WO2001074380A2 - Arzneimittel enthaltend tissue inhibitor of metalloproteinases-2 (timp-2) als osteoanabol wirksame substanz - Google Patents

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    • A61P19/10—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease for osteoporosis

Definitions

  • Medicament containing tissue inhibitor of metalloproteinases-2 (TIMP-2) as an osteoanabolically active substance is a tissue inhibitor of metalloproteinases-2 (TIMP-2) as an osteoanabolically active substance
  • the invention relates to a medicament and a diagnostic agent containing tissue inhibitor of metalloproteinases-2 (TIMP-2) as an osteoanabolic peptide preparation and uses thereof.
  • TIMP-2 tissue inhibitor of metalloproteinases-2
  • TIMP-2 belongs to the family of "tissue inhibitors of metalloproteinases", of which four different peptides (TIMP-1 to -4) with different biological functions are known to date.
  • TIMP-2 The primary structure of TIMP-2 has been elucidated in various organisms such as humans (Liotta et al., 1991), rats (Roswit et al., 1992) and mice (Kishi et al., 1991).
  • the peptide contains a total of 12 cysteines, which are linked to each other via 6 cysteine bridges.
  • MMPs active matrix metalloproteinases
  • the extracellular matrix consists of a complex structure and is formed from collagen, proteoglycans, glycoproteins and glycosaminoglycans. Degradation of the extracellular matrix is essential for many biological processes such as embryogenesis, morphogenesis and tissue resorption and remodeling.
  • unregulated activity of the MMPs can result in significant tissue destruction, such as in rheumatoid arthritis (Okada et al., 1986).
  • TIMP-2 matrix metalloproteinases
  • the inhibition of matrix metalloproteinases is related to other biological functions of TIMP-2, which include, among other things, the reduction in the growth of tumor cells (Gomez et al., 1997) and the inhibition of angiogenesis (Valente et al., 1998).
  • TIMP-2 In addition to these functions, intrinsic, biological activities of TIMP-2 are also described. These include an increased formation of red blood cells (Stetler-Stevenson et al., 1992) and a mitogenic effect to different cell lines (Hayakawa et al., 1994). Furthermore, both an inhibition of bone resorption in whole bone cultures (Hill et al., 1993) and a stimulation of bone resorption by osteoclasts (Shibutani et al., 1999) could be shown in vitro.
  • Fig. 1 A) to D) The different chromatography steps for the purification of the osteoproliferative TIMP-2.
  • Fig. 2 A) Proliferative effect of recombinant human TIMP-2 on primary, fetal rat osteoblasts. B) Influence of recombinant human TIMP-2 on the mean cell diameter in the osteoblastic cell line of the mouse MC3T3-E1.
  • TIMP-2 has the amino acid sequence
  • X2 is the amino acid T or I.
  • X3 is the amino acid N or S.
  • Z 2 means -COOH, CONH 2 , substituted amide or any peptide with up to ten amino acids, and of its biologically active fragments and / or amidated, acylated, sulfated, phosphorylated, glycosylated and / or polyethylene glycol-modified derivatives to stimulate the osteoblasts responsible for bone formation.
  • TIMP-2 has a proliferative and protective effect on fetal osteoblasts.
  • a drug containing TIMP-2 with the amino acid sequence is therefore claimed according to the invention Z ⁇ SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z 2 wherein the amino acid E or D XI
  • X2 is the amino acid T or I.
  • X3 is the amino acid N or S.
  • Z 2 means -COOH, CONH 2 , substituted amide or any peptide with up to ten amino acids, and of its biologically active fragments and / or amidated, acylated, sulfated, phosphorylated, glycosylated and / or polyethylene glycol-modified derivatives.
  • human TMP-2 SEQ. ID. No 1
  • TIMP-2 of the rat SEQ. ID. No 2
  • the invention also relates to the use of TIMP-2 with the amino acid sequence Z'CSCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z 2 wherein the amino acid E or D XI
  • X2 is the amino acid T or I.
  • X3 is the amino acid N or S.
  • Z 2 means -COOH, CONH 2 , substituted amide or any peptide with up to ten amino acids, and of its biologically active fragments and / or amidated, acylated, sulfated, phosphorylated, glycosylated and / or polyethylene glycol-modified derivatives for the production of an osteoanabolic drug.
