WO2006011363A1 - 粘着性マイクロベシクルの除去方法 - Google Patents

粘着性マイクロベシクルの除去方法 Download PDF

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Yasushi Ozeki
Fumio Saitou
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Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.
Jimro Co., Ltd.
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    • G01N2400/00Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates
    • G01N2400/02Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates involving antibodies to sugar part of glycoproteins

Definitions

  • the present invention does not affect the measurement of circulating microvesicles present in blood before blood sampling by using an adhesive micromouth vesicle that occurs in a blood-derived sample for microvesicle measurement.
  • the present invention relates to a pre-treatment method, an appropriate measurement method for circulating microvesicles, and a measurement reagent or measurement kit thereof.
  • Microvesicles are released from activated platelets during thrombus formation such as atherosclerosis and disseminated intravascular coagulation.
  • the microvesicles promote blood coagulation by binding and concentrating clotting factors to phospholipids on the membrane surface, activating action of monocytes / platelets / vascular endothelial cells, or leukocytes / platelets / leukocytes / white blood cells.
  • ⁇ Endothelial cells Known to promote adhesion of leukocytes, etc., and are thought to be deeply involved in thrombus formation and progression of arteriosclerosis, which is not just simple platelet activation (see Non-Patent Document 1).
  • microvesicles are easily activated by physical stimulation or the like, and accordingly, the micromouth vesicles are released after the activation.
  • the physical shock at the time of blood collection may increase microvesicles that do not reflect clinical status due to the activation of platelets mixed during the separation of plasma or serum in the blood-derived sample after blood collection.
  • micro vesicles increase the amount of micro vesicles in blood-derived samples and hinder accurate determination of the patient's pathology. Therefore, there has been a demand for a method for accurately measuring microvesicles in blood before blood collection while eliminating the influence of microvesicles generated after blood collection.
  • Non-Patent Document 1 Nomura S. Int. J. Hematol. 74, 397-404, (2001)
  • the present invention provides a method for removing the adhesive microvesicles.
  • the purpose of this study is to provide an appropriate measurement method and measurement reagent for circulating microvesicles in the blood using the above.
  • microvesicles adheresive microvesicles
  • albumin typified by BSA (usi serum albumin)
  • BSA usi serum albumin
  • Item 1 A method for pretreating a blood-derived sample to eliminate the influence of adhesive microvesicles in the blood-derived sample generated after blood collection, wherein albumin is added to the blood-derived sample.
  • Item 2 The method according to Item 1, wherein the albumin is BSA.
  • Item 3 A process to eliminate the influence of adhesive microvesicles in blood-derived samples that are generated after blood collection by adding albumin to blood-derived samples, and to measure circulating microvesicles in blood-derived samples immunologically
  • Immunological measurement of circulating microvesicles is performed by binding antibodies against circulating microvesicles to a microvesicle-specific surface epitope and measuring the resulting bound antibody levels. The method described in 1.
  • Item 5 The method according to Item 4, wherein the surface epitope is on a glycoprotein of a circulating microvesicle.
  • Item 6 The method according to Item 5, wherein the surface glycoprotein is Gp3 ⁇ 4-IX.
  • Item 7 The measuring method according to Item 6, wherein the antibody is detected based on a label or an enzyme bound to the antibody.
  • Item 8 After binding circulating microvesicles to the immobilized antibody to GpIX, Item 8. The method according to Item 7, which comprises a step of causing an antibody that recognizes Gplb on the microvesicle to act.
  • Item 9 A kit for measuring circulating microvesicles in a blood-derived sample containing at least albumin, an anti-Gplb-labeled antibody and an anti-GpIX antibody.
  • Item 10 The kit according to item 9, wherein the albumin is BSA.
  • Item 11 The kit according to Item 9 or 10, wherein the plate is coated with an anti-GpIX antibody.
  • microvesicles present in patient blood are referred to as “circulating microvesicles”, and microvesicles released by platelet force activated by human manipulation during or after blood collection. Is called “adhesive microvesicle” because of its affinity for albumin.
  • the blood-derived sample to be used in the present invention refers to blood or a solution containing blood components prepared from blood, and a sample subjected to platelet removal operation is preferable.
  • plasma can be mentioned, and includes a solution obtained by diluting the blood fraction with physiological saline or a buffer solution from the viewpoint of measurement.
  • Albumin refers to albumin derived from humans or non-human mammals or birds. Examples of non-human mammals include ushi, horses, monkeys, dogs, magpies, mice, and the like. -Can be raised as a representative example.
