SK278317B6 - Activation method of by genetic technology gained heterologous proteins with content of disulfidic bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms - Google Patents
Activation method of by genetic technology gained heterologous proteins with content of disulfidic bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms Download PDFInfo
- Publication number
- SK278317B6 SK278317B6 SK7526-86A SK752686A SK278317B6 SK 278317 B6 SK278317 B6 SK 278317B6 SK 752686 A SK752686 A SK 752686A SK 278317 B6 SK278317 B6 SK 278317B6
- Authority
- SK
- Slovakia
- Prior art keywords
- activation
- concentration
- mmol
- mol
- carried out
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/64—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
- C12N9/6421—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
- C12N9/6424—Serine endopeptidases (3.4.21)
- C12N9/6456—Plasminogen activators
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/64—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
- C12N9/6421—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
- C12N9/6424—Serine endopeptidases (3.4.21)
- C12N9/6456—Plasminogen activators
- C12N9/6459—Plasminogen activators t-plasminogen activator (3.4.21.68), i.e. tPA
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/107—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides
- C07K1/113—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure
- C07K1/1133—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure by redox-reactions involving cystein/cystin side chains
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/52—Cytokines; Lymphokines; Interferons
- C07K14/555—Interferons [IFN]
- C07K14/565—IFN-beta
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y304/00—Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
- C12Y304/21—Serine endopeptidases (3.4.21)
- C12Y304/21069—Protein C activated (3.4.21.69)
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Mechanical Treatment Of Semiconductor (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
- Lubricants (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Abstract
Description
Oblasť technikyTechnical field
Vynález sa týka spôsobu aktivácie genetickou technológiou získaných, heterológnych bielkovín s obsahom disulfidových mostíkov eukaryotického pôvodu po ex- 5 presii v prokaryotických organizmoch.The invention relates to a method of activation by genetically engineered heterologous proteins containing disulphide bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms.
Doterajší stav technikyBACKGROUND OF THE INVENTION
Pri expresii heterológnych bielkovín v prokarvotických organizmoch vytvárajú tieto bielkoviny v cieľových bunkách často inaktívne, ťažko rozpustné agregáty, tzv. refraktívne telieska (refractile bodics), ktoré sú okrem toho znečistené bielkovinami, vlastnými cieľovým bun- 15 kám. Je pravdepodobné, že tvorba týchto teliesok je dôsledkom vysokej koncentrácie bielkovín v bunke pri expresii. Je známe, že pri tvorbe veľkých množstiev enzýmov v bunke dôjde v dôsledku tohto stavu v bunke k zhlukovaniu enzýmov na nerozpustné, vysokomolekulár- 20 ne a z väčšej časti neúčinné častice. Skôr ako je možné tieto bielkoviny použiť napríklad na liečbu, je potrebné ich čistiť a premeniť z neúčinnej formy na formu účinnú.When expressing heterologous proteins in procarvotic organisms, these proteins often form inactive, sparingly soluble aggregates in the target cells. refractile bodics, which are, in addition, contaminated with proteins, inherent in the target cells. It is likely that the formation of these bodies is due to the high protein concentration in the cell when expressed. It is known that when large amounts of enzymes are formed in a cell, this condition in the cell results in the aggregation of the enzymes into insoluble, high molecular weight, and largely inactive particles. Before these proteins can be used, for example, for treatment, they need to be purified and converted from an inactive form to an active form.
Podľa známych postupov je možné dosiahnuť akti- 25 váciu rôznym spôsobom v niekoľkých stupňoch, ako bolo opísané napríklad v publikáciách B. R. Jaenicke, FEBS Federation of European Biochemical Societies, zv. 52, (1979), 187 až 198, R. Rudolph, Biochemistry 18,(1979), 5572 až 5575. 30According to known procedures, activation can be achieved in different ways in several stages, as described, for example, in B. R. Jaenicke, FEBS Federation of European Biochemical Societies, Vol. 52, (1979), 187-198; R. Rudolph, Biochemistry 18, (1979), 5572-5575.
V prvom stupni sa dosiahne rozpustnosť bielkovín pridaním silného denaturovaného prostriedku, napríklad guanidínhydrochloridu alebo močoviny vo vysokej koncentrácii, alebo pridaním silne kyslých činidiel, napríklad zmesi glycínu a kyseliny fosforečnej. Ako ďalšie 35 pomocné látky prichádzajú do úvahy reakčné činidlá, ktoré obsahujú skupiny SH-, napríklad ditioerytritol alebo EDTA, najmä pri renaturácii LDH. Hneď ako je bielkovina znečistená bielkovinami cieľových buniek, je nutné vykonať v nasledujúcom stupni čistenie bežným 40 spôsobom, napríklad chromatografiou na géli alebo na ionomeniči. Potom sa získaný materiál silne zriedi, čím sa zníži koncentrácia denaturačného činidla. Pri použití guanidínhydrochloridu je nutné vzorku zriediť až na hodnotu nižšiu než 0,5 mol/1. V prípade enzýmov s voľ- 45 nými SH-skupinami je účelné pridať činidlo, ktoré tieto skupiny chráni, ako bolo opísané napríklad v publikácii B. R. Jaenicke, Joumal Polymér Science, zv. C 16 (1967), 2143 až 2160.In the first step, the solubility of the proteins is achieved by adding a strong denatured agent, for example guanidine hydrochloride or urea in high concentration, or by adding strongly acidic agents, for example a mixture of glycine and phosphoric acid. Possible auxiliaries are reagents which contain SH- groups, for example dithioerythritol or EDTA, in particular in the renaturation of LDH. Once the protein is contaminated with the target cell proteins, it is necessary to purify in the next step by conventional means, for example by gel or ion exchange chromatography. Thereafter, the material obtained is strongly diluted to reduce the concentration of the denaturing agent. When using guanidine hydrochloride, the sample should be diluted to less than 0.5 mol / l. In the case of enzymes having free SH-groups, it is expedient to add an agent protecting these groups, as described, for example, in B. R. Jaenicke, Joumal Polymer Science, Vol. C 16 (1967), 2143-2160.
V európskej patentovej prihláške č. 114 506 je opi- 50 saný postup na izoláciu, čistenie a aktiváciu heterológ- neho produktu expresie z bakteriálnych kultúr. Na aktiváciu sa použijú roztoky refraktívnych teliesok v silnom denaturačnom činidle, ktoré sa a) priamo prevedú na roztoky v slabšom denaturačnom činidle, a potom sa 55 tieto roztoky oxidujú na zaistenie spätnej tvorby disulfidových mostíkov, b) bielkovina sa podrobí sulfonácii, potom sa prevedie do roztoku v slabšom denaturačnom činidle a S-sulfonátové skupiny sa premenia na redukovanú a oxidovanú formu, napríklad pôsobením 60 GSH/GSSG za vzniku skupín -S-S- alebo sa c) roztok v slabom denaturačnom činidle priamo spracováva pôsobením reakčného činidla sulfhydrylového typu, napríklad zmesou GSH/GSSG. Typickým príkladom, pri ktorom dochádza k uvedeným problémom j e t-PA. 65In European patent application no. 114,506 describes a procedure for isolating, purifying, and activating a heterologous expression product from bacterial cultures. For activation, solutions of refractive bodies in a strong denaturing agent are used which are a) directly converted into solutions in a weaker denaturing agent and then oxidized to ensure disulfide bridging, b) the protein is subjected to sulfonation, then transferred to a a solution in a weak denaturing agent and an S-sulfonate group is converted to a reduced and oxidized form, for example by treatment with 60 GSH / GSSG to form -SS- groups, or c) the solution in a weak denaturing agent is directly treated with a sulfhydryl-type reagent such as GSH / GSSG. A typical example of such problems is t-PA. 65
Hlavná zložka bielkovinovej matrice krvi je polymémy fibrín. Táto bielkovina sa rozpúšťa pôsobením plazmidu, ktorý sa tvorí z plazminogénu aktiváciou tzv. aktivátormi plazminogénu, napríklad pôsobením t-PA (tkanivový aktivátor plazminogénu, tissue-type plasminogen activator). Enzymatická účinnosť prírodného alebo genetickou technológiou z eukaryotického organizmu získaného t-PA je v neprítomnosti fibrínu alebo štiepnych produktov fibrínu (PSF) veľmi nízka, je však možné ju zvýšiť pridaním uvedených stimulátorov, a to viac než desaťkrát. Táto tzv. stimulovateľnosť účinnosti je veľkou výhodou t-PA v porovnaní s inými známymi aktivátormi plazminogénu, ako je napríklad urokináza alebo streptokináza, ako bolo opísané napríklad v publikáciách N. Hoylaerts a ďalší, J. Biol. Chem. 257, (1982), 2912 až 2919, Nieuwenhiuzen a ďalší, Biochemica et Biophysica Acta 755, (1983), 531 až 533. Faktor stimulovateľnosti štiepnymi produktami typu BrCN sa udáva v literatúre a má hodnotu až 35.The major component of the blood protein matrix is fibrin polymers. This protein is dissolved by the action of a plasmid, which is formed from plasminogen by activation of so-called. plasminogen activators, for example by treatment with t-PA (tissue-type plasminogen activator). In the absence of fibrin or fibrin cleavage products (PSF), the enzymatic efficacy of natural or genetic technology from a eukaryotic organism obtained by t-PA is very low, but it can be increased by more than 10-fold by adding said stimulators. This so-called. potency stimulation is a great advantage of t-PA over other known plasminogen activators, such as urokinase or streptokinase, as described, for example, in N. Hoylaerts et al., J. Biol. Chem. 257, (1982), 2912-2919, Nieuwenhiuzen et al., Biochemica et Biophysica Acta 755, (1983), 531-533. The BrCN-type cleavage stimulation factor is reported in the literature and has a value of up to 35.