  • TIMP-2 derivatives which can be used according to the invention preferably have at least 90% sequence identity to the native sequence of TIMP-2 or the modifications mentioned.
  • TIMP-2 may be used according to the invention in combination with other growth factors and / or medicaments and in combination with medical aids, for example in the case of implants.
  • the TIMP-2 is administered in particular as a preparation in the form of injections, ointments, "slow release” capsules and similar galenical formulations.
  • the invention also relates to the use of low molecular weight substances and active substances which have comparable effects to TIMP-2 on bone cells for the production a medicine to treat diseases of the bone system such as fractures, osteopenia and osteoporosis.
  • the invention furthermore also relates to the use of a receptor for TIMP-2 on bone cells in conjunction with its associated agonists and antagonists for the manufacture of a medicament for diseases of the bone system such as fractures, osteopenia and osteoporosis.
  • the TIMP-2 to be used according to the invention is used in particular for the production of an osteoanabolic medicament for the treatment of bone defects and for improving bone regeneration, in particular after bone fractures or surgical interventions, as well as for the treatment of degenerative and metabolic bone diseases such as osteoporosis, osteopenia and osteomalacia and inflammatory bone diseases such as osteitis and osteomyelitis.
  • the invention also relates to a diagnostic agent for functional disorders of the bone containing TIMP-2 with the amino acid sequence
  • X2 is the amino acid T or I.
  • X3 is the amino acid N or S.
  • Z 2 denotes -COOH, CONH 2 , substituted amide or any peptide with up to ten amino acids, and of its biologically active fragments and / or amidated, acylated, sulfated, phosphorylated, glycosylated and / or polyethylene glycol-modified derivatives.
  • TIMP-2 as an osteoanabolic peptide was the observation that there is a different ability to regenerate bone defects depending on the age of an organism. While adult organisms are normally not able to regenerate larger bone defects through the formation of new bone tissue, a complete, bony regeneration of comparable defects takes place in younger organisms.
  • a clearly regenerative ability of the cell culture supernatant of fetal osteoblasts could also be demonstrated in vivo. Thereby, a skull defect was surgically inflicted that cannot heal with the formation of bone tissue without external stimulation. However, if a peptide extract from the cell culture supernatant of fetal, primary osteoblasts is applied to these defects, the defect is completely regenerated with the formation of new bone tissue.
  • a peptide extraction was carried out from the supernatant of fetal osteoblasts and the peptides obtained were then examined in vitro for their osteoproliferative abilities (see Example 3).
  • the peptide according to the invention was able to use preparative, semi-preparative and analytical RP chromatography based on its biological activity.
  • the purified peptide according to the invention was characterized biochemically by mass spectrometry and N-terminal sequencing.
  • the determination of the molecular mass by means of electrospray mass spectrometry gave a molecular weight of 21715 Da.
  • the N-terminal sequence analysis using Edman degradation resulted in the following sequence:
  • the substance according to the invention can be used for increased growth and for improved regeneration of bone tissue. This is particularly conceivable after bone fractures or surgical interventions, but also in the case of systemic bone diseases.
  • Cell culture supernatants were obtained from confluent cultures of primary fetal osteoblasts.
  • the osteoblasts were first isolated from the skullcap of rat fetuses by sequential digestion with collagenase and trypsin and then cultured in Minimal Essential Medium Eagle (MEM) with penicillin / streptomycin and 10% fetal calf serum (FCS). After reaching confuence, the cells were alternately kept with 10% FCS for 24 h and serum-free for 24 h. The serum-free supernatants were collected and used for further peptide isolation.
  • MEM Minimal Essential Medium Eagle
  • FCS fetal calf serum
  • TIMP-2 was isolated by various successive RP-HPLC steps which were used to fractionate the total peptide extract. Aliquots of the fractions were tested in the bioassay. The fractions were stored at -20 ° C.
