SK280619B6 - Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeuti - Google Patents
Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeuti Download PDFInfo
- Publication number
- SK280619B6 SK280619B6 SK793-94A SK79394A SK280619B6 SK 280619 B6 SK280619 B6 SK 280619B6 SK 79394 A SK79394 A SK 79394A SK 280619 B6 SK280619 B6 SK 280619B6
- Authority
- SK
- Slovakia
- Prior art keywords
- urease
- helicobacter
- immune response
- composition according
- helicobacter pylori
- Prior art date
Links
- 230000028993 immune response Effects 0.000 title claims abstract description 42
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 title claims abstract description 33
- 206010019375 Helicobacter infections Diseases 0.000 title claims abstract description 32
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 15
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims description 23
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 19
- 108010046334 Urease Proteins 0.000 claims abstract description 259
- 241000589989 Helicobacter Species 0.000 claims abstract description 32
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims abstract description 29
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims abstract description 29
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims abstract description 29
- 241000590002 Helicobacter pylori Species 0.000 claims description 110
- 229940037467 helicobacter pylori Drugs 0.000 claims description 109
- 230000003053 immunization Effects 0.000 claims description 45
- 238000002649 immunization Methods 0.000 claims description 44
- 102000009016 Cholera Toxin Human genes 0.000 claims description 37
- 108010049048 Cholera Toxin Proteins 0.000 claims description 37
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 34
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 32
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical group [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 claims description 29
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 claims description 28
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims description 16
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 14
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 claims description 13
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 claims description 12
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 12
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical class [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 claims description 8
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 7
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 claims description 7
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 6
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 5
- 238000000746 purification Methods 0.000 claims description 5
- 108020004511 Recombinant DNA Proteins 0.000 claims description 4
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 claims description 4
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 claims description 3
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 claims description 3
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 claims description 3
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 claims description 3
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 claims description 3
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 claims description 2
- 239000003937 drug carrier Substances 0.000 claims description 2
- 238000010188 recombinant method Methods 0.000 claims description 2
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 claims description 2
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 claims 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 78
- 241000590017 Helicobacter felis Species 0.000 description 72
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 32
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 27
- 230000002496 gastric effect Effects 0.000 description 25
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 19
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 19
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 18
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 17
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 16
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 16
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 16
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 15
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 14
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 10
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 10
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 10
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 10
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 9
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 9
- NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 2,3-bis(butanoylsulfanyl)propyl butanoate Chemical compound CCCC(=O)OCC(SC(=O)CCC)CSC(=O)CCC NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 8
- OUFRIWNNMFWZTM-UHFFFAOYSA-M sodium arsanilate Chemical compound [Na+].NC1=CC=C([As](O)([O-])=O)C=C1 OUFRIWNNMFWZTM-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 8
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 8
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 8
- 208000007882 Gastritis Diseases 0.000 description 7
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 7
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 7
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 7
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 7
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 7
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 7
- 210000002011 intestinal secretion Anatomy 0.000 description 7
- 238000009630 liquid culture Methods 0.000 description 7
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 7
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 7
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 7
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 6
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 6
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 6
- 230000005875 antibody response Effects 0.000 description 6
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 6
- 235000013877 carbamide Nutrition 0.000 description 6
- 230000009260 cross reactivity Effects 0.000 description 6
- 238000011161 development Methods 0.000 description 6
- 241000220451 Canavalia Species 0.000 description 5
- 238000003794 Gram staining Methods 0.000 description 5
- 108010092464 Urate Oxidase Proteins 0.000 description 5
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 5
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 5
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 5
- 229920000136 polysorbate Polymers 0.000 description 5
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 5
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 5
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000282324 Felis Species 0.000 description 4
- PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N Nickel Chemical compound [Ni] PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 4
- 239000007621 bhi medium Substances 0.000 description 4
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 4
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 4
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 4
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 4
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 4
- YBYRMVIVWMBXKQ-UHFFFAOYSA-N phenylmethanesulfonyl fluoride Chemical compound FS(=O)(=O)CC1=CC=CC=C1 YBYRMVIVWMBXKQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 4
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 4
- 206010061459 Gastrointestinal ulcer Diseases 0.000 description 3
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 3
- 230000009471 action Effects 0.000 description 3
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 3
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 3
- 206010017758 gastric cancer Diseases 0.000 description 3
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 3
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 description 3
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 3
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 3
- 210000003126 m-cell Anatomy 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 239000003094 microcapsule Substances 0.000 description 3
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 3
- 230000004044 response Effects 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- 238000002798 spectrophotometry method Methods 0.000 description 3
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 3
- 239000013598 vector Substances 0.000 description 3
- 108010042708 Acetylmuramyl-Alanyl-Isoglutamine Proteins 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 2
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 2
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 2
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 2
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 2
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 2
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 2
- 241000588770 Proteus mirabilis Species 0.000 description 2
- 208000005718 Stomach Neoplasms Diseases 0.000 description 2
- 208000025865 Ulcer Diseases 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 2
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 239000004599 antimicrobial Substances 0.000 description 2
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 2
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 2
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 2
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 2
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 2
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 2
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 2
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 2
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 2
- 235000014304 histidine Nutrition 0.000 description 2
- 150000002411 histidines Chemical class 0.000 description 2
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 230000002147 killing effect Effects 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 2
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 2
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 2
- BSOQXXWZTUDTEL-ZUYCGGNHSA-N muramyl dipeptide Chemical compound OC(=O)CC[C@H](C(N)=O)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@@H](C)O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H](O)[C@@H]1NC(C)=O BSOQXXWZTUDTEL-ZUYCGGNHSA-N 0.000 description 2
- 229910052759 nickel Inorganic materials 0.000 description 2
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 2
- 210000004180 plasmocyte Anatomy 0.000 description 2
- -1 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 2
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 230000002797 proteolythic effect Effects 0.000 description 2
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 2
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 2
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 2
- 210000000813 small intestine Anatomy 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 238000000527 sonication Methods 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 201000011549 stomach cancer Diseases 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 239000013589 supplement Substances 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 2
- 230000032258 transport Effects 0.000 description 2
- 231100000397 ulcer Toxicity 0.000 description 2
- 101150061086 ureB gene Proteins 0.000 description 2
- 150000003672 ureas Chemical class 0.000 description 2
- 229940125575 vaccine candidate Drugs 0.000 description 2
- 206010067484 Adverse reaction Diseases 0.000 description 1
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M Bicarbonate Chemical compound OC([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000009010 Bradford assay Methods 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589876 Campylobacter Species 0.000 description 1
- 235000010520 Canavalia ensiformis Nutrition 0.000 description 1
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 1
- 238000011537 Coomassie blue staining Methods 0.000 description 1
- 238000009007 Diagnostic Kit Methods 0.000 description 1
- 208000028861 Helicobacter pylori infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 206010022678 Intestinal infections Diseases 0.000 description 1
- 241000588747 Klebsiella pneumoniae Species 0.000 description 1
- 206010025323 Lymphomas Diseases 0.000 description 1
- 241000588772 Morganella morganii Species 0.000 description 1
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 1
- 102000005877 Peptide Initiation Factors Human genes 0.000 description 1
- 108010044843 Peptide Initiation Factors Proteins 0.000 description 1
- 208000037581 Persistent Infection Diseases 0.000 description 1
- BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N Phenolsulfonephthalein Chemical compound C1=CC(O)=CC=C1C1(C=2C=CC(O)=CC=2)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 BELBBZDIHDAJOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N Phosphorus Chemical compound [P] OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 101710194807 Protective antigen Proteins 0.000 description 1
- 241000588767 Proteus vulgaris Species 0.000 description 1
- 241000588777 Providencia rettgeri Species 0.000 description 1
- 239000012614 Q-Sepharose Substances 0.000 description 1
- 102000007056 Recombinant Fusion Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010008281 Recombinant Fusion Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 208000007107 Stomach Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 230000024932 T cell mediated immunity Effects 0.000 description 1
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N Zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZHAFUINZIZIXFC-UHFFFAOYSA-N [9-(dimethylamino)-10-methylbenzo[a]phenoxazin-5-ylidene]azanium;chloride Chemical compound [Cl-].O1C2=CC(=[NH2+])C3=CC=CC=C3C2=NC2=C1C=C(N(C)C)C(C)=C2 ZHAFUINZIZIXFC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N acridine orange free base Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC2=NC3=CC(N(C)C)=CC=C3C=C21 DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000006838 adverse reaction Effects 0.000 description 1
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 description 1
- 238000001261 affinity purification Methods 0.000 description 1
- 230000004520 agglutination Effects 0.000 description 1
- 208000026935 allergic disease Diseases 0.000 description 1
- 230000007815 allergy Effects 0.000 description 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 101150073130 ampR gene Proteins 0.000 description 1
- 238000005571 anion exchange chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 238000000149 argon plasma sintering Methods 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N benzoquinolinylidene Natural products C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3N=C21 DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000001851 biosynthetic effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 150000001621 bismuth Chemical class 0.000 description 1
- 239000006161 blood agar Substances 0.000 description 1
- 208000003836 bluetongue Diseases 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000003197 catalytic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001364 causal effect Effects 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 230000000973 chemotherapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 239000007979 citrate buffer Substances 0.000 description 1
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 1
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 1
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 1
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 1
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 238000007821 culture assay Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 235000015872 dietary supplement Nutrition 0.000 description 1
- 229940079920 digestives acid preparations Drugs 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 208000000718 duodenal ulcer Diseases 0.000 description 1
- 238000001493 electron microscopy Methods 0.000 description 1
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 description 1
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 235000013861 fat-free Nutrition 0.000 description 1
- 238000003818 flash chromatography Methods 0.000 description 1
- 201000011587 gastric lymphoma Diseases 0.000 description 1
- 238000007429 general method Methods 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000028996 humoral immune response Effects 0.000 description 1
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 description 1
- 230000001976 improved effect Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 239000012678 infectious agent Substances 0.000 description 1
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 1
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 1
- 210000004347 intestinal mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 description 1
- 239000002502 liposome Substances 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000001404 mediated effect Effects 0.000 description 1
- 229960000282 metronidazole Drugs 0.000 description 1
- VAOCPAMSLUNLGC-UHFFFAOYSA-N metronidazole Chemical compound CC1=NC=C([N+]([O-])=O)N1CCO VAOCPAMSLUNLGC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011859 microparticle Substances 0.000 description 1
- 239000004005 microsphere Substances 0.000 description 1
- 229940076266 morganella morganii Drugs 0.000 description 1
- 230000016379 mucosal immune response Effects 0.000 description 1
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 1
- 210000003097 mucus Anatomy 0.000 description 1
- 230000009871 nonspecific binding Effects 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 1
- 229940126578 oral vaccine Drugs 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- 239000007793 ph indicator Substances 0.000 description 1
- 229960003531 phenolsulfonphthalein Drugs 0.000 description 1
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011574 phosphorus Substances 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 230000009465 prokaryotic expression Effects 0.000 description 1
- 230000009993 protective function Effects 0.000 description 1
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 description 1
- 229940007042 proteus vulgaris Drugs 0.000 description 1
- 238000012134 rapid urease test Methods 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 1
- 230000009863 secondary prevention Effects 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000007447 staining method Methods 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 239000000829 suppository Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000009885 systemic effect Effects 0.000 description 1
- 229960002180 tetracycline Drugs 0.000 description 1
- 229930101283 tetracycline Natural products 0.000 description 1
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 description 1
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 description 1
- 229940124597 therapeutic agent Drugs 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- 230000002103 transcriptional effect Effects 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011701 zinc Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/78—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
- C12N9/80—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5) acting on amide bonds in linear amides (3.5.1)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
- A61P1/04—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/54—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the route of administration
- A61K2039/541—Mucosal route
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/555—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
- A61K2039/55505—Inorganic adjuvants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/60—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characteristics by the carrier linked to the antigen
- A61K2039/6031—Proteins
- A61K2039/6037—Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeutickej imunitnej odpovede na infekciu vyvolanú baktériami rodu Helicobacter v cicavcovi-hostiteľovi obsahuje imunologicky účinné množstvo ureázy pôvodom z baktérie rodu Helicobacter alebo jej podjednotiek ako antigénu.
Oblasť techniky
Vynález sa týka vhodnej vakcíny, ktorá je použiteľná na prevenciu a liečbu infekcie, spôsobenej baktériami rodu Helicobacter u cicavcov vrátane človeka.
Doterajší stav techniky
Baktérie druhu Helicobater, ktoré pri infekcii ľudského žalúdočného epitelu spôsobujú gastritídu, sú hlavným faktorom vo vývoji vredov tráviaceho traktu a žalúdočných lymfómov, a môžu byť tiež rizikovým faktorom pri vývoji rakoviny žalúdka [Blaser, Gastroenterology 1987, 93, 371-383; Graham, Gastroenterology 1989, 196, 615-625; Parsonnet, J.Natl. Cancer Inst. 1991, 93, 640-643]. Najčastejším infekčným činidlom je Helicobacter pylori, nasledovaný omnoho menej sa vyskytujúcou baktériou Helicobacter heilmanii. Helicobacter pylori je úzky, gram-negatívny mikroorganizmus tvaru S, ktorý sa rutinne získa z biopsií žalúdkov dospelých a detí s histologickými príznakmi gastritídy alebo vredov tráviaceho traktu. Dôkazy kauzálneho vzťahu medzi výskytom Helicobacter pylori a gastroduodenálnymi ochoreniami pochádzajú zo štúdií na dobrovoľníkoch, pacientoch s vredmi a rakovinou žalúdka, gnotobiotických ošípaných a na hlodavcoch bez choroboplodných zárodkov. S ohľadom na etiológiu, Kochove postuláty sa splnili vývojom histologický potvrdenej gastritídy u predtým neinfikovaných indivíduí ako dôsledok konzumácie živých mikroorganizmov [Marshall, Med. J. Aust. 1985, 142, 436-439; Morris, Am. J. Gastroenterology, 1987, 82, 192-199; Engstrand, Infect. Immun. 1990, 53, 1763-1768; Fox, Infect. Immun. 1988, 56, 2994-2996; Fox, Gastroenterology 1990, 99, 352-361; Lee, Gastroenterology 1990, 99, 1315-1323; Fox, Infect. Immun. 1991, 59, 785-791; Eaton, Infect. Immun. 1989, 57, 1119-1125], Po liečbe, ktorá zlikvidovala Helicobacter pylori, došlo k zániku gastritídy a u pacientov so žalúdočnými vredmi k zníženiu počtu recidív [Peterson, N. Engl. J. Med. 1991, 324,1043-1048],
Často je veľmi ťažké zlikvidovať rozvinutú infekciu Helicobacter pylori pomocou antimikrobiálnych látok in vivo, cez ich citlivosť na mnohé antimikrobiálne látky in vitro [Czinn, Infect. Immun. 1991, 2359-2363], Mikroorganizmus sa nachádza v mukóznej vrstve pokrývajúcej žalúdočný epitel a v žalúdočných lalokoch. Ukazuje sa, že v týchto miestach nie je možné dosiahnuť adekvátnu antimikrobiálnu koncentráciu liečiva, a to i keď sú antibiotiká podávané orálne a vo vysokých dávkach. V súčasnosti väčšina autorít odporúča „trojnásobnú terapiu“, najmä bizmutitovú soľ v kombinácii s liečivami, ako sú tetracyklín a metronidazol počas dvoch až štyroch týždňov. Ale efektivita tohto alebo iného chemoterapeutického spôsobu vedenia liečby, zostáva nižšia ako je optimálne. Navyše, pri tomto spôsobe liečby môže dôjsť k vážnym nepriaznivým reakciám na podané liečivá.
