TR201807128T4 - Viral vektör imalatı. - Google Patents

Viral vektör imalatı. Download PDF

Info

Publication number
TR201807128T4
TR201807128T4 TR2018/07128T TR201807128T TR201807128T4 TR 201807128 T4 TR201807128 T4 TR 201807128T4 TR 2018/07128 T TR2018/07128 T TR 2018/07128T TR 201807128 T TR201807128 T TR 201807128T TR 201807128 T4 TR201807128 T4 TR 201807128T4
Authority
TR
Turkey
Prior art keywords
cell
virus
cells
cho
cell line
Prior art date
Application number
TR2018/07128T
Other languages
English (en)
Inventor
Michael Howley Paul
Liu Liang
Original Assignee
Sementis Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from AU2013904242A external-priority patent/AU2013904242A0/en
Application filed by Sementis Ltd filed Critical Sementis Ltd
Publication of TR201807128T4 publication Critical patent/TR201807128T4/tr

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/24143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24151Methods of production or purification of viral material
    • C12N2710/24152Methods of production or purification of viral material relating to complementing cells and packaging systems for producing virus or viral particles
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Mevcut buluş bir modifiye edilmiş memeli hücresi ile ilgilidir, burada hücrenin genomu bir promotör kontrolü altında CP77 kodlayan bir dizi içermesi için modifiye edilir, böylece modifiye edilmiş hücre hattı, modifiye edilmemiş hücre içinde daha az çoğalabilen veya hiç çoğalamayan bir çiçek virüsünün propagasyonunu sürdürür.

