RU2073972C1 - Способ замораживания красных кровяных клеток и рама для замораживания красных кровяных клеток - Google Patents

Способ замораживания красных кровяных клеток и рама для замораживания красных кровяных клеток Download PDF

Info

Publication number
RU2073972C1
RU2073972C1 SU905001485A SU5001485A RU2073972C1 RU 2073972 C1 RU2073972 C1 RU 2073972C1 SU 905001485 A SU905001485 A SU 905001485A SU 5001485 A SU5001485 A SU 5001485A RU 2073972 C1 RU2073972 C1 RU 2073972C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
red blood
blood cells
oec
freezing
bag
Prior art date
Application number
SU905001485A
Other languages
English (en)
Inventor
Джон Глинн Томас Майкл
Хелен Белл Сюзан
Грехем Нэш Стюарт
Сидней Пэрри Эрнст
Original Assignee
Министр обороны Великобритании
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Министр обороны Великобритании filed Critical Министр обороны Великобритании
Application granted granted Critical
Publication of RU2073972C1 publication Critical patent/RU2073972C1/ru

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14—Blood; Artificial blood
    • A61K35/18—Erythrocytes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0205—Chemical aspects
    • A01N1/021—Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0221—Freeze-process protecting agents, i.e. substances protecting cells from effects of the physical process, e.g. cryoprotectants, osmolarity regulators like oncotic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0236—Mechanical aspects
    • A01N1/0263—Non-refrigerated containers specially adapted for transporting or storing living parts whilst preserving, e.g. cool boxes, blood bags or "straws" for cryopreservation
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0236—Mechanical aspects
    • A01N1/0263—Non-refrigerated containers specially adapted for transporting or storing living parts whilst preserving, e.g. cool boxes, blood bags or "straws" for cryopreservation
    • A01N1/0268—Carriers for immersion in cryogenic fluid, both for slow-freezing and vitrification, e.g. open or closed "straws" for embryos, oocytes or semen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61J—CONTAINERS SPECIALLY ADAPTED FOR MEDICAL OR PHARMACEUTICAL PURPOSES; DEVICES OR METHODS SPECIALLY ADAPTED FOR BRINGING PHARMACEUTICAL PRODUCTS INTO PARTICULAR PHYSICAL OR ADMINISTERING FORMS; DEVICES FOR ADMINISTERING FOOD OR MEDICINES ORALLY; BABY COMFORTERS; DEVICES FOR RECEIVING SPITTLE
    • A61J1/00—Containers specially adapted for medical or pharmaceutical purposes
    • A61J1/14—Details; Accessories therefor
    • A61J1/16—Holders for containers
    • A61J1/165—Cooled holders, e.g. for medications, insulin, blood, plasma
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/02—Blood transfusion apparatus
    • A61M1/0272—Apparatus for treatment of blood or blood constituents prior to or for conservation, e.g. freezing, drying or centrifuging
    • A61M1/0277—Frames constraining or supporting bags, e.g. during freezing
    • F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
    • F25—REFRIGERATION OR COOLING; COMBINED HEATING AND REFRIGERATION SYSTEMS; HEAT PUMP SYSTEMS; MANUFACTURE OR STORAGE OF ICE; LIQUEFACTION SOLIDIFICATION OF GASES
    • F25D—REFRIGERATORS; COLD ROOMS; ICE-BOXES; COOLING OR FREEZING APPARATUS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR
    • F25D25/00—Charging, supporting, and discharging the articles to be cooled
    • F25D25/005—Charging, supporting, and discharging the articles to be cooled using containers
    • F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
    • F25—REFRIGERATION OR COOLING; COMBINED HEATING AND REFRIGERATION SYSTEMS; HEAT PUMP SYSTEMS; MANUFACTURE OR STORAGE OF ICE; LIQUEFACTION SOLIDIFICATION OF GASES
    • F25D—REFRIGERATORS; COLD ROOMS; ICE-BOXES; COOLING OR FREEZING APPARATUS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR
    • F25D2331/00—Details or arrangements of other cooling or freezing apparatus not provided for in other groups of this subclass
    • F25D2331/80—Type of cooled receptacles
    • F25D2331/801—Bags

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Mechanical Engineering (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Combustion & Propulsion (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Thermal Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medical Preparation Storing Or Oral Administration Devices (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)
  • Crystals, And After-Treatments Of Crystals (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Disintegrating Or Milling (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

Использование: для замораживания красных кровяных клеток с целью их долговременного хранения без потери их свойств. Сущность изобретения: способ замораживания стандартного объема донорской крови для значительного хранения и последующего получения чистого материала для переливания, который предполагает ее центрифугирование для отделения красных кровяных клеток от плазмы и тромбоцитов до объема глобулярной массы последних не менее 90%, перенос красных кровяных клеток в мешок для замораживания, содержащий оксиэтиловый крахмал ОЭК при соотношении веса ОЭК к объему красных кровяных клеток не более 7%, предпочтительно 6%. Устройство выполнено в виде рамы для размещения мешка с замораживаемой смесью (жидкий азот). Рама состоит из двух дугообразных перфорированных алюминиевых пластин, закраины которых изогнуты навстречу друг другу и являются направляющими для плоско-параллельного перемещения пластин. Пластины скреплены прижимными элементами из упругого материала. 2 с. и 8 з.п. ф-лы, 4 ил.

