SU1600633A3 - Способ очистки белкового токсина бактерий ВоRDетеLLа реRтUSSIS - Google Patents

Способ очистки белкового токсина бактерий ВоRDетеLLа реRтUSSIS Download PDF

Info

Publication number
SU1600633A3
SU1600633A3 SU874202442A SU4202442A SU1600633A3 SU 1600633 A3 SU1600633 A3 SU 1600633A3 SU 874202442 A SU874202442 A SU 874202442A SU 4202442 A SU4202442 A SU 4202442A SU 1600633 A3 SU1600633 A3 SU 1600633A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
bacteria
toxin
pertussis
buffer
gel
Prior art date
Application number
SU874202442A
Other languages
English (en)
Inventor
Бернадетт Жаклин Кентэн-Мийе Мари-Жозе
Арминжон Франсуа
Original Assignee
Энститю Мерье (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Энститю Мерье (Фирма) filed Critical Энститю Мерье (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1600633A3 publication Critical patent/SU1600633A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/235Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bordetella (G)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/82Proteins from microorganisms
    • Y10S530/825Bacteria

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Polymers With Sulfur, Phosphorus Or Metals In The Main Chain (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к технической биохимии, в частности к препаративному выделению белковых антигенов бактерий рода Bordetella pertus- sis, и может быть использовано в г-ккробиологии, медицине и иммунологии . Целью изобретени   вл етс  уве- лз-1чение емкости аффинных сорбентов с одновременным повьппением степени чистоты Еыдап емых антигенов. Сначала провод т м гкий гидролиз фату- нка или гаптоглобина с получением дес аттлрованньгх производных, которые фиксируют на водонерастворимом носителе (органическом или неорганическом ) . Культуральную жидкость бактерий Eordetella pertussis сорбируют на a.-jKbHHHOM сорбенте при рН 6-8, а десорбцию осуществл ют либо буфер- раствором, содержащим хлористый натрий, либо хаотропными агентами, либо карбонатным буфером с рН ,8,3- 1 5 6 .. i ч . п. ф-лы. (П