Description

TARIFNAME VIRAL VEKTÖR IMALATI ILGILI BASVURULAR basvurusu ile iliskilidir ve bunlardan öncelik talep etmektedir.
BULUSUN SAHASI Mevcut bulus, çiçek virüsü-temelli ilaçlari çogaltmak ve böylelikle imal etmek için uygun olan hücrelerin ve hücre hatlarinin gelistirilmesi ile ilgilidir. Özel olarak, spesifikasyon, terapötik veya profilaktik ajanlarin imalati için bu tarz çiçek virüslerini çogaltmak amaciyla rekombinant modifiye edilmis hücresel substratlar ile ilgilidir.
BULUSUN ALT-YAPISI Söz konusu spesifikasyonda referanslarin bibliyografik detaylari, spesifikasyonun sonunda Iistelenir. Çiçek virüsü familyasi, iki alt-familya, Chordopoxvi'ri'nae ve Entomopoxw'rinae içerir.
Chordopoxvi'r/'nae, insanlari enfekte eden türleri (örnegin, variola virüsünü, çiçek hastaliginin nedensel ajanini, (1796'da Jenner tarafindan bildirilen orijinal çiçek hastaligi asisindan olusturulan) inek çiçek virüsünü, (bir ikinci nesil çiçek hastaligi asisi olarak kullanilan) vaksiniya virüsünü ve maymun çiçek virüsünü) içeren Orthopoxviridae'yi ve kuslari enfekte eden türleri, örnegin, kus çiçek virüsünü ve kanarya çiçek virüsünü, içeren Avipoxviridae virüslerini içeren sekiz cinsi içerir.
Bunlarin çiçek hastaligi asilarinda antijenler olarak kullanimini ek olarak, bir "omurga" vektörler olarak rekombinant vaksiniya-temelli virüslerin ve kus-çiçek virüslerinin kullanimina yönelik çok ilgi vardir. Intra-sitoplazmik vektörler olarak, Orthopoxviridae, inter ali'a, yabanci antijenleri konak sitoplazmasina ve hücre yüzeyi üzerinde sunulmasi için antijenleri peptitlere isleyen antijen isleme yollarina aktarabilir. Yabanci antijenleri kodlayan bu tarz vektörler, diger asilama stratejileri ile tedavi edilmesinin zor oldugu kanitlanmis olan, hastaliklar, örnegin, AIDS, tüberküloz, malarya ve kanser, için asilarin gelistirilmesinde kullanilir.
Chordopoxvirinae, boyut olarak para-çiçek virüslerinde 130 kb ila kus-çiçek virüslerinde 300 kb'den fazla olan aralikta lineer çift-sarmalli DNA genomlarina sahiptir ve bunlarin konak içindeki yasam siklusu bütünüyle konak hücre sitoplazmasinda geçirilir. Çiçek- virüsleri büyük ölçüde, özellikle erken mRNA sentezine dahil edilen prosesler için, bunlarin konak hücresinden ve konak hücre moleküllerinden bagimsiz çalisir. Bununla birlikte, konak moleküllerinin ara ve geç viral transkripsiyonun baslatilmasi veya sonlandirilmasi için kullanildigi görülür. Çiçek-virüsleri, viral replikasyona olanak saglayan hücresel kosullara izin vermek için spesifik olarak konak sinyalleme yollarini hedef alan ve manipüle eden yapisal olarak çesitli "konak aralik faktörleri" üretir. Çogu çiçek-virüsü memeli hücrelerini baglayabilir ve enfekte edebilir, ancak müteakip enfeksiyonun permisif olmasi (enfeksiyöz viriyonlar üretebilmesi) veya permisif- olmamasi (büyük ölçüde enfeksiyöz viriyonlar üretememesi) dahil edilen spesifik çiçek- virüsüne ve spesifik hücre tipine baglidir. Çiçek virüsü-konak etkilesimleri, özellikle konak-aralik genleri, moleküler düzeyinde ve hangi faktörlerin hem viral hem de hücresel propagasyonu kolaylastirmak amaciyla iliskiyi modüle etmek için gerekli olduguna yönelik güncel olarak görece zayif bir kavrayis vardir. Konak aralik genlerinin bir Incelemesi için, burada bütünüyle eklenmis olan Werden et al., 2008, kaynagina basvurulabilir. Çiçek hastaligi asilari olarak ve bunu takiben viral vektörler olarak bunlarin kullanimina iliskin vaksiniya suslari konusundaki gözlemler, 1960'larin baslarindan günümüze kadar yayimlanmaktadir. Vaksiniyanin, çiçek hastaligi asilari olarak kullanilan suslari içeren, belirli suslari, insan hücrelerinde çogalabilir ve bundan dolayi saglik risklerini, örnegin, viral ensefalit gelismesini, temsil eder. Daha güvenli bir asi gelistirmek amaciyla, Ankara'dan bir vaksiniya susu ("CVA" olarak ifade edilir), insan-olmayan hücrelerde 500 kattan daha fazla geçirilmistir. Bu proses sirasinda, vaksiniya genomu orijinal CVA genomuna kiyasla en az alti majör silinmenin gelismesini içererek büyük ölçüde degismistir. Modifiye edilmis virüs, insanda daha az patojeniktir, ancak hala bir koruyucu immün yanit meydana getirebilir. Bu atenüe edilmis vaksiniya virüsü, MVA (Modifiye Edilmis Vaksiniya Ankara) olarak ifade edilir ve ayrica farkli geçis numaralari olan virüslerin genetik ve fenotipik olarak farkli oldugu bulundugundan, geçis numarasi ile de kategorize edilir. Bununla birlikte, geçis numarasi 515 MVA515`iri genetik olarak kararli oldugu anlasilmistir. 1990'Iarin baslarinda, MVA suslarinin, örnegin, MVA572'nin ve bunun türevinin, MVA F6'nin, permisif-olmayan hücrelerde (burada virüs çogalmayacaktir) yüksek düzeylerde vaksiniya proteinleri ve heterolog (rekombinant) proteinler eksprese edebildigi gözlenmistir; bu, söz konusu heterolog moleküller, örnegin, asi veya terapi aktarimi için antijenleri kodlayanlar, için bir vektör olarak MVA'nin gelistirilmesine olanak saglar.
Daha güncel olarak, MVA'nin bilinen alti büyük silinmesini CVA'ya uygulama ile MVA'nin kalitelerini tasiyan bir modifiye edilmis vaksiniya virüsü üretmeye tesebbüs edilmistir. Ilginç bir sekilde, bu, MVA'nin atenüe edilmis kalitelerini tasiyan bir virüs ile sonuçlanmamistir. Konak aralik genlerinin yoklugunun gözlenen atenüasyondan sorumlu olabilecegi önerilmistir, bununla birlikte, bu dogrulanmamistir (bakiniz, Çiçek-virüsleri, bir büyük, lineer dsDNA genomu, bir sitoplazmik propagasyon yeri ve bir kompleks viriyon morfolojisi ile karakterize edilen virüslerin genis bir familyasini olusturur. Vaksiniya virüsü, virüsün bu grubunun temsili virüsüdür ve viral morfojenez açisindan en çok çalisilir. Vaksiniya virüsü viriyonlarinin, iki yaninda "lateral cisimler" yer alan bir çeperli, bikonkav çekirdek özelligi gösteren bir kompleks iç yapisi olan yolu, immatür viriyonlara (lV'Iere) gelisen ve akabinde matür viriyonlara (MV'Iere) evrilen yarim aylari içeren membranin bir fabrikasyonunu içerir. 70`ten fazla spesifik gen ürünü, vaksiniya virüsü viriyonlarina dahil edilir, burada 50'den fazla spesifik gende mutasyonlarin vaksiniya virüsü birlesmesi üzerinde etkileri simdi tarif edilir.
Vaksiniya virüsü, bunun yüzey membranlarinin konak hücrenin plazma membrani ile füzyonu, böylece çekirdegi (ve lateral cisimleri) sitoplazma için salma ve virüsün transkripsiyonel programini aktive etme, ile hücrelere girer. Viriyon çekirdekleri, erken mRNA'nin sentezi ve modifikasyonu için gerekli olan virüs-kodlu enzimlerin tam komplemanini içerir. Erken genler, DNA propagasyonu için gerekli olan enzimleri kodlar ve böylelikle erken gen ekspresyon pikleri olarak, viral DNA propagasyonu, i'fabrikalar" olarak adlandirilan sitoplazmik yerlerde meydana gelir. Erken genler ayrica, ara transkripsiyon faktörlerini ve ara genleri de kodlar, nihayetinde, geç transkripsiyon faktörlerini kodlar, böylece ara ve geç genler, viral DNA propagasyonunun ön-kosul baslatilmasindan sonra ardi ardina eksprese edilir. Böylelikle, viral genlerin tam komplemani, erken, ara ve geç siniflarin sinif-spesifik transkripsiyonel promotörler ve viral olarak kodlanmis transkripsiyon faktörleri ile ayirt edilmesi ile bir temporal kaskadda transkribe edilir. Dahasi, yalnizca çogaltilmis genomlar, ara ve geç transkripsiyon için kompetan sablonlardir. Genlerin bu iki sinifi birlikte, viriyon yapisal proteinlerini, viriyon enzimlerini ve birlesme faktörlerini kodlar ve yeni projeni virüs parçaciklarinin birlesmesi için gereklidir.
Kisa bir süre sonra, viral alim ve erken ekspresyon enfeksiyon-spesifik sitoplazmik alanlari hücre içinde olusur, bunlar yogunluk açisindan tekdüzedir ve bazen, zamanla boyutu artan sisternalardan türetilen endoplazmik retikulum (ER) ile çevrelenir. Bu alanlar, viral DNA propagasyonu yerlerini temsil eder ve bunlar siklikla "viral fabrikalar" olarak adlandirilir.
Viral birlesme, viral fabrikalar içinde kati yarim ay-sekilli yapilarin (üç boyutlu kadehçiklerin) olusmasi ile baslar. Yüksek rezolüsyonlu elektron mikrograflarinda, bu yarim ay sekilli yapilarin dis katmani, "spiküller" olarak adlandirilan düzenli sekilde araliklandirilmis çikintilardan olusturulur. Yarim aylar, immatür viriyonlar (lV) olarak adlandirilan kapali daireler (üç boyutlu küreler) halinde gelene kadar ayni egriligi idame ettirirken, boylari görünür bir sekilde artar. IV, yogunluk açisindan tekdüze olan, ancak çevreleyen fabrikaya kiyasla ayirt edilebilir bir sekilde elektron açisindan daha yogun olan "viroplazm“ materyali ile doldurulur. IV'Ier olustukça, enkapsüle edilmis DNA'nin alimi ayrica asagidaki sekilde gerçeklesir: bunlar lV'ler içinde "nükleoid" olarak adlandirilan bir elektron açisindan yogun, yuvarlak veya ovoid alt-alanlar olarak elektron mikrograflarinda görülür. Kondense olmus DNA'nin nükleoidlerini içeren IV'Ier, siklikla "IVN" olarak ifade edilir. Bir kaç viriyon protein öncülünün proteolitik klevaj yoluyla matürasyonu, IVN'nin matür viriyonlara (MV) morfojenezi için gereklidir. Matür viriyonlarin büyük çogunlugu, dis fabrikalarda bulunur ve bir fabrikanin periferinde veya en yakin fabrikadan bir anlamli mesafe ile görünür bir sekilde ayrilmis kümeler olarak var olabilir. Çiçek virüsü viriyonlari, üç enfeksiyöz formda var olur: matür viriyonlar (MV), sarili viriyonlar (WV) ve ekstraselüler viriyonlar (EV). MV, virüsün en basit formudur, çekirdegin konkavliklarini dolduran, iki yaninda lateral cisimler yer alan bir bikonkav, DNA-içeren çekirdek içeren membranlanmis parçaciklardir. MV normal olarak özellikle hücrelerin içinde bulunur ve yalnizca hücre Iizisi ile serbest birakilir. WV, trans-Golgi sisternalarindan türetilen iki ilave Iipit ikili-katmani ile çevrelenen MV'den olusur. Dis membranlari karakteristik viral proteinler içeren WV, EV'nin öncülleridir ve ayrica hücre içinde de bulunur. EV, en dis WV membraninin plazma membrani ile füzyonu, böylece bir ilave membran içinde sarili bir MV'yi serbest birakma yoluyla ekzositoz yapilmis olan WV'den olusur. EV'nin bir fraksiyonu, hücre yüzeyine tutturulmus olarak bulunurken, bazlari ekstraselüler ortam içinde serbest halde bulunur. EV'nin, virüsün bir organizma içinde yayilmasi için önemli oldugu düsünülür.
Esansiyel genlerin virüslerden uzaklastirilmasi ve konak hücrelerde komplementasyon, tedavi ve terapi amaciyla güvenli ve etkili viral vektörler üretmek için bir genel önerilen strateji olarak teknikte bilinir. Arttirilmis güvenligi, ekspresyonu ve/veya immünojenisitesi olan iyilestirilmis atenüe edilmis orto-çiçek vektörlerine yönelik bir ihtiyaç ve bu tarz orto-çiçek vektörlerini güvenli ve ekonomik bir sekilde çogaltmanin ve imal etmenin yöntemleri için orantili bir ihtiyaç vardir. Çok sayida memeli hücre hatti, arastirma amaçlari için rekombinant proteinlerin üretilmesi için kullanilir. Bunlar, tavsan, hamster, primat ve insan kaynakli hücre hatlarini, örnegin, sinirlandirma olmaksizin ve teknikte bilindigi üzere, HEK293, 293T, 1438, CHO, HeLa, Vero ve BHK, HepGZ ve 3T3 hücrelerini içerir. Göze çarpan bir sekilde, bununla birlikte, rekombinant terapötik proteinlerin büyük çogunlugunun GMP üretimi CHO hücrelerinde yapilmaktadir; bu durum, bu hücre hattini insan terapötikleri için en iyi sekilde çalisilmis ve onaylanmis hücre hatti yapmistir. CHO hücreleri, süspansiyon kültürleri için çok yüksek yogunluklara kadar büyüyebilir ve ürünleri saflastirmak için asagi akis prosesleri çok iyi gelistirilmistir. Ilgili olarak, ne vaksiniya, örnegin, vaksiniya-COP veya vaksiniya-WR ne de bunun türevleri, örnegin, MVA ve NYVAC, CHO hücrelerin çogalacaktir.
Lokal viral promotörler ve çiçek viral RNA polimerazi kontrolü altinda çiçek virüsünden viral konak aralik genlerinin ekspresyonu teknikte bilinir.
Viral replikasyonu kurtarmak veya viral replikasyona izin vermek ve konak hücresi sag kalimina izin vermek için vakitli bir sekilde bir memeli hücresinin genomundan belirli viral konak aralik genlerinin ekspresyonu daha önceden tarif edilmemistir.
KISA AÇIKLAMA Mevcut spesifikasyon, bir çiçek-viral konak aralik faktörünü eksprese etmesi için transforme edilmis in vitro kültürlenmis memeli hücrelerini ve viral vektörleri çogaltmak için, bu tarz hücreleri kültürlemeyi içeren, bir yöntemi tarif eder.
Bir birinci yönünde, mevcut bulus, bir modifiye edilmis memeli hücresi saglar, burada hücrenin genomu, bir promotör kontrolü altinda CP77'yi kodlayan bir dizi içermesi için modifiye edilir, böylece modifiye edilmis hücre hatti, modifiye edilmemis hücrede daha az çogalabilen veya hiç çogalamayan bir çiçek virüsünün propagasyonunu sürdürür.
Bir ikinci yönünde, mevcut bulus, CHO hücrelerinde çogalmayan bir orto-çiçek virüsünü çogaltmak için, çiçek virüsünün bir memeli hücre hattinda in vitro çogaltilmasini içeren, bir proses saglar, burada hücre hatti, CP77'yi kodlamasi ve bir promotör kontrolü altinda eksprese etmesi modifiye edilir. Çesitli alternatif uygulamalarda, modifiye edilmis hücreler ilaveten, bir promotör kontrolü altinda D13L'yi kodlayan bir dizi içermesi ve/veya bir promotör kontrolü altinda K1 L'yi kodlayan bir dizi içermesi için modifiye edilir.
Burada "CP77", “K1L" ve "D13L" atiflari, fonksiyonel ortologlari ve fonksiyonel varya ntlari içerir. ÖZEL UYGULAMALARIN DETAYLI AÇIKLAMASI Söz konusu bulus, özel prosedürler veya ajanlar, ajanlarin spesifik formülasyonlari ve çesitli tibbi metodolojiler ile sinirli degildir, böyle olunca da çesitlilik gösterebilir. Burada kullanilan terminoloji, yalnizca özel uygulamalari tarif etme amaci tasir ve sinirlayici olmasi amaçlanmaz. Aksi tanimlanmadikça, burada kullanilan tüm teknik ve bilimsel terimler, bu bulusun ait oldugu teknikte normal uzmanligi olan bir kisi tarafindan yaygin bir sekilde anlasilan ile ayni anlama sahiptir.
Burada tarif edilenlere benzer veya es-deger herhangi bir materyal ve yöntem, mevcut bulusu tatbik etmek veya test etmek için kullanilabilir. Tatbik edenler özellikle asagidakilere yönlendirilir: Sambrook et al., (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed., Cold Spring Harbor Press, Plainsview, N.Y.; Ausubel et al., (1999) Current Protocols in Molecular Bio/ogy (Supplement 47), John Wiley & Sons, New York; Murphy et al., (1995) Virus Taxonomy Springer Verlagz79-87, Mahy Brian WJ and Kangro O Hillar (Eds): Virology Methods Manual 1996, Academic Press; ve Davison AJ and Elliott RM (Eds): Molecular Virology, A practical Approach 1993, IRL teknigin tanimlari ve terimleri ve teknikte uzmanligi olan kisi tarafindan bilinen diger yöntemler.
Burada tarif edilenlere benzer veya es-deger herhangi bir yöntemin ve materyalin mevcut bulusun tatbikinde veya test edilmesinde kullanilabilmesine ragmen, terchi edilen yöntemler ve materyaller tarif edilir. Mevcut bulusun amaçlari için, asagidaki terimler, asagida tanimlanir.
Bu spesifik boyunca, baglam aksini gerektirmedikçe, “içermek", "içerir“ ve "içeren" sözcüklerinin, bir ifade edilen adimin veya elemanin veya adimlar veya elemanlar grubunun dahil edilmesini, ancak herhangi bir baska adimin veya elemanin veya adimlar veya elemanlar grubunun dislanmamasini gösterdigi anlasilacaktir. Böylelikle, mecburi oldugunu, ancak diger elemanlarin opsiyonel oldugunu ve bulunabilecegini veya bulunamayacagini gösterir. Atenüe edilmis orto-çiçek vektörleri baglaminda, söz konusu vektörler, bir esansiyel matürasyon veya birlesme geninin silinmesini, bununla birlikte, örnegin, vektöre bir antijenin veya baska proteinin kapsanmasi için, ilave modifikasyonu içerme ile atenüasyon için modifiye edilir. kastedilir. Böylelikle, "olusan" ifadesi, listelenen elemanlarin gerektigini veya mecburi oldugunu ve baska elemanlarin bulunamayacagini gösterir. "Esas olarak olusan" ile, ifadesinden sonra listelenen herhangi bir elemani içerdigi ve listelenen elemanlar için açiklamada belirtilen aktiviteye veya etkiye müdahale etmeyen veya katki saglamayan diger elemanlar ile sinirli oldugu kastedilir. Böylelikle, “esas olarak olusan" ifadesi, listelenen elemanlarin gerektigini veya mecburi oldugunu, ancak diger elemanlarin opsiyonel oldugunu ve bunlarin listelenen elemanlarin aktivitesini veya etkisini etkileyip etkilememesine bagli olarak bulunabilecegini veya bulunamayacagini gösterir.
Burada kullanildigi sekliyle, "bir", "biri" ve "bu" tekil formlari, baglam açik bir sekilde aksini söylemedikçe, çogul yönleri de içerir. Böylelikle, örnegin, "bir hücre" atfi, bir tek hücreyi ayni zamanda iki veya daha fazla hücreyi içerir; "bir organizma" atfi, bir organizmayi ayni zamanda iki veya daha fazla organizmayi içerir; ve benzeri. Bazi uygulamalarda, "biri", "bir veya birden fazla" anlamina gelir.
Burada kullanildigi sekliyle, "ve/veya", iliskili listelenen maddelerin birinin veya birden fazlasinin herhangi bir ve tüm olasi kombinasyonlarini ayni zamanda alternatif (veya) seklinde yorumlandiginda kombinasyonlarin yoklugunu ifade eder ve kapsar.
Burada kullanildigi sekliyle, "atenüasyon" veya "atenüe edilmis", viral vektör virülansinda bir düsüs anlamina gelir. Virülans, bir virüsün bir özel konakta hastaliga neden olma yetisi olarak tanimlanir. Enfeksiyöz virüsleri üretemeyen bir çiçek-viral vektör baslangiçta hücreleri enfekte edebilir, ancak büyük ölçüde konak içinde kendi kendine tamamen kopyalayamaz veya çogalamaz veya bir rahatsizliga neden olamaz.
Bu, vektör bunun proteinini veya nükleik asidini konak hücre sitoplazmasina aktardigindan, ancak süjeye zarar vermediginden, arzu edilebilir. hücre içinde bir operatif olarak baglanmis kodlama dizisinin ekspresyonu için gerekli olan nükleik asit dizileri (örnegin, DNA) kastedilir. Ökaryotik hücreler için uygun olan kontrol dizileri, transkripsiyonel kontrol dizilerini, örnegin, promotörleri, poliadenilasyon sinyallerini, transkripsiyonel hizlandiricilari, translasyonel kontrol dizilerini, örnegin, translasyonel hizlandiricilari ve iç ribozom baglama yerlerini (IRES), mRNA kararligini modüle eden nükleik asit dizilerini ayni zamanda bir transkribe edilmis polinükleotid tarafindan kodlanan bir ürünü bir hücre içindeki bir intraselüler kompartimana veya ekstraselüler ortama hedefleyen hedefleme dizilerini içerir.
Diziler saglandiginda, karsilik gelen diziler kapsanir. "Karsilik gelir" "karsilik gelen" veya "-e karsilik gelen" ile, bir referans nükleik asit dizisine büyük ölçüde dizi özdesligi (Örnegin, referans nükleik asit dizisinin tümünü veya bir kismina en az yaklasik %50, 97, 98, 99 veya hatta en fazla %100 dizi özdesligi) gösteren bir nükleik asit dizisi veya bir referans amino asit dizisine büyük ölçüde dizi benzerligi veya özdesligi (örnegin, hatta en fazla %100 dizi benzerligi veya özdesligi) gösteren bir amino asit dizisi kastedilir.
Bir rahatsizligi tedavi etme veya önleme baglaminda veya bir hedef antijene veya organizmaya bir immün yaniti modüle etmek için, "etkili miktar" ile, bir ajanin (örnegin, burada tarif edildigi üzere bir atenüe edilmis orto-çiçek vektörünün) veya bunu içeren bilesimin bu tarz tedaviye veya profilaksiye ihtiyaci olan bir bireye, bir tek doz halinde veya bir serinin parçasi olarak, bu rahatsizligin bir semptomuna yakalanmanin önlemesi, bu tarz semptomlarinin kontrol altinda tutulmasi ve/veya var olan semptomlarinin tedavi edilmesi için veya hedef antijene veya organizmaya immün yaniti modüle etmek için etkili olan bir miktarinin uygulanmasi kastedilir. Etkili miktar, tedavi edilecek olan bireyin sagligina ve fiziksel rahatsizligina, tedavi edilecek olan bireyin taksonomik grubuna, bilesimin formülasyonuna, tibbi durumun degerlendirilmesine ve diger ilgili faktörlere bagli olarak çesitlilik gösterecektir. Miktarin, rutin denemeler yoluyla belirlenebilen bir görece genis aralik içinde yer almasi beklenir.
Burada kullanildigi sekliyle, "kodlamak", "kodlayan" ve benzeri terimler, bir nükleik asidin bir baska nükleik asit veya bir polipeptit saglama kapasitesini ifade eder. Örnegin, bu polipeptit üretmek için transkribe edilebildiginde ve/veya aktarilabildiginde veya bu polipeptit üretmek için transkribe edilebilen ve/veya aktarilabilen bir forma islenebildiginde, bir nükleik asit dizisinin bir polipeptidi "kodladigi söylenir. Bu tarz bir nükleik asit dizisi, bir kodlama dizisi veya hem bir kodlama dizisi hem de bir kodlamayan dizi içerebilir. Böylelikle, "kodlamak", "kodlayan" ve benzeri terimler, bir DNA molekülünün transkripsiyonundan kaynaklanan bir RNA ürününü, bir RNA molekülünün translasyonundan kaynaklanan bir proteini, bir DNA molekülünün bir RNA ürünü olusturmak için transkripsiyonundan ve RNA ürününün müteakip translasyonundan kaynaklanan bir proteini veya bir DNA molekülünün bir RNA ürünü saglamak için transkripsiyonundan, RNA ürününün bir islenmis RNA ürünü (örnegin, mRNA) saglamak için islenmesinden ve islenmis RNA ürününün müteakip translasyonundan kaynaklanan bir proteini içerir. nükleik asit dizisini veya segmentini ifade eder. hücrenin bir nükleotid dizisini RNA'ya transkribe etme ve opsiyonel olarak mRNA'yi bir biyolojik veya biyokimyasal fonksiyon saglayan bir peptit veya polipeptit sentezlemek için aktarma yetisini ifade eder.
Burada kullanildigi sekliyle, "gen" terimi, opsiyonel olarak bu prosese yardim eden elemanlarin eklenmesi ile mRNA üretmek için kullanilabilmekte olan bir nükleik asit molekülünü içerir. Genler, bir fonksiyonel protein üretmek için kullanilabilmekte olabilir veya olmayabilir. Genler, hem kodlayan hem de kodlamayan bölgeler (Örnegin, intronlar, regülatör elemanlar, promotörler, hizlandiricilar, sonlandirma dizileri ve 5' ve 3' aktarilmamis bölgeler) içerebilir. manipülasyonlar ile bir organizmanin genomu içine uygulanan herhangi bir nükleik asidi (örnegin, bir IRES içeren bir nükleotid dizisini) ifade etmek için birbiri yerine kullanilir ve uygulanan genin modifikasyondan önceki viral genomik diziye kiyasla bazi modifikasyonlar (örnegin, bir nokta mutasyonu, en az bir nükleotidin Silinmesini, substitüsyonunu veya eklenmesini, bir endonükleaz klevaj yerinin varligini, bir onP yerinin varligini, vb.) içermesi kaydiyla bu organizmada bulunan gen dizilerini içerebilir. tanimlandigi üzere, bir "heterolog nükleik asit dizisi", "heterolog nükleotid dizisi", herhangi bir peptidi veya polipeptidi ifade etmek için birbiri yerine kullanilir. edilmis orto-çiçek vektörünü içeren bir vektörün bunun içine uygulanabildigi bir hücre anlamina gelir. Bir uygulamada, hücre bir sürekli hücre hattidir. Modifiye edilmis hücrenin sürekli olarak bölünebilen bir hücre hatti olmasi daha az mecburidir. Bir memeli veya daha yüksek ökaryotik hücre, mevcut bulusa uygun sekilde modifiye edilebilir ve bunu takiben bir sürekli olarak bölünen hücre hatti haline gelmesi için transforme edilebilir veya ölümsüz hale getirilebilir. Bununla birlikte, modifikasyondan önce hücre, teknikte bilinen, kolay bir sekilde bir iyi karakterize edilmis ve sürekli olarak bölünen biyoteknoloji uyumlu sürekli hücre hattidir. Bu tarz hücrelere kolaylikla, depolama kuruluslarindan, örnegin, Amerikan Tipi Kültür Koleksiyonu'ndan (ATCC) veya Avrupa Hücre Kültürleri Koleksiyonu'ndan (ECACC), erisilebilir.
Uygun memeli hücre hatlari, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, örnegin, ATCC'den PM1, CEM, miyelom hücreleri (örnegin, SBZO hücrelerini) ve CEMX174'ü içerir.
Heterolog genleri eksprese eden modifiye edilmis hücre hatlari üretmek için teknikte bilinen herhangi bir genom mühendisligi yöntemi kullanilabilir. Genleri piggyBac vektörleri kullanilmasi ile hücresel genom içine yerlestirmek için transpozon teknolojisinin kullanilmasina atif yapilir. Bununla birlikte, geni hücrelere uygulamak için, sinirlandirma olmaksizin, retrovirüs transdüksiyonunu (örnegin, MOMLV, vb.), Ientivirüs transdüksiyonunu, plazmid transfeksiyonunu ve entegrasyonunu, hücre hatlarini aktarmak için baska viral sistemi, örnegin, Adenovirüsü, AAV'yi (Adenovirüs Iliskili Virüsü), EBV'yi ve lineer DNA ile homolog rekombinansyon ile yer spesifik içeri yerlestirme için genom düzeltme tekniklerini, mühendislik uygulanmis meganükleazlari, transkripsiyon-aktivatör benzeri efektör nükleazlari (TAL-nükleazini), Çinko-fermuari- nükleazlarini (ZFN'Ieri) ve CRlSPR'Ieri, içeren, çok sayida yöntem bilinir.
Bir uygulamada, memeli hücresi, bir CHO hücresidir. Viral konak ad genlerini kodlamayan, önceki teknigin CHO hücre hatlari, insanlarda büyük ölçüde çogalamayan vaksiniyanin veya vaksiniya türevlerinin imalatini desteklemez. Teknikte uzmanligi olan kisiler tarafindan bilindigi üzere, hamsterin, Cricetulus griseus, overinden türetilen, Çin hamsteri over (CHO) hücreleri, antikorlari içeren rekombinant protein terapötiklerinin biyo-endüstriyel ve GMP üretimi için en yaygin sekilde kullanilan memeli hücresidir. Bu amaç için CHO hücrelerinin popülaritesi, kismen, bunlarin çabuk büyümesinden ve yüksek protein üretiminden köken alir. Bunun sonucu olarak, CHO hücre hatlari iyi karakterize edilmistir. Uygun CHO hücre hatlari, sinirlandirma olmaksizin, A2, A2H, XrSG, CHO-K1, CHO/dhfr, RR-CHO-Ki, UT-I, P22, CHO-1Cö, Lec1, Le02, Lec8, Pro-5 ve CDKXB1 hatlarini içerir. ATCC CLL-61 veya ATCC CRL-9618 Erisim Numarasi altinda ATCC ile depolanan CHO-K1 hücre hatti siklikla kullanilir. CHO-K1 hücre hatti, Puck T. (1957) tarafindan bir eriskin Çin hamsterinin bir overinin bir biyopsisinden baslatilan parental CHO hücre hattindan bir alt-klon olarak türetilmistir. Mevcut spesifikasyon, modifiye edilmis CHO hücrelerinden ziyade modifiye edilmis hücreleri tarif eder.
Bazi uygulamalarda, memeli hücresi, bir insan hücresidir, bir primat hücresidir, bir hamster hücresidir veya bir tavsan hücresidir.
Hücreler, tek-hücreli olabilir veya sivi kültürler, tek-katmanlar veya benzerleri olarak doku kültürü içinde büyütülebilir. Konak hücreler ayrica, dokulardan dogrudan veya dolayli olarak da türetilebilir veya hayvanlari içeren bir organizma içinde de bulunabilir.
Burada tasarlandigi üzere bir immün yaniti "indüklemenin", bir immün yanit meydana getirmeyi veya stimüle etmeyi ve/veya bir önceden var olan immün yaniti güçlendirmeyi içerdigi anlasilacaktir.
Burada kullanildigi sekliyle, "iç ribozomal giris geri" veya "IRES" terimi, iç ribozomal giris yerinin asagi akis (yani, 3' ucunda) yer olan bir operatif olarak baglanmis kodlama bölgesinin translasyonunu saglamak için, ayni mRNA içinde bir kodlama bölgesinin içindeki bir yerde veya mRNA'nin 5' ucunun 3' tarafindaki bir yerde bir mRNA'nin translasyonunu baslatmaya olanak saglayan bir viral, hücresel veya sentetik (örnegin, rekombinant) nükleotid dizisini ifade eder. Bu, translasyonu 5` baslik yapisindan bagimsiz ve mRNA'nin 5' ucundan bagimsiz hale getirir. Bir IRES dizisi, bir operatif olarak baglanmis kodlama bölgesinin translasyonunun baslatilmasi için ihtiyaç duyulan gerekli cis-etki eden diziler saglar.
Burada kullanildigi sekliyle, "izole edilmis" teriminin, burada bilesigin dogal olarak içinde bulundugundan farkli bir ortamda olan bir hücreyi, söz konusu bir bilesigi (örnegin, bir rekombinant çiçek-virüsünü, bir nükleik asit molekülünü, örnegin, bir genomu, bir polipeptidi, vb.) tarif etmesi kastedilir. "Izole edilmis" teriminin, söz konusu bilesik için büyük ölçüde zenginlestirilmis ve/veya burada söz konusu bilesigin kismen veya büyük ölçüde saflastirildigi örnekler içindeki bilesikleri içermesi kastedilir.
Burada kullanildigi sekliyle, "operatif olarak bagli" veya "operatif olarak baglanmis" terimi, birjukstapozisyonu ifade eder, böylece bu sekilde tarif edilen bilesenler, bunlarin hedeflenen sekilde fonksiyon göstermesine izin veren bir iliski içindedir. Örnegin, bir kodlama dizisine "operatif olarak baglanmis" transkripsiyonel kontrol dizisi, transkripsiyonel kontrol dizisi ile uyumlu kosullar altinda kodlama dizisinin ekspresyonuna izin vermesi için kodlama dizisine kiyasla transkripsiyonel kontrol dizisinin konumlandirilmasini ve/veya oryantasyonunu ifade eder. Bir baska örnekte, bir orto-çiçek virüsü kodlama dizisine operatif olarak bagli bir IRES, orto-çiçek virüsü kodlama dizisinin basliktan bagimsiz translasyonuna izin vermesi için orto-çiçek virüsü kodlama dizisine kiyasla IRES'in kunomlandirilmasini ve/veya oryantasyonunu ifade Burada kullanildigi sekliyle, "açik okuma çerçevesi" ve "ORF", bir kodlama dizisinin translasyon baslatma ve sonlandirma kodonlari arasinda kodlanan amino asit dizisini ifade etmek için burada birbiri ile degistirilebilir bir sekilde kullanilir. "Baslatma kodonu" (örnegin, ATG) ve "sonlandirma kodonu" (örnegin, TGA, TAA, TAG), bir kodlama dizisi içinde protein sentezinin (mRNA translasyonunun) sirasiyla baslatilmasini ve zincir sonlandirilmasini belirten bitisik üç nükleotidlik bir birimi ('kodon') ifade eder.
Burada kullanildigi sekliyle, "ana virüs" teriminin, mevcut bulusun bir rekombinant virüsünü olusturmak için heterolog nükleik asit dizisini katmasi için modifiye edilen bir virüse bir atif oldugu anlasilacaktir.
Burada kullanildigi sekliyle, "polinükleotid", "polinükleotid dizisi", "nükleotid dizisi", gösterir. Terim tipik olarak, en az 10 baz uzunlugunda, ribonükleotidler veya deoksiribonükleotidler veya nükleotidin her bir tipinin bir modifiye edilmis formu olan, nükleotidlerin polimerik formunu ifade eder. Terim, RNA'nin veya DNA'nin tek ve çift sarmalli formlarini içerir. polimerini içeren veya bundan olusan molekülleri ve bunlarin varyantlarini ve sentetik analoglarini ifade etmek için burada birbiri ile degistirilebilir bir sekilde kullanilir.
Böylelikle, bu terimler, burada bir veya birden fazla amino asit rezidüsünün sentetik dogal-olusumlu olmayan amino asitler, örnegin, bir karsilik gelen dogal olusumlu amino asidin bir kimyasal analogu, oldugu amino asit polimerleri ayni zamanda dogal- olusumlu amino asit polimerleri için geçerlidir.
Burada kullanildigi sekliyle, "nükleik asit molekülleri", "polinükleotidler'i ve benzerleri için kullanilan "rekombinant" teriminin, konak hücrelerde veya burada tarif edilen hücresiz sistemlerde transkribe edilebilen ve/veya aktarilabilen yapay nükleik asit yapilari (yani, kopyalamayan cDNA veya RNA; veya replikonlar, kendi kendini kopyalayan CDNA veya RNA) anlamina geldigi anlasilir. Rekombinant nükleik asit molekülleri veya polinükleotidler, bir vektör içine yerlestirilebilir. Viral-olmayan vektörler, örnegin, plazmid ekspresyon vektörleri veya viral vektörler, kullanilabilir. Bu bulusa göre nükleik asit yapisinin içeri yerlestirilmesinin vektörler çesidi ve teknigi uzman kisi tarafindan bilinir. Bulusa göre bir nükleik asit molekülü veya polinükleotid, mevcut bulus tarafindan tarif edilen dizilimde dogada bulunmaz. Bir baska ifadeyle, bir heterolog nükleotid dizisi, bir ana virüs genomunun elemanlari (örnegin, promotör, ORF, poliadenilasyon sinyali, ribozim) ile dogal olarak birlestirilmez.
Burada kullanildigi sekliyle, "rekombinant virüs" teriminin, en az bir heterolog nükleik asit dizisi içeren bir "ana virüs" için bir atif oldugu anlasilacaktir.
Burada kullanildigi sekliyle, "dizi özdesligi terimi, bir karsilastirma penceresi boyunca bir nükleotid-nükleotid temelinde veya bir amino asit-amino asit temelinde dizilerin ne dereceye kadar özdes oldugunu ifade eder. Böylelikle, bir "dizi özdesliginin yüzdesi", karsilastirma penceresi boyunca iki optimal olarak hizalanmis diziyi karsilastirma, eslesmis pozisyonlarin sayisini elde etmek için burada Özdes nükleik asit bazinin (örnegin, A, T, C, G, I) veya özdes amino asit rezidüsünün (örnegin, Ala, Pro, Ser, Thr, Gly, Val, Leu, Ile, Phe, Tyr, Trp, Lys, Arg, His, Asp, Glu, Asn, Gln, Cys ve Met) her iki dizide bulundugu pozisyonlarin sayisini belirleme, eslesmis pozisyonlarin sayisini karsilastirma penceresi içindeki toplam pozisyon sayisina (yani, pencere boyutuna) bölme ve dizi özdesliginin yüzdesini elde etmek için sonucu 100 ile çarpma ile hesaplanir. Mevcut bulusun amaçlari için, "dizi özdesligi teriminin, yazilima eslik eden referans manüelden kullanildigi üzere standart varsayilan parametreler kullanilarak DNASIS bilgisayar programi (Windows için Versiyon 2.5; Hitachi Software engineering Co., Ltd., South San Francisco, California, ABD firmasindan erisilebilir) ile hesaplanan örnegin, mesela, nükleusa, mitokondriyal matrikse ve endoplazmik retikuluma, ko- veya post-translasyonel tasinmasini yönlendiren bir kisa (yaklasik 3 ila yaklasik 60 amino asit uzunlugundaki) peptidi ifade eder. Bir ER hedefleme sinyal peptidine sahip olan proteinler için, sinyal peptitler tipik olarak, proteinler ER'ye tasindiktan sonra, sinyal peptidazi ile öncül formda yarilir ve elde edilen proteinler sekretuvar yol boyunca bunlarin intraselüler (örnegin, Golgi cisimcigi, hücre membrani veya hücre duvari) veya ekstraselüler Iokasyonlarina hareket eder. Burada kullanildigi sekliyle, "ER hedefleme sinyal peptitleri", ER membrani yoluyla proteinin parçasinin veya tümünün ER'nin ucu hidrofobik dizileri içerir. Böylelikle, bir dizinin bir sinyal öncül formunun bir proteinin bir öncül formunun parçasi olarak bulunabilecegi, ancak genellikle proteinin matür formunda bulunmayacagi teknikte bilinir. sübstitüsyonlari olusturan amino asitlerin yüzde numarasini ifade eder. Benzerlik, dizi karsilastirma programlari, örnegin, GAP (Deveraux et al., 1984, Nuc/eic Aci'ds Research12: 387-395) kullanilarak belirlenebilir. Böylelikle, burada alinti yapilanlar için bir benzer veya büyük ölçüde farkli uzunluktaki diziler, hizalama içine bosluklarin yerlestirilmesi ile karsilastirilabilir, bu tarz bosluklar, örnegin, GAP tarafindan kullanilan karsilastirma algoritmasi ile, belirlenir.
TABLO A: Emsal Konservatif Amino Asit Sübstitüsyonlari Orijinal Rezidü Emsal Sübstitüsyonlar Asn Gln, His His Asn, Gln Orijinal Rezidü Emsal Sübstitüsyonlar Leu Ile, Val Lys Arg, Gln, Glu Met Leu, Ile, Phe Met, Leu, Tyr Tyr Trp, Phe Val Ile, Leu Bir karsilastirma penceresini hizalamak için dizilerin optimal hizalanmasi, algoritmalarin bilgisayarli uygulamalari (Wisconsin Genetics Software Package Release 7.0'de, Genetics Computer Group, 575 Science Drive Madison, WI, USA, GAP, BESTFIT, FASTA ve TFASTA) ile veya Inceleme ve seçilen çesitli yöntemlerin herhangi biri ile üretilen (yani, karsilastirma penceresi boyunca en yüksek yüzdeli homoloji ile sonuçlanan) en iyi hizalama ile yürütülebilir. Referans ayrica, örnegin, Altschul et al., familyasina da yapilabilir. Dizi analizinin detayli bir tartismasi, Ausubel et al., "Current kaynaginin Unit 19.3'ünde bulunabilir.
Burada birbiri ile degistirilebilir bir sekilde kullanilan "süje", "hasta", "konak" veya "birey" terimleri, bunun için terapinin veya profilaksinin arzu edildigi herhangi bir süjeyi, özellikle bir omurgali süjeyi ve hatta daha özel olarak bir memeli süjeyi, ifade eder.
