WO2000042176A1 - Selektion von monoklonalen antikörpern - Google Patents

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WO2000042176A1
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dna
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Frank Breitling
Annemarie Poustka
Gerhard Moldenhauer
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Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts
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Definitions

  • the present invention relates to a method for the selection of monoclonal antibodies and agents which can be used therefor.
  • the production of monoclonal antibodies is based on a process developed by Köhler and Milstein. According to this method, B-lymphocytes are fused with myeloma cells, whereby antibody-producing hybridoma cells are obtained.
  • B-lymphocytes are fused with myeloma cells, whereby antibody-producing hybridoma cells are obtained.
  • Such a method has major disadvantages. In particular, it is difficult to select antibodies because this requires separate cultivation of hybridoma cells. The latter also leads to the fact that only a limited number of hybridoma cells are detected and therefore not all antibodies can be selected, which is particularly disadvantageous when antibodies with the highest affinity for an antigen are to be selected.
  • the present invention is therefore based on the object of providing an agent with which onoclonal antibodies can be produced, the above disadvantages being avoided.
  • the present invention is based on the applicant's knowledge that monoclonal antibodies can be presented on the cell surface of hybridoma cells by means of an antibody-binding protein. He recognized that monoclonal antibodies can be selected with this without hybridoma cells having to be cultivated separately. He also recognized that the selection of monoclonal antibodies against both a certain and many (un) certain antigens of an antigen library can take place. He also recognized that the selection of monoclonal antibodies also with regard to their affinity for certain antigens. NEN can be done.
  • the applicant's knowledge is used to provide a method for the selection of monoclonal antibodies.
  • One such method comprises the fusion of B lymphocytes with myeloma cells to antibody-producing hybridoma cells, the antibodies being presented on the cell surface of the hybridoma cells by means of an antibody-binding protein, and the binding of the antibodies to antigens.
  • B lymphocytes encompasses B lymphocytes of all types and lineages. It can also be precursors of B lymphocytes. Furthermore, the B lymphocytes can be derived from animals such as mice, rats, rabbits, etc., or from humans. Furthermore, the B lymphocytes can come from a healthy or sick organism. It is favorable if they come from an immunized organism. It is particularly favorable if the B lymphocytes code for human antibodies or parts thereof. If B-lymphocytes from animals are involved, this can be achieved by the animals being transgenic for the human antibodies or parts thereof. Such animals can be produced by customary methods, it being possible to introduce the genes for the human antibodies, the parts thereof, into embryonic stem cells, from which the animals are then generated. B lymphocytes and their precursors can be provided by conventional methods.
  • myeloma cells encompasses myeloma cells of any kind and lineage. They can also be precursors to myeloma cells. Furthermore, the myeloma cells can come from animals such as mice, rats, rabbits, etc., or from humans. Preferred myeloma cells are descendants of the mouse strains P3K, P3-X63.Ag8, X63.Ag8.653, NSO / 1, Sp2 / 0-Agl4 and FO, the rat strains Y3-Agl.2.3, YB2 / 0 and IR9834, and the human strains U266, SK007 and Karpas 707.
  • Myeloma cells and their precursors can be provided by customary methods.
  • the term "antibody-producing hybridoma cells” encompasses cells which are produced by fusion of B-lymphocytes and myeloma cells and which produce antibodies. Reference is made accordingly to the statements regarding B lymphocytes and myeloma cells.
  • Hybridoma cells can have animal and / or human nucleic acids or proteins. Hybridoma cells can be cultivated by customary methods. It may also be advantageous if the hybridoma cells (over) express recombinases, for example Ragl or Rag2, and / or mutases. This can be achieved by transfection of the hybridoma cells with appropriate expression vectors. The person skilled in the art knows such expression vectors.
  • fusion of B-lymphocytes with myeloma cells refers to any method by which these cells can be fused. A method in which the cells are fused via polyethylene glycol is favorable. Reference is made to the examples.
  • binding of the antibodies to antigens refers to any method by which the antibodies expressed on the cell surface of the hybridoma cells can bind to antigens.
  • the antigens can be carried on carriers, e.g. Magnetobeads, be bound. They can also be marked, e.g. fluorescence-labeled. The fluorescence markers are e.g. FITC, TRITC, Cy3, Cy5, Cy5.5, Cy7 and Phycoerythrin.
  • the antigens can be coupled to biotin. Bound antigens can then be removed by conventional methods, e.g. FACS analysis, are detected, whereby the corresponding antibodies are also detected. Reference is made to the examples.
  • antibody binding protein includes any protein that can bind an antibody and present on the cell surface of hybridoma cells.
  • the protein can have a signal peptide, an antibody binding site that is independent of the specificity of the antibody and a membrane anchor.
  • examples of such a protein are natural Fc binding proteins such as CD16, CD32 and CD64.
  • Protein have a combination of a signal peptide, an antibody binding site and a membrane anchor, which does not occur in nature. Such a combination can include parts of natural Fc binding proteins.
  • a signal peptide of a mouse Ig kappa chain or a mouse MHC class I k (k) molecule can also be used as a membrane anchor a transmembrane domain of PDGRF or CD52 and as an antibody binding site an antigen Binding domain of a bacterial protein, such as protein A, protein G, protein L or protein LG, have. It can be favorable if the combination has several signal peptides, antibody binding sites and / or membrane anchors. It can be particularly favorable if the antibody binding protein, in particular the antibody binding domain of the bacterial proteins, has codons which are optimized for expression in mammalian cells. The person skilled in the art knows which codons are involved.
  • the antibody binding protein of Figure 1 comprises the signal peptide of a mouse MHC class I k (k) molecule, four antibody binding domains of protein L and the transmembrane domain of CD52.
  • the DNA and amino acid sequences of the antibody binding protein are given between nucleotide numbers 682-1782.
  • the antibody binding protein of Fig. 2 comprises the signal peptide of a mouse Ig kappa chain, two antibody binding sites of protein G and the transmembrane domain of CD52.
  • the DNA and amino acid sequences of the antibody binding protein are given between nucleotide numbers 647-1420.
  • 3 comprises the signal peptide of the mouse MHC class I k (k) molecule, two antibody binding sites of protein G and the transmembrane domain of PDGFR.
  • the DNA and amino acid sequences of the antibody binding protein are given between nucleotide numbers 682-1431.
  • the antibody binding sites of all three antibody binding proteins have codons at the DNA level which are optimized for expression in mammalian cells.
  • An antibody binding protein of FIGS. 1, 2 and 3 can be one Have amino acid sequence that differs from the amino acid sequence in FIGS. 1, 2 and 3 by one or more amino acids. The differences can lie in additions, deletions, substitutions and / or inversions of individual amino acids.
  • the DNA of this antibody binding protein hybridizes with the DNA indicated in FIGS. 1, 2 and 3.
  • the term "hybridization” indicates hybridization under normal conditions, in particular at 20 ° C. below the melting point of the DNA.
  • the antibody binding protein with the changed amino acid sequence has overall or partial functions which are comparable to those of the antibody binding protein of FIGS. 1, 2 and 3.
  • nucleic acid which codes for an above antibody binding protein.
  • the nucleic acid can be an RNA or a DNA.
  • a DNA is preferred which comprises the following:
  • a DNA differing by one or more base pairs encompasses any DNA coding for an antibody binding protein of FIGS. 1, 2 or 3, which hybridizes with the DNA of FIGS. 1, 2 or 3.
  • the differences can lie in additions, deletions, substitutions and / or inversions of individual base pairs.