Description

Изобретение относитс  к технической биохимии и биотехнологии, в частности к препаративному выделению белкового токсина бактерий Borrletella .pertussis, и может быть использовано в микробиологии, медицине и иммунологии .
Целью изобретени   вл етс  повышение эффективности процесса и степени чистоты выдел емого токсина.
Способ осуществл ют следующим образом .
Сначала провод т м гкий гидролиз фетуина или гаптоглобина с получением десиалированных производных. Эти производные затем фиксируют на водонерастворимом носителе (органическом или неорганическом) с получением аффинных сорбентов. Эти сорбенты используют дл  очистки белковых антигенов бактерий Bordetella pertussis .
При осуществлении способа отдел ют токсин pertussis, который фиксируетс  на аффинном носителе, тогда как F-HA остаетс  в растворе, затем элю- ируют токсин pertussis с помотью соответству ошего элюирующего средства .
Также используют данный способ дл  очистк.ч обогащенной F-HA-фрак- ции, чтобы удалить токсин pertussis, который она может содержать, причем этот последний удерживаетс  афсЬин
05
оо со
см
to
мым носителем. Отделив полученный иоситепь после введени  в контакт с ..материалом хроматографии раствора, получают очищенный F-HA-pacTBOp.
Исходным очищаемым раствором может быть надосадочна  зсидкость культуры бактерий рода Bordetella или частично очищенный раствор токсина pertussis или F-HA.
Дл  очистки токсина pertussis на аффинном носителе адсорбционной хро- Иатографией используют исходный раствор, рН которого доведено до значени  6-8, предпочтительно 7. Количество используемого носител  адсорбционной хроматографии зависит от начального объема надосадочной жидкости и/или от концентрации токсина pertussis в культуральпой среде 20 или во фракции, используемой в качестве исходного продукта. Контакт осуществл етс  в ванне или в колонке
1600633
ра, содержащего 1 мг/мл асиалофету- ина, 0,1 М NaHOO и 0,5 М NaCl.
Смесь оставл ют реагировать при в течение ночи при м гком перемешивании . К смеси добавл ют 125 мл 5М раствора этаноламина, рН 8,0. После , инкубации при комнатной температуре в течение 4 ч гель последовательно промывают 500 мл 0,1 М буфера на основе ацетата натри , рН 4,0, содержащего Ш NaCL, затем 500 мл 50 t трис-НС1-буфера, рН 7,5, содержащего Ш NaCl. Этот цикл промывки повтор ют три раза.
Гель затем промывают 3 раза по 500 мл 50 мМ трис-НС1-буфера, рН7,5, в присутствии консерванта, такого как мертиол т, с концентрацией 1/10000 (об.ч.).
Гель Сефарозы - АЕ, соединенный с асиалофетуином, хран т при в буфере, таком как 50 мМ трис-НС1-бу- фер, рН 7,5, в присутствии консерван15
при 2-30°С.
Дп  элюировани  токсина pertussis, 25 та, например мертиол та. фиксированного на аффинном носителе Используемый в качестве лиганда в можно использовать, например, буфер- ннй раствор, содержащий в достаточной концентрации соли и/или классические
30
хаотропные агенты, например хлорид кагни  или карбонатный буфер, имеющий мол рность более 25 мМ и рН пор дка 8,3-11,6.
адсорбционной хроматографии асиало- фетуин получают следуюгшм образом. Водный раствор фетуина (фетуин типа III, Сигма) гидролизуют с помощью 0,05 н. «2504 в течение 1 ч - при . После гидролиза раствор диешизуют несколькими объемами дистиллированной воды в течение 24 ч при + , чтобы удалить свободные сиаловые кислоты. Раствор асиалофе- туина может быть концентрирован путем ультрафильтрации с помошью мембран , порог разделени  которых равен 10000.
Способ иллюстируетс  следующими примерами.
Пример 1. Очистка токсина pertussis путем адсорбционной хроматографии на сефарозе 4В-асиапофетуине . ,40
а). Адсорбци  токсина pertussis
на геле.