  • FIG. 1 AD The different chromatography steps for the purification of the osteoproliferative TIMP-2 are shown in FIG. 1 AD. 1. Preparative chromatography
  • the serum-free cell culture supernatants were adjusted to a pH of 2.5 with HCl and to 5% acetonitrile by adding acetonitrile. Then they were first filtered through a glass fiber filter (GF6, Schleicher & Schuell) and then through a membrane filter (OE G7, 4.43 ⁇ m, Schleicher & Schuell). The material thus obtained was applied to an RP column in amounts of 1-2 l at a flow rate of 40 to 50 ml / min.
  • Buffer B 80% (w / v) acetonitrile, 10 mM HCl
  • the bioactive fractions 37-40 in the assay were separated using a further RP step.
  • Buffer B 80% (w / v) acetonitrile, 0.1% TFA
  • Buffer B 80% (w / v) acetonitrile, 0.1% TFA
  • Bioactive fractions 27-29 were separated again using RP chromatography.
  • Buffer B 80% (w / v) acetonitrile, 0.1% TFA
  • the peptide according to the invention in fraction 24 could be obtained in pure form.
  • the purified native peptide was analyzed by Edmann degradation on an ABI 494 sequencer using the standard program. The first 24 dismantling steps resulted in the following N-terminal sequence:
  • X is a cysteine residue that cannot be detected during sequencing. Taking these non-detectable cysteines into account, the sequence obtained corresponds exactly to the known sequence of TIMP-2. No side sequences were obtained.
  • Example 3 Determination of the biological activity of TIMP-2 TIMP-2 was isolated on the basis of its biological activity, and the proliferation of fetal rat osteoblasts was measured.
  • the primary osteoblasts were trypsinized and plated in a cell count of 5000 cells per well in 96-well plates in serum-free medium. The fractions to be tested were then added. After an incubation period of 48 h or 72 h, the proliferation was tested using two different methods. Various concentrations of fetal calf serum and TGFßl were used as positive controls. Cells without stimulation served as a negative control.
  • the proliferation measurement was carried out on the one hand using the Wst-1 substrate.
  • This substrate is converted into a colored product by mitochondrial enzymes in metabolically active cells, the resulting color intensity being proportional to the number of cells.
  • the color intensity is determined at a wavelength of 405 nm and a reference wavelength of over 600 nm in the ELISA reader.
  • the proliferation is measured via a direct measurement of the cell number in a Coulter Counter (CASY).
  • CASY Coulter Counter
  • Both methods showed a dose-dependent, growth-promoting effect of recombinant, human TIMP-2 on osteoblasts (FIG. 2A).
  • a significant osteoproliferative effect of TIMP-2 can be demonstrated in these in vitro experiments from concentrations of 100 ng / ml.
  • recombinant human TIMP-2 causes a decrease in the mean cell diameter in the osteoblastic cell line of the MC3T3-E1 mouse (FIG. 2B).
  • Significant effects of TIMP-2 can be demonstrated from concentrations of 100 ng / ml in this in vitro experiment.
  • a protective and proliferative effect on the osteoblastic cell line of the mouse MC3T3-E1 could be shown microscopically.
  • TIMP-2 can be regarded as an osteoanabolic factor.

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Abstract

Die Erfindung betrifft TIMP-2 als osteoanabol wirksames Peptid zur Verwendung als Arzneimittel bei der Behandlung von Knochendefekten, Knochenerkrankungen und zur Verbesserung der Knochenregeneration.

Description

Arzneimittel enthaltend Tissue Inhibitor of Metalloproteinases-2 (TIMP-2) als osteoanabol wirksame Substanz
Die Erfindung betrifft ein Arzneimittel und ein Diagnostikmittel enthaltend Tissue Inhibitor of Metalloproteinases-2 (TIMP-2) als osteoanabol wirksames Peptid-Präparat und Verwendungen desselben.
TIMP-2 gehört zur Familie der "Tissue inhibitors of metalloproteinases", von welcher bisher vier verschiedene Peptide (TIMP-1 bis -4) mit unterschiedlichen biologischen Funktionen bekannt sind.
Die Primärstruktur von TIMP-2 konnte in verschiedenen Organismen wie Mensch (Liotta et al., 1991), Ratte (Roswit et al., 1992) und Maus (Kishi et al., 1991) aufgeklärt werden. Das Peptid enthält insgesamt 12 Cysteine, die über 6 Cysteinbrücken miteinander verknüpft sind.