  • hybridization reference is made to the above statements.
  • a DNA according to the invention can be present as such or in combination with any other DNA.
  • an inventive DNA coding for an antibody binding protein can be present in an expression vector. Examples of such are known to the person skilled in the art.
  • an expression vector for E. coli these are, for example, pGEMEX, pUC derivatives, pGEX-2T, pET3b and pQE-8.
  • yeast for example, pY100 and Ycpadl are to be mentioned, while for expression in animal cells, for example, pKCR, pEFBOS, pCDM ⁇ and pCEV4 are to be mentioned.
  • the bacculovirus expression vector pAcSGHisNT-A is particularly suitable for expression in insect cells.
  • DNA according to the invention has to be inserted into an expression vector. He is also aware that this DNA can be inserted in conjunction with a DNA coding for another protein or peptide, so that the DNA according to the invention can be expressed in the form of a fusion protein.
  • FIGS. 1-3 Preferred expression vectors which contain a DNA according to the invention are given in FIGS. 1-3. These are the expression vectors pSEXHL4, pSEXllG2 * and pSEX15G2. These were deposited with the DSMZ (German Collection for Microorganisms and Cell Cultures) on December 14, 1998. In particular, pSEXHL4 was stored under DSM 12580, pSEXHG2 * under DSM 12581 and pSEXl5G2 under DSM 12582.
  • suitable cells in order to express the DNA according to the invention which is present in an expression vector.
  • suitable cells include the E. coli strains XL-1 Blue, Top 10 F, HB101, DH5alpha, xl776, JM101, JM 109, BL21 and SG 13009, the yeast strains Saccharomyces cerevisiae and Pichia pastoris, the animal cells L, NIH 3T3, FM3A, CHO, COS, Vero, HeLa, myeloma and hybridoma cells as well as the insect cells sf9.
  • Another object of the present invention is one directed against an above protein or fusion protein Antibody.
  • Such an antibody can be produced by conventional methods. It can be polyclonal or monoclonal. For its production, it is advantageous to immunize animals, in particular rabbits or chickens for a polyclonal and mice for a monoclonal antibody, with an above (fusion) protein or fragments thereof. Further “boosters" of the animals can be carried out with the same (fusion) protein or fragments thereof. The polyclonal antibody can then be obtained from the serum or egg of the animals. For the monoclonal antibody, animal spleen cells are fused with myeloma cells.
  • kits Such comprises one or more of the following components:
  • auxiliaries such as carriers, buffers, solvents, controls, markers, detection reagents for components (a) - (d)
  • the present invention is characterized in that antibodies produced by hybridoma cells are presented on the cell surface of the hybridoma cells. This is done using an antibody binding protein. Such a can be introduced into the hybridoma cells via the myeloma cells used to produce the hybridoma cells. Furthermore, the antibody binding protein can be introduced into the hybridoma cells via an expression vector encoding it. With the present invention it is possible to select antibodies. This can be done without great effort, since hybridoma cells do not have to be cultivated separately. Rather, complex mixtures of hybridoma cells can be used directly for the selection of antibodies. Antibodies can also be selected for their affinity for certain antigens. Furthermore, the present invention is suitable for selecting antibodies from hybridoma libraries not only against a specific antigen but also against many (un) specific antigens from antigen libraries.
  • the present invention provides a means by which i.a. the great time and cost problems that have previously arisen in the selection of monoclonal antibodies can be avoided.
  • FIG. 1 shows the expression vector pSEXHL4 (FIG. 1 (A)) which codes for an antibody-binding protein (FIG. 1 (B)).
  • FIG. 2 shows the expression vector PSEX11G2 * according to the invention (FIG. 2 (A)), which codes for an antibody binding protein (FIG. 2 (B)). Reference is made to the above explanations.
  • FIG. 3 shows the expression vector pSEX15G2 according to the invention (FIG. 3 (A)) which codes for an antibody-binding protein (FIG. 3 (B)). Reference is made to the above explanations.
  • Example 1 Production of myeloma cells that express an antibody binding protein on their cell surface.
  • Cells from the myeloma cell line X63-Ag8.653 are used. These cells (10 7 ) are transfected with 20-40 ⁇ g of the expression vector pSEXHG2 * according to the invention (cf. FIG. 2). Electroporation is carried out as a transfection technique, which comprises two 2 ms pulses at 500 V. The cells are incubated for 48 hours in RPMI medium containing 10% FCS at 37 ° C and 5-7.5% Co 2 . The cells are then washed with cold DPBS + 0.1% Na azide before being labeled for 45 min at 0 ° C.
  • DPBS + 0.1% Na azide plus 25% / ml goat anti-calf antibody FITC; GAB-FITC, Dianova
  • FITC goat anti-calf antibody
  • the cells are incubated in DPBS + 0.1% Na azide + 1 / ig / ml propidium iodide and, after excitation with blue light, subjected to a FACS analysis.
  • the transfected myeloma cells have green fluorescence which is caused by the transient expression of an antibody binding protein on the cell surface of the myeloma cells.
  • the myeloma cells obtained under (A) are subjected to a 14-24 day G418 selection before being incubated with GAB-FITC as described under (A) and subjected to a FACS analysis. Myeloma cells that show strong green fluorescence are subjected to further rounds of G418 selection.
  • the myeloma cell line X63-Ag8.653.3 is obtained, which stably expresses an antibody binding protein on its cell surface. lubricated.
  • Example 2 Production of hybridoma cells based on their
  • Cell surface express antibodies using an antibody binding protein.
  • Balb / c mice are immunized subcutaneously with 100 ⁇ g killed Helicobacter pylori bacteria in a complete friend's adjuvant, which contains killed Mycobacter tuberculosis bacteria. After 4 or 7 weeks there is an intraperitoneal booster injection with 100 / ⁇ g killed Helicobacter pylori / Mycobacter tuberculosis bacteria. Before each immunization or after the last immunization, 100 ⁇ l blood serum are taken from the mice and the antigen-specific immune response of the mouse is checked in the Western blot. A digest of total bacterial protein from Helicobacter pylori or Mycobacter tuberculosis is used as the antigen.
  • Bound mouse antibodies are detected by a peroxidase-conjugated goat anti-mouse antibody (Dianova). Mice with a clear antigen-specific immune response are removed and the lymphocytes are fused with cells of the myeloma cell line X63-Ag8.653.3 from Example 1 (B). The fusion occurs through polyethylene glycol (see Goding, J.W., Cell Biology, Biochemistry and Immunology, 3rd edition, (1996), Verlag Accademic Press Limited, 24-28). Hybridoma cells are obtained. These are incubated for 10-12 days in HAT medium at 37 ° C. The hybridoma cell library 2A is obtained.
  • Hexapeptides are synthesized with N-terminal biotin.
  • the peptides correspond to the 6C-terminal amino acids of 101 and 118 gene products from Helicobacter pylori and Mycobacter tuberculosis, respectively.
  • 10 3 cells of the hybridoma cell library 2A are washed with cold DPBS + 0.1% Na azide and for 45 min at 0 ° C. with DPBS + 0.1% Na azide + 10 / g / ml of the above biotin -labelled peptides incubated.
  • the cells are with cold DPBS + 0.1% Na azide and incubated for 45 min at 0 ° C with 10 / g / ml steptavidin-FITC.
  • the cells After washing with DPBS + 0.1% Na azide, the cells are incubated in DPBS + 0.1% Na azide + 1 ⁇ g / ml propidium iodide and, after excitation with blue light, subjected to a FACS analysis.
