TW202402318A - 益生質組成物及其減重用途 - Google Patents
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Abstract
一種益生質組成物，其包括紅茶發酵物及生物活性物質。其中，生物活性物質是大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合。紅茶發酵物是由下列步驟所製得：在50℃至100℃下以水萃取紅玉紅茶（
Camellia sinensis）的茶葉0.5小時至3小時以得到紅茶萃取液，以及以啤酒酵母菌（
Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（
Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（
Lactobacillus gasseri）BCRC910886與木質醋酸菌（
Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335發酵紅茶萃取液12天至25天以得到紅茶發酵物。
Description
本發明涉及一種益生質組成物及其用途，將紅茶發酵物及生物活性質用於製備益生質組成物，以及將益生質組成物用於減重。
益生質（Prebiotics），又稱益生元、益菌生，一般為天然食物中不易被人體酵素消化的多糖成分。依據國際益生菌及益生質科學協會（International Scientific Association for Probiotics and Prebiotics，ISAPP）於2017年《Nature report》對於益生質的共同聲明中，其定義為「能選擇性地被與宿主共生的微生物利用，因而促進宿主健康的物質」。
消化系統（主要是大腸）中的益生菌（Probiotics）可利用益生質在其在菌群生長、擴張和代謝生成短鏈脂肪酸（Short Chain Fatty Acids, SFCAs）上。
也就是說，益生質能幫助益生菌生長，並有助於抑制腸道中的壞菌。腸道中的益生菌亦會將益生質代謝生成短鏈脂肪酸，進而提供給益生菌和宿主作為能量來源。
有鑑於此，本發明提供一種益生質組成物，其包括紅茶發酵物及生物活性物質，並可促進受體腸道內哈夫尼亞菌生長的能力，並用於幫助受體減重。
在一些實施例中，一種益生質組成物，其包括紅茶發酵物及生物活性物質。其中，生物活性物質是大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合。紅茶發酵物是由下列步驟所製得：在50℃至100℃下以水萃取紅玉紅茶（
Camellia sinensis）的茶葉0.5至3小時以得到紅茶萃取液，以及以啤酒酵母菌（
Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（
Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（
Lactobacillus gasseri）BCRC910886與木質醋酸菌（
Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335發酵紅茶萃取液12天至25天以得到紅茶發酵物。
在一些實施例中，一種益生質組成物用於製備減重組合物的用途，益生質組成物包括紅茶發酵物及生物活性物質。其中，生物活性物質是大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合。紅茶發酵物是由下列步驟所製得：在50℃至100℃下以水萃取紅玉紅茶（
Camellia sinensis）的茶葉0.5至3小時以得到紅茶萃取液，以及以啤酒酵母菌（
Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（
Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（
Lactobacillus gasseri）BCRC910886與木質醋酸菌（
Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335發酵紅茶萃取液12天至25天以得到紅茶發酵物。
在一些實施例中，前述紅茶發酵物及生物活性物質的重量比為9：1至1：9。
在一些實施例中，前述益生質組成物更包括赤藻糖醇、阿拉伯膠或其組合。
在一些實施例中，前述益生質組成物包括前述紅茶發酵物、生物活性物質，以及赤藻糖醇或阿拉伯膠，其中紅茶發酵物、生物活性物質，以及赤藻糖醇或阿拉伯膠的重量比為1：1：0.05-2。
在一些實施例中，前述益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質及赤藻糖醇，其中紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇的重量比為1：1：0.6-2。
在一些實施例中，前述益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質及阿拉伯膠，其中紅茶發酵物、生物活性物質、阿拉伯膠的重量比為1：1：0.05-0.2。
在一些實施例中，前述益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠，其中紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的重量比為1：1：0.6-2：0.05-0.2。
在一些實施例中，前述益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠，其中紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的重量比為3：3：3.6：0.4。
在一些實施例中，前述生物活性物質為大豆胜肽粉。
在一些實施例中，前述益生質組成物具有促進哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）生長的能力。
在一些實施例中，前述益生質組成物具有提升腸道短鏈脂肪酸含量的能力。
在一些實施例中，前述益生質組成物具有抑制受體食慾的能力。
在一些實施例中，前述益生質組成物具有減少受體的體重、體脂肪及腰圍的能力。
在一些實施例中，前述體脂肪為軀幹體脂肪。
在一些實施例中，前述減重組合物為膠囊型態，且含有500克的益生質組成物。
在一些實施例中，前述膠囊型態的減重組合物的使用量為每日2次。
綜上，任一實施例的益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質，且具有促進哈夫尼亞菌、提升腸道短鏈脂肪酸含量、抑制受體食慾、減少受體的體重、體脂肪（如軀幹體脂肪）及腰圍等能力。並且，益生質組成物可用以製備減重組合物。
於下列實施方式的說明中，除非另有相關說明，則「%」符號是指重量百分比而符號「體積%」通常是指體積百分濃度。
益生質組成物包括紅茶發酵物及生物活性物質。其中，生物活性物質為含氮的胺基酸構成物，如胜肽、低聚肽、蛋白質等。舉例來說，生物活性物質為大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合。紅茶發酵物是將紅玉紅茶（
Camellia sinensis）的茶葉以水萃取後再以多種菌株進行發酵所製成。
在一些實施例中，前述大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉均為市售可購得。舉例來說，大豆胜肽粉可購自自FUJI OIL Co. Ltd.、豌豆蛋白可購自法國的Roquette、米蛋白可購自日本的Panel Japan Co. Ltd.，而玉米低聚肽粉購自中國的中食都慶山東生物有限公司。
