RU2799601C1 - Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура Aphtae epizooticae типа А для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А - Google Patents

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии и касается нового штамма вируса ящура Aphtae epizooticae типа А семейства Picornaviridae рода Aphthovirus, депонированного во Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вируса ящура и других патогенов животных (ГКШМ) ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером: №378 - деп/22-12 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ», штамм А/Афганистан/2017 серотипа А вируса ящура. Представленный штамм репродуцируется в перевиваемых культурах клеток почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), почки свиньи (IB-RS-2), почки новорожденного сирийского хомячка (ВНК-21). В перевиваемой суспензионной культуре клеток почки сирийского хомячка ВНК-21/SUSP/ARRIAH в течение 18,0-19,5 часов инкубирования концентрация 146S компонента штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура достигает значений 1,74±0,08 мкг/см³ (72,44±2,42%), сохраняя исходные характеристики при пассировании в клеточной культуре на протяжении 10 пассажей. Представленный штамм может быть использован для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А и для контроля антигенной активности противоящурных вакцин. 1 ил., 4 табл., 5 пр.

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии, может быть использовано для разработки и изготовления средств диагностики, специфической профилактики ящура типа А.

Ящур - высококонтагиозное вирусное заболевание парнокопытных животных, которое характеризуется высокой заболеваемостью, что влечет за собой ограничения на международную торговлю скотом и его продукцией [1].

Возбудителем является РНК-содержащий безоболочечный вирус рода Aphthovirus семейства Picornaviridae. Выделяют 7 различных серотипов вируса ящура: О, А, Азия-1, С и SAT-1, SAT-2, SAT-3. Геном кодирует 4 структурных белка: VP₁, VP₂, VP₃, VP₄ [2].

Антигенная изменчивость происходит внутри типов, главным образом в результате процесса ступенчатого «дрейфа», в процессе которого возникает замена аминокислот в полипептидных фрагментах (антигенных эпитопах), экспонированных на поверхности капсидных белков вируса ящура. Изменчивость вируса в пределах одного генотипа приводит к возникновению новых изолятов, которые отличаются по степени вирулентности и иммуногенности от ранее выделенных штаммов вируса ящура. Белок VP₁ является наиболее вариабельным, поскольку на него приходится около 90% мутаций всех структурных генов. Самыми вариабельными областями являются участки 40-60, 130-160 и 190-213 а.о. [2, 3]. Участок поверхностного белка VP₁ в регионе 130-160 а.о. отличается высокой вариабельностью, поскольку участвует в процессе связывания с рецепторами клетки-хозяина. Изменчивость данного региона дает возможность вирусу ящура взаимодействовать с рецепторами клеток разных типов и облегчает переход от одного вида хозяина к другому [4, 5].

Антигенная изменчивость наиболее выражена у вируса ящура типа А, что приводит к проблемам в специфической профилактики ящура при применении противоящурных вакцин, а также затрудняется штаммоспецифическая диагностика выделенных изолятов вируса ящура. В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики и специфической иммунопрофилактики в отношении вируса ящура типа А.

На территории Российской Федерации вспышки ящура имеют спорадический характер и вызваны заносом возбудителя с территории сопредельных стран. Регионы РФ, граничащие с Китаем, Монголией, Азербайджаном и Грузией подвержены очень высокой степени риска заноса ящура [6].

В Российской Федерации вспышки ящура типа А регистрировались в 2013-2014 гг. На территории Забайкальского края и Амурской области был выявлен вирус ящура типа А, относящийся к генотипу A/ASIA/SEA-97. На территории Карачаево-Черкесской Республики и Краснодарского края вспышки ящура были вызваны вирусом, относящимся к генотипу A/ASIA/Iran-05^SIS-10 [6].

В настоящее время известны производственные штаммы вируса ящура типа А, которые применяются для производства средств специфической профилактики ящура:

- штамм А №550/Азербайджан/64 (генотип A/ASIA/Iraq-64),

- штамм А₂₂/Ирак 24/64 (генотип A/ASIA/Iraq-64),

- штамм А/Турция/2006 (генотип A/ASIA/Iran-05),

- штамм А №2166/Краснодарский/2013 (генотип A/ASIA/Iran-05^SIS-10),

- штамм А №2155/Забайкальский/2013 (генотип A/ASIA/SEA-97),

- штамм А №2269/ВНИИЗЖ/2015 (генотип A/ASIA/G-VII).