  • the hybridoma cells have green fluorescence. This fluorescence is caused by the expression of antibodies on the cell surface of the hybridoma cells. Further investigations show that the antibodies have an anti-Helicobacter pylori or Mycobacter tuberculosis activity.
  • Cells of the hybridoma cell line U98 / 6, which produce a mouse anti-urokinase antibody, are used. These cells (10 7 ) are transfected with 20-40 / g of the expression vector pSEXIIG2 * (see FIG. 2). Electroporation is carried out as a transfection technique, which comprises two 2 ms pulses at 400 V. The cells are incubated for 48 hours in incomplete AIM V medium at 37 ° C. and 5-7.5% Co 2 . The cells are then washed with cold DPBS + 0.1% Na azide before being incubated for 45 min at 0 ° C. with DPBS + 0.1% Na azide + 10 / ig / ml urokinase biotin.
  • the cells After washing with DPBS + 0.1% Na-Azid, the cells are incubated in DPBS + 0.1% Na-Azid + 10 / ig / ml streptavidin-FITC and, after excitation with blue light, subjected to a FACS analysis.
  • the transfected hybridoma cells have green fluorescence. This fluorescence is caused by the expression of antibodies on the cell surface of the hybridoma cells. Further investigations show that the antibodies have anti-urokinase activity.
  • hybridoma cells obtained are subjected to a 14-24 day G418 selection before being resubmitted as described above. were incubated with urokinase biotin and streptavidin-FICS and subjected to a FACS analysis. Hybridoma cells with strong green fluorescence are subjected to further G418 selection rounds.
  • the hybridoma cell U98 / 6.3.3 is obtained, which stably expresses antibodies on its cell surface.
  • Example 3 Selection of monoclonal antibodies which are expressed by means of an antibody binding protein on the cell surface of hybridoma cells.
  • 10 3 cells of the hybridoma cell line U98 / 6.3.3 from Example 2 (B) are mixed with 10 7 cells of the hybridoma cell line DOB.Ll.3.
  • the latter hybridoma cell line produces an antibody which recognizes the C-terminus of the human HLA-DO-ß chain. This is expressed on the cell surface using the same antibody binding protein as in the hybridoma cell line U98 / 6.3.3 from Example 2 (B).
  • the cell mixture is washed with cold DPBS + 0.1% Na azide and incubated for 45 min at 0 ° C. with DPBS + 0.1% Na azide + 10 ig / ml urokinase biotin.
  • the cell mixture After washing with DPBS + 0.1% Na azide, the cell mixture is incubated in DPBS + 0.1% Na azide + 10 / ig / ml streptavidin-FITC and, after excitation with blue light, placed in a FACS sorter.
  • Hybridoma cells with green fluorescence are selected. In further studies, these show an anti-urokinase activity.
  • the hybridoma cell lines U98 / 6.3.3 S1-S50 are obtained.
  • the DNA of FIG. 1 between nucleotide numbers 682-1782 is provided with BAMHI linkers, cleaved with BamHI and in the BamHI digested expression vector pQE-8 (Qiagen).
  • the expression plasmid pQE-8 / antibody binding protein is obtained.
  • pQE-8 / antibody binding protein is used to transform E.coli SG 13009 (see Gottesman, S. et al., J. Bacteriol. 148, (1981), 265-273).
  • the bacteria are cultivated in an LB medium with 100 ⁇ g / ml ampicillin and 25 ⁇ g / ml kanamycin and induced for 4 h with 60 / iM isopropyl- ⁇ -D-thiogalac topyranoside (IPTG).
  • IPTG 60 / iM isopropyl- ⁇ -D-thiogalac topyranoside
  • chromatography Ni-NTA resin
  • the bound fusion protein is eluted in a buffer at pH 3.5.
  • the fusion protein is subjected to 18% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and stained with Coomassie blue (cf. Thomas, JO and Kornberg, RD, J. Mol. Biol. 149 (1975), 709-733).
  • an antibody binding protein (fusion protein) according to the invention can be produced in highly pure form.
  • IgG Sepharose 6 Fast Flow Lab Pack from Pharmacia. Unbound constituents are removed by washing and the antibody binding protein according to the invention is eluted in acidic pH.
  • the antibody binding protein After its neutralization, the antibody binding protein subjected to an 18% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and stained with Coomassie blue (see above).
  • an antibody binding protein (fusion protein) according to the invention can be produced in highly pure form.
  • Example 5 Production and detection of an antibody according to the invention
  • a fusion protein according to the invention from Example 4 is subjected to an 18% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. After staining the gel with 4 M sodium acetate, an approximately 41 kD band is cut out of the gel and incubated in phosphate-buffered saline. Gel pieces are sedimented before the protein concentration of the supernatant is determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, which is followed by a Coomassie blue staining. Animals are immunized with the gel-purified fusion protein as follows:
  • the rabbit's serum is tested in an immunoblot.
  • a fusion protein according to the invention from Example 4 is subjected to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and transferred to a nitrocellulose filter (cf. Khyse-Andersen, J., J. Bioche. Biophys. Meth. 10, (1984), 203-209).
  • Western blot analysis was performed as in Bock, C.-T. et al. , Virus Genes 8, (1994), 215-229.
  • the nitrocellulose filter is incubated for one hour at 37 ° C. with a first antibody. This antibody is rabbit serum (1: 10000 in PBS). After several washing steps with PBS, the nitrocellulose filter is incubated with a second antibody.
  • This antibody is a monoclonal goat anti-rabbit IgG antibody (Dianova) (1: 5000) coupled with alkaline phosphatase in PBS. After 30 minutes of incubation at 37 ° C, there are several washing steps with PBS and then the alkaline phosphatase detection reaction with developer solution (36 / iM 5 'bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate, 400 / ⁇ M nitroblue tetrazolium, 100mM Tris -HCl, pH 9.5, 100 mM NaCl, 5 mM MgCl 2 ) at room temperature until bands become visible.
  • developer solution 36 / iM 5 'bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate, 400 / ⁇ M nitroblue tetrazolium, 100mM Tris -HCl, pH 9.5, 100 mM NaCl, 5 mM MgCl 2
  • Antibodies are extracted from egg yolk and tested in a Western blot. Polyclonal antibodies according to the invention are detected.
  • Immunization protocol for mouse monoclonal antibodies For immunization, 12% purified fusion protein in 0.25 ml PBS and 0.25 ml complete or incomplete Freund's adjuvant are used; at the 4th immunization the fusion protein is dissolved in 0.5 ml (without adjuvant).

Abstract

The present invention relates to a method for selecting monoclonal antibodies. The method comprises the fusion of B-lymphocytes with myeloma cells to form hybridome cells that produce antibodies. The antibodies are presented on the cell surface of the hybridome cells by an antibody-binding protein. The invention also relates to the binding of antibodies to antigens and to means which can be used therefor.

Description

Selektion von monoklonalen Antikörpern
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Selektion von monoklonalen Antikörpern sowie hierfür verwendbare Mittel .
Die Herstellung von monoklonalen Antikörpern beruht auf einem von Köhler und Milstein entwickelten Verfahren. Nach diesem Verfahren werden B-Lymphozyten mit Myelomzellen fusioniert, wodurch Antikörper-produzierende Hybridomzellen erhalten werden. Ein solches Verfahren weist große Nachteile auf. Insbesondere ist es aufwendig Antikörper zu selektionieren, da dies eine getrennte Kultivierung von Hybridomzellen erfordert. Letzteres führt auch dazu, daß nur eine begrenzte Zahl von Hybridomzellen erfaßt und somit auch nicht alle Antikörper selektioniert werden können, was insbesondere nachteilig ist, wenn Antikörper mit höchster Affinität für ein Antigen selektioniert werden sollen.