Zu den biologischen Funktionen von TIMP-2 gehört vor allem die Inhibition von aktiven Matrix-Metalloproteinasen (MMPs). Unter MMPs versteht man eine Gruppe von Zink-abhängigen Endoproteinasen, die in der Lage sind, die Extrazellularmatrix abzubauen. Die Extrazellularmatrix besteht aus einer komplexen Struktur und wird unter anderem aus Collagen, Proteoglycanen, Glycoproteinen und Glycosaminoglycanen gebildet. Ein Abbau der Extrazellularmatix ist essentiell für viele biologische Prozesse wie Embryogenese, Morphogenese sowie Geweberesorption und -remodellierung. Allerdings kann eine unregulierte Aktivität der MMPs zu einer beträchtlichen Zerstörung von Geweben führen wie beispielsweise bei rheumatischer Arthritis (Okada et al., 1986).
Mit der Inhibition der Matrix-Metalloproteinasen stehen weitere biologische Funktionen von TIMP-2 im Zusammenhang, wozu unter anderem die Reduktion des Wachstums von Tumorzellen (Gomez et al., 1997) sowie die Inhibition der Angiogenese (Valente et al., 1998) zählen.
Neben diesen Funktionen sind auch intrinsische, biologische Aktivitäten von TIMP-2 beschrieben. Dazu zählen eine vermehrte Bildung von roten Blutkörperchen (Stetler-Stevenson et al., 1992) sowie eine mitogene Wirkung auf verschiedene Zelllinien (Hayakawa et al., 1994). Weiterhin konnte in vitro sowohl eine Inhibition der Knochenresorption in Gesamtknochenkulturen (Hill et al., 1993), als auch eine Stimulation der Knochenresorption durch Osteoklasten (Shibutani et al., 1999) gezeigt werden.
Fig. 1 : A) bis D) Die unterschiedlichen Chromatographieschritte zur Aufreinigung des osteoproliferativen TIMP-2.
Fig. 2: A) Proliferative Wirkung von rekombinantem humanem TIMP-2 auf primäre, fetale Rattenosteoblasten. B) Einfluss von rekombinantem humanem TIMP-2 auf den mittleren Zelldurchmesser bei der osteoblastären Zellinie der Maus MC3T3-E1.
Überraschenderweise ist TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z^SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten, in der Lage eine Stimulation der für den Knochenaufbau verantwortlichen Osteoblasten zu bewirken. TIMP-2 wirkt dabei proliferativ und protektiv auf fetale Osteoblasten.
Erfindungsgemäß beansprucht wird daher ein Arzneimittel enthaltend TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz Z^SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten.
Bevorzugt werden erfindungsgemäß humanes TMP-2 (SEQ. ID. No 1) und TIMP-2 der Ratte (SEQ. ID. No 2) eingesetzt:
CSCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGPEKD IEFIYTAPSSAVCGVLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLSTTQKKSLN HRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKNINGHQAKFFACIKRSDGSCA WYRGAAPPKQEFLDIEDP (SEQ. ID. NO 1)
CSCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGPDKD IEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLSITQKKSLN HRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKSINGHQAKFFACIKRSDGSCA WYRGAAPPKQEFLDIEDP (SEQ. ID. NO 2)
Gegenstand der Erfindung ist auch die Verwendung von TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz Z'CSCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten zur Herstellung eines osteoanabolen Arzneimittels.
Erfindungsgemäß verwendbare TIMP-2 Derivate weisen vorzugsweise mindestens 90% Sequenzidentität zu der nativen Sequenz des TIMP-2 oder der genannten Modifizierungen auf.
Es kann vorteilhaft sein das erfindungsgemäß zu verwendende TIMP-2 gemäß in Kombination mit anderen Wachstumsfaktoren und / oder Arzneimitteln sowie in Kombination mit medizinischen Hilfsmitteln, beispielsweise bei Implantaten einzusetzen.
Die Verabreichung des TIMP-2 erfolgt insbesondere als Zubereitung in Form von Injektionen, Salben, "slow release"-Kapseln und ähnlichen galenischen Formulierungen.