Zásadne je možné vytvoriť neglykozylovaný produkt typu t-PA tiež v prokaryotických organizmoch genetickou manipuláciou pri použití c-DNA. Pri použití tohto produktu však neprichádza do úvahy stimulovateľnosť účinnosti ako v prípade t-PA z eukaryotických organizmov. Príčinou je zrejme tá skutočnosť, že rôzne podmienky, najmä redukcia a oxidácia sa natoľko líšia v prokaryotickej bunke a v eukaryotickej bunke, z ktorej pochádza gén, že sa od začiatku tvorí neúčinný produkt, čo zrejme spočíva v zlej tvorbe mostíkov SS, ktoré prírodná molekula obsahuje alebo sa tieto mostíky vôbec netvoria, prípadne sú viazané nevhodným spôsobom. Pri liečebnom použití t-PA však sa nepožaduje len enzymatická účinnosť t-PA, ale tiež samostatná enzymatická stimulovateľnosť tohto produktu. Na skutočnosť, že bunky prokaryotických organizmov zvyčajne nevytvárajú účinné bielkoviny, ktorých pôvodom sú eukaryotické organizmy, sa poukazuje napríklad tiež v publikácii The Joumal 4, č. 3 (1985), 755 až 780.In principle, it is possible to produce a non-glycosylated t-PA product also in prokaryotic organisms by genetic manipulation using c-DNA. However, when using this product, there is no possibility of stimulating efficacy as with t-PA from eukaryotic organisms. This is probably due to the fact that different conditions, especially reduction and oxidation, differ so much in the prokaryotic cell and in the eukaryotic cell from which the gene originates that from the outset the ineffective product is formed, probably due to the poor formation of SS bridges contained in the natural molecule or these bridges are not formed at all or are bound in an improper manner. However, the therapeutic use of t-PA requires not only the enzymatic activity of t-PA, but also the separate enzymatic stimulatability of the product. The fact that the cells of prokaryotic organisms usually do not produce active proteins of eukaryotic origin is also noted, for example, in The Joumal 4, no. 3 (1985), 755-780.
V európskej patentovej prihláške č. 93 639 sa pri aktivácii t-PA bunkové pelety, získané z E. coli uvedú do suspenzie v guanidínhydrochloride s koncentráciou 6 mol/1, rozrušia sa ultrazvukom, získaný materiál sa inkubuje, a potom sa dialyzuje 4 hodiny proti roztoku tris-HCl s pH 8,0 v zmesi s chloridom sodným, kyselinou etyléndiamíntetraoctovou a prostriedkom Tween 80. Po dialýze sa materiál odstredí, pričom v supematante je možné dokázať aktivátor plazminogénu. Týmto spôsobom získaný t-PA je proteolyticky účinný, nie je možné ho stimulovať štiepnymi produktmi po pôsobení kyanidu brómu na fibrín (BrCN-PSP), ako bolo opísané v publikácii J. H. Verheijen, Thromb Haemostas, 48, (3), 260 až 269, (1982).In European patent application no. 93 639, upon activation of t-PA cell pellets obtained from E. coli, were suspended in guanidine hydrochloride at a concentration of 6 mol / l, disrupted by ultrasound, the resulting material was incubated, and then dialyzed for 4 hours against a pH solution of tris-HCl 8.0 in admixture with sodium chloride, ethylenediaminetetraacetic acid and Tween 80. After dialysis, the material is centrifuged to detect plasminogen activator in the supernatant. The t-PA obtained in this way is proteolytically active, and cannot be stimulated by cleavage products after treatment with bromine cyanide on fibrin (BrCN-PSP) as described by JH Verheijen, Thromb Haemostas, 48, (3), 260-269, (1982).
Na aktiváciu denaturovaných bielkovín nie je v literatúre opísaný žiadny všeobecne použiteľný postup. To platí najmä pre t-PA, pretože prírodná bielkovina má veľmi zložitú stavbu. Obsahuje voľnú tiolovú skupinu a 17 SS-mostíkov, ktoré sú teoreticky spojené 2,2 x 1O20 spôsobmi, pričom len jediná z týchto štruktúr zodpovedá prírodnému stavu. Spôsoby na aktiváciu t-PA, ktoré sú známe z literatúry vedú k získaniu protcolyticky účinného t-PA, ktorý však nevykazuje žiadnu merateľnú stimulovateľnosť. Nie je známy žiadny postup aktivácie, ktorý by viedol k získaniu stimulovateľného t-PA.No generally applicable procedure is described in the literature for the activation of denatured proteins. This is especially true for t-PA, since natural protein has a very complex structure. It contains a free thiol group and 17 SS bridges, which are theoretically linked by 2.2 x 10 20 methods, only one of which structures corresponds to the natural state. Methods for activating t-PA, which are known in the literature, lead to obtaining a protcolytically active t-PA which, however, has no measurable stimulatability. No activation procedure is known to result in a stimulatable t-PA.
Podstata vynálezuSUMMARY OF THE INVENTION
Vynález si kladie za úlohu navrhnúť spôsob úplnej aktivácie genetickou technológiou získaných, heterológnych bielkovín s obsahom disulfidových mostíkov eukaryotického pôvodu po expresii v prokaryotických organizmoch.SUMMARY OF THE INVENTION It is an object of the present invention to provide a method for the complete activation of heterologous proteins obtained by genetic technology containing disulfide bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms.
Predmetom vynálezu je teda spôsob aktivácie genetickou technológiou získaných, heterológnych bielkovín s obsahom disulfidových mostíkov eukaryotického pôvodu po expresii v prokaryotických organizmoch rozrušením buniek, solubilizáciou na základe denaturácie a redukčných podmienok a aktiváciou (renaturáciou) v oxidačných podmienkach za prítomnosti GSH/GSSG, ktorého podstatou je, že aktivácia sa vykonáva pri pH 9 až 12, koncentrácii GSH 0,1 až 20 mmol/1, koncentrácii GSSG 0,01 až 3 mmol/1 a za prítomnosti denaturačného činidla v koncentrácii, pri ktorej nedochádza k denaturácii.Accordingly, the present invention provides a method of activating genetically engineered heterologous proteins containing disulphide bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms by cell disruption, solubilization by denaturation and reducing conditions, and activation (renaturation) under oxidative conditions in the presence of GSH / GSSG. The process according to claim 1, wherein the activation is carried out at a pH of 9-12, a GSH concentration of 0.1 to 20 mmol / l, a GSSG concentration of 0.01 to 3 mmol / l, and in the presence of a denaturing agent in a concentration at which no denaturation occurs.
Výhodné uskutočnenia spôsobu podľa vynálezu budú ďalej opísané.Preferred embodiments of the process of the invention will be described below.
Z denaturačných činidiel je možné pri vykonávaní spôsobu podľa vynálezu použiť činidlá, bežne používané na aktiváciu v oxidačných podmienkach alebo arginín. Výhodným denaturačným činidlom je guanidínhydrochlorid, močovina alebo deriváty týchto látok. Ďalším vhodným činidlom je arginín. Je taktiež možné použiť zmesi uvedených denaturačných činidiel. Výhodne sa aktivačný stupeň vykonáva za prítomnosti cudzorodej bielkoviny, ktorou je výhodne akákoľvek bielkovina, ktorá nie je proteolyticky účinná, výhodne albumín zo séra hovädzieho dobytka (BSA), napríklad v množstve 1 až 3 mg/ml. Prídavok BSA má za následok malé zvýšenie výťažku a súčasne stabilizáciu bielkovín (pravdepodobne chráni proti denaturácii povrchu a/alebo proti proteolytickému odbúravaniu).Among the denaturing agents, agents commonly used for activation under oxidative conditions or arginine may be used in the process of the invention. A preferred denaturing agent is guanidine hydrochloride, urea or derivatives thereof. Another suitable agent is arginine. It is also possible to use mixtures of the denaturing agents mentioned. Preferably, the activation step is carried out in the presence of a foreign protein, which is preferably any protein that is not proteolytically active, preferably bovine serum albumin (BSA), for example in an amount of 1 to 3 mg / ml. The addition of BSA results in a small increase in yield and at the same time protein stabilization (presumably protects against surface denaturation and / or proteolytic degradation).
Ďalšie podmienky spôsobu podľa vynálezu zodpovedajú podmienkam reaktivácie, známym z literatúry. Aktivácia (inkubácia) trvá výhodne 20 až 48 hodín pri teplote miestnosti. Polčas aktivácie je za prítomnosti 0,5 mmol/1 redukovaného GSH a oxidovaného GSSG glutatiónu v rozmedzí približne 10 až 15 hodín pri teplote 20 °C. Pri ďalšej inkubácii, napríklad 48 hodín v reoxidačných podmienkach, zvyčajne stimulovateľnosť klesá v dôsledku CNBr-FSP. Aktivačný stupeň sa výhodne vykonáva za prítomnosti kyseliny etyléndiamíntetraoctovej, výhodne v koncentrácii 1 mmol/1.Further conditions of the process according to the invention correspond to the reactivation conditions known from the literature. Activation (incubation) preferably takes 20 to 48 hours at room temperature. The activation half-life in the presence of 0.5 mmol / l reduced GSH and oxidized GSSG glutathione is in the range of about 10-15 hours at 20 ° C. Upon further incubation, for example 48 hours under reoxidation conditions, the stimulant usually decreases due to CNBr-FSP. The activation step is preferably carried out in the presence of ethylenediaminetetraacetic acid, preferably at a concentration of 1 mmol / l.
Stopne aktivačného postupu reoxidácie a aktivácie alebo predchádzajúce a nasledujúce stupne, napríklad rozrušenie buniek, rozpustenie a prípadne jeden alebo väčší počet stupňov aktivácie a/alebo nasledujúceho čistenia je možné vykonávať podľa známeho stavu techniky, tak ako bol opísaný napríklad v európskych patentových prihláškach č. 114 586 a 93 619. Z hľadiska vysokých výťažkov a dobrej aktivácie je však účelné vykonávať jednotlivé stupne alebo všetky stupne s ohľadom na opísané podmienky postupu. Zvlášť je možné vykonávať stupne spôsobu podľa vynálezu, spočívajúce v aktivácii zmesi, získanej rozrušením buniek bez predchádzajúcej denaturácie a/alebo redukcie, výťažky sú dosť nízke. Na expresiu sa používajú prokaryotické organizmy, výhodne P. putida a najmä E. coli, spôsob podľa vynálezu je však možné vykonávať aj v ďalších prokaryotických organizmoch, ako sú napríklad Bacilli, v ktorých je taktiež možné dosiahnuť expresiu požadovanej bielkoviny.Traces of the activation process of reoxidation and activation, or previous and subsequent steps, for example cell disruption, dissolution and optionally one or more steps of activation and / or subsequent purification, may be carried out according to the prior art as described, for example, in European patent applications no. 114 586 and 93 619. However, in view of the high yields and good activation, it is expedient to carry out individual steps or all steps with respect to the described process conditions. In particular, it is possible to carry out the steps of the process according to the invention consisting in activating the mixture obtained by disrupting the cells without prior denaturation and / or reduction, the yields being rather low. Prokaryotic organisms, preferably P. putida and especially E. coli, are used for expression, but the method of the invention may also be carried out in other prokaryotic organisms, such as Bacilli, in which expression of the desired protein is also achievable.