Der vorliegenden Erfindung liegt somit die Aufgabe zugrunde, ein Mittel bereitzustellen, mit dem onoklonale Antikörper hergestellt werden können, wobei vorstehende Nachteile vermieden werden.
Erfindungsgemäß wird dies durch die Gegenstände in den Patentansprüchen erreicht.
Die vorliegende Erfindung beruht auf den Erkenntnissen des Anmelders, daß monoklonale Antikörper auf der Zelloberfläche von Hybridomzellen mittels eines Antikörper-Bindeproteins präsentiert werden können. Er hat erkannt, daß hiermit monoklonale Antikörper selektioniert werden können, ohne daß Hybridomzellen getrennt kultiviert werden müssen. Auch hat er erkannt, daß die Selektion von monoklonalen Antikörpern sowohl gegenüber einem bestimmten als auch vielen (un) bestimmten Antigenen einer Antigen-Bibliothek erfolgen kann. Ferner hat er erkannt, daß die Selektion von monoklonalen Antikörpern auch hinsichtlich ihrer Affinitätsstärke zu bestimmten Antige- nen erfolgen kann.
Erfindungsgemäß werden die Erkenntnisse des Anmelders genutzt, ein Verfahren zur Selektion von monoklonalen Antikörpern bereitzustellen. Ein solches Verfahren umfaßt die Fusionierung von B-Lymphozyten mit Myelomzellen zu Antikörper-produzieren- den Hybridomzellen, wobei die Antikörper auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen mittels eines Antikörper-Bindeproteins präsentiert werden, und die Bindung der Antikörper an Antigene .
Der Ausdruck "B-Lymphozyten" umfaßt B-Lymphozyten jeglicher Art und Abstammung. Auch können es Vorstufen von B-Lymphozyten sein. Ferner können die B-Lymphozyten von Tieren, wie Mäusen, Ratten, Kaninchen, etc., oder dem Menschen stammen. Desweiteren können die B-Lymphozyten von einem gesunden oder kranken Organismus stammen. Günstig ist es, wenn sie von einem immunisiertem Organismus stammen. Besonders günstig ist es, wenn die B-Lymphozyten für humane Antikörper oder Teile davon kodieren. Handelt es sich um B-Lymphozyten aus Tieren, ist dies erreichbar, indem die Tiere für die humanen Antikörper bzw. Teile davon transgen sind. Die Herstellung solcher Tiere kann durch übliche Verfahren erfolgen, wobei sich anbietet, die Gene für die humanen Antikörper die Teile davon in embryonale Stammzellen einzuführen, aus denen dann die Tiere generiert werden. Die Bereitstellung von B-Lymphozyten und ihren Vorstufen kann durch übliche Verfahren erfolgen.
Der Ausdruck "Myelomzellen" umfaßt Myelomzellen jeglicher Art und Abstammung. Auch können es Vorläufer von Myelomzellen sein. Ferner können die Myelomzellen von Tieren, wie Mäusen, Ratten, Kaninchen, etc., oder dem Menschen stammen. Bevorzugte Myelomzellen sind Abkömmlinge der Maus-Stämme P3K, P3-X63.Ag8, X63.Ag8.653, NSO/1, Sp2/0-Agl4 und FO, der Ratten-Stämme Y3- Agl.2.3, YB2/0 und IR9834, und der menschlichen Stämme U266, SK007 und Karpas 707. Die Bereitstellung von Myelomzellen und ihren Vorstufen kann durch übliche Verfahren erfolgen. Der Ausdruck "Antikörper-produzierende Hybridomzellen" umfaßt Zellen, die durch Fusion von B-Lymphozyten und Myelomzellen entstehen und Antikörper produzieren. Es wird auf die Ausführungen hinsichtlich B-Lymphozyten und Myelomzellen entsprechend verwiesen. Hybridomzellen können tierische und/oder menschliche Nukleinsäuren bzw. Proteine aufweisen. Die Kultivierung von Hybridomzellen kann durch übliche Verfahren erfolgen. Ferner kann es günstig sein, wenn die Hybridomzellen Rekombinasen, z.B. Ragl oder Rag2 , und/oder Mutasen (über) exprimieren. Solches kann durch Transfektion der Hybridomzellen mit entsprechenden Expressionsvektoren erreicht werden. Der Fachmann kennt solche Expressionsvektoren.
Der Ausdruck "Fusion von B-Lymphozyten mit Myelomzellen" betrifft jegliches Verfahren, mit dem diese Zellen fusioniert werden können. Günstig ist ein Verfahren, bei dem die Zellen über Polyethylenglykol fusioniert werden. Es wird auf die Beispiele verwiesen.
Der Ausdruck "Bindung der Antikörper an Antigene" betrifft jegliches Verfahren, mit dem die auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen exprimierten Antikörper an Antigene binden können. Die Antigene können an Trägern, z.B. Magnetobeads, gebunden sein. Ferner können sie markiert, z.B. fluoreszenz- markiert, sein. Als Fluoreszenzmarker bieten sich z.B. FITC, TRITC, Cy3, Cy5, Cy5.5, Cy7 und Phycoerythrin an. Desweiteren können die Antigene an Biotin gekoppelt sein. Gebundene Antigene können dann durch übliche Verfahren, z.B. FACS-Analyse, nachgewiesen werden, wodurch auch die entsprechenden Antikörper detektiert werden. Es wird auf die Beispiele verwiesen.
Der Ausdruck "Antikörper-Bindeprotein" umfaßt jegliches Protein, das einen Antikörper binden und an der Zelloberfläche von Hybridomzellen präsentieren kann. Insbesondere kann das Protein ein Signalpeptid, eine von der Spezifität des Antikörpers unabhängige Antikörper-Bindestelle und einen Membrananker aufweisen. Beispiele für ein solches Protein sind natürliche Fc-Bindeproteine, wie CD16, CD32 und CD64. Ferner kann das Protein eine Kombination aus einem Signalpeptid, einer Antikörper-Bindestelle und einem Membrananker aufweisen, die in der Natur nicht vorkommt. Eine solche Kombination kann Teile natürlicher Fc-Bindeproteine umfassen. Ferner kann sie als Signalpeptid ein solches einer Maus-Ig-Kappa-Kette oder eines Maus-MHC-Klasse I k (k) -Moleküls , als Membrananker eine Trans- membran-Domäne von PDGRF oder CD52 und als Antikörper-Bindestelle eine Antigen-Bindungsdomäne eines bakteriellen Proteins, wie Protein A, Protein G, Protein L oder Protein LG, aufweisen. Günstig kann es sein, wenn die Kombination mehrere Signalpeptide, Antikörper-Bindestellen und/oder Membrananker aufweist. Besonders günstig kann es sein, wenn das Antikörper- Bindeprotein, insbesondere die Antikörper-Bindungsdomäne der bakteriellen Proteine Codons aufweist, die für die Expression in Säugetierzellen optimiert sind. Der Fachmann weiß, um welche Codons es sich hier handelt.