  • ushi serum albumin BSA
  • HSA human serum albumin
  • ovalbumin ovalbumin
  • albumin addition it may be added to a blood-derived sample before measurement, or after an antibody is immobilized on a plate, for example, by ELISA.
  • the form of addition is not particularly limited, but it can be added after it is dissolved in physiological saline or isotonic buffer before it is desired to add in a liquid state.
  • the amount of albumin added it is desirable that the final concentration is 5% or more, for example, the final concentration is about 5 to 10%.
  • Adhesive microvesicles released from artificially activated platelets interact with albumin, and the surface of the microvesicle membrane In contrast to immunoassay methods using antibodies that utilize antigens, they are excluded from the system and do not substantially affect the measurement of circulating mic vesicles.
  • Circulating microvesicles in the original blood-derived sample are measured by an immunological measurement method using the characteristics of ordinary microvesicles that are not substantially affected by the albumin treatment. It is possible.
  • an antibody against the epitope is used to measure and quantify the microvesicle by quantifying the molecule.
  • Any technique can be used without limitation. For example, ELISA method, RIA method, or aggregation method can be exemplified.
  • Preferred antibodies according to the present invention include antibodies against Gplb-GPIX conjugates and Z or glycoproteins containing individual glycoproteins Gp3 ⁇ 4 and GpIX.
  • Other platelet-specific glycoproteins found on microvesicles include Gpla—Ila, GpIIb
  • an antibody that binds to circulating microvesicles may be labeled per se, or a labeled anti-mouse immunity that specifically binds to a second antibody, such as a mouse monoclonal antibody (first antibody). Globulin may be used.
  • a monoclonal antibody can be preferably used.
  • the label used can be any component that can emit a signal, such as an enzyme (peroxidase, alkaline phosphatase, etc.), a chromophore, a fluorophore (FITC, etc.), a radioisotope, a colored particle, a dye, a colloidal metal. And so on.
  • an enzyme peroxidase, alkaline phosphatase, etc.
  • a chromophore a fluorophore (FITC, etc.
  • FITC fluorophore
  • radioisotope a radioisotope
  • an ELISA method using BSA is taken as an example and described in detail below.
  • the blood-derived component prepared as described above is added to each well of a 96-well plate that has been previously coated with an anti-GpIX antibody and subjected to a blocking operation using skim milk or the like, for example, 10 to 1501, and then a BSA solution To a final concentration of 5% or more. Thereafter, in order to adsorb newly generated sticky microvesicles to BSA, incubation is performed at room temperature or at 37 ° C., for example, for 1 hour or longer, preferably 4 hours or longer with shaking. Then, wash thoroughly with a washing solution, for example, about 0.02 to 0.1% Tween20 / PBS.
  • a washing solution for example, about 0.02 to 0.1% Tween20 / PBS.
  • Peroki Add a sidase-labeled anti-Gplb antibody, wash thoroughly with the same washing solution, add a substrate for the enzyme, and perform color development.
  • the amount of circulating microvesicles can be quantified as the amount of chromogenic substrate generated by the enzymatic reaction using an antibody based on the membrane surface epitope Gp3 ⁇ 4—GpIX complex.
  • adhesive microvesicles generated by human manipulation are trapped in BSA, and then unreacted with the antibody used through this series of immunizations. Only microvesicles can be measured.
  • a circulating microvesicle measurement kit including various antibodies and reagents used in the above-described operation can be provided. Specifically, in order to efficiently remove adhesive microvesicles generated by human manipulation, albumin typified by BSA, or the solution, and microvesicles typified by antibodies to Gplb and GpIX Recognizing antibody against membrane surface protein complex (the recognition antibody is labeled with one or both of them), and further, if necessary, secondary antibody, enzyme substrate (using enzyme as label) Etc.) are included in the kit.
  • the recognition antibody is Piotin-binding Gplb
  • the measurement kit may contain peroxidase-labeled avidin as a secondary reagent.
  • a circulating microvesicle measuring kit containing a substrate for the peroxidase can be provided.
  • the adhesive microvesicles released by the activation of mixed platelets at the stage of the conventional blood treatment operation are pretreated with albumin for efficiency. It can be removed from the immunoassay system and circulating microvesicles originally present in blood can be measured.
  • Fig. 1 shows an absorption test of adhesive microvesicles by BSA using artificially activated samples, samples from patients with high microvesicles, and normal samples. is there.