Gegenstand der Erfindung ist auch eine Verwendung von niedermolekularen Substanzen und Wirkstoffen, welche vergleichbare Wirkungen wie TIMP-2 auf Knochenzellen aufweisen zur Herstellung eines Arzneimittels zur Behandlung von Erkrankungen des Knochensystems wie Frakturen, Osteopenie und Osteoporose.
Des Weiteren ist Gegenstand der Erfindung auch eine Verwendung eines Rezeptors für TIMP-2 auf Knochenzellen in Verbindung mit seinen dazugehörigen Agonisten und Antagonisten zur Herstellung eines Arzneimittels von Erkrankungen des Knochensystems wie Frakturen, Osteopenie und Osteoporose.
Das erfindungsgemäß zu verwendende TIMP-2 wird insbesondere zur Herstellung eines osteoanabolen Arzneimittels zur Behandlung von Knochendefekten und zur Verbesserung der Knochenregeneration, insbesondere nach Knochenfrakturen oder operativen Eingriffen, sowie zur Behandlung von degenerativen und metabolischen Knochenerkrankungen wie Osteoporose, Osteopenie und Osteomalazie und entzündlichen Knochenerkrankungen wie Ostitis und Osteomyelitis eingesetzt.
Gegenstand der Erfindung ist auch ein Diagnostikmittel bei Funktionsstörungen des Knochens enthaltend TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z^SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TTQ KKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKRS DGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten.
Die Grundlage für die Identifizierung von TIMP-2 als osteoanabolem Peptid bildete die Beobachtung, dass eine unterschiedliche Regenerationsfähigkeit von Knochendefekten in Abhängigkeit des Alters eines Organismus besteht. Während adulte Organismen normalerweise nicht in der Lage sind, größere Knochendefekte durch die Bildung von neuem Knochengewebe zu regenerieren, findet bei jüngeren Organismen eine vollständige, knöcherne Regeneration von vergleichbaren Defekten statt.
Ähnliche Beobachtungen wurden auch in vitro bei der Untersuchung von Osteoblasten erhalten : Aus fetalen Organismen isolierte Osteoblasten wachsen in Kultur problemlos und beginnen nach wenigen Tagen zu mineralisieren. Osteoblasten aus immaturen und adulten Tieren sind hingegen unter Standard-Kulturbedingungen nicht in der Lage zu proliferieren und sterben schließlich. Supplementiert man diese allein nicht lebensfähigen Zellen mit dem Überstand von fetalen Osteoblasten, so proliferieren und mineralisieren diese ähnlich wie die fetalen Zellen.
Ein deutlich regenerative Fähigkeit von dem Zellkulturüberstand fetaler Osteoblasten konnte auch in vivo gezeigt werden. Dabei wurde Ratten operativ ein Schädeldefekt zugefügt, der ohne äußere Stimulation nicht unter Bildung von Knochengewebe ausheilen kann. Appliziert man jedoch in diese Defekte einen Peptidextrakt aus dem Zellkulturüberstand von fetalen, primären Osteoblasten, so findet eine vollständige Regeneration des Defekts unter Ausbildung von neuem Knochengewebe statt.
Um die Substanz zu isolieren, die für die oben beschriebenen Effekte verantwortlich ist, wurde eine Peptidextraktion aus dem Überstand von fetalen Osteoblasten durchgeführt und die erhaltenen Peptide anschließend in vitro auf ihre osteoproliferativen Fähigkeiten hin untersucht (siehe Beispiel 3). Dabei konnte das erfindungsgemäße Peptid mittels präparativer, semipräparativer und analytischer RP-Chromatographie anhand seiner biologischen Aktivität aufgereinigt werden.
Die biochemische Charakterisierung des aufgereinigten, erfindungsgemäßen Peptids erfolgte durch Massenspektrometrie und N-terminale Sequenzierung. Die Bestimmung der Molekularmasse mittels Elektrospray- Massenspektrometrie ergab ein Molekulargewicht von 21715 Da. Die N- terminale Sequenzanalyse mittels Edman-Abbau resultierte in folgender Sequenz:
XSXSPVHPQQAFXNADVVIRAKAV
Der erfindungsgemäße Stoff kann zu einem verstärkten Wachstum und zu einer verbesserten Regeneration von Knochengewebe eingesetzt werden. Dies ist insbesondere nach Knochenfrakturen oder operativen Eingriffen, aber auch bei systemischen Knochenerkrankungen denkbar.