在一些實施例中，生物活性物質較佳為大豆胜肽粉。
在一些實施例中，紅茶發酵物是由下列步驟所製得：將紅玉紅茶（
Camellia sinensis）的茶葉與水混和後，在50℃至100℃下進行萃取0.5至3小時以得到紅茶萃取液。接著，將冷卻至室溫的紅茶萃取液以啤酒酵母菌（
Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（
Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（
Lactobacillus gasseri）BCRC910886與木質醋酸菌（
Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335進行發酵12天至25天以取得前述紅茶發酵物。
在一些實施例中，紅茶的茶葉與水的混合的重量比為1：50-125。舉例來說，茶葉與水的重量比為1：100。
在一些實施例中，紅茶萃取液的萃取溫度及時間為90℃萃取1.2小時。並且，在萃取的同時亦可同步進行滅菌。
在一些實施例中，啤酒酵母菌BCRC20271的接種量為0.01%-0.5%（v/v）、雷特氏B菌BCRC910887的接種量為0.01%-0.25%（v/v）、格氏乳酸桿菌BCRC910886的接種量為0.01%-0.25%（v/v），且木質醋酸菌BCRC12335的接種量為10%-15%（v/v）。舉例來說，啤酒酵母菌BCRC20271的接種量為0.015%（v/v）、雷特氏B菌BCRC910887的接種量為0.03%（v/v）、格氏乳酸桿菌BCRC910886的接種量為0.035%（v/v），且木質醋酸菌BCRC12335的接種量為12%（v/v）。
在一些實施例中，啤酒酵母菌BCRC20271、雷特氏B菌BCRC910887、格氏乳酸桿菌BCRC910886與木質醋酸菌BCRC12335是同時植入紅茶萃取液中，且總發酵天數為14天。
舉例來說，啤酒酵母菌BCRC20271、雷特氏B菌BCRC910887、格氏乳酸桿菌BCRC910886與木質醋酸菌BCRC12335可為向財團法人食品工業發展研究所採購的菌株。
在一些實施例中，紅茶發酵物的製備步驟更包括：於發酵12天至25天後將其於45℃至70℃下進行減壓濃縮，並調整所得產物的白利糖度為4.1±0.5°Bx（此作為品質控管的條件），最後再以200網目（mesh）至400網目的網篩過濾，即可得到紅茶發酵物。
在一些示範例中，將重量比為1：50-125的紅玉紅茶的茶葉與水的混合，於50℃至100℃下進行萃取0.5至3小時以得到紅茶萃取液。待紅茶萃取液降至室溫後，將0.01%-0.5%（v/v）的啤酒酵母菌BCRC20271、0.01%-0.25%（v/v）的雷特氏B菌BCRC910887、0.01%-0.25%（v/v）的格氏乳酸桿菌BCRC910886及10%-15%（v/v）的木質醋酸菌BCRC12335同時接種至降溫後的紅茶萃取液，並發酵。12天至25天以得到紅茶初發酵液。將紅茶初發酵液於45℃至70℃下進行減壓濃縮、調整白利糖度為4.1±0.5°Bx，再以200網目至400網目的網篩過濾後，即可得到紅茶發酵物。
在一些實施例中，益生質組成物包括紅茶發酵物及生物活性物質，且紅茶發酵物及生物活性物質的重量比為9：1至1：9。在另一些較佳實施例中，紅茶發酵物及生物活性物質的重量比為4-7：6-3。在又一些更佳實施例中，紅茶發酵物及生物活性物質的重量比為1：1。
在一些實施例中，益生質組成物更包括醣類化合物及其衍生物。舉例來說，醣類化合物及其衍生物包括赤藻糖醇、阿拉伯醣、阿拉伯膠、果寡糖等。在一些實施例中，益生質組成物更包括赤藻糖醇、阿拉伯膠或其組合。
舉例來說，益生質組成物為紅茶發酵物與生物活性物質的組合；紅茶發酵物、生物活性物質及赤藻糖醇的組合；紅茶發酵物、生物活性物質及阿拉伯膠的組合；以及紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的組合。
在一些實施例中，益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質及赤藻糖醇，紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇的重量比為1：1：1。在另一些實施例中，紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇的重量比為1：1：0.6-2。
在一些實施例中，益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質及阿拉伯膠，紅茶發酵物、生物活性物質、阿拉伯膠的重量比為1：1：1。在另一些實施例中，紅茶發酵物、生物活性物質、阿拉伯膠的重量比為1：1：0.05-0.2。
在一些實施例中，益生質組成物包括紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠，紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的重量比為1：1：0.6-2：0.05-0.2。在另一些實施例中，紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的重量比為1：1：1.2：0.1。在又一些實施例中，紅茶發酵物、生物活性物質、赤藻糖醇及阿拉伯膠的重量比為3：3：3.6：0.4。
基此，藉由特定製程所得的紅茶發酵物與生物活性物質，或與生物活性物質及醣類化合物以特定比例混合後，可得到益生質組成物。益生質組成物可提高受體腸道中的特定益生菌的菌量至少7倍。
在一些實施例中，益生質組成物可改善腸道的菌相。舉例來說，益生質組成物可促進受體腸道中的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）生長，以提高酪蛋白水解肽酶B（ClpB蛋白；Casein hydrolytic peptidase B）以及短鏈脂肪酸（Short-chain fatty acids, SCFA）。
在一些實施例中，益生質組成物可抑制受體食慾。舉例來說，透過服用益生質組成物，受體的飽腹感提升，並可抑制食慾，減少過度或過量飲食的情形。
在一些實施例中，益生質組成物可減少受體的體重、體脂肪及腰圍。舉例來說，體脂肪為軀幹體脂肪。
基此，前述益生質組成物可用以製備為減重組合物。
在一些實施例中，減重組合物可以為固態，例如，粉末、錠劑、膠囊等型態。舉例來說，減重組合物為膠囊等型態，其內含有500克的益生質組成物。
在一些實施例中，益生質組成物的劑量為1000mg/日。舉例來說，益生質組成物主要是由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻糖醇及阿拉伯膠所組成，而益生質組成物的每日劑量1000 mg是指紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻糖醇及阿拉伯膠的總量為1000 mg。
在一些實施例中，膠囊型態的減重組合物中含有500克的益生質組成物，且其使用量為每日服用2次。
前述之任一益生質組成物可為醫藥品。換言之，此醫藥品包含有效含量的以特定比例組成的紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）的組合，或紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）、赤藻糖醇及/或阿拉伯膠的組合。