Bulusun kapsami içinde kalan uygun omurgali hayvanlar, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, primatlari (örnegin, insanlari, maymunlari ve sebekleri ve maymunlarin türlerini, Macaca cinsinden (örnegin, sinomolgus maymunlarini, örnegin, Macaca fascicu/aris ve/veya rhesus maymunlarini (Macaca mu/atta)) ve babunlari (Papio ursi'nus) ayni zamanda marmosetleri (Callithrix cinsinden türleri), sincap maymunlarini (Saimiri cinsinden türleri) ve pembe maymunlari (Saguinus cinsinden türleri) ayni zamanda sebeklerin türlerini, örnegin, sempanzeleri (Pan troglodytes) içerir), kemirgenleri (örnegin, fareleri, siçanlari, gine domuzlarini), Iagomorflari (örnegin, tavsanlari, yabani tavsanlari), bovinleri (örnegin, sigirlari), küçükbaslari (örnegin, koyunlari), keçigilleri (örnegin, keçileri), domuzgilleri (örnegin, domuzlari), ekuinleri (örnegin, atlari), kaninleri (örnegin. köpekleri), felinleri (örnegin, kedileri), kusgilleri (örnegin, tavuklari, hindileri, ördekleri, kazlari, evcil kuslari. örnegin, kanaryalari, muhabbet kuslarini, vb.), deniz memelilerini (örnegin, yunuslari, balinalari), sürüngenleri (yilanlari, kurbagalari, kertenkeleleri, vb.) ve baliklari içeren Chordata alt- subesinin herhangi bir üyesini içerir. Tercih edilen bir süje, bir rahatsizligin tedavisine veya profilaksisine ihtiyaci olan bir insandir. Bununla birlikte, yukarida bahsedilen terimlerin semptomlarin var oldugunu ima etmedigi anlasilacaktir. veya uygulanmak üzere olan ve bu konagin projenisine aktarilan genetik materyali tarif etmek için burada kullanilir. Bazi uygulamalarda, bu, burada bunun içine uygulandigi bir memeli hücresine veya bir orto-çiçek vektörüne arzu edilen özelligi saglar veya baska durumda arzu edilen bir terapötik veya tanisal sonuca yol açar.
Burada kullanildigi sekliyle, "tedavi", "tedavi etme" ve benzeri terimler, arzu edilen bir farmakolojik ve/veya fizyolojik etkiyi elde etmeyi ifade eder. Etki, bir hastaligi veya bunun semptomunu tamamen veya parsiyel olarak önleme açisindan profilaktik olabilir ve/veya bir hastalik ve/veya hastaliga atfedilebilen advers etki için bir parsiyel veya tam kür açisindan terapötik olabilir. Burada kullanildigi sekliyle, "tedavi", bir memelide, özellikle bir insanda, bir hastaligin herhangi bir tedavisini kapsar ve asagidakileri içerir: (a) hastaliga yatkin olabilen ancak henüz buna sahip oldugu seklinde tani koyulmamis olan bir süjede hastaligin gerçeklesmesini önleme; (b) hastaligi inhibe etme, yani, bunun gelismesini durdurma; ve (c) hastaligi rahatlatma, yani, hastaligin regresyonuna neden olma.
Bir organizma, polipeptit veya nükleik asit dizisi açisindan "dogal-sus", "dogal", “natif” ve benzeri terimler için, bu organizma, polipeptit veya nükleik asit dizisi dogal olusumludur veya degistirilmemis, mutasyona ugratilmamis veya baska sekilde insan eli ile manipüle edilmemis en az bir dogal olusumlu organizmada mevcuttur.
Varyantlar, bir referanslanmis moleküle veya bunlarin komplementer formlarina bunun tümü veya parçasi boyunca yeterli sekilde benzer olan, böylece selektif hibridizasyonun orta derecede veya yüksek derecede zorlayici kosullar altinda basarilabildigi veya en az yaklasik 15 nükleotid içeren bir karsilastirma penceresi boyunca bir referanslanmis çiçek-virüsü konak aralik faktörünü tanimlayan nükleotid dizilerine yaklasik %60 ila %90 veya %90 ila 98 dizi özdesligine sahip olan, nükleik asit moleküllerini içerir. Tercihen, hibridizasyon bölgesi, yaklasik 12 ila yaklasik 18 veya daha fazla nükleobaz uzunlugundadir. Tercihen, bir özel nükleotid dizisi ve referans dizi arasindaki yüzde özdeslik, en az yaklasik %80 veya %85 veya daha tercihen fazla, benzerdir. %80 ila %100 araligindaki yüzde özdeslikleri kapsanir. Nükleotid dizisinin uzunlugu, bunun önerilen fonksiyonuna baglidir. Homologlar kapsanir. türlerden olanlari içeren fonksiyonel ve yapisal olarak ilgili molekülleri ifade eder.
Homologlar ve ortologlar, varyantlarin örnekleridir.
Nükleik asit dizisi özdesligi, asagidaki sekilde belirlenebilir. Söz konusu nükleik asit dizisi, BLASTM programi versiyon Nuclei'c Acids Research Genbankasi veri tabanini (http://www.ncbi.nln.nih.gov/blast/ internet sitesinden erisilebilir), arastirmak için kullanilir. Program, bosluk-olusturulmamis modda kullanilir.
Varsayilan filtreleme, düsük karmasiklik bölgelerinden kaynaklanan dizi homolojilerini uzaklastirmak için kullanilir. BLASTM'nin varsayilan parametreleri kullanilir.
Amino asit dizisi özdesligi, asagidaki sekilde belirlenebilir. Söz konusu polipeptit dizisi, BLASTP programi kullanilarak, bir polipeptit dizisi veri tabanini, örnegin, Genbankasi veri tabanini (http://www.ncbi.nln.nih.gov/blast/ internet sitesinden erisilebilir), arastirmak için kullanilir. Program, bosluk-olusturulmamis modda kullanilir. Varsayilan filtreleme, düsük karmasiklik bölgelerinden kaynaklanan dizi homolojilerini uzaklastirmak için kullanilir. BLASTP'nin varsayilan parametrelerinden yararlanilir.
Düsük karmasiklik dizileri için filtreleme, SEG programini kullanabilir.
Tercih edilen diziler, zorlayici kosullar altinda bir referans diziye veya bunun komplemanina hibridize olacaktir. "Zorlayici kosullar altinda hibridize olmak" terimi ve bunun dilbilgisel es-degerleri, bir nükleik asit molekülünün tanimlanmis sicaklik ve tuz konsantrasyonu kosullari altinda bir hedef nükleik asit molekülüne (örnegin, bir DNA veya RNA blotu, örnegin, bir Southern blot veya Northern blot, üzerine immobilize edilmis bir hedef nükleik asit molekülüne) hibridize olma yetisini ifade eder. Yaklasik 100 bazdan daha uzun olan nükleik asit molekülleri açisindan, tipik zorlayici hibridizasyon kosullari, natif dubleksin erime sicakliginin (Tm) en fazla 25°C ila 30°C (örnegin, 10°C) altindadir (bakiniz, genel olarak, Sambrook et al., (yukarida): Ausubel et al., (1999)). Yaklasik 100 bazdan daha uzun olan nükleik asit molekülleri için Tm, Tm=81,5+% formülü ile hesaplanabilir. 100 bazdan daha kisa olan nükleik asit molekülleri açisindan, emsal zorlayici hibridizasyon kosullari Tm'nin 5°C ila °C altindadir.
Mevcut baglamda "silinme" terimi, hedef genin kodlama bölgesinin tümünün veya parçasinin uzaklastirilmasidir. Terim ayrica, hedef genin gen ekspresyonunu kesip çikaran veya kodlanan proteinin düzeyini veya aktivitesini kesip çikaran veya büyük ölçüde asagi yönde regüle eden mutasyonun veya transformasyonun herhangi bir formunu da kapsar. içerir. Burada bir "gen" atfinin ayrica asagidakileri de içerdigi sayilir: transkripsiyonel ve/veya translasyonel regülatör dizilerden ve/veya bir kodlama bölgesinden ve/veya aktarilmamis dizilerden (yani, intronlardan, 5'- ve 3'-aktarilmamis dizilerden) olusan bir klasik genomik gen; veya genin kodlama bölgelerine (yani, ekzonlara) ve 5'- ve 3'- aktarilmamis dizilerine karsilik gelen mRNA veya cDNA. baglanmis kodlama dizisinin ekspresyonu için gerekli olan nükleik asit dizileri (örnegin, DNA) kastedilir. Prokaryotik hücreler için uygun olan regülatör diziler, örnegin, bir promotörü ve opsiyonel olarak bir cis-etki eden diziyi, örnegin, bir operatör dizisini ve bir ribozom baglama yerini içerir. Ökaryotik hücreler için uygun olan kontrol dizileri, promotörleri, poliadenilasyon sinyallerini, transkripsiyonel hizlandiricilari, translasyonel hizlandiricilari, mRNA kararliligini modüle eden ön-bilgi veya arka-bilgi dizilerini ayni zamanda bir transkribe edilmis polinükleotid tarafindan kodlanan bir ürünü bir hücre içindeki bir intraselüler kompartimana veya ekstraselüler ortama hedeflemek için hedefleme dizilerini içerir.
Mevcut modifiye edilmis memeli hücrelerini etkilemek için uygun kimerik yapilar, bir regülatör diziye operatif olarak bagli, bir orto-çiçek konak aralik faktörünü kodlayan bir nükleik asit dizisi içerir. Regülatör dizi uygun sekilde, hücre içinde ekspresyon için uygun olacak olan transkripsiyonel ve/veya translasyonel kontrol dizileri içerir. Tipik olarak, transkripsiyonel ve translasyonel regülatör kontrol dizileri, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, bir promotör dizisini, bir 5' kodlamayan bölgeyi, bir CIS-regülatör bölgeyi, örnegin, transkripsiyonel regülatör protein veya translasyonel regülatör protein için bir fonksiyonel baglama yerini, bir yukari akis açik okuma çerçevesini, ribozomal- baglama dizilerini, transkripsiyonel baslangiç yerini, translasyonel baslangiç yerini ve/veya bir ön-bilgi dizisini kodlayan nükleotid dizisini, sonlandirma kodonunu, translasyonel durdurma yerini ve bir 3' aktarilmamis bölgeyi içerir. Teknikte bilindigi üzere konstitütif veya indüklenebilen promotörler tasarlanir. Promotörler, dogal olusumlu promotörler veya birden fazla promotörün elemanlarini birlestiren hibrit promotörler olabilir.
Tasarlanan promotör dizileri, memeli hücreleri için natif olabilir veya bir alternatif kaynaktan türetilebilir, burada bölge seçilen organizma içinde fonksiyoneldir. Promotör seçimi, hedeflenen konak hücreye bagli olarak çesitlilik gösterecektir. Örnegin, memeli hücrelerinde ekspresyon için kullanilabilen promotörler, digerleri arasinda, agir metallere, örnegin, kadmiyuma, yanitta indüklenebilen metalotiyonein promotörünü, ß- aktin promotörünü ayni zamanda viral promotörleri, örnegin, SV4O büyük T antijeni promotörünü, insan sitomegalovirüs (CMV) hemen erken (IE) promotörünü, Rous sarkom virüsü LTR promotörünü, fare mamari tümör virüsü LTR promotörünü, adenovirüs majör geç promotörünü (Ad MLP), herpes simpleks virüsü promotörünü ve bir HPV promotörünü, özellikle HPV yukari akis regülatör bölgesini (URR) içerir. Bu promotörlerin tümü iyi tarif edilmistir ve teknikte kolaylikla erisilebilirdir.
Hizlandirici elemanlar ayrica burada, memeli yapilarinin ekspresyon düzeylerini arttirmak için de kullanilabilir. Örnekler, örnegin, Dijkema ata!.. (1985) EMBO J. 42761, kaynaginda tarif edildigi üzere, SV4O erken gen hizlandiricisini, örnegin, German et al., Sarkom Virüsünün uzun uç tekrarindan (LTR) türetilen hizlandiriciyi/promotörü ve örnegin, Boshart et al., (1985) Cell 41:521, kaynaginda tarif edildigi üzere, insan CMV'sinden türetilen elemanlari, örnegin, CMV intron A dizisine dahil edilen elemanlari Kimerik yapi ayrica, bir 3' aktarilmamis dizi de içerebilir. Bir 3' aktarilmamis dizi, bir genin, bir poliadenilasycn sinyali ve mRNA islenmesini veya gen ekspresyonunu etkileyebilen herhangi bir baska regülatör sinyal içeren bir DNA segmenti içeren kismini ifade eder. Poliadenilasyon sinyali, mRNA öncülünün 3' ucuna poliadenilik asit yollarinin eklenmesini etkileme ile karakterize edilir. Poliadenilasyon sinyalleri, varyasyonlarin olagandisi olmamasina ragmen, 5' AATAAA-3' kanonikal formuna homolojinin varligi ile yaygin bir sekilde bilinir. 3' aktarilmamis regülatör DNA dizisi tercihen, yaklasik 50 ila 1.000 nts içerir ve bir poliadenilasyon sinyaline ve mRNA islenmesini veya gen ekspresyonunu etkileyebilen herhangi bir baska regülatör sinyale ek olarak transkripsiyonel ve translasyonel sonlandirma dizileri içerebilir.
Bazi uygulamalarda, kimerik yapi ilaveten, yapiyi içeren hücrelerin seleksiyonuna izin vermesi için bir seçilebilen belirteç geni içerir. Seleksiyon genleri teknikte iyi bilinir ve söz konusu hücre içinde ekspresyon için uygun olacaktir.
Bir uygulamada, orto-çiçek yapisal veya birlesme geninin ekspresyonu, bir promotör kontrolü altindadir. Bir sinirlayici-olmayan uygulamada, promotör, bir hücresel konstitütif promotördür, örnegin, insan EF1 alfa (insan elongasyon faktörü 1 alfa geni promotörüdür), DHFR (dihidrofolat redüktaz geni promotörüdür) veya konak hücre üzerinde anlamli toksik etkiler yoklugunda viral propagasyonu sürdürmek Için CP77'nin bir yeterli düzeyinin ekspresyonunu yönlendiren PGK (fosfogliserat kinaz geni promotörüdür). Promotörler ayrica, indüklenebilen, örnegin, hücresel indüklenebilen promotör de olabilir, MTH (bir metalotiyonein geninden) viral promotörler, örnegin, CMV, RSV, SV-40 ve MOU3 de memeli hücrelerinde kullanilir.
Bir birinci yönünde, mevcut bulus burada hücrenin genomunun bir promotör kontrolü altinda CP77'yi kodlayan bir dizi içermesi Için modifiye edildigi bir modifiye edilmis memeli hücresi saglar, böylece modifiye edilmis hücre hatti modifiye edilmemis hücrede daha az çogalabilen veya hiç çogalamayan bir çiçek-virüsünün propagasyonunu sürdürür.
Bir ikinci yönünde, mevcut bulus, CHO hücrelerinde çogalmayan bir orto-çiçek virüsünü çogaltmak için, çiçek virüsünün bir memeli hücre hattinda in vitro çogaltilmasini içeren, bir proses saglar, burada hücre hatti, CP77'yi kodlamasi ve bir promotör kontrolü altinda eksprese etmesi modifiye edilir.
Bir uygulamada, hücrenin genomu ilaveten bir promotör kontrolü altinda D13L'yi kodlayan bir dizi içerir ve/veya ilaveten bir promotör kontrolü altinda K1L'yi kodlayan bir dizi içerir.
Bir baska uygulamada, hücre, bir sürekli hücre hattidir, tercihen bir CHO hücresidir.
Diger uygulamalarda, hücre, bir insan hücresi, bir primat hücresi, bir hamster hücresi veya bir tavsan hücresi, olabilir.
Bir baska uygulamada, CP77 geni, D13L geni ve/veya K1L geni, bir memeli promotörü kontrolü altindadir.
Bir baska uygulamada, CP77 geninin ekspresyonu, bir permisif hücre hattinda gözlenene es-deger virüs verimleri üretmek için virüsün propagasyonunu destekler ve tercihen 500'den büyük olan bir virüs replikasyon amplifikasyon oranini destekler.
Bir baska uygulamada, CP77, D13L ve/veya K1L, memeli hücrelerinde ekspresyon Için kodon optimize edilmis nükleotidlerin bir bitisik dizisi tarafindan kodlanir.
Bir örnek K1 L dizisi, SEQ ID NO: 6'da ve SEO ID NO: 7'de saglanir.
Spesifikasyon genis bir sekilde, modifiye edilmis (rekombinant veya transforme edilmis) hücreler ile ve kültürlenmis daha yüksek ökaryotik konak hücrelerde virüs vektörlerinin in vitro imalati için bir proses ile ilgilidir, burada hücre in vitro hücrelerin bir popülasyonu içinde veya bu vasitayla virüs vektörünün çogaltilmasini hizlandiracak veya kolaylastiracak bir sekilde genetik olarak modifiye edilir. Bir sinirlayici-olmayan uygulamada, spesifikasyon modifiye edilmis Çin hamsteri over (CHO) hücrelerinde vaksiniya-temelli çiçek-virüslerinin propagasyonunu saglar.
Teknikte uzmanligi olan kisiler tarafindan bilindigi üzere, hamsterin, Cricetulus griseus, overinden türetilen Çin hamsteri over (CHO) hücreleri, antikorlari içeren rekombinant protein terapötiklerinin biyo-endüstriyel ve GMP üretimi için en yaygin sekilde kullanilan memeli hücresidir. Bu amaç için CHO hücrelerinin popülaritesi, kismen, bunlarin çabuk büyümesinden ve yüksek protein üretiminden köken alir. Bunun sonucu olarak, CHO hücre hatlari iyi karakterize edilmistir. Uygun CHO hücre hatlari, sinirlandirma olmaksizin, A2, A2H, XrSG, CHO-K1, CHO/dhfr, RR-CHO-K1, UT-I, P22, CHO-1C6, Lec1, Le02, Lec8, Pro-5 ve CDKXBl hatlarini içerir. ATCC CLL-61 veya ATCC CRL- 9618 Erisim Numarasi altinda ATCC ile depolanan CHO-K1 hücre hatti siklikla kullanilir. CHO-K1 hücre hatti, Puck T. (1957) tarafindan bir eriskin Çin hamsterinin bir overinin bir biyopsisinden baslatilan parental CHO hücre hattindan bir alt-klon olarak türetilmistir. Mevcut spesifikasyon, modifiye edilmis CHO hücrelerinden ziyade modifiye edilmis hücreleri tarif eder. Üretilen virüsün verimini maksimuma çikarmak için, hücre hatlari, örnegin, CHO hücreleri, standart teknikler kullanilarak süspansiyon kültürüne uyarlanabilir. Bir rekombinant veya modifiye edilmis hücreye atif, bunun projenisini içerir. Hücreler, dondurulmus formu içeren herhangi bir formda veya sivi süspansiyon formunda satilabilir. Bir çiçek-virüsü vektörü ile enfekte edilmis hücreler satilabilir.
Burada CP77'ye ve burada belirlendigi üzere bir memeli konak hücresinin genomunda bir heterolog geri olarak eksprese edildiginde çiçek viral büyümesini destekleyebilen fonksiyonel ortologlarina ve bunlarin modifiye edilmis formlarina atif, Sphener et al. (1988) ve Hsiao et al., (2006), kaynaklarinda ifade edilen inek çiçek virüsü konak aralik geni anlamina gelir. "Modifiye edilmis formlar" atfi, dogal-sus veya referans diziden bir varyasyonu (örnegin, bir silinmeyi, sübstitüsyonu veya eklenmeyi) içerir. Bir referans nükleotid dizisi, SEQ ID NO: 1'de saglanir. Modifiye edilmis formlar, kodlama bölgesi veya bunun en az 200 bitisik baz-çifti içeren bir veya birden fazla kismi boyunca en az hücrelerinin içeren bir memeli veya baska daha yüksek ökaryotik hücrelerde ekspresyon için optimize edilen kodon optimize edilmis formlari içerir. CP77 atfi, ortologlari, yani, diger türlerde bulunan ile ayni fonksiyonu olan veya farkli adlar ile tanimlanmis genleri içerir. Inek çiçek virüsü konak aralik faktörü, CP77, ayrica VHR1, CHOhr. ve CPXV025, olarak da ifade edilir. Vaksiniyanin Western Reserve (WR) susundaki CHOhr/CP77 geni büyük ölçüde fragmente edilir ve bir fonksiyonel faktör üretemez. CP77, MVA'da ve Kopenhag susunda yoktur.
Burada "CP77“, "D13L" ve "K1 L" atfi, fonksiyonel ortologlari ve fonksiyonel varyantlari içerir. "Fonksiyonel", eksprese eden hücre sitoplazmasi içinde çiçek-virüsü propagasyonunu desteklemek için, bir kültürlenmis hücrenin memeli genomundan yönlendirilen ekspresyonun (yani, transkripsiyonun ve translasyonun) burada tarif edilen kalitesini ifade eder. "Çogalmak" terimi, intraselüler propagasyonu ve interselüler propagasyonu içerir ve matür viral parçaciklarin üretilmesini kapsar.
Bir uygulamada, modifiye edilmis hücrelerin bir popülasyonu, bir modifiye edilmemis kontrol hücresinde daha az çogalabilen veya büyük ölçüde çogalamayan bir çiçek- virüsünün propagasyonunu sürdürür. Çogalamama yetisi, hücreden hücreye veya süjeden süjeye aktarimin tipik olarak gerçeklesmedigi anlamina gelir. gruptan seçilen en az bir viral konak aralik faktörünü kodlamasi için ve bir promotör kontrolü altinda bunun genomundan bunu eksprese etmesi için modifikasyondan önce var oldugu sekilde modifiye edilmis hücreyi ayni zamanda teknikte bilinen diger uygun kontrol hücrelerini içerir. Örnegin, çiçek-virüsleri, örnegin, MVA ve vaksiniya, CHO hücrelerinde çogalamaz.
Bununla birlikte, burada sürpriz bir sekilde belirlendigi üzere, bir promotör kontrolü altinda bunlarin genomundan CP77 eksprese etmesi için rekombinant olarak modifiye edilmis CHO hücreleri, yalnizca vaksiniyanin degil ayni zamanda vaksiniyanin, örnegin, MVA'nin, türevlerinin de propagasyonunu destekleyebilir. Söz konusu modifiye edilmis CHO-CP77 hücrelerinde propagasyondan sonra, MVA ve vaksiniya modifiye edilmemis CHO hücrelerinde veya baska uygun kontrolde hala çogalamaz.
Burada "çiçek-virüsü" atfi, bir ilaç, profilaktik, tanisal veya terapötik ajan olarak, söz konusu bir heterolog molekülü (örnegin, söz konusu bir antijeni) kodlayan bir rekombinant çiçek-virüsü vektörünü içerir. Bu tarz rekombinant çiçek-virüsü vektörleri tipik olarak, çiçek-viral indüklü olmayan hastaliklara veya rahatsizliklara karsi asilar olarak kullanilmasi içindir. Ayrica, çiçek-virüsü terimi, bir çiçek-virüsü enfeksiyonuna, örnegin, variyola veya çiçek hastaligi enfeksiyonuna, karsi bir terapötik veya profilaktik asi olarak kullanilmasi için önerilen izole edilmis çiçek-virüslerini ve bunlarin türevlerini Burada "vaksiniya-temelli" atfi, vaksiniyayi ve vaksiniya virüsünün türevlerini ve modifiye edilmis formlarini içerir. Vaksiniya temelli türevler, herhangi bir sekilde sinirlandirmadan, MVA'yi ve NYVAC'yi içerir. MVA ve NYVAC atfi, teknikte bilinen bu çiçek-virüslerinin suslarini veya türevlerini içerir. Modifiye edilmis formlar, bir ila ori veya daha fazla gende modifikasyonlara sahip olabilir. "Modifikasyon" teriminin, dogal- sus veya referans diziden bir varyasyonu (örnegin, bir silinmeyi, sübstitüsyonu veya eklenmeyi) kastetmesi amaçlanir. "Atenüe edilmis“ atfi, ilgili bir süjede çogalmayan veya ayni virüsün bir atenüe-edilmemis formuna kiyasla büyük ölçüde daha az bir dereceye kadar çogalan çiçek-virüsünü içerir. Terim ayrica, bir süjede patojenik- olmayan virüsleri de içerir.
Bir uygulamada, hücre bir sürekli hücre hattidir. Modifiye edilmis hücrenin sürekli olarak bölünebilen bir hücre hatti olmasi daha az mecburidir. Bir memeli veya daha yüksek ökaryotik hücre, mevcut bulusa uygun sekilde modifiye edilebilir ve bunu takiben bir sürekli olarak bölünen hücre hatti haline gelmesi için transforme edilebilir veya ölümsüz hale getirilebilir. Bununla birlikte, modifikasyondan önce hücre, teknikte bilinen, kolay bir sekilde bir iyi karakterize edilmis ve sürekli olarak bölünen biyoteknoloji uyumlu sürekli hücre hattidir. Bu tarz hücrelere kolaylikla, depolama kuruluslarindan, örnegin, Amerikan Tipi Kültür Koleksiyonu'ndan (ATCC) veya Avrupa Hücre Kültürleri Koleksiyonu'ndan (ECACC), erisilebilir.
Uygun memeli hücre hatlari, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, örnegin, ATCC'den PM1, CEM, miyelom hücrelerini (örnegin, 8820 hücrelerini) ve CEMX174'ü içerir.
Bir uygulamada, hücre, bir CHO hücresidir. Viral konak ad genlerini kodlamayan, önceki teknigin CHO hücre hatlari, insanlarda büyük ölçüde çogalamayan vaksiniyanin veya vaksiniya türevlerinin imalatini desteklemez.
Bazi hücrelerde, hücre, bir insan hücresidir, bir primat hücresidir, bir hamster hücresidir veya bir tavsan hücresidir.
Mevcut modifiye edilmis memeli hücrelerini etkilemek için uygun kimerik yapilar, bir regülatör diziye operatif olarak bagli, bir çiçek-viral konak aralik faktörünü kodlayan bir nükleik asit dizisi içerir. Regülatör dizi uygun sekilde, hücre içinde ekspresyon için uygun olacak olan transkripsiyonel ve/veya translasyonel kontrol dizileri içerir. Tipik olarak, transkripsiyonel ve translasyonel regülatör kontrol dizileri, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, bir promotör dizisini, bir 5' kodlamayan bölgeyi, bir cis-regülatör bölgeyi, örnegin, transkripsiyonel regülatör protein veya translasyonel regülatör protein için bir fonksiyonel baglama yerini, bir yukari akis açik okuma çerçevesini, ribozomal- baglama dizilerini, transkripsiyonel baslangiç yerini, translasyonel baslangiç yerini ve/veya bir ön-bilgi dizisini kodlayan nükleotid dizisini, sonlandirma kodonunu, translasyonel durdurma yerini ve bir 3' aktarilmamis bölgeyi içerir. Teknikte bilindigi üzere konstitütif veya indüklenebilen promotörler tasarlanir. Promotörler, dogal olusumlu promotörler veya birden fazla promotörün elemanlarini birlestiren hibrit promotörler olabilir.
Tasarlanan promotör dizileri, memeli hücreleri için natif olabilir veya bir alternatif kaynaktan türetilebilir, burada bölge seçilen organizma içinde fonksiyoneldir. Promotör seçimi, hedeflenen konak hücreye bagli olarak çesitlilik gösterecektir. Örnegin, memeli hücrelerinde ekspresyon için kullanilabilen promotörler, digerleri arasinda, agir metallere, örnegin, kadmiyuma, yanitta indüklenebilen metalotiyonein promotörünü, ß- aktin promotörünü ayni zamanda viral promotörleri, örnegin, SV4O büyük T antijeni promotörünü, insan sitomegalovirüs (CMV) hemen erken (lE) promotörünü, Rous sarkom virüsü LTR promotörünü, fare mamari tümör virüsü LTR promotörünü, adenovirüs majör geç promotörünü (Ad MLP), herpes simpleks virüsü promotörünü ve bir HPV promotörünü, özellikle HPV yukari akis regülatör bölgesini (URR) içerir. Bu promotörlerin tümü iyi tarif edilmistir ve teknikte kolaylikla erisilebilirdir.
Hizlandirici elemanlar ayrica burada, memeli yapilarinin ekspresyon düzeylerini arttirmak için de kullanilabilir. Örnekler, örnegin, Dijkema et al., (1985) EMBO J. 4:761, kaynaginda tarif edildigi üzere, SV4O erken gen hizlandiricisini, örnegin, Gorman et al., Sarkom Virüsünün uzun uç tekrarindan (LTR) türetilen hizlandiriciyi/promotörü ve CMV'sinden türetilen elemanlari, örnegin, CMV intron A dizisine dahil edilen elemanlari Kimerik yapi ayrica, bir 3' aktarilmamis dizi de içerebilir. Bir 3' aktarilmamis dizi, bir genin, bir poliadenilasyon sinyali ve mRNA islenmesini veya gen ekspresyonunu etkileyebilen herhangi bir baska regülatör sinyal içeren bir DNA segmenti içeren kismini ifade eder. Poliadenilasyon sinyali, mRNA öncülünün 3' ucuna poliadenilik asit yollarinin eklenmesini etkileme ile karakterize edilir. Poliadenilasyon sinyalleri, varyasyonlarin olagandisi olmamasina ragmen, 5' AATAAA-3' kanonikal formuna homolojinin varligi ile yaygin bir sekilde bilinir. 3' aktarilmamis regülatör DNA dizisi tercihen, yaklasik 50 ila 1.000 nts içerir ve bir poliadenilasyon sinyaline ve mRNA islenmesini veya gen ekspresyonunu etkileyebilen herhangi bir baska regülatör sinyale ek olarak transkripsiyonel ve translasyonel sonlandirma dizileri içerebilir.
Bazi uygulamalarda, kimerik yapi ilaveten, yapiyi içeren hücrelerin seleksiyonuna izin vermesi için bir seçilebilen belirteç geni içerir. Seleksiyon genleri teknikte iyi bilinir ve söz konusu hücre içinde ekspresyon için uygun olacaktir.
Bir uygulamada, viral konak aralik geninin ekspresyonu, bir promotör kontrolü altindadir. Bir sinirlayici-olmayan uygulamada, promotör, bir hücresel konstitütif promotördür, örnegin, insan EF1 alfa (insan elongasyon faktörü 1 alfa geni promotörüdür), DHFR (dihidrofolat redüktaz geni promotörüdür) veya konak hücre üzerinde anlamli toksik etkiler yoklugunda viral propagasyonu sürdürmek Için CP77'nin bir yeterli düzeyinin ekspresyonunu yönlendiren PGK (fosfogliserat kinaz geni promotörüdür). Promotörler ayrica, indüklenebilen, örnegin, hücresel indüklenebilen promotör de olabilir. MTH (bir metalotiyonein geninden) viral promotörler, örnegin, CMV, RSV, SV4 ve MOU3 de memeli hücrelerinde kullanilir.
Uygun sekilde, bir uygulamada, viral konak aralik geninin ekspresyonu, permisif hücre hatlarinda gözlenene es-deger virüs verimleri üretmek için virüsün propagasyonunu destekler. Viral konak aralik geninin ekspresyonu, örnegin, 500'den büyük olan bir virüs replikasyon amplifikasyon oranini destekler. Viral konak aralik geninin ekspresyonu, anlamli konak hücre toksisitesi yoklugunda viral propagasyonu destekler. Anlamli konak hücre toksisitesi, viral konak aralik faktörü ekspresyonunun, prematüre konak hücresi ölümünden veya bölünememeden dolayi viral verimi düsüren bir düzeyini ifade eder. Uzmanligi olan kisi, konak hücresi parametrelerini, örnegin, konak hücresi sag kalimini ve çogalmasini ve viral parametreleri, örnegin, viral konak aralik geni ekspresyonunu, viral replikasyonu ve viral verimi kalitatif veya kantitatif bir sekilde degerlendirmek için yöntemlere asinadir.
Bir uygulamada, çiçek-virüsü, bir fonksiyonel CP77'yi veya CP77 ortologunu kodlayan bir oito-çiçek virüsü disindaki bir kordo-çiçek virüsüdür. Inek çiçek virüsü, CP77'yi kodlar ve bundan dolayi bu yönde kapsanmaz. Orto-çiçek virüsleri, bufalo çiçek virüsünü, inek çiçek virüsünü, deve çiçek virüsünü, ektromeli virüsünü, maymun çiçek virüsünü, tavsan çiçek virüsünü, rakun çiçek virüsünü, tetera çiçek virüsünü, vaksiniya virüsünü, tarla faresi çiçek virüsünü, kokarca çiçek virüsünü ve atlarin Uasin Gishu hastaligi virüsünü içerir. Diger cinsler, para-çiçek virüslerini, avi-çiçek virüslerini, kapri- çiçek virüslerini, lepori-çiçek virüslerini, domuz-çiçek virüslerini, mollusci-çiçek virüslerini ve yata-çiçek virüslerini içerir.
Bir uygulamada, çiçek-virüsü MVA'dir veya MVA'nin insanda/bir süjede büyük ölçüde kopyalayamayan bir türevidir.
Bir uygulamada, çiçek-virüsü vaksiniyadir veya vaksiniyanin insanda in vivo büyük ölçüde kopyalayamayan bir türevidir.
Bir baska uygulamada, çiçek-virüsü, bir çiçek viral asi olarak kullanilmasi için uygundur.
Bir ilave uygulamada, çiçek-virüsü, söz konusu bir heterolog molekülü, örnegin, söz konusu bir tibbi antijeni, kodlayan ve eksprese eden bir rekombinant çiçek-viral vektördür, burada rekombinant çiçek-viral vektör, bir süjede bir tanisal, terapötik veya profilaktik ajan olarak kullanilmasi içindir.
Burada K1L atfi, Shisler ve Jin (2004) tarafindan tarif edilen gen ve bunun ortologlari veya modifiye edilmis formlari anlamina gelir.
Burada SPI-1 atfi, Brookes et al., (1995) tarafindan tarif edilen konak aralik geni ve bunun ortologlari veya modifiye edilmis formlari anlamina gelir.
Bazi uygulamalarda ve süpheye mahal vermemek için, mevcut hizlandirilmis viral propagatif proses, çiçek-viral genomuna genlerin eklenmesini gerektirmez. Bu, elbette, diger amaçlar için, örnegin, sinirlandirma olmaksizin, asi amaçlari için söz konusu antijenler olarak heterolog molekülleri kodlamasi için veya bir süjede bir immün yanit meydana getirmesi için. viral vektörlerin modifikasyonlarini, dislamaz.
Konak hücre nükleusundan çiçek-viral konak aralik geninin transkripsiyonu ve kodlanan ürünün translasyonu, enfekte edilmis hücre içinde gerçeklesir ve konak hücre sitoplazmasinda çiçek viral propagasyonu için yeterlidir. Herhangi bir özel etki modu sinirlandirmasi olmaksizin, CP77'nin bir viral koruma ajani oldugu önerilir.
Bir açiklayici uygulamada, enfekte edilmis hücre hatti tarafindan eksprese edilen çiçek- viral konak aralik geni, CP77'dir. Örnek 4'te gösterildigi üzere, bir CHO hücresi nükleusu CP77'yi kodlamasi ve eksprese etmesi için modifiye edildiginde, bu bir permisif hücre hatti, örnegin, 143B, olmusçasina, bu viral amplifikasyonu sürdürebilir.
Tipik olarak, konflüent plaklar, enfeksiyondan sonraki iki gün içinde gözlenir.
Bir baska uygulamada, modifiye edilmis hücre içinde viral propagasyon düzeyi, en az ila 5000 olan bir amplifikasyon orani saglar. Amplifikasyon oranlari, bazi Bir baska uygulamada, heterolog çiçek viral konak aralik geninin promotör yönlendirmeli ekspresyonu, hücre içinde çiçek viral konak aralik heterolog geni ekspresyonunun bir düzeyini saglar. CP77 ekspresyonunun düzeyi, permisif hücrelerde inek çiçek virüsü tarafindan üretilene benzer olabilir veya bunu asabilir.
Bir baska uygulamada, heterolog çiçek viral konak aralik geninin promotör yönlendirmeli ekspresyonu, hücre içinde heterolog gen ekspresyonunun en azindan bir permisif hücre içindeki viral propagasyon düzeyinde viral propagasyona izin vermek için yeterli olan bir düzeyini saglar.
Bir uygulamada, bir CHO hücre hattinda çiçek viral üretim, bir pozitif kontrol hücresindeki çiçek viral üretimin düzeyine esittir veya bunu asar.
Bir uygulamada, CHO hücrelerin MVA viral üretiminin düzeyi, CEF hücrelerinde MVA viral üretiminin düzeyine büyük ölçüde esittir veya bunu asar.
Bir uygulamada, CP77, K1 L ve/veya SPI-i, memeli hücrelerinde ekspresyon için kodon optimize edilmis nükleotidlerin bir bitisik dizisi tarafindan kodlanir.
Burada ilaveten tarif edildigi üzere, CP77'yi kodlayan kodori optimize edilmis nükleik asit dizisi, Brighton Red susunun (UniprotKB/Swiss-ProtzPi29321) inek çiçek CP77 proteinini kodlayan diziye %80'den daha az veya %75'ten daha az nükleotid dizi özdesligine sahip olabilir. Bazi uygulamalarda, kodon optimize edilmis dizi, SEQ ID NO: 1'de izah edilen diziye sahiptir veya SEQ ID NO: 1'de izah edilen diziye en az %70 dizi özdesligine sahip olan bir nükleik asit dizisi içeren bir fonksiyonel varyanttir. Bazi uygulamalarda, CP77 virüs konak aralik faktörü, SEO ID NO: 2'de izah edilen bir amino asit dizisine sahiptir veya SEQ ID NO: 2'de izah edilen amino asit dizisine en az %70 amino asit dizisi özdesligine sahiptir.
Bazi uygulamalarda, burada tarif edildigi üzere, bunlarin genomundan CP77'yi eksprese eden modifiye edilmis memeli hücrelerinin bir popülasyonunu, örnegin, bir klonal popülasyonunu, içeren veya esas olarak bundan olusan bir kit tasarlanir. Bazi uygulamalarda, modifiye edilmis hücre, bir vaksiniya virüsü içermez.
Mevcut tarifname ilaveten, CHO hücrelerinde çogalmayan bir çiçek-virüsünü imal etme yöntemini veya buna yönelik bir prosesi tanimlar, proses in vitro bir memeli hücre hattinda çiçek-virüsünü çogaltmasini içerir, burada hücre hatti CP77'yi kodlamasi ve bir promotör kontrolü altinda eksprese etmesi için modifiye edilir. Proses ilaveten, viral parçaciklari izole etmeyi içerebilir.
Hücre hatti uygun bir sekilde, teknikte uzmanligi olan kisiler tarafindan, bir ilacin veya terapötik, tanisal veya profilaktik ajanin imalati için uygun oldugu bilinen bir memeli hücre hattidir.
Spesifikasyon, bir modifiye edilmis CHO hücresini tarif eder, burada CHO hücresi CP77'yi kodlamasi ve bir promotör kontrolü altinda bunun genomundan bunu eksprese etmesi için modifiye edilir.
Bir uygulamada, modifiye edilmis CHO hücre hatti, CP77'yi eksprese etmeyen bir modifiye edilmemis kontrol CHO hücresinde daha az çogalabilen veya hiç çogalamayan bir virüsün propagasyonunu sürdürür.
Bir uygulamada, virüs, CP77'yi kodlayan bir orto-çiçek virüsü disindaki bir orto-çiçek virüsüdür. Teknikte bilindigi üzere, inek çiçek virüsü, CP77'yi kodlayan bir çiçek Bazi uygulamalarda, virüs, vaksiniyadir veya vaksiniyanin insanda/bir süjede büyük ölçüde kopyalayamayan bir türevidir.
Bazi uygulamalarda, virüs, MVA'dir.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon insanda büyük ölçüde kopyalamayan bir çiçek- virüsünü çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme; ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini insanda büyük ölçüde kopyalamayan çiçek- virüsü ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon insanda büyük ölçüde kopyalamayan bir çiçek- virüsünü çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi ve D13L'yi ve/veya K1L'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini insanda büyük ölçüde kopyalamayan çiçek-virüsü ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon MVA'yi çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi ve D13L'yi ve/veya K1L'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini MVA ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon insanda büyük ölçüde kopyalamayan bir vaksiniya türevini çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi ve D13L'yi ve/veya K1 L'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini vaksiniya türevi ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon bir heterolog proteini kodlayan MVA'yi çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi ve D13L'yi ve/veya K1 L'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini MVA ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, spesifikasyon insanda büyük ölçüde kopyalamayan, bir heterolog proteini kodlayan bir vaksiniya türevini çogaltmanin bir yöntemini saglar, yöntem asagidakileri içerir: (i) CP77'yi ve D13L'yi ve/veya K1L'yi eksprese etmesi için transforme edilmis bir CHO hücresini kültürleme ve (ii) (i)'den elde edilen kültürlenmis CHO hücresini vaksiniya türevi ile enfekte etme.
Bir baska uygulamada, mevcut spesifikasyon operatif olarak regülatör elemanlara, örnegin, bir memeli hücre hattinda ekspresyon için bir promotöre, bagli bir virüs konak aralik geninin nükleik asit dizisini içeren bir yapay olarak olusturulmus vektör, polinükleotid veya plazmid saglar. Bazi uygulamalarda, virüs geni, inek çiçek ankirin CP77 proteini]. Bir uygulamada, virüs konak aralik geni, örnegin, CP77, bir memeli hücre hattinda ekspresyon için kodon optimize edilmistir. Uygun vektörler ve plazmidler teknikte bilinir.
Bir uygulamada, polinükleotid, CP77'yi kodlar. Bazi uygulamalarda, polinükleotid, (memeli hücrelerinde, örnegin, CHO'da, ekspresyon için kodon optimize edilmis) SEQ lD NO: 1'de izah edilen nükleotid dizisini içerir. Bazi uygulamalarda, izole edilmis polinükleotid, SEO ID NO: 1'de izah edilen nükleotid dizisini veya bunun SEQ ID NO: 2'de gösterilen amino asit dizisini kodlayan bir varyantini içerir.
Bir baska uygulamada, mevcut spesifikasyon, bir virüs konak aralik geninin bir memeli hücresine kararli yerlestirilmesi için bir transpozisyon aktarim vektörünü tarif etmistir.