Description

Изобретение относится к замораживанию красных кровяных клеток (эритроцитов) с целью их долговременного хранения без потери свойств, необходимых для использования при переливании крови.
Способы сохранения крови для использования при переливании крови хорошо известны. Обычно ее хранят охлажденной до 4oС. В этих условиях она сохраняет жизнеспособность на протяжении примерно 5 недель. В связи с этим, чтобы обеспечить непрерывный запас пригодной для переливания крови, приходится постоянно возобновлять его, пользуясь услугами доноров. К сожалению, выдаются периоды, например период рождественских праздников, когда поступление донорской крови значительно снижается. Случается также, что во время стихийных бедствий и катастроф ощущается недостаток пригодной для переливания крови в тех или иных районах. Кроме того, становится все больше людей, желающих иметь запас собственной крови, например на случай определенных видов хирургических операций. Все это делает весьма актуальной проблему длительного хранения крови и разработки соответствующих методик.
Сохранение крови на протяжении длительных периодов возможно благодаря ее охлаждению до очень низкой температуры. Однако, к сожалению, кровь нельзя замораживать в цельномвиде. Обычно ее хранят в стандартных емкостях примерно на 450 мл, что соответствует объему крови, получаемой от донора за один прием. При переливании больному обычно вводят определенное количество таких стандартных объемов. Замораживание одного объема сопровождается гемолизом красных кровяных клеток, что делает кровь непригодной для дальнейшего переливания. В процессе гемолиза происходит освобождение калия, обладающего кардиотоксическим действием, и материала стромы (клеточных остатков), которые могут отрицательно влиять на почечную функцию. Принято считать, что пригодные для переливания крови эритроциты могут быть гемолизированы не более чем на 1% Методика хранения крови при низкой температуре предполагает ее центрифугирование с целью отделения плазмы и тромбоцитов от красных кровяных телец и последующее смешение эритроцитов с криопротектором. Эту смесь замораживают при очень низкой температуре, обычно используя жидкий озон. В качестве криопротектора наиболее часто используют глицерин. К сожалению, он обладает токсической активностью, в связи с чем препараты красных кровяных клеток, предназначенные для переливания, предварительно приходится несколько раз отмывать, чтобы освободиться от глицерина. Эта процедура требует использования дорогостоящего оборудования, высокой квалификации персонала и стерильных производственных площадей. На промывку единиц хранения препарата затрачивается приблизительно 20 мин, причем теряется от 15 до 20% клеток. Более перспективен в качестве криопротектора оксиэтиловыйкрахмал (ОЭК) или левосан.
В патенте США N 3758382 приведено описание способа смешивания цельной крови объемом 55 мл, содержащей антикоагулянт (подкисленный дестрозо-цитрат), с 40%-ным ОЭК (вес/объем) со средним молекулярным весом 40000 70000 до конечной концентрации ОЭК 12 14% (вес/объем). Смесь погружают в жидкий азот при -190oC и перемешивают со скоростью 200 оборотов в минуту до замерзания. После хранения при -140oС на протяжении недели смесь оттаивают, погружают ее в водяную баню при 47oС на 60 с при непрерывном перемешивании со скоростью 160 циклов в минуту. Таким путем достигается выход красных кровяных клеток порядка 99% (в среднем 97,4%). Используемые для замораживания этим методом объемы крови (55 мл) составляют лишь часть стандартной единицы хранения, что вызывает нежелательные последствия при использовании обычной процедуры переливания.
Разрабатывая процесс криоконсервации стандартных единиц хранения крови, авторы патента США N 4018911 предложили способ замораживания с применением ОЭК, имеющего молекулярный вес в среднем 150000. При этом кровь центрифугируют для отделения красных кровяных телец от плазмы и тромбоцитов и часть плазмы смешивают с ОЭК. Последнее необходимо для защиты красных кровяных клеток. Полученную таким образом смесь объединяют с примерно равным объемом эритроцитов таким образом, чтобы конечная концентрация ОЭК составляла приблизительно 14% На этой стадии исходный стандартныйобъем донорской крови (450 мл) уменьшается до 405 мл.
Смесь плазмы и ОЭК вместе с добавленными красными кровяными тельцами помещают в мешочек, который после дополнительного перемешивания закрепляют в держателе, установленном на маятниковой качалке. Держатель представляет собой устройство из двух перфорированных металлических пластин, скрепленных между собой и сидящих на шарнирах. Мешочек с кровью находится между пластинами, причем постоянство поперечного сечения во время замораживания обеспечивается высокой жесткостью конструкции, которая достигается изготовлением перфорированных пластин из нержавеющей стали. Постоянство поперечного сечения ускоряет замораживание, в процессе которого стальные пластинки не позволяют мешочку смещаться во время перемешивания крови. Встряхивание мешочка с кровью производится в жидком азоте, в который в вертикальном положении помещают держатель с закрепленной в нем емкостью. Встряхивание содержимого мешочка (405 мл) необходимо из-за достаточно большого объема препарата и для поддержания достаточно высокой скорости замораживания, чтобы свести до минимума гемолиз красных кровяных клеток. Накануне переливания замороженную кровь оттаивают, погружая мешочек в водяную баню при 54oС в условиях механического перемешивания в течение 1 мин. Кровь пригодна для переливания сразу после оттаивания (при условии, что степень гемолиза не превышает допустимой величины). Это и являетсяосновным преимуществом описанного способа по сравнению с методикой замораживания крови с глицерином. Данный способ возможен потому, что внеклеточный криопротектор ОЭК не обладает токсическими и иммуногенными свойствами, что сближает его с имеющимся в организме гликогеном и не требует удаления перед использованием крови для целей переливания.