在一些實施例中，前述之醫藥品可利用熟習此技藝者所詳知的技術而被製造成適合於經腸道地、非經腸道地（parenterally）、口服的、或局部地（topically）投藥劑型。
在一些實施例中，經腸道或口服的投藥劑型可為，但不限於，錠劑（tablet）、片劑（troche）、口含錠（lozenge）、丸劑（pill）、膠囊（capsule）、分散性粉末（dispersible powder）或細顆粒（granule）、溶液、懸浮液（suspension）、乳劑（emulsion）、糖漿（syrup）、酏劑（elixir）、濃漿（slurry）或類似之物。在一些實施例中，非經腸道地或局部地投藥劑型可為，但不限於，注射品（injection）、無菌的粉末（sterile powder）、外部製劑（external preparation） 或類似之物。在一些實施例中，注射品的投藥方式可為皮下注射（subcutaneous injection）、表皮內注射（intraepidermal injection）、皮內注射（intradermal injection）或病灶內注射（intralesional injection）。
在一些實施例中，前述之醫藥品可包含被廣泛地使用於藥物製造技術之醫藥上可接受的載劑（pharmaceutically acceptable carrier）。在一些實施例中，醫藥上可接受的載劑可為下列載劑中一種或多種：溶劑（solvent）、緩衝液（buffer）、乳化劑（emulsifier）、懸浮劑（suspending agent）、分解劑（decomposer）、崩解劑（disintegrating agent）、分散劑（dispersing agent）、黏結劑（binding agent）、賦形劑（excipient）、安定劑（stabilizing agent）、螯合劑（chelating agent）、稀釋劑（diluent）、膠凝劑（gelling agent）、防腐劑（preservative）、潤濕劑（wetting agent）、潤滑劑（lubricant）、吸收延遲劑（absorption delaying agent）、脂質體（liposome）以及類似之物。關於選用之載劑的種類與數量是落在熟習此項技術之人士的專業素養與例行技術範疇內。在一些實施例中，作為醫藥上可接受的載劑的溶劑可為水、生理鹽水（normal saline）、磷酸鹽緩衝生理鹽水（phosphate buffered saline, PBS）、或含有醇的水性溶液（aqueous solution containing alcohol）。
在一些實施例中，前述之任一益生質組成物可為食用產品。換言之，食用產品包含特定含量的以特定比例組成的紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）的組合，或紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）、赤藻糖醇及/或阿拉伯膠的組合。在一些實施例中，食用產品可為一般食品、保健食品或膳食補充品。
在一些實施例中，前述之食用產品可利用熟習此技藝者所詳知的技術而被製造成適合於口服的劑型。在一些實施例中，前述之一般食品可為食用產品本身。在一些實施例中，一般食品可為但不限於：飲料（beverages）、發酵食品（fermented foods）、烘培產品（bakery products）或調味料。
在一些實施例中，所得的益生質組成物可進一步作為食品添加物（food additive），以製得含有特定比例組成的紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）的組合，或含有特定比例組成的紅茶發酵物、生物活性物質（如大豆胜肽粉）、赤藻糖醇及/或阿拉伯膠的組合所製備的益生質組成物的食品組合物。於此，能藉由習知方法於原料製備時添加任一實施例的益生質組成物，或是於食品的製作過程中添加任一實施例的益生質組成物，而與任一種可食性材料配製成供人類與非人類動物攝食的食用產品（即食品組合物）。
例
1
：紅茶發酵物的製備
首先，將重量比為1：100的紅玉紅茶的茶葉（購自於台灣農林股份有限公司）與水的混合，於90℃下進行萃取1.2小時以得到紅茶萃取液。待紅茶萃取液降至室溫後，將0.015%（v/v）的啤酒酵母菌BCRC20271、0.03%（v/v）的雷特氏B菌BCRC910887、0.035%（v/v）的格氏乳酸桿菌BCRC910886及12%（v/v）的木質醋酸菌BCRC12335同時接種至降溫後的紅茶萃取液，並發酵14天以得到紅茶初發酵液。將紅茶初發酵液於45℃至70℃下進行減壓濃縮、調整白利糖度為4.1±0.5°Bx，再以200網目至400網目的網篩過濾後，即可得到紅茶發酵物。
於此，啤酒酵母菌BCRC20271、雷特氏B菌BCRC910887、格氏乳酸桿菌BCRC910886與木質醋酸菌BCRC12335均為向台灣財團法人食品工業發展研究（Food Industry Research and Development Institute, FIRDI）所採購的菌株。
例
2
：單一成分及複方成分
對於哈夫尼亞菌的影響
於此，單一成分是指例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉（購自FUJI OIL Co. Ltd.）、豌豆蛋白（購自Roquette，法國）、米蛋白（購自Panel Japan Co. Ltd., 日本）、玉米低聚肽粉（購自中食都慶山東生物有限公司，中國）等5種益生質（以下又稱單方配方），共5個單方實驗組，分別為單方實驗組A至單方實驗組E。複方成分是指例1所製備的紅茶發酵物分別與4種生物活性物質（即大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉）的組合成的益生質組成物（以下又稱複方配方），共4個複方實驗組，分別為複方實驗組a至複方實驗組d。所使用的液態培養基為腦心灌注培養液（Brain heart infusion broth, BHI；以下稱BHI培養基；購自Difco™）。所使用的測試菌株為購自生物資源保存及研究中心（Bioresource Collection and Research Center, BCRC）的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）BCRC10906。
將組別分為控制組、五組單方實驗組及四組複方實驗組，並整理如表1所示：
控制組：未添加任何配方，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基。
單方實驗組：分別為含有例1所製備的紅茶發酵物的單方實驗組A、含有大豆胜肽粉的單方實驗組B、含有豌豆蛋白的單方實驗組C、含有米蛋白的單方實驗組D及含有玉米低聚肽粉的單方實驗組E。並且，單方實驗組A的實驗培養基為含有1克的例1所製備的紅茶發酵物的10毫升的BHI培養基。單方實驗組B的實驗培養基為含有1克的大豆胜肽粉的10毫升的BHI培養基。單方實驗組C的實驗培養基為含有1克的豌豆蛋白的10毫升的BHI培養基。單方實驗組D的實驗培養基為含有1克的米蛋白的10毫升的BHI培養基。單方實驗組E的實驗培養基為含有1克的玉米低聚肽粉的10毫升的BHI培養基。