  • Example 1
  • Circulating microvesicles from healthy adult males with normal values, whole blood collected with 3.8% citrate (titrate) was stored in a refrigerator at 4 ° C for 12 hours, and new PDMP (adhesive microphone) was used. Cycle). Refrigerated whole blood (2 ml) was centrifuged at 3000 rpm / 20 min in a table centrifuge, and the supernatant (6001) was collected to obtain an active serum sample. The activity sample was diluted x2 and x4 with saline and subjected to ELISA measurement.
  • PDMP Circulating microvesicles
  • EDTA / ACD taenoic acid-dextrose solution
  • EDTA / ACD blood was collected (2 ml) from healthy adult males with normal PDMP values, centrifuged at 3000 rpm / 20 min at room temperature in a tabletop centrifuge, and the supernatant (6001) was collected and subjected to ELISA measurement.
  • glycoproteins present on the surface of the microvesicle membrane antibodies against platelet-specific molecules CD42b (GpIb) and CD42a (GpIX) (anti-CD42b antibody; NNKY5_5, anti-CD42a antibody; KMP-9) are used.
  • a sandwich ELISA assay system was prepared. Add 96 ⁇ l of activated sample and high-value sample to 96-well microtiter plate for ELISA coated with anti-CD42a antibody (Corning: MaxiSorb), and then add 50 ⁇ 1 to each sample. PBS and 2.5%, 5%, 7.5%, and 10% BSA were added, and wells with final concentrations of 1.25%, 2.5%, 3.75%, and 5% BSA were prepared.

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Abstract

 本発明は、血液由来試料のアルブミン前処理により、人為的操作により活性化された血小板より放出されるマイクロベシクルのみを排除し、血液中マイクロベシクルのみを測定する方法に関する。

Description

粘着性マイクロべシクルの除去方法
技術分野
[0001] 本発明は、マイクロべシクル測定用の血液由来試料中において発生する粘着性マ イク口べシクルを、採血前の血液中に存在する循環性マイクロべシクルの測定に影響 しな 、ように前処理する方法および循環性マイクロべシクルの適正な測定方法およ びその測定試薬ないし測定キットに関する。
背景技術
[0002] マイクロべシクルは、ァテローム硬化症、播種性血管内血液凝固症候群などの血栓 形成時において活性ィ匕した血小板カゝら放出される。しかし、該マイクロべシクルは、 膜表面のリン脂質に凝固因子が結合'濃縮されることによる血液凝固促進作用、単 球 ·血小板 ·血管内皮細胞の活性化作用、或いは白血球 血小板 ·白血球一白血 球 ·内皮細胞 白血球の接着促進作用などが知られており、単なる血小板活性化マ 一力一ではなぐ血栓形成、動脈硬化進展に深く関わっていると考えられている(非 特許文献 1参照)。従って、血液中のマイクロべシクルの量を測定することは、前記疾 患の病状を経時的に推定する上での有力な診断手法の 1つとして重要な位置を占め ている。ところが、血小板は物理的刺激などにより容易に活性ィ匕され、これに伴いマ イク口べシクルも活性ィ匕後の血小板力 放出される。例えば、採血時の物理的ショッ クゃ血漿または血清の分離操作中に混在する血小板の活性化などにより臨床状態 を反映しないマイクロべシクルが採血後の血液由来試料中に増加することがある。こ のようなマイクロべシクルは血液由来試料中のマイクロべシクル量を押し上げ、患者 の病状を正確に判定する上で障害となる。従って、採血後に発生するマイクロべシク ルの影響を排除して、採血前の血液中のマイクロべシクルを正確に測定する方法が 求められていた。