В патенте США N 4018911 описано применение этого способа для замораживания материала объемом не более 25 мл, в результате которого выход красных кровяных клеток после оттаивания составляет 99,2% 87,3% этих клеток в изотоническом растворе сохраняют стабильность на протяжении получаса. В то же время, результаты замораживания этим методом стандартных единиц хранения донорской крови оказались значительно скромнее: выход клеток составлял 97,2% а стабильность в изотоническом растворе не превышала 75,7%
Использование ОЭК в качестве криопротектора при хранении замороженных эритроцитов, тромбоцитов, лейкоцитов, клеток костного мозга и других органов описано в заявке на Британский патент N 2046772А. Согласно предлагаемому способу клетки крови или органов разделяют, например, посредством центрифугирования, с последующими фильтрацией и адсорбцией. Заявка содержит краткое описание процесса замораживания эритроцитов после постадийного отделения одних типов клеток от других (в отсутствие центрифугирования, по-видимому, чтобы сохранить некоторое количество плазмы вместе с клетками) и добавления 10% -ного раствора ОЭК до получения отношения концентраций ОЭК и эритроцитов 2:3.Выход красных кровяных клеток составляет при этом 95 98% Материалы заявки свидетельствуют о возможности хранения и последующего получения красных кровяных клеток с использованием в качестве криопротекторас ОЭК, при приемлемом уровне гемолиза и в очень небольших объемах (25 мл в соответствии с патентом США N 4018911). Тем не менее, этот способ не позволяет хранить и получать красные кровяные клетки в количествах, которые необходимы для целей переливания. Кроме того, его применение сопровождается слишком большой изменчивостью выхода эритроцитов под воздействием разнообразных факторов даже в случае использования номинально идентичных проб. В результате, несмотря на высокую эффективность переливания крови с применением красных кровяных телец, замороженных в присутствии ОЭК в качестве криопротектора, до сих пор отсутствует способ снижения степени гемолиза эритроцитов до приемлемого уровня при достаточном постоянстве выхода клеток.
Предлагаемое изобретение касается способа замораживания красных кровяных клеток с использованием ОЭК в качестве криопротектора, который включает следующие операции: центрифугирование единицы хранения донорской крови для отделения красных кровяных клеток от плазмы и тромбоцитов, смешивание красных кровяных клеток с ОЭК и замораживание смеси. Способ отличается тем, что перед смешиванием объем глобулярной массы красных кровяных телец составляет не менее 90% и что концентрация ОЭК в смеси не превышает 7% концентрации эритроцитов (вес/объем). Объем глобулярной массыили гематокрит является общепринятым гематологическим показателем, определение которого содержится, в частности, на стр. 32 "Руководства по практической гематологии" (Practical Halmatology, bysir John V.Davie and S.M.Lewis, 6th Edition churehill Living stone, 1984, ISBN 044301981-9).
Однако следует отметить, что в отличие от известных способов, предлагаемый метод предполагает практически полное отсутствие плазмы в смеси. Кроме того, несмотря на отсутствие защитного действия плазмы, этот метод требует значительно меньшего количества ОЭК при пересчете на количество красных кровяных клеток (вес/объем). Помимо меньшей степени гемолиза, преимущество предлагаемого метода состоит также в том, что смесь не содержит многочисленных белков, которые могут присутствовать в плазме, в том числе факторов, вызывающих свертывание крови (например, фактора 8). Еще одно преимущество вытекает из низкой концентрации ОЭК. Установлено, что в результате смешивания ОЭК с плазмой развивается прогрессирующая тенденция к снижению растворимости некоторых протеинов, особенно факторов свертываемости, компонентов комплемента, иммуноглобулинов и фибропектина, по мере повышения концентрации ОЭК (см. S.Bell M. Sc Thesis, Library of Brunel University). Эти протеины образуют агрегаты, которые обусловливают молочно-белый цвет плазмы. При попадании в нативную плазму как in vivo, так и in vitro эти агрегаты служат очагами дальнейшей концентрации белков, в то время как ОЭК приобретает способность взаимодействовать с более значительными количествами белков свежей плазмы. Образующиеся при этом обломки выводятся макрофагами, что может сопровождаться временным уменьшением иммунокомпетентности больного. Поскольку одновременно нарушается функция факторов свертываемости и фибропектина, время кровотечения увеличивается пропорционально "дозе" ОЭК. Последний обычно используют в форме 40%-ного раствора (вес/объем) при среднем молекулярном весе ОЭК в диапазоне 150000 200000.