V súčasnosti sa ešte málo vie o úlohe mukózneho imunitného systému v žalúdku. Distribúcia buniek produkujúcich imunoglobulín (Ig) v normálnej žalúdočnej dutine ukazuje, že plazmatické bunky produkujúce IgA tvoria viac ako 80 % z celkovej populácie plazmatických buniek. Navyše, množstvo plazmatických IgA buniek prítomných v žalúdočnej dutine sú porovnateľné s inými sliznicami [Brandtzaeg, Scand. J. Immunol. 1985, 22, 111-146; Brandtzaeg, Ann. Allergy 1987, 59, 21- 39]. Množstvo štúdií na ľuďoch [Wyatt, J. Clin. Path. 1986, 39, 863-870] a na zvieracích modeloch [Fox, Gastroenterology 1990, 99, 353-361; Fox, Infect. Immun. 1991, 59, 785-791] ukazuje špe cifickú IgG a IgA odpoveď v sére a žalúdočných sekrétoch, ako odpoveď na infekciu baktériami rodu Helicobacter. Z pozorovania vyplýva, že infekcia Helicobacter pylori pretrváva ako chronická infekcia počas niekoľkých rokov a napriek indukcii lokálnej a systémovej imunitnej odpovede nepodporuje vývoj imunizačných stratégií.
Lee a kol. opísali schopnosť baktérií druhu Helicohacter felis (baktéria blízko príbuzná baktériám Helicobacter pylori) infikovať hlodavce, ktoré predtým neboli infikované, a reprodukovateľné dokumentovali histologickú gastritídu [Lee, Gastroenterology 1990, 99, 1315-1323; Fox, Infect. Immun. 1991, 59, 785-791]. Od tohto času je táto dvojica baktéria-hostiteľ akceptovaná ako dobrý model na štúdium gastritídy spôsobenej baktériami Helicobacter a ich iniciačných faktorov [Lee, Infect. Immun. 1993, 61, 1601-1610]. Czinn a kol. ukázali, že opakovaná orálna imunizácia surovou šťavou z lyzovaných baktérií Helicobacter pylori, v ktorej bol ako adjuvans použitý choleratoxín, indikuje silnú gastrointestinálnú IgA odpoveď so špecifitou anli-Hehcobacter pylori u myší a lasíc [Czinn, Infect. Immun. 1991, 2359-2363], Ďalej, Chen a kol. a Czinn a kol. v poslednom čase oznámili, že orálna imunizácia surovou šťavou z lyzovaných baktérií Helicobacter felis vyvoláva ochranu proti infekcii baktériami Helicobacter felis pri myšiach [Chcn, Lancct, 1992, 339, 1120-1121; Czinn, Američan Gastroenterological Association. May 10-13, 1992, 1321, A-331]. Presná povaha antigénu(ov) zodpovedného za indukciu tejto ochrany, sa doteraz neurčila, a žiadne informácie nepredpokladajú, že ochranný antigén(y) z baktérie Helicobacter felis, ktorý spôsobil ochranu proti tomuto patogénu, by mohol indukovať krížovú ochranu vzťahujúcu sa na iné druhy baktérií Helicobacter.
Podľa vynálezu sa zistilo, že sonikáty z Helicobacter pylori a Helicobacter felis sú schopné indukovať tvorbu protilátok, pričom dokázali, že niektoré z týchto protilátok, namierené proti Helicobacter pylori, sú schopné krížovej reakcie s Helicobacter felis a naopak [Michetti, Američan gastroenterology Association. May 10-13, 1992, 1001, A-251; Davin, Američan Gastroenterological Association, May 16-19, 1993, 1213, A-304]. Podstata týchto krížových reaktivít nebola známa.
Na základe existujúcej homológie medzi rôznymi známymi aminokyselinovými sekvenciami ureáz sa navrhlo, že ureáza by sa mohla použiť ako vakcína proti Helicobacter pylori [Pallen, Lancet 1990, 336, 186-7], Napriek tomu nie je krížová reaktivita pravidlom. Guo a Liu pred rokmi dokázali, že ureázy z baktérií Proteus mirabilis, Proteus vulgaris a Providencia rettgeri majú navzájom krížovú reaktivitu, zatiaľ čo ureázy z rastliny Canavalia (jack bean) a Morganella morganii sú imunologický vzdialené od troch skôr uvedených ureáz [Guo, J. Gen. Microbol. 1965, 136, 1995-2000]. I keď možnosť antigénnej krížovej reaktivity ureázy z Helicobacter pylori s ureázami iných helikobaktérií bola rozumným predpokladom, neexistovali žiadne údaje dokazujúce, že to je pravou príčinou krížových reaktivít, pokiaľ sa podľa vynálezu nedokázalo, že niektoré monoklonálne protilátky proti Helicobacter felis reagovali s ureázou Helicobacter pylori [Davin, Američan Gastroenterology Association, May 16-19, 1933, 1213, A-304], J. Pappo ďalej demonštroval, že myši, ktoré boli infikované baktériami Helicobacter felis vytvárali protilátky, ktoré sú schopné krížovej reakcie s ureázou z Helicobacter pylori, ale nereagovali s ureázou z rastliny Canavalia (J. Pappo, nepublikované údaje, 1993).
Použitie ureázy z Helicobacter pylori alebo príbuzných ureáz, ako vakcíny proti infekcii baktériami Helicobacter pylori sa navrhlo už skôr A. Labignom [patentová prihláška
SK 280619 Β6
EPO číslo EPO 0 367 644 Al, 1989, Int. Publication číslo W090/04030, 1990], Ale uvedená prihláška neobsahuje žiadny dôkaz o vakcinácii akéhokoľvek cicavca proti ľubovoľnej helikobakteriálnej infekcii pomocou ureázy.
Okrem toho, zatiaľ čo sekvenčná homológia s inými bakteriálnymi ureázami môže podporiť použitie ureázy ako vhodného kandidáta na vakcínu proti infekcii Helicobacter pylori, súčasné znalosti o priebehu ľudskej infekcie baktériami Helicobacter pylori ju iste nepodporia. I keď infikované indivíduá často vytvárajú silnú protilátkovú odpoveď proti ureáze, táto anti-ureázová imunitná odpoveď nevedie k likvidácii alebo kontrole infekcie. Okrem toho baktéria Helicobacter pylori je schopná transportovať ureázu von z bunky a uvoľňovať ju zo svojho povrchu [Evans, Infect. 1992, 60, 2125-2127; Ferrero, Microb. Ecol. Health Dis. 1991, 4, 1120-1121], Preto ureáza nemôže reprezentovať vhodný cieľ na vývoj ochrannej mukóznej imunitnej odpovede. Skutočne, všeobecne sa predpokladá, že mukózna imunitná ochrana je z väčšej časti sprostredkovaná sekrétovanými IgA, ktorých aglutinačná aktivita sa zhorší, ak sa môže rozpoznávaný antigén uvoľňovať z cieľového patogénu, a tak slúžiť ako klamný cieľ pre ochrannú protilátku. Ďalej sa zdá, že ureáza je toxická pre epitelové bunky v kultúre, a existuje podozrenie, že zohráva úlohu v degradácii mukózy a vo vývoji vredov tráviaceho traktu in vivo. Preto jej použitie ako antigénu môže byť toxické.
Napriek tomu sa dá usúdiť, že tento antigén by mohol byť potenciálne účinnou vakcínou, ak:
- po prvé, by sa mohol podať tento antigén orálne tak, aby bola dávka dostatočne vysoká na vyvolanie silnejšej imunitnej odpovede, než aká sa vyskytuje prirodzene
- po druhé, množstvo produkovaných protilátok musí byť dostatočne vysoké, aby viazali všetku ureázu, a to uvoľnenú i neuvoľnenú z povrchu buniek
- po tretie, ak by sme mohli použiť podjednotky ureázy alebo molekulárne varianty, ktoré nie sú toxické.
Nakoniec zostáva teda potreba efektívnej liečby a prevencie žalúdočných humánnych infekcií, ktoré sú spôsobené Helicobacter pylori. Súčasné údaje navrhovali možnosť vytvoriť vakcínu proti tejto infekcii, ale neobsahovali jasnú identifikáciu definovaného antigénu(ov), spoločného pre všetky kmene Helicobacter pylori, ktorý by sa mohol inkorporovať do bezpečnej a efektívnej vakcíny.
Podľa vynálezu je identifikovaný antigén z ureázy Helicobacter pylori ako možná vakcína a jeho účinnosť je demonštrovaná na zvieracom modeli. Tieto výsledky sú neočakávané v kontexte histórie infekcií baktériami rodu Helicobacter.
Podstata vynálezu
Podľa tohto vynálezu sa zistilo, že imunita sa môže u cicavcov, ktoré sú citlivé na gastrointestinálnu infekciu baktériami Helicobacter, indukovať, ak sa použijú ako cieľové miesta vakcíny epitopy ureázy, vyskytujúce sa na povrchu baktérie Helicobacter, alebo v jej blízkosti. Na vyvolanie imunity sa môže použiť buď prírodná ureáza alebo sa môže použiť rekombinantná ureázová podjednotka, ktorá sa produkuje v enzymatickej neaktívnej, a preto netoxickej forme. Vynález opisuje spôsob vyvolania imunity proti infekcii baktériami Helicobacter podaním polyaminokyselinového prípravku na mukózny povrch cicavca, t. j. zmesou peptidov a/alebo proteínov, spolu s vhodným adjuvans. V tomto polyaminokyselinovom prípravku je prítomné množstvo epitopov charakteristických a prezentovaných ureázou endogénnou pre baktériu z rodu Helicobacter, ktorou bude vykonaná infekcia. Podanie tohto polyaminokyselinového prípravku sa môže uskutočniť orálne.
Aktívna zložka tohto prípravku môže obsahovať prírodné alebo biosyntetické epitopy a môže mať rôzne formy. Nespočetné množstvo možných prípravkov obsahuje purifikované, v prírode sa vyskytujúce alebo rekombinantné produkované ureázové prípravky bakteriálneho alebo iného pôvodu, proteolytické fragmenty ureázy, fiizne proteíny obsahujúce ureázove epitopy, pozmenené formy ureázy, alebo peptidy homológne s aminokyselinovou sekvenciou ureázy. Pretože vyvolanie imunity závisí od indukcie humorálnej a/alebo bunkovej imunitnej odpovede, ktorá je namierená proti infikujúcej Helicobacter, sa uprednostňujú také prípravky, ktoré najlepšie duplikujú epitopy endogénnej ureázy infikujúceho organizmu. Napríklad prípravky obsahujúce epitopy z ureázy Helicobacter pylori sú prednostne podávané ľuďom citlivým na Helicobacter pylori. Navyše s ohľadom na dôležitý aspekt vynálezu sa zistilo, že sa môžu použiť ureázy z iných druhov. Napríklad sa zistilo, že k prevencii infekcie Helicobacter felis pri myšiach môže dôjsť po podaní ureázy z Helicobacter pylori.
Predmetom vynálezu je spôsob vyvolania ochrannej imunitnej odpovede v cicavcovi-hostiteľovi proti infekcii baktériami Helicobacter, pre ktorý je charakteristické, že sa na mukózny povrch hostiteľa podá imunologický efektívne množstvo ureázy, schopné vyvolať takúto ochrannú imunitnú odpoveď.
Ďalej je predmetom vynálezu zloženie vakcíny vhodnej na prevenciu infekcie baktériami Helicobacter a obsahujúcej efektívne množstvo ureázy ako antigénu, najlepšie ureázy z Helicobacter pylori alebo B podjednotky ureázy z Helicobacter pylori, schopnej vyvolať v hostiteľovi ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami Helicobacter, spolu s farmaceutický vhodným nosičom alebo rozpúšťadlom.
Ďalej vynález opisuje spôsob udelenia pasívnej ochrany cicavcovi-hostiteľovi proti infekcii baktériami Helicobacter, zahrnujúcej podanie imunologický efektívneho množstva špecifickej protilátky proti ureáze, na mukózny povrch hostiteľa. Túto protilátku produkuje hostiteľ imunizovaný ureázou, najlepšie ureázou z Helicobacter pylori alebo B podjednotkou ureázy z Helicobacter pylori, a je schopná vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami Helicobacter.
Prehľad obrázkov na výkresoch
Vynález sa ďalej opisuje s odkazmi na obrázky, pričom na obrázkoch 1 až 6 je grafické znázornenie výsledkov usporiadaných v tabuľkách 1 až 6.
Obrázok 1 (Skupina A): Myši nechránené po imunizácii ureázou.
Os X: „o“ značí IgG, „o“ značí IgA.
Os Y znázorňuje koncentráciu imunoglobulínu meranú spektrofotometricky. Číselný údaj zodpovedá absorbancii pri vlnovej dĺžke 495 nm vynásobenej 1000.