非特許文献 1 : Nomura S. Int. J.Hematol. 74, 397-404, (2001)
発明の開示
発明が解決しょうとする課題 [0003] 本発明は、上記採血後の血液由来試料の調製時に発生するマイクロべシクル (粘 着性マイクロべシクル)による問題点を解決するために、上記粘着性マイクロべシクル の除去方法、これを利用した血液中の循環性マイクロべシクルの適正な測定方法お よび測定試薬を提供することを目的として!ヽる。
課題を解決するための手段
[0004] 本発明者らは、斯カる実情に鑑み、鋭意研究を行った結果、 BSA (ゥシ血清アルブ ミン)を代表とするアルブミンが採血後に発生するマイクロべシクル (粘着性マイクロべ シクル)と特異的に相互作用して免疫学的測定におけるその影響を排除し、採血前 に存在したマイクロべシクル (循環性マイクロべシクル)のみを免疫学的手法により適 正に測定し得ることを見出した。本発明は、前述成果に基づいて完成されたものであ り、具体的には以下の発明を提供するものである。
項 1. 血液由来試料中にアルブミンを添加することを特徴とする、採血後に発生した 血液由来試料中の粘着性マイクロべシクルの影響を排除するための血液由来試料 の前処理方法。
項 2. アルブミンが BSAである項 1に記載の方法。
項 3. 血液由来試料にアルブミンを添加して採血後に発生した血液由来試料中の 粘着性マイクロべシクルの影響を排除する工程、血液由来試料中の循環性マイクロ べシクルを免疫学的に測定する工程を含む、血液由来試料中の循環性マイクロべシ クルの免疫学的測定方法。
項 4. 循環性マイクロべシクルに対する抗体をマイクロべシクル特異的表面ェピトー プに結合させ、その結果結合した抗体レベルを測定することにより、循環性マイクロ べシクルの免疫学的測定を行う、項 3に記載の方法。
項 5. 前記表面ェピトープが循環性マイクロべシクルの糖蛋白質上にある項 4に記 載の方法。
項 6. 前記表面糖蛋白質が Gp¾— IXである項 5に記載の方法。
項 7. 抗体の検出を、抗体に結合された標識または酵素に基づいて行うことを特徴 とする項 6記載の測定方法。
項 8. 固相化した GpIXに対する抗体に循環性マイクロべシクルを結合させたのち、 該マイクロべシクル上の Gplbを認識する抗体を作用させる手順を含むことを特徴とす る項 7に記載の方法。
項 9. 少なくともアルブミン、抗 Gplb標識抗体および抗 GpIX抗体を含む血液由来試 料中の循環性マイクロべシクル測定キット。
項 10. アルブミンが BSAである項 9記載のキット。
項 11. 抗 GpIX抗体をプレートにコーティングしてなる項 9または 10に記載のキット。
[0005] 本明細書において、患者血液中に存在するマイクロべシクルを「循環性マイクロべ シクル」と呼び、採血時または採血後に人為的操作により活性化された血小板力 放 出されたマイクロべシクルをアルブミンに対する親和性より「粘着性マイクロべシクル」 と呼ぶ。
[0006] 本発明において対象となる血液由来試料とは、血液又は血液から調製された血液 成分を含む溶液を指し、血小板の除去操作を行なった試料が好ましい。具体的には 、血漿を挙げることができ、該血液画分を測定上の観点から生理食塩水又は緩衝液 などで希釈した溶液も含む。
[0007] アルブミンは、ヒト又はヒト以外の哺乳動物又は鳥類由来アルブミンを指し、ヒト以外 の哺乳動物としては、例えばゥシ、ゥマ、サル、ィヌ、ゥサギ、マウスなどを、鳥類とし ては-ヮトリを代表例として上げることができる。特に、ゥシ血清アルブミン (BSA)を代 表例として上げることができ、この他にも、ヒト血清アルブミン (HSA)、卵白アルブミンな どを好適な例として挙げることができる。