Mevcut tarifname ayrica, bir virüse büyük ölçüde permisif-olmayan bir memeli veya daha yüksek ökaryotik kültür hücresini bir virüse permisif olan bir hücreye transforme etmenin bir yöntemini de saglar, yöntem hücreyi CP77'yi eksprese etmesi için transforme etmeyi içerir.
Bazi uygulamalarda, yöntem hücreyi bir memeli promotörü kontrolü altinda bir kodlanmis CP77'nin ekspresyonunu yönlendirebilen bir vektör ile transfekte etmeyi Bazi uygulamalarda, vektör, bir memeli promotörü kontrolü altinda CP77'yi kodlayan bir transpozisyon aktarim vektörüdür.
Bir sinirlayici-olmayan uygulamada, promotör, bir hücresel konstitütif promotördür, örnegin, insan EF1 alfa (insan elongasyon faktörü 1 alfa geni promotörüdür), DHFR (dihidrofolat redüktaz geni promotörüdür) veya konak hücre üzerinde anlamli toksik etkiler yoklugunda viral propagasyonu sürdürmek için CP77'nin bir yeterli düzeyinin eKSpresyonunu yönlendiren PGK (fosfogliserat kinaz geni promotörüdür). Promotörler ayrica, indüklenebilen, örnegin, hücresel indüklenebilen promotör de olabilir, MTH (bir metalotiyonein geninden) viral promotörler, örnegin, CMV, RSV, SV4 ve MOU3 de memeli hücrelerinde kullanilir.
Bazi uygulamalarda, hücre, bir CHO hücresidir.
Bazi uygulamalarda, virüs, bir çiçek virüsüdür.
Bazi uygulamalarda, çiçek-virüsü, insanda patojenik-olmayan veya kopyalamayan bir vaksiniya türevidir. büyük ölçüde veya esas olarak yoksun olan materyal kastedilir. Örnegin, burada kullanildigi sekliyle, bir "izole edilmis polinükleotid" veya bir "izole edilmis polipeptit" ve benzerlerini, bir polinükleotid veya polipeptit molekülünün bunun dogal hücresel ortamindan ve hücrenin diger bilesenleri ile iliski halinden in vitro izolasyonunu ve/veya saflastirilmasini ifade eder. Sinirlandirma olmaksizin, bir izole edilmis bilesim, kompleks, polinükleotid, peptit veya polipeptit, saflastirma ile izole edilen bir natif diziyi veya rekombinant veya sentetik araçlar ile üretilen bir diziyi ifade edebilir.
Varyantlar, bir referanslanmis moleküle veya bunlarin komplementer formlarina bunun tümü veya parçasi boyunca yeterli sekilde benzer olan, böylece selektif hibridizasyonun orta derecede veya yüksek derecede zorlayici kosullar altinda basarilabildigi veya en az yaklasik 15 nükleotid içeren bir karsilastirma penceresi boyunca bir referanslanmis çiçek-virüsü konak aralik faktörünü tanimlayan nükleotid dizilerine yaklasik %60 ila %90 veya %90 ila 98 dizi özdesligine sahip olan, nükleik asit moleküllerini içerir. Tercihen, hibridizasyon bölgesi, yaklasik 12 ila yaklasik 18 veya daha fazla nükleobaz uzunlugundadir. Tercihen, bir özel nükleotid dizisi ve referans dizi arasindaki yüzde özdeslik, en az yaklasik %80 veya %85 veya daha tercihen fazla, benzerdir. %80 ile %100 araligindaki yüzde özdeslikleri kapsanir. Nükleotid dizisinin uzunlugu, bunun önerilen fonksiyonuna baglidir. Homologlar kapsanir. türlerden olanlari içeren fonksiyonel ve yapisal olarak ilgili molekülleri ifade eder.
Homologlar ve ortologlar, varyantlarin örnekleridir.
Nükleik asit dizisi özdesligi, asagidaki sekilde belirlenebilir. Söz konusu nükleik asit dizisi, BLASTM programi versiyon Nuclei'c Aci'ds Research Genbankasi veri tabanini (http://www.ncbi.nln.nih.gov/blast/ internet sitesinden erisilebilir), arastirmak için kullanilir. Program, bosluk-olusturulmamis modda kullanilir.
Varsayilan filtreleme, düsük karmasiklik bölgelerinden kaynaklanan dizi homolojilerini uzaklastirmak için kullanilir. BLASTM'nin varsayilan parametreleri kullanilir.
Amino asit dizisi özdesligi, asagidaki sekilde belirlenebilir. Söz konusu polipeptit dizisi, BLASTP programi kullanilarak, bir polipeptit dizisi veri tabanini, örnegin, Genbankasi veri tabanini (http://www.ncbi.nln.nih.gov/blast/ internet sitesinden erisilebilir), arastirmak için kullanilir. Program, bosluk-olusturulmamis modda kullanilir. Varsayilan filtreleme, düsük karmasiklik bölgelerinden kaynaklanan dizi homolojilerini uzaklastirmak için kullanilir. BLASTP'nin varsayilan parametrelerinden yararlanilir.
Düsük karmasiklik dizileri için filtreleme, SEG programini kullanabilir. nükleik asit molekülünün tanimlanmis sicaklik ve tuz konsantrasyonu kosullari altinda bir hedef nükleik asit molekülüne (örnegin, bir DNA veya RNA blotu, örnegin, bir Southern blot veya Northern blot, üzerine immobilize edilmis bir hedef nükleik asit molekülüne) hibridize olma yetisini ifade eder. Yaklasik 100 bazdan daha büyük olan nükleik asit molekülleri açisindan, tipik zorlayici hibridizasyon kosullari, natif dubleksin erime sicakliginin (Tm) en fazla 25°C ila 30°C (örnegin, 10°C) altindadir (bakiniz, genel olarak, Sambrook et al., (yukarida); Ausubel et al., (1999)). Yaklasik 100 bazdan daha uzun olan nükleik asit molekülleri için Tm, Tm=81,5+% formülü ile hesaplanabilir. 100 bazdan daha kisa olan nükleik asit molekülleri açisindan, emsal zorlayici hibridizasyon kosullari Tm'nin 5°C ila 10°C altindadir. yerlestirilebilecegi veya klonlanabilecegini, bir plazmidden, bakteriyofajdan, mayadan, virüsten, memeliden, kustan, sürüngenden veya baliktan türetilen, uygun sekilde bir DNA molekülü kastedilir. Bir vektör tercihen, bir veya birden fazla essiz restriksiyon yeri içerir ve bir hedef hücre veya doku veya bir progenitör hücre veya bunun dokusunu içeren bir tanimlanmis konak hücre için otonom replikasyon yapabilir veya klonlanmis dizinin yeniden-üretilebilir olacagi sekilde tanimlanmis konagin genomuna entegre edilebilir. Bu dogrultuda, vektör bir otonom bir sekilde kopyalayan vektör, yani, bir ekstra-kromozomal varlik olarak var olan, replikasyonu kromozomal replikasyondan bagimsiz olan, bir vektör, örnegin, bir lineer veya kapali dairesel plazmid, bir ekstra- kromozomal eleman, bir mini-kromozom veya bir yapay kromozom, olabilir. Vektör, kendi kendin replikasyonu garantilemek için herhangi bir araç içerebilir. Alternatif olarak, vektör, konak hücreye uygulandiginda, genom içine entegre edilen ve içine entegre edildigi kromozom(lar) ile birlikte kopyalanan bir vektör olabilir. Bir vektör sistemi, bir tek vektör veya plazmid, birlikte konak hücrenin genomuna uygulanacak olan toplam DNA'yi içeren iki veya daha fazla vektör veya plazmid veya bir transpozon, içerebilir. Vektör seçimi tipik olarak, vektörün, vektörün içine uygulanacagi konak hücre ile uyumluluguna bagli olacaktir. Vektör ayrica, uygun transformantlarin seleksiyonu için kullanilabilen bir seleksiyon belirteci, örnegin, bir antibiyotik direnç geni de içerebilir. Bu tarz direnç genlerinin örnekleri, teknikte uzmanligi olan kisiler tarafindan ayrica asagidakileri de içerdigi sayilir: transkripsiyonel ve/veya translasyonel regülatör dizilerden ve/veya bir kodlama bölgesinden ve/veya aktarilmamis dizilerden (yani, intronlardan, 5'- ve 3'-aktarilmamis dizilerden) olusan bir klasik genomik gen; veya genin kodlama bölgelerine (yani, ekzonlara) ve 5'- ve 3'-aktarilmamis dizilerine karsilik gelen mRNA veya CDNA. baglanmis kodlama dizisinin ekspresyonu için gerekli olan nükleik asit dizileri (örnegin, DNA) kastedilir. Prokaryotik hücreler için uygun olan regülatör diziler, örnegin, bir promotörü ve opsiyonel olarak bir cis-etki eden diziyi, örnegin, bir operatör dizisini ve bir ribozom baglama yerini içerir. Ökaryotik hücreler için uygun olan kontrol dizileri, promotörleri, poliadenilasyon sinyallerini, transkripsiyonel hizlandiricilari, translasyonel hizlandiricilari, mRNA kararliligini modüle eden ön-bilgi veya arka-bilgi dizilerini ayni zamanda bir transkribe edilmis polinükleotid tarafindan kodlanan bir ürünü bir hücre içindeki bir intraselüler kompartimana veya ekstraselüler ortama hedeflemek için hedefleme dizilerini içerir.
Komplementer diziler ve bu dizilerin parçalari kapsanir. Bir nükleik asit molekülü ile baglantili olarak kullanildiginda "kompleman" ve "komplementer" terimi, Watson-Crick baz-eslesmesi ile belirlendigi üzere komplementer nükleik asit dizisini ifade eder. Örnegin, 5'CCATGS' nükleik asit dizisinin komplemani, 5'CATGGS' dizisidir. (Örnegin, toplam hücresel) DNA veya RNA içinde bulundugunda, zorlayici kosullar altinda bir molekülün yalnizca bir özel nükleotid dizisini baglamasini, bununla dubleks olusturmasini veya buna hibridize olmasini ifade eder.
Burada birbiri ile degistirilebilir bir sekilde kullanilan, "süje" veya “birey" veya "hasta" terimleri, bunlar için terapinin veya profilaksinin arzu edildigi herhangi bir süjeyi, özel olarak bir omurgali süjeyi ve hatta daha özel olarak bir memeli süjeyi, ifade eder.
Bulusun kapsami içinde kalan uygun omurgali hayvanlar, bunlarla sinirli kalmamak kaydiyla, primatlari, kusgilleri, çiftlik hayvanlarini (örnegin, koyunlari, inekleri, atlari, esekleri, domuzlari), laboratuvar test hayvanlarini (örnegin tavsanlari, fareleri, siçanlari, gine domuzlarini, hamsterlari), evcil hayvanlari (örnegin, kedileri, köpekleri) ve yakalanmis vahsi hayvanlari (örnegin, tilkileri, geyikleri, yaban köpeklerini) içerir.
Tercih edilen bir süje, bir primattir, örnegin, tedaviye veya profilaksiye ihtiyaci olan bir insandir. Bununla birlikte, yukarida bahsedilen terimlerin semptomlarin var oldugunu ima etmedigi anlasilacaktir.
Burada saglanan çesitli uygulamalar asagidaki sinirlayici-olmayan örnekler ile ilaveten tarif edilir.
VACV-COP, CHO hücrelerinde büyüyemez Materyaller ve Reaktifler e CHO: SA-Pathology 7.05.2004 - Büyüme ortami: RPMI, %10 FBS, Pen/Strep - Idame ortami: RPMI, % 2 FBS, Pen/Strep CHO ve Vero hücreleri, her bir hücre hatti için bir B-Gözlü plaka (6-WP) içinde konflüansa kadar kültürlenmistir. Her bir göz, oda sicakliginda 45 dakika boyunca 4x10(4) pfu VACV-COP VSSO2 ile enfekte edilmistir ve akabinde bundan sonra 37°C/%5 COg'de inkübe edilmistir. Her bir hücre hattindan, 2 gözün içerikleri burada enfeksiyondan 24 saat, 48 saat, 72 saat sonra hasat edilmistir ve bir araya getirilmistir (havuzlanmistir). Viral ekstraktlar, üç kere dondurma-çözülme ile yapilmistir ve titrasyonlar için hazir olana kadar -80°C'de saklanmistir. Her bir ekstrakt, Örnek 4'te tarif edilen Protokol'de tarif edildigi üzere Vero hücreleri kullanilarak titre edilmistir.
Dondurma-çözülmeden sonra, bir homojenizasyon probu, bu büyük çözünmeyen topaklari dagitip parçalamak için kullanilabilir. Hasat edilecek olan her bir göz, 2 mL MM içerir. Her bir zaman noktasi için, her bir zaman noktasi için 4 mL'Iik bir toplam hacim vermesi için 2 göz havuzlanmistir. TE tamponu, her bir zaman noktasi için 6 mL'Iik bir toplam hacim vermesi için eklenebilir.
Titrasyon sonuçlari, viral verim sonuçlari ve üretim verimleri, Tablo 1'de tablo haline getirilir. Sonuçlar, VACV-COP'nin, burada viral üretimin zamanla arttigi Vero hücrelerinden farkli olarak CHO hücrelerinde bir düsük moi'den çogalamadigini gösterir. VACV-COP, CHO hücrelerinde permisif-degildir.
Vero 'ya kiyasla CHO'da VACV+PH22 [CP77] için çok-adimli büyüme - CP77, VACV'de aktiftir CP77'yi kodlayan inek çiçek virüsü BR025L genini eksprese eden bir rekombinant VACV-COP'nin (VACV-PH22 [CP77]) CHO'daki propagasyon potansiyeli. bir çok- adimli büyüme çalismasinda Vero hücrelerine kiyasla belirlenmistir.
VACV-PH22, CHO konak aralik proteinini, CP77'yi, kodlayan inek çiçek virüsünün Brighton susundan natif 025L ORF'yi eksprese eden bir rekombinant vaksiniya virüsü Kopenhag susudur. Vaksiniyada bu ORF ayrica, BR025L natif promotörü kontrolü altindadir. Natif BR, ayrica bir kirmizi flüoresan proteini, DsRed-Expressz de kodlayan pPH22 olusturmak için klonlanmistir. pPH22, BR025L genini ve DsRed genini VACV-COP'nin BiQR ORF'si içine yerlestirecek olan, çözünebilen ve hücre yüzeyi IFN alfa/beta reseptör proteinini kodlayan, bir entegrasyon vektörüdür. BR025L'nin ve DsRed'in VACV-COP içine yerlestirilmesi, CHO'yu bir düsük çokluluktaki VACV-COP ile enfekte etmenin ve pPH22 ile transfeksiyonun bir sonucu olarak homolog rekombinasyon ile basarilmistir. Yalnizca BR025L genini içeren virüs, CHO hücrelerinde ilaveten çogaltilacaktir, bu kirmizi flüoresan enfekte edilmis hücrelerin veya plaklarin varligi ile görsel olarak dogrulanabilir.
Homolog rekombinasyondan 3 gün sonra ekstrakte edilen virüs, CHO içinde üç kere çogaltilmistir ve akabinde CHO hücrelerinde bu çok-adimli büyüme çalismasinda kullanilmadan önce Vero hücreleri içinde titre edilmistir.
Materyaller ve reaktifler - VACV-PH22 [CP77], Titre: 8x106 pfu/mL - CHO: SA-Pathology 7.05.2004 - Büyüme ortami: CHO ve Vero için RPMI, %10 FBS, Pen/Strep CHO ve Vero hücreleri, her bir hücre hatti için 2 x T25 balonlar içinde konflüansa kadar kültürlenmistir. Her bir hücre hattinin 1 balonu, oda sicakliginda 45 dakika boyunca ve akabinde bundan sonra 37°C/%5 COz'de inkübe edilmistir. Her bir hücre hattindan, her bir balonun içerikleri burada enfeksiyondan 96 saat sonra hasat edilmistir. Viral ekstraktlar, üç kere dondurma-çözülme ile yapilmistir ve titrasyonlar için hazir olana kadar -80°C'de saklanmistir. Her bir ekstrakt, Örnek 4'te detaylandirilan protokolde tarif edildigi üzere Vero hücreleri kullanilarak 24 gözlü plaka formatlari halinde titre edilmistir.
Enfeksiyonlar, T25 balonu, her bir hücre hatti için 2 balon içinde, yapilmistir, burada balon 1, VACV-COP ile enfeksiyondur ve balon 2, VACV-PH22 ile enfeksiyondur.
Hasat etme yalnizca, enfeksiyondan 96 saat sonra gerçeklestirilmistir. Sonuçlar, Tablo 2'de tablo haline getirilir. Tablo Z'den, asagidakiler görülebilir: CHO hücreleri, VACV- COP viral projeni üretimini destekleyemez. Bu, Örnek 1'de tarif edilen sonuçlari konfirme eder. ilaveten, VACV-COP, 200 katin üstündeki inokülüm düzeyine çogaltilmis bir permisif hücre hattinin, bu çalismada Vero hücrelerinin, enfeksiyonu olarak canlidir, bu nedenle, buradaki konak hücre restriksiyonundan dolayi, sonuçlar CHO'da görülür. Bununla birlikte, CP77, bir rekombinant vaksiiya virüsü, VACV-PH22, tarafindan eksprese edildiginde, yaklasik 700 kat inokülüm amplifikasyonu basarilmistir. Vero hücrelerinin VACV-PH22 ile enfeksiyonu ayrica inokülümü de çogalttigindan, CP77'nin ekspresyonu vaksiniya konak araligini yalnizca CHO hücreleri ile sinirlandirmaz. Bununla birlikte, amplifikasyon düzeyi, CP77 olmadan vaksiniya kadar iyi olmayabilir. Titrasyon sonuçlarinin standart hatasi bu derece büyük oldugundan, verimdeki farklilik anlamli olmayabilir.
Bu sonuçlar, viral genomdan eksprese edilen CP77'nin bir permisif hücre substratindan, örnegin, Vero'dan, beklenene benzeyen verimler üretme ile permisif- olmayan CHO hücre hattinda VACV-COP'nin çogalmasina olanak saglamada yeterli olmaktan fazlasi oldugunu gösterir.
CHO hücrelerinin vaksiniya virüsü enfeksiyonu sirasinda CP77 proteini için olasi bir fonksiyon, Hsiao et al., (2006), tarafindan bildirilmistir. Bunlar, CP77'nin HMG20A'yi bagladigini ve bunu viral fabrikalar içinde yer alan yeni sentezlenmis vaksiniya genomundan uzaklastirdigini, böylece vaksiniya yasam siklusunun CHO hücrelerinde devam etmesine olanak sagladigini öne sürer. CP77'nin, HMG20a'nin genomu baglamasindan ve "kilitlemesinden“ dolayi aksi durumda CHO hücrelerinde erisilebilir olmayacak olan yeni sentezlenmis genomun paketleme için erisilebilir olmasina olanak sagladigi öne sürülür. CP77`nin fonksiyonu permisif hücre hatlarinda, örnegin, Vero'da, viral amplifikasyon için gerekli olmadigindan, burada bu fonksiyona sahip olan, en azindan CHO hücrelerinde inaktif olabilen veya bulunmayabilen, ancak permisif hücre hatlarinda aktif olabilen veya bulunabilen, bir alternatif es-deger protein, hatta bir hücresel protein, oldugu burada önerilir. Altematif protein, CP77'yi gereksiz hale getirebilir ve böylece vaksiniyanin evrimi üzerine, bunun fonksiyon kaybi genis konak araligi için esansiyel olmadigindan, bu müteakiben silinebilir veya yeniden- düzenlenebilir. p-LLO7-CHO'nin (CP77'yi eksprese eden poliklonal hücre hattinin) yapilmasi Bir CHO hücre hatti, CP77 proteinini eksprese etmesi için yapilmistir. Bir yesil flüoresan protein (EGFP) eksprese eden bir VACV-COP rekombinant virüsü, enfeksiyonun bir kaç günü içinde bir konflüent enfeksiyona gelisen plaklar olusturur.
Vaksini'ya-COP (SCV Güçlendirilmis Yesil Flüoresan Proteinin (EGFP) protein kodlama dizisine operatif olarak baglanmis bir güçlü vaksiniya virüsü erken/geç promotöründen olusan ve çiçek-virüsü erken transkripsiyonel durdurma dizisi ile sonlandirilan A39R ORF bir ekspresyon kaseti içine yerlestirilmis bir rekombinant vaksiniya virüsüdür. Permisif-olmayan ve permisif hücrelerin enfeksiyonu üzerine, EGFP enfekte edilmis hücreler içinde eksprese edilecektir, bu bir flüoresan mikroskop kullanilarak görsellestirilebilir. Permisif hücrelerde, yesil flüoresansin, virüs hücrelerin popülasyonu boyunca yayildikça, hücreden hücrede yayildigi görülebilir.
CP77 proteini kodlama dizisi, inek çiçek virüsü Brighton Red susu UhiProtKB/Swiss- dizisini geri-olusturma (geri translasyon veya ters translasyon) ile GeneArt GmbH (Almanya) tarafindan sentetik olarak yapilmistir ve memeli hücresinde (CHO hücrelerinde) ekspresyon için kodon optimize edilmistir. CP77'nin protein kodlama dizisinin ekspresyonu için kodon optimize edilmis nükleotid dizisi için bakiniz SEQ ID pPH51'den (kodon optimize edilmis CP77 protein kodlama dizisi barindiran bir klonlama plazmidinden) kodon optimize edilmis CP77 protein kodlama dizisi, PCR primerleri kullanilarak PCR ile çogaltilmistir, burada 5' primer, baslangiç kodonu etrafina bir kozak dizisi eklemek için tasarlanmistir ve 3' primer, durdurma kodonundan önce bayrak-etiket dizisi eklemek için tasarlanmistir. Çogaltilmis PCR ürünü DNA2.0 Bsa I klonlama yeri vasitasiyla alt-klonlanmistir. Bsal içine klonlama etkili bir sekilde, pLL07 olusturmak için komet GPF kodlama dizisini CP77 proteini kodlama dizisi ile degistirir. CP77 simdi, insan konstitütif Elongasyon Faktörü 1 alfa promotörü (EF1a) kontrolü altinda olan bir hale gelir ve her ikisi transfekte edilmis hücrelerin genomu içine kararli bir sekilde entegre edildiginde, higromisin direnç geni ile birlikte-eksprese CHO'nun CP77'nin ve higromisin direnci ekspresyon kasetlerinin transpozon yardim/i kararli içeri yerlestirilmesi ile transdÜksi'yonu.' CHO hücreleri bir 6 gözlü plakalarin gözleri içine ekilmistir, böylece bir gece boyu inkübasyondan sonra, bunlar %50 konflüans civarindadir. Qiagen firmasindan Effectene transfeksiyon reaktifi kullanilarak, 1 ug pLL07, üreticinin talimatlari izlenerek %50 konflüent CHO hücrelerinin 1 gözüne transfekte edilmistir. Transfekte edilmis hücreler akabinde, büyüme ortami içinde gece boyu inkübe edilmistir. Sonraki gün, ortam aktarilmis hücreleri seçmek için 500 uglmL higromisin B içeren büyüme ortami ile degistirilmistir. Seleksiyon ortami, her 2-3 günde bir degistirilmistir ve aktarilmis hücreler sayi açisindan büyümeye basladiginda, bunlar TrypLE Select (Life Technologies) kullanilarak geri-kazanilmistir ve ilave hücre genislemesi için bir T25 balon içine ekilmistir.
CP77 ekspresyonunun western blotlama (Bayrak Etiketli) ile dogrulanmasi Tavsan anti-CP77 serum/arini meydana getirme: Tavsanlara, CP77 proteininin bir kisa iç amino asit dizisini temsil eden KHL proteinine bagli bir 15 amino asitlik peptit enjekte edilmistir. Bu amino asit dizisi asagidaki sekildedir: SGSDVNIRSNNGYTC - arasindaki amino asit pozisyonlari. 1 ay arayla, toplamda üç enjeksiyon, bu KHL konjuge edilmis amino asit dizisine karsi antikorlar meydana getirmek için yapilmistir. Enjekte edilmis tavsandan elde edilen kan, eksprese edilmis bakteriyel ve Ni-NTA saflastirilmis N-ucu His-etiketli CP77 proteinine karsi western blot ile test edilmistir. Tavsan anti-CP77 serumunun, rekombinant CP77 proteinini net bir sekilde tanidigi gösterilmistir.
CP77 ekspresyonunun p-LL07-CHO ile test edilmesi: Iki T25 balonuna, CHO ve p- LLO7-CHO ekilmistir ve bunlar her bir balon içindeki hücre tek-katmanlari %100 konflüansa ulasana kadar kültürlenmistir. Her bir balondan elde edilen hücreler, hasat edilmistir, PBS ile yikanmistir ve akabinde 200 uL içinde yeniden-süspanse edilmistir.
Buna, yeniden-süspanse edilmis hücrelerin her bir tüpüne 50 pL 5X SDS-PAGE yükleme tamponu eklenmistir ve akabinde bunlar 98°C'de 5 dakika boyunca inkübe edilmistir. Her bir hücre proteini ekstraktinin 15 uL'si, %10'luk iki SDS-PAGE jeline yüklenmistir, elektroforez uygulanmistir ve akabinde elektro-blotlama ile Hybond ECL nitroselüloz üzerine blotlanmistir.
Elektro-blotlanmis membranlara akabinde, membran üzerindeki tüm mevcut spesifik- olmayan antikor baglama yerlerini bloke etmek için Tween 20 içeren Tris Tamponlu Salin (TBST) içinde çözünmüs %5'lik yagsiz süt tozu ile oda sicakliginda 1 saat boyunca muamele edilmistir. Membranlar akabinde, antikorlar ile problanmadan önce TBST içinde bir kaç kere yikanmistir. Membran 1, HRP içinde konjuge edilmis anti- ile gece boyu 4°C'de problanmistir. Membran 2, anti-CP77 anti-serumlarinin 1:100'Iük seyreltmesi ile gece boyu 4°C'de problanmistir, TBST ile 3 kere yikanmistir ve akabinde sekonder antikor, HRP konjuge edilmis anti-tavsan antikorunun (GE Healthcare) 1:5000'Iik seyreltmesi ile 2 saat boyunca problanmistir. Her iki membran akabinde TBST ile 3 kere yikanmistir ve kullanici manüeli ile talimat verildigi üzere bunlara ECL western blotlama saptama reaktifleri (GE Healtheare) ile muamele edilmistir ve bunlar X-isini filmine maruz birakilmistir.
CHO'da ve p-LL7-CHO'da plak analizi: CHO ve p-LL7-CHO hücreleri, çok sayida 6 gözlü plakalata ekilmistir ve hücre tek-katmanlari %100 konflüent olana kadar kültürlenmistir.
Bir erken/geç vaksiniya virüsü promotörü (SCV401C) kontrolü altinda bir EGFP ekspresyon kaseti (yesil flüoresan protein) barindiran bir rekombinant Vaksiniya virüsü (Kopenhag susu), hücreleri enfekte etmek için kullanilmistir. SCV401C'nin bilinmeyen titresinden dolayi, 10 ul stok virüs ilk olarak, 1 ml MM ortami (Seyreltme 1: 1:100) içinde seyreltilmistir ve akabinde her bir göz 500 pl viral diluent ile enfekte edilmistir.
Enfeksiyondan sonraki Gün 1'de, çok sayida hücrenin yesil flüoresan isik yaydigi yerlerde yüksek moi enfeksiyon fark edilmistir. 2 ml MM ortamina 100 pl Seyreltme 1 ekleme ile Seyreltme 1'in bir ilave 1:20'Iik seyreltmesini (Seyreltme 2) gerçeklestirmeye karar verilmistir. Akabinde, bu her bir gözü 500 pl Seyreltme 2 ile enfekte etmek için kullanilmistir.
Viral enfeksiyonlar, GFP filtre (Kat#U-MGFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop altinda (Olympus IX51) incelenmistir. Görüntü, ceIISens Digital lmaging Software (Olympus) kullanilarak çekilmistir.
Sonuçlardan, yesil flüoresan protein eksprese eden VACV-COP'nin (SCV40lC) beklenildigi üzere CHO hücrelerinde çogalmadigi görülmüstür. Yesil flüoresan isik yayan tek hücreler, hücreye giren, bunun EGFP'yi içeren genini eksprese eden ancak yeni enfeksiyöz viral parçaciklar üretemeyen ve bundan dolayi enfeksiyonu komsu hücrelere yayamayan virüsün sonucudur. Bununla birlikte, CP77 eksprese eden bir CHO hücre hattinda, vaksiniya virüsü, enfeksiyondan sonraki gün 1 ile enfeksiyonun odaklarini olusturmak için komsu hücrelere yayilan yeni enfeksiyöz virüsler üretebilir.
Bu enfeksiyon Odaklari, enfeksiyondan hemen sonraki iki gün ile bir konflüent enfeksiyon haline gelir, burada gün 3 ile tüm hücre tek-katmani SCV401C ile enfekte edilmistir. Konak aralik proteini, CP77, eksprese eden CHO hücreleri, parental (natif) CHO hücrelerinden farkli olarak vaksiniya virüsü enfeksiyonlarina permisiftir.
HMGZOA, HMG kutu alani içeren proteinlerin bir familyasina aittir. HMG proteinleri, bozulmus DNA yapilarini, örnegin, krusiformlari, taniyan kromozom yeniden- modelleme proteinleridir. Bunlar ayrica, DNA içindeki minör oyugu baglama ile DNA egilmesini de indükleyebilir. Böylelikle, HMG kutusu-içeren proteinlerin DNA replikasyonu, rekombinasyonu veya onarimi sirasinda kromozom yeniden- modellenmesinde önemli oldugu düsünülür. Buna ek olarak, belirli HMG kutusu-içeren proteinler, promotör yerindeki transkripsiyon faktörleri ile etkilesime girme ile fen transkripsiyonunu etkileyebilir.
Hsiao et al., 2006, tarafindan yayimlanan çalisma, CHO-K1 hücrelerinde CP77'nin HMG20A'yi bagladigini göstermistir. Bu konak hücre proteininin, HMG20A'nin, vaksiniya ile enfekte edilmis CHO hücrelerinin viral fabrikalarinda viral DNA'yi bagladigi görülür ve bu konak hücre proteininin viral fabrikalar içindeki DNA'yi "kilitledigi" ve akabinde vaksiniya yasam siklusunun sonraki evresini önledigi ve böylece projeni enfeksiyöz virüsün üretilmesini önledigi öne sürülmüstür. Inek çiçek virüsü tarafindan CP77'nin ekspresyonunun, HMG20A'yi viral DNA'nin disina çikardigi ve viral yasam siklusunun projeni enfeksiyöz virüs parçaciklarinin nihai üretimi ile yeniden- baslamasina izin verdigi görülür.
Bununla birlikte, bir viral enfeksiyon yoklugunda CHO'da CP77'nin ekspresyonu ile, bir kisi bu proteinin, nükleusa yer degistirmeden önce sitoplazma içinde bulunan yeni sentezlenmis HMG20A'yi sikistirmasini bekleyecektir. Eger durum bu olsaydi, nükleus içindeki HMG20A'nin fonksiyonu kaybedilecekti ve bu DNA replikasyonu, rekombinasyonu ve onarimi sirasinda kritik bir rol oynadigindan arti gen transkripsiyonu sirasinda bunun fonksiyonundan dolayi, bir kisi CP77'nin ekspresyonunun hücre çogaltilmasi ve idamesi sirasinda CHO hücresinin bütünlügüne zarar vermesini bekleyecektir. CP77 eksprese eden CHO hücre hatti, parental CHO hücre hattina kiyasla çok sayida jenerasyon boyunca bunun kopyalama yetisi üzerinde fark edilebilen etkiler olmadan bir sürekli kültür olarak kolaylikla idame ettirildiginden, bunun beklenmedik bir sekilde söz konusu durum olmadigi görülür. Çok-adimli büyüme çalismalari Çok-adimli büyüme kinetigi çalismasi, p-LLO7-CHO'da yürütülmüstür: Konak aralik geni CP77 eksprese eden bir CHO hücre hattinin vaksiniya virüsü enfeksiyonuna permisif dogasi degerlendirilmistir ve viral üretim düzeyi bir dogal olarak permisif insan hücre hattinda - 1438'de - elde edilen üretim düzeyleri ile karsilastirilmistir.
Amaç, p-LL07-CHO, CHO ve 1435 hücre hatlarinda VACV-COP'nin propagasyon karakteristigini karsilastirmaktir. Bu çalismada, p-LL07-CHO tarafindan eksprese edilen CP77'nin islevselligi, CHO (permisif-olmayan) ve 1438 (permisif) hücrelerde bunun amplifikasyon karakteristigine kiyasla bu hücre hattinda VACV-COP'nin amplifikasyon karakteristigini inceleme ile test edilmistir.
Materyaller ve Yöntemler Hücre hatti düzenegi CHO düzenegi: Bir 6-gözlü Plaka'ya (6WP) CHO hücreleri ekilmistir ve plaka büyüme ortami (RPMI+%10 FBS) içinde konflüent olanak kadar kültürlenmistir.
Ortami (RPMI+%1O FBS) içinde konflüent olanak kadar kültürlenmistir. p-LL07-CHO düzenegi: Bir 6-gözlü Plaka'ya (6WP) p-LLO7-CHO hücreleri ekilmistir ve plaka büyüme ortami (RPMI+%1O FBS+500 pg/ml Higromisin B) içinde konflüent olanak kadar kültürlenmistir.
VACV-COP'n/n seyre/tilmesr'.' Her bir 6WP'nin her bir gözü, 500 uL'Iik bir toplam hacim içinde 0,01 pfu ile enfekte edilmistir. %100 konflüansta her bir göz için hücre sayisinin 4x106 hücre oldugu varsayilmistir. 0,01 pfu/göz olan bir enfeksiyon orani Için, her bir göz için içinde 8x104pfu/mL'ye seyreltilmistir.
Enfeksiyon/ar: Kültür ortami, her bir plakanin her bir gözünden uzaklastirilmistir, buraya seyreltilmis virüsün 500 uL'si eklenmistir ve hücrenin virüsü adsorbe etmesi için oda sicakliginda 1 saat boyunca inkübe olmaya birakilmistir. Virüs inokülümü akabinde uzaklastirilmistir ve her bir enfekte edilmis göz, 1 mL steril PBS ile bir kere yikanmistir ve akabinde her bir göz için 2 mL MM içinde 37°C/%5 COz'de inkübe edilmistir.
Hasat etme: Her bir plakadan gözlerin iki kümesi, burada enfeksiyondan sonra asagidaki zamanlarda hasat edilmistir: 24 saat, 48 saat ve 72 saat. Hasat etme gününde, hücreler kültür ortami içine kazinmistir, burada her bir hücre hattindan gözlerin iki kümesi birlestirilmistir ve hücreler 1000 9'de 5 dakika boyunca sentrifügasyon ile pelet haline getirilmistir. Her bir hücre peleti, 1 mL 10 mM TrisHCI, pH 8, içinde yeniden-süspanse edilmistir. Yeniden-süspanse edilmis pelet akabinde, üç siklus dondurma-çözülmeye tabi tutulmustur ve titrasyon için hazir olana kadar - 80°C'de saklanmistir.
Titrasyonlar, 24-gözlü plakalarda %100 konflüansa kadar kültürlenmis Vero ve 1438 hücrelerinde yapilmistir.
Seyreltmeler: Viral ekstraktlar, dondurucudan çikarilmistir, bunlarin buzu çözülmüstür ve herhangi görünebilir topagi homojenize etmek için sonike edilmistir. Viral ekstraktlar, idame ortami içinde 10'8'e seri seyreltilmistir.
Enfeksiyonlar.' Büyüme ortami her bir gözden uzaklastirilmistir ve her bir seyreltmenin 1 mL'si (her bir seyreltme için 4 göz, 10'2 seyreltmeden baslayarak her bir virüs için bir plaka) ile oda sicakliginda 1 saat boyunca enfekte edilmistir. Inkübasyondan sonra, her bir plaka inkübatöre yerlestirilmistir ve plaklarin gelismesi için 3 gün boyunca 37°C/%5 COz'de inkübe edilmistir.
Titreriin Hesaplanmasi: 20 ila 50 plak içeren seyreltme, plaklar sayilmistir ve akabinde ortalamasi alinmistir. Bu ortalama sayi, seyreltmenin çarpmaya göre tersi ile çarpilmistir ve 1 mL enfeksiyon kullanildigindan, elde edilen sayi, pfu/mL cinsinden titre olacaktir.
Standart Hatanin Hesaplanmasi: %95 güvende standart hata (SE), asagidaki formül kullanilarak ortalamaya olusturan 4 titrasyon degerinden hesaplanmistir: 1,95 x (SDNn), burada: SD, bir küçük örnekten standart sapmadir, n, titrasyon tekrarlarinin sayisidir (bu durumda 4).
Verimin Hesaplanmasi: Bu, titre edilmis olan viral ekstrakt içindeki virüsün toplam miktardir: Ortalama Titrasyon (pfu/mL) X Viral Ekstraktin Toplam Hacmi = pfu.
Amplifikasyon Oraninin Hesap/anmasi: Bu sayi, inokülüm olarak kullanilan miktara kiyasla kat amplifikasyonunu temsil eder: pfu cinsinden verim/pfu cinsinden inokülüm Çok-adimli büyüme kinetigi çalismalari, 6 gözlü plakalar - her bir zaman noktasi için her bir hücre hatti için iki göz - içinde çalisilmistir. Her bir göz, 4x1 04 pfu VACV-COP ile enfekte edilmistir ve hasat etme için her bir hücre hatti ve zaman noktasi için 2 göz hasat edilmistir ve birlestirilmistir bundan bir viral ekstrakt hazirlanmistir. Bu viral elde edilen 2 birlestirilmis enfeksiyonu temsil eder, akabinde titre edilmistir. Titrasyon, iki indikatör hücre hatti 1438 ve Vero kullanilarak yürütülmüstür.
Titrasyon ve viral verim sonuçlari sirasiyla Tablolar 3'te ve 4'te tablo haline getirilir.
VACV-COP, permisif-olmayan CHO hücrelerinde çogalmamistir, yani, bu girdi inokülümde kullanilan miktara kiyasla daha az virüs üretmistir. Bununla birlikte, konak- aralik geni CP77'yi eksprese eden CHO hücre hattinda virüs amplifikasyonu, (indikatör hücre hatti olarak 1438 hücreleri kullanilan titrasyon sonuçlarina göre) girdi inokülüme kiyasla yaklasik 2000 kat daha fazladir. Permisif hücreden amplifikasyon, girdi inokülüme kiyasla yaklasik 3000 kat daha fazladir. Standart hatalar kesistiginden, p- LL07-CHO ve 1438 hücreleri arasinda amplifikasyondaki farklilik istatistiksel olarak anlamli degildir.
Iki hücre hatti arasindaki viral amplifikasyon Vero indikatör hücrelerinden elde edilen titrasyon sonuçlari kullanilarak karsilastirildiginda, amplifikasyonun 143B hücrelerine kiyasla p-LL07-CHO hücrelerinde marjinal olarak daha fazla oldugu görülecektir, bununla birlikte bu istatistiksel olarak anlamli degildir.
Bu çalismada, viral üretim düzeyi inokülüm olarak kullanilan virüsün miktarina kiyasla çok daha az oldugundan, vaksiniya virüsünün CHO hücrelerinde permisif olmadigi ilaveten konfirme edilmistir. Bununla birlikte, CHO CP77 proteinini kodlayan inek çiçek virüsü konak aralik genini eksprese ettiginde, bu simdi vaksiniya virüsüne permisif hale gelir ve bir permisif hücre hattinda görülen ile ayni düzeylerde virüs üretimini destekler.
Vaksiniyanin üretilmesi amaciyla bu hücre hattini bir "kullanilabilir" permisif hücre substratina dönüstürmek için, bunun yalnizca bir konak aralik geninin, CP77'nin, ekspresyonunu gerektirmesi de kayda degerdir. CHO, bunun bakteriler kadar çabuk büyümesi, bunun biyolojik katki maddeleri, örnegin, Fötal Bovin Serumu için gereklilik olmadan tanimlanmis sentetik kültür ortami içinde kültürlenebilmesi ve bir biyo-reaktör içinde bir hücre süspansiyonu olarak kültürlenebilmesi açisindan bir biyoteknoloji dostu hücre hatti oldugundan, CHO'dan vaksiniya üretme çok arzu edilir. CHO ayrica, biyolojik tibbi ürünler üretmeye yönelik bir öyküye de sahiptir, iyi karakterize edilmistir ve biyo-medikal kontrol ajanslari, örnegin, FDA ve EMEA, tarafindan bilinir ve sevilir.
Bir konstitütif hücresel promotör kontrolü altinda CP77 proteinini eksprese eden bir transgenik CHO hücre hatti, yüksek düzeylerde projeni virüsü üreten bir dogal olarak permisif hücre hattinda görülen ile ayni düzeylerde vaksiniya virüsü replikasyonuna ve propagasyona permisiftir.
CNO-CP77 hücrelerinde MVA propagasyonu CHO'da, 1438 'de ve p-LL07-CHO 'da MVA+GFP Propagasyonu Materyaller ve Yöntemler Büyüme ortami (GM): %10 FBS, 2 mM L-Glutamin, Penisilin ve gentamisin, Hepes ile takviye edilmis RPMI-1640. idame ortami (MM): %2 FBS, 2 mM L-Glutamin, Penisilin ve gentamisin, Hepes ile takviye edilmis RPMl-1640. p-LL07-CHO'yu kültürleme konusunda notlar.' p-LL07-CHO hücre hattinin genel propagasyonu ve idamesi, GM arti 500 ug/mL higromisin B içinde yürütülmüstür, ancak bununla birlikte, plakalamak ve enfeksiyondan önce %100 konflüansa kültürlemek için, hücreler higromisin B içermeyen GM içinde kültürlenmistir.
Hücre düzenegi.' 1438, CHO ve P-LLO7-CHO hücreleri, çok sayida 6-gözlü plakaya ekilmistir ve hücre tek-katmanlari %100 konflüent olana kadar 37°C/%5 COz'de büyüme ortami (GM) içinde kültürlenmistir. Her bir hücre hatti için bir plaka, kültürlenmistir.
Enfeksiyon 0 Bir GFP ekspresyon kaseti (yesil flüoresan protein) barindiran bir rekombinant MVA, G-gözlü plakalar içinde kültürlenmis hücreleri enfekte etmek için kullanilmistir. MVA-GFP'nin bilinmeyen titresinden dolayi, virüs asagida oldugu üzere idame ortami (MM) içinde seri olarak seyreltilmistir: o Seyreltme 1: stok virüsünün 20 ultsi, 2 ml MM ortami (1:100 seyreltme) içinde seyreltilmistir ve kuvvetli vorteksleme ile karistirilmistir. eklenmistir ve kuvvetli vorteksleme ile karistirilmistir. eklenmistir ve kuvvetli vorteksleme ile karistirilmistir. o Seyreltme 4: Seyreltme 3*ün eklenmistir ve kuvvetli vorteksleme ile karistirilmistir. 0 Her bir plakanin bir gözü, asagidaki virüs seyreltmeleri Seyreltme 2'in, Seyreltme 3'ün ve Seyreltme 4'ün 500 ul'si ile enfekte edilmistir. 0 Her bir plaka, 5 günlük bir periyot boyunca inkübe edilmistir ve flüoresan hücrelerin odaklarinin gelismesi ve yayilmasi için incelenmistir. Bu çalismada, Seyreltme 4, bir üç günlük periyot boyunca flüoresan hücrelerin ayirt edilebilen odaklarini üretmistir. Her bir plakanin enfekte edilmemis gözleri, oto-flüoresans için kontrollerdir.
Mikroskop Incelemesi Viral enfeksiyon, GFP filtre (Kat#U-MGFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop (Olympus IX51) altinda incelenmistir. Görüntü, ceIISens Digital Imaging Software (Olympus) kullanilarak çekilmistir.