Obrázok 2 (Skupina B): Myši chránené po imunizácii ureázou.
Os X: „o“ značí IgG, „o“ značí IgA.
Os Y znázorňuje koncentráciu imunoglobulínu meranú spektrofotometricky. Číselný údaj zodpovedá absorbancii pri vlnovej dĺžke 495 nm vynásobenej 1000.
Obrázok 3 (Skupina C): Myši nechránené po imunizácii sonikátom Helicobacter pylori.
Os X: „o“ značí IgG, „o“ značí IgA.
Os Y znázorňuje koncentráciu imunoglobulinu meranú spektrofotometricky. Číselný údaj zodpovedá absorbancii pri vlnovej dĺžke 495 nm vynásobenej 1000.
Obrázok 4 (Skupina D): Myši chránené po imunizácii sonikátom Helicobacter pylori.
Os X znázorňuje: „o“ značí IgG, „o“ značí IgA.
Os Y znázorňuje koncentráciu imunoglobulinu meranú spektrofotometricky. Číselný údaj zodpovedá absorbancii pri vlnovej dĺžke 495 nm vynásobenej 1000.
Obrázok 5 : Ukazuje percento myší, pri ktorých sa rozvinula infekcia (os Y).
Os X A: Skupina myší imunizovaných sonikátom Helicobacter pylori. Infekcia sa nerozvinula pri troch z deviatich pokusných zvierat.
B: Skupina myší imunizovaných ureázou Helicobacter pylori. Infekcia sa nerozvinula pri siedmych z desiatich imunizovaných zvierat.
C: Kontrolná skupina myší. Infekcia sa nerozvinula pri jednom z desiatich pokusných zvierat (p=0,019 vo Fisherovom teste presnosti).
Obrázok 6: zhŕňa výsledky, získané po orálnej imunizácii rekombinantnými A a B podjednotkami ureázy. Na osi X číslo udáva počet pokusných zvierat. V obdĺžniku označenom symbolom I sú myši kontrolné, ktoré neboli chránené imunizáciou. V obdĺžniku označenom symbolom II sú zvieratá chránené imunizáciou rekombinantnou podjednotkou A (horná polovica obrázku) a B (dolná polovica obrázku) ureázy, ktoré boli usmrtené 12 dní po vystavení patogénu, zatiaľ čo zvieratá v obdĺžniku označenom III boli usmrtené po 10 týždňoch, ale inak ošetrené rovnakým spôsobom. Hodnoty Fisherovho testu presnosti: p = 0,003 (myši imunizované B podjednotkou ureázy usmrtené po 12 dňoch) a p = 0,01 (imunizácia B podjednotkou ureázy B po 10 týždňoch).
Hodnoty na osi Y udávajú veľkosť absorbancie pri vlnovej dĺžke 550 nm.
Podľa vynálezu sa zistilo, že orálne podanie polyamino-kyselinových prípravkov, prezentujúcich epitopy ureázy z Helicobacter pylori spôsobuje pri myšiach nárast ochrannej imunitnej odpovede proti Helicobacter felis. Myš je použitá ako zvierací model so všeobecne akceptovanou hodnotou na štúdium imunitnej odpovede na infekciu baktériami Helicobacter [Lee, Gastroenterology 1990, 99, 1315-1323], Efektom takejto ochrannej imunitnej odpovede je, že imunizované zvieratá, ak sú vystavené pôsobeniu patogénu, majú veľmi znížený výskyt infekcie, v porovnaní s neimunizovanými zvieratami. Orálna imunizácia myší pomocou B podjednotky ureázy Helicobacter pylori, ktorá sa produkuje ako enzymatický neaktívny rekombinantný proteín, prináša pri myšiach zvýšenie ochrannej imunitnej odpovede proti Helicobacter felis. Efektom tejto ochrannej imunitnej odpovede je, že imunizované zvieratá, ak sú vystavené pôsobeniu patogénu, majú veľmi zredukovaný výskyt infekcie, v porovnaní s neimunizovanými zvieratami.
Vynález opisuje spôsob vyvolania ochrannej imunitnej odpovede na infekciu baktériami Helicobacter v cicavcovi-hostiteľovi. Spôsob zahrnuje krok podania imunologický efektívneho množstva ureázy ako antigénu, najlepšie ureázy z Helicobacter pylori, schopnej vyvolať takúto ochrannú imunitnú odpoveď, na mukózny povrch cicavca vrátane človeka.
Ďalej vynález opisuje spôsob vyvolania ochrannej imunitnej odpovede na infekciu baktériami Helicobacter v cicavcovi-hostiteľovi. Spôsob zahrnuje krok podania imunologický efektívneho množstva rekombinantej, enzymaticky inaktívnej B podjednotky ureázy ako antigénu, najlepšie rekombinantnej B podjednotky ureázy z Helicobacter pylo ri, schopnej vyvolať takúto ochrannú imunitnú odpoveď, na mukózny povrch cicavca vrátane človeka.
Vynález sa ďalej týka tiež liečby alebo preventívnej ochrany cicavcov vrátane človeka pred infekciou baktériami Helicobacter, pričom sa na mukózny povrch pacienta podané imunologický efektívne množstvo ureázy alebo ich podjednotiek, schopných vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď na infekciu baktériami Helicobacter. Je výhodné, ak je použitá ureáza z Helicobacter pylori alebo B podjednotka ureázy Helicobacter pylori, a táto ureáza sa môže podať buď samotná alebo naviazaná na hydroxylovaný fosforečnan vápenatý, napríklad hydroxyapatit, ktorý slúži ako nosná častica. Ďalej je výhodné, podať ureázu z Helicobacter pylori spolu s mukóznym adjuvans, napríklad s B podjednotkou choleratoxínu, muramyl dipeptidom a/alebo s inými podobnými adjuvans.
Dá sa predpokladať, že podanie ureázy alebo jej B podjednotky ako antigénu na mukózny povrch, stimuluje celkový mukózny imunitný systém a snáď i lokálne miesta v žalúdočnom hliene vrátane imunitnej odpovede vrátane objavenia sa špecifických protilátok IgA proti Helicobacter pylori v žalúdočných sekrétoch, ktoré sú prevenciou pred infekciou baktériami rodu Helicobacter. Pretože je rutinnou záležitosťou uskutočňovať predklinické testy budúcich vakcín na ľudskú potrebu na zvieracích modeloch, dá sa usúdiť, že metodológia, použitá pri tomto vynáleze, bude efektívna i u ľudí, zvlášť v prevencii a liečbe vredov tráviaceho traktu, gastritídy, žalúdočných malignancií a ďalších ochorení, vznikajúcich ako dôsledok prítomnosti Helicobacter pylori a/alebo Helicobacter heilmanii.
A-Bakteriálne kultúry a purifikácie ureázy
Kmeň baktérie Helicobacter pylori, použitý na štúdium, pochádzal od pacienta trpiaceho duodenálnym vredom a bol predpestovaný na platniach s BHI agarózou tak, aby bola výsledná kultúra homogénna. Helicobacter pylori sa pestuje na vhodnom médiu, typicky na BHI médiu (Brain-Heart Infusion; médium obsahujúce výluh zo srdca a mozgu) obsahujúcom 0,25 % kvasničného extraktu a 10 % fetálneho teľacieho séra a doplnenom 0,4 % doplnkom na selektívny rast Campylobacterií (doplnenom podľa Skirrowa; Oxoid 69). Baktérie sa inkubujú cez noc za mikroaerofilných podmienok pri 37 °C vo fľašiach, ktoré sa potom zapečatia a trepú pri 37 °C počas dvoch až troch dní tak, aby vznikla tekutá kultúra. Kultúra sa môže tiež pripraviť na agarózových platniach, ktoré obsahujú médium BHI s 0,25 % kvasničného extraktu a 5 % ovčej krvi. Kultivácia prebieha za mikroaerofilných podmienok pri teplote 37 °C počas troch dní. Množstvo baktérií sa zisťuje meraním absorbancie roztoku BHI, pri vlnovej dĺžke 660 nm, pričom jedna jednotka absorbancie zodpovedá 108 baktériám. Kultúry na agarózových platniach sa najprv resuspendujú v 154 mM NaCl.
Bežný a výhodný zdroj polyaminokyseliny, majúci epitopy ureázy, je purifikované ureáza, napríklad ureáza z Helicobacter pylori, získaná všeobecným spôsobom podľa Dunn a kol.,J. biol. chem. 265, 9464-9465. Táto metóda je modifikovaná tak, ako je to opísané ďalej. Po kultivácii sa bunky lyžujú vo vode, odstredia sa, potom sa sediment rozmieša na vortexe a znovu odstredí, čím vzniká supematant. Roztok majúci ureázovú aktivitu Helicobacter pylori (odhadnuté rýchlym ureázovým testom, pozri ďalej) sa potom podrobí chromatografii na CL-6B kolóne. Frakcie majúce silnú ureázovú aktivitu sa zhromaždia a cez noc sa dialyzujú, potom sa opäť podrobia chromatografii na aniónovom ionomeniči. Frakcie sa eluujú tlmivým roztokom so vzrastajúcou koncentráciou NaCl a zhromaždené frakcie so silnou ureázovou aktivitou sa podrobia SDS gélovej elektroforéze, po ktorej nasleduje farbenie Coomassie modrou. Ako ureázy sa identifikovali dva oddelené prúžky, zodpovedajúce molekulovej hmotnosti okolo 63 kDa a okolo 29 kDa. Frakcie obsahujúce ureázu sa zhromaždia, čím vzniká purifikovaná ureáza z Helicobacter pylori s čistotou v intervale od 95 % do 99 %.
B-Orálna imunizácia ureázou z Helicobacter pylori
I keď je výhodné používať ureázu purifikovanú z Helicobacter pylori, ktorá sa získa opísaným spôsobom, rozumie sa, že ako antigénny materiál je možné použiť akúkoľvek ureázu alebo podjednotku ureázy, buď v prírode sa vyskytujúcu alebo získanú technikami rekombinantnej DNA, ako i proteolytický fragment, fúzne proteíny obsahujúce fragmenty alebo celú ureázu, pozmenené ureázové konštrukty, alebo iné peptidy alebo proteínové prípravky, obsahujúce epitopy ureázy, ktoré sú schopné vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami rodu Helicobacter (pozri ďalej). Takto je možné použiť ureázu, ktorá má čiastočnú homológiu s ohľadom na ureázu z Helicobacter pylori, a ktorá je efektívna vo vyvolaní krížovej ochrannej imunitnej odpovede proti Helicobacter. Príkladom takejto ureázy je ureáza z rastliny Canavalia, ktorá má asi 70 % homológiu s ureázou z Helicobacter pylori. Vynález sa preto neobmedzuje na použitie intaktnej ureázy, ale zahrnuje použitie akéhokoľvek polyaminokyselinového prípravku, ktorý obsahuje epitopy ureázy a je schopný v hostiteľovi vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami rodu Helicobacter. Je typické, že ureáza majúca homológiu v intervale 70 až 95 %, napríklad 80 % až 90 % homológiu, vzhľadom na ureázu z Helicobacter pylori, sa môže použiť ako antigénna ureáza podľa vynálezu.
Nespočetné množstvo zdrojov potenciálne užitočných ureázových prípravkov obsahuje endogénne ureázové enzýmy rôznych druhov baktérií Helicobacter, ureázy z iných baktérií, ako sú Klebsiella pneumoniae alebo Proteus mirabilis a analogicky akákoľvek iná ureáza s podmienkou, že táto ureáza má epitopy dôležité pre krížovú reakciu s ureázou z Helicobacter pylori. Gény kódujúcej uerázy uvedených organizmov tvorí potenciálny nástroj na expresiu rekombinantných ureázových produktov, ako sú celé proteíny alebo ich časti.
Nespočetné množstvo potenciálne užitočných ureázových prípravkov zahrnuje peptidy, ktoré sa pripravia z purifikovaných ureáz (zdroje už boli spomenuté) použitím fyzikálnych a/alebo chemických štiepných procedúr (t. j. CnBr) a/alebo enzymatické proteolýzy s použitím proteáz, napr. proteázy V8, trypsínu alebo iných, alebo peptidy sysntetizované chemicky a majúce spoločné epitopy s ureázou.
Ďalším zdrojom potenciálne užitočných epitopov sú epitopy identifikované vďaka ich krížovej reaktivite s ureázou, ktoré sa dajú vyhľadať pomocou protilátok proti ureáze. Tieto peptidy sa môžu vyskytovať ako prírodné peptidy, alebo môžu vznikať chemickou syntézou. Ďalej môžu takéto peptidy vznikať expresiou náhodného rekombinantného oligonukleotidu.
Iným zdrojom potenciálne užitočných epitopov sú epitopy podobné epitopom ureázy, ktoré vznikajú produkciou anti-idiotypových protilátok proti ureáze. Takéto anti-idiotypové protilátky produkované ľubovoľným imunokompetentným hostiteľom, sa získajú imunizáciou tohto hostiteľa anti-ureázovými protilátkami s cieľom produkovať protilátky namierené proti anti-uerázovým protilátkam, a ktoré majú spoločnú štruktúrnu homológiu s ureázou.
Táto diskusia sa zameriava na použitie prirodzenej ureázy produkovanej baktériami Helicobacter pylori (časť B), ako aj ureázy alebo jej podjednotky či ich konštruktov, ktoré už boli spomenuté, ktoré sú schopné vyvolať požadovanú ochrannú imunitnú odpoveď, a môžu sa tiež produkovať použitím techník rekombinantnej DNA, ktoré sú odborníkovi dobre známe. Účinnosť jednotlivých prípravkov sa môže zistiť rutinnou administráciou použitím zvieracích modelov, orálnym podaním látky kandidujúcej na vakcínu a vystavením účinkom patogénu, pri ktorom sa použije protokol v podstate rovnaký alebo podobný v ďalej opísanej procedúre.