В ФГБУ «ВНИИЗЖ» из Всемирной справочной лаборатории института Пирбрайта (the World Reference Laboratory for Foot-and-Mouth Disease, the Pirbright institute, Великобритания) для проведения научных исследований в 2022 г. поступил изолят «А/AFG/14/2017». Его применяли для проведения научно-исследовательских работ для получения штамма А/Афганистан/2017.

По результатам сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей выделенный изолят принадлежит к топотипу ASIA, генетической линии Iran-05 сублинии FAR-11 вируса ящура типа А, который значительно отличается от производственных штаммов вируса ящура типа А.

Настоящее изобретение позволяет расширить арсенал производственных штаммов вируса ящура серотипа А, обладающих высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде, пригодный для контроля антигенной и иммуногенной активности вакцин, изготовления чувствительных и высокоспецифичных диагностических тест-систем и высоко иммуногенных вакцинных препаратов путем получения штамма вируса ящура А/Афганистан/2017 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А.

Изолят «А/AFG/14/2017» вируса ящура был выделен от крупного рогатого скота на территории Афганистана в провинции Вонаба (Wonabah) в населенном пункте Панджшер (Panjsher) в 2017 году.

Штамм вируса ящура А/Афганистан/2017 депонирован в Коллекцию штаммов микроорганизмов Федерального государственного бюджетного учреждения «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»), под регистрационным номером: №378 - деп / 22-12 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ».

Экспериментально подтверждена возможность использования штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура для изготовления средств диагностики и профилактики ящура типа А.

Сущность изобретения отражена на дендрограмме (фиг. 1), отражающей филогенетические взаимоотношения штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура с эпизоотическими штаммами серологического типа А. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP₁.

Сущность изобретения пояснена следующими перечнями последовательностей:

SEQ ID NO: 1 представляет последовательность нуклеотидов гена белка VP₁ штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура типа А;

SEQ ID NO: 2 представляет последовательность аминокислот гена белка VP₁ штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура типа А.

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура характеризуется следующими признаками и свойствами.

Морфологические признаки

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура серотипа А относится к отряду Picornavirales, семейству Picornaviridae, роду Aphthovirus, виду Foot-and-Mouth Disease virus и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона иксаэдрическая, размер 20-25 нм. Вирион состоит из молекулы одноцепочечной молекулы РНК с позитивным смыслом, заключенной в белковую оболочку. Она состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.

Антигенные свойства

По антигенным свойствам штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура относится к серотипу А. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности. У переболевших животных в сыворотке крови образуются типоспецифические антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе (ИФА) и реакции микронейтрализации (РМН).

Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура гена белка VP₁ штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура принадлежит к генотипу A/ASIA/Iran-05^FAR-11.

Антигенное родство (r₁) штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура изучено в перекрестном исследовании штамма со специфическими сыворотками, полученными на следующие производственные штаммы вируса ящура:

- штамм А №550/Азербайджан/64 (генотип A/ASIA/Iraq-64),

- штамм А₂₂/Ирак 24/64 (генотип A/ASIA/Iraq-64),

- штамм А/Турция/2006 (генотип A/ASIA/Iran-05),

- штамм А №2166/Краснодарский/2013 (генотип A/ASIA/Iran-05^S1S-10),

- штамм А №2155/Забайкальский/2013 (генотип A/ASIA/SEA-97),

- штамм А №2269/ВНИИЗЖ/2015 (генотип A/ASIA/G-VII),

в реакции микронейтрализации.

Титр референтных сывороток крови КРС, полученных путем иммунизации животных моновалентными вакцинами из производственных штаммов вируса ящура серотипа А, против 10² ТЦД₅₀ гомологичного и гетерологичного вируса определяли в РМН при перекрестном титровании, рассчитывая значения с использованием уравнения линейной регрессии, и выражали в lg. Значение r₁ определяли, как антилогарифм разности lg титров сыворотки против гетерологичного и гомологичного вируса [7, 8, 9].

Значение r₁ в РМН интерпретировали следующим образом:

при ≥0,3 - исследуемый и производственный штаммы вируса ящура являются близкородственными;

при <0,3 - исследуемый образец штамма вируса ящура отличается от производственного штамма.