Die Erfindung wird anhand der folgenden Beispiele näher erläutert:
Beispiel 1 : Isolierung von TIMP-2 aus Zellkulturüberstand
Zellkulturüberstände wurden von konfluenten Kulturen primärer fetaler Osteoblasten gewonnen. Dazu wurden die Osteoblasten zunächst aus den Schädeldecken von Rattenfeten durch sequentiellen Verdau mit Collagenase und Trypsin isoliert und anschließend in Minimal Essential Medium Eagle (MEM) mit Penicillin/Streptomycin und 10% fetalem Kälberserum (FCS) kultiviert. Nach Erreichen der Konfuenz wurden die Zellen im Wechsel jeweils 24 h mit 10% FCS und 24 h serumfrei gehalten. Die serumfreien Überstände wurden dabei gesammelt und zur weiteren Peptidisolierung verwendet.
Die Isolierung von TIMP-2 erfolgte durch verschiedene aufeinanderfolgende RP-HPLC-Schritte, die zur Fraktionierung des Gesamtpeptidextraktes dienten. Aliquots der Fraktionen wurden im Bioassay getestet. Die Fraktionen wurden bei -20°C gelagert.
Die unterschiedlichen Chromatographieschritte zur Aufreinigung des osteoproliferativen TIMP-2 sind in der Fig. 1 A-D gezeigt. 1. Präparative Chromatographie
Die serumfreien Zellkulturüberstände wurden mit HCI auf einen pH von 2,5 und durch Zugabe von Acetonitril auf 5% Acetonitril eingestellt. Daraufhin wurden sie zunächst über einen Glasfaserfilter (GF6, Schleicher&Schuell) und anschließend über einen Membranfilter (OE G7, 4,43 μm, Schleicher&Schuell) filtriert. Das so erhaltene Material wurde in Mengen von 1-2 I mit einer Flussrate von 40 bis 50 ml/min auf eine RP-Säule aufgetragen.
Chromatographiebedingungen :
Säule: YMC Gel Basic (15 - 30 μm, 47 x 300 mm)
Fluss: 40 ml/min
Fraktionen: 50 ml
Puffer A: 10 mM HCI
Puffer B: 80% (w/v) Acetonitril, 10 mM HCI
Gradient: 5 - 75 % B in 47,5 min
75 - 100 % B in 5 min
Anschließend wurden Aliquots der erhaltenen Fraktionen im Bioassay getestet.
2. Semipräparative Auftrennung
Die im Assay bioaktiven Fraktionen 37-40 wurden mit Hilfe eines weiteren RP- Schrittes aufgetrennt.
Chromatographiebedingungen:
Säule: Biotek RP Silica C4 (100 A, 5 μm, 20 x 125 mm)
Fluss: 5 ml/min
Fraktion : 5 ml
Puffer A: 0,1% TFA
Puffer B: 80% (w/v) Acetonitril, 0,1% TFA
Gradient: 5 - 40 % B in 10 min 40 - 100 % B in 60 min Aliquots der erhaltenen Fraktionen wurden wiederum im Bioassay getestet.
3. Analytische Chromatographie
Die nachfolgende Fraktionierung der bioaktiven Fraktionen 22 und 23 erfolgte mit Hilfe einer weiteren RP-Chromatographie.
Chromatographiebedingungen :
Säule: YMC C18 (120 A, 5 μm, 4,6 x 250 mm)
Fluss: 0,6 ml/min
Fraktion: 0,6 ml
Puffer A: 0,1% TFA
Puffer B: 80% (w/v) Acetonitril, 0,1% TFA
Gradient: 5 - 30 % B in 4 min
30 - 55 % B in 50 min
55 - 100 % B in 5 min Aliquots der erhaltenen Fraktionen wurden im Bioassay getestet.
4. Analytische Chromatographie
Die bioaktiven Fraktionen 27-29 wurden erneut mittels RP-Chromatographie aufgetrennt.