Оптимальный объем подобран исходя из стандартной единицы хранения донорской крови (450 мл) и содержит 200 мл красных кровяных клеток, смешанных с 35 мл 40%-ного раствора ОЭК. Таким образом, конечный объем препарата для замораживания составляет 235 мл.
Красные кровяные клетки можно обрабатывать коагулянтами и консервантами (такими, например, как лимоннокислый декстрозофосфат аденин, ЛКДФА, лимоннокислый декстрозофосфат, ЛКДФ, или гепарин), прежде чем смешивать их с ОЭК. Желательно проводить заморозку в жидком азоте, причем смесь должна находиться в мешке, который размещают в раме из двух параллельных перфорированных пластин, которые могут слегка перемещаться относительно друг друга, оставаясь при этом параллельными.
Рекомендуется изготавливать раму из алюминиевых пластин изогнутой формы, причем кривизна должна иметь цилиндрическую или, предпочтительно, сферическую конфигурацию.
Установлено, что содержимое мешка для замораживания весьма чувствительно к его локальному утолщению во время этого процесса. Смесь имеет тенденцию расширяться при понижении температуры, в связи с чем рамы известных конструкций либо деформируются для компенсации этого расширения, либо препятствуют ему, что приводит к поломке системы. Использование параллельных пластин, смещающихся относительно друг друга, позволяет избежать местного утолщения.
В изобретении используется такой объем стандартной единицы хранения (235 мл), который обеспечивает замораживание смеси с требуемой скоростью в отсутствие встряхивания мешка, как это предусматривается известными способами. Это значительно снижает уровень требований к оборудованию, упрощает процедуру замораживания и позволяет устранить возможные причины гемолиза (механическое повреждение клеток при встряхивании).
Рекомендуется переносить красные кровяные клетки в мешок для замораживания сразу после центрифугирования, причем мешок должен содержать заранее добавленный раствор ОЭК.
Замороженную в соответствии с описанным способом кровь непосредственно перед использованием для переливанияпогружают в подогретую до 43,5oС воду примерно на 10 мину, т.е. до тех пор, пока смесь не охладится примерно до температуры человеческого тела. При этом ее не встряхивают во избежание возможного дополнительного гемолиза.
Установлено, что использование вышеописанного способа замораживания и оттаивания крови в объеме, приближающемся к стандартному объему донорской крови, обеспечивает выход устойчивых в изотоническом растворе клеток в течение 1/2 ч, равный 91±0,75% при среднем выходе оттаявших клеток 99,1±0,12% Кровь пригодна для вливания больным через 11 мин после взятия замороженного материала из жидкого азота.
Составной частью настоящего изобретения является аппарат, описание которого дается ниже в порядке примера, со ссылками на прилегаемые схематические чертежи.
Фиг. 1 схематическое изображение процедуры получения стандартного объема донорской крови и последующих операций, вплоть до смешивания ОЭК и красных кровяных клеток в мешке для замораживания.
Фиг. 2 изображение в плане пластины, которая используется в составе рамы согласно изобретению.
Фиг. 3 изображение в плане, соответствующем фиг. 1, которое демонстрирует положение мешка для замораживания относительно пластины.
Фиг. 4 срез через раму, показывающий положение мешка между двух пластин.
Стандартный объем донорской крови, 450 мл (не показан), через трубку 10 поступает в мешок 11, содержащий антикоагулянт или консервант (ЛКДФА). Мешок герметично закрыт и помещен в центрифугу (не показана). Центрифугирование мешка 11 сопровождается отделением плазмы и тромбоцитов, которые оттекают в мешок 12.
Красные кровяные клетки общим объемом 200 мл, сконденсированные до объема глобулярной массы не менее 90% поступают в мешок 13, в который предварительно добавляют 35 мл оксиэтилового крахмала (ОЭК), желательно в форме 40%-ного раствора (вес/объем) при молекулярном весе 150000 200000. В результате концентрация ОЭК в жидкости, омывающей красные кровяные клетки, составляет приблизительно 25,5% а содержание ОЭК составляет 7% содержания эритроцитов (вес/объем). Оптимальное содержание ОЭК равно 6% (по весу) к объему эритроцитов.
Мешок для замораживания крови 13 должен быть плоским, узким и иметь квадратную форму. Мешок герметично закрывают после поступления в него эритроцитов и выхода воздуха. После этого смесь ОЭК и красных кровяных клеток перемешивают, например, переворачивая его или круговыми движениями, вручную, на протяжении нескольких минут.
Все процедуры, от взятия крови у донора до запечатывания мешка 13, проводят в стерильных условиях. Желательно, чтобы все элементы аппарата, от трубки 10 до мешка 13, составляли единое целое и не имели разрывов, а все необходимые разъемы осуществлялись таким образом, чтобы разделение элементов сопровождалось немедленным перекрыванием образовавшихся отверстий. Центрифугирование и смешивание красных кровяных клеток с ОЭК проводят общепринятыми для этих целей способами (см. например, патент США N 4018911), в связи с чем эти процедуры здесь не описываются.
