dense LDLに主に作用させること、好ましくは sm all, dense LDLのみに作用させることをいう。遊離したコレステロールにコレステロール 測定用酵素を反応させることにより、コレステロールを測定することができる。
ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体としては、例 えば一般式 (I)および (Π)および (ΙΠ)
RO- (C H 0) - (C H 0) - (C H 0)— H (I)
2 4 a 3 6 b 2 4 c
RO- (C H O) - (C H O) - (C H O) -H (ll)
3 6 d 2 4 e 3 6 f
[式中 a、 b、および cならびに d、 e、および fは整数を表し、 Rは水素原子または直鎖、 分岐のアルキルを表す]
Η(θ2Η40) -(CsI-IsO)
H(C2H40) X -(G3H60) ,
Figure imgf000007_0001
[式中 x、 yは整数を表す]
で表される化合物が挙げられる。(I)においてポリオキシプロピレンの数 (式中の b)は 1〜200が好ましぐ 20〜150がより好ましぐ 30〜100が特に好ましい。ポリオキシェチ レンの数(式中の aおよび c)はそれぞれ 1〜200が好ましぐ 1〜100がより好ましぐ 1〜 60が特に好ましい。 Rで示される直鎖または分岐のアルキル基としては炭素数 1〜30 が好ましぐ炭素数 2〜25が特に好ましい。(Π)においてポリオキシプロピレンの数( 式中の e)は 20〜100が好ましぐポリオキシエチレンの数(式中の dおよび f)はそれぞ れ 1〜60が好ましい。 (III)においてポリオキシプロピレンの数(式中の y)は 2〜30が好 ましい。ポリオキシエチレンの数(式中の X)は 1〜50が好ましぐ 1〜30が特に好ましい
[0032] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体の濃度として は 0.1〜10gZLが好ましぐ 0.3〜5gZLがより好ましぐ 0.5〜3gZLが特に好ましい。 あるいは、 0.01〜l% (w/w)が好ましぐ 0.03〜0.5%(w/w)がより好ましぐ 0.05〜0.3% (w/w)が特に好ましい。
[0033] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体は、疎水基 の分子量およびエチレンォキシド付加量を変えることにより、作用するリポ蛋白の比 重が変化し得る。例えば、疎水基分子量力 ¾50〜3850であり、総エチレンォキシド% が 10〜80%のポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体 は好適に small,dense LDLに作用し得る。
[0034] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体が small,dens e LDL以外の LDLに作用する場合は、あら力じめポリオキシエチレン ポリオキシプ ロピレン共重合体またはその誘導体が作用する LDLを small,dense LDLコレステロ一 ル定量反応系外に導けばよい。
[0035] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体として、例え ばプル口ニック 17R-4、プル口ニック L-64、プル口ニック PE3100、プル口ニック P-85、プ ル口-ック F-88、プル口ニック P- 103、プル口ニック F-127等のプル口ニック(登録商標 )系界面活性剤 (BASF社、旭電化工業株式会社)などが挙げられる。
[0036] また、上記界面活性剤にさらに非イオン界面活性剤および陰イオン界面活性剤を 加えることができる。これらの界面活性剤は、コレステロールエステラーゼならびにコ レステロールォキシダーゼもしくはコレステロールデヒドロゲナーゼの活性を上昇させ る。 [0037] 前記非イオン界面活性剤および陰イオン界面活性剤の親水性親油性バランス (HL
B)は 12〜14が好ましい。
[0038] 非イオン性界面活性剤としてはポリオキシエチレン誘導体等が挙げられ、特にポリ ォキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキレンアルキルエーテル
、ポリオキシエチレンアルキルフエ-ルエーテルが好ましぐアルキル基としては炭素 数 8以上が好ましぐ例えばォクチル基、ノ-ル基が好ましい。具体的には、エマルゲ ン(登録商標) 909、ェマルゲン 100シリーズ、ェマルゲン 210P、 220、 306P、 320P、 404 、 408、 409P、 420、 430、 705、 707、 709、 1108、 1118S- 70、 1135S- 70、 1150S- 70、 408 5、 2020G- HA、 2025G、 PI-20T (花王株式会社)、パーソフト NK60 (日本油脂株式会 社)などのポリオキシエチレンアルキルエーテル、ェマルゲン LS-106、 LS-110、 LS-1 14、 MS-110 (花王株式会社)等のポリオキシエチレンアルキレンアルキルエーテル、 ノ-オン HS-208、 HS-210、 NS-208.5、 NS210 (日本油脂株式会社)などのポリオキシ エチレンォクチルフエ-ルエーテル、その他ノ-オン L-4、 0-6 (日本油脂株式会社) などのポリオキシエチレン誘導体が挙げられる。その中でも、ェマルゲン 909、 109P、 4 09P、 709P、 PI- 20T、 LSI 10 (花王株式会社)、パーソフト NK60、ノ-オン HS- 208、 HS -210、 L-4、 NS-208.5, NS-210、 0-6 (日本油脂株式会社)が好ましい。
[0039] ポリオキシエチレン誘導体の濃度は 0.1〜50gZLが好ましぐ 0.5〜10gZLが特に好 ましい。あるいは、 0.01〜5%(w/w)が好ましぐ 0.05〜l%(w/w)が特に好ましい。
[0040] 陰イオン性界面活性剤としてはアルキル硫酸ナトリウム、ポリオキシエチレンアルキ ルエーテル硫酸ナトリウム、アルキルベンゼンスルフォン酸ナトリウムが好ましい。具 体的には、トラックス H-45 (日本油脂株式会社)、ポリオキシエチレンスルホコハク酸ラ ゥリル 2ナトリウムであるサクシ-一ド 3LN (日本油脂株式会社)が好まし 、。
[0041] 陰イオン性界面活性剤の濃度は 0.1〜20gZLが好ましぐ 0.5〜10gZLが特に好ま しい。あるいは、 0.01〜2%(w/w)が好ましぐ 0.05〜l%(w/w)が特に好ましい。
[0042] 本発明の small,dense LDLコレステロールの測定は水溶液中、好ましくは緩衝液中 で行われる。緩衝液に使用する緩衝剤としてはトリス、トリエタノールァミン、ダットの緩 衝液等のアミンを含む緩衝液が好ましぐ特にグッドの緩衝液としては Bis-Tris、 PIPE S、 BES、 MOPSO、 HEPESおよび POPSOが好ましい。緩衝液の pHは 5〜9が好ましく、 緩衝液の濃度は 10〜500mmol/Lが好ましい。
[0043] リポ蛋白質に界面活性剤を作用させることにより、リポ蛋白質中のコレステロールが 遊離し、該コレステロールに酵素(コレステロールエステラーゼならびにコレステロ一 ルォキシダーゼもしくはコレステロールデヒドロゲナーゼ)を反応させることによりコレ ステロールが分解、酸化される。
[0044] 本発明におけるコレステロールエステラーゼとしてはコレステロールエステルを加水 分解する酵素であれば特に限定されず、動物または微生物由来のコレステロールェ ステラーゼを用いることができる。コレステロールエステラーゼの濃度は 0.01〜50U/m L力 S好ましく、 0.1〜10U/mLが特に好ましい。
[0045] コレステロールォキシダーゼとしては、コレステロールを酸化する能力を有する酵素 であれば特に限定されず、動物または微生物由来のコレステロールォキシダーゼを 用いることができる。コレステロールォキシダーゼの濃度は 0.01〜20U/mLが好ましく 、 0.1〜lU/mLが特に好ましい。
[0046] コレステロールデヒドロゲナーゼとしてはコレステロールを酸化して酸化型補酵素を 還元する能力を有する酵素であれば特に限定されず、動物または微生物由来のコレ ステロールデヒドロゲナーゼを用いることができる。コレステロールデヒドロゲナーゼの 濃度は 0.01〜200U/mLが好ましぐ 0.1〜100U/mLが特に好ましい。
[0047] 本発明では small,dense LDLに対する反応選択性を高めるためにさらにホスホリパ ーゼおよび Zまたはリポプロテインリパーゼを用いることができる。
[0048] ホスホリパーゼとしてはホスホリパーゼ A2、ホスホリパーゼじ、ホスホリパーゼ1)、リゾ ホスホリパーゼ等を用いることができ、使用濃度は 0.01〜10U/mLが好ましぐ 0.01〜5
U/mLがさらに好ましく、 0.01〜 1 U/mLが特に好まし!/、。
[0049] リポプロテインリパーゼはリポタンパク質を分解する能力を有する酵素であれば特に 限定されず動物または微生物由来のリポプロテインリパーゼを用いることができる。リ ポプ口ティンリパーゼの使用濃度は 0.01〜10U/mLが好ましぐ 0.01〜5U/mLがさら に好ましぐ 0.01〜lU/mLが特に好ましい。
[0050] コレステロール測定用酵素としてコレステロールエステラーゼおよびコレステロール ォキシダーゼを用いる場合、酵素反応により過酸化水素が生成する。発生した過酸 化水素はペルォキシダーゼの存在下で水素供与体と水素受容体とのカップリング反 応により形成される色素(有色キノン)により波長 400〜700nmで測定することにより定 量することができる。
[0051] 水素供与体としてはァ-リン誘導体が好ましぐァ-リン誘導体としては N ェチル