Chromatographiebedingungen :
Säule: Phenomenex C5 (4,6 x 250 mm)
Fluss: 0,6 ml/min
Fraktion: 0,6 ml
Puffer A: 0,1% TFA
Puffer B: 80% (w/v) Acetonitril, 0,1% TFA
Gradient: 5 - 38 % B in 4 min 38 - 58 % B in 60 min
58 - 100 % B in 5 min
Im anschließenden Biotest konnte das erfindungsgemäße Peptid in Fraktion 24 in reiner Form erhalten werden.
Beispiel 2: Biochemische Analyse von TIMP-2
1. Massenbestimmung
Die Massenbestimmung des nativen, aufgereinigten Peptids wurden mit Hilfe eines ESI-Massenspektrometers durchgeführt. Es wurde eine Molekularmasse von 21715 Da erhalten. Diese stimmt sehr gut mit der theoretischen Masse der oxidierten Form von TIMP-2 überein, in der alle Cysteine über Cysteinbrücken verbrückt sind.
2. Sequenzbestimmung
Das aufgereinigte, native Peptid wurde mittels Edmann-Abbau auf einem ABI 494 Sequenzer unter Verwendung des Standard-Programms analysiert. Die ersten 24 Abbauschritte ergaben folgende N-terminale Sequenz:
XSXSPVHPQQAFXNADVVIRAKAV
Bei X handelt es sich dabei um Cysteinreste, die bei der Sequenzierung nicht detektierbar sind. Unter Berücksichtigung dieser nicht detektiebaren Cysteine, stimmt die erhaltene Sequenz exakt mit der bekannten Sequenz von TIMP-2 überein. Nebensequenzen wurden nicht erhalten.
3. Datenbankrecherche
Bei anschließendem Abgleich in der Datenbank SwissProt wurde die Sequenz eindeutig als Beginn von TIMP-2 identifiziert. Die theoretische Masse des Proteins von 21713 Da stimmt ebenfalls mit der gemessen Masse von 21715 Da überein. Das aufgereinigte Peptid konnte somit eindeutig als TIMP-2 identifiziert werden.
Beispiel 3: Bestimmung der biologischen Aktivität von TIMP-2 Die Isolierung von TIMP-2 erfolgte anhand seiner biologischen Aktivität, wobei die Proliferation fetaler Rattenosteoblasten gemessen wurde.
Dazu wurden Aliquots der erhaltenen Peptidfraktionen lyophilisiert und in serumfreiem Medium resuspendiert. Anschließend wurde ihre proliferative Wirkung auf fetale Osteoblasten getestet. Fraktionen mit proliferativer Wirkung wurden daraufhin einer weiteren chromatographischen Auftrennung unterzogen. Die unterschiedlichen Chromatographieschritte zur Aufreinigung des osteoproliferativen TIMP-2 sind in der Fig. 1 A-D gezeigt.
Für die Proliferationsmessung wurden die primären Osteoblasten trypsiniert und in einer Zellzahl von 5000 Zellen pro Well in 96-Well-Platten in serumfreiem Medium ausplattiert. Im Anschluss wurden die zu testenden Fraktionen zugegeben. Nach einer Inkubationszeit von 48 h oder 72 h wurde die Proliferation mittels zweier verschiedener Methoden getestet. Als Positivkontrollen wurden verschiedenen Konzentrationen an fetalem Kälberserum und TGFßl verwendet. Als Negativkontrolle dienten Zellen ohne Stimulation.
Die Proliferationsmessung erfolgte zum einen mit Hilfe des Wst-1-Substrates. Dieses Substrat wird von mitochondrialen Enzymen in stoffwechselaktiven Zellen zu einem farbigen Produkt umgesetzt, wobei die entstehende Farbintensität der Zellzahl proportional ist. Die Farbintensität wird bei einer Wellenlänge von 405 nm und einer Referenzwellenlänge von über 600 nm im ELISA-Reader bestimmt.
Zum anderen wird die Proliferation über eine direkte Messung der Zellzahl in einem Coulter Counter (CASY) gemessen.