Рама для фиксации мешка со смесью во время замораживания представляют собой конструкцию из двух пластин 10 и 21, которые имеют квадратную форму и изогнуты таким образом, что кривизна имеет сферическую конфигурацию, причем радиус наружной поверхности сферы приблизительно на 3 мм больше радиуса внутренней поверхности, и обе поверхности концентричны. Сферичность конструкции может быть, например, такой, чтобы допускать смещение на 2 см по центральной оси рамы при длине последней 33 см (установлено, что такой размер рамы в наибольшей степени соответствует требованиям, предъявляемым к условиям замораживания стандартного объема донорской крови). По краям обеих пластин 20 и 21 имеются закраины в виде направляющих 22, с помощью которых пластины размещаются одна относительно другой.
Пластины изготавливают из алюминия или другого металла, обладающего хорошей теплопроводностью. Пластины имеют многочисленные отверстия 23, на долю которых приходится до половины их поверхности. Мешок для замораживания 13 помещают на пластину 21 таким образом, чтобы он полностью покрывал перфорированную поверхность. После этого на первую пластину 21 и мешок 13 помещают вторую пластину 20, которая удерживается в требуемом положении с помощью нескольких прижимных элементов 24, один из которых показана фиг. 4. Рабочие участки 25 прижимных элементов 24 отличаются определенной гибкостью и располагаются таким образом, чтобы они захватывали края пластин 20 и 21 на самой кромке, там где они не нависают над мешком 13.
Конструкцию из пластин 20 и 21 и заключенного между ними мешка 13 помещают в вертикальном положении в емкость с жидким азотом (не показан). При этом происходит быстрое замораживание смеси ОЭК с красными кровяными тельцами (примерно в течение 30 с). Смесь имеет тенденцию к расширению по мере замораживания однако, благодаря гибкости рабочих участков 25 прижимных элементов 24, пластины 20 и 21 могут несколько смещаться и тем самым компенсировать это расширение. В то же время изгиб пластин 20 и 21 предохраняет их от деформации. В результате по всей их длине сохраняется параллельность и обеспечивается равномерная толщина мешка во всех точках его поверхности. Это имеет очень большое значение, поскольку ранее было установлено, что расширение мешка во время замораживания сопровождается локальным усилением гемолиза эритроцитов.
Замороженную вышеописанным способом кровь можно длительное время хранить при температуре жидкого азота. Перед использованием для переливания материалы вынимают из морозильной камеры и погружают в воду, нагретую примерно до 435oС на 10 мин, не перемешивая. На протяжении этого времени температура смеси понижается, желательно до температуры человеческого тела, после чего ее можно использовать для вливания.
Установлено, что при использовании описанного метода уровень гемолиза не превышает 1% что значительно ниже, чем в случаях применения известных методов замораживания и подготовки крови для целей переливания.
В табл. 1 приведена подробная характеристика 10 проб, замороженных и оттаянных вышеописанным способом. В аппарате для замораживания использованы пластины с толщиной перфорированных участков 0,9 мм, при толщине неперфорированных кромок 1,2 мм.
В табл. 2 представлены наиболее важные показатели, свидетельствующие о том, что эффективность достатки кислорода и выживаемость красных кровяных клеток при использовании вышеописанного метода существенно не изменяются.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет сохранять стандартныеобъемы красных кровяных клеток с достаточно высоким выходом и при воспроизводимой степени гемолиза, которая применима для целей переливания крови. Дополнительным преимуществом описанного способа является то обстоятельство, что стандартный объем уменьшен до 235 мл, поскольку это позволяет одновременно производить сливание одному больному большего количества таких объемов (т.е. большее количество красных кровяных клеток).
Трансфузионная смесь практически не содержит нежелательных примесей, представляющих опасность для больного, а содержание в ней ОЭК гораздо меньше, чем в смесях, получаемых с помощью известных способов замораживания.
Дополнительным преимуществом является то обстоятельство, что весь описанный процесс гораздо проще нежели аналогичные процессы, используемые в настоящее время, поскольку он не требует применения специальной аппаратуры для обеспечения вибрации рамы с закрепленным в ней мешком со смесью, подлежащей замораживанию.
Кроме того, техника оттаивания доступна лицам, не имеющим специальной подготовки, которые уже через 10 мин работы могут получить отличный результат, имея в своем распоряжении всего лишь ведерко подогретой воды.
Следует отметить, что данное изобретение предполагает возможность модификации вышеописанного метода и аппарата для его реализации. В частности, пластины 20 и 21 в идеальном случае должны иметь сферическую конфигурацию, однако допускается использование пластин с кривизной цилиндрической конфигурации или изогнутых под углом, если такая конструкция обеспечивает их параллельность при смещении относительно друг друга во время замораживания смеси. Точно также, вместо алюминия можно использовать другие материалы.
Важно подчеркунть, что предлагаемый способ пригоден для замораживания небольших объемов материала, хотя исходно он предназначен для работы со стандартными единицами хранения крови, поскольку это в большей степени соответствует сложившейся практике получения донорской крови и ее переливания. Так, например, его можно использовать при замораживании для последующего хранения мини-мешков квадратной формы с размером сторон 5 см. Это может быть необходимо для экспериментальной работы или для хранения редких типов крови.