-N- (2—ヒドロキシ一 3—スルホプロピル) 3—メチルァ-リン(TOOS)、 N—ェチ ル一 N— (2—ヒドロキシ一 3—スルホプロピル) -3, 5—ジメチルァ-リン(MAOS)、 N —ェチルー N— (3—スルホプロピル)—3—メチルァ-リン(TOPS)、 N— (2 ヒドロキ シ一 3—スルホプロピル) -3, 5—ジメトキシァ-リン(HDAOS)、 N— (3—スルホプロピ ル)ァ-リン(HALPS)、 N—(3—スルホプロピル)ー3—メトキシー5—ァ-リン(HMMP S)等があげられる。水素供与体の使用濃度は最終濃度で 0.1〜1.5mmol/Lが好まし い。
[0052] 水素受容体としては 4ーァミノアンチピリンやメチルベンゾチアゾロンヒドラゾン等を 用!/、ることができる。
[0053] コレステロール測定用酵素としてコレステロールエステラーゼおよびコレステロール デヒドロゲナーゼを用いる場合、酵素反応により NAD (P)カゝら NAD (P) Hが発生する。 発生した NAD (P) Hは 330〜400nmでの吸光度を測定することにより定量することがで きる。
[0054] 本発明では small,dense LDLに対する反応選択性をさらに高めるために被検体試 料中の small,dense LDL以外のリポ蛋白である HDLや VLDL、 Large LDLなどに含ま れるコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導!、てもよ!/、。 small.dense LDLコレステロール定量反応系外に導くとは、 HDLや VLDL、 Large LDL などに含まれるコレステロールが small,dense LDLコレステロールの定量に影響を及 ぼさないように、 HDL、 VLDL、 Large LDLなどに含まれるコレステロールを消去、凝集 させたり、後の工程で反応しないよう阻害したりする等のことを言う。
[0055] 消去とは被検体試料中の物質を分解し、その分解物が次の工程において検出され ないようにすることを意味する。この場合、 small.dense LDL以外に作用する界面活性 剤として HDL値が 13以上 15以下のポリオキシエチレン誘導体が挙げられ、具体例とし ては、ポリオキシエチレンラウリルエーテル、ポリオキシエチレンセチルエーテル、ポリ ォキシエチレンォレイルエーテル、ポリオキシエチレン高級アルコールエーテル、ポリ ォキシエチレンォクチルフエニルエーテル、ポリオキシエチレンノニルフエニルエーテ ル、ポリオキシエチレンベンジルフエ-ルエーテル等で HLB値が 13以上 15以下の化 合物がある。上記界面活性剤の濃度は、 0.1〜10g/L程度が好ましぐさらに好ましく は 0.3〜5.0g/L程度である。あるいは、 0.01〜l%(w/w)程度が好ましぐさらに好ましく は 0.03〜0.5%(w/w)程度である。
[0056] この場合、 small,dense LDL以外のリポ蛋白中コレステロールの消去には上記界面 活性剤の他、コレステロールエステラーゼ、コレステロールォキシダーゼを作用させ 発生した過酸ィ匕水素を、カタラーゼを用いて水と酸素に分解する方法、およびペル ォキシダーゼを用いて水素供与体と過酸ィ匕水素を反応させ無色キノンに転ィ匕する方 法を挙げることができる力 これらに限定されるものではない。
[0057] 本発明にはイオン強度調整剤として 1価の陽イオンおよび Zまたは 2価の陽イオン およびその塩を用いることができる。イオン強度調整剤を添加することにより、 small.de nse LDLが分離しやすくなる。具体的には塩ィ匕ナトリウム、塩ィ匕カリウム、塩化マグネ シゥム、塩化マンガン、塩化カルシウム、塩化リチウム、塩化アンモニゥム、硫酸マグ ネシゥム、硫酸カリウム、硫酸リチウム、硫酸アンモ-ゥム、酢酸マグネシウム等を用い ることができる。濃度は 0〜100mmolZLで使用される。
[0058] 反応温度は 2°C〜45°Cで行うことが好ましぐ 25°C〜40°Cで行うことがさらに好まし い。
[0059] 反応時間は 1〜30分間で行うことが好ましぐ 3〜15分で行うことがさらに好ましい。
[0060] 本発明の被検体試料として血清、血漿を使用することができるが、これらに限定さ れるものではない。
[0061] 凝集とは、被検体試料中の物質を凝集させる凝集剤や、被検体試料中の物質に対 する抗体等を用いその凝集物が次の工程にぉ ヽて検出されな ヽようにすることを意 味する。ここで凝集剤とは、化学反応によって凝集を惹起させるものであり、また抗体 とは、特定のリポ蛋白分画に対する抗体であって、免疫凝集反応を生じさせるもので ある。例えば反応液には必要に応じてリポ蛋白凝集剤を含有させることができる。リポ 蛋白凝集剤としてはリンタングステン酸、へパリン、デキストラン硫酸などのポリア-ォ ンやその塩、およびマグネシウム、マンガン、カルシウム等の 2価陽イオンが挙げられ る。