Tabuľky 1 a 2 a obrázky 1 až 5 opisujú výsledky, ktoré sa získali pri orálnej imunizácii myší purifikovanou ureázou z Helicobacter pylori. V tomto prvom experimente sa podávanie antigénu z Helicobacter pylori uskutočňovalo orálne administráciou ureázy z Helicobacter pylori myšiam. Purifikácia sa uskutočňovala tak, ako je to opísané v časti A. Ureáza z Helicobacter pylori sa nechala adsorbovať na kryštály hydroxyapatitu, ktorý sa používa ako nosič zosilujúci väzbu M-buniek a absorpciu. Choleratoxin (Sigma) sa pridával ako mukózne adjuvans. V tomto experimente sa skupina samičiek šesť týždňov starých myší BALB/c orálne imunizovala 30 pg purifíkovanej ureázy z Helicobacter pylori naviazanej na 1 mg hydroxyapatitu spolu s 10 pg choleratoxínového adjuvans v dňoch 0, 7, 14 a 21. Myši sa potom vystavili pôsobeniu 108 Helicobacter felis, a to v dňoch 28 a 30. Na účely porovnania sa podobné, šesť týždňov staré samičky myší SPF-BALB/c orálne imunizovali lyzátom z celých Helicobacter pylori (sonikátom) s 10 pg choleratoxínu, v dňoch 0, 7, 14 a 21. Myši sa vystavili pôsobeniu Helicobacter felis v dňoch 28 a 30. Sonikát z Helicobacter pylori sa pripravil zhromaždením Helicobacter pylori z bunkových kultúr, centriíúgáciou, rozpustením sedimentu v 0,9% NaCl, po ktorom nasledovala sonikácia.
Na kontrolu sa klamné imunizovali samičky šesť týždňov starých myší SPF BALB/c 10 pg choleratoxínu a 1 mg hydroxyapatitu v dňoch 0, 7, 14 a 21. Všetky myši sa chovali, imunizovali a vystavili účinkom patogénu paralelne. Všetky myši použité na štúdium sa usmrtili na 35 deň.
C-Orálna imunizácia rekombinantnými podjednotkami ureázy z Helicobacter pylori
Gény, kódujúce A a B podjednotky ureázy z Helicobacter pylori, sa získajú klonovaním polymerázovou reťazovou reakciou (PCR) podľa štandardných procedúr, a založených na skôr publikovaných sekvenciach [Clayton, Nucleic Acid Res., 1990, 18, 362]. Tieto gény sa vložili do vektora (pomenovaný pEV 40), ktorý sa vytvoril pre vysokú úroveň expresie a ľahkú purifikáciu cudzích génov v baktériách E. coli. Stručne povedané, cudzí gén sa vloží v smere transkripcie termo-reprezibilného promótora a v čítacom rámci so sekvenciou šiestich histidínov. Na selekciu transformantov je v tomto vektore prítomný gén ampR. Za vhodných teplotných podmienok sa získa proteín doplnený na N-konci repetíciou šiestich histidínov, ktoré umožňujú jednostupňovú afinitnú purifikáciu na niklovom stĺpci. Obe rekombinantné podjednotky (A a B) ureázy z Helicobacter pylori sa exprimovali oddelene v E. coli a prečistili na niklovom stĺpci až do 95 % čistoty.
I keď je výhodné používať ako antigénny materiál rekombinantnú ureázu z Helicobacter pylori, ktorá sa získa tak, ako je už bolo opísané, rozumie sa, že je práve tak možné ako antigénny materiál použiť ľubovoľnú ureázu, alebo podjednotku uerázy, získanú rekombinantnými technikami (napríklad fúzny proteín), ktorá má antigénne miesta ureázy, a ktorá je schopná vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami rodu Helicobacter. To znamená, že je možné ku konštrukcii použiť ureázový gén,
SK 280619 Β6 ktorý má podstatnú homológiu vzhľadom na ureázu z Helicobacter pylori, a ktorý je efektívny pri vyvolaní krížovej ochrannej imunitnej odpovede proti Helicobactériam. Príkladom takejto ureázy je ureáza z rastliny Canavalia, ktorá má približne 70 % homológiu s ureázou z Helicobacter pylori, alebo ureáza z Helicobacter felis, ktorá má približne 88 % homológiu s ureázou z Helicobacter pylori. Vynález preto nie je obmedzený na použitie génov pre ureázu z Helicobacter pylori a ich génových produktov, ale zahrnuje použitie ľubovoľnej rekombinantnej ureázy, alebo jej podjednotiek, ktoré sú schopné v hostiteľovi vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď proti infekcii baktériami rodu Helicobacter. Ako rekombinantné antigénna ureáza podľa vynálezu sa môže použiť rekombinantná ureáza majúca 70 až 95 % homológiu, napríklad 80 až 90 % homológiu, vzhľadom na ureázu z Helicobacter pylori.
Táto diskusia je zameraná na použitie rekombinantných A a B podjednotiek ureázy z Helicobacter pylori, ktoré sú produkované baktériami E. coli, ale je známe, že rekombinantné ureázy, alebo ich podjednotky, či ich konätrukty, ktoré už boli spomenuté, ktoré sú schopné vyvolať požadovanú ochrannú imunitnú odpoveď, sa môžu produkovať pomocou iných techník rekombinantnej DNA a v iných eukaryotických alebo prokaryotických expresných vektoroch, ktoré sú odborníkovi dobre známe.
Tabuľky 3, 4 a spodná časť tabuľky 5 a obrázok 6 opisujú výsledky získané v pokusoch, pri ktorých sa myši orálne imunizovali rekombinantnými podjednotkami ureázy z Helicobacter pylori, ktoré sa vyprodukovali v E. coli. V tomto experimente sa antigén z Helicobacter pylori podával tak, že sa myšiam orálne podala rekombinantná A alebo B podjednotka ureázy z Helicobacter pylori, ktorá je vyprodukovaná v E. coli a purifikovaná tak, ako to bolo opísané. Antigén sa vopred naviazal na kryštály hydroxyapatitu, ktorý sa používa ako nosič, ktorý zosilňuje väzbu M-buniek a absorpciu antigénu. Ako mukózne adjuvans sa pridáva choleratoxin (Sigma). V týchto experimentoch sa použila skupina šesť týždňov starých samičiek myší SPF-BALB/c. Každá z myší sa orálne imunizovala 30 pg rekombinantnej A a B podjednotky ureázy z Helicobacter pylori konjugovanej s 1 mg hydroxyapatitu, spolu s 10 pg choleratoxínového adjuvans. Imunizácia sa uskutočňovala v dňoch 0, 8, 14 a 21. Myši sa potom trikrát vystavili pôsobeniu 10s Helicobacter felis a to v dňoch 32, 34 a 36. Na účely porovnania sa podobné, šesť týždňov staré samičky myší SPF-BALB/c, orálne imunizovali 30 pg rekombinantnej B podjednotky ureázy z Helicobacter pylori, absorbovanej na 1 mg hydroxyapatitu, spolu s 10 pg choleratoxínového adjuvans. Imunizácia sa uskutočňovala v dňoch 0, 8, 14 a 21. Myši sa potom trikrát vystavili pôsobeniu 108 Helicobacter felis, a to v dňoch 32, 34 a 36. Všetky myši sa chovali, imunizovali a vystavili účinkom patogénu paralelne. Myši, použité na štúdium sa usmrtili na 48 deň (12 dní po stretnutí s patogénom) alebo 10 týždňov po vystavení účinkom patogénu.
D-Analýza žalúdočných biopsií, krvi a črevných sekrétov
Biopsia sa odoberie zo žalúdka a krv sa získa zo srdca. Črevá sa odoberú a premyjú lmM PMSF (fenyl-metyl-sulfonyl-fluorid, Boehringer) v tlmivom roztoku PBS (Phosphate Buffered Saline - fyziologický roztok s fosforečnanovým tlmivým roztokom) tak, aby sa získali črevné sekréty pre ELISA analýzu.
Na vyhodnotenie ochrany proti kolonizácii baktériami Helicobacter felis sa žalúdočná biopsia z každého zvieraťa podrobí testovaniu na prítomnosť Helicobacter felis pomocou rýchleho testu na určenie ureázovej aktivity (Jatrox HP test, Rohm Pharma), pričom sa postupuje podľa smerníc dodávateľa. Stručne povedané, žalúdočná biopsia sa ponorí do 0,5 ml zmesi močoviny a fenolovej červene, ktorá slúži ako indikátor pH, a ktorú dodáva priamo dodávateľ. Aktivitou ureázy vzniká z ureázy amoniak a hydrogenuhličitan a reakciu je sprevádza kolorimetrická zmena vzhľadom na vyššiu absorbanciu pri vlnovej dĺžke 550 nm. Ureázová aktivita sa kvantifikuje spektrofotometrickou analýzou.
Na detekciu prítomnosti Helicobacter felis sa žalúdočná biopsia všetkých zvierat vrátane z tých, ktoré sa použili v experimente opísanom v časti B, kultivujú na platniach s BHI agarózou, ktorá je doplnená tak, ako to bolo opísané. Prítomnosť Helicobacter felis sa potvrdzuje farbením podľa Grama a určením ureázovej aktivity po 3 až 10 dianí inkubácie za mikroaerofilných podmienok. Významná zhoda sa dosiahla pri detekcii kultúr Helicobacter felis v priebehu prvého súbory experimentov (pozri tabuľka 3). V experimente, ktorý je opísaný v časti C sa vykonali na detekciu prítomnosti Helicobacter felis len testy stanovujúce aktivitu ureázy v žalúdočných biopsiách. Prítomnosť Helicobacter felis sa potvrdila mikroskopicky dvomi nezávislými bádateľmi, s použitím dvoch rôznych metód farbenia (akridínovou oranžou a krezylovou violeťou).
Krvné vzorky sa nechajú usadiť počas troch hodín pri teplote miestnosti, potom sa odoberie sérum a nechá sa zamrznúť na -20 °C až času analýzy. Črevné sekréty sa centrifugujú 5 minút pri 4 °C, čím sa odstránia makroskopické častice a potom sa uchovajú zmrazené na -20 °C. Stanovenie antihelikobakteriálnej aktivity v črevných vzorkách každého zvieraťa sa uskutočňuje ELISA analýzou podľa štandardných procedúr. Stručne povedané, 96 jamkové dosky sa potiahnu sonikátom z baktérii Helicobacter pylori, a potom sa nasýtia 5 % odtučneným mliekom. Vzorky sa postupne rozriedia od riedenia 1 : 1 do 1 : 1000 a inkubujú sa cez noc na ELISA doskách pri 4 °C. Na určenie koncentrácie protilátok sa použijú biotinylované protilátky proti myšiam IgG (pri testovaní séra) a proti myšiam IgA, po ktorých nasleduje konjugát streptavidín - chrenová peroxidáza.
Výsledky vystavenia pokusných zvierat infekcii Helicobacter felis, nasledujúcej po imunizácii purifikovanou ureázou z Helicobacter pylori, sú udané v tabuľkách 1 až 3 a na obrázkoch 1 až 4 a výsledky po vystavení infekcii Helicobacter felis, nasledujúcej po imunizácii rekombinantnými A a B podjednotkami ureázy z Helicobacter pylori, sú udané v tabuľkách 4 až 6 a na obrázkoch 5 až 6.
Tabuľka 1
| Myž Číslo | Imunizácia | Ureázový test 12 h | Gramové farbenie | Imunoglobulíny | |||
| Sérum | črev.í ig | ekrét IgA | |||||
| Tg | IgG | ||||||
| 1 | Ureáža+HP | + | H. felis | 27 | 0 | 25 | 25Θ |
| 2 | Ureáza+HF | 0 | 0 | 264 | 273 | 221 | 246 |
| 3 | Ureáza+HF | 0 | 0 | 84 | 44 | 318 | 354 |
| 4 | Ureáza+HP | H. felis | 81 | 42 | 12 | 15 | |
| 5 | Ureáza+HF | 0 | 0 | 98 | 137 | 126 | 234 |
| 6 | Ureáza+HF | ♦ | 0 | 968 | 2093 | 31 | 22 |
| 7 | Ureáza+HF | 0 | 0 | 98 | 0 | 96 | 34 |
| 8 | Ureáza+HF | 0 | 0 | 247 | 1010 | 214 | 126 |
| 9 | Ureáza+HF | 0 | 0 | nez. | nez. | 48 | 32 |
| 10 | Ureáza+HF | 0 | 0 | so | 0 | 124 | 99 |
| 11 | Ureáza | 0 | 0 | 319 | 205 | 44 | 53 |
| 12 | Ureáza | 0 | 0 | 14 | 0 | 86 | 87 |
| 13 | Ureáza | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 |
SK 280619 Β6
| 14 | Ureáza | 0 | 0 | 0 | 0 | 43 | 61 |
| 15 | Ureáza | 0 | 0 | 58 | 0 | 110 | 127 |
| 16 | Ureáza | 0 | 0 | 140 | 63 | 21 | 37 |
| 17 | Ureáza | 0 | 0 | 84 | 240 | 114 | 280 |
| 19 | Ureáza | 0 | 0 | než. | nez. | 93 | 148 |
| 19 | Ureáza | 0 | 0 | 45 | 0 | 135 | 216 |
| 20 | Ureáza | 0 | 0 | 261 | 197 | 161 | 261 |
| 21 | ChT+HF | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 2 |
| 22 | ChT+HF | * | H. felie | 63 | 0 | 310 | 303 |
| 23 | ChT+HF | + | ti. felie | 90 | 0 | nez. | nez. |
| 24 | ChT+HF | - | H. felie | 31 | 0 | 150 | 192 |
| 25 | ChT+HF | - | H. felis | 197 | 250 | 250 | 440 |
| 26 | ChT+HF | ♦ | H. felis | 105 | 135 | 214 | 138 |
| 27 | ChT+HF | * | H. felis | 140 | 47 | 109 | 55 |
| 28 | ChT+HF | t | 0 | 0 | 0 | 16 | 15 |
| 29 | ChT+HF | ♦ | H. felis | 0 | 0 | 0 | 0 |
| 30 | ChT+HF | + | H. felis | nez. | než. | nez. | nez. |
| 31 | HP sonikát +HF | H. felis | 0 | 0 | 76 | 103 | |
| 32 | HP sonikát +HF | * | H. felis | 77 | 0 | 11 | 33 |
| 33 | HP sonikát +HF | + | H. felis | 549 | 748 | 57 | 36 |
| 34 | Hp sonikát +HF | 0 | 0 | 660 | 153 | 180 | 266 |
| 35 | HP sonikát +HF | + | H. felis | 730 | 192 | D | 5 |
| 36 | HP sonikát +HF | + | H. felis | 32 | 0 | 5 | 64 |
| 37 | HP sonikát +HF | 0 | 0 | 400 | 400 | 312 | 1149 |
| 38 | HP sonikát +HF | * | H. felis | 1007 | 1360 | 149 | 26 |
| 39 | Hp sonikát +HF | 0 | 0 | 220 | 166 | 133 | 122 |
| 40 | HP sonikát | 0 | 0 | 873 | 1016 | 352 | 514 |
| 41 | HP sonikát | 0 | 0 | 72? | 899 | 126 | 191 |
| 42 | HP sonikát | 0 | 0 | 109 | 68 | 44 | 83 |
| 43 | HP sonikát | 0 | 0 | 147 | 949 | 167 | 97 |
| 44 | HP sonikát | 0 | 0 | 845 | 1094 | 246 | 64 |
| 45 | HP sonikát | 0 | 0 | 1217 | 1198 | 210 | 157 |
| 46 | HP sonikát | 0 | 0 | 01 | 0 | 256 | 21B |
| 47 1 | HP sonikát | 0 | 0 | 329 | 210 | 241 | 276 |
| 48 | Hp sonikát | 0 | 0 | 1049 | 737 | 197 | 211 |
V tabuľke 1, ktorá opisuje experiment opísaný v časti B majú nasledujúce skratky tento význam: „h“ znamená hodiny, „Ig“ znamená imunoglobulín, „nez“ znamená „nezistené“, „ureáza + HF“ znamená, že myš sa imunizovala ureázou (naviazanou na hydroxyapatit a podanou spolu s choleratoxínom) a potom sa vystavila pôsobeniu patogénu Helicobacter felis, „ureáza“ znamená, že myš sa imunizovala ureázou (naviazanou na hydroxyapatit a podávanou spolu s choleratoxínom) a nevystavila sa pôsobeniu patogénu, „ChT + HF“ znamená, že myš sa na kontrolu klamné imunizovala len choleratoxínom a vystavila pôsobeniu patogénu Helicobacter felis, „HP sonikát + HF“ znamená, že myš je imunizovaná sonikátom z baktérií Helicobacter pylori, podávaným spolu s choleratoxínom a vystavená pôsobeniu patogénu Helicobacter felis, „HP sonikát“ znamená, že myš je imunizovaná sonikátom z baktérií Helicobacter pylori, podávaným spolu s choleratoxínom a a nie je vystavená pôsobeniu patogénu Helicobacter felis. V tabuľke 1 čísla udávajúce výsledky stanovenia protilátok, pochádzajú z meraní absorbancie pri vlnovej dĺžke 595 nm, ktorá je vynásobená 1000. Hodnota absorbancie pozadia, zmeraná v neprítomnosti protilátok, je od výsledku odčítaná.