Обогащенную токсином pertussis фракцию, полученную после центрифугировани  и концентрировани  бакте- 45 риальной суспензии Bordetella pertussis (I фаза), культивированной в ферментере на 30 л, пропускают через хроматографическую колонку диаметром 4 см, содержащую 12П мл носите- о
л  Сефароза-4В, соединенного с асиалофетуином , с расходом 6 мп/см /ч. Сефарозу-4В соедин ют с асиалофетуином следующим образом. 30 г активированной ССТ.г сефарозы 4В (Phar- macia) подвергают набуханию в 6 л мМ НС1 в течение около 15 мин. Гель затем промывают .3 раза по 6 л 1 мК НС1. К гелю Добавл ют 400 мл раствота , например мертиол та. Используемый в качестве лиганда в
адсорбционной хроматографии асиало- фетуин получают следуюгшм образом. Водный раствор фетуина (фетуин типа III, Сигма) гидролизуют с помощью 0,05 н. «2504 в течение 1 ч - при . После гидролиза раствор диешизуют несколькими объемами дистиллированной воды в течение 24 ч при + , чтобы удалить свободные сиаловые кислоты. Раствор асиалофе- туина может быть концентрирован путем ультрафильтрации с помошью мембран , порог разделени  которых равен 10000.
Удаление сиаловых кислот контролируетс  специфическим колориметрическим определением сиаловых кислот белковой фракции до и после гидролиза .
б). Элюирование токсина.
Гель промывают двум  объемами колонки 50 мМ трис-НС1-буфера, ,5 т.е. вплоть до полного исчезновени  УФ-поглошени  при 278 им, затем одним объемом колонки 50 мМ трис-НС1- буфера, рН 7,5, содержащего 1 М NaCl Токсин pertussis элюируют 400 мл 100 мМ карбонатного буфера, рН 9,6.
Измер ют оптическую плотность и гемагглютинатную активность фракций coбиpae ыx на выходе из колонны.
Содержапше действующее начало фракции, т.е. обладающие.сильной ге
магглютинатной, не ингибируемой холе- стеролом активностью, объедин ют,
Токсин pertussis затем осаждают на сульфате аммони  с конечной концентрацией , соответствующей 70%-ному насыщению,
Таким образом, очищенный токсин pertussis вызывает сильный лимфоцитов и  ел:ает восприимчивыми (сенсибилизирует ) мышей CFW к гиста- мину в дозе 0,04 мкг/мышь. Способность токсина pertussis к образованию кластеров на клетках СНО характеризуетс  удельной активностью пор дка 65000-260000, CPU/мкг.
Результаты физико-химических анализов и биологических активностей (колориметрически определ ют возможное содержание загр знений, ДНК, ДНК сахараJ определ ют содержание эндотоксина , проведение электрофореза в среде SDS или в кислой среде и т.д.) подтверждают гомогенность готового препарата, включающего очищенное дей- ствующее начало.
Анализы на содержание токсина pertussis в начальной культуральной над- осадочной жидкости и в конечном осадке показывают выход после очистки выше 90%.
Пример 2. Очистка токсина pertussis путем адсорбированной хро- матогр афии на сферосил-ОЕАЕ-декстран- асиалофетуине.
а). Адсорбци  токсина на геле адсорбционной хроматографии.
рН фракции, полученной после центрифугировани  и концентрировани  су с- пензии Bordetella pertussis (фаза 1)
довод т до 7 путем добавлени  5 н. раствора сол ной кислоты. Фракцию пропускают через колонку диаметром 2 см, содержащую 60 мл носител  Сфе- росил-ВЕАЕ-декстран, соединенного с асиалофетуином, с расходом 60 мп/см /ч.
Сферосил-ВЕАЕ-декстран (носитель, образованный шариками диоксида кремни  ХОС 005, покрытыми минимумом сшитого DEAE-декстрана) соедин ют с асиалофетуином следуюпим образом.
Сферосил-ВЕАЕ-декстран подвергают осторожному окислению, чтобы получить альдегидные функции, способные реагировать с а1иногруппами лиганда. Асиалофетуин в виде раствора с концентрацией 4 мг/мл в ЮмМ фосфатном буфере, рН 8,0,ввод т в
контакт с гелем в течение 15 ч при комнатной температуре. Гбль затем промывают следующими растворами: 10 Ш фосфатный буфер, рН 8,0, 20 г/л гликоколь, 0,17 мМ NaCl , 0,05 М цитрат натри , рН 2,8, i н. HCi;