Rozrušenie buniek je možné vykonávať známymi spôsobmi, napríklad pôsobením ultrazvuku, dispergovaním pri zvýšenom tlaku alebo pôsobením lyzozýmu, ako prostredie pre suspenziu sa výhodne použije roztok pu&a, ktorý dovoľuje nastavenie neutrálneho až slabo kyslého pH, napríklad 0,1 mol/1 tris-HCl. Po rozrušení buniek sa nerozpustné súčasti týchto buniek, tzv. refraktívne telieska oddelia ľubovoľným spôsobom, výhodne energickým odstredením pri dlhšom čase odstreďovania alebo filtrácie. Po premytí látkami, ktoré nerozrušujú t-PA, avšak pokiaľ j e to možn,é rozpúšťajú bunkové bielkoviny, ako je napríklad voda, prípadne fosfátový pufer s prípadným obsahom miernych zmáčadiel, ako je tritón, sa zrazenina alebo peleta, podrobí solubilizácii v redukčných podmienkach. Solubilizácia sa vykonáva v alkalickom pH, najmä pri pH 8,6 ± 0,4 za prítomnosti redukčného činidla zo skupiny merkaptánov a denaturačného činidla.Cell disruption can be accomplished by known methods, for example, by sonication, dispersion at elevated pressure, or lysozyme. The suspension medium preferably comprises a buffer solution which allows a neutral to slightly acidic pH, for example 0.1 mol / l tris-HCl, to be adjusted. After cell disruption, insoluble components of these cells, so-called. the refractive bodies are separated in any manner, preferably by vigorous centrifugation for a longer period of centrifugation or filtration. After washing with substances that do not destroy t-PA but, if possible, dissolve cellular proteins such as water or phosphate buffer, optionally containing mild surfactants such as tritone, the precipitate or pellet is solubilized under reducing conditions. The solubilization is carried out at an alkaline pH, in particular at a pH of 8.6 ± 0.4 in the presence of a mercaptans reducing agent and a denaturing agent.
Ako denaturačné činidlo je možné použiť činidlá, známe z literatúry, napríklad z európskej patentovej prihlášky č. 114 506 na solubilizáciu, najmä ide o guanidínhydrochlorid alebo o močovinu. Guanidínhydrochlorid sa výhodne použije s koncentráciou 6 mol/1, močovina s koncentráciou 8 mol/1. Rovnako dobre je možné použiť zlúčeniny všeobecného vzorca (I)As the denaturing agent, reagents known from the literature can be used, for example from European patent application no. 114 506 for solubilization, in particular guanidine hydrochloride or urea. Guanidine hydrochloride is preferably used at a concentration of 6 mol / l, urea at a concentration of 8 mol / l. Compounds of formula (I) may also be used equally well.
IVCO-NRR1 (I), kdeIVCO-NRR 1 (I) wherein
R a R1 znamenajú atóm vodíka alebo alkylový zvyšok s 1 až 4 atómami uhlíkaR 1 and R 1 are hydrogen or C 1 -C 4 alkyl
R2 znamená atóm vodíka, zvyšok NHR1 alebo alkylovaný zvyšok s 1 až 3 atómami uhlíka.R 2 represents a hydrogen atom, an NHR 1 radical or an alkylated radical having 1 to 3 carbon atoms.
Ako redukčné činidlá zo skupiny merkaptánov je možné použiť napríklad redukovaný glutatión GSH alebo -merkaptoetanol, napríklad s koncentráciou 50 až 400 mmol/1 ditiotreitónu a/alebo ditioerytritol (DTE) alebo ditiotreitol (DTT) napríklad v koncentrácii 80 až 400 mmol/1. Solubilizácia sa výhodne vykonáva pri teplote miestnosti počas jednej alebo väčšieho počtu hodín, výhodne dve hodiny. Na zabránenie oxidácie redukčného činidla vzdušným kyslíkom je možné účelne pridať k reakčnej zmesi ešte EDTA. Okrem solubilizácie a redukcie má tento stupeň tiež čistiaci účinok, pretože väčšina materiálu, ktorý' nie je skrížený imunologický s t-PA, najmä cudzorodých bielkovín, neprechádza do roztoku.Reducing GSH or mercaptoethanol, for example at a concentration of 50 to 400 mmol / l of dithiothreitone and / or dithioerythritol (DTE) or dithiothreitol (DTT), for example at a concentration of 80 to 400 mmol / l, can be used as mercaptan reducing agents. The solubilization is preferably carried out at room temperature for one or more hours, preferably two hours. In order to prevent oxidant oxidation of the reducing agent, it is expedient to add EDTA to the reaction mixture. In addition to solubilization and reduction, this step also has a purifying effect, since most of the material that is not immunologically cross-linked with t-PA, especially foreign proteins, does not pass into solution.
Po solubilizácii a pred aktiváciou je možné zaradiť bežné čistiace stupne. Z čistiacich postupov prichádzajú do úvahy napríklad stérická chromatografia (SEC) za prítomnosti guanidínhydrochloridu alebo močoviny, alebo ionomeniča za prítomnosti močoviny alebo jej derivátu. Je možné použiť tiež nešpecifickú reoxidáciu, ktorej je možné zabrániť napríklad 2-merkaptanolom alebo nastavením pH na hodnotu 4,5 alebo nižšiu, ako bolo opísané v publikácii R. Rudolph, Biochem, Soc. Transactions 13 (1985), 308 až 311. Hneď ako je solubilizačný stupeň ukončený, je potrebné prípadne použitý DTE odstrániť v čistiacom stupni. Čistenie je možné vykonávať na géli Sephadex G 100 za prítomnosti guanidínhydrochloridu a redukčného činidla, napríklad glutatiónu GSH pri pH 1 až 4, týmto spôsobom je možné oddeliť veľké množstvo cudzorodej bielkoviny alebo je možné oddeliť denaturačný a redukčný prostriedok odstránením solí na géli Sephadex G 25 v 0,01 mol/1 kyseliny chlorovodíkovej alebo 0,1 mol/1 kyseliny octovej. Oddelenie denaturačného/redukčného činidla je možné uskutočniť tiež dialýzou.After solubilization and prior to activation, conventional cleaning steps may be employed. Suitable purification processes are, for example, steric chromatography (SEC) in the presence of guanidine hydrochloride or urea, or an ion exchanger in the presence of urea or a derivative thereof. Non-specific reoxidation can also be used, which can be prevented, for example, by 2-mercaptanol or by adjusting the pH to 4.5 or less as described by R. Rudolph, Biochem, Soc. Transactions 13 (1985), 308-311. Once the solubilization step is complete, any DTE used may need to be removed in the purification step. The purification can be carried out on a Sephadex G 100 gel in the presence of guanidine hydrochloride and a reducing agent such as GSH glutathione at pH 1-4, in which way a large amount of foreign protein can be separated or a denaturing and reducing agent can be separated by removing salts on Sephadex G 25 gel. 0.01 mol / l hydrochloric acid or 0.1 mol / l acetic acid. The denaturing / reducing agent can also be separated by dialysis.
Ďalší čistiaci stupeň môže nasledovať po reaktivačnom stupni. Toto čistenie sa spravidla vykonáva dialýzou alebo izoláciou aktivovaného t-PA napríklad afinitnou chromatografiou, napríklad na Lys-Sepharexe.The next purification step may follow the reactivation step. This purification is generally carried out by dialysis or isolation of activated t-PA, for example by affinity chromatography, for example on Lys-Sepharex.
Ďalšie vykonanie spôsobu podľa vynálezu spočíva v tvorbe zmiešaných disulfidov genetickou technológiou získaných, heterológnych, disulfidových mostíkov, obsahujúcich eukaryotické bielkoviny a glutatión (ďalej t-PASSG). Tento postup je možné uskutočniť oddelením cudzorodej bielkoviny v denaturovanom stave alebo ďalším čistením prírodnej bielkoviny. Cisterne po modifikácii tiolových skupín má tú výhodu, že bielkovina je chránená proti oxidácii pôsobením vzduchu a je preto stála v širokom rozmedzí pH a súčasne sa uľahčuje celé čistenie vzhľadom na to, že sa mení náboj. Izolácia nemodifikovanej bielkoviny sa výhodne vykonáva pôsobením ionomeniča.A further embodiment of the method according to the invention consists in the formation of mixed disulfides by genetically engineered, heterologous, disulfide bridges containing eukaryotic proteins and glutathione (hereinafter t-PASSG). This procedure can be carried out by separating the foreign protein in the denatured state or by further purification of the natural protein. The tanks after modification of the thiol groups have the advantage that the protein is protected against oxidation by the action of air and is therefore stable over a wide pH range and at the same time facilitates the entire purification due to the change in charge. The isolation of the unmodified protein is preferably carried out by treatment with an ion exchanger.
Na tvorbu zmiešaných disulfidov sa inkubuje dialyzovaná, redukovaná, od denaturačných a redukčných činidiel vyčistená bielkovina s roztokom, ktorý obsahuje denaturačné činidlo, napríklad 0,2 M roztokom GSSG. Aktiváciu je možné uskutočniť po oddelení denaturačného a oxidačného prostriedku pri pH 7 až 10,5, pri koncentrácii GSH 0,5 až 5 mmold a pri koncentrácii denaturačného prostriedku, pri ktorej ešte nedochádza k denaturácii.For the formation of mixed disulfides, dialyzed, reduced, denaturing and reducing agents purified protein is incubated with a solution containing a denaturing agent, for example 0.2 M GSSG solution. Activation can be carried out after separation of the denaturing and oxidizing agent at a pH of 7 to 10.5, at a GSH concentration of 0.5 to 5 mmoles and at a denaturing agent concentration which is not yet denatured.