Bevorzugte Antikörper-Bindeproteine sind in den Figuren 1-3 angegeben. Das Antikörper-Bindeprotein von Fig. 1 umfaßt das Signalpeptid eines Maus-MHC-Klasse I k (k) -Moleküls , vier Antikörper-Bindungsdomänen des Proteins L und die Transmembran- Domäne von CD52. Die DNA- und Aminosäuresequenzen des Antikörper-Bindeproteins sind zwischen den Nukleotid-Nummern 682-1782 angegeben. Das Antikörper-Bindeprotein von Fig. 2 umfaßt das Signalpeptid einer Maus-Ig-Kappa-Kette, zwei Antikörper-Bindestellen des Proteins G und die Transmembran-Domäne von CD52. Die DNA- und Aminosäuresequenzen des Antikörper-Bindeproteins sind zwischen den Nukleotid-Nummern 647-1420 angegeben. Das Antikörper-Bindeprotein von Fig. 3 umfaßt das Signalpeptid des Maus-MHC-Klasse I k (k) -Moleküls , zwei Antikörper-Bindestellen des Proteins G und die Transmembran-Domäne von PDGFR. Die DNA- und Aminosäuresequenzen des Antikörper-Bindeproteins sind zwischen den Nukleotid-Nummern 682-1431 angegeben. Die Antikörper-Bindestellen aller drei Antikörper-Bindeproteine weisen auf DNA-Ebene Codons auf, die für die Expression in Säugetierzellen optimiert sind.
Ein Antikörper-Bindeprotein der Figuren 1, 2 bzw. 3 kann eine Aminosäuresequenz aufweisen, die sich durch ein oder mehrere Aminosäuren von der Aminosäuresequenz in den Figuren 1, 2 bzw. 3 unterscheidet. Die Unterschiede können in Additionen, Dele- tionen, Substitutionen und/oder Inversionen von einzelnen Aminosäuren liegen. Allerdings hybridisiert die DNA dieses Antikörper-Bindeproteins mit der in den Figuren 1, 2 bzw. 3 angegebenen DNA. Der Ausdruck "Hybridisierung" weist auf eine Hybridisierung unter üblichen Bedingungen, insbesondere bei 20°C unter dem Schmelzpunkt der DNA, hin. Ferner weist das Antikörper-Bindeprotein mit der veränderten Aminosäuresequenz Gesamt- bzw. Teilfunktionen auf, die mit jenen des Antikörper- Bindeproteins der Figuren 1, 2 bzw. 3 vergleichbar sind.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist eine Nukleinsäure, die für ein vorstehendes Antikörper-Bindeprotein kodiert. Die Nukleinsäure kann eine RNA oder eine DNA sein. Bevorzugt ist eine DNA, die folgendes umfaßt:
(a) Die DNA eines Antikörper-Bindeproteins der Figuren 1, 2 bzw. 3, eine sich hiervon durch ein oder mehrere Basenpaare unterscheidende DNA, oder
(b) eine mit der DNA von (a) über den degenerierten genetischen Code verwandte DNA.
Der Ausdruck "eine sich durch ein oder mehrere Basenpaare unterscheidende DNA" umfaßt jegliche für ein Antikörper-Bindeprotein der Figuren 1, 2 bzw. 3 kodierende DNA, die mit der DNA der Fig. 1, 2 bzw. 3 hybridisiert. Die Unterschiede können in Additionen, Deletionen, Substitutionen und/oder Inversionen von einzelnen Basenpaaren liegen. Hinsichtlich des Ausdrucks "Hybridisierung" wird auf vorstehende Ausführungen verwiesen.
Eine erfindungsgemäße DNA kann als solche oder in Kombination mit jeglicher anderen DNA vorliegen. Insbesondere kann eine erfindungsgemäße, für ein Antikörper-Bindeprotein kodierende DNA in einem Expressionsvektor vorliegen. Beispiele solcher sind dem Fachmann bekannt. Im Falle eines Expressionsvektors für E. coli sind dies z.B. pGEMEX, pUC-Derivate, pGEX-2T, pET3b und pQE-8. Für die Expression in Hefe sind z.B. pYlOO und Ycpadl zu nennen, während für die Expression in tierischen Zellen z.B. pKCR, pEFBOS, pCDMδ und pCEV4 anzugeben sind. Für die Expression in Insektenzellen eignet sich besonders der Bacculovirus-Expressionsvektor pAcSGHisNT-A.
Der Fachmann weiß, in welcher Weise die erfindungsgemäße DNA in einen Expressionsvektor inseriert werden muß. Ihm ist auch bekannt, daß diese DNA in Verbindung mit einer für ein anderes Protein bzw. Peptid kodierenden DNA inseriert werden kann, so daß die erfindungsgemäße DNA in Form eines Fusionsproteins exprimiert werden kann.
Bevorzugte Expressionsvektoren, die eine erfindungsgemäße DNA enthalten, sind in den Figuren 1-3 angegeben. Es handelt sich um die Expressionsvektoren pSEXHL4, pSEXllG2* und pSEX15G2. Diese wurden bei der DSMZ (Deutsche Sammelung für Mikroorganismen und Zellkulturen) am 14. Dezember 1998 hinterlegt. Im einzelnen wurde pSEXHL4 unter DSM 12580, pSEXHG2* unter DSM 12581 und pSEXl5G2 unter DSM 12582 hinterlegt.
Der Fachmann kennt geeignete Zellen, um die erfindungsgemäße, in einem Expressionsvektor vorliegende DNA zu exprimieren. Beispiele solcher Zellen umfassen die E. coli-Stämme XL-1 Blue, Top 10 F, HB101, DH5alpha, xl776, JM101, JM 109, BL21 und SG 13009, die Hefe-Stämme Saccharomyces cerevisiae und Pichia pastoris, die tierischen Zellen L, NIH 3T3, FM3A, CHO, COS, Vero, HeLa, Myelom- und Hybridomzellen sowie die Insekten- zellen sf9.
Desweiteren kennt der Fachmann Bedingungen, transformierte bzw. transfizierte Zellen zu kultivieren. Auch sind ihm Verfahren bekannt, das durch die erfindungsgemäße DNA exprimierte Protein bzw. Fusionsprotein zu isolieren und zu reinigen.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein gegen ein vorstehendes Protein bzw. Fusionsprotein gerichteter Antikörper. Ein solcher Antikörper kann durch übliche Verfahren hergestellt werden. Er kann polyklonal bzw. monoklonal sein. Zu seiner Herstellung ist es günstig, Tiere, insbesondere Kaninchen oder Hühner für einen polyklonalen und Mäuse für einen monoklonalen Antikörper, mit einem vorstehenden (Fu- sions) protein oder Fragmenten davon zu immunisieren. Weitere "Booster" der Tiere können mit dem gleichen (Fusions) protein oder Fragmenten davon erfolgen. Der polyklonale Antikörper kann dann aus dem Serum bzw. Ei der Tiere erhalten werden. Für den monoklonalen Antikörper werden Milzzellen der Tiere mit Myelomzellen fusioniert.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Kit. Ein solcher umfaßt eine oder mehrere der folgenden Komponenten:
(a) eine erfindungsgemäße DNA,
(b) eine eine erfindungsgemäße DNA exprimierende Zelle,
(c) ein erfindungsgemäßes Antikörper-Bindeprotein,
(d) einen erfindungsgemäßen Antikörper, sowie
(e) übliche Hilfsstoffe, wie Träger, Puffer, Lösungsmittel, Kontrollen, Marker, Nachweisreagentien für die Komponenten (a) - (d)
Von den einzelnen Komponenten können jeweils ein oder mehrere Vertreter vorliegen. Hinsichtlich der einzelnen Ausdrücke wird auf vorstehende Ausführungen verwiesen. Diese gelten hier entsprechend .