Bulgular Sonuçlar, yesil flüoresan protein (GFP) eksprese eden MVA'nin beklenildigi üzere CHO ve 1438 hücrelerinde çogalmadigini göstermistir. Yesil flüoresan isik yayan tek hücreler, hücreye giren, bunun GFP'yi içeren genini eksprese eden ancak yeni enfeksiyöz viral parçaciklar üretemeyen ve bundan dolayi enfeksiyonu komsu hücrelere yayamayan virüsün sonucudur. Bununla birlikte, CP77 eksprese eden bir CHO hücre hattinda, MVA, gün 3 ile ilave gelisme ile, enfeksiyondan sonraki gün 1 ile enfeksiyonun odaklarini olusturmak için komsu hücrelere yayilan yeni enfeksiyöz virüsler üretebilir. p-LL07-CHO enfeksiyonundan hasat edilen MVA'nin konak aralik restriksiyonunun konfirmasyonu Hücre düzenegi 143B, CHO ve BHK-21 hücreleri, çok sayida 6-gözlü plakaya ekilmistir ve hücre tek- katmanlari %100 konflüent olana kadar 37°C/%5 COz'de büyüme ortami (GM) içinde kültürlenmistir. Herbir hücre hatti için bir plaka, kültürlenmistir. Örnek 5'te Seyreltme 3 ile enfekte edilmis P-LL07-CHO gözünden MVA+GFP, asagida oldugu üzere 5 günlük enfeksiyondan sonra hasat edilmistir: 0 Hem süpernatant hem de hücreler, gözden toplanmistir ve enfekte edilmis hücreleri pelet haline getirmek Için 1000 9'de 5 dakika boyunca sentrifüj edilmistir. 0 Hücre peleti, 500 ul 100 mM Tris-HCI, pH 8, tamponu içinde yeniden-süspanse edilmistir. 0 Yeniden-süspanse edilmis hücre peleti, enfekte edilmis hücrelerden virüsü serbest birakmak için en az üç kere dondurulmustur ve çözülmüstür.
Enfeksiyon o Ham viral ekstraktin bilinmeyen titresinden dolayi, virüs Örnek 5'teki ile ayni sekilde MM ortami içinde seri olarak seyreltilmistir. 0 Her bir plakanin bir gözü, asagidaki virüs seyreltmeleri Seyreltme 2'nin, Seyreltme 3'ün ve Seyreltme 4'ün 500 pl'si ile enfekte edilmistir. 0 Her bir plaka, 5 günlük bir periyot boyunca inkübe edilmistir ve flüoresan hücrelerin odaklarinin gelismesi ve yayilmasi için incelenmistir. Bu deneyde, Seyreltme 3, bir üç günlük periyot boyunca flüoresan hücrelerin ayirt edilebilen odaklarini üretmistir.
Mikroskop Incelemesi Viral enfeksiyon, GFP filtre (Kat#U-MGFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop (Olympus IX51) altinda incelenmistir. Görüntü, cellSens Digital Imaging Software (Olympus) kullanilarak çekilmistir.
Bulgular CP77 eksprese eden CHO hücre hattindan hasat edilen MVA, permisif-olmayan hücre hatti CHO (hamster) ve 1438 hücresi (insan) içinde çogalamama ile, hala bunun sinirlandirilmis konak araligini idame ettirilmistir. CHO ve 1438 hücrelerinin enfeksiyonu sonrasinda üç günlük periyot boyunca yesil flüoresan fokuslarin yoklugu, enfeksiyöz projeni virüsünün bu hücre hatlarinda üretilmedigini gösterir. Bununla birlikte, sonraki 3 gün boyunca boyut açisindan büyüyen enfeksiyonun yesil flüoresan odaklari enfeksiyondan sonraki gün 1 ile görülebilecegi gibi, bu MVA BHK21 hücreleri (hamster) için bunun konak araligini hala idame ettirmistir.
Sonuçlar 0 Konak aralik proteini CP77'yi eksprese eden CHO hücreleri, parental (natif) CHO hücrelerinden farkli olarak MVA enfeksiyonlarina permisiftir. o CP77 eksprese eden bir CHO hücre hattinda çogaltilmis MVA, permisif- olmayan hücre hatlari, örnegin, CHO ve 1438 (insan), için bunun konak araligini arttirmamistir. pLL07'nin Yapilmasi Alt-Yapi Bilgi: pPH51 DNA sablonundan CP77 (CHO kodon optimize edilmis) CDS PCR ürünü, pLLO7 olusturmak için Clontech InFusion klonlama sistemi ile pJ507-2 (Hyg+) PiggyBac sistemine klonlanmistir. Bayrak-etiketli CP77 dizisi, pJ507-2'nin Bsal'i içine yerlestirilmistir, böylece komet GFP dizisini (SEO ID NO: 3) uzaklastirmistir. pPH51 plazmid DNA'sindan CP77-CHO genini PCR ile çogaltmak için kullanilan PCR primer çifti: AACACGTCTCGGGGGgccgccaccATGTTCGACTACCTGGAAAATGAGGAAGTG (SEQ ID NO: 4) ve CAGGAAGACGCTTTTtcaCTTGTCATCGTCATCCTTGTAATCCTGCTGCTCGAA GATCTTGTACT (SEQ ID NO: 5). Bayrak Etiket dizisi, Inf-LL07-CP77-Rv primeri içinde koyu renkte gösterilir.
Plazmid IÇERI YERLESTIRME/KASET Konfigürasyonu asagidaki sekildedir. Içeri yerlestirme/Kaset Haritasi. pLL7 klonu #3, dizileme için gönderilmistir. pLL07 referans dosyasi "pLLO7_ref.sbd" ile birlikte 15 ABI dizileme dosyalari, burada Lasergene DNAstar Seqman bilgisayar programina girilmistir ve 1 konsensüs bitisik haline birlestirilmistir. Referans dizisinin baslangici ve sonu ile eslesmesi için kirpilmis, bundan sonra referans dizi olarak ifade edilen, hizalama dizileri, konsensüs dizinin olusturulmasi üzerinde etkiye sahip olmama suretiyle hizalamadan silinmistir. Bitisigin konsensüs dizisi, "pLLO7_#3 consensusseq" adli bir DNA dizi dosyasi olarak kaydedilmistir. Bitisigin okuma yönü belirlenmistir ve referans dizi ile ayni okuma yönünü temsil ettigi bulunmustur. Megalign (DNAstar) kullanilarak, "pLLO7_#3 consensus", referans dizi ve pLL07_#3 içindeki dizi arasindaki uyusmazliklari tanimlamaya yardimci olmak için "pLLO7_ref.sbd" referans dizisine manüel olarak hizalanmistir. Seqman (varsayilan ayarlar) kullanilarak AGRF-dizileme servisinden pLL07KIon#3 için 15ABt dosyalarini birlestirme, pLLO7 içeri yerlestirme referans dizisinin tam boyunu kapsayan bir konsensüs bitisik ile sonuçlanmistir. pLLO7_#3 içindeki dizi ve referans dizi arasinda uyusmazlik yoktur. pLL07_#3 bitisik konsensüs içindeki içeri yerlestirme dizileri, referans diziye özdestir.
Memeli hücrelerinde G1L'nin ve !TL 'nin ekspresyonu Bayrak-etiketIi-G1L'yi veya Bayrak-etiketli-ITL'yi kodlayan ekspresyon plazmidleri yapilmistir ve bu proteinleri eksprese eden transgenik 1438 hücre hatlari yapmak için kullanilmistir. Bu hücrelerin aktarilmis hücreleri pozitif bir sekilde seçmek için Genetioin varliginda çogaltilmis olmasina ve PCR analizinin bu hücre hatlarinin genomlari içinde bu proteini kodlayan dizilerin varligini konfirme etmesine ragmen, western blot analizi, bir anti-DDDDK antikoru ile problandiginda, eksprese edilmis Bayrak-etiketli- proteinlerin varligini saptayamamistir.
C-ucu Bayrak-etiketli COP-G1L'nin ve COP-I7L'nin protein kodlama dizileri, burada GeneArt (Life Technologies) ile sentezlenmistir ve DNA firmasindan satin alinan pJ503-2'nin (piggyBac - neomisin antibiyotik seleksiyonu) Bsa I yerine alt- klonlanmistir. Bu klonlama prosedürü, komet-GFP'yi Bayrak-etiketIi-GtL veya -I7L protein kodlama dizileri ile degistirir. Elde edilen klonlar, G1L piggyBac vektörü için pLL08 ve I7L piggyBac vektörü için pLL1O olarak gösterilmistir.
Bu iki plazmid vektörünün önemli özellikleri asagidaki sekildedir: bayrak-etiketli protein kodlama dizileri, konstitütif insan promotörü EF1aIfa kontrolü altindadir, NPT ll ekspresyon kaseti (neomisin direnç geni) ile birlikte bu ekspresyon kasetinin iki yaninda, bir yapay transpozon elemani olusturmak için Sol ve Sag Transpozon sinirlari yer alir. Transpozon elemanin konak genom içine geri-dönüsümsüz entegrasyonuna aracilik eden Transpozon enzimi ekspresyon kaseti yapay transpozon elemaninin disindadir ancak ayni plazmide dahil edilir. Bu transpozon elemanlarini tasiyan hücreler, G418'i (Geneticin) hücre büyüme ortamina dahil etme ile pozitif bir sekilde seçilebilir.
Plazmid vektörü pLL08 (Bayrak-etiketIi-G1L) ve pLL1O (Bayrak-etiketIi-I7L), aktarilmis iki transgenik hücre hatti; (G1L ekspresyon kaseti içeren) G1L-14SB ve (l7L ekspresyon kaseti içeren) I7L-1438, olusturmak için 1438 hücrelerine transfekte edilmistir. Basarili transpozon entegrasyonu olan hücreler, Geneticin'in büyüme ortamina dahil edilmesi ile çalisilabilen miktarlarda çogaltilmistir. Basarili entegrasyonu dogrulamak için, toplam hücresel DNA, kitin talimat manüelinden talimatlar izlenerek Qiagen firmasindan DNeasy DNA ekstraksiyon kiti kullanilarak bu transgenik hücrelerden ekstrakte edilmistir. Ekstrakte edilmis DNA akabinde, G1L'nin ve l7L'nin PCR amplifikasyonuna spesifik PCR primer çiftleri kullanilarak PCR amplifikasyon reaksiyonlari için sablon olarak kullanilmistir. Her iki hücre hatti, bunlarin genomlari içinde G1L ve I7L DNA dizisinin varligi için pozitiftir.
Bu hücre hatlari tarafindan G1L ve I7L ekspresyonu için test etmek için, Western blot analizi, HRP'ye (anti-DDDDK antikoru. Abcam #ab49763) konjuge edilmis bir anti- Bayrak Etiketi antikoru [M2] kullanilarak her bir Bayrak-etiketli proteinin varligini toplam proteinin kullanildigi bu western blot analizinin sonuçlari, anti-Bayrak-etiketi antikorunun beklenildigi üzere 1438'den ekstrakte edilen herhangi bir proteini tanimadigini ve bir Bayrak-etiket-CP77 transgenik CHO hücre hattinda (CP77-CHO) eksprese edildiginde bir Bayrak-etiket proteinini taniyabildiginde, anti-bayrak-etiket antikorunun bayrak-etiketli proteinleri taniyabildigini konfirme ettigini göstermistir.
Bununla birlikte, G1L-1438 örneginden protein ekstraktinda Bayrak-etiketIi-G1L proteini saptanamaz. Bakteriyel olarak eksprese edilmis Bayrak-etiketIi-I7L proteini, anti- Bayrak-etiket antikoru ile saptanabilir, ancak antikoru I7L-1438 hücre hatti tarafindan Bayrak-etiketli-I7L ekspresyonunu saptayamaz.
G1L ve I7L ekspresyon kasetleri bunlarin ilgili hücre hattinda saptanabileceginden, sonuçlar ya eksprese edilmis proteinlerin bir vaksiniya enfeksiyonu yoklugunda sentezden sonra çabuk bir sekilde parçalandigi, yani, hem Gi hem de l7 proteinlerinin virüs spesifik enzimler olmasi ve bunlarin vaksiniya spesifik enzim substratlari olmadan kararsiz olabilecegi veya bu iki ekspresyon kasetini yönlendiren promotörün kusurlu olmasi olabilir. Bir baska hipotez, bir vaksiniya enfeksiyonu yoklugunda bu proteinlerin ekspresyonunun hücreler için "toksik" olmasidir ve Geneticin seleksiyon prosesi sirasinda, NPT II ekspresyon kasetini degil ancak transgenik G1L ve I7L ekspresyon kasetlerini susturmus olan hücrelerin, G1L veya I7L proteinlerini eksprese etmemis olan Geneticin dirençli hücrelerin amplifikasyonuna olanak saglamasidir. pJ503-2 piggyBac plazmidi, 1438 hücrelerinde COP-D13L'nin ekspresyonu için laboratuvarimizda basarili bir sekilde kullanildigindan, EF1alfa promotörünün fonksiyonel oldugu ve bu proteinlerin bir vaksiniya enfeksiyonu yoklugunda kararsiz oldugu veya bu proteinlerin ekspresyonunu yönlendiren promotörün burada Geneticin varliginda hücre amplifikasyonu sirasinda "toksik" proteinlerin ekspresyonunu önlemek için selektif bir sekilde susturuldugu önerilmistir.
Bir esansiyel yapisal matürasyon veya birlesme proteininin bir örnegi olarak D13L, memeli hücresi tarafindan eksprese edilir ve D13L geninin silinmesi olmadan vaksiniyayi kurtarir ve D13L silinmis vaksiniya, enfekte edilmis hücrelerde proteini eksprese eder Birlesme/matürasyon prosesini bloke etme ile vaksiniyayi atenüe etmenin bir örnegi olarak - D13-Kurtarma Hücre Hattinin Yapi/masi, Kopenhag susunun D13L ORF'si, silinme için hedef alinmistir. Bunu yaparken, bu proteini eksprese eden bir hücre hattinin ilk olarak yapilmasi gerekecektir, böylece bir COP-D13L-silinmis virüs çogaltilabilir. Kurtarma hücre hattinin yapilmasi için, bu hücre hatti "biyoteknoloji" dostu oldugundan, siklikla CHO olarak ifade edilen, Çin Hamsteri Over hücre hatti seçilmistir.
Bir COP-D13L silinmesi olan enfeksiyöz vaksiniya virüsünü kurtarmak için, bu hücre hattinin, vaksiniya virüsününkini degil hücrenin transkripsiyon mekanizmasini kullanarak bunun nükleer genomundan D13-proteinini eksprese etmesi gerekir.
Hücresel eksprese edilmis D13-proteininin protein amino asit dizisi, DYKDDDDK'nin (Bayrak-etiket, Hopp et al., 1988) bir C-ucu etiketli amino asit dizisini içerir ve karsilik gelen nükleotid dizisini üretmek için CHO kodon optimize edilmistir. Bir memeli promotöründen ve bir memeli poIi-adenilasyon sinyal dizisinden olusan bu etiketli D13L-CHO kodon optimize edilmis ekspresyon kasetinin nükleer DNA içine kararli entegrasyonu, Urschitz et al., 2010 ve Matasci et al., 2011, tarafindan bildirilen tipteki Transpozon entegrasyon teknolojisi ile basarilmistir. CHO`nun transdüksiyonu, DNA2.0 basarilmistir.
D13L protein kod/ama dizisinin yapilmasi - D13L protein kodlama dizisi, Vaksiniya virüsü Kopenhag susunun D13L ORF'si tarafindan kodlanan D13-amino asidinden DNA dizisini yeniden-olusturma ile GeneAit of Life Technologies tarafindan sentetik olarak yapilmistir ve CHO hücrelerinde ekspresyon için kodon optimize edilmistir.
VACV-COP D13L ORF'nin protein kodlama dizisi, Dizi listesinde gösterilir.
D13L hücre aktarma vektörünün yapilmasi - pLL17'den kodon optimize edilmis D13- protein kodlama dizisi (D13Lcho-Eti'ketli) PCR ile çogaltilmistir ve pLL19 üretmek için DNA2.0 lnc (Kat # pJ503-2) firmasindan satin alinan transpozon piggyBac vektörü içine Bsa l klonlama yerleri vasitasiyla alt-klonlanmistir. ln-Fusion klonlama (Clontech: bunu in vitro homolog rekombinasyon ile etiketli D13-protein kodlama dizisi ile degistirir. D13Lcho-Etiketli protein kodlama dizisi simdi, insan Elongasyon Faktörü 1 alfa promotörü (EF1a) kontrolü altindadir ve her ikisi transfekte edilmis hücrelerin genomuna kararli bir sekilde entegre edildiginde, Neomisin direnç geni ile birlikte- eksprese edilecektir. Konak genomu içine kararli entegrasyona, piggyBac vektörünün Sol ve Sag Transpozon siniri ile baglanmis DNA dizisinin Transpozon entegrasyonu ile aracilik edilir.
D13LchoEtiket/i' dizinin PCR amplifikasyonu, asagidaki primer çifti kullanilarak yapilmistir: Ileri Primer dizisi: Büyük harf ile, koyu ve alti çizili metin halindeki dizi, In-Fusion klonlama için gerekli olan pJ içindeki komet GFP'nin yukari akis Bsa l yerine homolog diziyi temsil eder. Küçük harf ile kirmizi ve alti çizili metin halindeki dizi, bir modifiye edilmis Kozak dizisidir. Normal büyük harf ile yazilmis metin halindeki dizi, pLL17 içindeki D13Lcho-Etiket/i dizinin 5' ucuna homologdur.
Geri Primer Dizisi: lnf-LL1 9-D1 3LC-Rv: Büyük harf ile, koyu ve alti çizili metin halindeki dizi, In-Fusion klonlama için gerekli olan pJ içindeki komet GFP'nin asagi akis Bsa I yerine homolog diziyi temsil eder. Normal büyük harf ile yazilmis metin halindeki dizi, pLL17 içindeki D13Lcho-Etiketli dizinin 3' ucuna homologdur. Beklenen 1719bp'lik PCR ürünü, pLL19 olusturmak için üreticinin talimatlari izlenerek InFusion klonlama (Clontech) ile Bsal ile kesilmis pJ içine klonlanmistir.
D13-proteini'ni eksprese eden bir CHO hücre hattinin yapilmasi.' p-LL19-CHO -CHO hücreleri, bir 6-gözlü plakanin gözlerine ekilmistir, böylece bir gece boyu inkübasyondan sonra, bunlar %50 konflüans civarindadir. Qiagen firmasindan (Kat # 301425) Effectene transfeksiyon reaktifi kullanilarak, 1 ug pLL19, üreticinin talimatlari izlenerek %50 konflüent CHO hücrelerinin 1 gözüne transfekte edilmistir. Transfekte edilmis hücreler akabinde, büyüme ortami (RPMI 1640/%10 FBS/2 mM Glutamax/Pen- Strep) içinde gece boyu inkübe edilmistir. Sonraki gün, ortam aktarilmis hücreleri Seçmek için 1000 ug/mL Geneticin içeren büyüme ortami ile degistirilmistir. Seleksiyon ortami, her 2 ila 3 günde bir degistirilmistir. Aktarilmis hücreler %90 ila 100 konflüansa kadar büyüdügünde, bunlar TrypLE Select (Gibco-Invitrogen Corp, Kat #12563-029) kullanilarak geri-kazanilmistir ve ilave hücre genislemesi için bir T25 balon içine ekilmistir.
D13L ekspresyonunun Western blot/ama ile dogrulanmasi - Tavsan anti-D13 anti- serumlarinm üretilmesi.' Tavsanlara, natif D13-pr0teininin C-ucu amino asidini temsil eden KHL proteinine bagli bir 16 amino asitlik peptit enjekte edilmistir. Bu amino asit dizisi asagidaki sekildedir: CYDQGVSITKIMGDNN. 1 ay arayla, toplamda üç enjeksiyon, bu amino asit dizisine karsi antikorlar meydana getirmek için yapilmistir.
Enjekte edilmis tavsandan elde edilen serum, asagidaki hücre ekstraktlarina karsi western blot analizi ile test edilmistir: 1438 tam hücre ekstrakti, Bayrak-etiketli-D13L eksprese eden 1438 transgenik hücre hattindan (p-LL06-143b) tam ekstrakt ve VACV- COP enfekte edilmis 1438 hücre ekstrakti. Sonuçlar açik bir sekilde, tavsan anti-D13 serumunun D13-proteinini net bir sekilde spesifik olarak taniyabildigini göstermistir.
CHO-aktarilmis hücre preparasyonu - D130ho-Etiketli aktarilmis CHO poliklonal genisletilmis hücre hatti (p-LL19-CHO), normal CHO hücreleri ile oldugu gibi, bir T25 balon içinde %100 konflüansa kadar kültürlenmistir. Her bir balondan elde edilen hücreler, TrypLE Select (Gibco-Invitrogen Corp, Kat #12563-029) ile hasat edilmistir, düsük hizli sentrifügasyon (300 g, 5 dakika) ile pelet haline getirilmistir, PBS ile yikanmistir ve 200 uL PBS içinde yeniden-süspanse edilmistir.
Western Blot analizi - 50 uL 5x SDS-PAGE yükleme tamponu her bir hücre süspansiyonuna eklenmistir ve akabinde bunlar 98°C'de 5 dakika boyunca inkübe edilmistir, her bir hücre proteini ekstraktinin 15 uL'si, %10`luk iki SDS-PAGE jeline yüklenmistir, elektroforez uygulanmistir ve akabinde elektro-blotlama ile Hybond ECL nitroselüloz üzerine blotlanmistir. Elektro-blotlanmis membranlara akabinde, membran üzerindeki tüm mevcut spesifik-olmayan antikor baglama yerlerini bloke etmek için Tween 20 içeren Tris Tamponlu Salin (TBST) içinde çözünmüs %5'Iik yagsiz süt tozu ile oda sicakliginda 1 saat boyunca muamele edilmistir. Membranlar akabinde, antikorlar ile problanmadan önce TBST içinde bir kaç kere yikanmistir. Membran 1, HRP içinde konjuge edilmis anti-DDDDK etiket antikoru [M2]'nin (Abcam, Kat # Tavsan D13-anti-serumlarinin 1:2000'Iik seyreltmesi ile gece boyu 4°C'de problanmistir, TBST ile 3 kere yikanmistir ve akabinde sekonder antikor, HRP konjuge saat boyunca problanmistir. Her iki membran akabinde TBST ile 3 kere yikanmistir ve kullanici manüeli ile talimat verildigi üzere bunlara ECL western blotlama saptama reaktifleri (GE Healtheare) ile muamele edilmistir ve bunlar X-isini filmine maruz birakilmistir.
VA CV-COP'nin D13L ORF silinmesi ile atenüasyonu Vaksiniya virüsünü atenüe etmek için, COP-D13L ORF`sinin protein kodlama dizisinin büyük bir kismi ile birlikte korunmus geç promotör dizisi, homolog rekombinasyon ile silinme için tahsis edilmistir ve bunun yerine, bir seleksiyon/raportör kaset yerlestirilmistir, böylece homolog rekombinasyon ile basarili silinme, D13-pr0teinini eksprese eden bir CHO hücre hattinda seçilebilir ve burada enfeksiyon kirmizi flüoresans ile görsellestirilebilir. Seleksiyon/raportör kaseti, bir vaksiniya promotörü kontrolü altinda CP77 eksprese eden CHO konak aralik geninden ve DsRed-ExpressZ dizisinden olusur.
GOP-013L silinme homolog rekombinasyon vektörünün yapilmasi - VACV-COP'den homolog rekombinasyon ile D13L ORF'sinin silinmesi için, COP-D13L ORF'sinin her iki yaninda yer alan iki homolog rekombinasyon kolu tasarlanmistir. Bununla birlikte, COP-D12L ORF'nin promotör dizisi, COP-D13L ORF'sinin 3' ucu içine uzanabileceginden. COP-D13L ORF'sinin 3' ucunun yaklasik olarak 200 bp'si aynen birakilmistir.
Homo/og rekombinasyon kollari F1'i'n ve F2'nin yapi/masi - Homolog rekombinasyon kollari, asagida gösterilen primer çiftleri kullanilarak VACV-COP genomik DNA'sindan PCR ile çogaltilmistir. Koyu ve alti çizili metin, F1 ve F2 kollarini seleksiyon/rapor kasetine ve Clontech firmasindan ln-Fusion kiti içinde saglanan lineer hale getirilmis pUC19'a birlestirmek için In-Fusion kollarini temsil eder. In-Fusion Iigasyonui pLLO9 olarak gösterilen daire haline getirilmis plazmid ile sonuçlanacaktir.
VACV-COP DNA 'sindan D13L-F1 kolunu PCR ile çogaltmak için kullanilan PCR primer lnf-PCR-D13L-F1-Fw: 5'-CGGTACCCGGGGATCACGAAAAATAATAGTAACCA-3'.
Koyu ve alti çizili metin (15bp), CIonTech In-Fusion kiti ile saglanan lineer hale getirilmis pUC19 plazmidinin sol ucuna homolog diziyi temsil eder. 3'. Koyu ve alti çizili metin (15bp), Seleksiyon/Raportör kasetinin 5' ucuna homolog diziyi temsil eder. Beklenen PCR ürünü boyutu: 657 bp VACV-COP DNA 'sindan D13L-F2 kolunu PCR ile çogaltmak için kullanilan PCR primer lnf-PCR-D1 3L-Fw: 5'-ATATTTAAATGCGCGCAATAATGGAACAAGAACCCT-3'.
Koyu ve alti çizili metin (15bp), Seleksiyon/Raportör kasetinin 3' ucuna homolog diziyi temsil eder. lnf-PCR-D13L-F2-Rv: 5'-CGACTCTAGAGGATCGCGCTGAGGTCGGCAACTACG-S'.
Koyu ve alti çizili metin (15bp). ClonTeCh In-Fusion kiti ile saglanan lineer hale getirilmis pUC19 plazmidinin sag ucuna homolog diziyi temsil eder. Beklenen PCR ürünü boyutu: 621 p Seleksiyon/raportör kasetinin yapilmasi - Seleksiyon/raportör ekspresyon kaseti, inek- çiçek virüsü CP77 CHO konak-aralik geninden ve DsRed-ExpressZ'nin kirmizi flüoresan protein kodlama dizisinden olusur. Bu ekspresyon kaseti Life Technologies GeneArt tarafindan sentetik olarak yapilmistir, böylece CP77 proteini kodlama dizisi, bunun natif promotörü (CP77 ATG baslangiç kodonunun yukari akis dizisinin 100 bp'si) kontrolü altindadir ve çiçek-virüsü erken transkripsiyonel durdurma dizisi (T5NT) ile sonlandirilmistir. DsRed proteini kodlama dizisi, bir vaksiniya erken/geç promotörü kontrolü altindadir ve ayrica çiçek-virüsü erken transkripsiyonel durdurma dizisi içinde sonlandirilmistir. pLL09'un birlesmesi - Seleksiyon/Raportör kaseti ile birlikte D13L-F1 ve D13L-F2 PCR ürünleri, pLL09 üretmek için ClonTech firmasindan InFusion Kit'i içinde saglanan pUCiQ içine üreticinin talimatlari izlenerek In-Fusion klonlama ile birlestirilmistir.
Homolog rekombinasyon ile COP-D13L'nin silinmesi ve SCV104 üretmek için plak saflastirma - COP-D13L ORF'si, protein kodlama dizisinin büyük bölümünü ve "TAAAT" korunmus geç promotör elemanini silme ile inaktif hale getirilmistir. COP-D13L ORF'si, bir vaksiniya virüsü geç promotörü kontrolü altindadir, burada korunmus geç promotör elemani, promotör aktivitesi için kritikti (Moss, 2007) - bunun silinmesi COP-D13L ORFsinin susturulmus hale gelmesi ile sonuçlanacaktir. Protein kodlama dizisinin ve korunmus promotör elemanin silinmesi, VACV-COP ve pLL09 arasindaki homolog rekombinasyondan etkilenir, burada homolog rekombinasyonun sonucu, CP77-DsRed ekspresyon kasetinin silinmis bölge içine yerlestirilmesidir. Bu ekspresyon kasetinin içeri yerlestirilmesi, simdi SCV104 olarak gösterilen, rekombinant virüsün CHO hücrelerinde, ancak yalnizca bir fonksiyonel D13-proteini eksprese eden hücrelerde, örnegin, p-LL19-CHO'da, çogalmasina olanak saglar. Homolog rekombinasyondan sonra, "sarkinti" parental virüsü (VACV-COP) kontamine etme, birbirini takip eden plak saflastirma turlari ile elimie edilmistir. Kontamine eden parental virüsün varligi, içeri yerlestirme yerinin PCR analizi ile görüntülenmistir.
Homolog rekombinasyon - Büyüme ortami (RPMI-1640/%10 PCS/2 mM GIutamax/Pen-Strep ve 1000 ug/mL Geneticin) içeren üç T25 balona, p-LL19-CHO ekilmistir ve 37°C/%5 COz'de %100 konflüent olana kadar kültürlenmistir. Enfeksiyon gününde, iki balon, 0,01 pfu/hücre olan bir moi'de VACV-COP ile enfekte edilmistir, burada diger balon enfekte edilmemistir (enfekte edilmemis kontrol). Balon 1 ve 2 oda sicakliginda 45 dakika boyunca enfekte edildikten sonra, virüs inokülümleri uzaklastirilmistir ve hücrelerin tek-katmani, PBS ile iki kere yikanmistir. Yikamadan sonra, 4 ml Idame Ortami (MM: RPMl-, ayrica ayni yikama adimindan da geçmis balon 3'ü içeren her bir balona eklenmistir.
Transfeksiyon, Effectene Transfeksiyon reaktifi (Qiagen, Kat No 301425) kullanilarak ve üreticinin talimatlari izlenerek yürütülmüstür. Özet olarak, 16 uL Güçlendirici. 150 uL EC tamponu içinde lineer hale getirilmis 2 ug pLL09'a eklenmistir ve iyice karistirildiktan sonra oda sicakliginda 5 dakika boyunca beklemeye birakilmistir. Buna, pl Effectene Transfeksiyon reaktifi eklenmistir ve oda sicakliginda 10 dakika boyunca beklemeye birakilmistir. Son olarak, 1 ml MM (RPMI-1640/%2 PCS/2 mM GIutamax/Pen-Strep) karisima eklenmistir ve kibar bir sekilde iyice birbirine karistirilmistir. Bu transfeksiyon akabinde, önceden VACV-COP ile enfekte edilmis balon 1'e eklenmistir.
Balonlar 1 (homolog rekombinasyon), 2 (yalnizca enfeksiyon kontrol), 3 (enfekte edilmemis kontrol), 37°C/%5 COg'de gece boyu inkübe edilmistir, burada sonraki gün her bir balona, her bir balon için 5 mL'Iik taze MM ile bir ortam degisimi yapilmistir ve ilaveten CPE'nin tamami yalnizca balon 1`de görülebilene kadar 37°C/%5 COz'de inkübe edilmistir. VACV-COP CHO hücrelerine enfeksiyöz-olmadigindan balon 2'de enfeksiyon bulgulari olmamalidir ve tek-katman balon 3'te saglikli görünmelidir.
Gece boyu enfeksiyondan sonra, kirmizi flüoresan hücreler, bir çevrik flüoresan mikroskop ile inceleme altinda net bir sekilde ayirt edilebilir olabilir. Hücreleri kültür ortami içine kazima, akabinde düsük hizli sentrifügasyon (oda sicakliginda 5 dakika boyunca 500 9) ile pelet haline getirme ve hücre peletini 1 mL 10 mM Tris-HCI, pH 8, içinde yeniden-süspanse etme ile balon 1 içindeki hücreleri hasat etmeye karar verilmistir. Bir viral ekstrakt, çok sayida dondurma ve çözülme sikluslari ile hazirlanmistir ve plak saflastirma fazi için hazir olarak -80°C'de saklanmistir. Viral yapi, SCV104 olarak gösterilmistir.
Plak saf/astirma prosesi - Gerekçe, homolog rekombinasyon ekstraktini seri olarak seyreltmektir ve her bir seyreltmeyi bir 48 gözlü plaka içinde kültürlenen p-LL19-CHO hücrelerinin bir satirini enfekte etmek için kullanmaktir. Amaç, virüsü her bir göz için asagiya 1 pfu enfeksiyona seyreltmektir ve akabinde hasat edilmeden önce yaklasik olarak 30 saatlik enfeksiyondan sonra yalnizca 1 flüoresan plak içeren hücreleri arama ktir. p-LL19-CHO hücreleri, bir 48-gözlü plakanin her bir gözüne ekilmistir ve 37°C/%5 Glutamax/pen-strep) içinde %100,e kadar kültürlenmistir.
Enfeksiyon için, homolog rekombinasyon ekstraktinin (SCV104) buzu çözülmüstür ve topaklari ve aggregatlari dagitip parçalamak kisa bir süre sonike edilmistir. Viral ekstraktin 10'5'ine asagiya on-katlik seri seyreltme, 1 mL'Iik hacimlerde MM (RPMl/%2 FBS/Glutamax/PenStrep) kullanilarak gerçeklestirilmistir. Her bir seyreltme için, 48- gözlü plakanin bir satirina, büyüme ortami her bir gözden uzaklastirildiktan sonra seyreltilmis virüsün 500 uL'si ekilmistir ve bunlar PBS ile bir kere yikanmistir. 48-gözlü plaka, viral adsorpsiyonun gerçeklesmesi için 45 dakika boyunca oda sicakliginda birakilmistir. Viral adsorpsiyondan sonra, virüs inokülümü her bir gözden dikkatli bir sekilde uzaklastirilmistir, burada rezidüel inokülüm, her bir göz için 500 uL PBS'den olusan bir yikama adimi ile uzaklastirilmistir. Yikamadan sonra, 500 uL MM (RPMl/%2 FBS/GIutamax/PenStrep) her bir göze eklenmistir ve akabinde enfeksiyonlarin flüoresan kirmizi odaklari bir flüoresan mikroskop altinda net bir sekilde görülebilene kadar 37°C/C02'de inkübe edilmistir.
Hasat etmek için, yalnizca olasi en düsük seyreltmede bir tek flüoresan odak içeren gözler seçilmistir. Seçilmis gözlerden ortam dikkatli bir sekilde uzaklastirilmistir ve 100 uL 10 mM TrisHCI, pH 8, eklenmistir. Plaka üç kere dondurulmustur çözülmüstür ve akabinde seçilmis gözlerin içerikleri, geri-kazanilmistir. Her bir geri-kazanilmis plak için, plak saflastirma prosesi, bes kere daha tekrar edilmistir.
Bir seçilmis klon akabinde akabinde ilaveten, büyüme ortamini gözden uzaklastirma ve PBS içinde 500 uL'ye seyreltilmis viral ekstraktin 10 uL'sini ekleme ile, %100 konflüansta p-LL19-CHO hücreleri içeren bir ö-gözlü plakanin 1 gözünü enfekte etme ile çogaltilmistir. Oda sicakliginda 45 dakikadan sonra, 2 mL MM göze eklenmistir ve hücrelerin büyük çogunlugu bir flüoresan mikroskop altinda kirmizi flüoresan isik yayana kadar 3 gün boyunca 37°C/%5 COz'de ilaveten inkübe edilmistir. Enfekte edilmis göz içindeki hücreler, kültür ortami içine kazinmistir ve akabinde 500 9'de 5 dakika boyunca pelet haline getirilmistir. Pelet haline getirilmis hücreler, 500 uL 10 mM TrisHCl, pH 8, içinde yeniden-süspanse edilmistir ve bir viral ekstrakt yapmak için kisa bir süre sonike edilmistir.
SCV104'ün D13L ORF'sinin içine CP77/DsRed ekspresyon kaseti yerlestirilmesinin PCR ile dogrulanmasi - Homolog rekombinasyondan ve plak saflastirmasindan sonra D13L ORF'sinin gerçekten CP77/DsRed ekspresyon kaseti ile sübstüte edilip edilmedigini belirlemek için PCR analizi yapilmistir. Bir PCR primer çifti, iki yaninda yer alan homolog rekombinasyon kollarinin bölgesi disini baglamasi için tasarlanmistir, böylece bunlar, "uygulanmis" DNA'dan ziyade "natif" DNA dizisini baglayacaklardir. Bu sekilde primer çifti tasarlama, bu primer çiftinin PCR amplifikasyonu için DNA sablonlari olarak VACV-COP'yi ve SCV104'ü kullanabilecegi ve PCR ürünlerinin boyutunun eKSpresyon kasetinin D13L ORF'sinin içine yerlestirilmesi veya içeri yerlestirme olmayan virüsün, yani', VACV-COP, saptanmasi için gösterge olacagi anlamina gelir.
Bu PCR analizi yalnizca içeri yerlestirmenin varligini göstermez, ayni zamanda rezidüel kontamine etme parental virüsün (VACV-COP) çok sayida plak saflastirma turundan sonra hala mevcut olup olmadigini da belirleyebilir. VACV-COP'nin istenmeyen iz kontaminasyonun varligi, bu kontaminant SCV104`e in trans D13 yardimi saglayabileceginden ve böylece SCV104'ün atenüasyonunu azaltabileceginden hiç arzu edilmez.
QIAGEN DNeasy Doku Kit/'ni' (Kat # 69504) kullanilarak DNA ekstraksi'yon/ari - Viral DNA, üreticinin talimati izlenerek DNeasy Doku kiti kullanilarak yukarida SCV104 çogaltilmis virüsün 200 uL'sinden ekstrakte edilmistir. Özet olarak, bu 200 uL viral ekstrakte 20 ul Proteinaz K ekleme ve iyice karistirma ile yapilmistir. Buna, 200 uL tampon AL eklenmistir ve 56°C'de (isitma bloku) 10 dakika boyunca inkübe etmeden önce iyice içine karistirilmistir. Inkübasyondan sonra, 200 uL %100 etanol eklenmistir ve iyice içine karistirilmistir ve akabinde toplam hacim, bir spin kolonuna eklenmistir.
Sivi, üretici kullanici el kitabi ile talimat verildigi üzere sentrifügasyon ile spin kolondan geçirilmistir, akabinde spin kolonu AW1 ve AW2 tamponlari ile yikanir. Spin kolona bagli DNA, iki kere 100 uL AE tamponu ile ayristirilmistir. Ayristirilmis DNA. bir tek tüp içine birlestirilmistir ve PCR analizi için hazirdir ve PCR analizi Için hazir olana kadar 4°C`de saklanmistir.
PCR amplifikasyonu - SCV104'ten (bakiniz, yukaridaki bölüm 4.2.3.1) ekstrakte edilmis DNA, içeri yerlestirmenin D13L ORF'si içinde gerçeklesip gerçeklesmedigini belirlemek amaciyla PCR amplifikasyonu için bir sablon olarak kullanilmistir. Asagida tarif edilen PCR primerleri, D13L ORF'sinin disinda iki yaninda yer alan dizileri baglar, böylece SCV104 DNA'sindan amplifikasyon, parental virüsten, VACV-COP'tan, çogaltilmis 2881 bp'lik bir PCR ürününün aksine 4360 bp'lik bir PCR ürününü çogaltmalidir. PCR analizi, SCV104'ün 6. plak saflastirilmis klonlarinin yalnizca, 4000 bp'den büyük ve 5000 bp'den küçük olanlara karsilik gelen bir ürünü çogaltir, bu SCV104'ün D13L ORF'si içinde CP77/DsRed kaseti içerdigini gösterir. 3000 bp civarinda bir PCR ürününün olmamasi, SCV104 çogaltilmis stoklarda saptanabilen düzeylerde parental virüs kontaminasyonu olmadigi anlamina gelir.
Primer çiftinin detaylari SCV104'ü Plak Enfektivite Analizleri ile atenüasyon için test etme D13L ORF'si tarafindan kodlanan protein viral birlesme için esansiyel oldugundan, bir kili, bir SCV104 kurtarilmis virüsün hücreye girisimin vaksiniya virüsü için permisif olan normal hücrelerde enfeksiyöz projeni viriyonlari üretmeyebilecegi ve bundan dolayi ilk enfeksiyonun, enfeksiyonun giderek genisleyen odaklarini olusturmak Için komsu hücrelere yayilmama yetisini bekleyecektir. Durumun bu olup olmadigini konfirme etmek için, bu bulusta tarif edilen D13L silinmis virüs (SCV104), daha az sayida plak olusum biriminin bir 6-gözlü plaka içinde kültürlenmis hücreleri enfekte etmek için kullanilabilecegi bir noktaya kadar seri olarak seyreltilmistir, böylece enfekte eden virüsün hücreden hücreye yayilmasi, günler süren bir periyot boyunca görüntülenebilir.
Bu çalismada, üç hücre hatti çalisilmistir: vaksiniya virüsüne permisif olan 1438 hücresi, vaksiniya virüsüne permisif olmayan, ancak vaksiniya virüsü CP77 proteinini eksprese ettiginde permisif olabilen CHO hücreleri ve D13L proteinini eksprese eden bir rekombinant hücre hatti olan p-LL19-CHO. Bu bulusta tarif edilen, D13L ORF'si içine yerlestirilmis bir CP77/DsRed ekspresyon kasetine sahip olan, böylece D13- proteini fonksiyonunun eksprese edilemedigi, virüs p-LL19-CHO hücre hattinda enfeksiyonun yalnizca enfeksiyöz odaklarini olusturmalidir. 1438 hücresi tek-katmani içinde enfeksiyonlarin odaklarinin varligi, kontaminant in trans D13L yardimi saglayacagindan, viral popülasyon karisimi içinde kontamine etme vaksiniya virüsünün varligini gösterir. CHO tek-katmani içinde enfeksiyonlarin odaklarinin varligi, CP77/DsRed kasetinin içeri yerlestirilmesinin D13L ORF'sini inaktive etmedigi anlamina gelir.
Hücre düzenegi - 1438, CHO ve p-LL19-CHO hücreleri 6 gözlü plakalara ekilmisti ve hücre tek-katmanlari %100 konflüent olana kadar 37°C/%5 COz'de büyüme ortami ug/mL Geneticin) içinde kültürlenmistir.
Enfeksiyon - Çogaltilmis 3. plak saflastirilmis viral ekstrakt, hücreleri enfekte etmek için kullanilmistir. Bu virüsün bilinmeyen titresinden dolayi, stok virüsün 10'4'e 10-katlik seri seyreltilmesi asagidaki sekilde yapilmistir: ilk olarak 60 ul stok virüs, 6 ml MM ortami içinde seyreltilmistir (Seyreltme 1, 1:100 seyreltme) ve akabinde ilave seyreltmeler 800 ul Seyreltme 1 ila 7,2 ml MM ortamina ekleme ile hazirlanmistir (Seyreltme 2; 10'3 seyreltme) ve akabinde bir 10'4'Iük seyreltme yapmak için tekrar edilmistir. Enfeksiyon için, her bir seyreltmenin 500 uL'si, bir 6-gözlü plakanin her bir gözüne eklenmistir - her bir hücre hatti için bir plaka kullanilmistir. Viral adsorpsiyon, oda sicakliginda 45 dakika boyunca gerçeklestirilmistir, bundan sonra viral inokülüm her bir gözden uzaklastirilmistir ve her bir göz, her bir göze 2 mL MM eklenmeden önce PBS ile iyice yikanmistir. Plakalar 37°C/%5 COz'de inkübe edilmistir ve bir flüoresan mikroskop altinda günlük olarak gözlenmektedir. 10'2'Iik seyreltme, gözlem için en iyi viral enfeksiyon hizini üretmistir.
Mikroskop incelemesi - Viral enfeksiyon, DsRed filtre (Kat#U-MRFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop (Olympus IX51) altinda incelenmistir. Görüntü, CellSens Digital Sonuçlar - 10'2'Iik seyreltme enfeksiyonu, baslangiç tek hücre enfeksiyonunu ve enfeksiyonun komsu hücrelere yayilmasini gözlemlemek için en iyi sonuçlari üretmistir. 1438 hücresinin incelenmesi, gün 1'de tek hücre enfeksiyonlarinin varligini gösterir, burada virüs gün 2 ve gün 3 ile komsu hücrelere yayilamaz, bu virüsün tek hücrelere girisimin gerçeklestigini, ancak enfeksiyöz viral projeninin gün 2 ve gün 3 ile üretilmedigini gösterir. Bu ayni zamanda, CHO tek enfekte edilmis hücreleri için de dogrudur, yani, enfeksiyöz viral projeni baslangiç tek hücre enfeksiyonlarindan üretilmistir. p-LL19-CHO hücre hattinin incelenmesi, baslangiç tek hücre enfeksiyonunun gün 1 ile enfeksiyonun küçük odaklari kadar görülen projeni enfeksiyöz virüsü üretmistir.
Enfeksiyonlarin bu Odaklari gün 2 ve gün 3 ile boylari çabucak artar, bu viral amplifikasyonun zamanla gerçeklestigini gösterir.
Bu dogrultuda, herhangi bir vaksiniya virüsünden bir fonksiyonel vaksiniya yarim ay iskele proteini kodlayan dizinin uzaklastirilmasi bu virüsü fazla bir sekilde atenüe edecektir. Bu virüsün ilk enfeksiyon üzerinde enfeksiyöz projeni virüsü üretememesine ragmen, bunun proteininin, özellikle DsRed'in, ekspresyonu, görsel görüs kirmizi flüoresanstan bulgulandigi üzere, ilk tek enfekte edilmis hücrelerde gerçeklesir. Bu virüs, vaksiniya virüsü enfeksiyonundan bagimsiz olarak vaksiniya yarim ay iskele proteinini eksprese eden bir hücre hattindan kurtarilabilir. Transgenik hücre hatti tarafindan vaksiniya yarim ay iskele proteininin konstitütif ekspresyonu, bu hücre hattinin büyümesi veya fizyoloji Üzerinde advers etkiye sahip degildir.