複方實驗組：分別為含有例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉的複方實驗組a、含有例1所製備的紅茶發酵物及豌豆蛋白的複方實驗組b、含有例1所製備的紅茶發酵物及米蛋白的複方實驗組c，以及含有例1所製備的紅茶發酵物及玉米低聚肽粉的複方實驗組d。並且，複方實驗組a的實驗培養基為含有0.5克的例1所製備的紅茶發酵物及0.5克的大豆胜肽粉的10毫升的BHI培養基。複方實驗組b的實驗培養基為含有0.5克的例1所製備的紅茶發酵物及0.5克的豌豆蛋白的10毫升的BHI培養基。複方實驗組c的實驗培養基為含有0.5克的例1所製備的紅茶發酵物及0.5克的米蛋白的10毫升的BHI培養基。複方實驗組d的實驗培養基為含有0.5克的例1所製備的紅茶發酵物及0.5克的玉米低聚肽粉的10毫升的BHI培養基。
表1
| 組別 | 配方（單一成分及複方成分） | 實驗培養基（10mL） |
| 控制組 | - | BHI培養基 |
| 單方實驗組A | 單方配方A： 例1所製備的紅茶發酵物 | 含有1g的單方配方A的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組B | 單方配方B： 大豆胜肽粉 | 含有1g的單方配方B的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組C | 單方配方C： 豌豆蛋白 | 含有1g的單方配方C的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組D | 單方配方D： 米蛋白 | 含有1g的單方配方D的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組E | 單方配方E： 玉米低聚肽粉 | 含有1g的單方配方E的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組a | 複方配方a： 例1所製備的紅茶發酵物與大豆胜肽粉（重量比1：1） | 含有1g的複方配方a的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組b | 複方配方b： 例1所製備的紅茶發酵物與豌豆蛋白（重量比1：1） | 含有1g的複方配方b的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組c | 複方配方c： 例1所製備的紅茶發酵物與米蛋白（重量比1：1） | 含有1g的複方配方c的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組d | 複方配方d： 例1所製備的紅茶發酵物與玉米低聚肽粉（重量比1：1） | 含有1g的複方配方d的 10mL BHI培養基 |
首先，先將哈夫尼亞菌以5%（v/v）接種至BHI培養基，並於厭氧操作箱（氫氣5%；二氧化碳10%；氮氣85%）以37°C進行活化24小時，以得到實驗用菌液。
取5%（v/v）的活化後的哈夫尼亞菌分別加入裝有10mL的各組實驗培養基的試管中，並於37 ℃下厭氧培養24小時，並進行二重複試驗。接著，待培養24小時後，將各組菌液搖匀並分別取200 μl至96孔盤，並於15分鐘内以盤式全光譜光學定量儀（廠牌：BioTek；型號EPOCH）檢測各組OD
600nm。於此，將控制組的吸光值視為相對菌數為100±3.81%，並對應換算其他各組的相對菌數（%），其檢測結果及換算的相對菌數結果，如圖1及表2所示：
表2
| 組別 | 吸光值（OD 600） | 相對菌數 （%） |
| 控制組 | 0.105±0.004 | 100±3.81 |
| 單方實驗組A | 0.32±0.022 | 304.77±20.96 |
| 單方實驗組B | 0.277±0.013 | 263.81±12.39 |
| 單方實驗組C | 0.268±0.029 | 255.24±27.62 |
| 單方實驗組D | 0.232±0.033 | 220.96±22.63 |
| 單方實驗組E | 0.247±0.045 | 235.24±39.26 |
| 複方實驗組a | 0.402±0.039 | 382.86±37.15 |
| 複方實驗組b | 0.359±0.027 | 341.91±25.72 |
| 複方實驗組c | 0.346±0.041 | 361.91±39.05 |
| 複方實驗組d | 0.351±0.051 | 342.86±35.66 |
請參見圖1。未添加任何益生質的控制組的OD
600nm為0.105±0.004，而其餘9組實驗組中，單方實驗組A的OD
600nm為0.32±0.022、單方實驗組B的OD
600nm為0.277±0.013、單方實驗組C的OD
600nm為0.268±0.029、單方實驗組D的OD
600nm為0.232±0.033、單方實驗組E的OD
600nm為0.247±0.045、複方實驗組a的OD
600nm為0.402±0.039、複方實驗組b的OD
600nm為0.359±0.027、複方實驗組c的OD
600nm為0.346±0.041且複方實驗組d的OD
600nm為0.351±0.051。由此可知，對於哈夫尼亞菌來說，單方配方雖可促進其生長，但均無複方配方促進其生長顯著。其中，複方配方a（重量比1：1的例1所製備的紅茶發酵物與大豆胜肽粉）促進哈夫尼亞菌生長的能力最為顯著，且複方實驗組a的相對菌數約為控制組的4倍。
例
3
：多組不同比例的益生質組成物（紅茶發酵物與大豆胜肽粉）
對於哈夫尼亞菌的影響
於此，將組別分為控制組及9組實驗組。所使用的液態培養基為腦心灌注培養液（Brain heart infusion broth, BHI；以下稱BHI培養基；購自Difco™）。所使用的測試菌株為購自生物資源保存及研究中心（Bioresource Collection and Research Center, BCRC）的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）BCRC10906。各組別整理如表3所示。
控制組：未添加任何益生質，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基。
9組實驗組：分別為含有不同比例組成的例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉的實驗組[1]至實驗組[9]。其中，實驗組的益生質組成物的重量比為1：9至9：1。各組的實驗培養基中為10毫升的BHI培養基中含有各組含有1克的益生質組成物（即0.1克的例1所製備的紅茶發酵物與0.9克的大豆胜肽粉的組合、0.2克的例1所製備的紅茶發酵物及約0.8克的大豆胜肽粉的組合、0.3克的例1所製備的紅茶發酵物及0.7克的大豆胜肽粉的組合、0.4克的例1所製備的紅茶發酵物及0.6克的大豆胜肽粉的組合、0.5克的例1所製備的紅茶發酵物及0.5克的大豆胜肽粉的組合、0.6克的例1所製備的紅茶發酵物及0.4克的大豆胜肽粉的組合、0.7克的例1所製備的紅茶發酵物及0.3克的大豆胜肽粉的組合、0.8克的例1所製備的紅茶發酵物及0.2克的大豆胜肽粉的組合、0.9克的例1所製備的紅茶發酵物及0.1克的大豆胜肽粉的組合；又稱配方[1]至[9]）。
表3
| 組別 | 配方 | 實驗培養基（10mL） |