Die vorliegende Erfindung zeichnet sich dadurch aus, daß von Hybridomzellen produzierte Antikörper auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen präsentiert werden. Dies erfolgt über ein Antikörper-Bindeprotein. Ein solches kann über die zur Herstellung der Hybridomzellen verwendeten Myelomzellen in die Hybridomzellen eingeführt werden. Ferner kann das Antikörper- Bindeprotein über einen es kodierenden Expressionsvektor in die Hybridomzellen eingeführt werden. Mit der vorliegenden Erfindung ist es möglich, Antikörper zu selektionieren. Dies kann ohne großen Aufwand erfolgen, da Hybridomzellen nicht getrennt kultiviert werden müssen. Vielmehr können komplexe Gemische von Hybridomzellen unmittelbar zur Selektion von Antikörpern verwendet werden. Ferner können Antikörper hinsichtlich ihrer Äffinitätsstärke zu bestimmten Antigenen selektioniert werden. Desweiteren eignet sich die vorliegende Erfindung Antikörper von Hybridomzell-Bibliotheken nicht nur gegenüber einem bestimmten Antigen, sondern auch gegenüber vielen (un) bestimmten Antigenen von Antigen-Biblio- theken zu selektionieren.
Somit liefert die vorliegende Erfindung ein Mittel, mit dem u.a. die großen Zeit- und Kosten-Probleme vermieden werden können, die bei der Selektion von monoklonalen Antikörpern bisher auftraten.
Kurze Beschreibung der Zeichnungen
Fig. 1 zeigt den erfindungsgemäßen Expressionsvektor pSEXHL4 (Fig. 1 (A) ) , der für ein Antikörper-Bindeprotein kodiert (Fig. 1(B)) . Es wird auf vorstehende Ausführungen verwiesen.
Fig. 2 zeigt den erfindungsgemäßen Expressionsvektor PSEX11G2* (Fig. 2 (A) ) , der für ein Antikörper-Bindeprotein kodiert (Fig. 2 (B) ) . Es wird auf vorstehende Ausführungen verwiesen.
Fig. 3 zeigt den erfindungsgemäßen Expressionsvektor pSEX15G2 (Fig. 3 (A) ) , der für ein Antikörper-Bindeprotein kodiert (Fig. 3 (B) ) . Es wird auf vorstehende Ausführungen verwiesen.
Die Erfindung wird durch die nachfolgenden Beispiele erläutert . Beispiel 1: Herstellung von Myelomzellen, die ein Antikörper-Bindeprotein auf ihrer Zelloberfläche ex- primieren.
(A) Transiente Expression
Es werden Zellen der Myelomzellinie X63-Ag8.653 verwendet. Diese Zellen (107) werden mit 20-40 μg des erfindungsgemäßen Expressionsvektors pSEXHG2* (vgl. Fig. 2) transfiziert . Als Transfektionstechnik wird eine Elektroporation durchgeführt, die zwei Pulse zu 2 ms bei 500 V umfaßt. Die Zellen werden 48 h in RPMI-Medium, das 10 % FCS enthält, bei 37°C und 5-7,5 % Co2 inkubiert. Danach werden die Zellen mit kaltem DPBS + 0.1 % Na-Azid gewaschen, bevor sie 45 min bei 0°C mit DPBS + 0.1 % Na-Azid plus 25 /ig/ml Ziege anti-Kalb Antikörper (FITC markiert; GAB-FITC, Dianova) inkubiert werden. Nach Waschen mit DPBS + 0.1 % Na-Azid werden die Zellen in DPBS + 0.1 % Na-Azid + 1 /ig/ml Propidium- Jodid inkubiert und nach Anregung mit Blaulicht einer FACS- Analyse unterzogen.
Es zeigt sich, daß die transfizierten Myelomzellen eine grüne Fluoreszenz aufweisen, die durch die transiente Expression eines Antikörper-Bindeproteins auf der Zelloberfläche der Myelomzellen bedingt ist.
(B) Stabile Expression
Die unter (A) erhaltenen Myelomzellen werden einer 14-24 tägi- gen G418-Selektion unterzogen, bevor sie, wie unter (A) beschrieben, mit GAB-FITC inkubiert und einer FACS-Analyse unterzogen werden. Myelomzellen, die eine starke grüne Fluoreszenz aufweisen, werden weiteren G418-Selektionsrunden unterzogen.
Es wird die Myelomzelline X63-Ag8.653.3 erhalten, die stabil ein Antikörper-Bindeprotein auf ihrer Zelloberfläche expri- miert .
Beispiel 2 : Herstellung von Hybridomzellen, die auf ihrer
Zelloberfläche Antikörper mittels eines Antikörper-Bindeproteins exprimieren.
(A)
Es werden 10 Balb/c-Mäuse subkutan mit je 100 /ig abgetöteten Helicobacter pylori Bakterien in komplettem Freund' sehen Adju- vans, das abgetötete Mycobacter tuberculosis Bakterien enthält, immunisiert. Nach 4 bzw. 7 Wochen erfolgt jeweils eine intraperitoneale Booster-In ektion mit 100/ιg abgetöteter Helicobacter pylori-/Mycobacter tuberculosis-Bakterien. Den Mäusen werden vor jeder Immunisierung bzw. nach der letzten Immunisierung jeweils 100 μl Blutserum entnommen und im Westernblot wird die Antigenspezifische Immunantwort der Maus überprüft. Als Antigen wird ein Aufschluß von bakteriellem Gesamtprotein von Helicobacter pylori bzw. Mycobacter tuberculosis verwendet. Der Nachweis gebundener Maus-Antikörper wird durch einen Peroxidase-konjugierten Ziege anti-Maus-Antikörper (Dianova) geführt. Mäusen mit einer deutlichen Antigen-spezifischen Immunantwort wird die Milz entnommen und die Lymphozyten werden mit Zellen der Myelomzelline X63-Ag8.653.3 von Beispiel 1 (B) fusioniert. Die Fusion erfolgt durch Polyethylenglykol (vgl. Goding, J.W., Cell Biology, Biochemistry and Immunology, 3. Auflage, (1996), Verlag Accademic Press Limited, 24-28). Es werden Hybridomzellen erhalten. Diese werden 10-12 Tage in HAT-Medium bei 37°C inkubiert. Es wird die Hybridomzell-Biblio- thek 2A erhalten.
Es werden Hexapeptide mit N-terminalem Biotin synthetisiert. Die Peptide entsprechen den 6C-terminalen Aminosäuren von 101 bzw. 118 Genprodukten von Helicobacter pylori bzw. Mycobacter tuberculosis. Ferner werden 103 Zellen der Hybridomzell-Biblio- thek 2A mit kaltem DPBS + 0 , 1 % Na-Azid gewaschen und 45 min bei 0°C mit DPBS + 0,1 % Na-Azid + 10/g/ml der vorstehenden Biotin-markierten Peptide inkubiert. Die Zellen werden mit kaltem DPBS + 0,1 % Na-Azid gewaschen und 45 min bei 0°C mit 10/g/ml Steptavidin-FITC inkubiert. Nach Waschen mit DPBS + 0,1 % Na-Azid werden die Zellen in DPBS + 0,1 % Na-Azid + lμg/ml Propidium-Jodid inkubiert und nach Anregung mit Blaulicht einer FACS-Analyse unterzogen.