О
б). Элюирование токсина pertus10
5
0
5
0
5
sis.
Гель промывают 120 мл 50 мМ трис- -НС1-буфера, рН 7,5, затем 70 мл 50 мМ трис НС1-буфера, содержащего 1М NaCl. Токсин pertussis злюи- 15 руют 50 мМ трис-НС1-буфером, рН 7,5, содержащим 4М MgCl. Измер ют оптическую плотность при 288 нм и гемаг- глютинантную активность собранных на выходе из колонки фракций. Содержаще 20 действующее начало фракции, т.е. обладающие повышенной гемагглютинант- ной активностью, не ингибируемой хо- лестеролом, объедин ют.
Полученную смесь обессоливают путем фильтрации через гель в колонне с Сефадексом С-25 { 7,5 i 45 см, Pharmacia ) , уравновешенным с буфером 50 мМ трис-НС1, рН 7,5. Элюирование осуществл ют с .помощью того же самого буфера.
Измер ют оптическую плотность при 278 нм и гемагглютинантную активность фракций, собранных на выходе из колонки . Содержащие токсин pertussis фракции, т.е. обладающие повышенной гемагглютинантной активностью, объ- .един ют.
Действуютее начало осаждают на сульфате аммони  путем медленного добавлени  при перемепивании Д7 r{NFg) ЗОд на 100 мл раствора. Анализ биологических и физико-химических свойств показывает, что полученный продукт представл ет собой высокоочитенное действующее начало.
Пример 3. Удаление следов токсина pertussis из обогащенной F-HA-фракции.
Способы очистки F-HA включают стадию десорбции F-HA из хроматографи- ческого носител , например оксиапати- та, с помощью 100 фосфатного буфера , рН 7,0, содержащего 0,5 М NaCl.
Измер ют оптическую плотность при 278 нм и гемагглютинантную активность фракций, собираемых на выходе из колонки с оксиапатитом. Фракции, содержащие F-HAj т.е. обладающие по- вьш1енной гемагглютинантной активно0
5
стью и ингибируекые {слестероломз объедин ют,
С целью удалени  возможно кмек1- щихс  следов токсина pertussis смесь фракций, содержащих F-fIA, пропускают через колонку с сефароза 4В-асиало- фетуином. F-HA элюируют непосредственно , тогда как возможные следа: токсина удерживаютс  к колонке
F-HA затем осаждают сульфатом аммони  путем добавлегл-ш медленно и при перемешивании 47 г (Шд)304 на 100 мл раствора.
Таким образом, очиа енный F-HA не вызывает ни лимфоцитоза, нн восприимивости к гистамину в дозе 100 мкг/Мз1шь. ри концентради 100. . F-HA е вызывает мо;сифик.ации в. клеточом слое, образованном клетками  ичника хом ка, т.е. отсутствует образование клеточных скоплений (кластеров ) , характерных дл  наличи  токсина {pertussis. Его удельна  гемаг- глютинантна  активность, измеренна  на эритроцитах гусей, пор дка 250000- 500000 ед, НА/мг щ)отеи:на. Эта активность полностью ингибируетс  холе- стеролом.
Пример 4. Сравнительное изучение способности токсина pertussis на носител х адсорбционной хроматографии на основе фетуина и асиалофетуина.
Гель дл  адсорбционной хроматогра- 4ми получают путем иммобилизации аси- алофетуина на активированной CNBt (Pharmacia) сефарозе-4В согласно способу , описанному в примере 1 ,
5
0
Параллельно аналогичным образом получают гель дл  адсорбционной хроматографии с фетуином, .
Фиксацию фетуина и фиксацию асиалофетуина осуществл ют в идентичных экспериментальных услови х дл  получени  на гел х плотностей сравниваемых лигандов.
Каждый эксперимент реализуют параллельно на двух типах носителей, ввод т их в контакт с одним и тем же объемом культуральной надосадочной жидкости, содержащей токсин pertussis. Элюирйванное количество токсина pertussis определ ют по анализу протеина и иммуноферментативным методом (ELISA).
Провод т сравнительное изучение пригодности шэлуче11; ых гелей. Относительна  емкость гел , содержащего фетуин, составл ет 79% ст емкоСти гел , содержащего асиалофетуин.