| 控制組 | - | 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[1] | 配方[1]：重量比1：9的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[1]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[2] | 配方[2]：重量比2：8的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[2]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[3] | 配方[3]：重量比3：7的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[3]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[4] | 配方[4]：重量比4：6的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[4]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[5] | 配方[5]：重量比5：5的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有配方[5]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[6] | 配方[6]：重量比6：4的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有配方[6]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[7] | 配方[7]：重量比7：3的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[7]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[8] | 配方[8]：重量比8：2的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[8]的 10mL BHI培養基 |
| 實驗組[9] | 配方[9]：重量比9：1的 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉 | 含有1g的配方[9]的 10mL BHI培養基 |
首先，先將哈夫尼亞菌以5%（v/v）接種至BHI培養基，並於厭氧操作箱（氫氣5%；二氧化碳10%；氮氣85%）以37℃進行活化24小時，以得到實驗用菌液。
取5%（v/v）的活化後的哈夫尼亞菌分別加入裝有10mL的各組實驗培養基的試管中，並於37℃下厭氧培養24小時，並進行二重複試驗。接著，待培養24小時後，將各組菌液搖匀並分別取200 μl至96 孔盤，並於15分鐘内以盤式全光譜光學定量儀（廠牌：BioTek；型號EPOCH）檢測各組OD
600nm。於此，將控制組的吸光值視為相對菌數為100±11.2%，並對應換算其他各組的相對菌數（%），其檢測結果及換算的相對菌數結果，如圖2及表4所示：
表4
| 組別 | 吸光值（OD 600） | 相對菌數（%） |
| 控制組 | 0.098 ± 0.011 | 100 ± 11.2 |
| 實驗組[1] | 0.303 ± 0.019 | 309 ± 19.4 |
| 實驗組[2] | 0.279 ± 0.032 | 285 ± 32.7 |
| 實驗組[3] | 0.290 ± 0.028 | 296 ± 28.6 |
| 實驗組[4] | 0.362 ± 0.023 | 369 ± 23.5 |
| 實驗組[5] | 0.489 ± 0.056 | 499 ± 11.45 |
| 實驗組[6] | 0.377 ± 0.065 | 385 ± 66.3 |
| 實驗組[7] | 0.317 ± 0.041 | 323 ± 41.8 |
| 實驗組[8] | 0.302 ± 0.035 | 308 ± 35.7 |
| 實驗組[9] | 0.265 ± 0.047 | 270 ± 48.0 |
請參見圖2。未添加任何益生質的控制組的OD
600nm為0.098±0.011e，而其餘9組實驗組中，實驗組[1]的OD
600nm為0.303±0.019c、實驗組[2]的OD
600nm為0.279±0.032cd、實驗組[3]的OD
600nm為0.290±0.028c、實驗組[4]的OD
600nm為0.362±0.023b、實驗組[5]的OD
600nm為0.489±0.056a、實驗組[6]的OD
600nm為0.377±0.065b、實驗組[7]的OD
600nm為0.317±0.041c、實驗組[8]的OD
600nm為0.302±0.035c且實驗組[9]的OD
600nm為0.265±0.047d。由此可知，對於哈夫尼亞菌來說，9種組成比例的例1所製備的紅茶發酵物與大豆胜肽粉均可促進其生長，但當例1所製備的紅茶發酵物與大豆胜肽粉的重量比為1：1時促進其生長的能力較為顯著，其相對菌數約為控制組的5倍。
例
4
：多組不同組合的益生質組成物
對於哈夫尼亞菌的影響
於此，將組別分為控制組及11組實驗組。實驗組共6組單方實驗組及5組複方實驗組，分別為單方實驗組[1]至單方實驗組[6]，以及複方實驗組[1]至複方實驗組[5]。所使用的液態培養基為腦心灌注培養液（Brain heart infusion broth, BHI；以下稱BHI培養基；購自Difco™）。所使用的測試菌株為購自生物資源保存及研究中心（Bioresource Collection and Research Center, BCRC）的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）BCRC10906。各組別整理如表5所示。
控制組：未添加任何益生質，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基。
6組單方實驗組：分別為含有赤藻醣醇（購自新糖城科研企業股份有限公司）的單方實驗組[1]、含有阿拉伯糖（購自HIGHCHEM Co.,Ltd.）的單方實驗組[2]、含有阿拉伯膠（購自信意企業股份有限公司）的單方實驗組[3]、含有果寡糖（購自Panel Japan Co., Ltd.）的單方實驗組[4]、含有大豆胜肽粉（購自FUJI OIL Co. Ltd.）的單方實驗組[5]，以及含有例1所製備的紅茶發酵物的單方實驗組[6]。各組的實驗培養基中為10毫升的BHI培養基中含有各組含有1克的益生質（即赤藻醣醇、阿拉伯糖、阿拉伯膠、果寡糖、大豆胜肽粉、例1所製備的紅茶發酵物；又稱單方配方[1]至[6]）。
5組複方實驗組：分別為含有例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉的複方實驗組[1]；含有例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及赤藻醣醇的複方實驗組[2]；含有例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及果寡糖的複方實驗組[3]；含有例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及阿拉伯糖的複方實驗組[4]；以及，含有例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及阿拉伯膠的複方實驗組[5]。其中，複方實驗組的益生質組成物的重量比均為1：1或1：1：1。各組的實驗培養基中為10毫升的BHI培養基中含有各組含有1克的益生質組成物（即0.5克的例1所製備的紅茶發酵物與0.5克的大豆胜肽粉的組合、約0.33克的例1所製備的紅茶發酵物及約0.33克的大豆胜肽粉與約0.33克的赤藻醣醇的組合、約0.33克的例1所製備的紅茶發酵物及約0.33克的大豆胜肽粉與約0.33克的果寡糖的組合、約0.33克的例1所製備的紅茶發酵物及約0.33克的大豆胜肽粉與約0.33克的阿拉伯糖的組合、約0.33克的例1所製備的紅茶發酵物及約0.33克的大豆胜肽粉與約0.33克的阿拉伯膠的組合；又稱複方配方[1]至[5]）。