Es zeigt sich, daß die Hybridomzellen eine grüne Fluoreszenz aufweisen. Diese Fluoreszenz ist durch die Expression von Antikörpern auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen bedingt. Weiterführende Untersuchungen zeigen, daß die Antikörper eine anti-Helicobacter pylori- bzw. Mycobacter tuberculosis-Aktivi- tät aufweisen.
(B)
Es werden Zellen der Hybridomzellinie U98/6, die einen Maus- anti-Urokinase-Antikörper produzieren, verwendet. Diese Zellen (107) werden mit 20-40/g des erfindungsgemäßen Expressionsvektors pSEXllG2* (vgl. Fig. 2) transfiziert . Als Transfektionstechnik wird eine Elektroporation durchgeführt, die zwei Pulse zu 2 ms bei 400 V umfaßt. Die Zellen werden 48 h in inkomplettem AIM V-Medium bei 37°C und 5-7,5 % Co2 inkubiert. Danach werden die Zellen mit kaltem DPBS + 0.1 % Na-Azid gewaschen, bevor sie 45 min bei 0°C mit DPBS + 0.1 % Na-Azid + 10 /ig/ml Urokinase-Biotin inkubiert werden. Nach Waschen mit DPBS + 0.1 % Na-Azid werden die Zellen in DPBS + 0.1 % Na-Azid + 10 /ig/ml Streptavidin-FITC inkubiert und nach Anregung mit Blaulicht einer FACS-Analyse unterzogen.
Es zeigt sich, daß die transfizierten Hybridomzellen eine grüne Fluoreszenz aufweisen. Diese Fluoreszenz ist durch die Expression von Antikörpern auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen bedingt. Weiterführende Untersuchungen zeigen, daß die Antikörper eine anti-Urokinase-Aktivität aufweisen.
Die erhaltenen Hybridomzellen werden einer 14-24 tägigen G418- Selektion unterzogen, bevor sie erneut, wie vorstehend be- schrieben mit Urokinase-Biotin und Streptavidin-FICS inkubiert und einer FACS-Analyse unterzogen werden. Hybridomzellen, die eine starke grüne Fluoreszenz aufweisen, werden weiteren G418- Selektionsrunden unterzogen.
Es wird die Hybridomzelline U98/6.3.3 erhalten, die stabil Antikörper auf ihrer Zelloberfläche exprimiert.
Beispiel 3 : Selektion von monoklonalen Antikörpern, die mittels eines Antikörper-Bindeproteins auf der Zelloberfläche von Hybridomzellen exprimiert werden.
103 Zellen der Hybridomzellinie U98/6.3.3 von Beispiel 2 (B) werden mit 107 Zellen der Hybridomzellinie DOB.Ll.3 gemischt. Letztere Hybridomzellinie produziert einen den C-Terminus der humanen HLA-DO-ß-Kette erkennenden Antikörper. Dieser wird mittels des gleichen Antikörper-Bindeproteins wie in der Hybridomzellinie U98/6.3.3 von Beispiel 2 (B) auf der Zelloberfläche exprimiert. Das Zellgemisch wird mit kaltem DPBS + 0,1 % Na-Azid gewaschen und 45 min bei 0°C mit DPBS + 0,1 % Na- Azid + 10 ig/ml Urokinase-Biotin inkubiert. Nach Waschen mit DPBS + 0,1 % Na-Azid wird das Zellgemisch in DPBS + 0 , 1 % Na- Azid + 10 /ig/ml Streptavidin-FITC inkubiert und nach Anregung mit Blaulicht in einen FACS-Sorter gegeben.
Es werden Hybridomzellen mit grüner Fluoreszenz selektioniert. In weiterführenden Untersuchungen zeigen diese eine anti-Uro- kinase-Aktivität . Es werden die Hybridomzellinien U98/6.3.3 S1-S50 erhalten.
Beispiel 4: Herstellung und Reinigung eines erfindungsgemäßen Antikörper-Bindeproteins
(A)
Die DNA von Fig. 1 zwischen den Nukleotid-Nummern 682-1782 wird mit BAMHI-Linkern versehen, mit BamHI nachgespalten und in den mit BamHI gespaltenen Expressionsvektors pQE-8 (Qiagen) inseriert. Es wird das Expressionsplasmid pQE-8/Antikörper- Bindeprotein erhalten. Ein solches kodiert für ein Fusionsprotein aus 6 Histidin-Resten (N-Terminuspartner) und dem erfindungsgemäßen Antikörper-Bindeprotein von Fig. 1 (C-Termi- nuspartner) . pQE-8/Antikörper-Bindeprotein wird zur Transformation von E.coli SG 13009 (vgl. Gottesman, S. et al . , J. Bacteriol. 148, (1981), 265-273) verwendet. Die Bakterien werden in einem LB-Medium mit 100/ιg/ml Ampicillin und 25ιg/ml Kanamycin kultiviert und 4 h mit 60/iM Isopropyl-ß-D-Thiogalac- topyranosid (IPTG) induziert. Durch Zugabe von 6 M Guani- dinhydrochlorid wird eine Lyse der Bakterien erreicht, anschließend wird mit dem Lysat eine Chromatographie (Ni-NTA- Resin) in Gegenwart von 8 M Harnstoff entsprechend der Angaben des Herstellers (Qiagen) des Chromatographie-Materials durchgeführt. Das gebundene Fusionsprotein wird in einem Puffer mit pH 3 , 5 eluiert. Nach seiner Neutralisierung wird das Fusionsprotein einer 18 % SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese unterworfen und mit Coomassie-Blau angefärbt (vgl. Thomas, J.O. und Kornberg, R.D. , J.Mol.Biol. 149 (1975), 709-733).
Es zeigt sich, daß ein erfindungsgemäßes Antikörper-Bindeprotein (Fusionsprotein) in hochreiner Form hergestellt werden kann.
(B)
108 Zellen der in Beispiel 1 (B) erhaltenen Myelomzelllinie X63-Ag8.653.3 werden mit PBS gewaschen, in PBS + 1 % Tween 20 aufgenommen und auf Eis inkubiert. Partikuläre Zellbestandteile werden durch Zentrifugation bei
30.000g abgetrennt und der Überstand wird auf eine IgG Sepha- rose Säule (IgG Sepharose 6 Fast Flow Lab Pack von Pharmacia) gegeben. Ungebundene Bestandteile werden durch Waschen entfernt und das erfindungsgemäße Antikörper-Bindeprotein wird in saurem pH eluiert.
Nach seiner Neutralisierung wird das Antikörper-Bindeprotein einer 18 % SDS-Polyacrylamid-Gelelectrophorese unterworfen und mit Coomassie-Blau angefärbt (vgl. vorstehend).
Es zeigte sich, daß ein erfindungsgemäßes Antikörper-Bindeprotein (Fusionsprotein) in hochreiner Form hergestellt werden kann.
Beispiel 5: Herstellung und Nachweis eines erfindungsgemäßen Antikörpers
Ein erfindungsgemäßes Fusionsprotein von Beispiel 4 wird einer 18 % SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese unterzogen. Nach Anfärbung des Gels mit 4 M Natriumacetat wird eine ca. 41 kD Bande aus dem Gel herausgeschnitten und in Phosphat gepufferter Kochsalzlösung inkubiert. Gel-Stücke werden sedimentiert , bevor die Proteinkonzentration des Überstandes durch eine SDS- Polyacrylamid-Gelelektrophorese, der eine Coomassie-Blau-Fär- bung folgt, bestimmt wird. Mit dem Gel-gereinigten Fusionsprotein werden Tiere wie folgt immunisiert:
Immunisierungsprotokoll für polyklonale Antikörper im Kaninchen
Pro Immunisierung werden 35 /ig gereinigtes Fusionsprotein in 0,7 ml PBS und 0,7 ml komplettem bzw. inkomplettem Freund's Adjuvans eingesetzt.