[0062] 本発明で用いる自動分析装置として、例えば、 TBA-120FR'200FR (東芝)、 JCA-B M1250- 1650 · 2250 (日本電子)、 HITACHI7180 · 7700 (日立)、 AU2700 (OLYMPUS) 等が挙げられる。
[0063] 本発明の方法においては、第 1工程において被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体ならびにコレステロール測定用酵 素を添カ卩し、 small,dense LDL中のコレステロールを遊離、分解し、第 2工程において 、コレステロールの分解物を定量する。ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共 重合体もしくはその誘導体は small,dense LDLへの選択性が高いため、上記工程に より、 small.dence LDLを選択的に定量することができる。第 1工程の前に、被検体試 料中の small,dense LDL以外のリポ蛋白である HDLや VLDL、 Large LDLなどに含ま れるコレステロールを small, dense LDLコレステロール定量反応系外に導く工程を含 んでいてもよい。 small, dense LDLコレステロール定量反応系外に導く工程とは、 HDL や VLDL、 Large LDLなどに含まれるコレステロール力 small,dense LDLコレステロ一 ルの定量に影響を及ぼさないように、 HDL、 VLDL、 Large LDLなどに含まれるコレス テロールを消去、凝集させたり、後の工程で反応しないよう阻害したりする等の工程 のことである。
[0064] 第 1工程の前の被検体試料中の small,dense LDL以外のリポ蛋白である HDLや VL DL、 Large LDLなどに含まれるコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量 反応系外に導く工程においては、例えば、コレステロールエステラーゼゃコレステロ ールォキシダーゼ等のコレステロール測定用酵素を添カ卩し、 small.dense LDL以外の リポ蛋白である HDLや VLDL、 Large LDLなどに含まれるコレステロールに作用させ、 発生した過酸ィ匕水素をカタラーゼにより分解することにより、 small, dense LDL以外の リポ蛋白である HDLや VLDL、 Large LDLなどに含まれるコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導くことができる。その後、系にポリオキシェチレ ン—ポリオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体を、必要に応じて界面活性剤 と共に添加すればよい。系中のコレステロール測定用酵素、ポリオキシエチレンーポ リオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体、あるいはさらに界面活性剤の作用 で、 small,dense LDLコレステロール力 過酸化水素が発生し、該過酸化水素を定量 すればよい。
[0065] 本発明の測定方法を実施するに当たり、用!ヽる試薬を複数の試薬組成物に分けて もよい。本発明においては、試薬としてはポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン 共重合体もしくはその誘導体、コレステロールエステラーゼやコレステロールォキシダ ーゼ等のコレステロール測定用酵素、界面活性剤、過酸化水素を分解するカタラー ゼ、過酸ィ匕水素力もカップリング反応により色素を形成させるためのペルォキシダー ゼ、水素供与体、緩衝液等が用いられる。これらの試薬の各試薬組成物への振り分 けは、試薬の安定性等を考慮して適宜分配される。例えば、試薬を第 1試薬組成物 と第 2試薬組成物の 2つに分け、第 1試薬組成物にコレステロールエステラーゼゃコ レステロールォキシダーゼ等のコレステロール測定用酵素等を含ませ、第 2試薬組成 物にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体、コレス テロール測定用酵素の活性を上昇させるための界面活性剤等が含ませることができ る。第 2試薬組成物には、さらにホスホリーパーゼ又はリポプ口ティンリパーゼを含ま せてもよい。このような 2つの試薬組成物を用いる場合、被検体試料に第 1試薬組成 物を添加し、 1〜10分間、好ましくは 5分間程度反応させたのち、第 2試薬組成物を 添加し、さらに 1〜10分間、好ましくは 5分間程度反応させ、形成された色素を定量す ればよい。