Показатель r₁ при изучении штамма А/Афганистан/2017 составил от 0,06 до 0,24, что свидетельствует об отсутствии антигенного родства с производственными штаммами вируса ящура серотипа А (таблица 1).

Гено- и хемотаксономическая характеристики

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура является РНК(+) - содержащим вирусом с молекулярной массой 7×10⁶ Д.

Нуклеиновая кислота представлена одноцепочной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×10⁶ Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP₁, VP₂, VP₃ и VP₄. Липопротеидная оболочка отсутствует.

Основным антигенным белком является VP₁. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирусная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, один - 3D-РНК-зависимая РНК-полимераза, участвующая в репликации РНК для сборки новых вирионов.

Физические свойства

Масса вириона составляет 8,4×10^-18 г. Плавучая плотность 1,45 г/см³.

Устойчивость к внешним факторам

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура устойчив к детергентам и органическим растворителям, таким как эфир, хлороформ, фреон, ацетон. Наиболее стабилен при рН 7,4-7,6. Сдвиги рН как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам (выше 38°С).

Дополнительные признаки и свойства

Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.

Патогенность - патогенен для парнокопытных животных.

Вирулентность - вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.

Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 5 пассажей (срок наблюдения) на перевиваемых культурах.

Биотехнологические характеристики

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура репродуцируется в перевиваемых культурах клеток: почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), почки свиньи (IB-RS-2), почки сирийского хомячка (ВНК-21).

При испытании было проведено 5 последовательных пассажей штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура в перевиваемых культурах клеток IB-RS-2, ПСГК-30, ВНК-21. Биологические свойства характеризовали путем определения инфекционной активности вируса каждого пассажа в перевиваемой клеточной линии IB-RS-2 и на естественно восприимчивых животных - крупном рогатом скоте (КРС) и свиньях.

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его исследования, которые не ограничивают объем изобретения.

Пример 1. Исследование биологических свойств штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура при репродукции в монослойных перевиваемых клеточных культурах.

При выделении изолята «А/AFG/14/2017» вируса ящура с целью получения его однородной популяции, обладающей оптимальными биотехнологическими свойствами, использовали комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов, предусмотренных методическими указаниями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [7].

Биологические и вирусологические методы включали в себя метод выделения в культуре клеток и адаптацию вируса ящура к перевиваемым клеточным линиям.

Выделение вируса ящура проводили в монослойных перевиваемых клеточных линиях ПСГК-30, IB-RS-2, ВНК-21 с последующей адаптацией в течение 5 последовательных пассажей. Культуры клеток выращивали на соответствующих питательных средах, в стационарных условиях во флаконах с площадью поверхности 25 см², отмывали от ростовой среды и заражали 10%-ной суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1-10 ТЦД₅о на клетку), приготовленной в растворе Хэнкса с 0,5% гидролизата лактальбумина и антибиотиками по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов вирусную суспензию предварительно обрабатывали 10%-ным раствором хлороформа. После 30-минутного контакта вируса с клеточной культурой при температуре 37°С во флаконы вносили по 5,0 см³ поддерживающей среды и инкубировали при температуре 37°С до появления цитопатического действия (ЦПД) в культуре клеток. При наличии ЦПД (округление клеток, повышение их оптической плотности, дегенерация и отделение клеток от поверхности субстрата) не менее 90% клеток, флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000 g в течение 15 мин. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей. Вирус считался адаптированным к культурам клеток, если в течение не менее 24 часов проявлялось 90-100% ЦПД в монослое клеточных культур. Адаптация эпизоотического изолята «А/AFG/14/2017» к различным клеточным линиям наступала на уровне пятого пассажа. Титр инфекционной активности определяли с помощью разработанной ранее методики [10]. Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 2, данные которой свидетельствуют о высокой адаптационной способности изолята «А/AFG/14/2017» вируса ящура к использованным клеточным культурам. Так, в монослойной культуре клеток ПСГК-30 за 18 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:8 и титром инфекционной активности 7,14±0,10 lg ТЦД₅₀/см³. В монослойной культуре клеток IB-RS-2 за 15 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:8 и титром инфекционной активности 7,25±0,15 lg ТЦД₅₀/см³. В монослойной культуре клеток ВНК-21 за 14 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:8 и титром инфекционной активности 7,30±0,20 lg ТЦД₅₀/СМ³. В результате культивирования изолята «А/AFG/14/2017» в клеточных линиях ПСГК-30 и IB-RS-2 в растворе Хэнкса с 0,5% гидролизата лактальбумина и антибиотиками после пятого пассажа был получен штамм А/Афганистан/2017 с охарактеризованными биологическими и культуральными свойствами, который далее использовали для исследования его свойств.