[0008] また、アルブミンの添カ卩時期に関しては、測定前に血液由来試料に添カ卩しても良く 、 ELISA法を例にとると、プレート上に抗体を固定ィ匕した後でも良い。また、添加形態 としては特に制限はないが、液体状態で添加するのが望ましぐ前もって生理食塩水 又は、等張の緩衝液に溶解した後添加することができる。該アルブミン添加量として は、終濃度 5%以上であることが望ましぐ例えば終濃度 5〜10%程度が例示される 。また、添加後粘着性マイクロべシクルをアルブミンに吸着させるために静置または 振盪処理することが好ましぐ処理時間としては 1時間以上、好適には 4時間以上ァ ルブミン処理を行なうことが望ましい。力べして、人為的に活性ィ匕された血小板より放 出された粘着性マイクロべシクルはアルブミンと相互作用し、マイクロべシクル膜表面 抗原を利用した抗体による免疫学的測定方法に対して、系外に排除され、循環性マ イク口べシクルの測定に実質的に影響しないものとなる。
[0009] 本来の血液由来試料中の循環性マイクロべシクルに関しては、該アルブミン処理に よっては実質的に影響を受けることなぐ通常のマイクロべシクルの特性を利用した 免疫学的測定方法により測定することが可能である。
[0010] 免疫学的測定方法としては、マイクロべシクルの膜表面の抗原性分子 (ェピトープ) に基づき、該ェピトープに対する抗体を利用し、該分子を定量することによるマイクロ べシクルを測定 ·定量する手法であれば制限なく用いることができる。例えば、 ELISA 法、 RIA法、或いは凝集法を例示することができる。
[0011] 本発明による好ましい抗体としては、 Gplb— GPIX複合体および Zまたは個々の糖 タンパク質 Gp¾および GpIXを含む糖タンパク質に対する抗体を挙げることができる。 マイクロべシクル上にみられる他の血小板特異的糖タンパク質には Gpla— Ila、 GpIIb
-III aおよび GpIII bが含まれる。
[0012] また、循環性マイクロべシクルに結合する抗体をそれ自体標識してもよぐあるいは 第 2抗体、例えばマウスモノクローナル抗体 (第 1抗体)に特異的に結合する標識され た抗—マウス免疫グロブリンを用いてもよい。特に、ポリクローナル抗体およびモノク ローナル抗体を問わな 、が、好ましくはモノクローナル抗体を使用することができる。 使用される標識は、信号を発することのできる任意の成分、例えば酵素 (ペルォキ シダーゼ、アルカリフォスファターゼ等)、発色団、発蛍光団(FITC等)、放射性同位 元素、着色粒子、色素、コロイド状金属などであってよい。
[0013] さらに、本発明の好ましい一態様として BSAを用いた ELISA法を例に取り以下に詳 述する。
[0014] 前述の如く調製した血液由来成分を、予め抗 GpIX抗体をコーティングしスキムミル ク等によりブロッキング操作を行った 96穴プレートの各ゥエル上に、例えば 10〜150 1添加し、次いで、 BSA溶液を最終濃度 5%以上になるように添加する。その後、新 たに発生した粘着性マイクロべシクルを BSAに吸着させるために、室温又は、 37°Cに て例えば 1時間以上、好ましくは 4時間以上振盪下インキュベートする。その後、洗浄 液例えば、 0.02〜0.1%程度の Tween20/PBSで十分に洗浄を行う。次いで、ペルォキ シダーゼ標識抗 Gplb抗体を添加し、同洗浄液にて十分洗浄後、該酵素に対する基 質を添加し、発色操作を行なう。カゝくして、循環性マイクロべシクルの量を膜表面ェピ トープ Gp¾— GpIX複合体にもとづく抗体を利用し、酵素反応により生じる発色基質 量として、定量することが可能となる。該操作を通じて、人為的操作により発生した粘 着性マイクロべシクルは BSAにトラップされた後は、当該一連の免疫操作を通じて、 使用抗体には未反応となり、 目的の本来血液中に存在する循環性マイクロべシクル のみを測定することが可能となる。
[0015] また、上述操作上使用する各種抗体、試薬などを含む循環性マイクロべシクル測 定キットを提供することができる。具体的には、人為的操作により発生する粘着性マイ クロべシクルを効率よく除去するために、 BSAを代表とするアルブミン、または該溶液 、さらには Gplbおよび GpIXに対する抗体に代表されるマイクロべシクル膜表面タンパ ク複合体に対する認識抗体 (該認識抗体は、 Vヽずれか一方もしくは両方が標識化さ れている)、さらには必要に応じて 2次抗体、酵素の基質 (標識として酵素を使用した 場合)などが該キットに含まれる。例えば、認識抗体がピオチン結合 Gplbであれば、 該測定キットには 2次試薬としてペルォキシダーゼ標識アビジンを含み得る。また、該 ペルォキシダーゼに対する基質等を含む循環性マイクロべシクル測定キットが提供 できる。
[0016] 以下の実施例から明らかなように、本発明により従来血液処理操作の段階で、混在 する血小板の活性化により放出される粘着性マイクロべシクルを、アルブミンで前処 理することにより効率的に免疫測定系から除去でき、血液中に元々存在する循環性 マイクロべシクルを測定できることが判明した。 図面の簡単な説明
[0017] [図 1]図 1は、人為的に活性ィ匕させたサンプル、マイクロべシクル高値患者由来サン プルおよび正常サンプルを用いた BSAによる粘着性マイクロべシクルの吸収試験を 示した図である。