Pri všetkých ostatných reakčných stupňoch zodpovedá aktivácia bielkoviny tvorbe zmesových disulfidov GSSG v rovnakých podmienkach ako pri uvedenom postupe. Pri tejto forme uskutočnenia je optimálne pH 8,5, výťažok je približne dvojnásobný a aktivovaná bielkovina je stála v renaturačnom pufri po dlhší čas.For all other reaction steps, protein activation corresponds to the formation of mixed GSSG disulfides under the same conditions as in the above procedure. In this embodiment, the pH is optimally 8.5, the yield is about twice and the activated protein is stable in the renaturation buffer for a longer period of time.
Spôsobom podľa vynálezu je teda možné aktivovať t-PA z prokaryotických organizmov tak, že sa nielen dosiahne aktivácia na zvyčajnú biologickú účinnosť, ale naviac sa dosiahne stimulovateľnosť v spomínanom význame, a to v množstve, ktoré prevyšuje ďaleko stimulovateľnosť t-PA pri faktore vyššom než 10, niekedy 50.Thus, by the method of the invention, it is possible to activate t-PA from prokaryotic organisms so that not only does activation for the usual biological activity be achieved, but additionally stimulates the above-mentioned stimulus in an amount far beyond that of t-PA at a factor greater than 10, sometimes 50.
Ďalšou bielkovinou z eukaryotických organizmov, ktorú je možné aktivovať spôsobom podľa vynálezu po expresii v prokaryotických organizmoch, je β-interferón.Another protein from eukaryotic organisms that can be activated by the method of the invention after expression in prokaryotic organisms is β-interferon.
Praktické uskutočnenie spôsobu podľa vynálezu bude vysvetlené v nasledujúcich príkladoch. Ak nie je uvedenc inak, vzťahujú sa percentuálne údaje na hmotnostné percento a teplotné údaje na stupne Celzia.The practice of the process according to the invention will be explained in the following examples. Unless otherwise indicated, percentages refer to weight percent and temperature data to degrees Celsius.
Prehľad obrázkov na výkresochBRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS
Na obr. 1 a 2 je znázornená účinnosť pri pridaní a bez pridania CNBr-FSP v štandardnom pokuse po 17 hodinách reoxidácie pri teplote miestnosti v zmesi 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/1 EDTA + 0,5 mol/1 1-arginínu + 1 mg/ml BSA+ 0,5 mmol/1 GSH + + 0,5 mmol/1 GSSG. Na obr. 1 a 2 znamená krivka A účinnosť prítomnosti CNBr-FSP a krivka B účinnosť bez CNBr-FSP.In FIG. Figures 1 and 2 show the efficacy with and without the addition of CNBr-FSP in a standard experiment after 17 hours of reoxidation at room temperature in a mixture of 0.1 mol / l tris-HCl pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 0 5 mol / l 1-arginine + 1 mg / ml BSA + 0.5 mmol / l GSH + + 0.5 mmol / l GSSG. In FIG. 1 and 2, curve A is the potency of the presence of CNBr-FSP and curve B is the potency without CNBr-FSP.
Príklady uskutočnenia vynálezuDETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Príklad 1Example 1
a) Príprava refraktívnych teliesoka) Preparation of refractive bodies
100 g vlhkej bunkovej hmoty E. coli v 1,5 1 tris/HCl s koncentráciou 0,1 mol/1, pH 6,5 a 20 mmol/1 EDTA sa 10 sekúnd homogenizuje na zariadení Ultra-Turrax, a potom sa pridá 0,25 mg/ml lyzozýmu. Po 30 minútach inkubácie pri teplote miestnosti sa zmes znova homogenizuje a ochladí na teplotu 3 °C. Bunky sa rozrušia dispergovaním pri vysokom tlaku 550 kg/cm2. Potom sa pridá 300 ml tris-HCl s koncentráciou 0,1 mol/1 pri pH 6,5 a 20 mmol/1 EDTA. Po odstredení 5 (Sorvall GSA, 2 hodiny pri 13 000 otáčkach za minútu,100 g of E. coli wet cell mass in 1.5 L of 0.1 mol / l, pH 6.5 and 20 mmol / l EDTA are homogenized on an Ultra-Turrax for 10 seconds, then 0 , 25 mg / ml lysozyme. After incubation for 30 minutes at room temperature, the mixture is again homogenized and cooled to 3 ° C. The cells are disrupted by dispersion at a high pressure of 550 kg / cm 2 . Then 300 ml of 0.1 mol / l tris-HCl at pH 6.5 and 20 mmol / l EDTA are added. After centrifugation 5 (Sorvall GSA, 2 hours at 13,000 rpm),
21000 x g, 4 °C) sa peleta zmieša s 1,2 1 tris-HCl s koncentráciou 0,1 mol/1 pri pH 6,5, 20 mmol/1 EDTA a 2,5 % Triton-X-100, a potom sa homogenizuje. Materiál sa opakovane odstredí (Sorvall GSA, 30 minút pri 10 13 000 otáčkach za minútu, 27 000 x g, 4 °C) sa peleta zmieša s 1,3 1 tris-HCl s pH 6,5 s koncentráciou 0,1 mol/1 a 20 mmol/1 EDTA a 0,5 % Triton-X-100 a materiál sa homogenizuje. Potom sa materiál ešte raz odstredí (Sorvall GSA, 30 minút pri 13 000 ot/min, 15 27 000 x g, 4 °C) a pelety sa homogenizujú v 1 litri tris-HCl s koncentráciou 0,1 mol/1 pri pH 6,5 a 20 mmol/1 EDTA, toto odstredenie sa vykonáva trikrát.21000 xg, 4 ° C) is mixed with 1.2 L of 0.1 M Tris-HCl at pH 6.5, 20 mmol / L EDTA and 2.5% Triton-X-100, and then is homogenized. Centrifuge the material (Sorvall GSA, 30 minutes at 10 13,000 rpm, 27,000 xg, 4 ° C) and mix the pellet with 1.3 L of 0.1 mol / l tris-HCl, pH 6.5. and 20 mmol / l EDTA and 0.5% Triton-X-100 and the material is homogenized. The material is then centrifuged once more (Sorvall GSA, 30 minutes at 13000 rpm, 15 27 000 xg, 4 ° C) and the pellets are homogenized in 1 liter of 0.1 mol / l tris-HCl at pH 6, 5 and 20 mmol / l EDTA, this centrifugation is performed three times.
Obsah t-PA v refraktívnych telieskach sa vo výslednom materiáli zaisťuje pri použití SDS-PAGE, pá20 sy s obsahom t-PA sa identifikujú spôsobom Westem-blotting a kvantitatívne sa stanovia denzitometricky. Použitím tohto spôsobu je možné dokázať silný pás s obsahom t-PA s molekulovou hmotnosťou približne 60 k jednotiek. Podiel t-PA v celkovej bielkovine refrak25 tívnych teliesok je približne 21 %.The t-PA content of the refractive bodies in the resulting material is determined by SDS-PAGE, the p-20s containing t-PA are identified by West blotting and quantitatively determined by densitometry. Using this method, it is possible to detect a strong band containing t-PA with a molecular weight of about 60 k units. The proportion of t-PA in total protein of refractory bodies is approximately 21%.
b) Solubilizácia/redukcia refraktívnych teliesokb) Solubilization / reduction of refractive bodies
Refraktívne telieska s koncentráciou bielkovín 1 až mg/ml sa inkubujú v 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 8,6, 6 mol/1 guanidínhydrochloridu, 0,15 až 0,4 mol/1 DTE a 1 mmol/1 EDTA počas 2 až 3 hodín pri teplote miestnosti. Potom sa nerozpustný materiál, napríklad bunkové fragmenty a podobne oddelia odstredením , (napríklad Sorvall SS 34, 30 minút pri teplote 4 °C, pri 15 000 až 20 000 otáčkach za minútu a pri 35 000 až 50 000 x g). Hodnota pH supematantu sa upraví koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou na pH 3. Denaturačné a redukčné prostriedky sa oddelia dialýzou proti 0,01 mol/1 kyseliny chlorovodíkovej pri teplo40 te 4 °C.Refractive bodies with a protein concentration of 1 to mg / ml are incubated in 0.1 mol / l tris-HCl at pH 8.6, 6 mol / l guanidine hydrochloride, 0.15 to 0.4 mol / l DTE and 1 mmol / l. EDTA for 2-3 hours at room temperature. Thereafter, insoluble material such as cell fragments and the like are separated by centrifugation (e.g. Sorvall SS 34, 30 minutes at 4 ° C, 15,000-20,000 rpm and 35,000-50,000 xg). The pH of the supernatant is adjusted to pH 3 with concentrated hydrochloric acid. The denaturing and reducing agents are separated by dialysis against 0.01 mol / l hydrochloric acid at a temperature of 40 te 4 ° C.
c) Reoxidácia/aktiváciac) Reoxidation / activation
Reoxidácia/aktivácia sa vykonáva pri riedení 1:50 45 až 1: 200 v roztoku, ktorý obsahuje 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5, 1 mmol/1 EDTA, 1 mg/ml BSA, 0,5 mol/1 1-arginínu, 2 mmol/1 GSH a 0,2 mmol/1 GSSG. Po 17 až 24 hodinách aktivácie pri teplote približne 20 °C sa stanoví účinnosť porovnaní s účinnosťou natívneho 50 glykozylovaného t-PA z eukaryotických organizmov a výťažok tejto látky. Výťažok vztiahnutý' na celkový obsah bielkoviny v refraktívnych telieskach sa pohybuje v rozmedzí: 2,5 ± 0,5 %, stimulovateľnosť je 10 ± 5.Reoxidation / activation is performed at a 1:50 dilution of 45 to 1: 200 in a solution containing 0.1 mol / l tris-HCl at pH 10.5, 1 mmol / l EDTA, 1 mg / ml BSA, 0.5 mol / L of 1-arginine, 2 mmol / L of GSH and 0.2 mmol / L of GSSG. After 17 to 24 hours of activation at about 20 ° C, the efficacy is compared to that of native 50 glycosylated t-PA from eukaryotic organisms and the yield of this substance. The yield based on the total protein content of the refractive bodies is in the range of: 2.5 ± 0.5%, the stimulatability is 10 ± 5.