V tabuľke 2 sú znázornené výsledky experimentu, ktorý je opísaný v časti B a ktoré sú získané na základe ureázových testov žalúdočných biopsií a Gramovho farbenia kultúr Helicobacter felis. Ako infikované sú definované myši s jedným alebo viacerými markermi kolonizácie Helicobacter felis, zahrnujúcej ureázový test, alebo Gramovo farbenie kultúr.
Tabulka 2
| Imunizácia | Patogén | V infikovaných jedincov | t ochránených jedincov |
| Ureázou | H. felis | 3/10 (30 %) | 7/10 (70 *)* |
| sonikátom | H.felis | 6/9 (66 %) | 3/9 (33 V)»· |
| Ch.toxínom | H.felis | 9/10 (90 í) | 1/10 (10 í) |
* p_0,0198 (Fisherov test presnosti) vzhľadom na kontrolu imunizovanú choleratoxínom ** p=0,303 (Fisherov test presnosti) vzhľadom na kontrolu imunizovanú choleratoxínom.
Z výsledkov udaných v tabuľkách 1 a 2 je jasné, že orálnou imunizáciou ureázou z baktérií Helicobacter pylori je získaná štatisticky významná ochrana proti pôsobeniu patogénu Helicobacter felis, v porovnaní s ochranou získanou použitím buď sonikátu z Helicobacter pylori alebo použitím choleratoxínu. Z tabuľky 2 je jasné, že z celkových 10 imunizovaných zvierat len 3 sú infikované, v porovnaní so 6 zvieratami, ktoré sú imunizované choleratoxínom. Tabulka 2 ukazuje, že 70 % zvierat je chránených proti pôsobeniu Helicobacter felis, v porovnaní s 33 % zvierat imunizovaných sonikátom z Helicobacter pylori a 10 % zvierat imunizovaných choleratoxínom a potom vystavených pôsobeniu Helicobacter felis. Inými slovami, 90 % kontrolných myší, ktoré sú vystavené pôsobeniu Helicobacter felis, sa týmto patogénom infikovalo, zatiaľ čo naproti tomu pri myšiach imunizovaných ureázou z Helicobacter pylori 28 dní pred vystavením Helicobacter felis, bola úroveň infekcie len 30 %. To znamená významnú redukciu infekcie (p = 0,198 vo Fisherovom teste presnosti) v porovnaní s kontrolnými myšami. Pri myšiach imunizovaných orálne sonikátom z Helicobacter pylori, je úroveň infekcie 67 % (nevýznamné zníženie proti kontrole). Ochrana získaná použitím ureázy z Helicobacter pylori je neočakávaná a nemohla sa predpokladať na základe výsledkov získaných použitím sonikátu z Helicobacterpylori.
Obrázok 1 graficky vyjadruje výsledky testov stanovujúcich koncentráciu protilátok v sére (IgG) a v črevných sekrétoch (IgA) pri myšiach, ktoré sa po imunizácii ureázou neochránili pred infekciou. V tabulke 1 ide o myši s číslami 1, 4 a 6. Tieto myši tvoria skupinu A. Obrázok 2 ukazuje protilátkovú odpoveď pri myšiach, ktoré sú po imunizácii chránené pred infekciou (skupina B), t. j. myši 2, 3, 5 a 7 až 10. Obrázky 3 a 4 sa týkajú výsledkov, ktoré sa získali na myšiach 31 až 39. Obrázok 3 (skupina C) zobrazuje protilátkovú odpoveď myší po imunizácii sonikátom z Helicobacter pylori (myši číslo 31, 32, 33, 35, 36 a 38) a obrázok 4 (skupina D) zobrazuje protilátkovú odpoveď myší chránených po imunizácii sonikátom z Helicobacter pylori (myši číslo 34, 37 a 39). S ohľadom na obrázky 3 a 4 je zaujímavé, že protilátkové odpovede IgA (ale nie IgG), sú vyššie pri myšiach, ktoré majú ochrannú imunitu, ako pri myšiach, ktoré ochranu nemajú. Dá sa teda predpokladať vzájomný vzťah medzi ochrannou a protilátkovou odpoveďou IgA. Sérové IgG takýto vzťah nemajú. O mukóznych protilátkach IgA, nie však o sérových IgG, je známe, že zohrávajú úlohu v ochrane proti bakteriálnym infekciám vnútornosti [Parsonnet, J. Natl. Cancer Inst. 1991, 93, 640-643],
Výsledky, ktoré udávajú koreláciu medzi detekciou baktérií Helicobacter felis v žalúdočných biopsiách pomocou ureázových testov a detekciou pomocou zisťovania prítomnosti kultúr, sú uvedené v tabulke 3.
Tabuľka 3
| Ureázový test + | Ureázový test - | Celkom | |
| Prítomnosť kultúr H. felis + | 16 | 0 | 16 |
| Prítomnosť kultúr H. felis - | 2 | 30 | 32 |
| Celkom | 18 | 30 | 48 |
p < 0,0001 vo Fisherovom teste presnosti
Tabuľka 3 ukazuje, že existuje veľmi významná korelácia medzi výsledkami ureázových testov vykonaných na žalúdočných biopsiách a identifikáciou infekcie baktériami Helicobacter felis. Ureázové testy sa výhodne používali na diagnózu infekcie Helicobacter felis pri myšiach v ďalších experimentoch vzhľadom na ich väčšiu citlivosť. Tento prístup umožnila duplikácia ureázových testov s väčšími žalúdočnými fragmentárni u každej myši a ďalšie zlepšenie citlivosti ureázových testov. Použitie tejto metódy s vyššou citlivosťou zabránilo preceneniu ochrany, získanej testovaným vakcinačným prípravkom. Použitím pozitívnej kultúry ako štandardu pre infekciu, je indukovaná ochrana po imunizácii ureázou v priebehu experimentu, ktorý je opísaný v časti B, rovnako významná ako pri kombinovanom použití ureázového testu a stanovení kultúr (p = 0,021 proti p = = 0,019).
Výsledky experimentov, ktoré sú opísané v časti C (rekombinantné ureázové podjednotky), a ktoré sa získali na základe ureázových testov zo žalúdočných biopsií, sú uvedené v tabuľkách 4, 5 a 6 a zobrazené na obrázku 6.
Tabuľka 4
| Imunizácia | Myš δ. | Ureázový test | Infekcia |
| ChT | 20 | 0,49 | t |
| 21 | 0,31 | ||
| 22 | 0,62 | * | |
| 23 | 0, 67 | 4- | |
| 24 | 0,55 | + | |
| 50 | 0, 50 | 4- | |
| 51 | 0, 37 | 4- | |
| 52 | 0,29 | + | |
| 53 | 0,79 | ||
| 54 | 0,32 | 4- | |
| ureA+HAP+ChT | 40 | 0,67 | ¥ |
| 41 | 0,48 | ¥ | |
| 42 | 0,42 | ||
| 43 | 0,65 | 4- | |
| 44 | 0,56 | ||
| 45 | 0,52 | 4- | |
| 46 | 0,33 | 4- | |
| 47 | 0,63 | + | |
| 48 | 0,22 | ♦ | |
| 49 | 0,37 | + | |
| ureB+HAP+ChT | 25 | 0,15 | |
| 26 | 0,07 | ||
| 27 | 0,03 | ||
| 28 | 0, 64 | 4- | |
| 29 | 0,13 | ||
| 30 | 0,02 | ||
| 31 | 0,66 | + | |
| 32 | 0,00 | ||
| ureA+HAP+ChT | 68 | 0,00 | |
| 69 | 0,07 | ||
| 70 | 0,42 | 4- | |
| 71 | 0,00 | ||
| 72 | 0,00 | ||
| ureB+HAP+ChT | 73 | 0,37 | + |
| 74 | 0,00 | - | |
| 75 | 0,37 | ||
| 76 | 0,00 | - | |
| 77 | 0,00 | - | |
| 78 | 0,00 | - | |
| 79 | 0,39 | + | |
| 80 | 0,00 | - | |
| 81 | 0,37 | * | |
| 82 | 0,00 | - |
V tabuľke 4 majú nasledujúce skratky tieto významy: „ChT“ znamená choleratoxín, „UreA“ znamená rekombinantnú A podjednotku ureázy z Helicobacter pylori.
UreB znamená rekombinantnú B podjednotku ureázy z Helicobacter pylori, „HAP“ značí kryštály hydroxyapatitu. Myši 20 až 54 sa usmrtili 12 dní po vystavení účinkom patogénu a myši 68 až 82 po 10-tich týždňoch (106 dňoch) po vystavení účinkom patogénu. Výsledky ureázových testov, vykonaných na žalúdočných biopsiách každého zvieraťa, sú vyjadrené ako hodnoty absorbancie pri vlnovej dĺžke 550 nm. Znamienka + a označujú konečný stav infekcie jednotlivých zvierat vzhľadom na pozitivitu alebo negativitu ureázových testov detegujúcich prítomnosť Helicobacter felis. Ako pozitívne sa brali hodnoty absorbancie (pri 550 nm) väčšie ako 0,2.
Tabuľka 5
Ochrana nameraná pri myšiach usmrtených 12 dní po vystavení účinkom patogénu
| Imunizácia | Patogén | % infikovaných jedincov | k ochránených jedincov |
| A podjednotkou ureázy | H. felis | 10/10 (100 4) | 0/10 (0 ») |
| fi podjednotkou ureázy | H.felis | 3/10 (30 υ | 7/10(70 %)» |
| Ch.toxínom | H. felis | 9/10 (90 %) | 0/10 (10 1) |
* p=0,0031 (Fisherov test presnosti) vzhľadom na kontrolu imunizovanej choleratoxínom
Tabuľka 6
Ochrana nameraná pri myšiach usmrtených 10 dní po vystavení účinkom patogénu
| Imunizácia | Patogén | V infikovaných jedincov | % ochránených jedincov |
| A podjednotkou ureázy | H. felis | 1/5 (20 *) | 4/5 (90 t) |
| B podjednotkou ureázy | H. felis | 4/10 (40 t) | 6/10 (60 %)* |
* p=0,003 (Fisherov test presnosti) vzhľadom na kontrolu imunizovanú choleratoxínom ** p=0,01 (Fisherov test presnosti) vzhľadom na kontrolu imunizovanú choleratoxínom.
Z výsledkov uvedených v tabuľkách 4, 5 a 6 je jasné, že štatisticky významnej ochrany proti pôsobeniu Helicobacter felis sa dosiahne orálnou imunizáciou, pri ktorej sa použije rekombinantná podjednotka ureázy z Helicobacter pylori, v porovnaní s ochranou, ktorá sa dosiahne použitím buď rekombinantnej A podjednotky ureázy z Helicobacter pylori alebo choleratoxínu. Z tabuľky 4 je vidieť, že 12 dní po vystavení účinkom patogénu, z 10 imunizovaných zvierat zo skupiny, v ktorej sa použila B podjednotka ureázy, sa zistili len 3 ako infikované. Na porovnanie, z 10 zvierat imunizovaných A podjednotkou ureázy sa infikovalo všetkých 10 a z 10 imunizovaných choleratoxínom sa tiež infikovalo 10 zvierat. Tabuľka 4 ukazuje, že 70 % zvierat sa chránilo pred pôsobením Helicobacter felis v porovnaní s 0 % zo zvierat imunizovaných A podjednotkou ureázy z Helicobacter pylori a 0 % zo zvierat imunizovaných choleratoxínom a potom vystavených účinkom Helicobacter felis. Inými slovami 100 % kontrolných myší vystavených Helicobacter felis sa infikovalo, zatiaľ čo naproti tomu pri myšiach imunizovaných rekombinantnou B podjednotkou Helicobacter pylori je úroveň infekcie len 30 %. To reprezentuje významnú redukciu infekcie (p = 0,0031, Fisherov test presnosti) v porovnaní s kontrolnými myšami.