Tag 0: 1. Immunisierung (komplettes Freund's Adjuvans) Tag 14: 2. Immunisierung (inkomplettes Freund's Adjuvans; icFA)
Tag 28 3. Immunisierung (icFA) Tag 56 4. Immunisierung (icFA) Tag 80 Ausbluten
Das Serum des Kaninchens wird im Immunoblot getestet. Hierzu wird ein erfindungsgemäßes Fusionsprotein von Beispiel 4 einer SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese unterzogen und auf ein Nitrocellulosefilter übertragen (vgl. Khyse-Andersen, J., J. Bioche . Biophys. Meth. 10, (1984), 203-209). Die Western Blot-Analyse wurde wie in Bock, C.-T. et al . , Virus Genes 8, (1994), 215-229, beschrieben, durchgeführt. Hierzu wird das Nitrocellulosefilter eine Stunde bei 37°C mit einem ersten Antikörper inkubiert. Dieser Antikörper ist das Serum des Kaninchens (1:10000 in PBS) . Nach mehreren Waschschritten mit PBS wird das Nitrocellulosefilter mit einem zweiten Antikörper inkubiert. Dieser Antikörper ist ein mit alkalischer Phospha- tase gekoppelter monoklonaler Ziege Anti-Kaninchen-IgG-Anti- körper (Dianova) (1:5000) in PBS. Nach 30-minütiger Inkubation bei 37°C folgen mehrere Waschschritte mit PBS und anschließend die alkalische Phosphatase-Nachweisreaktion mit Entwicklerlösung (36/iM 5' Bromo-4-chloro-3-indolylphosphat , 400/ιM Nitro- blau-tetrazolium, lOOmM Tris-HCl, pH 9.5, 100 mM NaCl , 5 mM MgCl2) bei Raumtemperatur, bis Banden sichtbar werden.
Es zeigt sich, daß erfindungsgemäße, polyklonale Antikörper hergestellt werden können.
Immunisierungsprotokoll für polyklonale Antikörper im Huhn
Pro Immunisierung werden 40/ιg gereinigtes Fusionsprotein in 0,8 ml PBS und 0,8 ml komplettem bzw. inkomplettem Freund's Adjuvans eingesetzt.
Tag 0. 1. Immunisierung (komplettes Freund's Adjuvans) Tag 28: 2. Immunisierung (inkomplettes Freund's Adjuvans; icFA) Tag 50: 3. Immunisierung (icFA)
Aus Eigelb werden Antikörper extrahiert und im Western Blot getestet. Es werden erfindungsgemäße, polyklonale Antikörper nachgewiesen .
Immunisierungsprotokoll für monoklonale Antikörper der Maus Pro Immunisierung werden 12/ig gereinigtes Fusionsprotein in 0,25 ml PBS und 0,25 ml komplettem bzw. inkomplettem Freund's Adjuvans eingesetzt; bei der 4. Immunisierung ist das Fusionsprotein in 0,5 ml (ohne Adjuvans) gelöst.
Tag 0. 1. Immunisierung (komplettes Freund's Adjuvans) Tag 28: 2. Immunisierung (inkomplettes Freund's Adjuvans; icFA)
Tag 56 3. Immunisierung (icFA) Tag 84 4. Immunisierung (PBS) Tag 87 Fusion
Überstände von Hybridomen werden im Western Blot getestet. Erfindungsgemäße, monoklonale Antikörper werden nachgewiesen.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur Selektion von monoklonalen Antikörpern, umfassend die Fusion von B-Lymphozyten mit Myelomzellen zu Antikörper-produzierenden Hybridomzellen, wobei die Antikörper auf der Zelloberfläche der Hybridomzellen mittels eines Antikörper-Bindeproteins präsentiert werden, und die Bindung der Antikörper an Antigene.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Antikörper-Bindeprotein ein Signalpeptid, eine von der Spezifität des Antikörpers unabhängige Antikörper-Bindestelle und einen
Membrananker umfaßt .
3. Verfahren nach Anspruch 2, wobei das Antikörper-Bindeprotein ein Fc-Bindeprotein oder Teile davon umfaßt.
4. Verfahren nach Anspruch 2 , wobei das Antikörper-Bindeprotein eine Kombination aus Fc-Bindeproteinen oder Teilen davon umfaßt.
5. Verfahren nach Anspruch 3 oder 4, wobei das Fc-Bindeprotein CD16, CD32 oder CD64 ist.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 - 5, wobei das Antikörper-Bindeprotein eine Antikörper-Bindungsdomäne der Proteine A, G, L oder LG umfaßt.
7. Verfahren nach Anspruch 2, wobei das Antikörper-Bindeprotein eine Kombination aus dem Signalpeptid einer Maus- Ig-Kappa-Kette oder eines Maus-MHC-Klasse I k(k)-Mole- küls, einer Antikörper-Bindestelle der Proteine A, G, L oder LG und der Transmembran-Domäne von PDGFR oder CD52 umfaßt .
8. Verfahren nach Anspruch 7, wobei das Antikörper-Binde- protein jenes von Fig. 1, Fig. 2 oder Fig. 3 ist.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-8, wobei die Hybridomzellen Ragl und/oder Rag2 (über) exprimieren.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-9, wobei die Antige- ne von einer Antigen-Bibliothek stammen.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-10, wobei die Antigene an einen Träger gebunden sind.
12. Verfahren nach Anspruch 11, wobei der Träger Magnetobeads umfaßt .
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-10, wobei die Antigene eine Fluoreszenz- oder Biotinmarkierung umfassen.
14. Verfahren nach Anspruch 13, wobei die Fluoreszenzmarkierung FITC, TRITC, Cy3, Cy5 , Cy5.5 , Cy7 und Phycoerythrin umfaßt .
15. Antikörper-Bindeprotein, wobei das Antikörper-Bindeprotein eine Kombination aus dem Signalpeptid einer Maus-Ig- Kappa-Kette oder eines Maus-MHC-Klasse I k (k) -Moleküls , einer Antikörper-Bindestelle der Proteine A, G, L oder LG und der Transmembran-Domäne von PDGFR oder CD52 umfaßt.
16. Antikörper-Bindeprotein nach Anspruch 15, wobei das Antikörper-Bindeprotein die Aminosäuresequenz von Fig. 1, Fig. 2 bzw. Fig. 3 oder eine hiervon durch ein oder mehrere Aminosäuren unterschiedliche Aminosäuresequenz um- faßt .
17. DNA, kodierend für das Antikörper-Bindeprotein nach Anspruch 16, umfassend:
(a) die DNA eines Antikörper-Bindeproteins der Figuren 1, 2 bzw. 3, eine sich hiervon durch ein oder mehrere Basenpaare unterscheidende DNA, oder
(b) eine mit der DNA von (a) über den degenerierten Code verwandte DNA.
18. Expressionsvektor, kodierend für die DNA nach Anspruch 17.
19. Zellen, enthaltend den Expressionsvektor nach Anspruch 18.
20. Antikörper, gerichtet gegen das Antikörper-Bindeprotein nach Anspruch 15 oder 16.
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