[0066] また、あらかじめ small, dense LDL以外のリポ蛋白である HDLや VLDL、 Large LDLな どに含まれるコレステロールを消失させた被検体試料を用いて、本発明の上記第 1 工程及び第 2工程を実施してもよい。例えば、被検体から遠心分離により small, dens e LDL分画を分離し、測定してもよい。
[0067] 本発明は、 small.dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dense LD Lコレステロールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重 合体もしくはその誘導体を含む small,dense LDLコレステロール測定用試薬をも包含 する。
[0068] 本発明は、 small.dense LDLコレステロールの定量用キットをも包含する。該キットは 、少なくともポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体を 含む。該キットは、さらにコレステロール測定用酵素を含んでいてもよい。該キットは、 さらに非イオン性および Zまたは陰イオン性界面活性剤を含んで 、てもよ 、。該キッ トは、さらに、 small,dense LDL以外のリポ蛋白中のコレステロールを small,dense LDL コレステロール定量反応系外に導くための試薬を含んでいてもよい。 small.dense LD Lコレステロール定量反応系外に導くための試薬は、上記の、 small,dense LDL以外 のリポ蛋白中のコレステロールを消去、凝集、阻害するための試薬である。
[0069] 本発明は、さらに small, dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dens e LDLコレステロールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン 共重合体の small,dense LDLコレステロール測定用試薬としての使用をも包含する。 実施例
[0070] 以下、本発明を実施例に基づき具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限 定されるものではない。
[0071] 実施例 1
第 2試薬組成物中に各種ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体を用 V、た以下の試薬組成物を調製した。
[0072]
第 1試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7. 0 50mmo l /L コ レステロ一ノレエステラーゼ 0. 6U/mL コ レステロ一ノレォキシダーゼ 0. 5U/mL カタラーゼ 600U/mL 牛血淸アルプミ ン 5%
T00S 2. Ommo l /L 第 2試薬組成物
PIPES緩衝液, pH 7. 0 50mmo l /L ポリ オキシエチレン一ポリ オキシプロ ピレン共重合体 0. 3%
4 —ァ ミ ノアンチピリ ン 4. Ommo l /L ぺノレオキシダーゼ 4. 0単位/ mL ァジ化ナ ト リ ウム 0. 05% 被検体試料としてヒト血清 30例を使用した。
[0073] 血清試料 4 Lに第 1試薬組成物 300 Lを加え、 37°Cで 5分間反応させた後に、第 2試薬組成物 100 Lをカ卩ぇ 5分間反応させ、 600nmにおける吸光度を測定した。
[0074] デンカ生研社製の small,dense LDLコレステロール測定用試薬キット sd LDL- C「生 研」を比較対照として用いて small,dense LDLコレステロール濃度を一次回帰分析に より比較した。その結果を表 1に示す。表 1は、各種ポリオキシエチレン ポリオキシ プロピレン共重合体を用いた本発明品と small,dense LDLコレステロール測定用試薬 キット sd LDL- C「生研」との相関係数一覧を示す表である。
[0075] 表 1に示すように、各種ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体を含む 試薬組成物を用いた場合の測定値は small,dense LDLコレステロール測定用試薬キ ット sd LDL-C「生研」を用いた場合の測定値と良好な相関性を示した。これは、本発 明の方法により small, dense LDLコレステロールを精度よく測定できることを示している
[表 1] ポリオキシエチレン一ポリ 疎水基分子 総エチレンォキシド% 相関係数 ォキシプロピレン共重合体 里
①プル口ニック PE3100 950 10 0. 787
②プル口ニック L-64 1750 40 0. 710
③プル口ニック 17R- 4 1700 40 0. 792
④プルロニック P- 85 2250 50 0. 630
⑤プノレロニック F— 88 2250 80 0. 695
⑥プルロニック P— 103 3250 30 0. 758