Claims (10)

1. Способ замораживания красных кровяных клеток путем помещения их в мешок, закрепленный в раме, образованной из двух параллельных перфорированных пластин, при этом используют оксиэтиловый крахмал (ОЭК) в качестве криопротектора, центрифугируют единицы крови с последующим выделением из красных кровяных клеток плазмы и тромбоцитов, смешивают красные кровяные клетки с ОЭК и замораживают смесь, отличающийся тем, что до момента смешивания красные кровяные клетки имеют объем глобулярной массы не менее 90% а содержание ОЭК в смеси составляет не более 7% от объема красных кровяных клеток.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что содержание ОЭК равно 6% от объема красных кровяных клеток.
3. Способ по пп. 1 и 2, отличающийся тем, что ОЭК используется в виде раствора 40%-ного ОЭК.
4. Способ по пп. 1-3, отличающийся тем, что ОЭК имеет средний молекулярный вес в диапазоне 150000 200000.
5. Способ по пп. 1-4, отличающийся тем, что единица крови основывается на стандартном объеме донорской крови в 450 мл.
6. Способ по пп. 1-5, отличающийся тем, что красные кровяные клетки обрабатывают перед моментом смешивания с ОЭК антикоагулянтном.
7. Способ по пп. 1-6, отличающийся тем, что замораживание происходит в жидком азоте.
8. Рама для замораживания красных кровяных клеток, содержащая две параллельные пластины из теплопроводного материала с перфорированным участком и закраинами, установленные с зазором друг относительно друга для размещения мешка с замораживаемой смесью, скрепленные прижимными элементами и выполненные с возможностью плоско-параллельного перемещения по направляющим, отличающаяся тем, что пластины выполнены из алюминия дугообразными, направляющие в виде изогнутых навстречу друг другу свободных концов закраин, а прижимные элементы из упругого материала, при этом толщины перфорированного участка и закраины равны соответственно 0,9 и 1,2 мм.
9. Рама по п. 8, отличающаяся тем, что пластины выполнены цилиндрической конфигурации.
10. Рама по п. 8, отличающаяся тем, что пластины выполнены сферической конфигурации.
SU905001485A 1989-02-08 1990-01-31 Способ замораживания красных кровяных клеток и рама для замораживания красных кровяных клеток RU2073972C1 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB898902791A GB8902791D0 (en) 1989-02-08 1989-02-08 A method of freezing blood
GB8902791.6 1989-02-08
PCT/GB1990/000140 WO1990009184A1 (en) 1989-02-08 1990-01-31 A method of freezing red blood cells

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2073972C1 true RU2073972C1 (ru) 1997-02-27

Family

ID=10651316

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU905001485A RU2073972C1 (ru) 1989-02-08 1990-01-31 Способ замораживания красных кровяных клеток и рама для замораживания красных кровяных клеток

Country Status (22)