表5
| 組別 | 配方（單一成分及複方成分） | 實驗培養基（10mL） |
| 控制組 | - | BHI培養基 |
| 單方實驗組[1] | 單方配方[1]： 赤藻醣醇 | 含有1g的單方配方[1]的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組[2] | 單方配方[2]： 阿拉伯糖 | 含有1g的單方配方[2]的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組[3] | 單方配方[3]： 阿拉伯膠 | 含有1g的單方配方[3]的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組[4] | 單方配方[4]： 果寡糖 | 含有1g的單方配方[4]的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組[5] | 單方配方[5]： 大豆胜肽粉 | 含有單方配方[5]的 10mL BHI培養基 |
| 單方實驗組[6] | 單方配方[6]： 例1所製備的紅茶發酵物 | 含有單方配方[6]的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組[1] | 複方配方[1]： 例1所製備的紅茶發酵物及大豆胜肽粉（重量比1：1） | 含有1g的複方配方[1]的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組[2] | 複方配方[2]： 例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及赤藻醣醇（重量比1：1：1） | 含有1g的複方配方[2]的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組[3] | 複方配方[3]： 例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及果寡糖（重量比1：1：1） | 含有1g的複方配方[3]的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組[4] | 複方配方[4]： 例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及阿拉伯糖（重量比1：1：1） | 含有1g的複方配方[4]的 10mL BHI培養基 |
| 複方實驗組[5] | 複方配方[5]： 例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉及阿拉伯膠（重量比1：1：1） | 含有1g的複方配方[5]的 10mL BHI培養基 |
首先，先將哈夫尼亞菌以5%（v/v）接種至BHI培養基，並於厭氧操作箱（氫氣5%；二氧化碳10%；氮氣85%）以37°C進行活化24小時，以得到實驗用菌液。
取5%（v/v）的活化後的哈夫尼亞菌分別加入裝有10mL的各組實驗培養基的試管中，並於37℃下厭氧培養24小時，並進行二重複試驗。接著，待培養24小時後，將各組菌液搖匀並分別取200 μl至96 孔盤，並於15分鐘内以盤式全光譜光學定量儀（廠牌：BioTek；型號EPOCH）檢測各組OD
600nm。於此，將控制組的吸光值視為相對菌數為100±3.81%，並對應換算其他各組的相對菌數（%），其檢測結果及換算的相對菌數結果，如圖3及表6所示：
表6
| 組別 | 吸光值（OD 600） | 相對菌數 （%） |
| 控制組 | 0.078 ± 0.039 | 100 ± 50 |
| 單方實驗組[1] | 0.169 ± 0.026 | 217 ± 34 |
| 單方實驗組[2] | 0.176 ± 0.038 | 226 ± 49 |
| 單方實驗組[3] | 0.195 ± 0.04 | 250 ± 52 |
| 單方實驗組[4] | 0.203 ± 0.015 | 261 ± 20 |
| 單方實驗組[5] | 0.268 ± 0.009 | 344 ± 12 |
| 單方實驗組[6] | 0.309 ± 0.025 | 397 ± 33 |
| 複方實驗組[1] | 0.387 ± 0.039 | 497 ± 50 |
| 複方實驗組[2] | 0.506 ± 0.035 | 649 ± 45 |
| 複方實驗組[3] | 0.523 ± 0.018 | 671 ± 24 |
| 複方實驗組[4] | 0.552 ± 0.052 | 708 ± 67 |
| 複方實驗組[5] | 0.563 ± 0.041 | 722 ± 53 |
請參見圖3。未添加任何益生質的控制組的OD
600nm為0.078±0.039，而其餘11組實驗組中，單方實驗組[1]的OD
600nm為0.169±0.026、單方實驗組[2]的OD
600nm為0.176±0.038、單方實驗組[3]的OD
600nm為0.195±0.04、單方實驗組[4]的OD
600nm為0.203±0.015、單方實驗組[5]的OD
600nm為0.268±0.009、單方實驗組[6]的OD
600nm為0.309±0.025、複方實驗組[1]的OD
600nm為0.387±0.039、複方實驗組[2]的OD
600nm為0.506±0.035、複方實驗組[3]的OD
600nm為0.523±0.018、複方實驗組[4]的OD
600nm為0.552±0.052且複方實驗組[5]的OD
600nm為0.563±0.041。由此可知，對於哈夫尼亞菌來說，單方配方中赤藻醣醇、阿拉伯糖、阿拉伯膠、果寡糖雖可促進其生長，但例1所製備的紅茶發酵物與大豆胜肽粉促進其生長的能力較為顯著。並且，6組單方配方而言均無複方配方促進其生長顯著。5組複方配方中，複方配方[5]（重量比1：1：1的例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉與阿拉伯膠）促進哈夫尼亞菌生長的能力最為顯著，且複方實驗組[5]的相對菌數約為控制組的7.2倍。
基此，一定比例及特定種類的益生質組成物可有效且顯著地提高益生菌（如，哈夫尼亞菌）的生長能力。
例
5-1
：不同比例的特定益生質組成物對
哈夫尼亞菌的影響
於此，特定益生質組成物是指例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉（購自FUJI OIL Co. Ltd.）、赤藻醣醇（購自新糖城科研企業股份有限公司）及阿拉伯膠（購自信意企業股份有限公司）所組合而成。所使用的液態培養基為腦心灌注培養液（Brain heart infusion broth, BHI；以下稱BHI培養基；購自Difco™）。所使用的測試菌株為購自生物資源保存及研究中心（Bioresource Collection and Research Center, BCRC）的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）BCRC10906。各組別整理如表7所示。