Пример 2. Оценка биологических свойств штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура на крупном рогатом скоте.

Заражение КРС исходным штаммом вируса ящура проводили интрадермолингвально (I пассаж). Адаптацию и наработку штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура на КРС проводили в течение 2 последовательных пассажей. С целью определения титра инфекционной активности адаптированного штамма из афт на этапе 2 пассажа на КРС получали 10%-ную вирусную суспензию, из которой готовили последовательные 10-кратные разведения на 1/15 М фосфатно-солевом буферном растворе (ФБР). Подготовленные разведения с 10^-2 по 10^-6 вводили интрадермолингвально в 4 точки по 0,1 см³ двум головам КРС. Учет результатов титрования на животных проводили спустя 24 ч по наличию афт на месте введения разведений вируса ящура штамма А/Афганистан/2017. Титр инфекционной активности на КРС штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура на стадии 2 пассажа на КРС составил 5,00 lg ИД₅₀/0,1 см³. Таким образом, была получена 10%-ная афтозная суспензия вируса ящура штамма А/Афганистан/2017 (2 пассаж на КРС) с титром инфекционной активности 5,00 lg ИД₅₀/0,1 см³.

Пример 3. Исследование биологических свойств штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура на свиньях.

Заражение свиней исходным штаммом А/Афганистан/2017 вируса ящура проводили внутрикожно на стадии первого пассажа в область венчика передних конечностей. Адаптацию и наработку штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура на свиньях вели в течение 2 последовательных пассажей. С целью определения титра инфекционной активности адаптированного штамма из афт 2 пассажа на свиньях получали 10%-ную вирусную суспензию, из которой готовили последовательные 10-кратные разведения с использованием в качестве растворителя 1/15 М ФБР. Подготовленные разведения с 10^-2 по 10^-6 вводили внутрикожно в венчики копытец по 0,1 см³ в 4 точки на каждый палец конечности одного разведения, из расчета 1 разведение на 2 копытца 1 конечности каждому из 2 подопытных подсвинков.

Учет результатов титрования проводили через 24 ч по наличию афт на месте введения разведений. Титр инфекционной активности на свиньях для штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура (2 пассаж на свиньях в виде 10%-ной афтозной суспензии) составил 5,00 lg ИД₅₀/0,1 см³.

Пример 4. Исследование биологических свойств штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура при репродукции в перевиваемой суспензионной клеточной линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH.

Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура репродуцировали в суспензионной перевиваемой культуре клеток из почки новорожденного сирийского хомячка ВНК-21 /SUSP/ARRIAH. В качестве поддерживающей среды использовали среду Игла, с добавлением ферментативного гидролизата мышц сухого (ФГМС), гидролизата белков крови сухого (ГБКС) при рН среды 7,4-7,6. Клеточную линию заражали вирусом из расчета 0,001-0,100 ТЦД₅₀/клетка.

Культивирование штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура осуществляли при температуре 37±1°С в течение 18,0-19,5 ч до достижения цитопатического действия вируса, соответствующего 90-100%. Полученную вируссодержащую суспензию контролировали на стерильность и содержание 146S компонента и общего вирусного белка (ОВБ). Концентрация ОВБ в суспензии составляла 2,40±0,11 мкг/см³. Значения титра инфекционной активности вируса, а также процентное содержание 146S компонента штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура отражены в таблице 3, из данных которой видно, что при средней концентрации клеток ВНК-21/SUSP/ARRIAH, равной 4,05±0,10 млн клеток/см³, дозе заражения 0,005 ТЦД₅₀/кл. и продолжительности репродукции вируса 18,65±0,53 ч средний титр инфекционной активности возбудителя ящура был равен 7,22±0,06 lg ТЦД₅₀/ см³. Концентрацию 146S компонента вируса ящура определяли с помощью ранее разработанной методики [11]. Содержание данного компонента составило 72,74±2,42% (1,74±0,08 мкг/см³).

Пример 5. Оценка типовой специфичности и активности штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура.