Beide Methoden zeigten eine dosisabhängige, wachstumsfördernde Wirkung von rekombinantem, humanen TIMP-2 auf Osteoblasten (Fig. 2A). Eine signifikante osteoproliferative Wirkung von TIMP-2 ist ab Konzentrationen von 100 ng/ml in diesen in vitro Experimenten nachzuweisen. Darüber hinaus bewirkt rekombinantes, humanes TIMP-2 eine Abnahme des mittleren Zelldurchmessers bei der osteoblastären Zellinie der Maus MC3T3-E1 (Fig. 2B). Signifikante Wirkungen vonTIMP-2 können ab Konzentrationen von 100 ng/ml in diesem in vitro Experiment nachzuweisen werden. Weiterhin konnte mikroskopisch eine protektive und proliferative Wirkung auf die osteoblastären Zelllinie der Maus MC3T3-E1 gezeigt werden.
Da alle diese Zellen typische Knochenzellen sind, kann TIMP-2 als osteoanaboler Faktor angesehen werden.

Claims

Patentansprüche
1. Arzneimittel enthaltend TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z^SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten.
2. Verwendung von TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z^SCSPVHPQQAFCNADWIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TT QKKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKR SDGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren, Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten zur Herstellung eines osteoanabolen Arzneimittels.
3. Verwendung nach Anspruch 1, wobei das TIMP-2 Derivat mindestens 90% Sequenzidentität zu der Sequenz gemäß Anspruch 1 besitzt.
4. Verwendung von TIMP-2 gemäß Anspruch 1 bis 3 in Kombination mit anderen Wachstumsfaktoren und / oder Arzneimitteln sowie in Kombination mit medizinischen Hilfsmitteln, beispielsweise bei Implantaten.
5. Verwendung von TIMP-2 gemäß Anspruch 1 bis 4 zubereitet für Injektionen, Salben, „slow release„-Kapseln und ähnlichen galenischen Zubereitungen.
6. Verwendung von niedermolekularen Substanzen und Wirkstoffen, welche vergleichbare Wirkungen wie TIMP-2 auf Knochenzellen aufweisen zur Herstellung eines Arzneimittels zur Behandlung von Erkrankungen des Knochensystems wie Frakturen, Osteopenie und Osteoporose.
7. Verwendung eines Rezeptors für TIMP-2 auf Knochenzellen in Verbindung mit seinen dazugehörigen Agonisten und Antagonisten zur Herstellung eines Arzneimittels zur Behandlung von Erkrankungen des Knochensystems wie Frakturen, Osteopenie und Osteoporose.
8. Verwendung gemäß Anspruch 1 bis 7 zur Herstellung eines osteoanabolen Arzneimittels zur Behandlung von Knochendefekten und zur Verbesserung der Knochenregeneration, insbesondere nach Knochenfrakturen oder operativen Eingriffen, sowie zur Behandlung von degenerativen und metabolischen Knochenerkrankungen wie Osteoporose, Osteopenie und Osteomalazie und entzündlichen Knochenerkrankungen wie Ostitis und Osteomyelitis.
9. Diagnostikmittel bei Funktionsstörungen des Knochens enthaltend TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z^SCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGP X1KDIEFIYTAPSSAVCGSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TTQ KKSLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKRS DGSCAWYRGAAPP KQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren,
Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifϊzierten Derivaten.
10. Verwendung von TIMP-2 TIMP-2 mit der Aminosäuresequenz
Z1-
CSCSPVHPQQAFCNADVVIRAKAVSEKEVDSGNDIYGNPIKRIQYEIKQIKMFKGPX1K
DIEFIYTAPSSAVCGVSLDVGGKKEYLIAGKAEGDGKMHITLCDFIVPWDTLX2TTQKK
SLNHRYQMGCECKITRCPMIPCYISSPDECLWMDWVTEKX3INGHQAKFFACIKRSDG
SCAWYRGAAPPKQEFLDIEDP-Z2 wobei XI die Aminosäure E oder D
X2 die Aminosäure T oder I
X3 die Aminosäure N oder S
Z1 -NH2, substituiertes Amin oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren, Z2 -COOH, CONH2, substituiertes Amid oder ein beliebiges Peptid mit bis zu zehn Aminosäuren bedeutet, sowie von dessen biologisch aktiven Fragmenten und/oder amidierten, acylierten, sulfatierten, phosphorylierten, glykosylierten und/oder Polyethylenglykol-modifizierten Derivaten als Diagnosemittel bei Funktionsstörungen des Knochens als Diagnostikmittel.
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