D13L eksprese eden C11-LL19-HeLa hücre hattinin yapilmasi Bir D13L silinmesi olan bir flüoresan-olmaya SCV'yi titre etmek için, litik plak olusumunu destekleyen bir vaksiniya permisif hücre hattindan olusan, D13 proteinini eksprese eden bir kurtarma hücre hatti yapilmistir. CHO hücrelerinde, CP77 eksprese eden vaksiniya virüsü veya CP77'nin hücre hatti ekspresyonu kristal viyolet ile boyanabilen ve göz ile sayilabilen litik plak olusumlarini desteklemez. Bir titrasyon hücre hatti olusturmak için, HeLa hücreleri, D13 proteini eksprese etmesi için bir konstitütif memeli promotöründen, baslangiç kodonu etrafinda Kozak dizisi içeren ve bir poliadenilasyon sinyal dizisi içinde sonlanan D13-pr0teini kodlama dizisinden olusan bir ekspresyon kasetinin kararli entegrasyonu ile aktarilmistir. Bu kaset akabinde, konak hücre genomik DNA'si içine karar gen transferine ve antibiyotik seleksiyonu ile basarili entegrasyon için seleksiyona olanak saglayan bir plazmid vektörü içine klonlanmistir. Aktarilmis hücreler akabinde, D13 ekspresyon kaseti içeren hücreleri seçmek için antibiyotik seleksiyonu kullanilmasi ile çogaltilmistir ve akabinde hücrelerin tek-katmanlarini her bir hücre için 0,001 pfu olan bir moi'de enfekte etme ve 3 günlük bir periyot boyunca en büyük plagi üreten hücre-hatti klonunu seçme ile SCV104 (D13L ORF silinmesi) ile bir plak analizi yapilmistir. SCV104 sahip oldugu D13L ORF'sini iki ekspresyon kaseti ile degistirir: biri CP77 proteininin ekspresyonu içindir ve digeri bir kirmizi flüoresan proteininin ekspresyonu içindir. D13 proteini eksprese eden bir HeLa hücre hattinin SCV104 ile enfeksiyonu, kirmizi flüoresan Iitik plaklar ile sonuçlanacaktir. pLL19 - D13 hücre aktarma vektörÜnÜn yapi/masi.' pLL19'un yapilmasi asagida tarif edilir. Bu plazmidde, C-ucu Bayrak-etiketli D13-proteini kodlama dizisi, konstitütif insan Elongasyon Faktörü 1 alfa promotörü kontrolü altindadir ve hücresel genomik DNA içine kararli gen transferine transpozisyon ile aracilik edilir. Transpozisyon ayrica, bir Neomisin antibiyotigi seleksiyon ekspresyon kasetini de içeri yerlestirir, böylece aktarilmis hücreler büyüme ortamina G418/Geneticin eklenmesi ile pozitif bir sekilde seçilebilir.
D13-Bayrak etiketli ekspresyon kasetinin pLL19 ile transdüksiyon ile HeLa hücreleri içine kararli yerlestirilmesi: HeLa hücreleri, bir T25 balon içine ekilmistir ve RPMl-1640/%1O FBS/2 mM GIutamax/pen-strep büyüme ortami içinde yaklasik olarak transfeksiyon reaktifi kullanilarak, 1 ug pLL19, üreticinin talimatlari izlenerek %50 konflüent HeLa hücrelerinin T25 balonuna transfekte edilmistir. Transfekte edilmis hücreler akabinde büyüme ortami (RPMI içinde gece boyu inkübe edilmistir. Sonraki gün, ortam aktarilmis hücreleri seçmek için 1000 ug/mL Geneticin içeren taze büyüme ortami ile degistirilmistir. Hücrelerin çogu öldügünde, kalan hücreler, bunlarin TrypLE Select (Gibco-Invitrogen Corp, Kat #12563- 029) ile balon yüzeyinden ayirma ile geri-kazanilmistir ve tek hücre büyüme ortami ve 1000 ug/mL Geneticin içeren 96-gözlü plakalar içinde ayrilmistir. Bu plakalar, hücrelerin kolonileri her bir göz içinde görülebilene kadar 37°C/%5 COg'de inkübe edilmistir. Seleksiyon ortami, her 2 ila 3 günde bir degistirilmistir. Hücrelerin her bir kolonisi, geri-kazanilmistir ve asagidakine kültürleme ile seri olarak genisletilmistir: 48- gözlü plaka ila 24-gözlü plaka ila ö-gözlü plaka ila T75 balon ve bir dondurulmus hücre stoku yapmak için hazir olana kadar 1:5'Iik ayirma orani ile T75 balon içinde idame ettirilmistir.
SCV104 plak olusumunu en iyi destekleyen bir monoklonal hücre hatti için tarama: SCV104, inek çiçek virüsü 025L promotörü arti CP77 proteinini kodlayan ORF ile degistirilmis D13L ORF'sine ve bir kirmizi flüoresan protein ekspresyon kasetine (DsRed Express2) sahip olan bir vaksiniya virüsüdür. CP77 ekspresyonu, HeLa hücrelerinde plak olusumu için önemli degildir veya gerekli degildir, ancak bu virüs D13 proteininin hücre hatti ekspresyonu yoklugunda çogaltilmayacaktir. Bununla birlikte, D13-proteinini eksprese eden HeLa hücre hattinda, SCV104 çogalabilmelidir ve diger komsu hücrelere yayilabilmelidir ve bunu yaparken hücre tek-katmani içinde kirmizi flüoresan Iitik plaklar olusturmalidir. Bu virüs, plak olusumunu en iyi destekleyen klonu seçmek için klonal LL19-HeLa hücre hattinda bir plak olusum çalismasinda kullanilmistir.
Hücre hatti düzenegi: LL19-HeLa'nin çok sayida hücre hatti klonu 6 gözlü plakalarin gözleri içine ekilmistir ve 37°C/%5 COz'de 1000 ug/mL Geneticin içeren büyüme ortami içine %100 konflüansa kadar kültürlenmistir.
Virüs enfeksiyonu: SCV104, virüsü MM (RPMI-1640/%2 FBS/2 mM GIutamax/pen- strep) içinde 103 pfu/ml'ye seyreltme ile her bir hücre için 0,001 pfu`da hücreleri enfekte etmek için kullanilmistir. 1 ml seyreltilmis virüs enfeksiyon için her bir göze eklenmistir.
Bir 6-gözlü plakanin her bir gözü konflüent oldugunda yaklasik olarak 1x106 hücre moi, tek enfekte edilmis hücrelerden plak olusumlarini garanti edecektir. Tüm plakalar oda sicakliginda 1 saat boyunca inkübe edilmistir, böylece virüs hücreleri adsorbe edebilir ve bundan sonra 1 mL MM her bir göze eklenmistir ve tüm plakalar akabinde 37°C/%5 COzde inkübe edilmistir böylece hücrelere senkronize viral girisi tesvik edilmistir, akabinde zamanla hücreden hücreye yayilma ile sonuçlanan viral amplifikasyon gerçeklesmistir. Kirmizi flüoresan plak olusumu, bir flüoresan mikroskop altinda günlük olarak gözlenmistir.
Mikroskop incelemesi: Üç günlük bir periyot boyunca viral enfeksiyon ve plak olusumu DsRed filtre (Kat# U-MRFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop (Olympus kullanilarak çekilmistir.
Bulgular: Enfeksiyondan sonraki gün 1'de, tüm enfeksiyonlar, kirmizi flüoresansli sporadik küçük odaklar ile sonuçlanmistir. Gün 3 ile, tüm klonal hücre hatlari, büyükçe kirmizi flüoresan Iitik plak üretmistir, burada klon 11 (C11), test edilen tüm klonlarin anlamli olarak en büyük plak boyutlarini üretmistir.
Sonuçlar: Bu bulgular, C11 klonunun (C11-LL19-HeLa), bir SCV104 enfeksiyonundan test edilen tüm klonlarin en büyük plak olusumunu desteklemek için yeterli D13 proteini eksprese ettigini gösterir. Bu hücre hatti klonu (C11), vaksiniya virüsünü titre etmek için yaygin bir sekilde kullanilan titrasyonun Iitik plak sayma yöntemi kullanilarak bir D13L silinmis vaksiniya virüsünü kantifiye etmek için mükemmeldir.
CP77 ve D13L eksprese eden p-LL07-LL29-CHO hücre hattinin yapilmasi CHO hücreleri içinde bir D13L ORF'si silinmesi olan bir VACV-COP virüsünü kurtarmak için, D13 ve CP77 proteinlerini eksprese eden bir CHO hücre hattinin yapilmasi gerekecektir. Bu, ekspresycnu yönlendirmek için bir memeli promotöründen, D13 ve CD?? proteinlerini kodlayan bir CHO tercihli kodon optimize edilmis DNA dizilemesinin akabinde bir poliadenilasyon sinyal dizisinden olusan bir D13 memeli ekspresyon kasetini ve CP77 memeli ekspresyon kasetini yapma ile yapilmistir. Bu kasetler burada akabinde konak hücre genomik DNA'sina kararli gen transferine ve antibiyotik seleksiyonu ile basarili entegrasyon için seleksiyona olanak saglayan plazmid vektörlerine klonlanmistir. Aktarilmis hücreler akabinde, hem D13 hem de CP77 ekspresyon kasetlerini içeren hücreleri seçmek için antibiyotik seleksiyonu kullanilmasi ile çogaltilmistir. CP77'nin ekspresyonunu dogrulamak için, Güçlendirilmis Yesil Flüoresan protein eksprese eden bir vaksiniya virüsü (SCV505) transgenik hücre hattini enfekte etmek için kullanilmistir. burada flüoresan plak gelisimi 4 günlük bir periyot boyunca izlenmistir. 4 günlük periyot boyunca giderek genisleyen yesil flüoresan plak boyutu, hücre hatti tarafindan CP77 ekspresyonunu konfirme etmistir.
D13 proteininin ekspresyonunu dogrulamak için, CP77 (SCV104) ve DsRed flüoresan proteini eksprese eden bir D13L silinmis vaksiniya virüsü transgenik hücre hattini enfekte etmek için kullanilmistir, burada plak gelisimi 4 günlük bir periyot boyunca izlenmistir. 4 günlük periyot boyunca giderek genisleyen kirmizi flüoresan plak boyutu, hücre hatti tarafindan D13 proteini ekspresyonunu konfirme etmistir. pLL07 - CP77 gen transfer plazmidinin yapilmasi CP77 proteini kodlama dizisinin yapi/masi.' CP77 protein kodlama dizisi, inek çiçek virüsü Brighton Red susu UhiProtKB/Swiss-Prot: P12932.1'in O25L ORF'si tarafindan kodlanan CP77'nin amino asit dizisinden DNA dizisini geri-olusturma (geri translasyon veya ters translasyon) ile GeneArt GmbH (Almanya) tarafindan sentetik olarak yapilmistir ve Çin Hamsteri Over (CHO) hücrelerinde ekspresyon için kodon optimize edilmistir.
CP77 hücre aktarma vektörünün yapilmasi: pPH51'den (kodon optimize edilmis CP77 protein kodlama dizisi barindiran bir klonlama plazmidinden) kodon optimize edilmis CP77 protein kodlama dizisi, PCR primer çifti kullanilarak PCR ile çogaltilmistir, burada 5' primer, baslangiç kodonu etrafina bir Kozak dizisi eklemek için tasarlanmistir ve 3' primer, durdurma kodonundan önce Bayrak-etiket dizisi eklemek için tasarlanmistir. Çogaltilmis PCR ürünü DNA firmasindan satin alinan transpozon piggybac vektörü pJ içine Bsal klonlama yeri vasitasiyla alt- klonlanmistir. Bsal içine klonlama etkili bir sekilde, pLLO7 olusturmak için kometGPF kodlama dizisini CP77 proteini kodlama dizisi ile degistirir. CP77 simdi, insan konstitütif Elongasyon Faktörü 1 alfa promotörü (EF1 a) kontrolü altinda olan bir hale gelir ve her ikisi transfekte edilmis hücrelerin genomu içine kararli bir sekilde entegre edildiginde, higromisin direnç geni ile birlikte-eksprese edilir. Konak genomu Içine kararli entegrasyona, piggyBac vektörünün Sol ve Sag Transpozon siniri ile baglanmis DNA dizisinin Transpozon entegrasyonu ile aracilik edilir. pPH51 plazmid DNA'sindan CP77-CHO genini PCR ile çogaltmak için kullanilan PCR primer çifti: Ileri Primer dizisi: (SEQ ID NO: 4) Geri Primer dizisi: CAGGAAGACGCTTTTtcaCTTGTCATCGTCATCCTTGTAATCCTGCTGCTCGAAG ATCTTGTACT (SEQ ID NO: 5). Durdurma kodonundan (küçük harf) sonra gelen Bayrak Etiket dizisinin alti çizilidir. pLL29 - D13 gen transfer plazmidinin yapilmasi CHO-kodon optimize edilmis D13 proteini kodlama dizisi, DNA2.0 lnc (Kat # pJ503-2) firmasindan satin alinan pJ503-02 (KometGFP ve Ne0+ tasiyan pHULK piggyBac Memeli Ekspresyon Vektörü) içine Bsa l klonama yerleri vasitasiyla klonlamadan önce C-ucu Bayrak-etiket dizisini HA-etiket dizisi ile degistirmek için (önceden tarif edildigi Üzere) pLL19'dan PCR ile çogaltilmistir.
D13L-HA hücre aktarma vektörünün yapilmasi: pLL19'dan C-ucu Bayrak-etiket dizisi içermeyen kodon optimize edilmis D13-protein kodlama dizisi PCR ile çogaltilmistir ve pLL29 üretmek için DNA2.0 Inc (Kat # pJ503-2) firmasindan satin alinan transpozon piggyBac vektörü pJ503-2 (KometGFP ve Neo+ tasiyan pHULK piggyBac Memeli Ekspresyon Vektörü) içine Bsa l klonlama yerleri vasitasiyla alt- klonlanmistir. ln-Fusion klonlama (Clontech: Iigazsiz klonlama) ile Bsal yerleri arasina klonlama, kometGPF kodlama dizisini çikarir ve bunu in vitro homolog rekombinasyon ile yeni HA-etiketli D13-protein kodlama dizisi ile degistirir. D13LchoHA-Etiketli protein kodlama dizisi simdi, insan Elongasyon Faktörü 1 alfa promotörü (EF'la) kontrolü altindadir ve her ikisi transfekte edilmis hücrelerin genomuna kararli bir sekilde entegre edildiginde, Neomisin direnç geni ile birlikte-eksprese edilecektir. Konak genomu içine kararli entegrasyona, piggyBac vektörünün Sol ve Sag Transpozon siniri ile baglanmis DNA dizisinin Transpozon entegrasyonu ile aracilik edilir. pLL29'un bir plazmid haritasi asagida gösterilir.
D13Lcho-HA etiketli dizinin PCR amplifikasyonu asagidaki primer çifti kullanilarak yapilmistir: Ileri Primer dizisi: Geri Primer dizisi: SÜFaI'i'HXAI”iil'l'i(_"1".'î`ri .str (kilit?sili'T't11'ir'iât'fi`l'i"”HUT (Ji"`til-I(iTT-\l`l`(}(`l`t" Alti çizili metindeki dizi, HA kodlama dizisini temsil eder. "tta", durdurma kodonunu temsil eder.
CP77-Bayrak etiketli ve D13-HA etiketli ekspresyon kasetlerinin pLL07 ve pLL29 ile es- zamanli transdüksiyon ile CHO hücreleri içine kararli ikili yerlestirilmesi CHO hücreleri, bir T25 balonuna ekilmistir, RPMI-1640/%10 FBS/2 mM GIutamax/pen- strep büyüme ortami içinde yaklasik olarak %50 konflüansa kadar kültürlenmistir.
Qiagen firmasindan (Kat # 301425) Effectene transfeksiyon reaktifi kullanilarak, 1 ug pLL07 ve 1 ug pLL29, üreticinin talimatlari izlenerek %50 konflüent CHO hücrelerinin T25 balonuna transfekte edilmistir. Transfekte edilmis hücreler akabinde, büyüme ortami (RPMI içinde gece boyu inkübe edilmistir. Sonraki gün, ortam aktarilmis hücreleri seçmek için 500 ug/mL Geneticin ve 250 ug/mL Higromisin B içeren büyüme ortami ile degistirilmistir. Seleksiyon ortami, hücrelerin çogu ölene kadar her 2 ila 3 günde bir degistirilmistir ve tek hücrelerden türetilmis olan hücrelerin kalan kolonilerini ayrilmistir. Aktarilmis hücreler %90 ila 100 konflüansa kadar büyüdügünde, bunlar TrypLE Select (Gibco-Invitrogen Corp, Kat balon içine ekilmistir. Bu yeni poliklonal hücre hatti, p-LLOY-LL29-CHO olarak gösterilmistir.
Vaksiniya virüsünü ve D13L ORF'si silinmis vaksiniya virüsünü kurtarma ile D13 ve CP77 ekspresyonunun dogrulanmasi SCV eksprese eden ve yalnizca CP77 proteini varliginda CHO hücrelerinde çogalan bir vaksiniya virüsüdür. Bu virüs, bu hücre hatti tarafindan CP77 ekspresyonunu dogrulamak için p-LL07-LL29-CHO'da bir plak enfektivite çalismasinda kullanilmistir. SCV104, inek çiçek virüsü 025L promotörü arti CP77 proteinini kodlayan ORF ile degistirilmis D13L ORF'sine ve bir kirmizi flüoresan protein ekspresyon kasetine (DsRed Express2) sahip olan bir vaksiniya virüsüdür. Bu virüs, D13 proteininin hücre hatti ekspresyonu yoklugunda çogalmayacaktir. Bu virüs, bu hücre hatti tarafindan D13 ekspresyonunu dogrulamak için p-LLO7-LL29-CHO'da bir plak enfektivite çalismasinda kullanilmistir. p-LL07-LL29-CHO hücre hatti plak-enfektivite çalismasi Bu çalismada, SCV tarafindan enfeksiyondan p-LL07-LL29-CHO tarafindan D13 ve CP77 ekspresyonunu kalifiye etmeye yardimci olmak için çesitli hücre hatlari kullanilmistir. Asagidaki hücre hatlarinda beklenen sonuçlari asagidaki sekildedir: Vero: Bu hücre hatti normal olarak vaksiniya virüsü enfeksiyonuna permisiftir. Bu virüs normal olarak bu hücre hattinda enfeksiyöz oldugundan, SCV505 enfeksiyonu için YESIL flüoresans ile saptandigi üzere çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayilmasini gösteren plak olusumu. Bununla birlikte, hücre hatti veya virüs tarafindan D13 proteini ekspresyonu olmadigindan çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayiliminin olmadigini gösteren, SCV104 enfeksiyonu için KIRMIZI flüoresans olmamasi veya yalnizca bununla saptandigi üzere plak olusumu olmadigi görülmelidir.
C11-LL19-HeLa: Bu, pLL19 transdüksiyonu vasitasiyla D13 proteinini eksprese eden bir vaksiniya virüsü permisif hücre hattidir. D13'ün hücre hatti ekspresyonuna bakilmaksizin YESIL flüoresans ile saptandigi üzere çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayilmasini gösteren SCV505 enfeksiyonundan plak olusumu beklenir. Bu virüs simdi D13 proteininin hücre hatti ekspresyonundan dolayi bu hücre hattinda çogalabildiginden, SCV104 enfeksiyonundan plak olusumu beklenir.
CHO: Bu hücre hatti vaksiniya virüsü enfeksiyonuna permisif-degildir. KIRMIZI veya YESIL flüoresans olmamasi veya yalnizca tek hücre KIRMIZI veya YESIL flüoresans ile saptandigi üzere SCV505 ve SCV104 enfeksiyonlarindan plak olusumu görülmemesi beklenir. Bu, bu virüsün CP77 eksprese edebilmesine ve SCV505'i kurtarmasi gereken hücre hatti tarafindan CP77 proteini ekspresyonu yokluguna ragmen, SCV104'ü kurtarmasi gereken hücre hatti tarafindan D13 proteini ekspresyonu yoklugundan dolayi çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayilmasinin olmadigini gösterir. p-LL07-LL29-CHO: Bu, hem D13 hem de CP77 proteinlerini eksprese eden bir CHO hücre hattidir. YESIL flüoresans ile saptandigi üzere çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayilmasinin CP77 proteininin hücre hatti ekspresyonunu gösterdigini gösteren SCV505'ten plak olusumu beklenir. KIRMIZI flüoresans ile saptandigi üzere çogaltilmis virüsün zamanla hücreden hücreye yayilmasinin D13 proteininin hücre hatti ekspresyonunu gösterdigini gösteren SCV104'ten plak olusumu beklenir.
Hücre hatti düzenekleri: Vero, CHO, C11-LL19-HeLa ve p-LLO7-LL29-CHO hücre hatlari, çok sayida 6 gözlü plakanin iki setine ekilmistir (SCV505 enfeksiyonu için biri ve SCV104 enfeksiyonu için digeri) ve 37°C/%5 COz'de %100 konflüansa kadar (asagida oldugu üzere) karsilik gelen büyüme ortami içinde kültürlenmistir: . Vero, CHO: RPMl-1640/%10 FBS/2 mM Glutamax/pen-strep ug/mL Geneticin ug/mL Geneticin ve 250 ug/ml Higromisin B GIutamax/pen-strep) içinde 103 pfu/ml'ye seyreltme ile her bir hücre için 0,001 pfu'da hücreleri enfekte etmek için kullanilmistir. 1 ml seyreltilmis virüs enfeksiyon için her bir göze eklenmistir. Bir 6-gözlü plakanin her bir gözü konflüent oldugunda yaklasik olarak 0,001 olan bir moi, tek enfekte edilmis hücrelerden plak olusumlarini garanti edecektir.
Tüm plakalar oda sicakliginda 1 saat boyunca inkübe edilmistir. böylece virüs hücreleri adsorbe edebilir ve bundan sonra 1 mL MM her bir göze eklenmistir ve tüm plakalar akabinde 37°C/%5 COzide inkübe edilmistir böylece hücrelere senkronize viral girisi tesvik edilmistir, akabinde zamanla hücreden hücreye yayilma ile sonuçlanan viral amplifikasyon gerçeklesmistir. Flüoresan plak olusumu, bir flüoresan mikroskop altinda günlük olarak gözlenmistir.
Mikroskop incelemesi: Dört günlük bir periyot boyunca viral enfeksiyon ve plak olusumu SCV ve SCV505 için GFP filtre (Kat# U-MGFPHQ, Olympus) ile flüoresan mikroskop (Olympus IX51) altinda incelenmistir. Görüntü, CeIISens Digital Imaging Software (Olympus) kullanilarak çekilmistir.
Bulgular: enfeksiyondan sonra gün 1'de, her iki virüsün hücrelerin içine girdigini, ancak enfeksiyonu komsu hücrelere yaymak için henüz çogalmadigini gösteren yalnizca sporadik tek hücre flüoresansi görülebilir. Bununla birlikte, bu enfeksiyondan sonraki gün 2 ila gün 4 arasinda ayni ilerlemede kalmistir, yani, yalnizca tek hücre enfeksiyonlari görülmüstür ve zamanla komsu hücrelere viral yayilma yoktur. ile enfeksiyon beklenildigi sekildedir, tümünün tüm plaklarin gün 4 ile hücre tek- katmanlarinin bir konflüent enfeksiyonuna birlestigi bir noktaya kadar boyunun arttigi minik plaklar enfeksiyondan sonraki gün 1'de olusmustur. Bu, gün 1'den baslayarak çogalan virüsün enfeksiyondan sonraki gün 4 ile tamliliga kadar enfeksiyonu yaydigini gösterir. Bununla birlikte, bu SCV104 enfeksiyonundan tamamen farklidir.
Enfeksiyondan sonraki gün 1'de, sonraki 3 gün boyunca ayni kalan yalnizca sporadik tek hücre flüoresansi görülebilir. Bu, virüs D13L ORF'sinden yoksun oldugundan ve viral genom replikasyonunan sonra viral birlesmeyi baslatamayacagindan ve ayrica bu hücre hatti viral amplifikasyonu kurtarmaya yardimci olmak için D13 proteinini eksprese etmediginden, SCV104'ün bu hücre hattinda artamadigini ve çogalamadigini göstermistir.
C11-LL19-HeLa hücrelerinin (D13 proteini eksprese eden HeLa hücre hattinin) sekildedir, tüm plaklarin gün 4 ile hücre tek-katmanlarinin bir konflüent enfeksiyonuna birlestigi bir noktaya kadar boyu artan küçük plaklar enfeksiyondan sonraki gün 1'de olusmustur. Bu, gün 1'den baslayarak çogalan virüsün enfeksiyondan sonraki gün 4 ile tamliliga kadar enfeksiyonu yaydigini gösterir. SCV104 ile enfeksiyon da, bu hücre hatti tarafindan üretilen D13 proteininin SCV104'teki D13L ORF'si yoklugu için kompleman (tamamlayici) oldugunu gösteren ayni sonuçlari üretir ve bu hücre hatti tarafindan üretilen miktar, bir aynen D13L ORF'sine sahip olan SCV505 ile karsilastirilabilir viral amplifikasyonu ve enfeksiyon yayilmasini desteklemek için yeterlidir. p-LL07-LL29-CHO hücrelerinin (D13 ve CP77 proteinleri eksprese eden CHO hem de SCV505 için, enfeksiyondan sonraki gün 1'de minik enfeksiyon Odaklari gözlemlenmistir. Sonraki 3 gün boyunca, bu enfeksiyon Odaklari, enfeksiyondan sonraki gün 4 ile nihayetinde konflüent enfeksiyonlara birlesen giderek artan bir sekilde daha büyük plaklara genislemistir. Bu, CP77'nin SCV505 amplifikasyonunu ve propagasyonunu destekledigini eksprese edilmekte oldugunu ve D13 proteinin ayrica SCV104 amplifikasyonunu ve propagasyonunu destekledigini eksprese edilmekte oldugu göstermistir.
Sonuç: Bu bulgular, CP77 ve D13 proteini eksprese eden bir CHO hücre hattinin bir D13L silinmis vaksiniya virüsünün üretilmesi ve imal edilmesi için hücre substrati olarak kullanilabilecegini gösterir. Normal permisif hücrelerin enfeksiyonu sirasinda, bir D13L silinmis virüs, viral birlesmeyi baslatamayabilecektir ve bundan dolayi bunun enfeksiyöz yasam siklusunu tamamlayamayacaktir, böylece bu durum bunu güvenlik açisindan insan ve hayvan asilamalari için bir mükemmel viral asi aktarim vektörü yapacaktir. Bununla birlikte, bu hayli atenüe edilmis vaksiniya vektörü. bu hücre hatti CHO konak-aralik proteinini (CP77) ve eksik birlesme proteinini (D13-proteinini) eksprese ettiginde, biyoteknoloji dostu CHO hücre hattinda imal edilebilir.
Western blotlama ile p-LLO7-LL29-CHO hücre hattinin 013 ve CP77 proteini ekspresyon analizi Alt-yapi bilgi p-LL07-LL29-CHO tarafindan eksprese edilen D13 ve CP77 proteinleri, etiketlenir ve D13 ve CP77' proteininin C-ucu uçlarindaki amino asit etiket dizisini spesifik olarak taniyan bir antikor kullanilarak saptanabilir. D13 ve CP77 proteinlerini spesifik olarak taniyan antikorlarin yoklugunda. western-blot analizi, p-LL07-LL29-CHO hücre hattinda D13 ve CP77 proteinlerinin ekspresyonunu konfirme etmek için bu anti-etiket antikorlari kullanilarak yürütülebilir. D13 proteininin C-ucu ucu, "YPYDVPDYA" HA-etiket amino amino asit dizisini içerir.
Western-blot analizi metodolojisi Asagidaki hücre hatlari, T75 balonlari içine ekilmistir ve uygun seleksiyon antikorlari içeren büyüme ortami (RPMI içinde %100 konflüansa kadar kültürlenmistir: Seleksiyon antibiyotikleri olmadan CHO, 500 ug/mL katmani ayrilmistir ve 37°C'de 10 dakika boyunca TrypLE Select ile tek hücre süspansiyona parçalanmistir. Her bir balondan hücreler, geri-kazanilmistir ve 300 9'de dakika boyunca sentrifügasyon ile pelet haline getirilmistir ve PBS ile iki kere yikanmistir. Nihai yikamadan sonra, hücre peletleri 500 uL PBS içinde yeniden- süspanse edilmistir. 4X SDS-PAGE yükleme tamponu, 1X olan bir nihai konsantrasyonu vermesi için protein ekstraktina eklenmistir ve 98°C'de 2 ila 3 dakika boyunca isitilmistir. Denatüre edilmis protein örneklerine bir Biorad Mini-PROTEAN® TGX Stain- FreeT'V' Precast Gel (gradyan jel) yoluyla 200 V'de 30 ila 45 dakika boyunca elektroforez uygulanmistir. Elektroforezden sonra, ayrilmis proteinler 100 V'de 1 saat boyunca elektro-blotlama ile nitroselüloz membrana transfer edilmistir.
Protein saptamasi için, nitroselüloz membran, spesifik-olmayan antikor baglama yerlerini bloke etmek için PBS içinde %5'Iik yagsiz süt tozu içinde oda sicakliginda 1 saat boyunca inkübe edilmistir. HA etiketli proteinlerin saptanmasi için, membran bloke etme tamponu içinde konjuge edilmis Anti-HA HRP'nin (Abcam Kat# AB1265) 1:1000'Iik bir seyreltmesi içinde gece boyu 4°C`de inkübe edilmistir. Bayrak-etiketli proteinlerin saptanmasi için, bir ayri elektro-blotlanmis nitroselüloz membran, bloke etme tamponu içinde konjuge edilmis Anti-Bayrak HRP'nin (Abeam Kat# AB49763) 1:1000'Iik bir seyreltmesi içinde gece boyu 4°C'de inkübe edilmistir. Membranlar akabinde PBS ile üç kere yikanmistir, her bir yikama 5 dakika sürmüstür ve akabinde bir BioRad XRS jel doc sistemi kullanilarak görüntü almadan önce bir kaç dakika boyunca ECL substrati (Thermo Scientific Pierce ECL Western-blot substrati, Kat No 32106) içinde inkübe edilmistir.
Sonuçlar HA-etiketi saptanmasi vasitasiyla D13 proteininin saptanmasi: anti-HA-etiketi antikoru, p-LLO7-LL29-CHO'dan hazirlanan bir tam hücre proteini ekstraktindan beklenen boyuttaki bir proteini saptayabilmistir, ancak CHO hücrelerin hazirlanan bir tam hücre proteini ekstraktindan proteini saptayamamistir. Bu, p-LLO7-LL29-CHO'nun D13 proteinini eksprese etmekte oldugunu açik bir sekilde göstermistir.
Bayrak-Etiketi vasitasiyla CP77 proteininin saptanmasi: anti-Bayrak-etiketi antikoru, p-LL07-LL29-CHO'dan ve p-LL07-CHO'dan (yalnizca CP77 eksprese eden CHO hücre hattindan) hazirlanan bir tam hücre proteini ekstraktindan beklenen boyuttaki bir proteini saptayabilmistir, ancak CHO hücrelerin hazirlanan bir tam hücre proteini ekstraktindan proteini saptayamamistir. Bu, p-LLO7-LL29-CHO'nun ve p-LL07- CHO'nun CP77 proteinini eksprese etmekte oldugunu açik bir sekilde göstermistir.
Bayrak-etiketi saptanmasi vasitasiyla D13 proteininin saptanmasi: Cl1-LL19- HeLa tarafindan eksprese edilen D13-proteini, D13-proteinini bir C-ucu Bayrak-etiketi ile eksprese etmistir ve bu hücre hattindan yapilan tam hücre proteini ekstrakti nin bir western bloti yapildiginda, anti-Bayrak-etiketi antikoru, beklenen boyuttaki bir proteini saptayabilmistir. Bu, C11-LL19-HeLa'nin D13 proteinini eksprese etmekte oldugunu Mevcut bulusun kapsamindan ayrilmadan, çok sayida modifikasyon teknikte uzmanligi olan kisiler için asikar olacaktir.
Dizi tanimlayicilarinin özeti DIZI ID AÇIKLAMA 1 Memeli hücrelerinde (CHO) ekspresyon için kodon optimize edilmis CP77'nin nükleotid dizisi 2 SEQ ID NO: 1 ile kodlanan CP77'nin amino asit dizisi 3 pLL07'nin nükleotid dizisi Dizi tanimlayicilarinin özeti DIZI ID AÇIKLAMA 4 pPH51 plazmidinden CP77-CHO geni için ileri primer pPH51 plazmidinden CP77-CHO geni için geri primer 6 Vaksiniya Kopenhag K1L geninin nükleotid dizisi (Genbankasi M35027.1'den ekstrakte edilmistir) 7 SEQ ID NO: 6 ile kodlanan vaksiniya Kopenhag K1 L'nin amino asit dizisi (Genbankasi M35027.1'den ekstrakte edilmistir) 8 VACV-COP-D1 3L-O RF 9 C-ucu bayrak-etiketi (DYKDDDK) ile hamster hücresi ekspresyonu için kodon optimize edilmis SEQ ID NO: 1'i kodlayan nükleotid dizisi Inf-LL19-D13LC'nin ileri primeri 11 Inf-LL19-D13LC'nin geri primeri 12 Bayrak-etiket proteini 13 D13L protein peptidi 14 Inf-PCR-D13L-F1'in ileri primeri lnf-PCR-D13L-F1'In geri primeri 16 lnf-PCR-D13L-F2'nin ileri primeri 17 Inf-PCR-D13L-F2'nin geri primeri 18 CP77+DsRed ekspresyon kaseti 2903bp 19 CP77+DsRed ekspresyon kaseti ID_D12L-LL04'ün ileri primeri 22 CP77/DsRed seleksiyonu ile VACV-COP D13L'nin silinmesi için pLL09 homolog rekombinasyon vektörü 23 Hücresel nükleer genomik DNA'ya kararli entegrasyon için pLL19 Etiketli- D13L-CHO kodon optimize edilmis transpozon aracili aktarma vektörü Titrasyon Sonuçlari 24 saat 48 saat 72 saat CHO 53pfu/mL 0 0 Viral verimler (çikti) Enfeksiyon için kullanilan virüsün miktari (Girdi), 4x104 pfu/mL'dir. Karsilastirma için, verimler, 104'Iü degerleri olarak ifade edilir. Degerler, her bir zaman noktasi için ortalama verimi, yani, 3 mL (2 göze bölünmüs 6 mL) hasattan elde edilen verimi, sunar. 24 saat 48 saat 72 saat Asagidaki tablo, yukarida üretilen virüsün verimini, her bir hasat zaman noktasinda her bir hücre hattindan elde edilen girdi düzeyini, yani, ÇIKTI/GIRDI oranini, gösterir.24 saat 48 saat 72 saat pfuImL cinsiden titrasyon sonuçlari Virüs/Hücre hatti Seyreltme Sayim Titre VACV-COPICHO 10'1 0 OpfulmL pfulmL cinsiden titrasyon sonuçlari Virüs/Hücre hatti Seyreltme Ortalama VACV-COPNero Ortalama VACV-PH22Nero Ortalama VACV-PH22/CHO Ortalama Sayim Titre 4 2.8x107pfulmL +I- %34 8 7,3x107pfuImL +/- %20 Her bir göz için enfeksiyondan elde edilen ortalama virüs çiktisi (verim) Her bir balon için virüs ekstrakt hacmi, 1 mL'dir. Titrasyon için plakalama hacmi, 1 mL'dir. Bundan dolayi, virüs verimi, 1 mL (plakalama haCmi) ile çarpilmis pfu/mL cinsinden titrasyona esittir.
Hücre hatti Her bir balon için verim Vero 2.8x107pfu Vero 0.75x107pfu CHO 7.3x107pfu Her bir pfu inokülüm için verim, yani, 1 pfu inokülümden üretilen toplam pfu Her bir balon için inokülüm boyutu: 1x105pfu Her bir pfu inokülüm için verim 0 pfu/girdi pfu 280 pfu/girdi pfu (inokülasyon için kullanilan her pfu için üretilen 280pfu) 75 pfu/girdi fpu (inokülasyon için kullanilan her pfu için üretilen 75pfu) 730 pfu/girdi pfu (inokülasyon için kullanilan her pfu için üretilen 730pfu) Bu, her bir 1 mL viral ekstraktin titrasyonudur. substrati Indikatör Hücre hatti 143B Vero Titrasyon SE SE Titrasyon SE SE pfuImL %'si pfulmL %'si Indikatör Hücre hatti Hücre 143B Vero s“bSI'at' Titrasyon SE SE Titrasyon SE SE pfulmL %'si pfulmL %'si Tablo 4, her bir 1 mL viral ekstrakt içinde virüsün toplam miktarini saglar.
Indikatör hücre hatti Hücre substrati 143B Vero Verim pfu SE Verim pfu SE Sus ORF Genom Protein Sus ORF Genom Protein BIBLIYOGRAFYA Wils› & .9005. NCW York Kihlsir H (:1. ( Sumhmnk N a!. (1989) Moicculai' (Ilnniiig: A Laburulory Manual. 2nd cd.. Cold Spring 1-1arhoi' Press. Pluiiisx-icxx--z NY`, Werdcn SJ. er a!. (2008) Chapter 3: vairus Hml Range Gunes. In: Admnccs in Virus' Research. 71 DIZI LISTESI <110> Sementis Limited <120> VIRAL VEKTÖR IMALATI <160> 11 <170> Patentln versiyonu 3.5 <210> 1 <211> 2031 <212> DNA <213> Yapay <220> < ekspresyon için kodon optimize edilmis CP77'nin nükleotid dizisi <400> 1 tq99699can qtqaoqtch gatgctchq <210> 2 <211> 676 <212> PRT <213> Yapay <220> <223> SEQ ID NO: 1 ile kodlanan CP77'nin amino asit dizisi <400> 2 Met. Phe Asp Tyr Leu Giu han Giu Giu Vai Ala Leu Asp Glu Leu Lys Gin Mit Liu Arq Asp Arg Asp Pro Asn Asp Thr Arg Asn Gln Phi Lys Asn Asn Ala Leu His Ala Tyr Leu Phe Asn Glu His Cya Aan Asn Val 40 45 Glu Val Val Lya Iieu `ben Leu Asp Ser Gly Thr Ran Pro Lou HLS Lys 50 55 60 Asn Trp Arg Gln Leu Thr Pro Leu Gly Glu Tyr Thr Aan Set Arg His 65 70 75 BG Gly Ly: Val Asn Lys Asp 11. Ali: Mit Val Liu Liu Glu Ala Thr Gly 85 90 95 Tyr Ser &an [19 Asn Asp Phe Asn 119 Pha Thr Tyr Met Lya Ser Lys Pro Giu Leu Arg Ala Ty: Ty: Giu Ser 6l0 615 Glu Val Tyr Asp Ile Ile Ser Asn Ala 625 630 His Lys Asn Ile Giu Ser Vai Asp Asp Ann Pro Ty: Thr Ile Lys Ty: Lya Ile Phe 660 665 <210>3 <211>11742 <212> DNA <213> Yapay <220> <223> pLL07'nin nükleotid dizisi <400> 3 QBCOBQGQQÖ C991C999Cl ggCRaLLauL LuchguuLt 999C99t599 955C599t99 CtaQCCCOQB tLLgctuaca Lagunaaaai tçatchgft ttqgcigtac aqqacqigit acatqngcac qnaîqhtcfq gunqcglqdt attcgizttc ccagaiztac qatqaLach cttnganqqc qucntgsaqc 9C39393C99 aaqaLsüLcL aantaetgtc caitgcqgta gaatgigcaq LCaLCGQCQE tgqtqi:gac CCQLÇCQQÄB acaiqctgac fqqrqrcnra 5999C99C9t audgaigguc çqgaqcacia aqtqtciccg QBLCQCQGEQ cqccgtqiqa qaictggga: Lnlgqcculg Ltcltqaaat rncqnnaaga tqccagagzt Lgtaoccatt acgaqtçctg gattqcçtcq Ctgcgcçacg qaatgqçccg 999C91C991 LgünugduLL ugacutugLa CIÖQQQUJQQ QCÇQQQCtgc lzLuuuiJuîaa catciqqtcg açntaîtnct Lçccagtgat UCCQCqaan cctzgantta chggüßllg QBQCQGBGOQ uccicnctga catttaißet aaniargtgg Lacqaquaco gaqtcannna çtgattctcq GtCCÜQGQaÜ çgccaqcttq GOGCQGQCLQ çcrqnfgnrq Çqchigßic çtgcgngang çatcaicgac QIGCQQCLGC aaqqqcnttr guncttgnlg CQQQQLBSÄC ciqaacizag tciaqtgcct cggzgaçatc uaazntutgu ini-:::umigLq qiacitcgaq daüaLuuguL ÜQCOBCECCJ Lgaatahgct 99°C9C99°3 qgcctictac gcaatgntaq qangtqntgc dluuLânLvU Cfgccctata 9999933C93 uudLLanuga 10020 10080 10140 10200 10260 10320 10380 10440 agaLtgach <210>4 <211> 54 <212> DNA <213> Yapay <220> qnaaaagatc <223> pPH51 plazmidinden CP77-CHO geni için ileri primer <400> 4 <210> 5 10500 10560 10620 10680 10740 10800 10860 10920 10980 11040 11100 11160 11220 11280 11340 11400 11460 11520 11580 11640 11700 11742 <211> 65 <212> DNA <213> Yapay <220> <223> pPH51 plazmidinden CP77-CHO geni için geri primer <400> 5 <210> 6 <211> 855 <212> DNA <213> Yapay <220> ekstrakte edilmistir) <400> 6 gciataqata <210> 7 <211> 284 <212> PRT atctgqaaan <213> Yapay <220> QQGCÜthQQ <223> SEQ ID NO: 6 ile kodlanan vaksiniya Kopenhag K1L'nin amino asit dizisi (Genbankasi M35027.1'den ekstrakte edilmistir) <400> 7 Met Asp Leu Ser Arg Ile Asn Thr Trp Lys Ser Lys Gln Leu Lys Ser <210>8 <211> 551 81'.: 61'.: Tyr Val Asn Cys Val Lys Lys Asn <212> PRT <213> Yapay <220> < 223> VACV-COP-D13L ORF <400> 8 1.61] (1111 8.1.:: Aan hap Vai Leu Tyr Ser Giu Asn Giy Pro Ile Ser Arg Ile Ty: Aan 450 455 460 Giu Leu Leu Thr Lys Ser Asn Asn Giy Thr Axg rh: Leu Thr Phe Asn Phe Thr Pro Lys Ile Phe Phe Arq Pro Thr Thr Ile Thr Ala Asn Val 485 490 495 Ser Atg Gly Lys Asp Lys Leu Ser Val Arg Val Val Tyr Ser Thr Met 500 505 5i0 Asp Val Asn His Pro Ile Tyr Tyt Val Gln Lys Gln Leu Val Val Val 515 520 525 Cys Asn Asp Leu Tyr Lys Vai Ser Tyr Asp Gln Giy Vai Ser Ile Thr 530 535 540 545 550 <210> 9 <211> 1680 <212> DNA <213> Yapay <220> <223> SEQ ID NO:1'i kodlayan CHO kodon optimize edilmis nükleotid dizisi <400> 9 <210> 10 <211> 44 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 10 <210> 11 <211> 40 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 11 <210> 12 <211>8 <212> PRT <213> Yapay <220> < 223› Bayrak-Etiket proteini <400> 12 <210> 13 <211> 16 <212> PRT <213> Yapay <220> <223> D13L peptidi <400> 13 Cys Ty:: Asp Gln Giy Val Ser Ile Thr Lys Ile Met Giy Asp Asn han 1 5 10 15 <210> 14 <211> 35 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 14 <210> 15 <211> 38 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 15 <210> 16 <211> 36 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 16 <210>17 <211> 36 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 17 <210> 18 <211> 668 <212> PRT <213> Yapay <220> <223> CPXV-125L Brighton Red'in dizisini içeren CP77 proteini <400> 18 Mat Phe Asp Tyr Lou Glu Asn Glu Glu Val Ala Leu Asp Glu Lou Lys 141.: 1.4: 11 <210> 19 <211> 2903 <212> DNA <213> Yapay <220> <223> CP77+DsRed ekspresyon kaseti dizisi <400> 19 nttqtacaag aatcaqoaqv nqqatacgcq UdaiLuugaL qccattgcai Lggaahatgq LgauLdeLa duaLLLnuru deLignlaL <210> 20 <211> 25 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 20 tquqachcq <210> 21 <211> 29 <212> DNA <213> sentetik primer <400> 21 <210> 22 <211> 6809 <212> DNA <213> Yapay <220> ochtqvtqa <223> VACV-COP D13L with CP77/DsRed seleksiyonu ile VACV-COP D13L'nin silinmesi için pLL09 homolog rekombinasyon vektörü <400> 22 9919C999CC cciizaqiat Lcaiggaatc ggcizattca acanqggtgg Lataqstaca aziciitgaa aziciagact afacqngfar aqtatzacnt LLÖQCÄCELB tiachigta LOLtLLLQüa gaticcçatt ttqzntacct Ltcattçaga giatquuaaL nttcgnçcaa cctacqiggq CUBBQUCCOE 993C99C99C QQCCGCUÖQI rtcatcqch agtchLtLa dddLaLnugL ctuqtcuaot aqcggtntca iicqggnugc aqataiigtc ttnnatagqc L808L88CL8 cqcigiaqtg ticqgagcta gtcctqciac CCOCLCâclc acgqtzatcc GGGQQCCBOQ fqacqagnar çcttaccggn acgctqiiqq çgtaaqacac tctaliicgi QQQCtLGCCO tnchcaang qaiccacLag Lnlctc4glt UUtötCîîCQ atqttaczag attgttitzc QQQQIQCStG 8QQCCQCQIC cqqtqtnugt rnacnqrtqq <210> 23 atcacqugqc <211> 11161 <212> DNA <213> Yapay <220> <223> Hücresel nükleer genomik DNA'ya entegrasyon için pLL19 Etiketli-D13L-CHO kodon optimize edilmis transpozon aracili aktarma vektörü <400> 23