Výťažok vztiahnutý na podiel t-PA v refraktívnych 5 5 telieskach j e približne 12%.The yield based on the proportion of t-PA in the refractive bodies is approximately 12%.
d) Reoxidácia/aktivácia bez oddelenia denaturačného/redukčného činidlad) Reoxidation / activation without separation of denaturing / reducing agent
Refraktívne telieska sa inkubujú pri koncentrácii bielkovín 1,25 mg/ml v zmesi, ktorá obsahuje 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 8,6, 6 mol/1 guanidínhydrochloridu, 0,2 mol/1 DTE a 1 mmol/1 EDTA 2 hodiny pri teplote miestnosti. Okamžite potom sa vykonáva reo65 xidácia pri riedení 1:100 v roztoku, ktorý obsahuje 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5,1 mmol/1 EDTA, 1 mg/mlRefractive bodies are incubated at a protein concentration of 1.25 mg / ml in a mixture containing 0.1 mol / l tris-HCl at pH 8.6, 6 mol / l guanidine hydrochloride, 0.2 mol / l DTE and 1 mmol / ml. 1 EDTA at room temperature for 2 hours. Immediately thereafter, reo65 xidation is performed at a 1: 100 dilution in a solution containing 0.1 mol / l tris-HCl, pH 10.5, 1 mmol / l EDTA, 1 mg / ml
BSA, 0,3 mol/11-arginínu a také množstvo GSSG, ktoré je uvedené v nasledujúcej tabuľke. Okrem toho sa stanoví v aktivačnej zmesi zvyšok koncentrácie guanidínhydrochloridu, ktorý je 0,06 mol/1 a DTE, s hodnotou 2 mmol/l.BSA, 0.3 mol / 11-arginine and the amount of GSSG shown in the following table. In addition, a residual concentration of 0.06 mol / l of guanidine hydrochloride and a DTE of 2 mmol / l is determined in the activation mixture.
Závislosť výťažku aktivácie na koncentrácii GSSG pri aktivácii bez oddelenia denaturačného/redukčného činidlaDependence of activation yield on GSSG concentration in activation without separation of denaturing / reducing agent
Výťažok s čiarou - výťažok účinného t-PA, vztiahnuté na celkový obsah bielkoviny v refraktívnych telieskach.Line yield - yield of effective t-PA based on total protein content of refractive bodies.
Príklad 2Example 2
Vzorka refraktívnych. teliesok (450 ODwo/ml) sa inkubuje v zmesi s obsahom 1 ml 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 8,6, 6 mol/1 guanidínhydrochloridu a 0,15 až 0,2 mol/1 DTE, 2 až 3 hodiny pri teplote miestnosti. Nerozpustný materiál, napríklad bunkové fragmenty sa potom oddelia odstreďovaním 20 minút pri 17 000 otáčkach za minútu. Denaturačné a redukčné činidlo sa potom odstráni filtráciou na géli Sephadex G 25 (súperíme) v 0,01 mol/1 HC1. Potom sa vzorka zriedi 5 až 10-krát. Redukovaný materiál sa uschováva pri teplote -20°C v 0,01 mol/1 HC1.Sample refractive. The body (450 ODwo / ml) is incubated in a mixture containing 1 ml of 0.1 mol / l tris-HCl, pH 8.6, 6 mol / l guanidine hydrochloride and 0.15 to 0.2 mol / l DTE, 2 to 3 mol / l. 3 hours at room temperature. The insoluble material, for example, cell fragments, is then separated by centrifugation at 17,000 rpm for 20 minutes. The denaturing and reducing agent is then removed by filtration on a Sephadex G 25 gel (competing) in 0.01 M HCl. The sample is then diluted 5 to 10 times. The reduced material is stored at -20 ° C in 0.01 M HCl.
Príklad 3Example 3
V nasledujúcich tabuľkách je zhrnutý vplyv rôznych parametrov spôsobu podľa vynálezu na aktiváciu a stimulovateľnosť t-PA. V týchto reoxidačných pokusoch bola solubilizovaná, redukovaná bielkovina použitá bez ďalšieho čistenia.The following tables summarize the effect of various parameters of the method of the invention on t-PA activation and stimulatability. In these reoxidation experiments, the solubilized, reduced protein was used without further purification.
Redukovaná bielkovina v 0,01 mol HC1 bola aktivovaná riedením 1:10 až 1:500 v reoxidačnom pufri. Aktivácia bola dokazovaná pri teplote miestnosti po inkubácii 22 až 48 hodín pri tej istej teplote. Účinnosť reoxidovanej bielkoviny sa vzťahuje na štandardnú reoxidáciu, ktorá je považovaná za 100 % v roztoku s obsahomThe reduced protein in 0.01 mol HCl was activated by diluting 1:10 to 1: 500 in reoxidation buffer. Activation was detected at room temperature after incubation for 22 to 48 hours at the same temperature. The efficacy of reoxidated protein refers to standard reoxidation, which is considered 100% in a solution containing
0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1 mmol/l EDTA + 0,5 mol/11-argininu + 1,0 mg/ml BSA + 0,5 mmol/l GSH (redukovaný glutatión) + 0,5 mmol/l GSSG (glutatióndisulfid).0.1 mol / l tris-HCl with pH 10.5 + 1 mmol / l EDTA + 0.5 mol / 11-arginine + 1.0 mg / ml BSA + 0.5 mmol / l GSH (reduced glutathione) + 0.5 mmol / l GSSG (glutathione disulfide).
Stimulovateľnosť sa vypočítava ako E+CNBrFSP/E-CNBrFSP spôsobom opísaným v publikácii W. Nieuwenhuizon a ďalší, Biochemica et Biophysica Acta 755 (1983) 531 až 533. Účinnosť v % a stimulovateľnosť ako faktor sa stanoví spôsobom podľa publikácie J. N. Verheijen Thromb. Haemostas. 48(3), 266 až 269 (1982).Stimulability is calculated as E + CNBrFSP / E-CNBrFSP by the method described by W. Nieuwenhuizon et al., Biochemica et Biophysica Acta 755 (1983) 531-533. The% potency and the stimulatability as a factor are determined according to the method of J. N. Verheijen Thromb. Hacmostas. 48 (3), 266-269 (1982).
Výsledky:The results:
1. Závislosť výťažku aktivácie od prísad 1-arginínu guanidínhydrochloridu1. Dependence of the activation yield on the additions of 1-arginine guanidine hydrochloride
Reakcia sa vykonáva v zmesiThe reaction is carried out in a mixture
0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/l EDTA + l,0mg/mlBSA + 0,5 mmol/l GS + 0,5 mmol/l GSSG0.1 mol / l tris-HCl with pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 1.0 mg / ml BSA + 0.5 mmol / l GS + 0.5 mmol / l GSSG
a) 1 -arginína) 1-arginine
Pri tomto pokuse je nutné uvážiť, že 1-arginín spôsobuje inhibiciu t-PA. Pokles výťažku aktivácie pri vyššej koncentrácii tejto látky je teda nutné pripočítať inhibícii.In this experiment, it should be considered that 1-arginine causes t-PA inhibition. Thus, the decrease in the activation yield at a higher concentration of this compound must be added to the inhibition.
b) Guanidínhydrochlorid (Gdn.HCl)(b) Guanidine hydrochloride (Gdn.HCl)
2. Závislosť výťažku aktivácie od pridávania močoviny alebo jej derivátov2. Dependence of the yield of activation on the addition of urea or its derivatives
Reoxidácia sa vykonáva v zmesi 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5, 1,0 mmol/l EDTA, 1,0 mg/ml BSA, 5 mmol/l GSH, 0,2 mmol/l GSSG.Reoxidation is carried out in a mixture of 0.1 mol / l tris-HCl, pH 10.5, 1.0 mmol / l EDTA, 1.0 mg / ml BSA, 5 mmol / l GSH, 0.2 mmol / l GSSG.
a) Močovina(a) Urea
b) Metylmočovina(b) Methylurea
c) Etylmočovina(c) Ethylurea
c) Acetamidc) Acetamide
d) Dimetylmočovina(d) Dimethylurea
d) Propiónamidd) Propionamide
3. Závislosť výťažku aktivácie od pridávania amidov alifatických kyselín3. Dependence of the yield of activation on the addition of aliphatic acid amides
Reoxidácia sa vykonáva v zmesi 0.1 mol A tris-HCl s pH 10,5, 1,0 mmol/1 EDTA, 1,0 mg/ml BSA, 5 mmol/1 GSH, 0,2 mmol/1 GSSG.Reoxidation is carried out in a mixture of 0.1 M tris-HCl pH 10.5, 1.0 mmol / l EDTA, 1.0 mg / ml BSA, 5 mmol / l GSH, 0.2 mmol / l GSSG.
a) Formamid(a) Formamide
b) Metylformamidb) Methylformamide
e) Butyramide) Butyramide
4. Závislosť výťažku aktivácie od hodnoty pH4. Dependence of activation yield on pH
Reoxidácia sa vykonáva v zmesiThe reoxidation is carried out in a mixture
0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/1 EDTA +0,5 mol/11-arginín +1,0 mg/ml BSA + 0,5 mmol/1 GSH + 0,5 mmol/1 GSSG.0.1 mol / l tris-HCl pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 0.5 mol / 11-arginine +1.0 mg / ml BSA + 0.5 mmol / l GSH + 0, 5 mM GSSG.