Country Link
US (1) US5309723A (ru)
EP (2) EP0564880A1 (ru)
JP (1) JP2747114B2 (ru)
KR (1) KR0148223B1 (ru)
CN (1) CN1049103A (ru)
AT (1) ATE99948T1 (ru)
AU (1) AU638229B2 (ru)
BR (1) BR9007103A (ru)
CA (1) CA2046627A1 (ru)
DE (1) DE69006014T2 (ru)
DK (1) DK0457782T3 (ru)
ES (1) ES2062509T3 (ru)
FI (1) FI100382B (ru)
GB (2) GB8902791D0 (ru)
GR (1) GR1000381B (ru)
HU (1) HU211079B (ru)
IE (1) IE63695B1 (ru)
NO (1) NO179435C (ru)
NZ (1) NZ232347A (ru)
PT (1) PT93099B (ru)
RU (1) RU2073972C1 (ru)
WO (1) WO1990009184A1 (ru)

Families Citing this family (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9212622D0 (en) * 1992-06-15 1992-07-29 Secr Defence Freezing bags
GB9218538D0 (en) * 1992-09-02 1992-10-14 Secr Defence Infusievloeistoffen freezing bags
ES2051649B1 (es) * 1992-12-11 1995-01-01 Grifols Grupo Sa Procedimiento y su dispositivo para la congelacion transporte y almac enamiento de bolsas de sangre, plasma y similares.
GB9320373D0 (en) * 1993-10-02 1993-11-24 Secr Defence Freezing frames
GB2296080B (en) * 1993-10-02 1997-08-13 Secr Defence Freezing frames for blood bags
DE4439480C1 (de) * 1994-11-08 1996-06-05 Asta Medica Ag Verwendung von D,L- alpha-Liponsäure und/oder ihren Enantiomeren, und/oder ihren Derivaten als Zusatz bei Erythrozyten-Flüssigkonserven für homologe und autologe Erythrozyten-Konzentrate und als Zusatz bei Erythrozyten-Kryokonserven für homologe und autologe Erythrozytenkonzentrate
CA2146098A1 (en) * 1995-01-12 1996-07-13 Ray V. Rajotte Bulk cryopreservation of biological materials and uses for cryopreserved and encapsulated biological materials
US6436705B1 (en) 1997-02-18 2002-08-20 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Shape stabilized erythrocytes
US6358678B1 (en) 1998-02-11 2002-03-19 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Applications of reversible crosslinking and co-treatment in stabilization and viral inactivations of erythrocytes
US6302327B1 (en) * 1997-06-16 2001-10-16 Thermogenesis, Corp. Method and apparatus for cryogenic storage of thermolabile products
CA2301025C (en) * 1997-08-20 2004-03-30 Biopore, Inc. Cryoprotectant removal method and apparatus
DE19736372A1 (de) 1997-08-21 1999-02-25 Ingo Dipl Ing Heschel Verfahren und Vorrichtung zum Kühlen, insbesondere Gefrieren eines Kühlgutes
CA2332986C (en) 1998-05-26 2009-09-08 Lifecell Corporation Cryopreservation of human red blood cells
DE10056181C1 (de) 2000-11-13 2002-03-07 Hiberna Ag Blutbeutel-Kassette, Blut-Kryokonserve und Verfahren zu deren Herstellung
AU2003230955A1 (en) * 2002-05-01 2003-11-17 Cryoglass Llc Cryopreservation system for liquid substances
AU2006294654B2 (en) * 2005-09-26 2012-05-24 Lifecell Corporation Dry platelet composition
EP2063706A2 (en) * 2006-09-11 2009-06-03 I.M.T. Interface Multigrad Technology Ltd. Systems, devices and methods for freezing and thawing biological materials
US9301520B2 (en) 2007-12-21 2016-04-05 Sartorius Stedim North America Inc. Systems and methods for freezing, storing and thawing biopharmaceutical materials
US8177123B2 (en) * 2008-09-24 2012-05-15 Sartorius Stedim North America Inc. Systems and methods for freezing, storing and thawing biopharmaceutical materials
KR102207030B1 (ko) * 2012-09-28 2021-01-22 세키스이 메디칼 가부시키가이샤 비희석계 면역 크로마토그래피법 시약에 있어서 희석 시료를 측정하기 위한 첨가물
CN103120153A (zh) * 2012-11-26 2013-05-29 刘召宏 一种脱落细胞保存液
US10448631B2 (en) 2015-09-22 2019-10-22 East Carolina University Cryopreservation using sucralose
FR3064608B1 (fr) * 2017-03-30 2020-08-07 Sartorius Stedim Fmt Sas Boitier de protection d’une poche de liquide biopharmaceutique, ensemble de protection et procede d’assemblage associes