Claims (1)

  1. ISTEMLER . Bir modifiye edilmis memeli hücresi olup, özelligi hücrenin genomunun, bir konstitütif promotör kontrolü altinda CP77'yi kodlayan bir diziyi içermesi için modifiye edilmesidir, böylece modifiye edilmis hücre hatti, modifiye edilmemis hücrede daha az çogalabilen veya hiç çogalamayan bir çiçek virüsünün propagasyonunu sürdürür ve burada hücrenin genomu ilaveten, bir konstitütif promotör kontrolü altinda D13L'yi kodlayan bir dizi içerir. . istem 1'e göre hücre olup, özelligi hücrenin genomunun ilaveten, bir promotör kontrolü altinda K1L'yi kodlayan bir dizi içermesidir. . istem 1'e veya istem 2'ye göre hücre olup, özelligi hücrenin, bir sürekli hücre hatti olmasidir. . Istemler 1 ila 3'ten herhangi birine göre hücre olup, özelligi hücrenin, bir CHO hücresi olmasidir. . Istemler 1 ila 4iten herhangi birine göre hücre olup, özelligi hücrenin, bir insan hücresi, bir primat hücresi, bir hamster hücresi veya bir tavsan hücresi olmasidir. . Istemler 2 ila 5`ten herhangi birine göre hücre olup, özelligi K1L geninin ekspresyonunun, bir konstitütif memeli promotörü kontrolü altinda olmasidir. . Istemler 1 ila 6'dan herhangi birine göre hücre olup, özelligi CP77 geninin ekspresyonunun, bir permisif hücre hattinda gözlenene es-deger virüs verimleri üretmek için virüsün propagasyonunu desteklemesidir. . Istemler 1 ila 7'den herhangi birine göre hücre olup, özelligi CP77 geninin ekspresyonunun, 500'den büyük olan bir virüs replikasyon amplifikasyon oranini desteklemesidir. Istemler 1 ila 8'den herhangi birine göre hücre olup, özelligi CP77 geninin, memeli hücrelerinde ekspresyon için kodon optimize edilmis nükleotidlerin bir bitisik dizisi tarafindan kodlanmasidir. 10. CHO hücrelerinde çogalmayan bir orto-çiçek virüsünü çogaltmak için bir proses olup, özelligi prosesin, çiçek virüsünün bir memeli hücre hattinda in vitro çogaltilmasini içermesidir, burada hücre hatti, CP77'yi kodlamasi ve bir konstitütif promotör kontrolü altinda eksprese etmesi için ve bir konstitütif promotör kontrolü altinda D13L'yi eksprese etmesi için modifiye edilir. Istem 10'a göre proses olup, özelligi modifiye edilmis hücre hattinin, K1L'yi kodlamasi ve bir promotör kontrolü altinda eksprese etmesi için modifiye edilmesidir. istem 10'a veya istem 11'e göre proses olup, özelligi modifiye edilmis hücre hattinin, bir insan hücresi, bir primat hücre hatti, bir hamster hücre hatti veya bir tavsan hücre hatti olmasidir. istem 12'ye göre proses olup, özelligi hücre hattinin bir CHO hücre hatti olmasidir.
TR2018/07128T 2013-11-01 2014-11-03 Viral vektör imalatı. TR201807128T4 (tr)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AU2013904242A AU2013904242A0 (en) 2013-11-01 Viral vector manufacture
AU2014900370A AU2014900370A0 (en) 2014-02-07 Orthopox vectors and propagation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
TR201807128T4 true TR201807128T4 (tr) 2018-06-21