5. Závislosť výťažku aktivácie od koncentrácie5. Dependence of activation yield on concentration
GSII/GSSGGSII / GSSG
Reoxidácia sa vykonáva v zmesiThe reoxidation is carried out in a mixture
0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 +1,0 mmol/1 EDTA + 0,5 mol/11-arginin +1,0 mg/ml BSA0.1 mol / l tris-HCl pH 10.5 +1.0 mmol / l EDTA + 0.5 mol / 11-arginine +1.0 mg / ml BSA
a) + 1 mmol/1 GSHa) + 1 mmol / L GSH
b) + 0,2 mmolA GSSGb) + 0.2 mmolA GSSG
6. Závislosť výťažku aktivácie od koncentrácie bielkoviny pri reoxidácii (riedenie 1:20 až 1:500)6. Dependence of activation yield on protein concentration during reoxidation (1:20 to 1: 500 dilution)
Reoxidácia sa vykonáva v zmesi 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/1 EDTA + 1,0 mg/ml BSA + 0,5 mol/1 l-arginin + 0,5 mmol/1 GSH + 0,5 mtnol/1 GSSG.Reoxidation is carried out in a mixture of 0.1 mol / l tris-HCl pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 1.0 mg / ml BSA + 0.5 mol / l l-arginine + 0.5 mmol / 1 GSH + 0.5 mmol / 1 GSSG.
7. Závislosť výťazku aktivácie od pridania BSA7. Dependence of activation gain on BSA addition
Reoxidácia sa vykonáva v zmesiThe reoxidation is carried out in a mixture
0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/1 EDTA + 0,5 mol/11-arginín + 0,5 mmol/1 GSH + 0,5 mmol/1 GSSG.0.1 mol / l tris-HCl with pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 0.5 mol / 11-arginine + 0.5 mmol / l GSH + 0.5 mmol / l GSSG.
Na obr. 1 a 2 je znázornená účinnosť pri pridaní a bez pridania CNBr-FSP v štandardnom pokuse po 17 hodinách reoxidácie pri teplote miestnosti v zmesi 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 10,5 + 1,0 mmol/1 EDTA + 0,5 mol/11-arginínu + 1 mg/ml BSA+ 0,5 mmol/1 GSH + + 0,5 mmol/1 GSSG. Na obr. laž znamená krivka A účinnosť prítomnosti CNBr-FSP a krivka B účinnosť bez CNBr-FSP.In FIG. Figures 1 and 2 show the efficacy with and without the addition of CNBr-FSP in a standard experiment after 17 hours of reoxidation at room temperature in a mixture of 0.1 mol / l tris-HCl pH 10.5 + 1.0 mmol / l EDTA + 0 5 mol / 11-arginine + 1 mg / ml BSA + 0.5 mmol / l GSH + + 0.5 mmol / l GSSG. In FIG. Ia represents curvature A efficiency of the presence of CNBr-FSP and curve B activity without CNBr-FSP.
Príklad 4Example 4
Aktivácia t-PA pri tvorbe zmesov disulfidov t-PA a GSSGActivation of t-PA in the formation of mixtures of t-PA and GSSG disulfides
Refraktívne telieska sa získajú spôsobom podľa niektorého z predchádzajúcich príkladov. Redukcia týchto teliesok sa vykonáva 2 hodiny pri teplote miestnosti v zmesi, ktorá obsahuje 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 8,6 + 1,0 mmol/1 EDTA, 6 mol/1 Gdn/HCl a 0,2 molA DTE pri koncentrácii bielkoviny približne 1 mg/ml.Refractive bodies are obtained by the method of any of the preceding examples. The reduction of these bodies is carried out for 2 hours at room temperature in a mixture containing 0.1 mol / l tris-HCl at pH 8.6 + 1.0 mmol / l EDTA, 6 mol / l Gdn / HCl and 0.2 molA DTE at a protein concentration of about 1 mg / ml.
Bielkovina, redukovaná a dialyzovaná proti 0,01 mol/1 HCI sa zriedi v pomere 1:1 zmesou 0,1 mol/1 tris s pH 9,3, 9 molA močoviny a 0,2 mol/1 GSSG, a potom sa inkubuje 5 hodín pri teplote miestnosti.Protein reduced and dialyzed against 0.01 mol / l HCl is diluted 1: 1 with 0.1 mol / l tris pH 9.3, 9 molA urea and 0.2 mol / l GSSG, and then incubated 5 hours at room temperature.
Po okyslení koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou na pH 3, sa zmes dialyzuje proti 0,1 mol/1 HCI pri teplote 4°C. Po dialýze je celková koncentrácia bielkoviny 0,33 mg/ml. Pri použití takto získaného tPASSG je možné stanoviť optimálne podmienky reaktivácie.After acidification with concentrated hydrochloric acid to pH 3, the mixture is dialyzed against 0.1 M HCl at 4 ° C. After dialysis, the total protein concentration is 0.33 mg / ml. Using the thus obtained tPASSG, optimal reactivation conditions can be determined.
a) Optimálne pH na aktiváciu t-PASSGa) Optimal pH to activate t-PASSG
V nasledujúcom opise 1) nebol použitý žiadny GSSG a 2) aktivácia bola stanovená po 17 hodinách inkubácie pri teplote miestností. Aktivácia prebieha pri zriedení 1 : 100 v zmesi s obsahom 0,1 mol/tris, 1 mmol/1 EDTA, 0,5 molA-arginínu, 1 mg/ml BSA a 2 mmol/1 GSH, súčasne bolo menené pH.In the following description 1) no GSSG was used and 2) activation was determined after 17 hours incubation at room temperature. Activation takes place at a dilution of 1: 100 in a mixture containing 0.1 mol / tris, 1 mmol / l EDTA, 0.5 molA-arginine, 1 mg / ml BSA and 2 mmol / l GSH, simultaneously changing the pH.
Výťažok sa stanoví v % aktívneho t-PA, vztiahnuté na použité množstvo bielkoviny.The yield is determined in% of active t-PA based on the amount of protein used.
b) Reprodukovateľnosť výsledkov na aktiváciu t-PASSG(b) Reproducibility of results for t-PASSG activation
Pri rovnakých podmienkach aktivácie bolo možné pri rôznom meraní pozorovať rozdielne výťažky, čo mohlo byť spôsobené okrem iného zmenami v štandarde t-PA. Aby bolo možné overiť šírku tejto chyby, boli zhrnuté všetky údaje na aktiváciu po zriedení v pomere 1:100 a 1:200 v zmesi s obsahom 0,1 mol/1 tris-HCl s pH 8,5,1 mmol/1 EDTA, 0,5 mol/11-arginínu, 1 mg/ml BSA a 2 mmol/1 GSH.Under the same activation conditions, different yields could be observed at different measurements, which could be due, among other things, to changes in the t-PA standard. In order to verify the breadth of this error, all activation data after dilution at a ratio of 1: 100 and 1: 200 in a mixture containing 0.1 mol / l tris-HCl at pH 8.5.1 mmol / l EDTA were summarized, 0.5 mol / l-arginine, 1 mg / ml BSA and 2 mmol / l GSH.
SK 278317 Β6SK 278317 Β6
c) Závislosť výťažku aktivácie od množstva močovinyc) Dependence of the activation yield on the amount of urea
Bol použitý roztok z odseku b), aktivácia bola vykonávaná 17 hodín pri teplote 0 °C. Závislosť aktivácie od močovinyThe solution from b) was used, activation was carried out for 17 hours at 0 ° C. Dependence of activation on urea
stredná hodnota 5,1 + 1,9 11,3 + 3,8mean value 5.1 + 1.9 11.3 + 3.8
c) Stálosť aktivovanej bielkovinyc) Stability of the activated protein
Aktivácia bola vykonávaná riedením 1:200 v zmesi s obsahom 0,1 mol/1 tris-HCl, 1 mmol/1 EDTA, 0,5 mol/1 1-arginínu, 1 mg/ml BSA a 2 mmol/1 GSH.Activation was performed by diluting 1: 200 in a mixture containing 0.1 mol / l tris-HCl, 1 mmol / l EDTA, 0.5 mol / l 1-arginine, 1 mg / ml BSA and 2 mmol / l GSH.
Príklad 5Example 5
Aktivácia β-interferónu, získaného genetickým inžinierstvomActivation of genetically engineered β-interferon
Refraktívne telieska boli získané uvedeným spôsobom. Redukcia/solubilizácia týchto teliesok boli uskutočnené nasledujúcim spôsobom: peleta bola inkubovaná 3 hodiny pri teplote 25 °C v 10 ml zmesi, 9,1 mol tris-HCl s pH 8,6, 6 mol/1 Gdn/HCl, 1 mmol/1 EDTA a 0,2 mol/1 DTE a po 30 minútach bola zmes odstredená pri teplote 4 °C a pri 48 000 x g a pH supematantu bolo upravené na hodnotu 3 pridaním koncentrovanej kyseliny chlorovodíkovej. Potom bola vykonávaná filtrácia na géli Sephadex G25 P v 0,01 mol/1 HC1.Refractive bodies were obtained as described above. The reduction / solubilization of these bodies was performed as follows: the pellet was incubated for 3 hours at 25 ° C in 10 ml of a mixture, 9.1 mol of tris-HCl pH 8.6, 6 mol / l Gdn / HCl, 1 mmol / l EDTA and 0.2 mol / L DTE and after 30 minutes the mixture was centrifuged at 4 ° C and at 48,000 xg and the pH of the supernatant was adjusted to 3 by addition of concentrated hydrochloric acid. Then, filtration was performed on a Sephadex G25 P gel in 0.01 M HCl.
Eluát bol sledovaný pri 280 nm a bola stanovená extinkcia, koncentrácia bielkovín a reaktivita.The eluate was monitored at 280 nm and the extinction, protein concentration and reactivity were determined.
Aktivácia štandardu (100 %) sa vykonáva v zmesi s obsahom 0,1 mol tris-HCl s pH 10,5,1 mmol/1 EDTA, 5 mmol/1 GSH, 0,5 mmol/1 GSSG a 0,25 mol/11-argininu.The activation of the standard (100%) is carried out in a mixture containing 0.1 mol of tris-HCl, pH 10.5, 1 mmol / l EDTA, 5 mmol / l GSH, 0.5 mmol / l GSSG and 0.25 mol / l. 11-arginine.
a) Závislosť aktivácie od časua) Activation versus time
Eluát sa zriedi v pomere 1:50 zmesou, ktorá obsahuje 0,1 mol tris-HCl s pH 8,5, 1 mmol/1 EDTA, 5 mmol/1 GSH, 0,5 mmol/1 GSSG a 0,25 mol/11-arginínu.The eluate was diluted 1:50 with a mixture containing 0.1 mol of tris-HCl, pH 8.5, 1 mmol / l EDTA, 5 mmol / l GSH, 0.5 mmol / l GSSG and 0.25 mol / l. 11-arginine.
d) Závislosť výťažku aktivácie od množstva formamidud) Dependence of the activation yield on the amount of formamide
Aktivácia sa vykonáva v rovnakej zmesi ako v odseku b), vzorky sa sledujú po 17 hodinách aktivácie pri teplote 0 °C.Activation is carried out in the same mixture as in b), the samples are monitored after 17 hours of activation at 0 ° C.