SK 280619 Β6
Skutočnosť, že ochrana pozorovaná u urcázy z Helicobacter pylori je napospol udelená imunizáciou B podjednotkou ureázy a že A podjednotka nemá žiadny takýto efekt, sa neočakávala na základe našich experimentov s puriftkovanou ureázou. Preto je definovanie úloh, ktoré majú tieto dve štruktúrne podjednotky ureázy pri vyvolávaní ochrannej imunitnej odpovede, celkom nové. Ochrana vyvolaná použitím rekombinantnej B podjednotky ureázy, ktorá je enzymaticky neaktívna, dokazuje, že ako orálnu vakcínu proti infekcii baktériami rodu Helicobacter sa môže použiť netoxická forma ureázy. Ďalej z týchto výsledkov vyplýva, že rozpoznanie aktívneho miesta nie je na ochranu potrebné, pretože je veľmi nepravdepodobné, že inaktívna B podjednotka ureázy indukuje protilátky, ktoré rozpoznávajú a inhibujú katalytické miesto natívnej ureázy.
Z tabuľky 6 vyplýva, že z myší, ktoré sa usmrtili 10 týždňov po infekcii, 60 % (6 myší z 10) zvierat imunizovaných B podjednotkou ureázy a 80 % (4 myši z 5) zo zvierat imunizovaných B podjednotkou ureázy z Helicobacter pylori bolo chránených proti infekcii baktériami Helicobacter felis. Skutočnosť, že ochrana získaná imunizáciou B podjednotkou ureázy pretrváva po dlhý čas a že imunizácia A podjednotkou ureázy indukuje len ochranu, ktorá sa vytráca v porovnaní s ochranou indukovanou B podjednotkou ureázy, sa nemohla očakávať na základe našich experimentov s purifikovanou ureázou alebo z iných experimentov vykonaných skôr. Skutočnosť, že imunizácia B podjednotkou urcázy spôsobuje ochranu, definitívne dokazuje, že rozpoznanie aktívneho miesta nie je potrebné na ochrannú funkciu. Obrázok 6 zhrňuje výsledky, získané po orálnej imunizácii rekombinantnými A a B podjednotkami ureázy (opísané v tabuľkách 5 a 6).
Vynález opisuje ďalej zloženie vakcín vhodných na prevenciu infekcie baktériami rodu Helicobacter. Tieto prípravky obsahujú efektívne množstvo ureázy ako antigénu, výhodne ureázu z Helicobacter pylori alebo rekombinantnej podjednotky ureázy z Helicobacter pylori, schopné v hostiteľovi vyvolať ochrannú imunitnú odpoveď na infekciu baktériami rodu Helicobacter. Prípravky taktiež obsahujú farmaceutický akceptovateľný nosič alebo rozpúšťadlo.
Vakcíny podľa vynálezu sa podávajú v množstve, ktoré ľahko určí odborník. Vhodná dávka pre dospelých je v rozmedzí od 10 pg do 100 mg, napr. od 50 pg do 50 mg. Podobné rozmedzie dávky je možné aplikovať na deťoch. Ako nosný systém u človeka sa môžu použiť kapsuly, z ktorých sa účinná látka uvoľní v tenkom čreve, čím sa antigén ochráni pred pôsobením kyslého prostredia v žalúdku a môže taktiež obsahovať ureázu ako antigén v nerozpustnej forme lužných proteínov. Vakcína sa môže podávať ako primáme preventívne činidlo dospelým alebo deťom, ako sekundárna prevencia po úspešnej likvidácii baktérií Helicobacter pylori v infikovanom hostiteľovi alebo ako terapeutický činiteľ s cieľom v citlivom hostiteľovi indukovať imunitnú odpoveď a tým prispieť na likvidáciu infekcie baktériami Helicobacter pylori.
Vhodným mukóznym adjuvans je choleratoxin, ako už bolo spomínané. Ďalej sa môže použiť muramyl-dipeptid alebo jeho deriváty, netoxické deriváty choleratoxínu vrátane jeho B podjednotky a/alebo konjugáty alebo technikami génového inžinierstva pripravené fúzne produkty z ureázy ako antigénu a choleratoxínu alebo jeho B podjednotky. Ďalšie vhodné spôsoby podania zahrnujú biodegradovateľné mikrokapsuly alebo imunitnú odpoveď stimulujúce komplexy (ISCOM'S - Immunity Stimulating Complexes) alebo lipozómy alebo zjednodušené živé vektory, pripravené technikami génového inžinierstva, ako sú vírusy alebo baktérie, a rekombinantné (chimerické) vírusom podobné častice, napr. bluetongue. Množstvo použitého mukózneho adjuvans závisí od jeho druhu. Napríklad, keď sa ako mukózny adjuvans použije choleratoxin, je výhodné aplikovať ho v množstve od 5 pg do 50 pg, napr. 10 pg až 35 pg. Použitím mikrokapsúl závisí použité množstvo od množstva adjuvans, ktoré je obsiahnuté v matrici mikrokapsúl tak, aby sa dosiahla požadovaná dávka. Určiť toto množstvo sú schopní odborníci v tomto odbore. Vhodnými nosičmi pre vakcínu podľa vynálezu sú kapsuly potiahnuté tak, aby sa ich obsah uvoľnil v tenkom čreve a mikroguľôčky z polyaktidu-glykolidu. Vhodné rozpúšťadlá sú 0,2 N NaHCO3 a/alebo fyziologický roztok.
Drobné častice hydroxylovaného fosforečnanu vápenatého (HCp, Hydroxylated Calcium Phosphate) sú zvlášť výhodné ako nosič pre ureázu z Helicobacter pylori pri aplikácii na mukózne povrchy. Predpokladá sa, že konjugát: ureáza z Helicobacter pylori - hydroxylovaný fosforečnan vápenatý, je transportovaný epitelom, kde vyvoláva poly-Ig imunitnú odpoveď. Výhodné je, ak je hydroxylovaný fosforečnan vápenatý vo forme mikročastíc, vhodných na transport epitelom, najmä pre bunky špecializované na tento účel (M-bunky). Výhodná forma hydroxylovaného fosforečnanu vápenatého je hydroxyapatit, komerčne dostupný fosforečnan vápenatý Cai0(PO4)6(OH)2.
Komerčne dostupný hydroxyapatit napospol pozostáva zo zdanlivo viskóznych kryštálov, ktoré sú chemicky a fyzikálne analogické anorganickému hydroxyapatitu v normálnom kostnom tkanive. Strávenie hydroxyapatitu by preto malo byť bezpečné, čo dokazuje existencia výživných doplnkov, obsahujúcich vápnik a fosfor, odvodených od kostnej hmoty, ktoré sú na strávenie vyrábané. Komerčne rozšírený hydroxyapatit (výrobok CalBioChem) pozostáva z kryštálov, ktoré sa veľmi líšia svojou veľkosťou. Nie je pravdepodobné, že by sa kryštály, ktoré majú väčšiu dĺžku ako 1 pm, vstrebali pomocou M-buniek. Preto sa na použitie podľa vynálezu kryštály hydroxyapatitu drtia na malé, relatívne rovnako veľké kryštalické fragmenty, napr. sonikáciou. Výhodné je, ak sú rozmery prítomných fragmentov hydroxyapatitu v rozmedzí okolo 0,01 až 0,0 pm. Úspech fragmentácie sa môže zmerať buď elektrónovou mikroskopiou alebo rozptylom svetla, s použitím štandardných techník.
Výhodné spôsoby podania ureázy z Helicobacter pylori ako antigénu sú orálne, nazálne, rektálne alebo okuláme podania. Orálna administrácia môže dopraviť antigén na iný mukózny povrch v tráviacom trakte vrátane črevnej mukózy.
Vakcíny podľa vynálezu sa môžu podávať na mukózny povrch vo forme aerosólu, suspenzie, kapsúl a/alebo čapíkov. Spôsob podania je odborníkovi zrejmý.
Vynález ďalej opisuje pasívnu imunizäciu cicavcov vrátane človeka, proti infekcii baktériami rodu Helicobacter. Tejto sa dosiahne podaním efektívneho množstva špecifickej protilátky proti ureáze na mukózny povrch pacienta. Je výhodné použiť efektívne množstvo monoklonálnej IgA protilátky, ktorá má špecifitu proti ureáze z Helicobacter pylori.
Zatiaľ, čo sa ukazuje, že ureáza z Helicobacter pylori zohráva úlohu ako antigén vyvolávajúci ochrannú imunitu, vynález tiež opisuje použitie ureázy z Helicobacter pylori ako diagnostické reagencie na meranie imunitnej odpovede pri osobách, ktoré obdržali vakcínu založenú na ureáze, alebo slúžiacu na určenie, či je indivíduum imúnne alebo citlivé ( teda potrebuje vakcináciu). Vynález ďalej opisuje použitie ureázy a špecifických protilátok proti ureáze ku konštrukcii skúšok a diagnostických kitov na stanovenie i munity proti baktériám Helicobacíer, na odhad citlivosti na tieto baktérie a definovanie imunitnej odpovede na vakcíny.
Príklady uskutočnenia vynálezu
Vynález bude ďalej podrobnejšie opísaný v nasledujúcich príkladoch, ktoré však tento vynález nijako neobmedzujú.
A) Bakteriálne kmene
Baktérie Helicobacíer felis sa získali pánom J. Fo (oddelenie Kooperatívnej medicíny, Massachusettský technologický inštitút, MIT, Boston, USA). Helicobacíerpylori sa izolovali od pacientov s vredovým ochorením (CHUV, Lausanne, Švajčiarsko).
B) Bakteriálne kultúry
Kvapalná kultúra
Baktérie sa kultivujú v kvapalnom médiu BHI (BioMerieux), ktoré obsahuje 0,25 % kvasničného extraktu (Difco) a 10 % fetálneho teľacieho séra (Inotech), ktoré sa doplnilo 0,4 % doplnku na selektívny rast baktérií Campylobacter (Oxoid). Baktérie sa inkubujú cez noc za mikroaerofilných podmienok pri 37 °C a potom sa trepú pri 37 °C počas 2 až 3 dní.
Kultúry na agarózových platniach
Baktérie sa kultivujú na agarózových platniach, ktoré obsahujú médium BHI, 0,25 % kvasničného extraktu a 5 % ovčej krvi za mikroaerofilných podmienok pri teplote 37 °C počas troch dní.
Kvantifikácia
Množstvo baktérií sa zistí meraním absorbancie roztoku BHI pri vlnovej dĺžke 660 nm (1 jednotka absorbancie zodpovedá 108 baktériám).
C) Príprava sonikátov
Helicobacíer pylori sa zhromaždili z 31 platní s agarom a krvou a previedli sa do 0,15 M NaCl. Potom sa centrifúgujú 5 minút pri 1400 g a 4 °C. Sediment sa potom resuspenduje v 3 ml NaCl a sonikuje 4 minúty. Množstvo proteínov sa zistilo pomocou Bradfordovho testu (BioRad Kid podľa návodu dodávateľa).
D) Konjugácia imunogénu s hydroxyapatitom
Imunogén (ureáza alebo jej podjednotka) sa inkubuje jednu hodinu s hydroxyapatitom pri 4 °C. 1,0 mg hydroxyapatitu sa použije na 30 pg imunogénu pre jednu myš. Na koniec inkubácie sa pridá 10 pg choleratoxínu do konečného objemu 200 pl PBS.
Príklad 1
A) Extrakcia
Helicobacíer pylori z 30 agarových platní s krvou sa prevedú do 0,15 M NaCl na ľade. Roztok sa 5 minút centrifiguje pri 1400 xg a 4 °C. Sediment sa resuspenduje v 20 ml H2O a vortexuje 45 sekúnd (na maximálnu rýchlosť). Extrakt sa potom 20 minút centrifuguje pri 6700 g a 4 °C. Supematant sa odstráni a stanoví sa množstvo proteínov podľa uvedenej kvantifikácie a precipituje 70% síranom amónnym.
B) Purifikácia ureázy
Roztok sa podrobí chromatografii na kolóne naplnenej scpharózou CL-6B (Pharmácia) s PBS tlmivým roztokom, ktorý sa používa ako mobilná fáza. 22 frakcií, ktoré majú ureázovú aktivitu, sa zhromaždí a dialyzuje cez noc pri 4 °C proti 3 1 PEB (20 nM fosforečnanový tlmivý roztok, pH = 7) a potom sa podrobia chromatografii na stĺpci naplnenom Q-Sepharózou na rýchly prietok (Pharmácia) s PEB ako mobilnou fázou. Frakcie sa eluujú gradientom NaCl s koncentráciou 0 až 500 nM. Desať zo zhromaždených frakcií so silnou ureázovou aktivitou sa individuálne podrobia SDS gélovej elektroforéze, po ktorej nasleduje Coomasie farbenie. Šesť frakcií, ktoré obsahovali dva oddelené prúžky, zodpovedajúcej molekulárnej hmotnosti 63 kDa a 28 kDa, sa spojili a považovali sa za purifikovanú ureázu.
Príklad 2 (pozri tiež časť B)
Myšiam, ktoré sa používajú v imunizačných štúdiách, sa najprv aplikuje ľahka anestézia éterom a potom sa pristúpi k žalúdočnej imunizácii. Sonikát alebo purifikovaná ureáza, hydroxyapatit a choleratoxín sa suspendujú v PBS a 200 pl tejto zmesi sa dopraví do žalúdku príslušnej myši pomocou polyetylénovej hadičky, pripojenej na injekčnú striekačku. Túto procedúru uvádzame ako orálnu imunizáciu.
Zhotovili sa tri imunizačné protokoly, ktoré sú opísané ďalej.