Family

ID=53003022

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
TR2018/07128T TR201807128T4 (tr) 2013-11-01 2014-11-03 Viral vektör imalatı.

Country Status (24)

Country Link
US (2) US10544397B2 (tr)
EP (2) EP3375882B1 (tr)
JP (2) JP6682443B2 (tr)
KR (1) KR102047030B1 (tr)
CN (1) CN106255758B (tr)
AU (1) AU2014344738B2 (tr)
CA (1) CA2931518C (tr)
CY (1) CY1121414T1 (tr)
DK (2) DK3063278T3 (tr)
ES (1) ES2670034T3 (tr)
HK (1) HK1223395A1 (tr)
HR (1) HRP20180789T1 (tr)
HU (1) HUE037718T2 (tr)
LT (1) LT3063278T (tr)
NO (1) NO3063278T3 (tr)
NZ (1) NZ720241A (tr)
PL (1) PL3063278T3 (tr)
PT (1) PT3063278T (tr)
RS (1) RS57290B1 (tr)
RU (1) RU2658487C2 (tr)
SG (1) SG11201603919XA (tr)
SI (1) SI3063278T1 (tr)
TR (1) TR201807128T4 (tr)
WO (1) WO2015061858A1 (tr)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109862909A (zh) * 2016-08-19 2019-06-07 赛门蒂斯有限公司 病毒疫苗
JP2018081568A (ja) * 2016-11-17 2018-05-24 グローリー株式会社 紙幣収納装置および紙幣処理機
WO2024003346A1 (en) * 2022-06-30 2024-01-04 Bavarian Nordic A/S Mammalian cell line for the production of modified vaccinia virus ankara (mva)

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2604183B1 (fr) * 1986-09-23 1988-12-30 Transgene Sa Sequence d'adn, vecteurs, virus recombinants et procede mettant en oeuvre des virus de la vaccine recombinants capables de se multiplier dans les cellules cho
AU694519B2 (en) 1994-04-29 1998-07-23 Immuno Aktiengesellschaft Recombinant poxviruses with foreign polynucleotides in essential regions
CA2489301A1 (en) * 2002-08-07 2004-02-19 Bavarian Nordic A/S Vaccinia virus host range genes to increase the titer of avipoxviruses
FR2884255B1 (fr) * 2005-04-11 2010-11-05 Vivalis Utilisation de lignees de cellules souches aviaires ebx pour la production de vaccin contre la grippe
JP2009545309A (ja) * 2006-08-04 2009-12-24 ダブリン シティ ユニバーシティ 組換え型生物学的製剤を製造する方法

Also Published As

Publication number Publication date
EP3063278A1 (en) 2016-09-07
JP6682443B2 (ja) 2020-04-15
RU2658487C2 (ru) 2018-06-21
EP3063278A4 (en) 2017-04-12
CN106255758B (zh) 2020-06-23
AU2014344738B2 (en) 2019-03-21
RU2016121425A (ru) 2017-12-04
EP3375882B1 (en) 2019-10-16
HRP20180789T1 (hr) 2018-09-07
PT3063278T (pt) 2018-05-25
JP2020039340A (ja) 2020-03-19
DK3063278T3 (en) 2018-06-06
HUE037718T2 (hu) 2018-09-28
LT3063278T (lt) 2018-07-10
EP3375882A1 (en) 2018-09-19
JP2016534755A (ja) 2016-11-10
US20170029784A1 (en) 2017-02-02
CN106255758A (zh) 2016-12-21
RS57290B1 (sr) 2018-08-31
CA2931518C (en) 2021-03-09
DK3375882T3 (da) 2019-12-16
SG11201603919XA (en) 2016-07-28
KR102047030B1 (ko) 2019-11-20
US10544397B2 (en) 2020-01-28
EP3063278B1 (en) 2018-02-28
CY1121414T1 (el) 2020-05-29
HK1223395A1 (zh) 2017-07-28
NO3063278T3 (tr) 2018-07-28
CA2931518A1 (en) 2015-05-07
KR20160079868A (ko) 2016-07-06
US20200190482A1 (en) 2020-06-18
ES2670034T3 (es) 2018-05-29
SI3063278T1 (sl) 2019-04-30
NZ720241A (en) 2019-10-25
PL3063278T3 (pl) 2018-08-31
AU2014344738A1 (en) 2016-06-09
WO2015061858A1 (en) 2015-05-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2024216517A1 (en) Enhanced systems for cell-mediated oncolytic viral therapy
KR102362240B1 (ko) 세포 면역요법을 위한 방법 및 조성물
KR102557818B1 (ko) 키메라 폭스바이러스 조성물 및 이의 용도
CN109415687A (zh) 嵌合抗原受体t细胞组合物
KR20210093862A (ko) 유전자 요법 벡터를 제작하기 위한 조성물 및 방법
CN107849583B (zh) 使用细胞分裂基因座控制细胞增殖的工具和方法
CN106544326B (zh) 顺行跨多级突触、跨神经元的示踪系统
CN112739359A (zh) Apmv及其用于治疗癌症的用途
JP2020039340A (ja) ウイルスベクターの作製
TW201809273A (zh) 病毒疫苗
CN107847612A (zh) 递送Smad7基因作为治疗剂
JP2021533791A (ja) ウイルスを生成する方法及び組成物
WO2023167025A1 (ja) トランスジェニックマウス