⑦プル口ニック F-127 3850 70 0. 708 界面活性剤は①は BASF社製、 ②〜⑦は旭電化工業 (株)社製。 実施例 2
実施例 1の第 2試薬組成物中に、更に非イオン性界面活性剤を添加した以下の試 薬組成物を調製した。
第丄試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7. 0 aOnimol /し コ レステロ一ノレエステラーゼ 0. 6U/mし コ レステロ一ノレ才キシダーゼ 0. 5U/mL カタラーゼ 600U/mL 牛血清アルプミ ン 0. 5%
T00S 2. Ommol/L 第 2試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7. 0 50ramol/L ポリ ォキシェチレン一ポリ ォキシプロ ピレン共重合体 0. 3% ポリ ォキシエチレンノ -ノレフエノ一/レエーテノレ
ェマルゲン 909 [花王㈱社製] 1%
4 —ァ ミ ノアンチピリ ン Ommol /L ぺ /レ才キシタ— tr 0 -位/ mL アジ化ナト リ ゥム 05% 超遠心法により分離したコレステロール含有量 lOOmg/dLの small,dense LDL分画お よび同含有量 100mg/dLの Large LDL分画、各 4 ^ Uこ第 1試薬組成物 300 Lを加え 、 37°Cで 5分間反応させた後に、第 2試薬組成物 100 Lを加え 5分間反応させ、 600η mにおける吸光度を測定した。
[0078] その結果、 small.dense LDL分画のうち大部分が反応して測定されたのに対し、 Lar ge LDL分画は 67%のみしか測定されなカゝつた。つまり、試薬組成物中に非イオン性界 面活性剤をカ卩えることにより、 small, dense LDLの反応性力 加えない場合に比べて 増加する。
[0079] また、非イオン性界面活性剤である 109P、 409P、 709P、 PI-20T、 LSI 10 (花王株式 会社)、パーソフト NK60、ノ-オン HS- 208、 210、 L- 4、 NS- 208.5、 210、 0- 6 (日本油 脂株式会社)をェマルゲン 909の代わりに用いて同様の実験を行い、試薬組成物中 に非イオン性界面活性剤をカ卩えることにより、 small.dense LDLの反応性が、加えない 場合に比べて増加することも確認できた。
[0080] 従って、非イオン性界面活性剤を添加することにより small,dense LDL中のコレステ ロールを効率的に測定することができる。
[0081] 実施例 3
被検体試料としてのヒト血清 30例に対し、実施例 2で使用した試薬組成物を用いて 測定を行った。
[0082] 血清試料 4 Lに第 1試薬組成物 300 Lをカ卩え、 37°Cで 5分間反応させた後に、第 2試薬組成物 100 Lをカ卩ぇ 5分間反応させ、 600nmにおける吸光度を測定した。
[0083] デンカ生研社製の small,dense LDLコレステロール測定用試薬キット sd LDL- C「生 研」を比較対照として用いて small,dense LDLコレステロール濃度を一次回帰分析に より比較した。その結果を表 2に示す。表 2は、各種ポリオキシエチレン ポリオキシ プロピレン共重合体と非イオン性界面活性剤を用いた本発明品と small,dense LDLコ レステロール測定用試薬キット sd LDL-C「生研」との相関係数一覧を示す表である。
[0084] 表 2に示すように、各種ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体と非ィ オン性界面活性剤を用いた場合の測定値は small,dense LDLコレステロール測定用 試薬キット sd LDL-C「生研」を用いた場合の測定値と良好な相関性を示した。また、 実施例 1の場合に比べ、相関係数が良好になっていることがわかる。これは、非ィォ ン性界面活性剤を添カ卩した本発明の方法により small,dense LDLコレステロールを精 度よく測定できることを示して ヽる。
[表 2]
Figure imgf000019_0001
[0085] 実施例 4
実施例 1の第 2試薬組成物中に、更に陰イオン性界面活性剤を添加した以下の試 薬組成物を調製した。
[0086] 第 1試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7, 0 tjOmmol/L コ レステロ一ノレエステラ■— 0.6U/mL コ レステロ一ノレォキシダ'一セ 0.5U/mL カタラーゼ 600U/mL 牛血清アルブミン 0.5% T00S 2. Ommol/し 第 2試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7.0 50mmo丄 ポリ オキシエチレン一ポリ オキシプロ ピレン共重合体 0.3% ポリ ォキシエチレンノエノレフエノーノレエーテノレ