Claims (2)

1.Способ очистки белкового токсина бактерий Bordetella pertussis с помощью аффинной хроматографии, отлич ающкйс  тем, что, с цепью повышени  эффективности процесса и степени чистоты .выдел емого токсина, используют аффинный сорбент, содержащий стационарный лиганд - десиапированный гликопротеин.
2.Способ поп. ,oтличaю- щ и и с   тем, что используют аффинный сорбент, содержащий в качестве десиалированного гликопротеина асиалофетуин или аспалогаптоглобин. .
SU874202442A 1986-04-16 1987-04-15 Способ очистки белкового токсина бактерий ВоRDетеLLа реRтUSSIS SU1600633A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR8605457A FR2597605B1 (fr) 1986-04-16 1986-04-16 Nouveau materiau pour chromatographie d'affinite et son application a la separation et a la purification des antigenes proteiques des bacteries du genre bordetella

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1600633A3 true SU1600633A3 (ru) 1990-10-15

Family

ID=9334301

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU874202442A SU1600633A3 (ru) 1986-04-16 1987-04-15 Способ очистки белкового токсина бактерий ВоRDетеLLа реRтUSSIS

Country Status (12)

Country Link
US (2) US4985144A (ru)
EP (1) EP0242302B1 (ru)
JP (1) JPH0826080B2 (ru)
AT (1) ATE57936T1 (ru)
CA (1) CA1295985C (ru)
DE (2) DE3765822D1 (ru)
ES (1) ES2000434B3 (ru)
FR (1) FR2597605B1 (ru)
GR (2) GR880300042T1 (ru)
LU (1) LU90380I2 (ru)
SU (1) SU1600633A3 (ru)
ZA (1) ZA872711B (ru)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0218859A3 (en) * 1985-10-11 1989-09-06 International Business Machines Corporation Signal processor communication interface
AU613387B2 (en) * 1987-08-13 1991-08-01 Carl-Zeiss-Stiftung Trading As Schott Glaswerke An inorganic carrier element comprising an amine-containing surface layer for the immobilization of microorganisms or cells, a process for the preparation thereof
US5445817A (en) * 1992-08-21 1995-08-29 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Pertussis toxin used as a carrier protein with non-charged saccharides in conjugate vaccines
JPWO2004036216A1 (ja) * 2002-10-18 2006-02-16 独立行政法人科学技術振興機構 糖鎖−糖鎖結合性タンパク質の相互作用の測定方法およびその利用
US7402243B2 (en) 2004-09-10 2008-07-22 Dionex Corporation Organosilanes and substrate bonded with same
US7468130B2 (en) * 2005-02-15 2008-12-23 Dionex Corporation Organosilanes and substrates covalently bonded with same and methods for synthesis and use same
US7557232B2 (en) * 2007-05-25 2009-07-07 Dionex Corporation Compositions useful as chromatography stationary phases
WO2012135415A1 (en) * 2011-03-29 2012-10-04 Glaxosmithkline Llc Buffer system for protein purification
CN111918809B (zh) * 2018-03-27 2022-09-20 日本精工株式会社 转向装置
KR102362777B1 (ko) * 2018-03-27 2022-02-15 주식회사 녹십자 친화성 크로마토그래피 공정을 포함하는 백일해균 유래 단백질 수득 방법

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU547104A1 (ru) * 1973-12-21 1985-03-30 Московский ордена Ленина и ордена Трудового Красного Знамени химико-технологический институт им.Д.И.Менделеева Способ получени сорбента дл гемоадсорбции
US4225487A (en) * 1974-05-31 1980-09-30 Pedro Cuatrecasas Affinity chromatography of Vibrio cholerae enterotoxin-ganglioside polysaccharide and the biological effects of ganglioside-containing soluble polymers
US4125492A (en) * 1974-05-31 1978-11-14 Pedro Cuatrecasas Affinity chromatography of vibrio cholerae enterotoxin-ganglioside polysaccharide and the biological effects of ganglioside-containing soluble polymers
US4010251A (en) * 1974-12-16 1977-03-01 Green Allan M Scanning agent composition and use in imaging liver and for biliary function
FR2403098A1 (fr) * 1977-09-19 1979-04-13 Merieux Inst Nouveau materiau capable de fixer de facon reversible des macromolecules biologiques, sa preparation et son application
US4247452A (en) * 1978-03-01 1981-01-27 The Secretary Of State For Defence In Her Britannic Majesty's Government Of The United Kingdom Of Great Britain And Northern Ireland Purification of pertussis haemagglutinins
US4416872A (en) * 1982-03-17 1983-11-22 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Treatment of malaria with liposomes containing 8-aminoquinoline derivatives and glycoconjugates
US4466951A (en) * 1982-11-12 1984-08-21 University Of California Intracellular trapping of therapeutics or tracer agents
SE445649B (sv) * 1983-06-08 1986-07-07 Jorgen Hermansson Anvendning av en fast berare med immobiliserad orosomucoid for separation, forfarande for framstellning av separationsmaterial, separationsanordning samt separationsmaterial
JPS6098988A (ja) * 1983-11-01 1985-06-01 Chemo Sero Therapeut Res Inst Lpf−haの精製法
JPS6176422A (ja) * 1984-09-22 1986-04-18 Chemo Sero Therapeut Res Inst 百日ぜきコンポ−ネントワクチンおよび百日ぜき・ジフテリア・破傷風混合ワクチンの製造方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Robinson P.I. et al. Eiochim, Bicphys, Acta, 197, 242, 659-661. Патент Великобритагаи № 201553, кл. С Q7 G 7/00, 1979. *