將組別分為控制組及3組實驗組。控制組是指未添加任何益生質的組別，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基。實驗組則是含有不同比例組成的例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠的實驗組[1]至實驗組[3]，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基中含有各組含有1克的益生質組成物（即約0.38克的例1所製備的紅茶發酵物、約0.38克的大豆胜肽粉、約0.23克的赤藻醣醇及約0.02克阿拉伯膠的的組合、約0.24克的例1所製備的紅茶發酵物、約0.24克的大豆胜肽粉、約0.48克的赤藻醣醇及約0.05克阿拉伯膠的的組合，以及約0.30克的例1所製備的紅茶發酵物、約0.30克的大豆胜肽粉、約0.36克的赤藻醣醇及約0.03克阿拉伯膠的的組合；又稱配方[1]至[3]）。
表7
| 組別 | 例1所製備的紅茶發酵物：大豆胜肽粉：赤藻醣醇：阿拉伯膠（重量比） |
| 控制組 | - |
| 實驗組[1] | 配方[1]-1：1：0.6：0.05 |
| 實驗組[2] | 配方[2]-1：1：2：0.2 |
| 實驗組[3] | 配方[3]-1：1：1.2：0.1 |
首先，先將哈夫尼亞菌以5%（v/v）接種至BHI培養基，並於厭氧操作箱（氫氣5%；二氧化碳10%；氮氣85%）以37°C進行活化24小時，以得到實驗用菌液。
取5%（v/v）的活化後的哈夫尼亞菌分別加入裝有10mL的各組實驗培養基的試管中，並於37℃下厭氧培養24小時，並進行二重複試驗。接著，待培養24小時後，將各組菌液搖匀並分別取200 μl至96 孔盤，並於15分鐘内以盤式全光譜光學定量儀（廠牌：BioTek；型號EPOCH）檢測各組OD600nm。於此，將控制組的吸光值視為相對菌數為100±9.7%，並對應換算其他各組的相對菌數（%），其檢測結果及換算的相對菌數結果，如圖4及表8所示：
表8
| 組別 | 吸光值（OD 600） | 相對菌數 （%） |
| 控制組 | 0.093±0.009 | 100 ± 9.7 |
| 實驗組[1] | 0.487±0.024 | 524 ± 25.8 |
| 實驗組[2] | 0.449±0.035 | 483 ± 37.63 |
| 實驗組[3] | 0.545±0.027 | 586 ± 29.03 |
請參見圖4。未添加任何益生質的控制組的OD
600nm為0.093±0.009c，而其餘3組實驗組中，實驗組[1]的OD
600nm為0.487±0.024b、實驗組[2]的OD
600nm為0.449±0.035b且實驗組[3]的OD
600nm為0.545±0.027a。由此可知，對於哈夫尼亞菌來說，不同配方的實驗組[1]至[3]均可促進其生長，但當例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠的重量比為1：1：1.2：0.1時促進其生長的能力較為顯著，且相對菌數約為控制組的近6倍。
例
5-2
：特定比例的益生質組成物對
哈夫尼亞菌的影響
進一步調整例5-1的益生質組成物的組成比例。於此，特定比例是指重量比為3：3：3.6：0.4的例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉（購自FUJI OIL Co. Ltd.）、赤藻醣醇（購自新糖城科研企業股份有限公司）及阿拉伯膠（購自信意企業股份有限公司）所組合而成。所使用的液態培養基為腦心灌注培養液（Brain heart infusion broth, BHI；以下稱BHI培養基；購自Difco™）。所使用的測試菌株為購自生物資源保存及研究中心（Bioresource Collection and Research Center, BCRC）的哈夫尼亞菌（
Hafnia alvei）BCRC10906。
將組別分為控制組及實驗組。控制組是指未添加任何益生質的組別，其實驗培養基為10毫升的BHI培養基。實驗組則是特定益生質組成物的組別，其實驗培養基為含有10%（w/v）的特定益生質組成物的BHI培養基（相當於10毫升的BHI培養基中含有1克的特定益生質組成物）。於此，特定益生質組成物為0.3克的例1所製備的紅茶發酵物、0.3克的大豆胜肽粉、0.36克的赤藻醣醇及0.04克的阿拉伯膠所組成。
將哈夫尼亞菌以5%（v/v）接種至BHI培養基，並於厭氧操作箱（氫氣5%；二氧化碳10%；氮氣85%）以37°C進行活化24小時，以得到實驗用菌液。
取5%（v/v）的活化後的哈夫尼亞菌分別接種個組別的實驗培養基中，並於37℃下厭氧培養24小時，且進行二重複試驗。
接著，待培養24小時後，將菌液搖匀並取200μl至96 孔盤，並於15分鐘内以盤式全光譜光學定量儀（廠牌：BioTek；型號EPOCH）檢測各組OD
600nm。
請參見圖5。未添加任何益生質的控制組的OD
600nm為0.08，而實驗組的OD
600nm為0.62，代表實驗組的哈夫尼亞菌的相對豐度約為控制組的近8倍。由此可知，此特定益生質組成物具有較佳的促進哈夫尼亞菌生長的能力。
例
6
：人體實驗
為進一步確認特定的益生質組成物對於人體的影響。將重量比為3：3：3.6：0.4的例1所製備的紅茶發酵物、大豆胜肽粉（購自FUJI OIL Co. Ltd.）、赤藻醣醇（購自新糖城科研企業股份有限公司）及阿拉伯膠（購自信意企業股份有限公司）所組合而成的益生質組成物進行試驗。
以每顆含有500mg的前述益生質組成物的膠囊提供給10位受試者，每人每日早、晚飯前服用1顆膠囊（共2顆/日），並連續服用4週。換言之。每人的每日劑量為1000mg的益生質組成物。並且，於第0週（即服用前）、第4週（即服用4週後）進行糞便採樣、問卷回饋及體組成量測等檢測項目。
其中，10位受試者分別為20歲至55歲的自覺無法控制食欲或其體脂大於25%的男性或女性。
其中，糞便採樣是收集受試者糞便，並送至委外檢測單位（圖爾斯）測定受試者的NGS菌相及其腸道短鏈脂肪酸（SCFA）含量分析。本次NGS菌相檢測的菌種為哈夫尼亞菌。
其中，問卷回饋為採用國際認可的食欲評估量表（CNAQ）進行調查後分析問卷結果。
其中，體組成測定包括體重、體脂率、腰圍等。
例
6-1
：
受試者腸道中哈夫尼亞菌的豐度分析
10位受試者於服用含有益生質組成物的膠囊前（即第0週）與服用含有益生質組成物的膠囊後（即第4週）分別採集糞便，並委託圖爾斯進行NGS菌相分析，結果如圖6所示。
於此，所檢測的菌種為哈夫尼亞菌。
請參閱圖6。10位受試者於第0週時的平均哈夫尼亞菌的豐度為63.55 OUT count，且於第4週時的平均哈夫尼亞菌的豐度提高為162.35 OUT count。也就是說，10位受試者在連續早晚服用含有益生質組成物的膠囊4週後，其腸道中哈夫尼亞菌的豐度提升2.55倍。當腸道中哈夫尼亞菌的菌量提升時，有助於幫助受體控制其食慾。因此，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的提高使用者的腸道中哈夫尼亞菌的菌量，進而幫助使用者控制食慾。
例
6-2
：
受試者腸道中短鏈脂肪酸（
SCFA
）的含量分析
5位受試者於服用含有益生質組成物的膠囊前（即第0週）與服用含有益生質組成物的膠囊後（即第4週）分別採集糞便，並委託圖爾斯進行腸道短鏈脂肪酸（SCFA）含量分析，結果如圖7所示。
請參閱圖7。5位受試者於第0週時的平均腸道短鏈脂肪酸含量為37.4μM，且於第4週時的平均腸道短鏈脂肪酸含量提高為57.8μM。也就是說，5位受試者在連續早晚服用含有益生質組成物的膠囊4週後，其腸道短鏈脂肪酸含量提升1.55倍。並且，腸道短鏈脂肪酸可分別與腸道細胞的FFAR-2及FFAR-3受體結合，進而促進飽腹感激素PYY及GLP-1的分泌。換言之，當腸道短鏈脂肪酸的含量提升時，有助於受體的飽腹感激素的訊息傳導，進而控制其食慾。因此，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的提高使用者的腸道短鏈脂肪酸的含量，進而幫助使用者控制食慾。