トラ ックス H- 45 [日本油脂㈱社製] 1%
4 —ァミ ノアンチピリ ン 4. Ommol/し ぺノレォキシダ一ゼ 4.0 ψ-iiL/mL ァジ化ナト リ ウム 0.05 超遠心法により分離したコレステロール含有量 100mg/dLの small, dense LDL分画お よび同含有量 100mg/dLの Large LDL分画、各 4 Lに第 1試薬組成物 300 Lを加え 、 37°Cで 5分間反応させた後に、第 2試薬組成物 100 Lを加え 5分間反応させ、 600η mにおける吸光度を測定した。 [0087] その結果、 small.dense LDL分画のうち大部分が反応して測定されたのに対し、 Lar ge LDL分画は 69%のみしか測定されなカゝつた。つまり、試薬組成物中に陰イオン性界 面活性剤をカ卩えることにより、 small, dense LDLの反応性力 加えない場合に比べて 増加する。
[0088] また、陰イオン性界面活性剤であるサクシ-一ド 3LN (日本油脂株式会社)をトラック ス H-45の代わりに用いて同様の実験を行 ヽ、試薬組成物中に陰イオン性界面活性 剤をカ卩えることにより、 small, dense LDLの反応性力 加えない場合に比べて増加する ことも確認できた。
[0089] 従って、陰イオン性界面活性剤を添加することにより small,dense LDL中のコレステ ロールを効率的に測定することができる。
[0090] 実施例 5
被検体試料としてのヒト血清 30例に対し、実施例 4で使用した試薬組成物を用いて 測定を行った。
[0091] 血清試料 4 Lに第 1試薬組成物 300 Lをカ卩え、 37°Cで 5分間反応させた後に、第 2試薬組成物 100 Lをカ卩ぇ 5分間反応させ、 600nmにおける吸光度を測定した。
[0092] デンカ生研社製の small,dense LDLコレステロール測定用試薬キット sd LDL- C「生 研」を比較対照として用いて small,dense LDLコレステロール濃度を一次回帰分析に より比較した。その結果を表 3に示す。表 3は、各種ポリオキシエチレン ポリオキシ プロピレン共重合体と陰イオン性界面活性剤を用いた本発明品と small,dense LDLコ レステロール測定用試薬キット sd LDL-C「生研」との相関係数一覧を示す表である。
[0093] 表 3に示すように、各種ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体と陰ィ オン性界面活性剤を用いた場合の測定値は small,dense LDLコレステロール測定用 試薬キット sd LDL-C「生研」を用いた場合の測定値と良好な相関性を示した。また、 実施例 1の場合に比べ、相関係数が良好になっていることがわかる。これは、陰ィォ ン性界面活性剤を添カ卩した本発明の方法により small,dense LDLコレステロールを精 度よく測定できることを示して 、る。
[表 3] ポリオキシエチレン一ポリ 陰イオン性界面活 総ェチレンォキ 相関係数 ォキシプロピレン共重合体 性剤 シド%
①プル口ニック PE3100 サクシニード 3LN 10 0. 812
②プル口ニック L-64 トラックス H- 45 40 0. 744
[0094] 実施例 6
実施例 1の第 2試薬糸且成物中に、更にリポプロテインリパーゼを各 0、 2、 4、 5U/mL 添加した以下の試薬組成物を調製した。
[0095] 第 1試薬組成物
PIPES緩衝液, pH7. 0 50mmol /L コ レステロ一ノレエステラーゼ 0. 6U/mL コ レステロールォキシダーゼ 0. 5U/mL カタラーゼ 600U/mL 牛血清アルプミ ン 0. 5%
T00S 2. Ommo l /L
第 2試薬組成物
PI PES緩衝液, pH7. 0 50匪 ol A ポリ オキシェチレン一ポリオキシプロ ピレン共重合体
プル口ニック 17R-4またはプル口ニック L-64 [旭電化工業(株)社製] 0. 3% 4—ァミ ノアンチピリ ン 4. Ommo l /L ペルォキシダーゼ 4. 0単位/ mL リ ポプロテインリパーゼ LPL- 31 1 [東洋紡績(株)社製] 0, 2, 4, 5U/mL ァジ化ナ ト リ ウム 0. 05% 超遠心法により分離したコレステロール含有量 100mg/dLの small,dense LDL分画、 Large LDL分画、各 4 Lに第 1試薬組成物 300 μ Lを加え、 37°Cで 5分間反応させた 後に、第 2試薬組成物 100 Lをカ卩ぇ 5分間反応させ、 600nmにおける吸光度を測定 した。
[0096] その結果を図 2に示す。