Protokol BI - Vakcinácia purifikovanou ureázou
Samičky šesť týždňov starých myší BALB/c (20 kusov) sa orálne imunizovali 30 pg purifikovanej ureázy z Helicobacter pylori a 1 mg hydroxyapatitu a 10 pg choleratoxínu v dňoch 0, 7, 14 a 21. Desať myší sa potom vystavilo pôsobeniu 5.107 a 10s Helicobacíer felis z kvapalnej kultúry, a to v dňoch 28 a 30.
Protokol B2 - Vakcinácia sonikátom z baktérií rodu Helicobacíer
Samičky šesť týždňov starých myší BALB/c (20 kusov) sa orálne imunizovali 2 mg roztoku sonikátu z Helicobacíer pylori v dňoch 0, 7, 14 a 21. Desať myší sa potom vystavilo pôsobeniu 5:107 a 108 Helicobacíer felis z kvapalnej kultúry, a to v dňoch 28 a 30.
Protokol B3 - Kontrola
Samičky šesť týždňov starých myší BALB/c (20 kusov) sa orálne imunizovali 1 mg hydroxyapatitu a 10 pg choleratoxínu v dňoch 0, 7, 14 a 21. Desať myší sa potom vystavilo pôsobeniu 5.107 a 108 Helicobacíer felis z kvapalnej kultúry, a to v dňoch 28 a 30.
Na 35. deň sa všetky myši usmrtili a odobrali sa biopsie zo žalúdka, črevné sekréty a krv.
Ochrana a vyhodnotenie výsledkov
S cieľom zhodnotiť výslednú ochranu sa biopsie testovali a stanovila sa pri nich ureázová aktivita pomocou testu Jatrox HP (Rohm Pharma), pričom sa postupovalo podľa inštrukcii dodávateľa. Množstvo ureázy sa kvantifikovalo spektrofotometrickým meraním pri vlnovej dĺžke 550 nm. Biopsie sa tiež kultivovali v prítomnosti Helicobacíer felis a výsledok sa stanovil Gramovým farbením. Biopsie zo žalúdočnej dutiny sa homogenizovali a riedili (1 : 10 a 1 : 1000) v 0,15 M NaCl a potom sa umiestnili na platne s agarom obohateným krvou a inkubovali za mikroaerofilných podmienok pri 37 °C počas 4 až 10 dní.
SK 280619 Β6
ELISA
Stanovenie titru protilátok v črevných sekrétoch a v krvi sa uskutočňuje pomocou ELISA analýzy. ELISA analýza sa uskutočňuje nasledovne. Polystyrénové dosky (96 jamkové) sa potiahnu 1 pg na jamku purifikovanej ureázy. Poťahovanie sa uskutočňuje pri 37 °C a trvá dve hodiny. Nešpecifické väzobné miesta sa blokujú 5% práškovým mliekom v PBS tlmivom roztoku s 0,1 % Tweenu pri 37 °C počas 30 minút. Dosky sa potom raz premyjú PBS s 0,1 % Tweenu. Krvné vzorky sa testujú v zriedení 1 : 100 a črevné sekréty 1 : 1. Na antigénom potiahnuté dosky sa pridá do každej jamky 100 μΐ vzorky. Po dvoch hodinách inkubácie sa dosky trikrát premyjú tlmivým roztokom s 0,1 % Tweenu. Celkové anti-myši biotinylované kozími protilátkami a anti-myšou IgA, IgB a IgM biotinylovanej protilátky (Amersham) sa pridajú (100 μΐ) v zriedení 1 : 500 okrem IgA, ktoré sa pridajú v riedení 1 : 250, a inkubujú 1 hodinu pri 37 °C. Dosky sa potom trikrát premyjú tlmivým roztokom PBS s 0,1 % Tweenu a potom sa pridá 100 μΐ konjugátu streptavidín-chrenová peroxidáza v zriedení 1 : 1000 v tlmivom roztoku PBS s 0,1 % Tweenu. Dosky sa inkubujú 30 minút pri 37 °C. Dosky sa potom trikrát premyjú a pridá sa 50 μΐ roztoku o-fenyl-diamínu v citrátovom tlmivom roztoku (1 : 50, pH = 5,0) s 1 μΐ/ml 30% H2O2. Dosky sa 20 minút inkubujú pri teplote miestnosti. V každej jamke sa zmeria absorbancia pri vlnovej dĺžke 495 nm.
Príklad 3 (pozri tiež časť C)
Myšiam, ktoré sa používajú v imunizačných štúdiách, sa najprv aplikuje ľahká anestézia éterom a potom sa pristúpi k žalúdočnej imunizácii. Potom sa suspenduje 30 pg rekombinantnej A a B podjednotky ureázy Helicobacter pylori, ktorá sa vyprodukovala v E. coli, viazanej na hydroxyapatit, a doplnenej choleratoxínom v PBS. 200 μΐ tejto zmesi sa dopraví do žalúdku príslušnej myši pomocou polyetylénovej hadičky pripojené injekčnou striekačkou. O tejto procedúre sa zmieňujeme ako o orálnej imunizácii.
Zhotovili sa tri imunizačné protokoly, ktoré sú opísané ďalej.
Protokol Cl - Vakcinácia rekombinantnej A podjednotky ureázy
Samičky šesť týždňov starých myší BALB/c (10 kusov) sa orálne imunizovali 30 pg purifikovancj rekombinantnej A podjednotky ureázy z Helicobacter pylori a 1 mg hydroxyapatitu a 10 pg choleratoxínu v dňoch 0, 8, 14 a 21. Desať myší sa v dňoch 32, 34 a 36 vystavilo pôsobeniu 108 Helicobacter felis z kvapalnej kultúry.
Protokol C2 - Vakcinácia rekombinantnou B podjednotkou ureázy
Samičky šesť týždňov starých myši BALB/c (10 kusov) sa orálne imunizovali 30 pg rekombinantnou B podjednotkou ureázy z Helicobacter pylori a 1 mg hydroxyapatitu a 10 pg cholera- toxínu v dňoch 0, 8, 14 a 21. Desať myší sa v dňoch 32, 34 a 36 vystavilo pôsobeniu 108 Helicobacter felis z kvapalnej kultúry.
Protokol C3 - Kontrola
Samičky šesť týždňov starých myší BALB/c (10 kusov) sa orálne imunizovali 1 mg hydroxyapatitu a 10 pg choleratoxínu v dňoch 0, 8, 14 a 21. Desať myší sa v dňoch 32, 34 a 36 vystavilo pôsobeniu 108 Helicobacter felis z kvapalnej kultúry. Na 42 alebo 106 deň sa myši usmrtili a odobrali sa niekoľkonásobné biopsie zo žalúdka.
Ochrana a vyhodnotenie výsledkov
S cieľom zhodnotiť výslednú ochranu sa biopsie zo žalúdočnej dutiny a zo žalúdočnej hmoty testovali stanovením ureázovej aktivity pomocou testu Jatrox HP (Rohm Pharma), pričom sa postupovalo podľa inštrukcií dodávateľa. Množstvo ureázy sa kvantifikovalo spektrofotometrickým meraním pri vlnovej dĺžke 550 nm. Výsledná hodnota absorbancie, platná pre jednu myš, sa získala ako súčet hodnôt nameraných pre dutinu a korpus.
Claims (23)
1. Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeutickej imunitnej odpovede na infekciu vyvolanú baktériami Helicobacter v cicavcovi-hostiteľovi určený najmä na aplikáciu na mukózny povrch tohto cicavca, vyznačujúci sa tým, že pozostáva z imunologický účinného množstva polyaminokyselinového prípravku, ktorý obsahuje dostačujúci počet epitopov endogénnej ureázy baktérie Helicobacter na vyvolanie ochrannej imunitnej odpovede na infekciu uvedenou baktériou.
2. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje intaktnú ureázu, získanú purifikáciou z niektorého organizmu, so 70 až 95 % homológiou s endogénnou ureázou z baktérie Helicobacter.
3. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje peptidy so 70 až 95 % homológiou s enzymaticky inaktívnymi časťami aminokyselinovej sekvencie ureázy z baktérie Helicobacter.
4. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje peptidy, ktoré nie sú homológne s aminokyselinovou sekvenciou ureázy, ale ktoré majú epitopy schopné na krížovú reakciu s ureázou z baktérie Helicobacter.
5. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje ureázu z Helicobacter pylori.
6. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje aspoň podjednotku ureázy z baktérie Helicobacter, ktorá má alebo nemá enzymatickú aktivitu.
7. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje anti-idiotypické protilátky k ureáze z baktérie Helicobacter.
8. Prostriedok podľa nároku 1, vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje peptidy, imunologický krížovo reagujúce s ureázou z baktérie Helicobacter.
9. Prostriedok podľa nárokov 3 a 8, vyznačujúci sa tým, že peptidy sú získané chemickou syntézou.
10. Prostriedok podľa nároku 1,vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje ureázové antigény, vyprodukované pomocou techník rekombinantnej DNA, majúce 70 až 95 % homológiu s antigénmi endogénnej ureázy z baktérie Helicobacter.
11. Prostriedok podľa nároku 1,vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje subgénne fragmenty ureázy produkované rekombinantnými technikami, majúce 70 až 95 % homológiu s podjednotkami endogénnej ureázy z baktérie Helicobacter.
12. Prostriedok podľa nároku 11,vyznačuj úci sa t ý m , že obsahuje subgénne fragmenty ureázy, produkované ako genetické fuzne proteíny.
13. Prostriedok podľa nároku 12, vyznačuj úci sa t ý m , že fúzne proteíny obsahujú podjednotky choleratoxínu.
14. Prostriedok podľa nároku 1,vyznačujúci sa t ý m , že obsahuje mukózne adjuvans.
15. Prostriedok podľa nároku 14, vyznačuj úci sa t ý m , že mukóznym adjuvans je choleratoxín.
16. Prostriedok podľa nároku 1,vyznačujúci sa t ý m , že ďalej obsahuje hydroxylovaný fosforečnan vápenatým.
17. Prostriedok podľa nároku 16, vyznačujúci sa t ý m , žc hydroxylovaným fosforečnanom vápenatým je hydroxyapatit.
18. Prostriedok podľa nároku 17, vyznačuj úci sa t ý m , že hydroxyapatit je vo forme častíc vhodných na transport epitelom.
19. Vakcína na vyvolanie ochrannej alebo terapeutickej imunitnej odpovede na infekciu vyvolanú baktériami Helicobacter v cicavcovi, vyznačujúca sa tým, že obsahuje polyaminokyselinový prípravok, majúci epitopy endogénnej ureázy z baktérie Helicobacter na farmaceutický akceptovateľnom nosiči alebo riedidle.
20. Vakcína podľa nároku 19, vyznačujúca sa t ý m , že ďalej obsahuje mukózne adjuvans.
21. Prípravok na poskytnutie pasívnej ochrany cicavcovi pred infekciou vyvolanou baktériami Helicobacter, vhodný najmä na aplikáciu na mukózny povrch tohto cicavca samostatne alebo po aplikácii vakcíny podľa nároku 19 alebo 20, vyznačujúci sa tým, že pozostáva z imunologický účinného množstva IgA protilátky špecifickej k ureáze, pričom táto protilátka sa vyprodukovala v nejakom cicavcovi hostiteľovi imunizáciou ureázou, ktorá vyvoláva ochrannú imunitnú odpoveď na baktérie Helicobacter.
22. Prípravok podľa nároku 21,vyznačujúci sa t ý m , že protilátkou je IgA protilátka špecifická k ureáze z Helicobacter pylori.
23. Spôsob vyhodnotenia endogénnej imunitnej odpovede cicavca infikovaného baktériami Helicobacter, vyznačujúci sa tým, že sa vo vzorke odobratej z gastrointestinálneho traktu tohto cicavca stanoví prítomnosť protilátky, reagujúcej s epitopmi endogénnej ureázy tejto baktérie Helicobacter.