Оценку типовой специфичности и активности штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура проводили в реакции связывания комплемента (РСК).

К полученному антигену штамма А/Афганистан/2017 вируса ящура, взятому в объеме 0,4 см³ в цельном виде и в разведениях 1:2, 1:4, 1:8, 1:16 добавляли по 0,1 см³ гомологичной и гетерологичных гипериммунных сывороток, полученных на вирус ящура типов А, О, Азия-1 в рабочем (удвоенном) титре и 0,1 см³ комплемента в рабочем разведении. Смесь выдерживали в водяной бане в течение 20 мин при температуре 37±0,5°С. Затем вносили по 0,2 см³ гемолитической системы и выдерживали 30 мин при температуре 37±0,5°С. Положительный результат реакции соответствовал 100%-ной задержке гемолиза эритроцитов барана («4 креста»). Параллельно проводили контрольные реакции без сыворотки, без комплемента и компонентов реакции.

В качестве реагентов в РСК использовали сыворотки ящурные типоспецифические гипериммунные морских свинок, полученные на производственные штаммы вируса ящура А/Афганистан/2017 (предлагаемое изобретение), А/Турция/2006, О/Забайкальский/2016, Азия-1/Таджикистан/2011, комплемент сухой для РСК, гемолизин (сыворотка гемолитическая), эритроциты барана 2% (взвесь на физиологическом растворе, рН=7,05-7,15). В качестве контроля использовали антигены вируса ящура штаммов А/Афганистан/2017, А/Турция/2006, О/Забайкальский/2016, Азия-1/Таджикистан/2011.

Результаты исследования отражены в таблице 4, из которой следует, что штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура обладает выраженной типовой специфичностью, относится к вирусу ящура серотипа А и активен в РСК в разведении 1:8.

Источники информации, принятые во внимание при составлении описания изобретения к заявке на выдачу патента Российской Федерации на изобретение «Штамм А/Афганистан/2017 вируса ящура Aphtae epizooticae типа А для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А».

1. OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. 7th ed. Paris, 2018. - Ch. 3.1.8.

2. Пономарев А.П., Узюмов В.Л. Вирус ящура: структура, биологические и физико-химические свойства. Владимир: Фолиант, 2006. - 250 с.

3. Alexandersen, S. The pathogenesis and diagnosis of foot and mouth disease / S. Alexsandersen, Z. Zhang, A.L. Donaldson // J. Compr. Pathol. - 2003. - V. 129. - P. 268-282.

4. Жильцова M.B. Биологические свойства эпизоотических изолятов вируса ящура типов А, О и Азия-1: Автореф… дис. кан. наук. - Владимир: 2008. - 23 с.

5. Бурдов А.Н., Дудников А.И., Малярец П.В. и др. Ящур. / Под ред. А.Н. Бурдова. - М., Агропромиздат, 1990, 320 с.

6. Анализ эпизоотической ситуации по ящуру в России с 2010 г. по март 2019 г. / В.П. Семакина, Т.П. Акимова, В.А. Мищенко, А.К. Караулов // Ветеринария. - 2019. - №11. - С. 16-20.

7. Методические рекомендации по выделению и идентификации штаммов вируса ящура /А.А. Гусев, В.М. Захаров, Ж.А. Шажко и др.; ФГУ «ВНИИЗЖ». - Владимир. 2002. - 31 с.

8. Методические рекомендации по определению антигенного соответствия между эпизоотическими изолятами и производственными штаммами вируса ящура в перекрестной реакции микронейтрализации /С.Р. Кременчугская, М.В. Жильцова, Т.К. Майорова; ФГБУ «ВНИИЗЖ». - Владимир: 2012. - 36 с.

9. Эпизоотологические особенности ящура типа А, вызванного гетерологичными штаммами вируса / А.В. Мищенко, В.А. Мищенко, В.В. Дрыгин [и др.] // Ветеринария. - 2014. - №11. - С. 20-24.

10. Патент RU №2674076 С1, МПК А61К 39/135 C12Q 1/68, опубл. 04.12.2018.

11. Патент RU №2712769 С1, МПК G01M 33/58, C12Q 1/68, опубл. 31.01.2020.

Claims (1)

1. Штамм вируса ящура Aphtae epizooticae А/Афганистан/2017, депонированный во Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вируса ящура и других патогенов животных ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером: №378 - деп/22-12 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ», для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа А.

Images