Závislosť aktivácie od formamiduActivation dependence on formamide
e) Závislosť výťažku aktivácie od redox-pufrae) Dependence of activation yield on redox buffer
Eluát sa zriedi v pomere 1:50 zmesou s obsahom 0,1 mol tris-HCl s pH 8,5, 1 mmol/1 EDTA, 0,25 mmol/1 1-arginínu a vzorky sa sledujú po 17 hodinách aktivácie pri teplote 0 °C.The eluate is diluted 1:50 with a mixture containing 0.1 mol of tris-HCl, pH 8.5, 1 mmol / l EDTA, 0.25 mmol / l 1-arginine, and the samples are monitored after 17 hours of activation at 0 C.
b) Závislosť výťažku aktivácie od pridania 1-arginínub) Dependence of activation yield on addition of 1-arginine
Eluát sa zriedi v pomere 1:50 zmesou, ktorá obsahuje 0,1 mol tris-HCl s pH 8,5, 1 mmol/1 EDTA, 5 mmol/1 GSH, 0,5 mmol/1 GSSG a potom sa zmes aktivuje 20 hodín pri teplote 0 °CThe eluate is diluted 1:50 with a mixture containing 0.1 mol of tris-HCl, pH 8.5, 1 mmol / l EDTA, 5 mmol / l GSH, 0.5 mmol / l GSSG, and then the mixture is activated with 20 ml. hours at 0 ° C
Závislosť aktivácie od množstva 1-arginínuDependence of activation on the amount of 1-arginine
Závislosť aktivácie od pomeru GSH/GSSGDependence of activation on GSH / GSSG ratio
f) Závislosť výťažku aktivácie od koncentrácie bielkovinyf) Dependence of activation yield on protein concentration
Eluát sa zriedi v pomere 1 : 10 až 1 : 100 zmesou s obsahom 0,1 M tris-HCl s pH 8,5, lmM EDTA, 0,5 mM GSSG, 5 mM GSH a 0,25 mmol/1 1-arginínu, stanovenie sa vykonáva po aktivácii 17 hodín pri teplote 0 °C.The eluate is diluted 1: 10 to 1: 100 with 0.1 M Tris-HCl pH 8.5, 1 mM EDTA, 0.5 mM GSSG, 5 mM GSH and 0.25 mmol / L 1-arginine. , the assay is performed after activation for 17 hours at 0 ° C.
Závislosť aktivácie cpDependence of cp activation
SK 278317 Β6SK 278317 Β6
g) Závislosť výťažku aktivácie od pridávania BSAg) Dependence of activation yield on BSA addition
Eluát sa zriedi v pomere 1:5 zmesou s obsahom 0,1 M tris-HCl s pH 8,5, 1 mM EDTA, 0,5 mM GSSG, 5 mM GSH a 0,25 mmol/1 1-arginínu a výsledok sa stanoví po 17 hodinách aktivácie pri teplote 0 °C.The eluate was diluted 1: 5 with 0.1 M tris-HCl pH 8.5, 1 mM EDTA, 0.5 mM GSSG, 5 mM GSH and 0.25 mmol / L 1-arginine and the result was determined after 17 hours of activation at 0 ° C.
Závislosť aktivácie od BSAActivation dependence on BSA
h) Závislosť výťažku aktivácie na pHh) Dependence of activation yield on pH
Eluát sa zriedi v pomere 1:5 zmesou s obsahom 0,1 M tris-HCl s pH 8,5, 1 mM EDTA, 0,5 mM GSSG, 5 mM GSH a 0,25 mmol/1 1-arginínu a výsledok sa stanoví po 17 hodinách atkivácie pri teplote 0 °C.The eluate was diluted 1: 5 with 0.1 M tris-HCl pH 8.5, 1 mM EDTA, 0.5 mM GSSG, 5 mM GSH and 0.25 mmol / L 1-arginine and the result was determined after 17 hours of ativation at 0 ° C.
Závislosť aktivácie od pHDependence of activation on pH
Claims (21)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19853537708 DE3537708A1 (en) | 1985-10-23 | 1985-10-23 | METHOD FOR ACTIVATING T-PA AFTER EXPRESSION IN PROKARYONTS |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SK752686A3 SK752686A3 (en) | 1996-10-01 |
SK278317B6 true SK278317B6 (en) | 1996-10-02 |
Family
ID=6284269
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SK7526-86A SK278317B6 (en) | 1985-10-23 | 1986-10-17 | Activation method of by genetic technology gained heterologous proteins with content of disulfidic bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms |
Country Status (26)
Country | Link |
---|---|
EP (3) | EP0393725B1 (en) |
JP (2) | JPH0728745B2 (en) |
KR (1) | KR900009139B1 (en) |
AT (2) | ATE98648T1 (en) |
AU (2) | AU590029B2 (en) |
CA (1) | CA1329157C (en) |
CZ (1) | CZ280727B6 (en) |
DD (1) | DD260517A5 (en) |
DE (3) | DE3537708A1 (en) |
DK (2) | DK175091B1 (en) |
ES (2) | ES2020498T3 (en) |
FI (2) | FI94050C (en) |
GR (2) | GR920300062T1 (en) |
HK (2) | HK153496A (en) |
HR (1) | HRP921075B1 (en) |
HU (2) | HUT43643A (en) |
IE (1) | IE62634B1 (en) |
IL (1) | IL80325A (en) |
PT (1) | PT83609B (en) |
SI (1) | SI8611796B (en) |
SK (1) | SK278317B6 (en) |
SU (1) | SU1607689A3 (en) |
UA (1) | UA6023A1 (en) |
WO (1) | WO1987002673A2 (en) |
YU (1) | YU47185B (en) |
ZA (1) | ZA868012B (en) |
Families Citing this family (43)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4766205A (en) * | 1985-11-13 | 1988-08-23 | Beatrice Companies, Inc. | Method for isolation of recombinant polypeptides in biologically active forms |
JP2581668B2 (en) * | 1985-11-27 | 1997-02-12 | 三井東圧化学株式会社 | Novel DNA sequence encoding human tissue plasminogen activator derived from normal human cells and vectors and cells containing the same |
US4777043A (en) * | 1985-12-17 | 1988-10-11 | Genentech, Inc. | Stabilized human tissue plasminogen activator compositions |
WO1988008428A1 (en) * | 1987-04-28 | 1988-11-03 | Amgen Inc. | Method for purifying granulocyte/macrophage colony stimulating factor |
DE3722082A1 (en) * | 1987-07-03 | 1989-01-12 | Behringwerke Ag | METHOD FOR DETERMINING THE ACTIVITY OF SERINE PROTEASES OR SERINE PROTEASE INHIBITORS |
CA1340586C (en) * | 1988-09-23 | 1999-06-08 | Cetus Corporation | Process for recovering microbially produced interferon-beta |
DE3832898A1 (en) * | 1988-09-28 | 1990-04-12 | Boehringer Mannheim Gmbh | PRAEPARATE OF EXPRESSED PLASMINOGEN ACTIVATOR IN PROKARYONS |
DE3835350A1 (en) * | 1988-10-17 | 1990-04-19 | Boehringer Mannheim Gmbh | ACTIVATION OF GENETICALLY MANUFACTURED ANTIBODY EXPRESSED IN PROKARYONS |
DE3903581A1 (en) * | 1989-02-07 | 1990-08-16 | Boehringer Mannheim Gmbh | FABRIC PLASMINOGEN ACTIVATOR DERIVATIVE |
DE3942143A1 (en) * | 1989-12-20 | 1991-06-27 | Boehringer Mannheim Gmbh | T-PA PRO STABILIZATION |
ATE154073T1 (en) * | 1990-08-20 | 1997-06-15 | Novo Nordisk As | PROCESS FOR PRODUCING BIOLOGICALLY ACTIVE IGF-1 BY USING AMINO-TERMINAL EXTENDED IGF-1 |
ES2119779T3 (en) * | 1990-09-05 | 1998-10-16 | Southern Cross Biotech Pty Ltd | SOLUBILIZATION OF PROTEINS IN ACTIVE FORMS. |
DE4037196A1 (en) * | 1990-11-22 | 1992-05-27 | Boehringer Mannheim Gmbh | METHOD FOR REACTIVATING DENATURED PROTEIN |
DE4113750A1 (en) | 1991-04-26 | 1992-10-29 | Boehringer Mannheim Gmbh | IMPROVEMENT OF RENATURATION IN THE SECRETION OF DISULFID-BRIDGED PROTEINS |
DE4139000A1 (en) * | 1991-11-27 | 1993-06-03 | Boehringer Mannheim Gmbh | METHOD OF GENERATING BIOLOGICALLY ACTIVE SS-NGF |
US5212091A (en) * | 1992-03-02 | 1993-05-18 | Monsanto Company | Method of producing tissue factor pathway inhibitor |
EP0586667A1 (en) * | 1992-03-24 | 1994-03-16 | Synergen, Inc. | Refolding and purification of insulin-like growth factor i |
ES2097426T3 (en) | 1992-12-02 | 1997-04-01 | Hoechst Ag | PROCEDURE FOR OBTAINING PROINSULIN WITH CORRECTLY UNITED CYSTINE BRIDGES. |
DE4405179A1 (en) * | 1994-02-18 | 1995-08-24 | Hoechst Ag | Method of obtaining insulin with correctly connected cystine bridges |
FR2729972B1 (en) * | 1995-01-31 | 1997-04-18 | Sanofi Sa | PROCESS FOR THE EXTRACTION OF PERIPLASMIC PROTEINS FROM PROKARYOTIC MICROORGANISMS IN THE PRESENCE OF ARGININ |
US5714371A (en) * | 1995-05-12 | 1998-02-03 | Schering Corporation | Method for refolding insoluble aggregates of hepatitis C virus protease |
US5728804A (en) * | 1995-06-02 | 1998-03-17 | Research Corporation Technologies, Inc. | Use of cyclodextrins for protein renaturation |
BR9709569B1 (en) * | 1996-06-11 | 2010-05-18 | process for activating denatured protein. | |
US7153943B2 (en) | 1997-07-14 | 2006-12-26 | Bolder Biotechnology, Inc. | Derivatives of growth hormone and related proteins, and methods of use thereof |
US6653098B1 (en) * | 1998-02-23 | 2003-11-25 | G. D. Searle & Co. | Method of producing mouse and human endostatin |
DE19850429A1 (en) * | 1998-10-27 | 2000-05-04 | Andre Schrattenholz | Fragments |
EP1048732A1 (en) * | 1999-04-26 | 2000-11-02 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Process for producing natural folded and secreted proteins |
EP1077263A1 (en) | 1999-07-29 | 2001-02-21 | F.Hoffmann-La Roche Ag | Process for producing natural folded and secreted proteins by co-secretion of chaperones |
AU7485301A (en) | 2000-05-16 | 2001-11-26 | Bolder Biotechnology Inc | Methods for refolding proteins containing free cysteine residues |