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US97099692A | 1992-11-03 | 1992-11-03 | |
| US08/085,938 US5972336A (en) | 1992-11-03 | 1993-07-06 | Urease-based vaccine against helicobacter infection |
| PCT/EP1993/003059 WO1994009823A1 (en) | 1992-11-03 | 1993-11-02 | Urease-based vaccine against helicobacter infection |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SK79394A3 SK79394A3 (en) | 1996-09-04 |
| SK280619B6 true SK280619B6 (sk) | 2000-05-16 |
Family
ID=25517797
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SK793-94A SK280619B6 (sk) | 1992-11-03 | 1993-11-02 | Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeuti |
Country Status (29)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5972336A (sk) |
| EP (2) | EP0625053B1 (sk) |
| JP (1) | JPH07503255A (sk) |
| KR (1) | KR100287424B1 (sk) |
| CN (1) | CN1111429C (sk) |
| AT (1) | ATE217196T1 (sk) |
| AU (2) | AU678195C (sk) |
| BR (1) | BR9305711A (sk) |
| CA (1) | CA2127283A1 (sk) |
| CZ (1) | CZ284416B6 (sk) |
| DE (1) | DE69331901T2 (sk) |
| DK (1) | DK0625053T3 (sk) |
| ES (1) | ES2176232T3 (sk) |
| FI (1) | FI112032B (sk) |
| GE (1) | GEP20012429B (sk) |
| HU (1) | HU219760B (sk) |
| IL (1) | IL107474A (sk) |
| MX (1) | MX9306841A (sk) |
| NO (1) | NO942490L (sk) |
| NZ (2) | NZ258118A (sk) |
| OA (1) | OA10087A (sk) |
| PL (1) | PL174448B1 (sk) |
| PT (1) | PT625053E (sk) |
| RO (1) | RO114870B1 (sk) |
| RU (1) | RU2125891C1 (sk) |
| SG (1) | SG70978A1 (sk) |
| SK (1) | SK280619B6 (sk) |
| WO (1) | WO1994009823A1 (sk) |
| ZA (1) | ZA938203B (sk) |
Families Citing this family (51)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2682122B1 (fr) * | 1991-10-03 | 1995-06-09 | Pasteur Institut | Nouveaux genes d'helicobacter pylori. leur utilisation pour la preparation de souches recombinantes de h. pylori. |
| US6290962B1 (en) * | 1992-11-03 | 2001-09-18 | Oravax, Inc. | Urease-based vaccine and treatment for helicobacter infection |
| US6258359B1 (en) * | 1993-05-19 | 2001-07-10 | Institut Pasteur | Immunogenic compositions against helicobacter infection, polypeptides for use in the compositions, and nucleic acid sequences encoding said polypeptides |
| WO1995014093A1 (en) | 1993-05-19 | 1995-05-26 | Institut Pasteur | Immunogenic compositions against helicobacter infection, polypeptides for use in the compositions and nucleic acid sequences encoding said polypeptides |
| US6406703B1 (en) | 1993-07-27 | 2002-06-18 | Csl Limited | Treatment of H. pylori associated gastroduodenal disease |
| NZ314585A (en) * | 1993-07-27 | 2000-08-25 | Univ New South Wales | Method of treating H. Pylori associated gastroduodenal disease |
| AU702878B2 (en) * | 1994-06-08 | 1999-03-11 | Csl Limited | Treatment and prevention of helicobacter infection |
| AUPM612494A0 (en) | 1994-06-08 | 1994-06-30 | Csl Limited | Treatment or prevention of helicobacter infection |
| GB2303855B (en) * | 1994-07-01 | 1998-10-28 | Rican Limited | Helicobacter pylori antigenic protein preparation and immunoassays |
| AU723063B2 (en) * | 1995-04-28 | 2000-08-17 | Oravax, Inc | Multimeric, recombinant urease vaccine |
| US5837240A (en) * | 1995-04-28 | 1998-11-17 | Oravax-Merieux Co. | Multimeric, recombinant urease vaccine |
| CA2227871A1 (en) * | 1995-07-26 | 1997-02-13 | Maxim Pharmaceuticals, Inc. | Mucosal delivery of polynucleotides |
| GB2307987A (en) * | 1995-12-06 | 1997-06-11 | Univ Manchester | Epitopes of the urease of Helicobacter pylori as dignostic agents; pharmaceuticals comprising such epitopes or the antibodies thereto |
| US6248551B1 (en) * | 1997-03-28 | 2001-06-19 | Institut Pasteur | Helicobacter aliphatic amidase AmiE polypeptides, and DNA sequences encoding those polypeptides |
| US20020026035A1 (en) * | 1997-04-01 | 2002-02-28 | Harold Kleanthous | Helicobacter ghpo 1360 and ghpo 750 polypeptides and corresponding polynucleotide molecules |
| AU7537598A (en) * | 1997-04-30 | 1998-11-24 | Pasteur Merieux Serums Et Vaccins | Dna based anti-(helicobacter) vaccine composition |
| US20030158396A1 (en) * | 1997-07-29 | 2003-08-21 | Harold Kleanthous | Identification of polynucleotides encoding novel helicobacter polypeptides in the helicobacter genome |
| US5985631A (en) * | 1997-09-12 | 1999-11-16 | Oravax-Merieux Co. | Method for preventing the activation of inactive, recombinant Helicobacter pylori apourease |
| TWI239847B (en) * | 1997-12-02 | 2005-09-21 | Elan Pharm Inc | N-terminal fragment of Abeta peptide and an adjuvant for preventing and treating amyloidogenic disease |
| US7790856B2 (en) | 1998-04-07 | 2010-09-07 | Janssen Alzheimer Immunotherapy | Humanized antibodies that recognize beta amyloid peptide |
| US7964192B1 (en) | 1997-12-02 | 2011-06-21 | Janssen Alzheimer Immunotherapy | Prevention and treatment of amyloidgenic disease |
| US20080050367A1 (en) | 1998-04-07 | 2008-02-28 | Guriq Basi | Humanized antibodies that recognize beta amyloid peptide |
| US20020151462A1 (en) * | 1998-02-19 | 2002-10-17 | Ling Lissolo | Helicobacter pylori membrane proteins |
| GB9807721D0 (en) * | 1998-04-08 | 1998-06-10 | Chiron Spa | Antigen |
| NZ509127A (en) | 1998-06-19 | 2004-01-30 | Merieux Oravax | Use of LT (E. coli) and CT (cholera toxin) for inducing immune responses against helicobacter infection |
| US6190667B1 (en) * | 1998-06-30 | 2001-02-20 | Institut Pasteur | Methods of inhibiting Helicobacter pylori |
| WO2000003730A1 (en) * | 1998-07-16 | 2000-01-27 | Cheil Jedang Corporation | Urease based vaccine against helicobacter infection |
| CN1338947B (zh) * | 1999-02-05 | 2012-11-14 | 爱尔开-阿贝优公司 | 粘膜递送系统 |
| US7384640B1 (en) * | 1999-09-30 | 2008-06-10 | Wyeth Holdings Corporation | Mutant cholera holotoxin as an adjuvant |
| DK2116257T3 (da) | 2000-08-09 | 2013-02-04 | Alk Abello As | Parenterale vaccineformuleringer og anvendelser deraf |
| US20020107368A1 (en) * | 2000-12-07 | 2002-08-08 | Jing-Hui Tian | Helicobacter proteins, gene sequences and uses thereof |
| AUPR524101A0 (en) * | 2001-05-25 | 2001-06-21 | Council Of The Queensland Institute Of Medical Research, The | Antigen targeting |
| CA2449670A1 (en) * | 2001-06-07 | 2002-12-12 | Wyeth Holdings Corporation | Mutant forms of cholera holotoxin as an adjuvant |
| AU2002346249B2 (en) * | 2001-06-07 | 2007-03-15 | The Regents Of The University Of Colorado | Mutant Forms of Cholera Holotoxin as an Adjuvant |
| MY139983A (en) | 2002-03-12 | 2009-11-30 | Janssen Alzheimer Immunotherap | Humanized antibodies that recognize beta amyloid peptide |
| WO2006066089A1 (en) | 2004-12-15 | 2006-06-22 | Neuralab Limited | Humanized amyloid beta antibodies for use in improving cognition |
| WO2009017467A1 (en) | 2007-07-27 | 2009-02-05 | Elan Pharma International Limited | Treatment of amyloidogenic diseases |
| US8784810B2 (en) | 2006-04-18 | 2014-07-22 | Janssen Alzheimer Immunotherapy | Treatment of amyloidogenic diseases |
| CN100460014C (zh) * | 2006-07-20 | 2009-02-11 | 中国人民解放军第三军医大学 | 基于尿素酶b亚单位活性片段的幽门螺杆菌疫苗及其制备方法 |
| CN101611143B (zh) * | 2006-11-10 | 2015-01-14 | 翁德克控股有限公司 | 将肽递送入胃粘膜的方法和装置 |
| US8003097B2 (en) | 2007-04-18 | 2011-08-23 | Janssen Alzheimer Immunotherapy | Treatment of cerebral amyloid angiopathy |
| JO3076B1 (ar) | 2007-10-17 | 2017-03-15 | Janssen Alzheimer Immunotherap | نظم العلاج المناعي المعتمد على حالة apoe |
| KR100982489B1 (ko) * | 2007-12-17 | 2010-09-15 | 대구한의대학교산학협력단 | 헬리코박터 파일로리로부터 유래된 항원을 이용하여헬리코박터 파일로리 특이 항체 생산을 위한 백신을제조하는 방법 |
| US9067981B1 (en) | 2008-10-30 | 2015-06-30 | Janssen Sciences Ireland Uc | Hybrid amyloid-beta antibodies |
| US9511151B2 (en) | 2010-11-12 | 2016-12-06 | Uti Limited Partnership | Compositions and methods for the prevention and treatment of cancer |
| US10988516B2 (en) | 2012-03-26 | 2021-04-27 | Uti Limited Partnership | Methods and compositions for treating inflammation |
| PL218700B1 (pl) | 2012-03-29 | 2015-01-30 | Gdański Univ Medyczny | Doustna szczepionka zawierająca przetrwalniki Bacillus subtilis oraz jej zastosowanie do immunizacji przeciwko Helicobacter pylori |
| US9603948B2 (en) | 2012-10-11 | 2017-03-28 | Uti Limited Partnership | Methods and compositions for treating multiple sclerosis and related disorders |
| EP2837939A1 (en) * | 2013-08-13 | 2015-02-18 | Technische Universität München | Method for the detection of H.pylori infection |
| EP3065771B1 (en) | 2013-11-04 | 2019-03-20 | UTI Limited Partnership | Methods and compositions for sustained immunotherapy |
| CA2984485A1 (en) | 2015-05-06 | 2016-12-15 | Uti Limited Partnership | Nanoparticle compositions for sustained therapy |
Family Cites Families (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4879213A (en) * | 1986-12-05 | 1989-11-07 | Scripps Clinic And Research Foundation | Synthetic polypeptides and antibodies related to Epstein-Barr virus early antigen-diffuse |
| US5268276A (en) * | 1988-09-16 | 1993-12-07 | Jan Holmgren | Recombinant systems for expression of cholera B-sub-unit with the aid of foreign promoters and/or leader peptides |
| FR2637612B1 (fr) * | 1988-10-06 | 1993-09-10 | Pasteur Institut | Sequences de nucleotides codant pour une proteine a activite ureasique |
| US5443832A (en) * | 1990-04-16 | 1995-08-22 | Institut Swisse De Recherches Experimentales Sur Le Cancer | Hydroxyapatite-antigen conjugates and methods for generating a poly-Ig immune response |
| JPH04169539A (ja) * | 1990-11-01 | 1992-06-17 | Imuno Japan:Kk | 消化器疾患治療・予防剤およびその製造方法 |
| CA2109088A1 (en) * | 1991-04-26 | 1992-10-27 | Emanuel Calenoff | Methods to detect and treat diseases caused by bacterial allergens |
| FR2682122B1 (fr) * | 1991-10-03 | 1995-06-09 | Pasteur Institut | Nouveaux genes d'helicobacter pylori. leur utilisation pour la preparation de souches recombinantes de h. pylori. |
| US5859219A (en) * | 1992-02-26 | 1999-01-12 | Vanderbilt University | Purified vacuolating toxin from Helicobacter pylori and methods to use same |
| WO1993018150A1 (en) * | 1992-03-02 | 1993-09-16 | Biocine S.P.A. | Helicobacter pylori proteins useful for vaccines and diagnostics |
| MX9301706A (es) * | 1992-04-13 | 1994-05-31 | Oravax Inc | Composicion de vacuna para el tratamiento de la infeccion por helicobacter. |
| US5733740A (en) * | 1992-10-13 | 1998-03-31 | Vanderbilt University | Taga gene and methods for detecting predisposition to peptic ulceration and gastric carcinoma |
| US6258359B1 (en) * | 1993-05-19 | 2001-07-10 | Institut Pasteur | Immunogenic compositions against helicobacter infection, polypeptides for use in the compositions, and nucleic acid sequences encoding said polypeptides |
| US5681736A (en) * | 1994-10-05 | 1997-10-28 | Antex Biologics, Inc. | Methods for producing enhanced antigenic shigella bacteria and vaccines comprising same |
| US5837240A (en) * | 1995-04-28 | 1998-11-17 | Oravax-Merieux Co. | Multimeric, recombinant urease vaccine |
-
1993
- 1993-07-06 US US08/085,938 patent/US5972336A/en not_active Expired - Fee Related
- 1993-11-02 NZ NZ258118A patent/NZ258118A/en unknown
- 1993-11-02 KR KR1019940702314A patent/KR100287424B1/ko not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 WO PCT/EP1993/003059 patent/WO1994009823A1/en active IP Right Grant
- 1993-11-02 DE DE69331901T patent/DE69331901T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1993-11-02 PL PL93304419A patent/PL174448B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 GE GEAP19932678A patent/GEP20012429B/en unknown
- 1993-11-02 IL IL10747493A patent/IL107474A/en not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 EP EP94900794A patent/EP0625053B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-11-02 CA CA002127283A patent/CA2127283A1/en not_active Abandoned
- 1993-11-02 RU RU94037239A patent/RU2125891C1/ru not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 RO RO94-01132A patent/RO114870B1/ro unknown
- 1993-11-02 HU HU9402261A patent/HU219760B/hu not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 ES ES94900794T patent/ES2176232T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1993-11-02 AU AU55619/94A patent/AU678195C/en not_active Withdrawn - After Issue
- 1993-11-02 AT AT94900794T patent/ATE217196T1/de not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 BR BR9305711A patent/BR9305711A/pt not_active Application Discontinuation
- 1993-11-02 CZ CZ941609A patent/CZ284416B6/cs not_active IP Right Cessation
- 1993-11-02 SG SG1996004759A patent/SG70978A1/en unknown
- 1993-11-02 NZ NZ299149A patent/NZ299149A/en unknown
- 1993-11-02 DK DK94900794T patent/DK0625053T3/da active
- 1993-11-02 SK SK793-94A patent/SK280619B6/sk unknown
- 1993-11-02 JP JP6510719A patent/JPH07503255A/ja active Pending
- 1993-11-02 PT PT94900794T patent/PT625053E/pt unknown
- 1993-11-02 EP EP01122576A patent/EP1170016A3/en not_active Withdrawn
- 1993-11-03 ZA ZA938203A patent/ZA938203B/xx unknown
- 1993-11-03 MX MX9306841A patent/MX9306841A/es not_active IP Right Cessation
- 1993-11-03 CN CN93112675A patent/CN1111429C/zh not_active Expired - Fee Related
-
1994
- 1994-07-01 OA OA60532A patent/OA10087A/en unknown
- 1994-07-01 NO NO942490A patent/NO942490L/no not_active Application Discontinuation
- 1994-07-01 FI FI943171A patent/FI112032B/fi not_active IP Right Cessation
-
2003
- 2003-12-18 AU AU2003270987A patent/AU2003270987A1/en not_active Abandoned
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| SK280619B6 (sk) | Prostriedok na vyvolanie ochrannej alebo terapeuti | |
| US6290962B1 (en) | Urease-based vaccine and treatment for helicobacter infection | |
| Czinn et al. | Protection of germ-free mice from infection by Helicobacter felis after active oral or passive IgA immunization | |
| CA2111189A1 (en) | Oral treatment of helicobacter infection | |
| JPH11504633A (ja) | 多量体の組換えウレアーゼワクチン | |
| KR100251391B1 (ko) | 헬리코박터 감염에 대한 우레아제 기재 백신 | |
| WO2000003730A1 (en) | Urease based vaccine against helicobacter infection | |
| KR100207289B1 (ko) | 헬리코박터 파이로리 유래의 항원단백질을 함유하는 리포좀 |