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3758382A (en) * 1968-07-26 1973-09-11 Us Navy Ve agent process of freezing blood using a hydroxyalkyl starch as cryoprotecti
US3729947A (en) * 1970-12-04 1973-05-01 Alza Corp Process for storing blood platelets
BE788135A (fr) * 1971-08-30 1973-02-28 Union Carbide Corp Procede et dispositif de congelation rapide
CA1003232A (en) * 1973-03-02 1977-01-11 Clifford C. Faust Expandable holder apparatus for flattening and freezing fluid-containing flexible pouches
US3898023A (en) * 1974-05-28 1975-08-05 Union Carbide Corp Expandable holder apparatus for flattening and freezing fluid-containing flexible pouches
US4018911A (en) * 1975-11-10 1977-04-19 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Method for large volume freezing and thawing of packed erythrocytes
US4004975A (en) * 1975-12-30 1977-01-25 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Method of isolating and cryopreserving human white cells from whole blood
US4059967A (en) * 1976-02-19 1977-11-29 The Community Blood Council Of Greater New York, Inc. Process for freezing blood platelets
DE2908436A1 (de) * 1979-03-05 1980-09-25 Fresenius Chem Pharm Ind Kolloidales gefrierschutzmittel
US4251995A (en) * 1979-04-25 1981-02-24 Hedbergska Stiftelsen Method of freezing human blood platelets in glycerol-glucose using a statically controlled cooling rate device

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патент США N 4018911, кл. A 61 K 35/18, 1977. *

Also Published As

Publication number Publication date
DE69006014D1 (de) 1994-02-24
EP0457782A1 (en) 1991-11-27
ATE99948T1 (de) 1994-01-15
NO179435C (no) 1996-10-09
DK0457782T3 (da) 1994-03-07
BR9007103A (pt) 1991-10-22
JP2747114B2 (ja) 1998-05-06
KR920700662A (ko) 1992-08-10
JPH04503666A (ja) 1992-07-02
WO1990009184A1 (en) 1990-08-23
FI913735A0 (fi) 1991-08-06
EP0564880A1 (en) 1993-10-13
NO179435B (no) 1996-07-01
FI100382B (fi) 1997-11-28
PT93099A (pt) 1990-08-31
HU211079B (en) 1995-10-30
EP0457782B1 (en) 1994-01-12
GB2245144A (en) 1992-01-02
CA2046627A1 (en) 1990-08-09
NO913070D0 (no) 1991-08-07
ES2062509T3 (es) 1994-12-16
AU4950490A (en) 1990-09-05
IE63695B1 (en) 1995-05-31
CN1049103A (zh) 1991-02-13
GB8902791D0 (en) 1989-03-30
GB9116136D0 (en) 1991-09-11
DE69006014T2 (de) 1994-05-05
KR0148223B1 (ko) 1998-08-17
NZ232347A (en) 1992-12-23
GR900100082A (en) 1991-06-28
AU638229B2 (en) 1993-06-24
IE900437L (en) 1990-08-08
PT93099B (pt) 1995-12-29
US5309723A (en) 1994-05-10
GR1000381B (el) 1992-06-30
HUT59609A (en) 1992-06-29
NO913070L (no) 1991-08-07
GB2245144B (en) 1992-07-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2073972C1 (ru) Способ замораживания красных кровяных клеток и рама для замораживания красных кровяных клеток
Zucker et al. Reversible alterations in platelet morphology produced by anticoagulants and by cold
US3303662A (en) Process for cell preservation
AU770634B2 (en) Method and apparatus for the production of purified plasma proteins
JP2006527229A (ja) 単離された管腔器官及び生体脈管における内皮組織の保存のための方法及び装置
Sputtek Cryopreservation of red blood cells and platelets
JP2006512389A (ja) 復元可能な乾燥血液製剤
AU4651993A (en) Stem cell and lymphocyte storage
EP0061277B1 (en) Anaerobic method for preserving whole blood, tissue and components containing living mammalian cells
US4278592A (en) Process and apparatus for the production of sterile filtered blood clotting factors
Lionetti et al. Improved method for the cryopreservation of human red cells in liquid nitrogen with hydroxyethyl starch
Castro et al. Freeze preservation of sickle erythrocytes
Runck et al. Recovery of glycerolized red blood cells frozen in liquid nitrogen
Gerota et al. Concentration of bone marrow stem cells using the Haemonetics system
McGann et al. Osmotic properties of chondrocytes isolated from articular cartilage
Hardeman The effect of continuous dialysis on platelet preservation
Pegg Cryobiology-a review
Morse Use of frozen blood
Tomford et al. Cryopreservation of intact articular cartilage
McShine et al. The use of fresh plasma and a plasma-free medium to enhance the aggregation response of stored platelets
Johnston Blood transfusion: use and abuse of blood components
RU1775882C (ru) Способ консервирования эритроцитов
Iwata et al. Preparation of bioartificial liver using hollow fibers with four different cut-off molecular weights
Staples et al. Introduction of frozen pediatric red cell packs
Pegg Effect of cell concentration on the survival of human erythrocytes frozen and thawed in the presence of glycerol