発明を実施するための最良の形態
[0018] 以上の本発明を更に詳しく説明するため実施例を挙げる。なお、これらの実施例は 、単なる例示目的として記載されており、本発明を限定するものではない。 実施例 1
方法:
1.擬陽性 (活性化)サンプルの作製
循環性マイクロべシクル (PDMP)正常値を示す健常成人男性より 3.8%クェン酸 (チト ラート)にて採血した全血を 4°Cの冷蔵庫に 12時間保管し、新生 PDMP (粘着性マイク 口べシクル)を生成させた。冷蔵全血(2ml)を卓上遠心器にて 3000rpm/20min遠心し 、上清(600 1)を回収し、活性ィ匕サンプルとした。活性ィ匕サンプルは salineで x2と x4 倍に希釈し、 ELISA測定を行った。
2.高値検体の調製
PDMP高値を示す被験者 (成人男性)より EDTA/ACD (タエン酸—デキストロース溶 液)採血(2ml)を行い、卓上遠心器にて 3000rpm/20min室温で遠心し、上清(600 1) を回収した。高値検体は salineで x2と x4倍に希釈し、 ELISA測定を行った。
3.正常検体の調製
PDMP正常値を示す健常成人男性より EDTA/ACD採血 (2ml)を行 ヽ、卓上遠心器に て 3000rpm/20min室温で遠心し、上清(600 1)を回収し、 ELISA測定を行った。
4. ELISA測定
マイクロべシクル膜表面に存在する糖蛋白質のうち、血小板特異的な分子である C D42b (GpIb)と CD42a(GpIX)に対する抗体(抗 CD42b抗体; NNKY5_5、抗 CD42a抗 体; KMP-9)を用いたサンドイッチ ELISA測定系を作成した。抗 CD42a抗体をコーティ ングした ELISA用の 96穴マイクロタイタープレート(コ一-ング社製: MaxiSorb)に、活 性化サンプルおよび高値検体 50 μ 1を添カ卩後、各サンプルに 50 μ 1の PBSおよび 2.5% 、 5%、 7.5%、 10%の BSAを添カ卩し、終濃度 1.25%、 2.5%、 3.75%、 5%の BSAが添カ卩された w ellを作成した。室温で振盪下 4時間インキュベーションした後、サンプルを洗浄液 (0. 05% Tween 20/ PBS)で洗浄した。ピオチン化した抗 CD42b抗体を添カ卩し、ペルォキ シダーゼ標識アビジンで発色させ、 450nmの吸光度をィムノリーダーで測定した (図 1) 結果:
擬陽性を示す活性ィ匕サンプルは、測定時に wellに添加された BSA濃度依存的に測 定値が低下し、その値は BSAの最終濃度が 5%の時に正常検体近くまで下がった。 一方、元々高い PDMP値を示す高値検体は、 BSAの濃度に関係なく一定の値を示し た。これらの結果より、採血後の操作によって生じる新生 PDMPのみを、測定時終濃 度 5%の BSAを添加する事により除去できる事が確認できた。

Claims

請求の範囲
[I] 血液由来試料中にアルブミンを添加することを特徴とする、採血後に発生した血液 由来試料中の粘着性マイクロべシクルの影響を排除するための血液由来試料の前 処理方法。
[2] アルブミンが BSAである請求項 1に記載の方法。
[3] 血液由来試料にアルブミンを添加して採血後に発生した血液由来試料中の粘着性 マイクロべシクルの影響を排除する工程、血液由来試料中の循環性マイクロべシクル を免疫学的に測定する工程を含む、血液由来試料中の循環性マイクロべシクルの免 疫学的測定方法。
[4] 循環性マイクロべシクルに対する抗体をマイクロべシクル特異的表面ェピトープに結 合させ、その結果結合した抗体レベルを測定することにより、循環性マイクロべシクル の免疫学的測定を行う、請求項 3に記載の方法。
[5] 前記表面ェピトープが循環性マイクロべシクルの糖蛋白質上にある請求項 4に記載 の方法。
[6] 前記表面糖蛋白質が Gplb— IXである請求項 5に記載の方法。
[7] 抗体の検出を、抗体に結合された標識または酵素に基づいて行うことを特徴とする 請求項 6記載の測定方法。
[8] 固相化した GpIXに対する抗体に循環性マイクロべシクルを結合させたのち、該マイク 口べシクル上の Gplbを認識する抗体を作用させる手順を含むことを特徴とする請求 項 7に記載の方法。
[9] 少なくともアルブミン、抗 Gp¾標識抗体および抗 GpIX抗体を含む血液由来試料中の 循環性マイクロべシクル測定キット。
[10] アルブミンが BSAである請求項 9記載のキット。
[II] 抗 GpIX抗体をプレートにコーティングしてなる請求項 9または 10に記載のキット。
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