例
6-3
：
受試者食欲評估量表分析
10位受試者於服用含有益生質組成物的膠囊前（即第0週）與服用含有益生質組成物的膠囊後（即第4週）分別以食慾評估量表調查其食慾狀況。並且，將10位受試者的問卷回饋結果整理如圖8所示。
請參見圖8。將10位受試者的平均CNAQ分數視為100%，而在服用含有益生質組成物的膠囊4週後，10位受試者的平均CNAQ分數降至88.3%，代表10位受試者的食欲狀況降低11.7%。由此可知，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的降低使用者的食慾，進而達到減重的效果。
例
6-4
：
受試者體組成分析
10位受試者於服用含有益生質組成物的膠囊前（即第0週）與服用含有益生質組成物的膠囊後（即第4週）分別以體脂計（廠牌：TANITA BC-601FS）、皮尺量測其體組成狀況。並且，將10位受試者的體組成結果整理如圖9至圖11所示。
於此，分析的體組成項目包括：體重、軀幹體脂率及腰圍。
請參閱圖9。於第0週服用含有益生質組成物的膠囊前，10位受試者的平均體重為78.8公斤，而在服用4週後，10位受試者的平均體重下降為77.8公斤。換言之，服用含有益生質組成物的膠囊4週後受試者的平均體重減少1.0公斤。由此可知，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的降低受體的體重，進而達成減重的效果。
請參閱圖10。於第0週服用含有益生質組成物的膠囊前，10位受試者的平均軀幹體脂率為36.2%，而在服用4週後，10位受試者的平均軀幹體脂率下降為35.8%。換言之，服用含有益生質組成物的膠囊4週後受試者的平均軀幹體脂率減少0.4%。由此可知，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的降低受體的軀幹體脂率，進而達成減重的效果。
請參閱圖11。於第0週服用含有益生質組成物的膠囊前，10位受試者的平均腰圍為96.3公分，而在服用4週後，10位受試者的平均腰圍下降為94.0公分。換言之，服用含有益生質組成物的膠囊4週後受試者的平均腰圍減少2.3公分。由此可知，透過服用由紅茶發酵物、大豆胜肽粉、赤藻醣醇及阿拉伯膠組成的益生質組成物，可有效的降低受體的腰圍，進而達成減重的效果。
綜上，根據本發明任一實施例的含有紅茶發酵物及生物活性物質（如大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合）的益生質組成物，可用於促進哈夫尼亞菌生長、提升腸道短鏈脂肪酸含量、抑制受體食慾、減少受體的體重、減少受體的體脂肪（如軀幹體脂肪）及減少受體的腰圍。並且，益生質組成物可用以製備減重組合物，並可用於控制受體的食慾。
雖然本發明的技術內容已經以較佳實施例揭露如上，然其並非用以限定本發明，任何熟習此技藝者，在不脫離本發明之精神所作些許之更動與潤飾，皆應涵蓋於本發明的範疇內，因此本發明之保護範圍當視後附之申請專利範圍所界定者為準。
無
圖1是單一成分及複方成分對於哈夫尼亞菌影響的分析實驗結果圖；
圖2是多組不同比例的益生質組成物（紅茶發酵物與大豆胜肽粉）對於哈夫尼亞菌影響的分析實驗結果圖；
圖3是多組不同組合的益生質組成物對於哈夫尼亞菌影響的分析實驗結果圖；
圖4是不同比例的特定益生質組成物對哈夫尼亞菌影響的分析實驗結果圖；
圖5是特定益生質組成物對哈夫尼亞菌影響的相對豐度實驗結果圖；
圖6是受試者第0週及第4週的腸道中哈夫尼亞菌平均相對豐度的分析結果圖；
圖7是受試者第0週及第4週的腸道短鏈脂肪酸的平均含量的分析結果圖；
圖8是受試者第0週及第4週的平均相對CNAQ分數的分析結果圖；
圖9是受試者第0週及第4週的平均體重的分析結果圖；
圖10是受試者第0週及第4週的平均軀幹體脂肪率的分析結果圖；以及
圖11是受試者第0週及第4週的平均腰圍的分析結果圖。
Claims (20)
- 一種益生質組成物，其包括一紅茶發酵物及一生物活性物質，其中該生物活性物質是大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合，該紅茶發酵物是由下列步驟所製得： 在50℃至100℃下以水萃取紅玉紅茶（ Camellia sinensis）的茶葉0.5小時至3小時以得到一紅茶萃取液；以及 以啤酒酵母菌（ Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（ Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（ Lactobacillus gasseri）BCRC910886、木質醋酸菌（ Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335發酵該紅茶萃取液12天至25天以得到該紅茶發酵物。
- 如請求項1所述的益生質組成物，其中該紅茶發酵物及該生物活性物質的重量比為9：1至1：9。
- 如請求項1所述的益生質組成物，更包括一赤藻糖醇、一阿拉伯膠或其組合。
- 如請求項3所述的益生質組成物，其中該紅茶發酵物、該生物活性物質、該赤藻糖醇或該阿拉伯膠的重量比為1：1：0.05-2。
- 如請求項3所述的益生質組成物，其中該紅茶發酵物、該生物活性物質、該赤藻糖醇及該阿拉伯膠的重量比為1：1：0.6-2：0.05-0.2。
- 如請求項1至5中任一項所述的益生質組成物，其中該生物活性物質為大豆胜肽粉。
- 如請求項1所述的益生質組成物，其具有促進哈夫尼亞菌（ Hafnia alvei）生長的能力。
- 一種益生質組成物用於製備一減重組合物的用途，其中該益生質組成物包括一紅茶發酵物及一生物活性物質，該生物活性物質是大豆胜肽粉、豌豆蛋白、米蛋白、玉米低聚肽粉或其組合，該紅茶發酵物是由下列步驟所製得： 在50℃至100℃下以水萃取紅玉紅茶（ Camellia sinensis）的茶葉0.5小時至3小時以得到一紅茶萃取液；以及 以啤酒酵母菌（ Saccharomyces cerevisiae）BCRC20271、雷特氏B菌（ Bifidobacterium lactis）BCRC910887、格氏乳酸桿菌（ Lactobacillus gasseri）BCRC910886、木質醋酸菌（ Gluconacetobacter xylinus）BCRC12335發酵該紅茶萃取液12天至25天以得到該紅茶發酵物。
- 如請求項8所述的用途，其中該紅茶發酵物及該生物活性物質的重量比為9：1至1：9。
- 如請求項8所述的用途，其中該益生質組成物更包括一赤藻糖醇、一阿拉伯膠或其組合。
- 如請求項10所述的用途，其中該紅茶發酵物、該生物活性物質、該赤藻糖醇或該阿拉伯膠的重量比為1：1：0.05-2。
- 如請求項10所述的用途，其中該紅茶發酵物、該生物活性物質、該赤藻糖醇及該阿拉伯膠的重量比為3：3：3.6：0.4。
- 如請求項8至12中任一項所述的用途，其中該生物活性物質為大豆胜肽粉。
- 如請求項8所述的用途，其中該益生質組成物具有促進一受體腸道內哈夫尼亞菌生長的能力。
- 如請求項8所述的用途，其中該益生質組成物具有提升腸道短鏈脂肪酸含量的能力。
- 如請求項8所述的用途，其中該益生質組成物具有抑制一受體食慾的能力。
- 如請求項8所述的用途，其中該益生質組成物具有減少一受體的體重、體脂肪及腰圍的能力。
- 如請求項17所述的用途，其中該體脂肪為軀幹體脂肪。
- 如請求項8所述的用途，其中該減重組合物為膠囊型態，且含有500克的該益生質組成物。
- 如請求項19所述的用途，其中該減重組合物的使用量為每日2次。
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