DE10105911A1 (en) | 2001-02-09 | 2002-08-14 | Roche Diagnostics Gmbh | Expression of the recombinant proteinase K from Tritirachium album in yeast |
DE10105912A1 (en) * | 2001-02-09 | 2002-08-14 | Roche Diagnostics Gmbh | Recombinant Proteinase K |
DE102005033250A1 (en) | 2005-07-15 | 2007-01-18 | Bioceuticals Arzneimittel Ag | Process for purifying G-CSF |
DE102006009437A1 (en) | 2006-03-01 | 2007-09-13 | Bioceuticals Arzneimittel Ag | G-CSF liquid formulation |
ZA200900229B (en) | 2006-07-14 | 2010-04-28 | Genentech Inc | Refolding of recombinant proteins |
US8617531B2 (en) | 2006-12-14 | 2013-12-31 | Bolder Biotechnology, Inc. | Methods of making proteins and peptides containing a single free cysteine |
BR112012022518A2 (en) | 2010-03-17 | 2020-10-13 | Biogenerix Gmbh | method for obtaining biologically active recombinant human g-csf |
CN103168046A (en) * | 2010-10-20 | 2013-06-19 | 米迪缪尼有限公司 | Methods for processing inclusion bodies |
HUP1200172A2 (en) | 2012-03-19 | 2013-10-28 | Richter Gedeon Nyrt | Methods for refolding g-csf from inclusion bodies |
HUP1200171A1 (en) | 2012-03-19 | 2013-09-30 | Richter Gedeon Nyrt | Methods for the production of polypeptides |
CN103852527B (en) * | 2012-12-05 | 2015-05-13 | 中国科学院大连化学物理研究所 | High-flux protein sample pre-treatment device |
US10457716B2 (en) | 2014-08-06 | 2019-10-29 | University Of Notre Dame Du Lac | Protein folding and methods of using same |
AU2017389916B2 (en) | 2016-12-30 | 2021-09-30 | Biogend Therapeutics Co., Ltd. | Recombinant polypeptides, compositions, and methods thereof |
EP4263568A1 (en) | 2020-12-18 | 2023-10-25 | Richter Gedeon Nyrt. | Methods for the purification of refolded fc-peptide fusion protein |
Family Cites Families (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5135481A (en) * | 1974-09-18 | 1976-03-25 | Fujiwa Kako Kk | KOJUNDOHITOROKINAAZE NO SEIHO |
US4468633A (en) | 1982-04-28 | 1984-08-28 | The Bendix Corporation | Adjustable microwave power combiner for a plurality of coaxially mounted impatt diodes |
GR79202B (en) | 1982-05-05 | 1984-10-22 | Genentech Inc | |
US4432895A (en) * | 1982-11-24 | 1984-02-21 | Hoffmann-La Roche Inc. | Monomeric interferons |
GR79124B (en) * | 1982-12-22 | 1984-10-02 | Genentech Inc | |
GB2138004B (en) * | 1983-03-25 | 1987-05-13 | Celltech Ltd | A process for the production of a protein |
JPS6051119A (en) * | 1983-08-30 | 1985-03-22 | Green Cross Corp:The | Dried pharmaceutical preparation of urokinase |
US4530787A (en) * | 1984-03-28 | 1985-07-23 | Cetus Corporation | Controlled oxidation of microbially produced cysteine-containing proteins |
US4748234A (en) * | 1985-06-26 | 1988-05-31 | Cetus Corporation | Process for recovering refractile bodies containing heterologous proteins from microbial hosts |
US4766205A (en) * | 1985-11-13 | 1988-08-23 | Beatrice Companies, Inc. | Method for isolation of recombinant polypeptides in biologically active forms |
FR2596360B1 (en) * | 1986-04-01 | 1989-02-17 | Sotralentz Sa | CONTAINER ON PALLET WITH FOLDED AND REINFORCED MESH PROTECTION DEVICE |
JPH0651119A (en) * | 1992-07-28 | 1994-02-25 | Sekisui Chem Co Ltd | Production of phase difference plate |
-
1985
- 1985-10-23 DE DE19853537708 patent/DE3537708A1/en active Granted
-
1986
- 1986-10-10 IE IE268386A patent/IE62634B1/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-15 IL IL80325A patent/IL80325A/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-17 SK SK7526-86A patent/SK278317B6/en unknown
- 1986-10-17 CZ CS867526A patent/CZ280727B6/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-21 YU YU179686A patent/YU47185B/en unknown
- 1986-10-21 SI SI8611796A patent/SI8611796B/en unknown
- 1986-10-22 DD DD29546886A patent/DD260517A5/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-22 ZA ZA868012A patent/ZA868012B/en unknown
- 1986-10-22 CA CA000521121A patent/CA1329157C/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 KR KR1019870700536A patent/KR900009139B1/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-23 EP EP90109721A patent/EP0393725B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 DE DE86114731T patent/DE3689404D1/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 PT PT83609A patent/PT83609B/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-23 EP EP86114731A patent/EP0219874B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 AT AT86114731T patent/ATE98648T1/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-23 JP JP61505882A patent/JPH0728745B2/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 WO PCT/EP1986/000610 patent/WO1987002673A2/en active IP Right Grant
- 1986-10-23 EP EP86906320A patent/EP0253823A1/en active Pending
- 1986-10-23 HU HU865290A patent/HUT43643A/en unknown
- 1986-10-23 UA UA4202987A patent/UA6023A1/en unknown
- 1986-10-23 DE DE3650449T patent/DE3650449D1/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 AU AU65993/86A patent/AU590029B2/en not_active Ceased
- 1986-10-23 AT AT90109721T patent/ATE131489T1/en not_active IP Right Cessation
- 1986-10-23 HU HU865290A patent/HU204855B/en unknown
- 1986-10-23 ES ES90109721T patent/ES2020498T3/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-10-23 ES ES86114731T patent/ES2061434T3/en not_active Expired - Lifetime
-
1987
- 1987-06-22 FI FI872753A patent/FI94050C/en not_active IP Right Cessation
- 1987-06-22 SU SU874202987Q patent/SU1607689A3/en active
- 1987-06-23 DK DK198703203A patent/DK175091B1/en not_active IP Right Cessation
-
1989
- 1989-09-13 AU AU41321/89A patent/AU607083B2/en not_active Expired
-
1991
- 1991-04-12 JP JP3079762A patent/JPH0824594B2/en not_active Expired - Lifetime
-
1992
- 1992-08-31 GR GR92300062T patent/GR920300062T1/en unknown
- 1992-10-16 HR HRP-1796/86A patent/HRP921075B1/en not_active IP Right Cessation
-
1993
- 1993-09-03 FI FI933868A patent/FI95578C/en not_active IP Right Cessation
-
1995
- 1995-12-14 GR GR950403376T patent/GR3018410T3/en unknown
-
1996
- 1996-08-08 HK HK153496A patent/HK153496A/en not_active IP Right Cessation
- 1996-08-08 HK HK153596A patent/HK153596A/en not_active IP Right Cessation
-
2000
- 2000-12-18 DK DK200001897A patent/DK175109B1/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
SK278317B6 (en) | Activation method of by genetic technology gained heterologous proteins with content of disulfidic bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms | |
US5453363A (en) | Process for the activation of t-PA or Ing after genetic expression in prokaryotes | |
US6037452A (en) | Poly(alkylene oxide)-Factor VIII or Factor IX conjugate | |
EP1893632B1 (en) | Selective reduction and derivatization of engineered factor vii proteins comprising at least one non-native cysteine | |
EP0364926B1 (en) | Activation of recombinant antibodies expressed in prokaryotes | |
JPH11511759A (en) | Method for activating denatured protein | |
EP0331464A2 (en) | Method of refolding urokinase precursor-like protein | |
Martinek et al. | Reactivation of enzymes irreversibly denatured at elevated temperature Trypsin and α-chymotrypsin covalently immobilized on sepharose 4B and in polyacrylamide gel | |
Tang et al. | Assisted refolding of recombinant prochymosin with the aid of protein disulphide isomerase | |
Webster et al. | A dye-photosensitized reaction that generates stable protein-protein crosslinks | |
Ghosh et al. | Thermostability of β‐xylosidase from Aspergillus sydowii MG49 | |
CZ280848B6 (en) | Activation method of heterologous proteins obtained by genetic technology and containing disulfide bridges of eukaryotic origin after expression in prokaryotic organisms | |
Nohara et al. | High performance in refolding of Streptomyces griseus trypsin by the aid of a mutant of Streptomyces subtilisin inhibitor designed as trypsin inhibitor | |
Walter | Characterization of agarose-bound trypsin | |
Fountoulakis | Resistance of recombinant proteins to proteolysis during folding and in the folded state | |
Heimburger | The mechanism of action of sstreptokinase. | |
Yamamoto et al. | Renaturation of irreversibly thermodeactivated invertase | |
JPH0380078A (en) | Method for reholding urokinase precursor-like protein | |
JPS6226298A (en) | Improvement for folding protein containing disulfide bridge |