[0097] 図 2に示すように、試薬糸且成物中にリポプロテインリパーゼをカ卩えることにより、 small, dense LDLの反応性が Large LDL反応性に比べて著しく増加する。従って、リポプロ ティンリパーゼを添カ卩することにより small,dense LDL中のコレステロールを効率的に 柳』定することができる。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本 明細書にとり入れるものとする。

Claims

請求の範囲
[1] 被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導 体の存在下にコレステロール測定用酵素を添カ卩し、ポリオキシエチレン ポリオキシ プロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選択的 に作用させ、生成したコレステロール量を測定することを特徴とする small,dense LDL コレステロールの定量方法。
[2] さらに非イオン性および Zまたは陰イオン性界面活性剤を添加することを特徴とす る請求項 1記載の方法。
[3] コレステロール測定用酵素がコレステロールエステラーゼならびにコレステロールォ キシダーゼもしくはコレステロールデヒドロゲナーゼ力 なることを特徴とする請求項 1 または 2に記載の方法。
[4] さらにホスホリパーゼおよび Zまたはリポプロテインリパーゼを添加することを特徴と する請求項 1〜3のいずれ力 1項に記載の方法。
[5] ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白 質のうち small,dense LDLに選択的に作用させる前に、 small,dense LDL以外のリポ蛋 白中のコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導くことを特 徴とする請求項 1〜4のいずれ力 1項に記載の方法。
[6] 被検体試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導 体の存在下でコレステロール測定用酵素を添カ卩し、ポリオキシエチレン ポリオキシ プロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選択的 に作用させ、生成したコレステロール量を測定するための、ポリオキシエチレン ポリ ォキシプロピレン共重合体もしくはその誘導体ならびにコレステロール測定用酵素を 含む small,dense LDLコレステロールの定量用キット。
[7] さらに非イオン性および Zまたは陰イオン性界面活性剤を含む請求項 6記載の sma ll.dense LDLコレステロール定量用キット。
[8] コレステロール測定用酵素がコレステロールエステラーゼおよびコレステロールォキ シダーゼまたはコレステロールデヒドロゲナーゼからなる請求項 6または 7に記載の sm all, dense LDLコレステロール定量用キット。 さらにホスホリパーゼおよび Zまたはリポプロテインリパーゼを含む請求項 6〜8の V、ずれか 1項に記載の small, dense LDLコレステロール定量用キット。
ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体をリポ蛋白 質のうち small,dense LDLに選択的に作用させる前に、 small,dense LDL以外のリポ蛋 白中のコレステロールを small,dense LDLコレステロール定量反応系外に導くための 試薬を含む請求項 6〜9の!、ずれか 1項に記載の small,dense LDLコレステロール定 直用3 rット。
被検体試料中の small,dense LDLコレステロールを定量する方法において、被検体 試料にポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体またはその誘導体の存在 下にコレステロール測定用酵素を添カ卩し、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン 共重合体またはその誘導体をリポ蛋白質のうち small,dense LDLに選択的に作用させ 、生成したコレステロールを測定する工程力 なる方法。
small, dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dense LDLコレステロ ールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体もしくは その誘導体を含む small,dense LDLコレステロール測定用試薬。
small, dense LDLコレステロールを含む被検体試料中の small,dense LDLコレステロ ールを定量するための、ポリオキシエチレン ポリオキシプロピレン共重合体の small, dense LDLコレステロール測定用試薬としての使用。
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