Also Published As

Publication number Publication date
GR3001376T3 (en) 1992-09-11
US4985144A (en) 1991-01-15
GR880300042T1 (en) 1988-10-18
US5045203A (en) 1991-09-03
JPS62253396A (ja) 1987-11-05
ES2000434B3 (es) 1991-04-16
ATE57936T1 (de) 1990-11-15
DE3765822D1 (de) 1990-12-06
EP0242302B1 (fr) 1990-10-31
JPH0826080B2 (ja) 1996-03-13
AU603794B2 (en) 1990-11-29
FR2597605B1 (fr) 1989-06-23
LU90380I2 (fr) 1999-05-31
DE242302T1 (de) 1988-06-09
ES2000434A4 (es) 1988-03-01
EP0242302A1 (fr) 1987-10-21
ZA872711B (en) 1987-10-05
CA1295985C (fr) 1992-02-18
AU7158087A (en) 1987-10-22
FR2597605A1 (fr) 1987-10-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Er-el et al. Hydrocarbon-coated sepharoses. Use in the purification of glycogen phosphorylase
US4673734A (en) Porous mineral support coated with an aminated polysaccharide polymer
US4138287A (en) Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine
CN1015512B (zh) 切向流亲合超滤法
SU1600633A3 (ru) Способ очистки белкового токсина бактерий ВоRDетеLLа реRтUSSIS
US4440675A (en) Human immune interferon
CA1237998A (en) Method for purification of filamentous hemagglutinin
SU1523046A3 (ru) Способ очистки человеческого @ -интерферона
US4168261A (en) Method for the purification of interferon using porous glass beads
US4382027A (en) Purification of human immune interferon
US4485038A (en) Method for the production and purification of human leukocyte interferon
US4743551A (en) Purification of microbial rennet from Mucor miehei
US3925152A (en) Virus separation
SU644796A1 (ru) Способ очистки протеолитических ферментов
JP3508149B2 (ja) ヒト血清アルブミンおよびその製造方法
RU2145610C1 (ru) Способ очистки рекомбинантного эритропоэтина человека
JP4154743B2 (ja) インターロイキン6レセプターの精製方法
CA1239104A (en) Method for the purification of lpf-ha
SU1175965A1 (ru) Способ выделени урокиназы из биологических источников
JPH05170799A (ja) ヒトインターロイキン8の精製方法
JP2001139600A (ja) Il−6r・il−6融合蛋白質の精製方法
JPS6251592B2 (ru)
AU601788B2 (en) Purified appetite-regulating substances of biological origin their antibodies, immunocomplexes of the appetite-regulating substances formed with the antibodies and processes for preparing same
CA1065305A (en) PROCESS FOR THE ENRICHMENT OF THE PREGNANCY-SPECIFIC .beta.1-GLYCOPROTEIN
Rudolph et al. Purification of the Chlorosis Inducing Toxin from Pseudomonas phaseolicola (Burkh.) Dowson.